JP2008101026A - 殺菌性／透過性が向上したタンパク質の機能領域に由来する生物学的に活性なペプチドおよびその使用 - Google Patents

殺菌性／透過性が向上したタンパク質の機能領域に由来する生物学的に活性なペプチドおよびその使用 Download PDF

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Abstract

【課題】殺菌薬ならびに内毒素中和薬として使用でき、また、（正常あるいは病理的な
）血管形成でのヘパリン中和およびヘパリン阻害のための、新規の物質と方法を提供する
こと。
【解決手段】ヒトの殺菌性／透過性が向上したタンパク質（BPI）のアミノ酸配列の約1
7位から約45位（約65位から約99位、または約142位から約169位）のアミノ酸配列、その
サブ配列、および前記アミノ酸配列あるいは前記サブ配列の変異配列を含み、BPIの活性
である生物学的活性を備えたペプチド。
【選択図】なし

Description

本願出願は、1993年３月12日に出願された米国特許出願No．08/030,644の一部継続出願で
ある、1993年７月15日に出願された米国特許出願No．08/093,202の一部継続出願である、
1994年１月14日に出願された米国特許出願No．08/183,222の一部継続出願である。
発明の背景
本発明は、殺菌性／透過性が向上したタンパク質由来あるいは当該タンパク質に基づい
たペプチドならびにかようなペプチドの治療的用途に関する。
殺菌性／透過性が向上したタンパク質（BPI）は、微生物の侵入から哺乳類を保護する
上で必須の血液細胞である、哺乳類多形核好中球（PMNs）の顆粒から単離したタンパク質
である。ヒトBPIは、イオン交換クロマトグラフィー（Elsbach，1979，J．Biol．Chem，2
54：11000）あるいはE．coli親和性クロマトグラフィー（Weisset al.，1987，Blood，69
：652）のいずれかと酸抽出を組み合わせてPMNsから単離され、多様なグラム陰性細菌に
対して強い殺菌性を示す。ヒトBPIの分子量は、約55,000ダルトン（55kD）である。ヒトB
PIの完全なアミノ酸配列ならびにBPIをコードするDNAのヌクレオチド配列は、本願にて参
考までに採用した、Grayet al.，1989，J．Biol．Chem．264，9505によって解明されてい
る（Gray et alの図１を参照のこと）。
BPI の殺菌効果は、感受性のグラム陰性細菌に対して高い特異性が認められる。BPIが
グラム陰性細菌を殺傷する正確な機構は未だ定かではないが、BPIが感受性のグラム陰性
細菌の表面にまず接触することが知られている。細菌へのBPIによるこの最初の結合は、
塩基性（すなわち、正に帯電した）タンパク質であるBPIとリポ多糖（LPS）の負に帯電し
た部位との間での静電気作用も関与している。LPSは、炎症性応答を刺激することから、
「内毒素」として知られている。LPSは、不可逆的な内毒素ショックをもたらす宿主炎症
性細胞による媒介体の遊離を促す。BPIは、LPSの最大の毒性要素であり、また最大の生物
学的活性要素であるリピドＡに結合する。
BPI は、BPIに結合するLPSの内毒素要素を中和することもできる。グラム陰性細菌に対
する殺菌力ならびにLPSに結合して中和する能力がために、菌血症、内毒素血症および敗
血症を含めた、グラム陰性細菌による疾患にかかった哺乳類の治療にBPIを利用すること
ができる。BPIに関するこれら二面的特徴は、BPIの治療用途への応用を、特に有益かつ有
利にする。
ヒトBPIのアミノ末端部分に対応するタンパク質分解断片は、LPS結合活性ならびに中和
活性、および自然に得られた55kDのヒトのホロタンパク質の抗菌活性を有している。アミ
ノ末端部分と対照的に、単離したヒトBPIのカルボキシ末端部分は、かすかに検出可能な
抗菌活性を示すに過ぎない（Ooiet al.，1991、J．Exp．Med．174：649）。ヒトBPIホロ
タンパク質の最初の約199子のアミノ酸残基を含む、「rBPI23」と称する、あるBPIアミノ
末端断片（Gazzano-Santoroet al.，1992，Infect．Immun．60：4754-4761を参照のこと
）は、組換え手法によって、23kDのタンパク質として生成される。rBPI23は、ヒトに対す
る臨床応用の段階にある。内毒素に対する前炎症応答は、rBPI23とLPSを同時に投与した
場合に、顕著に改善された。
内毒素に結合および中和する他のペプチドも、当該技術分野では知られている。一例と
して、カブトガニ変形細胞に由来するLimulus抗リポ多糖因子（LALF）がある（Waren et
al.，1992，Infect．Immunol．60：2506-2513）。他の例として、ポリミキシンB1と命名
された、BacillusPolymyxaに由来する環状のカチオン性リポペプチドがある。ポリミキシ
ンB1は、六つのα、γ−ジアミノ酪酸残基、一つのD-フェニルアラニン、一つのロイシン
、一つのスレオニン、および6-メチルオクタノイル部分から構成されており（Morrisonan
d Jacobs，1976，Immunochem．13：813-818）、殺菌性も備えている。LPSへの結合力は保
持しているものの、明確な殺菌活性を有していない、脂肪酸部分が欠如したポリミキシン
類似体も知られている（Danneret al.，1989，Antimicrob．Agents Chemother．33：1428
-1434）。同様の特性が、合成した環状ポリミキシン類似体にも認められている（Rustici
et al.，1993，Science．259：361-365）。
公知の抗菌性ペプチドとして、セクロピンとマガイニィンがある。セクロピンは、鱗翅
目の昆虫の血リンパにて認められる抗菌性ペプチドの科であり（Wade et al.，1990，Pro
c．Natl．Acad．Sci．USA 87：4761-4765）、マガイニィンは、Xenopus科の皮膚および胃
粘膜にて認められる抗菌性ペプチドの科である（Zasloffet al.，1988，Proc．Natl．Aca
d．Sci．USA85：910-913）。これらペプチドは線状であり、約20から約40個のアミノ酸の
長さを有している。ブタの腸粘膜に由来する、やや活性の小さな哺乳類セクロピン、セク
ロピンP1が報告されている（Bomanet al.，1993，Infect．Immun．61：2978-2984）。殺
菌性に関して、セクロピンは、一般にマガイニィンより勝っているが、哺乳類細胞の細胞
毒性については劣る旨が報告されている。セクロピンとマガイニィンは、殺菌性のために
は必須の連続した両親媒性のα−フェリックス領域によって特徴付けられる。今日までに
同定された最も強力なセクロピンは、セクロピンＡである。セクロピンＡの最初の10個の
アミノ酸の配列は、BPIアミノ酸配列90−99とある程度の相同性がある。しかしながら、
セクロピンＡの他の27個のアミノ酸は、その殺菌性のためには必須のものであり、これら
27個のアミノ酸に関してBPIとはほとんど相同性が認められない。マガイニィンは、 BPI
配列とはほとんど相同性が認められない。
本願と関連性があると思われるものに、（1）殺菌性と（2）内毒素中和活性を示さない
とされる、 BPIとアニオン性化合物を含む組成物に関する、PCT国際出願No．PCT/US91/05
758による開示がある。アニオン性化合物として、好ましくは、血清アルブミンのような
タンパク質であるが、ヘパリンのような多糖類も使用できる。加えて、Weisset al．（19
75，J．Clin．Invest．55：33-42）は、ヘパリン硫酸とLPSが、BPIの浸透性増大活性の発
現をブロックすることを開示している。しかしながら、いずれの先行技術も、BPIがヘパ
リンの生物学的活性を中和することは開示していない。ヘパリン中和においてヘパリンに
よる結合は必ずしも必要ではない。例えば、ヘパリン結合増大因子（HBFG）の科は、生物
学的応答を引き出すための共因子としてヘパリンを必要とする。HBFGの例として、繊維芽
細胞成長因子（FGF-1，FGF-2）と、内川細胞成長因子（ECGF-1，ECGF-2）がある。カスケ
ードプロテアーゼの凝固を阻害する抗トロンビンIIIは、活性のためにヘパリンを必要と
し、明らかにヘパリンを中和しない、ヘパリン結合タンパク質の他の例である。ヘパリン
を正に中和するヘパリン結合タンパク質（例えば、血小板因子IV、プロタミン、およびト
ロンボスポンディン）は、一般的に、ヘパリンを共因子として用いるヘパリン結合タンパ
ク質によって誘発した活性を阻害する。
BPI （そのアミノ末端を含む）、多くの他の重要な生物学的活性を有する。例えば、本
明細書に参考までに採用した、係属中で共同所有に係る、1993年３月12日に出願された米
国特許出願No．08/030,644および1993年７月15日に出願された一部継続の米国特許出願No
．08/093,202にあるように、BPIはヘパリン結合活性とヘパリン中和活性を有している。
これら、BPIによるヘパリン結合活性とヘパリン中和活性は、ヘパリンの現在の臨床上の
重要性からして非常に意味がある。ヘパリンは、心肺バイパス、心臓カテーテル法、およ
び血液透析などの外科的処置を行う間の血液凝固を防ぐために、通常、400単位/Kgまでの
用量が投与される。手術中に抗凝固薬としてヘパリンを投与した場合、通常の凝固作用を
回復せしめるために、ヘパリンの効果を迅速に解消することは、術後処置において重要で
ある。現在のところ、ヘパリンを中和するために、プロタミンが使用されている。プロタ
ミンは、薬剤に分類された、富アルギニン、強塩基性および低分子量のタンパク質である
。単独投与することで、プロタミン（通常はプロタミン硫酸の形態）は、抗凝固効果を呈
する。ヘパリンの存在下でこれを投与すれば、安定な複合体が形成され、双方の薬剤の抗
凝固活性は消失する。しかしながら、プロタミンの顕著な降圧ならびにアナフィラキシー
効果は、臨床用途では限界がある。よって、そのヘパリン結合活性ならびにヘパリン中和
活性が故に、プロタミンの有用性を制限する臨床上の有害な副作用を呈さずに、ヘパリン
中和のためのプロタミンの代用物としてBPIは有用である。BPIの抗菌効果ならびに抗内毒
素効果も、プロタミンと比較した場合、術後のヘパリン中和におけるBPIの有用性と利便
性を後押ししている。
さらに、BPIは、そのヘパリン結合活性ならびにヘパリン中和活性が部分的に作用して
、血管形成を阻害する上で有用である。成人の場合、血管成長因子は、血管の損傷（傷の
治癒）、免疫刺激（自己免疫疾患）、炎症媒体（プロストグランジン）の結果、あるいは
腫瘍細胞から放出される。これら因子は、ヘパリン依存性レセプター結合の機構を介して
、（血管形成において必須の）内皮細胞の増殖を誘発する（Yayonet al.，1991，Cell 64
：841-848を参照のこと）。血管形成は、様々な腫瘍の成長、増殖および転移；糖尿性網
膜症、水晶体後繊維増殖症、新血管新生性緑内障、乾癬、血管線維腫；リュウマチ性関節
炎、アテローム性動脈硬化症プラークでの毛細血管増殖、血管腫、子宮内膜症、およびカ
ポジ肉腫を含む免疫性ならびに非免疫性炎症を含めた他の多くの病理学的条件とも関連し
ている。このように、これら症例ならびに他の症例での血管形成を阻害することが望まし
く、また、その上でBPIのヘパリン結合活性ならびにヘパリン中和活性が有用である。
血管形成を阻害するために、いくつかの他のヘパリン中和タンパク質が知られている。
例えば、プロタミンは、腫瘍が関連している血管形成とその後の腫瘍の成長を阻害するこ
とが知られている〔Folkman et al.，1992，Inflammation：Basic Principles and Clini
calCorrelates，2d ed.，（Galin et al.，eds.，Review Press，N.Y.），Ch．40，pp．8
21-839を参照のこと〕。第二のヘパリン中和タンパク質である血小板IVも、血管形成を阻
害する（すなわち、血管の成長を止める）。コラゲナーゼ阻害剤も、血管形成を阻害する
ことが知られている（前出のFolkmanet al.，1992の文献を参照のこと）。他の公知の血
管形成阻害剤であるトロンボスポンディンは、元のアミノ酸部分と代えた、セリン／トリ
プトファンの繰り返し部分でヘパリンに結合する（Guoet al.，1992，J．Biol．Chem．26
7：19349-19355を参照のこと）。
BPI の他の有用性は、通常、血管形成によって引き起こされる慢性炎症に関連する病理
学的条件にも関与する。慢性炎症に関連したヒトの疾患の一例として、末梢関節の炎症を
含んだ関節炎がある。リュウマチ性関節炎において、炎症は免疫が関与するが、反応性関
節炎では、化膿性細菌あるいは他の感染症因子による滑液組織の感染と炎症は関連してい
る。上掲のFolkmanet al.，1992の文献も、関節部の炎症侵潤物によって支配された段階
から、新生血管のパンヌスが関節部に侵入して軟骨を破壊し始める段階までの、関節炎の
様々な進行の態様を記している。関節炎において血管形成が疾患あるいは付帯徴候の原因
要素であるかどうかは不明であるが、リュウマチ性関節炎での滑膜炎の維持において、血
管形成が必須であるとの根拠はある。公知の血管形成阻害剤の一つである、AGM1470は、
関節炎の進行を防止し、コラーゲン誘発した関節炎のモデルにて関節炎を阻害することを
立証している（Peacocket al.，1992，J．Exp．Med．175：1135-1138）。非ステロイド系
の抗炎症薬、コルチコステロイド、および他の治療薬が、関節炎の治療効果を改善するた
めに提供されてきたが、当該技術分野では依然として、関節炎ならびに他の炎症性疾患の
より効果的治療が要望されているのである。
当該技術分野では、殺菌薬ならびに内毒素中和薬として使用でき、また、（正常あるい
は病理的な）血管形成でのヘパリン中和およびヘパリン阻害のための、新規の物質と方法
が待望されている。この要望を満たすための研究の指針の一つは、これら生物学的活性の
それぞれを特定するBPIタンパク質の機能部位を決定することにある。それ故、好適な治
療態様では、BPIの活性の一つ以上を備えた、BPI機能領域を有するペプチドを含むことに
なる。
項目１．ヒトの殺菌性／透過性が向上したタンパク質（BPI）のアミノ酸配列の約17位か
ら約45位のアミノ酸配列、そのサブ配列、および前記アミノ酸配列あるいは前記サブ配列
の変異配列を含み、BPIの活性である生物学的活性を備えたペプチド。
項目２．前記アミノ酸配列が、
Figure 2008101026
 である項目第１項に記載のペプチド。
項目３．互いに共有結合した、項目第１項に記載のペプチドと同一あるいは異なる二つあ
るいは三つのペプチドを含むペプチド。
項目４．項目第１項、第２項あるいは第３項に記載のペプチドと、薬学的に許容される担
体あるいは希釈剤を含む薬剤組成物。
項目５．ヒトの殺菌性／透過性が向上したタンパク質（BPI）のアミノ酸配列の約65位か
ら約99位のアミノ酸配列、そのサブ配列、および前記アミノ酸配列あるいは前記サブ配列
の変異配列を含み、BPIの活性である生物学的活性を備えたペプチド。
項目６．前記アミノ酸配列が、
Figure 2008101026
 である項目第５項に記載のペプチド。
項目７．互いに共有結合した、項目第５項に記載のペプチドと同一あるいは異なる二つあ
るいは三つのペプチドを含むペプチド。
項目８．前記アミノ酸が、
Figure 2008101026
 である項目第７項に記載のペプチド。
項目９．項目第５項、第６項、第７項あるいは第８項に記載のペプチドと薬学的に許容さ
れる担体あるいは希釈剤を含む薬剤組成物。
項目10．ヒトの殺菌性／透過性が向上したタンパク質（BPI）のアミノ酸配列の約142位か
ら約169位のアミノ酸配列、そのサブ配列、および前記アミノ酸配列あるいは前記サブ配
列の変異配列を含み、BPIの活性である生物学的活性を備えたペプチド。
項目11．前記アミノ酸配列が、
Figure 2008101026
Figure 2008101026
 である項目第10項に記載のペプチド。
項目12．互いに共有結合した、項目第10項に記載のペプチドと同一あるいは異なる二つあ
るいは三つのペプチドを含むペプチド。
項目13．前記アミノ酸配列が、
Figure 2008101026
 である項目第12項に記載のペプチド。
項目14．項目第10項、第11項、第12項あるいは第13項に記載のペプチドと薬学的に許容さ
れる担体あるいは希釈剤を含む薬剤組成物。
項目15．互いに共有結合した、項目第１項、第５項あるいは第10項に記載のペプチドと同
一あるいは異なる二つあるいは三つのペプチドを含むペプチド。
項目16．前記アミノ酸配列が、
Figure 2008101026
 である項目第15項に記載のペプチド。
項目17．項目第15項あるいは第16項に記載のペプチドと薬学的に許容される担体あるいは
希釈剤を含む薬剤組成物。
項目18．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のヘパリン結合性ペプチドの有効量を
患者に投与することを含む、ヘパリンの抗凝固効果を中和する方法。
項目19．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチド生成物を、血管形成を阻害
するだけの量で患者に投与することを含む、血管形成を阻害する方法。
項目20．前記血管形成の阻害が、網膜症に関連するものである項目第19項に記載の方法。
項目21．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドを、増殖を阻害するだけの
量患者に投与することを含む、内皮細胞増殖を阻害する方法。
項目22．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドを、内皮細胞増殖を阻害す
るに有効な量で内皮に投与することを含む、子宮内膜症を治療する方法。
項目23．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドを、受精卵の着床に関連す
る内皮細胞の増殖を効果的に予防するための量で子宮に投与することを含む、避妊の方法
。
項目24．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドを、増殖を有効に阻害する
だけの量で患者に投与することを含む、悪性腫瘍細胞の増殖を阻害する方法。
項目25．前記悪性腫瘍が、カポジ肉腫である項目第24項に記載の方法。
項目26．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドを、炎症を有効に軽減する
だけの量で患者に投与することを含む、慢性炎症疾患の治療方法。
項目27．前記慢性炎症疾患が、関節炎である項目第26項に記載の方法。
項目28．前記関節炎症疾患状態が、リウマチ関節炎である項目第27項に記載の方法。
項目29．前記関節炎症疾患状態が、反応性関節炎である項目第27項に記載の方法。
項目30．ヘパリン結合性薬剤として用いる、項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６
項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載の
ペプチド。
項目31．ヘパリンの抗凝固効果の中和する際のヘパリン結合のために用いる、項目第１項
、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項
、第15項あるいは第16項に記載のペプチド。
項目32．血管形成を阻害する際のヘパリン結合のために用いる、項目第１項、第２項、第
３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項、第15項ある
いは第16項に記載のペプチド。
項目33．前記血管形成の阻害が、網膜症に関連するものである項目第32項に記載のペプチ
ド。
項目34．内皮細胞増殖を阻害する際のヘパリン結合のためのに用いる、項目第１項、第２
項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項、第15
項あるいは第16項に記載のペプチド。
項目35．前記内皮細胞増殖が、子宮内膜症に関連するものである項目第34項に記載のペプ
チド。
項目36．避妊薬として用いる際のヘパリン結合のために用いる、項目第１項、第２項、第
３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項、第15項ある
いは第16項に記載のペプチド。
項目37．悪性腫瘍細胞増殖を阻害する際のヘパリン結合のために用いる、項目第１項、第
２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項、第
15項あるいは第16項に記載のペプチド。
項目38．前記悪性腫瘍が、カポジ肉腫である項目第37項に記載のペプチド。
項目39．慢性炎症疾患状態を治療する際のヘパリン結合のために用いる、項目第１項、第
２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項、第
15項あるいは第16項に記載のペプチド。
項目40．前記慢性炎症疾患が、関節炎である項目第39項に記載のペプチド。
項目41．前記関節炎症疾患状態が、リウマチ関節炎である項目第40項に記載のペプチド。
項目42．前記関節炎症疾患状態が、反応性関節炎である項目第40項に記載のペプチド。
項目43．ヘパリン結合性薬剤の製造のための、項目第１項、第２項、第３項、第５項、第
６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載
のペプチドの使用。
項目44．ヘパリンの抗凝固効果を中和するためのヘパリン結合性薬剤の製造のための、項
目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項
、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの使用。
項目45．血管形成を阻害するためのヘパリン結合性薬剤の製造のための、項目第１項、第
２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項、第
15項あるいは第16項に記載のペプチドの使用。
項目46．網膜症に関連する血管形成を阻害するためのヘパリン結合性薬剤の製造のための
、項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第
12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの使用。
項目47．内皮細胞の増殖を阻害するためのヘパリン結合性薬剤の製造のための、項目第１
項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13
項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの使用。
項目48．内皮細胞の増殖を阻害することで子宮内膜症を治療するためのヘパリン結合性薬
剤の製造のための、項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第
10項、第11項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの使用。
項目49．ヘパリン結合性避妊薬の製造のための、項目第１項、第２項、第３項、第５項、
第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記
載のペプチドの使用。
項目50．悪性腫瘍細胞の増殖を阻害するためのヘパリン結合性薬剤の製造のための、項目
第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、
第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの使用。
項目51．前記悪性腫瘍が、カポジ肉腫である項目第50項に記載の使用。
項目52．慢性炎症疾患状態を治療するためのヘパリン結合性薬剤の製造のための、項目第
１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第
13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの使用。
項目53．前記慢性炎症疾患が、関節炎である項目第52項に記載の使用。
項目54．前記関節炎症疾患状態が、リウマチ関節炎である項目第53項に記載の使用。
項目55．前記関節炎症疾患状態が、反応性関節炎である項目第53項に記載の使用。
項目56．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの有効量を投与することを
含む、グラム陰性細菌感染ならびにその後遺症の治療のための方法。
項目57．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの有効量を含む、グラム陰
性感染ならびにその後遺症の治療のための薬剤組成物。
項目58．薬学的に効果のある希釈剤、補助剤あるいは担体を含む、項目第57項に記載の薬
剤組成物。
項目59．グラム陰性細菌感染ならびにその後遺症の治療のための薬剤の製造のための、項
目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項
、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの使用。
項目60．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドを投与することを含む、循
環血液中のグラム陰性内毒素の副作用を治療する方法。
項目61．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドを含む、循環血液中のグラ
ム陰性細菌内毒素の副作用を治療するための薬剤組成物。
項目62．薬学的に効果のある希釈剤、補助剤あるいは担体を含む、項目第61項に記載の薬
剤組成物。
項目63．循環血液中のグラム陰性内毒素の副作用を治療するための薬剤を製造するための
、項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第
12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの使用。
項目64．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドを投与することを含む、グ
ラム陰性細菌を死滅させるための方法。
項目65．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドを含む、グラム陰性細菌を
死滅させるための薬剤組成物。
項目66．薬学的に効果のある希釈剤、補助剤あるいは担体を含む、項目第65項に記載の薬
剤組成物。
項目67．グラム陰性細菌を死滅させる薬剤の製造のための、項目第１項、第２項、第３項
、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項、第15項あるいは
第16項に記載のペプチドの使用。
項目68．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの有効量を抑制された細網
内皮系機能を患った被投与体に投与することを含む、抑制された細網内皮系機能に関連す
る生理学的副作用を治療するための方法。
項目69．前記抑制された細網内皮系機能が、肝臓のクッパー細胞の消失した機能である項
目第68項に記載の方法。
項目70．前記消失したクッパー細胞の機能が、物理的傷害によるものである項目第69項に
記載の方法。
項目71．前記消失したクッパー細胞の機能が、化学的傷害によるものである項目第69項に
記載の方法。
項目72．前記消失したクッパー細胞の機能が、生物的傷害によるものである項目第69項に
記載の方法。
項目73．前記ペプチドが、薬学的に許容される希釈剤、補助剤あるいは担体と共に投与さ
れる項目第68項に記載の方法。
項目74．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの有効量を含む、抑制され
た細網内皮系機能に関連する生理学的副作用を治療するための薬剤組成物。
項目75．薬学的に許容される希釈剤、補助剤あるいは担体を含む項目第74項に記載の薬剤
組成物。
項目76．抑制された細網内皮系細胞機能に関連する生理学的副作用の治療のための薬剤を
製造するための、項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10
項、第11項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの使用。
項目77．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドと抗生物質の相乗効果有効
量を被投与体に投与することを含む、グラム陰性細菌感染およびその後遺症を治療するた
めの方法。
項目78．前記抗生物質が、非タンパク質性抗生物質である項目第77項に方法。
項目79．前記抗生物質が、ゲンタマイシン、ポリミキシンＢ、およびセファマンドールナ
フラからなるグループから選択される質性抗生物質である項目第77項に方法。
項目80．前記抗生物質および前記ペプチドが、それぞれ単独でグラム陰性細菌感染に対し
て殺菌活性を呈する量だけ投与される項目第77項に方法。
項目81．前記抗生物質および前記ペプチドが、全身的に投与される項目第77項に方法。
項目82．前記抗生物質および前記ペプチドが、局所的に投与される項目第77項に方法。
項目83．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドと抗生物質の相乗効果有効
量を投与することを含む、グラム陰性細菌を死滅させるための方法。
項目84．前記抗生物質および前記ペプチドが、invivoで投与される項目第83項に方法。
項目85．前記抗生物質および前記ペプチドが、全身的に投与される項目第84項に方法。
項目86．前記抗生物質および前記ペプチドが、局所的に投与される項目第84項に方法。
項目87．前記抗生物質および前記ペプチドが、invitroで投与される項目第83項に方法。
項目88．前記抗生物質が、ゲンタマイシン、ポリミキシンＢ、およびセファマンドールナ
フラからなるグループから選択される質性抗生物質である項目第83項に方法。
項目89．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドと抗生物質の相乗効果有効
量を含む、グラム陰性細菌感染およびその後遺症を治療するための薬剤組成物。
項目90．薬学的に許容される希釈剤、補助剤あるいは担体を含む項目第89項に記載の薬剤
組成物。
項目91．前記抗生物質が、ゲンタマイシン、ポリミキシンＢ、およびセファマンドールナ
フラからなるグループから選択される質性抗生物質である項目第89項に記載の薬剤組成物
。
項目92．グラム陰性細菌感染およびその後遺症を治療するための薬剤を製造するための、
項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12
項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドと抗生物質の相乗効果有効量の使用
。
項目93．前記抗生物質が、ゲンタマイシン、ポリミキシンＢ、およびセファマンドールナ
フラからなるグループから選択される質性抗生物質である項目第92項に記載の使用。
項目94．項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドとLBPタンパク質生成物を
投与することを含む、グラム陰性細菌感染とその後遺症を治療するための方法。
項目95．前記LBPタンパク質生成物が、前記ペプチドの殺菌活性を強化する量だけ投与さ
れる項目第94項に記載の方法。
項目96．前記LBPタンパク質生成物が、アミノ末端LBP断片である項目第94項に記載の方法
。
項目97．前記LBPタンパク質生成物が、約25kDの分子量である項目第94項に記載の方法。
項目98．前記LBPタンパク質生成物が、LBPホロタンパク質である項目第94項に記載の方法
。
項目99．前記タンパク質が、全身的に投与される項目第94項に記載の方法。
項目100.前記タンパク質が、局所的に投与される項目第94項に記載の方法。
項目101. 項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第1
1項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドと前記ペプチドの殺菌活
性を強化する量のLBPタンパク質生成物を投与することを含む、グラム陰性細菌を死滅さ
せるための方法。
項目102.前記LBPタンパク質生成物が、invivoで投与される項目第101項に方法。
項目103.前記LBPタンパク質生成物が、invitroで投与される項目第101項に方法。
項目104.前記LBPタンパク質生成物が、アミノ末端LBP断片である項目第101項に記載の方
法。
項目105.前記LBPタンパク質生成物が、約25kDの分子量である項目第101項に記載の方法。
項目106.前記LBPタンパク質生成物が、ホロタンパク質である項目第101項に記載の方法。
項目107.項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドと前記ペプチドの殺菌活性
を強化する量のLBPタンパク質生成物を含む、グラム陰性細菌感染ならびにその後遺症を
治療するための薬剤組成物。
項目108.薬学的に許容される希釈剤、補助剤あるいは担体を含む項目第107項に記載の薬
剤組成物。
項目109.前記LBPタンパク質生成物が、アミノ末端LBP断片である項目第107項に記載の薬
剤組成物。
項目110.前記LBPタンパク質生成物が、約25kDの分子量を有する項目第107項に記載の薬剤
組成物。
項目111.項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドと前記機能領域ペプチドの
殺菌活性を強化する量のLBPタンパク質生成物を含む、グラム陰性細胞毒性組成物。
項目112. グラム陰性細菌感染ならびにその後遺症を治療するための薬剤を製造するため
の、項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、
第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドとLBPタンパク質生成物の使用
。
項目113.グラム陰性細菌を死滅させるための薬剤を製造するための、項目第１項、第２項
、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項、第15項
あるいは第16項に記載のペプチドとLBPタンパク質生成物の使用。
項目114.項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドを含んだ組成物を、患者に
投与することを含む、Mycobecteriaで感染した動物の治療方法。
項目115.前記組成物が、経口的に投与される項目第114項に記載の方法。
項目116.前記組成物が、静脈から投与される項目第114項に記載の方法。
項目117.前記組成物が、エアゾールとして投与される項目第114項に記載の方法。
項目118.M．tuberculosis、M．LepraeおよびM．aviumからなるグループから選択されるMy
cobecteria種による感染の治療のための項目第114項に記載の方法。
項目119.前記組成物が、抗生物質をさらに含む項目第114項に記載の方法。
項目120.前記組成物が、界面活性剤をさらに含む項目第114項に記載の方法。
項目121.循環器中のリポアラビノマンナンの存在による生理学的副作用を被った患者を治
療するための方法であって、前記方法が、項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項
、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペ
プチドを含んだ組成物を患者に投与することを含む。
項目122.前記生理学的副作用が、Ｔ細胞リンフォカインによるマクロファージ活性化のリ
ポアラビノマンナン誘発阻害による、細胞あるいは腫瘍細胞への免疫反応を含む項目第12
1項に記載の方法。
項目123.前記生理学的副作用が、患者のサイトカインの生成の増大を含む項目第121項に
記載の方法。
項目124.前記組成物が、経口的に投与される項目第121項に記載の方法。
項目125.前記組成物が、静脈から投与される項目第121項に記載の方法。
項目126.前記組成物が、エアゾールとして投与される項目第121項に記載の方法。
項目127.前記組成物が、界面活性剤をさらに含む項目第121項に記載の方法。
項目128.リポアラビノマンナンを含む液体を除染する方法であって、前記方法が、前記液
体と項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、
第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドを、リポアラビノマンナンが前
記ペプチドに結合し、そして前記液体から結合した物質を分離するような条件下で、前記
液体と接触させることを含む方法。
項目129.前記液体が、血液、血漿、血清および骨髄からなるグループから選択される項目
第128項に記載の方法。
項目130.前記液体が、等張液、薬剤および細胞培養試薬からなるグループから選択される
項目第128項に記載の方法。
項目131.項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11
項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの有効量を含む、Mycobect
eria感染の治療のための薬剤組成物。
項目132.薬学的に許容される希釈剤、補助剤あるいは担体を含む項目第131項に記載の薬
剤組成物。
項目133.Mycobecteria感染の治療のための薬剤を製造するための、項目第１項、第２項、
第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項、第15項あ
るいは第16項に記載のペプチドの使用。
項目134.循環器中のリポアラビノマンナンの存在による生理学的副作用を被った患者を治
療するための薬剤を製造するための、項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第
７項、第８項、第10項、第11項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチ
ドの使用。
項目135.Helicobacter属の細菌種による感染に関連する疾患を患った患者を治療する方法
であって、項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８項、第10 項、
第11項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドを前記患者に投与する
ことを含む方法。
項目136.前記感染の部位が、胃腸である項目第135項に記載の方法。
項目137.前記感染菌が、Helicobacterpyloriである項目第136項に記載の方法。
項目138.前記疾患が、胃炎である項目第137項に記載の方法。
項目139.前記疾患が、消化性潰瘍である項目第137項に記載の方法。
項目140.前記疾患が、胃潰瘍である項目第139項に記載の方法。
項目141.前記疾患が、十二指腸潰瘍である項目第140項に記載の方法。
項目142.前記組成物が、静脈より投与される項目第135項に記載の方法。
項目143.前記組成物が、経口的に投与される項目第135項に記載の方法。
項目144.前記組成物が、抗生物質をさらに含む項目第135項に記載の方法。
項目145.前記組成物が、界面活性剤をさらに含む項目第135項に記載の方法。
項目146.前記組成物が、ビスマス化合物をさらに含む項目第135項に記載の方法。
項目147.Helicobacter属の細菌種による感染に関連する疾患を患った患者を治療するため
の薬剤を製造するための、項目第１項、第２項、第３項、第５項、第６項、第７項、第８
項、第10項、第11項、第12項、第13項、第15項あるいは第16項に記載のペプチドの使用。
項目148.前記感染の部位が、胃腸である項目第147項に記載の方法。
項目149.前記感染菌が、Helicobacterpyloriである項目第147項に記載の使用。
項目150.前記疾患が、胃炎である項目第147項に記載の使用。
項目151.前記疾患が、消化性潰瘍である項目第147項に記載の使用。
項目152.前記疾患が、胃潰瘍である項目第147項に記載の使用。
項目153.前記疾患が、十二指腸潰瘍である項目第147項に記載の使用。
項目154.前記薬剤が、静脈投与用に製剤される項目第147項に記載の使用。
項目155.前記薬剤が、経口的投与用に製剤される項目第147項に記載の使用。
項目156.抗生物質を含む薬剤の製造のための項目第147項に記載の使用。
発明の概要
本願発明は、ヘパリンへの結合、ヘパリンの中和、LPSへの結合、LPSの中和、あるいは
殺菌活性のようなBPIの生物学的活性の少なくとも一つを有する、BPIの機能領域のアミノ
酸配列、あるいはそのサブ配列、それらアミノ酸配列あるいはサブ配列の変異配列のであ
るアミノ酸配列を備えた、小さな容易に生成できるペプチドを提供する。発見され、そし
て本明細書に記載したBPIの機能領域は、約17位から約45位のアミノ酸に至るBPIのアミノ
酸配列を含んだドメインＩ；約65位から約99位のアミノ酸に至るBPIのアミノ酸配列を含
んだドメインII；および、約142位から約169位のアミノ酸に至るBPIのアミノ酸配列を含
んだドメインIIIを含んでいた。このように、BPI機能領域ペプチドは、ヒトBPIのアミノ
末端部分に基づいている。
本発明のペプチドには線状および環状ペプチドと、特定のBPＩの機能領域アミノ酸配列
あるいはそのサブ配列、およびそれらアミノ酸配列あるいはサブ配列の変異配列であるア
ミノ酸配列が、直鎖状、環状および分枝状の配列の組み合わせからなるペプチドを含む。
このような組み合わせによるペプチドは、共有結合したBPIの同一あるいは異なる機能領
域の配列あるいはサブ配列、およびそれら配列あるいはサブ配列の変異配列を有するペプ
チドを含む。特定の配列あるいはそのサブ配列、およびそれら配列あるいはサブ配列の変
異配列の二つから約10個のペプチドの組み合わせが、特に包含される。本発明は、限定す
るものではないが、改変した標的細胞種への特異性を有した殺菌活性を有する、公知のBP
Iの生物学的活性とは異なる生物学的活性を備えたペプチドも提供する。BPIの生物学的活
性と比較して、改善あるいは減退したBPIの特定の生物学的活性を備えたペプチドも提供
される。
本発明のペプチドには線状および環状ペプチドと、特定のBPIの機能領域アミノ酸配列
あるいはそのサブ配列の、線状、環状および分枝状アミノ酸での置換、および他の変異配
列からなるペプチドが含まれる。置換変異配列のために、各ペプチドの一つ以上のアミノ
酸残基は、特異的なペプチドが由来するBPI機能領域の位置に対応して認められる（不定
のアミノ酸残基を含む）異なるアミノ酸残基と交換される。他の変異配列のために、本明
細書にて記載したBPI機能領域のペプチドアミノ末端あるいはカルボキシ末端のいずれか
、あるいは双方に共有結合した約10個までのアミノ酸をさらに含む。かようなアミノ酸は
、機能領域に隣接するBPIでのアミノ酸と重複し、あるいはBPIのアミノ酸と関連が無く、
そして、不定のアミノ酸を含む。アミノ酸置換および変異ペプチドの線状、環状および分
枝状ペプチドの組み合わせにて、上述したBPI機能領域ペプチドのそれぞれの環状ペプチ
ドとして、本発明のペプチドが提供できる。他の変異配列には、アミン、カルボン酸、ア
ルキルおよびフェニル基のようなアミノ酸側鎖の官能基の誘導体ならびに修飾体が含まれ
る。
本発明は、内毒素を中和し、グラム陰性ならびにグラム陽性細菌および真菌を殺菌し、
ヘパリンの抗凝固性を中和し、血管形成を阻害し、腫瘍ならびに内皮細胞の増殖を阻害し
、そして慢性炎症疾患状態を治療するための、哺乳類の治療において用いられる薬剤組成
物を提供する。この薬剤組成物は、錠剤、丸剤、粉体、薬液あるいは懸濁液などの固形、
半固形および液体の形態、および注射ならびに浸出可能な溶液の形態で、本発明のBPIペ
プチドの単位用量を含む。
機能領域Ｉを含む約17位から約45位のアミノ酸に至るヒトBPIのアミノ酸配列；
Figure 2008101026
 ならびにそのサブ配列であって、限定するものではないが、例えば、殺菌活性、LPSへの
結合性、LPSの中和、ヘパリンへの結合性あるいはヘパリンの中和などのBPIの活性の一つ
以上を備えたペプチドを、本発明は提供する。本発明のこの態様にて、約17から約45のア
ミノ酸に至るBPIのアミノ酸配列とそのサブ配列を有する機能領域Ｉペプチドと実質的に
同じアミノ酸配列を有するペプチドも提供される。さらに、本発明は、同一あるいは異な
るドメインＩペプチドもしくは共有結合したサブ配列ペプチドの一つ以上を含むペプチド
も提供する。
機能領域IIを含む約65位から約99位のアミノ酸に至るヒトBPIのアミノ酸配列；
Figure 2008101026
 ならびにそのサブ配列であって、限定するものではないが、例えば、殺菌活性、LPSへの
結合性、LPSの中和、ヘパリンへの結合性あるいはヘパリンの中和などのBPIの活性の一つ
以上を備えたペプチドを、本発明は提供する。本発明のこの態様にて、約65から約99のア
ミノ酸に至るBPIのアミノ酸配列とそのサブ配列を有する機能領域IIペプチドと実質的に
同じアミノ酸配列を有するペプチドも提供される。さらに、本発明は、同一あるいは異な
るドメインIIペプチドもしくは共有結合したサブ配列ペプチドの一つ以上を含むペプチド
も提供する。
機能領域IIIを含む約142位から約169位のアミノ酸に至るヒトBPIのアミノ酸配列；
Figure 2008101026
 ならびにそのサブ配列であって、限定するものではないが、例えば、殺菌活性、LPSへの
結合性、LPSの中和、ヘパリンへの結合性あるいはヘパリンの中和などのBPIの活性の一つ
以上を備えたペプチドを、本発明は提供する。本発明のこの態様にて、約142から約169の
アミノ酸に至るBPIのアミノ酸配列とそのサブ配列を有する機能領域IIIペプチドと実質的
に同じアミノ酸配列を有するペプチドも提供される。さらに、本発明は、同一あるいは異
なるドメインIIIペプチドもしくは共有結合したサブ配列ペプチドの一つ以上を含むペプ
チドも提供する。
さらに、異なる機能領域あるいはサブ配列およびその変異配列の一つ以上のペプチドが
共有結合しているドメインを組み合わせたペプチドが、本発明によって提供される。これ
らドメインの組み合わせの態様には、線状、環状および分枝状ペプチドの組み合わせがあ
る。
本発明のペプチドは、その有用性の一態様として、LPSへの結合性、LPSの中和、ヘパリ
ンへの結合性、ヘパリンの中和、およびグラム陰性細菌に対する殺菌活性を含めた、少な
くとも一つの公知のBPIの活性を備えている。さらに驚くべきことに、本発明のペプチド
の中には、グラム陽性細菌に対する殺菌剤としての有用性を備えたものがある。本発明の
ペプチドは、グラム陰性細菌によって引き起こされた疾患あるいは病状を伴う哺乳類の治
療に有用な、内毒素を中和し、内毒素産生細菌を殺菌するという二つの特性を備えた抗菌
物質の新規のクラスを提供する。この二つの活性に加えて、本発明のペプチドは、向上し
た抗菌スペクトラムを有しており、抗菌薬剤の新規のクラスに属していることを意味する
。さらに、本発明のペプチドは、通常の抗生物質には耐性があるが、本発明のペプチドの
浸透性が向上した抗菌活性には感受的な微生物株による感染の処置において有用な抗菌薬
剤の新たなクラスを提供する。
本発明は、ペプチド、あるいは薬学的に許容可能な担体あるいは希釈剤とペプチドから
なる組成物を含む、病理学的状態あるいは疾患状態を処置するための方法での使用、ある
いは他の適切な治療用途で使用するための、本発明のペプチドを含んだ薬剤組成物も提供
する。ヒトを含む哺乳類での病理学的状態あるいは疾患状態を処置するためにこれら薬剤
組成物を使用する方法も、本発明によって提供される。さらに、本発明によって、様々な
治療用途のための薬剤を製造するために、BPI機能領域ペプチドの用途も提供される。
本発明の好適な態様は、以下の実施例と請求の範囲に関する詳細な説明によって明らか
になるであろう。
好適な態様の詳細な説明
本発明は、BPIの機能領域あるいはそのサブ配列およびその配列あるいはサブ配列の変
異配列の少なくとも一つのアミノ酸配列を有するペプチドを提供する。本発明の目的のた
めに、「機能領域」なる語彙は、タンパク質の生物学的活性に寄与するBPIのアミノ酸配
列の領域を意図するものである。BPIのこれら機能部位は、15−マーのペプチドと他の合
成ペプチドとが重複しているタンパク質開裂断片の活性によって定義される。
ドメインＩは、約17位から約45位のアミノ酸を含むBPIのアミノ酸配列であると定義さ
れる。このドメインに基づいたペプチドは、LPS誘発したLAL活性の阻害ならびにヘパリン
への結合分析の双方にて緩やかな活性があるが、顕著な殺菌活性は認められなかった。ド
メインIIは、約65位から約99位のアミノ酸を含むBPIのアミノ酸配列であると定義される
。このドメインに基づいたペプチドは、LPSとヘパリンへの強い結合能力が認められ、ま
た殺菌性であった。ドメインIIIは、約142位から約169位のアミノ酸を含むBPIのアミノ酸
配列であると定義される。このドメインに基づいたペプチドは、LPSとヘパリンへの強い
結合能力が認められ、また殺菌性であった。
本明細書で定義した機能部位は、連続したドメインＩ、IIおよびIII、すなわち、BPIア
ミノ酸配列の連続部分を有するドメインを含む。しかしながら、本発明は、不連続の BPI
のタンパク質、すなわち、BPI配列が分離されたタンパク質を含むペプチドも意図する。
隣接あるいは近接するアミノ酸領域を調製するために、不連続領域のペプチドを共有結合
することで本発明のペプチドと同様の構造をとるタンパク質のアミノ酸配列の不連続部分
は、本来のタンパク質に折り畳まれることが知られている。
BPIアミノ酸配列の不連続領域を含むペプチドは、本発明によって提供したペプチドの
組み合わせの一例である。本発明の目的のために、ペプチドの組み合わせには、同一ある
いは異なるBPIの機能領域およびそのサブ配列に由来するアミノ酸配列を有する二つ以上
のペプチドを含む線状、環状あるいは分枝状ペプチドが含まれる。２から約10個の機能領
域ペプチドあるいはそのサブ配列を含む組み合わせ、好ましくは、二つまたは三つの機能
領域ペプチド（例えば、ホモ二量体、ホモ三量体、ヘテロ二量体、ヘテロ三量体）の組み
合わせが、この定義に特に包含されるている。かような組み合わせを含む構成ペプチドの
それぞれは、特定のBPI機能領域アミノ酸配列あるいはそのサブ配列からのアミノ酸配列
を有している。
本発明の目的のために、「BPIの生物学的活性」なる語彙は、限定するものではないが
、rBPI（配列番号：69）、rBPI23のようなBPIのアミノ末端断片、および（本明細書に参
考までに採り入れた、係属中で共同所有に係る、1993年２月２日に出願した米国特許出願
No．08/013,801にて、rBPI（1-193）132と命名された）rBPI21ΔcysのようなBPIの成熟し
たアミノ末端断片を含んだヒトの殺菌性／浸透性が向上したタンパク質（BPI）の生物学
的活性を意図するものである。本明細書に参考までに採り入れた、係属中で共同所有に係
る、米国特許出願No．08/093,202に開示されているように、151位のバリンがGTCではなく
GTGで規定され、185位の（AAGで規定された）リジンが（GAGで規定された）グルタミン酸
であることを除けば、Grayet al．（前掲）に開示された、配列番号：69に記載の配列を
有するrBPIが生成されている。加えて、前述したGray et al．（前掲）の配列との相違点
と、31残基のシグナル配列およびrBPIの配列の最初の199個のアミノ酸を含む発現ベクタ
ーを用いて、rBPI23（Gazzano-Santroet al.，1992，Infect．Immun．60：4754-4761も参
照のこと）が生成した。かような生物学的活性は、LPSへの結合性、LPSの中和、ヘパリン
への結合性、ヘパリンの中和および殺菌活性を含む。本発明のペプチドの生物学的活性と
は、BPIあるいはBPIの機能領域に対応する対応ペプチドの活性の0.1から10倍の活性を含
む。「BPIの生物学的活性」の定義には、例えば、BPIあるいはBPIの全対応ドメインを含
む対応ペプチドの活性とは質的に異なる殺菌活性などの生物学的活性を含む。例えば、質
的相違としては、BPIの対応する機能領域のアミノ酸配列に効果的で関連のあるペプチド
に対して、細菌あるいは他の微生物のスペクトルにおける相違を含む。このように、この
定義は、BPIに関して報告されていない、グラム陽性細菌に対する殺菌活性および殺真菌
活性のようなペプチド活性を含む。
本発明は、ヒトBPIの機能領域の一つのアミノ酸配列あるいはそのサブ配列を有したペ
プチドを提供する。かようなペプチドには、以下の例示的なドメインＩペプチド〔一文字
表記のアミノ酸は、G．Zubay，Biochemistry（2d．ed.），1988（MacMillenPublishing：
N.Y.），p.33に紹介されている〕：
Figure 2008101026
 以下の例示的なドメインIIペプチド：
Figure 2008101026
 そして、以下の例示的なドメインIIIペプチド：
Figure 2008101026
 が挙げられる。BPI.14、BPI.12およびBPI.55が、付加変異体の例であると認められる。
本発明は、ヒトBPIの機能領域の一つのアミノ酸配列あるいはそのサブ配列を有するペ
プチドの組み合わせである、同一あるいは異なる線状および分枝状ペプチドの組み合わせ
を提供する。かようなペプチドの態様には、以下に例示するドメインIIペプチド：
Figure 2008101026
 および、以下に例示するドメインII分枝状ペプチド：MAP.１
（β−アラニル−Ｎα、Ｎε−置換− ［Ｎα、Ｎε（BPI.2）リシル］リシン および、
以下に例示する組み合わせドメインIIIペプチド：
Figure 2008101026
 および、以下に例示する分枝状ドメインIIIペプチド：MAP.２ （β−アラニル−Ｎα、
Ｎε−置換− ［Ｎα、Ｎε（BPI.13）リシル］リシン および、以下に例示するドメイン
II−ドメインIII間の組み合わせペプチド：
Figure 2008101026
 などが挙げられる。
各ペプチドの一つ以上の位置でのアミノ酸残基が、特異的なペプチドが誘導されるBPI
機能領域の対応する位置にて認められるアミノ酸とは異なる残基である、アミノ酸置換変
異体も提供される。例えば、本発明の一態様では、ペプチドのある位置は、BPIアミノ酸
配列での対応する位置のアミノ酸であるアラニン残基で置換する。他の態様では、ペプチ
ドのある位置は、BPIアミノ酸配列での対応する位置のアミノ酸である、例えば、フェニ
ルアラニン、ロイシン、リシン、あるいはトリプトファン残基で置換する。これらペプチ
ドの態様には、以下に例示する置換ドメインIIペプチド：
Figure 2008101026
 および、以下に例示する置換ドメインIIIペプチド：
Figure 2008101026
 などが挙げられる。本発明によって提供されるかような単一アミノ酸置換BPI機能領域の
有用性は、ペプチド配列における重要な残基を同定することにあり、これにより、アミノ
酸配列における特定位置の置換が、ペプチドの生物学的活性の少なくとも一つに関する効
果が確認できるようになる。本発明に包含されるもので、特筆すべきは、得られた置換ペ
プチドが本明細書で定義したような生物学的活性を有している自然発生もしくは不定型の
アミノ酸を用いて、同定された重要な残基が置換されている本発明のペプチドの態様であ
る。
複数の置換、すなわち、機能領域アミノ酸配列の二つ以上の異なるアミノ酸残基がそれ
ぞれ、他のアミノ酸で置換されている置換ペプチドも提供される。例えば、二箇所が置換
されたペプチドの場合、ペプチド中の双方の位置が、例えば、BPIアミノ酸配列での対応
する位置にあるアミノ酸を、アラニン、フェニルアラニン、あるいはリシン残基で置換さ
れる。これらペプチドの例には、複数の置換を含むドメインIIペプチド：
Figure 2008101026
 および、複数の置換を含む例示のドメインIIIペプチド：
Figure 2008101026
 および、以下の複数の置換を含む例示の置換ドメインIIの混合ペプチド：
Figure 2008101026
 および、以下の複数の置換を含む例示の置換ドメインII−ドメインIII間の混合置換ペプ
チド：
Figure 2008101026
 が挙げられる。
かようなアミノ酸置換変異体の他の態様には、不定型アミノ酸でアミノ酸残基を置換し
たものがある。本発明のペプチドのこの態様には、向上した安定性、強度、あるいは生物
学的利用性をペプチドに付与されるように、D-アミノ酸、修飾あるいは非自然発生型アミ
ノ酸、および改変アミノ酸を含めたペプチドが包含される。これらペプチドの例には、不
定型アミノ酸を含む以下の例示的なドメインIIペプチド：
Figure 2008101026
 および、不定型アミノ酸を含む例示のドメインIIIペプチド：
Figure 2008101026
 および、不定型アミノ酸を含む例示の置換ドメインII−ドメインIII間の混合ペプチド：
Figure 2008101026
 などが挙げられる。複数のドメインで複数の置換をもたらすアミノ酸置換変異ペプチドの
線状および分枝状ペプチドの組み合わせも、本発明の態様である。これらペプチドの態様
としては、以下の例示的な混合／置換ドメインIIペプチド：
Figure 2008101026
 などが挙げられる。
上記したBPI機能領域ペプチドそれぞれの二量体および環状体も、本発明によって提供
される。これらペプチドの態様として、以下の例示的なシステイン修飾したドメインIIペ
プチド：
Figure 2008101026
 などが挙げられる。
本明細書に記載したBPI機能領域ペプチドは、グラム陰性細菌に対する抗菌薬として、
また、グラム陰性細菌の細胞膜に関連するLPSの作用を中和する上で有用である。本発明
のペプチドは、様々な量にて、ヘパリン結合性ならびにヘパリン中和などのグラム陰性細
菌感染に直接関連しない活性を含めた他のBPIの活性も呈する。本発明によって提供され
たペプチドも、BPIの公知の生物学的活性とは異なる生物学的活性を呈する。例えば、本
発明のペプチドのある態様によれば、生物学的活性が及ぶ生物的対象がBPIより広範であ
り、グラム陰性細菌同様に、グラム陽性細菌にもその生物学的活性が及ぶのである。本発
明のある態様では、驚くべきことに、殺真菌活性も得られている。このように、本発明は
、異なる抗微生物活性を有するBPIの生物学的機能領域のアミノ酸配列を備えたペプチド
を効果的に提供するのである。BPIの抗菌活性ならびに抗内毒素活性を有し、また向上し
た抗生物質スペクトルを備えた本発明のペプチドは、抗生物質の新規のクラスを構成する
ものである。
本発明の BPI機能領域ペプチドは、BPIタンパク質生成物を認識する生物学的治療用途
において有用である。例えば、共同所有に係る、係属中の、1994年１月24日に出願された
米国特許出願No．08/188,221は、ヒトの治療において、循環器系にあるグラム陰性細菌内
毒素に、BPIタンパク質生成物をさらすことを述べている。共同所有に係る、係属中の、1
993年３月12日に出願された米国特許出願No．08/031,145は、マイコバクテリウム疾患の
治療のために、BPIタンパク質生成物を投与することを述べている。共同所有に係る、係
属中の、1993年10月５日に出願された米国特許出願No．08/132,510は、抑制された細網内
皮系機能条件の改善のために、BPIタンパク質生成物を使用することを述べている。共同
所有に係る、係属中の、1993年９月22日に出願された米国特許出願No.08/125,651は、BPI
タンパク質生成物と抗生物質との相乗的組み合わせを述べている。共同所有に係る、係属
中の、1993年７月14日に出願された米国特許出願No．08/093,201は、LBPタンパク質生成
物の投与による、BPIタンパク質生成物の殺菌活性を強化する方法を述べている。共同所
有に係る、係属中の、1993年３月12日に出願された米国特許出願No．08/031,144は、Heli
cobacteria感染の治療のためのBPIタンパク質生成物の投与を述べている。上記した出願
の開示は、本発明のBPI機能領域ペプチドの治療用途での使用のために、本明細書に参考
までに採り入れた。本発明のBPI機能領域ペプチドは、上記した米国特許出願Nos．08/030
,644、08/093,202、および08/183,222に開示されている通り、病理的状態ならびに疾患状
態の治療においても有用である。
このように、本発明のBPI機能領域ペプチドは、ヘパリンの抗凝固効果の中和；血管形
成（特に、網膜症に関連する血管形成）の阻害；内皮細胞増殖（特に、肥大した卵子の移
植に関連した子宮内膜症および増殖）の阻害；悪性腫瘍細胞の増殖（特に、カポジ肉腫の
増殖）の阻害；慢性炎症疾患（関節炎、特に、反応性のリューマチ性関節炎）の治療；グ
ラム陰性細菌感染およびその後遺症の治療；循環血液中のグラム陰性内毒素の作用（増大
したサイトカイン生成）の処置；グラム陰性細菌の殺菌；抑制された細網内皮系機能（特
に、肝臓の物理的、化学的および生物学的損傷の結果としての、抑制された肝臓のクッパ
ー細胞機能を含む）に関連した生理学的効果の改善；（ゲンタマイシン、ポリミキシンＢ
およびセファマンドールナフタのような）抗生物質との相乗的組み合わせによるグラム陰
性細菌感染およびその後遺症の治療；抗生物質との相乗的組み合わせによるグラム陰性細
菌の殺菌；LBPタンパク質生成物との組み合わせによるグラム陰性細菌感染およびその後
遺症の治療；LBPタンパク質生成物との組み合わせによるグラム陰性細菌の殺菌；抗生物
質および／またはビスマス単独あるいは組み合わせによるMycobacteria感染（特に、Myco
bacteriatuberculosis、Mycobacteria leprae、およびMycobacteria aviumによる感染）
の治療；循環血液中のリポアラビノマンナンの生理学的効果（増大したサイトカイン生成
）の改善；リポアラビノマンナンを含んだ流体（血液、血漿、血清および骨髄）の除染；
およびHelicobacter属の細菌による感染に関連した疾患状態（胃炎および消化器官、胃お
よび十二指腸潰瘍など）の治療、において有用である。本発明は、上記した用途での使用
において効果的な量のBPI機能領域ペプチドを含んだ、経口用、非経口用、局所用および
噴霧投与の薬剤組成物、および薬学的に許容される希釈剤、補助剤あるいは担体をさらに
含んだ薬剤組成物を提供する。
LBP タンパク質生成物との組み合わせたBPI機能領域ペプチドの使用に関して、本明細
書にて以後使用する、「LBPタンパク質生成物」には、天然および組換え生成したリポ多
糖結合タンパク質；リポ多糖結合タンパク質の生物学的に活性な天然および組換えポリペ
プチド断片ならびに誘導体；および、LBPあるいは生物学的に活性なその断片のいずれか
の、ハイブリッド融合タンパク質を含む、生物学的に活性なポリペプチド類似体が含まれ
る。本発明の方法に有用なLBPタンパク質生成物は、共同所有に係る、係属中の、1993年
７月17日に出願された米国特許出願No．08/079,510に記載された形質転換した真核宿主細
胞での、rLBPと命名された組換え遺伝子の発現によって生成できるLBPホロタンパク質を
含む。その米国特許出願には、CD14が介在した炎症特性と、CD14レセプターを介してLPS
活性を伝播する能力を欠いた、好ましいLBPタンパク質誘導体も記載されている。CD14が
介在した免疫刺激が一般に好ましくないと考えられ、感染した対象においては特にその傾
向が顕著であるため、本発明に従って、かようなLBPタンパク質を用いることは好ましい
。
好ましいLBPタンパク質誘導体は、約25kDの分子量を有したアミノ末端断片によって特
徴付けられている。rLBP25と命名された、配列番号：97と98に記載されたLBPのアミノ末
端の最初の197個のアミノ酸によって特徴付けられたLBPアミノ末端断片が最も好ましく、
その生成物は、先に述べた、共同所有に係る、係属中の、米国特許出願No．08/079,510に
記載されている。25kDよりかなり小さく、またホロLBP分子のアミノ末端の最初の197個の
アミノ酸より実質的に小さい末端を含んだLBPタンパク質誘導体は、LPSへの結合能力を保
持しているのであれば、本発明での使用に適している。さらに、配列番号：97と98に記載
されたrLBPの最初の197個のアミノ酸のカルボキシ末端側のアミノ酸を含むホロLBP分子の
最初の197個のアミノ酸残基より大きな断片を含むLBPタンパク質誘導体は、CD14が介在し
た、免疫刺激活性を促進する要素が欠如しておれば、本発明の方法において有用であるこ
とが立証されるであろう。また、当業者であれば、そのタンパク質分子の所望の生物学的
活性を損失することなく、配列番号：97と98に記載のアミノ酸残基の付加、削除および置
換を行いうるものと考える。さらに、LBPタンパク質生成物がLPS結合活性を維持し、また
CD14 介在した免疫刺激活性を欠くように、LBPホロタンパク質をコードするDNA配列を、
削除、置換、付加あるいは部位特異的変異を含む変異することで、LBPタンパク質生成物
を得ることができる。細菌に対するLBPの親和性の改善および／またはin vivoでの改善さ
れた安定性の結果として得られるLBPハイブリッド分子と二量体分子も、本発明で特に意
図されている。これらには、LBP/BPIハイブリッドタンパク質とLBP-Ig融合タンパク質が
含まれる。かようなハイブリッドタンパク質には、二量体の形成を許容するために、ヒト
ガンマ１あるいはガンマ３ヒンジ領域をさらに用いることを含む。二量体の他の形態とし
て、改善した血清の安定性ならびにCH2ドメインを欠いたFcを用いた融合体を含む結合親
和性、あるいはロイシンまたはヘリックス束を用いたハイブリッドを備えることを意図し
ている。
本発明のBPI機能領域ペプチドは、組換え手法を含む、当該技術分野で公知の手段によ
って、生成および／または単離することができる。本明細書の参考までに採り入れた、共
同所有に係る、1991年７月２日に発効した米国特許No．5,028,530、共同所有に係る、199
3年４月27日に発効した米国特許No．5,206,154、および共同所有に係る、係属中の1993年
１月28日に出願された米国特許出願No．08/010,676は、抗微生物ペプチドを含めたポリペ
プチドの新規の組換え生成法を開示している。細菌における抗微生物ペプチドの他の組換
え生成法が、Pierset al.，1993，Gene 134：7-13に記載されている。本明細書の参考ま
でに採り入れた、共同所有に係る、係属中の1992年５月19日に出願された米国特許出願No
．07/885,501および1993年５月19日に出願されたその一部継続出願である米国特許出願No
．08/072,063は、培地中の遺伝子的に形質転換した哺乳類宿主細胞にて発現し、分泌され
た組換えBPIの精製のための新規の方法が開示している。
BPI機能領域ペプチドは、かような方法を用いることで効率良く得ることができる。当
業者であれば、本発明の各ペプチドをコードする核酸を単離し、あるいは化学的に合成す
ることができる。このような核酸は、転写および／または翻訳制御要素に核酸が結合して
いる組換え発現体の要素として有用であり、これにより、その組換え発現体によって形質
転換した原核細胞、好ましくは真核細胞、より好ましくは哺乳類細胞での培養にて、組換
え発現体が本発明のペプチドを発現できるようになる。
本発明のペプチドは、当該技術分野で公知の化学合成法、特に、例えば、購入可能な自
動ペプチド合成機を用いた固相合成法によって効率良く合成することができる。このペプ
チドは、ペプチドが互いに線状に結合され、そして、選択した配座様式となるように、「
スペーサー」アミノ酸による分離の有無にかかわらずにペプチド内にてBPI配列が繰り返
されているペプチドとして提供される。さらに、構成ペプチドが、ペプチドを含むアミノ
酸のアミノ酸側鎖にて機能的に共有結合されている分枝状鎖としても提供される。
本発明の機能領域ペプチドは、BPI機能領域ペプチドと少なくとも一つの他のポリペプ
チドの一部を含む組換えハイブリッド融合タンパク質として提供される。このようなペプ
チドは、例えば、本明細書の参考までに採り入れた、Theofanet al.による共同所有に係
る、係属中の1992年５月19日に出願された米国特許出願No．07/885,911および1993年５月
19日に出願されたその一部継続出願である米国特許出願No．08/064,693に記載されている
。
一般に、当業者であれば、本明細書に記載したペプチドを、非修飾のペプチドと同等の
活性、必要であれば他の所望の特性を備えた化合物を生成するために様々な化学的手法で
修飾するであろう。例えば、ペプチドのカルボン酸官能基は、カルボキシ末端あるいは側
鎖であれ、薬学的に許容されるカチオンの塩として提供され、またはC1-C16エステルを形
成するように制限され、あるいは式NR1R2、式中、R1とR2は互いに異なるものであり水素
もしくはC1-C16アルキルであるのアミドに転化され、あるいは５員環あるいは６員環のよ
うな複素環を形成するように結合される。ペプチドのアミノ基は、アミノ末端あるいは側
鎖であれ、塩酸、臭化水素、酢酸、安息香酸、硫化トルエン、マレイン酸、酒石酸および
他の有機塩のような薬学的に許容される酸の塩の形態にて、あるいはC1-C16アルキルある
いはジアルキルアミノにまで修飾され、あるいはアミドになるまでさらに転化される。ペ
プチド側鎖の水酸基は、周知の方法を用いて、C1-C16アルコキシあるいはC1-C16エステル
まで転化される。ペプチド側鎖のフェニルあるいはフェノール環は、フッ素、塩素、臭素
あるいはヨウ素などの一つ以上のハロゲン原子、あるいはC1-C16アルキル、C1-C16アルコ
キシ、カルボン酸およびそのエステル、あるいはカルボン酸のようなアミドで置換される
。ペプチド側鎖のメチレン基は、相同なC2-C4アルキレンまで伸長される。チオールは、
アセトアミド基のような周知の保護基の一つで保護できる。当業者であれば、改善された
結合性および／または安定性をもたらす構造に見合う立体配座を選択および提供するため
に、本発明のペプチドに環状構造を導入する方法も想到するであろう。例えば、カルボキ
シ末端あるいはアミノ末端システイン残基をペプチドに付加でき、よって酸化したペプチ
ドがジスルフィド結合を含んだ場合には、環状ペプチドが生成することになる。他のペプ
チドの環状化方法として、チオエーテル、およびカルボキシならびにアミノ末端アミドと
エステルの形成がある。
仮想ペプチドならびに仮想有機体も本発明の範疇に属し、かような仮想ペプチドならび
に仮想有機体の化学構造の三次元構造は、ペプチドの三次元構造とペプチドの構成アミノ
酸側鎖を真似ているものであり、これにより、本発明のペプチドの仮想ペプチドならびに
仮想有機体は、実質的な生物学的活性を備えることになる。BPIの活性の各々に関する薬
作用発生団の存在も示唆されている。薬作用発生団は、生物学的活性のために求められる
構造の理想的な三次元構造を採る。仮想ペプチドならびに仮想有機体は、コンピューター
設計用ソフトウェア（薬剤設計のためのコンピューター）を用いて、薬作用発生団に適合
するように設計することができる。薬作用発生団の特異的な活性相互の重複の程度を、決
定する必要がある。
BPI 機能領域ペプチドは、好ましくは、BPI機能領域ペプチドならびに薬学的に許容さ
れる希釈剤、補助剤あるいは担体を含む薬剤組成物として投与される。BPI機能領域ペプ
チド組成物は、公知の抗生物質、界面活性剤、あるいは他の化学療法薬を必要に応じて併
用して投与される。かような組み合わせの例は、本明細書の参考までに採り入れた、共同
所有に係る、係属中の1993年２月２日に出願された米国特許出願No.08/012,360および199
4年２月２日に出願されたその一部継続出願である米国特許出願No．08/190,869に記載さ
れている。
殺菌活性、ヘパリンの抗凝固活性の一部あるいは全部中和、LPSの一部あるいは全部中
和、および本明細書に開示した他の効果を得るためのBPI機能領域ペプチドの有効用量は
、当業者であれば、例えば、被投与体の大きさ、細菌感染の程度と性質、内毒素ショック
の程度と性質、および被投与体に投与されたヘパリンの量ならびにヘパリンが投与されて
から経過した時間を含めた、生物学的活性に関連する公知のパラメーターから、容易に決
定できる。当業者であれば、本明細書にて言及する治療用途に本発明のペプチドに用いる
にあたって、同様の決定を行い得るものと思われる。
本発明の薬剤は、経口投与用、注射用、あるいは他の非経口的方法に適合するように調
製でき、好ましくは、当業者に公知の薬学的に許容される担体、補助剤および対抗イオン
を含むようにする。この薬剤は、錠剤、丸剤、粉体、薬液あるいは懸濁液などの、固形、
半固形および液体、および注射ならびに浸出可能な溶液の形態とするのが好ましい。約10
0μg/体重kgから約100mg/体重kgの有効用量範囲が、意図されている。
以下の実施例には、本発明の態様とその用途についての記載がなされている。実施例
１には、BPIのタンパク質分解断片の調製方法が記載されており；実施例２には、実施例
１のタンパク質分解断片の殺菌性の検定結果が記載されており；実施例３には、実施例１
のタンパク質分解断片を用いたヘパリン結合性検定の結果が記載されており；実施例４に
は、実施例１のタンパク質分解断片のLPS結合活性を検定するための、Limulus遊走細胞溶
解物を用いた実験の結果が記載されており；実施例５には、BPIの15マー・ペプチドの調
製が記載されており；実施例６には、実施例５の15マー・ペプチドを用いたヘパリン結合
性検定の結果が記載されており；実施例７には、実施例５の15マー・ペプチドを用いたLi
mulus遊走細胞溶解物の検定の結果が記載されており；実施例８には、実施例５の15マー
・ペプチドを用いた殺菌性検定の結果が記載されており；実施例９には、別個のBPI機能
領域ペプチドの調製が記載されており；実施例10には、実施例９の別個のBPI機能領域ペ
プチドを用いたヘパリン結合性検定の結果が記載されており；実施例11には、実施例９の
別個のBPI機能領域ペプチドを用いたヘパリン中和検定の結果が記載されており；実施例1
2には、実施例９の別個のBPI機能領域ペプチドを用いたLPS中和活性のLimulus遊走細胞溶
解物分析の結果が記載されており；実施例13には、実施例９の別個のBPI機能領域ペプチ
ドを用いた殺菌性分析の結果が記載されており；実施例14には、混合BPI機能領域ペプチ
ドの調製が記載されており；実施例15には、実施例14の混合BPI機能領域ペプチドの殺菌
性分析の結果が記載されており；実施例16には、実施例14の混合BPI機能領域ペプチドの
他の殺菌性分析の結果が記載されており；実施例17には、実施例14の混合BPI機能領域ペ
プチドを用いたinvivoおよびin vitroヘパリン中和分析の結果が記載されており；実施例
18には、BPI置換変異機能領域ペプチドの調製ならびに殺菌活性、ヘパリン結合活性、お
よびLPS中和活性分析の機能性分析が記載されており；実施例19には、代表的なBPI機能領
域ペプチドを用いた殺菌性ならびにヘパリン結合分析の結果の要旨が記載されており；実
施例20には、様々な結合性ならびに中和検定におけるBPI機能領域ペプチドの分析が記載
されており；実施例21には、ヘパリン中和分析が記載されており；実施例22には、コラー
ゲンのモデル系および慢性炎症疾患状態を示す細菌で誘発した関節炎動物モデル系へのBP
I機能領域ペプチドの投与が記載されており；実施例23には、マウスの悪性腫瘍転移のモ
デル系での血管静止効果に関するBPI機能領域ペプチドの試験が記載されており；実施例2
4には、内皮細胞増殖に関するBPI機能領域ペプチドの効果が記載されており；実施例25に
は、動物モデル系でのBPI機能領域ペプチドの分析が記載されており；そして、実施例26
には、ヒトにおける本発明のBPI機能領域ペプチドの抗内毒素効果をinvivoで試験するた
めのプロトコールが記載されている。
実施例１
BPIタンパク質分解断片の調製
組換えBPIタンパク質の様々な大きさのタンパク質分解断片を生成するために、rBPI23
に化学開裂ならびに酵素消化の処理を施した。
rBPI23タンパク質は、臭化シアン（CNBr）あるいはエンドプロテイナーゼAsp-Nによる
タンパク分解に先駆けて、還元およびアルキル化処理した。タンパク質を、冷（４℃）ア
セトン（1:1v/v）を添加して一晩沈殿させて脱塩し、沈殿したタンパク質を10分間（5000
×ｇ）で遠心分離してペレット化することで復元せしめた。rBPI23タンパク質ペレットを
、冷アセトンで２回洗浄し、窒素の流れる下で乾燥した。rBPI23溶液は、８Ｍ尿素／0.1M
Tris-塩酸（pH8.1）中の１mgタンパク質/mlの最終濃度にまで再調整され、そして、3.4mM
ジチオスレイトール（Calbiochem社、サンディエゴ、カリフォルニア州）を、37℃で、90
分間かけて添加することで還元した。最終濃度が5.3ミリモーラーになるまでイオドアセ
タミド（SigimaChemical社、セントルイス、モンタナ州）を添加し、室温で、暗黒下で30
分間インキュベートすることで、アルキル化を行った。還元およびアルキル化したタンパ
ク質を、アセトンで沈殿させ、遠心分離し、上記したようにして洗浄し、そして、ペレッ
トを臭化シアンあるいはAsp-N消化のいずれかのために、下記したようにして再溶解せし
めた。
臭化シアン触媒したタンパク質の断片化のために、最終タンパク質濃度が５mg/mlにな
るまで、70％トリフルオロ酢酸（TFA）（タンパク質配列決定用、Sigima Chemical社、セ
ントルイス、モンタナ州）でまず溶解した。70％TFAに溶解した臭化シアン（ベーカー分
析した試薬、VWRScientific社、サンフランシスコ、カリフォルニア州）を、タンパク質
に対して臭化シアンが2:1（w/w）の最終比率になるように添加した。反応物を窒素で清浄
し、室温で、暗黒下で、24時間反応を進行せしめた。９倍量の蒸留水を加えて反応を停止
し、凍結して（-70℃）、凍結乾燥した。
エンドプロテイナーゼ消化のために、還元およびアルキル化したrBPI23を、８Ｍ尿素／
0.1M Tris-塩酸（pH8.1）中の5.0mg/mlの濃度で可溶化した。５Ｍ尿素／0.1MTris-塩酸（
pH8.1）中の最終条件が2.5mg/mlになるように、等量の0.1M Tris-塩酸（pH8.1）を添加し
た。Pseudomonasfragi（Boehringer-Mannheim社、インディアナポリス、インディアナ州
）からのエンドプロテイナーゼAsp-Nを、1:1000 （w/w、酵素：基質）の比率で加え、37
℃で、６時間、反応を進行せしめた。TFAの最終濃度が0.1％になるまで添加することで反
応を停止し、そして試料を逆相HPLCで分画化した。
臭化シアンおよびAsp-N断片混合物を、ZorbaxプロテインプラスC3カラム（4.6×250mm
、300Å孔径、MACMODAnalytical社、チャストフォード、ペシルバニア州）で精製した。0
.1％TFA中の５％アセトニトリルから0.1％TFA中の80％アセトニトリルまでの勾配を、1.0
ml/分の流速で、２時間の溶出時間にわたってこのカラムに適用した。断片溶出液を、Bec
kmanSystem Gold HPLC（Beckman Scientific Instruments社、サンラモン、カリフォルニ
ア州）を用いて、220nmでモニターした。カラム加熱装置を35℃に維持し、そして、画分
を手で回収し、−70℃で凍結し、次いでSpeedVac濃縮装置で乾燥した。使用に先駆けて、
20mM酢酸ナトリウム（pH4.0）/0.5M塩化ナトリウムの溶液にて可溶化した。
小児科病院−オークランド研究所のCedric Shackleton博士の研究室に所属しているFra
ncis Bitsch博士ならびにJohnKim氏によって、VGBio-Q質量スペクトル分析器にて、電子
噴射イオン化質量スペクトル（ESI-MS）が行われた。データの数学的換算によって分子質
量が得られた。
rBPI23のDNA配列は成熟したタンパク質の１−199アミノ酸残基をコードするものの、生
成したタンパク質の重要な部分は、ESI-MSで決定されたように、Leu-193およびVal-195に
て切断されていた。これらカルボキシ末端の切断部の存在は、ESI-MSで配列決定ならびに
解析されたカルボキシ末端のトリプシンによって生じたペプチドを単離することで証明さ
れた。
rBPI23には、第56、70、100、111、170および196位に、６つのメチオニン残基があり、
臭化シアンの化学的開裂で予想された６つの腫瘍なペプチド断片が生成した。臭化シアン
開裂実験の結果を、表１にまとめた。その断片を、逆相（C3）HPLC（図1a）によって単離
し、そのアミノ末端配列をEdman消化によって決定した。最も大きな二つの断片（C1とC5
）は、C3HPLCカラムでは分解せず、イオン交換クロマトグラフィーを試みたが結果は芳し
くなく、これは両者が長さと等電点が同様であることによるものと考えられる。混合物中
のC1とC5の同定を、ESI-MSで決定した。臭化シアン開裂反応におけるカルボキシ末端メチ
オニンのホモセリンへの転換の結果から、30a.m.u.の損失を考慮して、C1の推定質量は62
69（表１）とされた。観察された6251.51±0.34の質量は、ホモセリンラクトン中間体で
の水分子の損失（18a.m.u.）と符合しており、C1断片C-末端アミノ酸の疎水性からして、
ホモセリンの形成に有利である。C5断片の推定質量は6487であり、観察された質量は6285
.84±0.39であった（表１）。C5断片に関して、C-末端アミノ酸は疎水性であり、ホモセ
リンラクトン中間体の加水分解に有利である。アミノ末端配列決定と質量スペクトルの双
方のデータから、C1/C5混合体の約10から25％はC5の成分であることが認められた。
臭化シアンC1/C5混合体に含まれる領域の他の断片を得るために、エンドプロテイナー
ゼAsp-Nを用いたダンパク質開裂を行った。rBPI23には、第15、36、39、57、105および11
6位に、６つのアスパラギン酸残基があった。C3HPLCによって単離した６つの主要Asp-N断
片（図1b）を配列決定し、その質量をESI-MSで決定した（表１）。非特異性の開裂、特に
、グルタミン酸残基を解消するために、1:1000（w/w、酵素：基質）の比率で短時間消化
を行った。Asp残基（15位と35位のアミノ酸）が開裂しているところで、ある断片（1-38
）が単離したので、消化が完全に進行していなかった。Asp-N断片の質量スペクトルは、
各断片の推定した質量と符合していた。臭化シアン開裂とは異なり、カルボキシ末端断片
がわずかに分解しているところでは、第116位のアミノ酸からカルボキシ末端までのAsp-N
断片は、他のAsp-N断片のすべてからも十分に回収されていた。
Figure 2008101026
 実施例２
BPIタンパク質分解断片の殺菌効果
実施例１に従って生成したBPIタンパク質分解断片を、変異E．coli J5細菌を用いて、
放射拡散分析にて殺菌効果についてスクリーニングした。具体的には、E．coliJ5細菌を
終夜培養したものを、新鮮なトリプシン処理した大豆培地で1:50にまで希釈し、培養細菌
が対数増殖期に至るまで、37℃で、３時間培養した。そして、SorvallRT6000B遠心分離（
Sorvall Instruments社、ニュートン、コネチカット州）を用いて、細菌を、3,000rpmで
、５分間、遠心分離してペレットとした。10mMリン酸ナトリウム緩衝液（pH7.4）の５ml
を添加し、そして調製物を再度ペレット化した。上清を移して、５mlの新鮮な緩衝液を添
加し、細菌を再懸濁し、そして、その濃度を590nmでの吸光度の測定（この波長での吸光
度値1.0は、懸濁液中の1.25×109CFU/mlの濃度に等しい）により決定した。10mlの溶解し
た下層のアガロース（約45℃）で細菌を４×106CFU/mlにまで希釈し、常套手段である、1
5mlのポリプロピレン製チューブの反転を繰り返すことでこれを混合した。
そして、そのチューブの中身すべてを、平底ペトリ皿に注ぎ、皿を万遍なく均等に振る
ことで均質に分布させた。30秒もしない内に固まったアガロースは、約１mmの均質厚みに
なった。真空装置に接続された滅菌済の３mmパンチを用いて、固まったアガロースの一連
のウェルを設けた。パンチは100％アルコールで滅菌処理しており、細菌の培地を汚染し
ないように、使用時の直前に乾燥させた。
BPI断片の５もしくは10μｌを、各ウェルにピペットで移した。負の対照として、希釈
緩衝液（pH8.3）を分離したウェルに添加し、５μg/mlおよび１μg/mlの濃度のrBPI23も
正の対照として添加された。各プレートを、37℃で、３時間インキュベートし、そして、
10mlの溶解した上層のアガロース（約45℃）を平底ペトリ皿に添加し、固化せしめて、次
いで、37℃で、終夜インキュベートした。翌日、殺菌活性を有する細菌を置いたウェルに
は清澄な部分が認められた。この部分を視覚的により確認しやすくするために、（0.002
％クーマシーブリリアントブルー、27％メタノール、15％ホルムアルデヒド（37％倍液）
および水からなる）希釈したクーマシー溶液を寒天上に注ぎ、染色するために24時間置い
た。マイクロメーターを用いて、細菌部分を測定した。
25pmol／ウェルにまで増量して試験した場合でも、臭化シアンあるいはAsp-N消化して
生成したrBPI23断片に関しては殺菌活性は認められなかった。これに対して、この分析で
は、0.75pmol／ウェルという低い量でも、rBPI23を用いることで測定可能な殺菌活性が検
出された。一方、アルキル化rBPI23がrBPI23と同等の殺菌活性を保持しているににかかわ
らず、還元およびアルキル化したrBPI23でも100pmol／ウェルにまで増量しても殺菌性は
認められなかった。
実施例３
BPIタンパク質分解断片によるヘパリン結合
実施例１にて生成したrBPI23とBPIタンパク質分解断片を、本明細書にて参考までに採
り入れた、1993年７月15日に出願した係属中の米国特許出願No．08/093,202の実施例１に
記載の方法に従ったヘパリン結合性分析にて評価した。要約すれば、各断片を、底にジフ
ッ化ポリビニリデン膜（Immobilon-P、リポア社、ベッドフォード、マサチューセッツ州
）を備えた、96ウェルマイクロタイタープレートのウェルに添加した。臭化シアン断片の
ヘパリン結合を、3H−ヘパリン（20μg/ml）の飽和濃度で、ウェル当たり100pmolの各断
片を用いて計測した。正の対照のウェルには、様々な量のrBPI23を入れた。ウェルを乾燥
し、次いで、燐酸緩衝化生理食塩水、pH7.4（ブロッキング緩衝液）中の0.1％ウシ血清ア
ルブミン（BSA）でブロックした。ブロッキング緩衝液で3H−ヘパリン（0.30-20μCi/ml
、平均分子量15,000：DuPont-NEN、ウィルミントン、デラウエア州）の希釈液を作り、BP
Iペプチドを含むウェルにて、４℃で、１時間インキュベートした。液体シンチレーショ
ン計測（Model1217、LKB社、ガイザーバーグ、メリーランド州）での定量のために、未結
合のヘパリンを吸引し、ウェルをブロッキング緩衝液で３回洗浄し、乾燥し、そして除去
した。ブロッキング緩衝液中のBSAは、小さな親和性とヘパリンへの小さな結合力を示し
たが、これは生理学的要因によるものではなく、その背景は試験化合物シグナルが減じた
ものと考えられる。断片−ヘパリン結合の特異性は、放射標識したヘパリンが、100倍の
過剰の放射標識していないヘパリンにより完全に阻害されたということ（データ示さず）
から明らかである。
表２（二つのウェルの平均値±は、二つの値の値域を示す）の結果は、アミノ酸71-100
（C3）と1-56ならびに 112-170（C1,C5）を含んだヘパリンに結合した臭化シアン断片は
、同程度の結果を示した。臭化シアン断片171-196も、対照タンパク質（同様の分子量の
タンパク質であるrBPI23に作用する、タウマチン）よりも、ヘパリンに顕著に結合した。
Asp-N断片も、rBPI23にて複数のヘパリン結合領域が認められた。表２にあるように、5
7-104Asp-N断片が最も多量のヘパリンと結合し、1-38ならびい116-193断片がこれに続い
ている。臭化シアン断片データとつきあわせて、これらデータは、化学的あるいは酵素的
に生成したrBPI23の断片によって実証されたように、残基71-100での最高のヘパリン結合
力をはじめとして、rBPI23には少なくとも三つの独立したヘパリン結合領域があることを
示している。
Figure 2008101026
 実施例４
LAL分析に関するBPIタンパク質分解断片の効果
実施例１に従って生成したBPIタンパク質分解断片を、これら断片のLPS結合特性を決定
するために、Limulus遊走細胞溶解（LAL）阻害検定に適用した。具体的には、各断片を、
所定濃度のE．coli0113 LPS（最終濃度、４ng/ml）と共にエッペンドルフ管にて混合し、
そして、時々振盪しながら、37℃で、３時間インキュベートした。 0.05μg/mlのrBPI23
を含む対照についても試験した。インキュベーションに続いて、LAL分析のために200pg/m
lのLPS濃度を得るために、360μｌのダルベッコの燐酸緩衝化生理食塩水（D-PBS：Grand
Island Biological社（GIBCO）、ロングアイランド、ニューヨーク州）をチューブごとに
添加した。各試料を、ウェル当たり50μｌの量のイムロンIIストリップ（Dynatech社、チ
ャティリー、バージニア州）に移した。
Limulus 遊走細胞溶解物（発色定量LALキット、WhitakerBioproducts社、ウォーカーズ
ビル、メリーランド州）を、ウェル当たり50μｌ添加し、そのウェルを、室温にて、25分
間インキュベートした。発色体を、ウェル当たり100μｌ添加し、そして、ウェルを混合
した。室温での20から30分間のインキュベーション後、100μｌの25％（v/v）酢酸を添加
して反応を停止した。405nmでの光学密度を、マルチプレート計測器（ModelVmax、Molecu
lar Dynamics社、メンロパーク、カリフォルニア州）で測定し、LPS阻害率としてその結
果を図２に示した。この図において、黒丸はrBPI23を；白丸はAsp-N断片A3を；×はAsp-N
断片A2を；黒四角はAsp-N断片A4を；黒三角はAsp-N断片A1A2を；白四角はAsp-N断片A6aを
；小さな白三角は臭化シアン断片C3を；そして、小さな黒四角は臭化シアン断片C1/C5を
示している。
アミノ三断片1-56と112-170を含む臭化シアン消化画分は、約100nMのIC50で、LPS誘発
したLAL反応を阻害した。このIC50は、同じ検定における無傷のrBPI23（9nM）のIC50より
も、約10倍高い値である。他の臭化シアン消化画分は、非阻害性であることが判明した。
Asp-N消化により生成した断片に、LAL分析において三つの断片が阻害的であるとする若
干異なる結果が得られた。アミノ酸116-193に対応する断片は、15nMにてLPS誘発したLAL
反応を完全に阻害するなど、無傷のrBPI23と同様のLAL阻害活性を示した。アミノ酸57-10
4ならびに1-38に対応する断片も、LAL検定にて阻害を呈したが、約10倍の量を必要とした
。臭化シアン消化によるデータとつきあわせて、これらデータは、116-193のアミノ酸断
片での最高の中和活性をはじめとして、rBPI23分子の少なくとも三つの領域には、LAL反
応でのLBS活性の中和力があるとする、前述した実験結果をさらに支持するものである。
実施例１に記載のrBPI23のタンパク質分解断片での免疫反応性の研究を、ELISA検定を
用いて行った。この検定にて、rBPI23タンパク質分解断片を得るために、rBPI23殺菌活性
とLAL阻害活性をブロックすることができるウサギポリクローナル抗rBPI23抗体を用いた
。このポリクローナル抗体は、116-193ならびに57-104Asp-N断片および1-56ならびに112-
170臭化シアン断片とは免疫反応性があったが、マウスモノクローナル抗体は、rBPI23の1
-14残基に対応するAsp-N断片としか反応しなかった。
実施例５
BPIの15-merペプチドの調製
実施例１−４に記載のBPI断片分析にて検出された生物学的活性のドメインをさらに研
究するために、BPIの23kDアミノ末端断片のアミノ酸配列から誘導した15個のアミノ酸を
含む15-merの合成ペプチドを調製し、ヘパリン結合活性、Limulus遊走細胞溶解（LAL）検
定、および殺菌活性について評価した。具体的には、一組47個の合成ペプチドを二つずつ
調製するものであり、各ペプチドは15個のアミノ酸を含み、また、前述した係属中の、19
93年７月15日に出願された米国特許出願No．08/093,202にある配列に基づいた、隣接する
ペプチドの11個の連続したアミノ酸と重複するアミノ酸を備えるようにペプチドを合成し
た。
ペプチドを、CoselcoMimotopes社のライセンス下にあるCambridge Research Biochemic
als社の固相法を利用して、Maeji et al.，（1990，Immunol．Methods134：23-33）なら
びにGammon et al.，（1991，J．Exp．Med．173：609-617）の方法に従って同時に合成し
た。すなわち、rBPI23（1-199）の配列を、rBPI23の線状配列に沿って５個ずつアミノ酸
をずらして分割を開始することで、47個の15-merペプチドを得た。このペプチド合成法は
、96ウェル板での分離したペプチドの端断片に関する、複数のペプチドの小規模合成も同
時に行える。このようにして、94個の端断片が合成され、残りの二つの端断片（B,B）は
、活性化したFMOCアミノ酸の添加をせずに、他の端断片と同じ工程に適用した。固相の端
断片支持体からの15-merペプチドの最終開裂では、基本緩衝液（炭酸ナトリウム、pH8.3
）を使用した。端断片への独特な結合は、これら条件下でジケトピペラジン環化を進行せ
しめ、開裂したペプチドにのカルボキシ末端にてシクロ（リシルプロピル）部分をもたら
すことになる。アミノ末端はアセチル化されず、よって、遊離アミノ基はアニオン結合反
応に寄与することになる。ウェル当たりで、各15-merペプチドの平均約15μｇが得られた
。
実施例６
BPIの15-merペプチドによるヘパリン結合
実施例５に記載のBPI15-merペプチドを、実施例３に記載の方法に従ったヘパリン結合
検定に適用した。
その結果を図３に示し、図において、結合したcpmの総数から、ブロッキング緩衝液の
みを使用した対照ウェルに結合したcpmを差し引いた値を示している。これら結果は、rBP
I23配列における個別のヘパリン結合性機能領域を示す、三つの異なるヘパリン結合性ペ
プチドの存在を示唆するものである。BPI配列において、最初のドメインは約21位のアミ
ノ酸から約55位のアミノ酸にまで至り：二番目のドメインは約65位のアミノ酸から約107
位のアミノ酸にまで至り：そして、三番目のドメインは約137位のアミノ酸から約171位の
アミノ酸にまで至っている。ブランク対照での端断片からの物質には、ヘパリン結合効果
が認められなかった。
実施例７
Limulus遊走細胞溶解（LAL）検定でのBPIの15-merペプチドの効果
実施例５に記載の15-merペプチドを、実施例４に記載のLAL検定を用いて、そのLPS結合
活性について分析を行った。
これら実験の結果を、図４に示した。図４の結果は、顕著なLAL阻害に至るLPS結合活性
を有するrBPI23タンパク質の三つの異なるドメインの存在を示唆する、少なくとも三つの
主要な領域を示している。最初のドメインは約17位のアミノ酸から約55位のアミノ酸にま
で至り：二番目のドメインは約73位のアミノ酸から約99位のアミノ酸にまで至り：そして
、三番目のドメインは約137位のアミノ酸から約163位のアミノ酸にまで至っている。加え
て、図に示したように、他のペプチドでもLAL阻害が認められた。これに対して、ブラン
ク対照での端断片からの物質では、LAL検定にて測定されるLPS中和効果は認められなかっ
た。
実施例８
BPIの15-merペプチドの殺菌効果
実施例５に記載の15-merペプチドを、実施例２に記載の放射拡散分析にてE．coli細菌
（J5）に対する殺菌効果について試験した。ブランク端断片（B,B）からの生成物を、負
の対照として試験した。
分析の結果を図５に示した。殺菌活性が認められた15-merペプチドは、BPIタンパク質の
アミノ酸85-99に対するペプチドのみであった。図５に見られるように、様々な量のrBPI2
3を含む正の対照ウェルでも殺菌活性が認められたが、緩衝液ならびにブランク対照端断
片においてはかような活性は認められなかった。
上記実施例に記載したヘパリン結合性ならびにLAL分析にならった、これら殺菌活性検
定の結果は、BPIタンパク質には三つの異なる機能領域があることを示している。
実施例１−８にて得られた結果は、rBPI23は、分子の全生物学的活性に寄与する少なく
とも三つの機能領域を含んでいることを示している。最初のドメインは、約17位と約45位
の間のアミノ酸の配列中にあり、38位の残基でのAsp-N開裂により破壊される。このドメ
インは、LPS誘発したLAL活性ならびにヘパリン結合活性の双方において緩慢な活性を呈す
る。二番目の機能性ドメインは、約65位と約99位の間のアミノ酸の領域中にあり、LPS誘
発したLAL活性の阻害力は、70位の残基での臭化シアン開裂により消失する。このドメイ
ンは、最大のヘパリン結合活性を示し、殺菌性ペプチド、85-99を含んでいる。約142位と
約169位のアミノ酸の間にある、三番目の機能性ドメインは、LPS誘発したLAL刺激検定で
の阻害において活性であり、また、ヘパリン結合力は三つの領域の中で最も小さかった。
実施例９
BPI機能領域ペプチドの調製
実施例５−８に記載の一連の重複したペプチドの試験結果に基づいて、BPIタンパク質
の機能的に定義された各領域に由来するBPI機能領域ペプチドを、Applied Biosystems社
のModel432ペプチド合成機を用いて、Merrifield，1963，J．Am.Chem．Soc．85：2149な
らびにMerrifieldet al，1966，Anal．Chem．38；1905-1914の方法に従って、固相ペプチ
ド合成によって調製した。BPI機能領域ペプチドは、以下の表３に記載したように、BPIの
アミノ酸残基1-199の一部のアミノ酸を有するように調製され、BPI.２からBPI.５およびB
PI.８と命名した。
Figure 2008101026
 実施例10
BPI機能領域ペプチドによるヘパリン結合活性
実施例３に記載の方法に従って、BPI機能領域ペプチドBPI.２、BPI.３、BPI.８およびr
BPI21Δcysのヘパリン結合活性について検定した。図６に示した結果から、BPI.３とrBPI
21Δcysでは緩慢なヘパリン結合活性が認められたが、BPI.２とBPI.８では、ほとんどあ
るいは全くヘパリン結合活性は認められなかった。
実施例11
BPI機能領域ペプチドによるヘパリン中和活性
BPI機能領域ペプチドBPI.２、BPI.３、BPI.４、BPI.５、BPI.６および正の対照として
のrBPI23を、本明細書に参考までに採り入れた、1993年７月15日に出願された、係属中の
、共同所有に係る米国特許出願No．08/093,202の実施例３に記載の方法に従って、ATIII/
ヘパリン複合体によるトロンビン不活性化に関するそれらの効果について検定を行った。
具体的には、血漿中のATIII/ヘパリン複合体による精製したトロンビンの阻害を見るため
に、Chromostrate（登録商標）抗トロンビン分析キツト（OrganonTeknika社、ダーハム、
ノースカロライナ州）を用いた。
すなわち、分析は、ウェル当たりの最終容量が200μｌになるように調製した96ウェル
マイクロタイタープレートで、三度実施した。1.0μg/mlから 100μg/mlの範囲でBPI機能
領域ペプチドの濃度を変更して分析を進め、予め調製していたATIII/ヘパリン複合体の存
在下でトロンビンの阻害効果を決定した。分析のための試薬の添加順序は以下の通りであ
る。
1)最終容量が50μｌになるようにPBSで希釈し、最終濃度が100、50、25、10および１μ
g/ウェルに調製した、rBPI23、あるいはBPI機能領域ペプチド、あるいはタウマチンの一
連の希釈液、2)製造業者によって調製された緩衝液で、1:1000に希釈した50μｌ血漿水、
3)製造業者によって調製された緩衝液中にある１nKat/mlの濃度にある50μｌトロンビン
、および4)水中で１μmol/mlの濃度にある50μｌ発色基質、である。反応を37℃で10分間
進行せしめ、50μｌの0.1Mクエン酸を添加して停止した。実施例３に記載のマイクロプレ
ート計測器で、発色反応を定量した。
これら分析の結果を、試料濃度を重量あるいはモル濃度で記した図7aと7bに示した。BP
I機能領域ペプチドBPI.３とBPI.５が、最大のヘパリン中和活性を示した。これら分析に
て、対照タンパク質であるタウマチンは中和活性を示さず、いずれのタンパク質濃度にお
いても緩衝液対照と等価の活性を示したに過ぎなかった。
実施例12
BPI機能領域ペプチドによるLAL分析でのLPS中和活性
BPI機能領域ペプチドBPI.２、BPI.３、BPI.８および正の対照としてのrBPI23を、実施
例４に記載の方法に従って、これらペプチドのLPS結合性ならびにLPS阻害性を決定するた
めに、LAL分析にて評価した。実施例３に記載の方法にならって実験を進め、その結果を
、試料濃度を重量あるいはモル濃度で記した図8aと8bに示した。得られた結果から、BPI.
３は緩慢なLPS阻害活性を有しているのに対し、BPI.２とBPI.８では目立ったLPS阻害活性
は認められなかった。
実施例13
BPI機能領域ペプチドの殺菌活性
BPI機能領域ペプチドBPI.２、BPI.３、BPI.８および正の対照としてのrBPI23を、実施
例２の方法に従って、放射拡散分析にて、E．coliJ5（ラフ）およびE．coli 0111:B4（ス
ムース）細菌に対する殺菌効果を試験した。その結果を、図9a−9dに記した。これら結果
は、BPI機能領域ペプチドBPI.２とBPI.３は、殺菌活性を示したものの、BPI.８ではほと
んどあるいは全く殺菌活性が認められない結果を示した。殺菌活性を示した各殺菌性ペプ
チドは、スムースE．coli株よりむしろラフ株に対して効果的であった。
ある種のBPIペプチドの殺菌活性をさらに決定するために、他の実験にて、培地抗細菌
分析を実施した。具体的には、寒天プレートでの単一コロニーから、E．coliJ5（ラフ）
あるいはE．coli 0111:B4（スムース）細菌のいずれかを選択し、５mlのMueller Hinton
肉汁を接種し、振とうしながら、37℃で一晩インキュベートした。終夜培養したものを、
５mlの新しい肉汁で希釈し（〜1:50）、対数増殖期まで37℃でインキュベート（〜３時間
）した。５分間、3000rpmで遠心分離して、細菌をペレット化した。細菌ペレットを５ml
のPBSで再懸濁し、MuellerHinton肉汁で、２×106細胞/mlにまで希釈した（1OD570単位は
、1.25×109CFU/mlに相当する）。試験を行うBPI機能領域ペプチドを、肉汁で200μg/ml
にまで希釈し、96ウェル培養プレート（100μｌ容量）で２倍まで連続的に希釈した。い
ずれの試料も２倍の最終濃度とし、実験を３回実施した。細菌を100μl/ウェルになるま
で添加し、振とう機中にて、37℃で、20時間インキュベートした。そして、プレートを、
ELISAプレートマルチプル計測器にて、590nmで測定した。各ペプチド濃度での３つのウェ
ルの一つを、コロニー形成単位（CFU）決定のために選択した。270μｌのPBSに30μｌの
部分試料を加え、さらに、10倍の連続希釈を実施した。そして、50μｌの部分試料をトリ
プシン処理した大豆寒天上に置き、一晩インキュベートした。コロニーを計測し、最終細
菌濃度を決定した。これらの分析の結果を、図9e（E．coliJ5）と図9f（E．coli 0111:B4
）に示した。これら図に見られる通り、BPI機能領域ペプチドBPI.３は、E．coli J5細菌
に対して強い抗菌活性を示したのに対して、E．coli0111:B4に対してはほとんど活性が認
められなかった。
実施例14
BPI機能領域混合ペプチドの調製
実施例９に記載の固相化学法を用いて混合ペプチドを調製した。これらペプチドの配列
を、以下の表４に示した。BPI.７、 BPI.９、BPI.10と命名したペプチドは、あるBPI配列
の一部あるいは偶数個の反復を表していることが伺える。具体的には、アミノ酸90-99を
含む20-merを含むBPI.７は、一つの線状ペプチド鎖に二つが含まれている。BPI.10は、一
つの線状ペプチド鎖に、アミノ酸残基94-99、90-99、90-99ならびに93-99、90-99、90-99
それぞれを含む（BPI.10.1と命名した、配列番号：55の）25-merと（BPI.10.2と命名した
、配列番号：65の）26-merの約50：50の混合物を含む。BPI.９は、一つの線状ペプチド鎖
に、アミノ酸残基94-99に続いて残基90-99を含んだ16-merを含む。
これらペプチドを、上記した実施例10−13に記載したBPI活性検定に適用した。実施例1
0ならびに図６に記載したヘパリン結合検定にて、BPI.７は非常に高いヘパリン結合力を
示した。実施例11ならびに図7aと7bに記載したヘパリン中和検定にて、BPI.７は、rBPI23
と比較して、非常に高いヘパリン中和効果を示した。実施例12ならびに図8aと8bに記載し
たLAL検定にて、BPI.７は高いLPS阻害特性を示した。実施例13ならびに図9a-9dに記載し
た放射拡散プレートを用いた殺菌性検定にて、BPI.７、BPI.９、BPI.10.1およびBPI.10.2
は殺菌活性を示し、そして、培地検定におけるE．coliのラフならびにスムース双方の様
々な株に対して、BPI.７、BPI.９、BPI.10.1およびBPI.10.2は強い殺菌活性を示した。BP
I.10ペプチドは、いずれの細菌株に対しても、最も強い殺菌活性を示した。
ペプチドBPI.７とBPI.10で認められたこれら殺菌活性の結果は、BPIドメインIIペプチ
ドKWKAQRRFLK（すなわち、BPI.８、配列番号：８）の線状マルチマー（BPI.10.1およびBP
I.10.2）の混合物と線状二量体（BPI.7）は、E．coli株J5に対して殺菌活性を有したのに
対し、単量体（BPI.8）は実質的に殺菌活性が無かったことを示している。さらに、アミ
ノ酸94-99、90-99を含むBPI.９の二量体ペプチドならびに多量体ペプチドは、より強い殺
菌活性を示した。これら結果に基づいて、実施例９に記載の方法を用いて、表４に示した
他のペプチドを合成した。
Figure 2008101026
 実施例15
機能領域混合ペプチドの殺菌活性
実施例14に記載のBPI機能領域混合ペプチドを、前記実施例２ならびに13に記載の放射
拡散分析に用いた。その結果を、図10a-10eに示した。図10aに示した結果は、ドメインII
ペプチド（アミノ酸90-99）の一つのコピーを含むBPI.８は、1000μg/mlの濃度で、E．co
li J5細胞に対して検出可能な殺菌活性は有していなかった。これとは対照的に、ドメイ
ンIIIペプチド（アミノ酸148-161）の一つのコピーを含むBPI.13は、30μg/mlを超える濃
度で、相当の殺菌活性を示した。ドメインIII単量体BPI.13の二つのコピーを含むBPI.29
は、より大きな殺菌活性をし、また、ドメインIIペプチドBPI.８とドメインIIIペプチドB
PI.13の混合線状ペプチドは、J5細胞に対して、BPIとほぼ同等の最も高い殺菌活性を示し
た。
図10b には、BPI.８、BPI.７およびBPI.10を含むドメインIIペプチドを用いた実験の結
果を示している。（表８の要約も参照のこと。）BPI.８は、1000μg/mlの濃度で、E．col
iJ5細胞に対して殺菌活性は有していなかったが、BPI.７とBPI.10の混合ペプチドは、高
レベルの殺菌活性を示した。
これらBPI機能領域ペプチドの殺菌性範囲を研究するために、標的細胞として様々な他
の細菌を用いて、他の実験を行った。図10cは、E．coli株O7-K1を用いた放射拡散実験の
結果を示すものである。これら実験にて、rBPI23は、100μg/mlの濃度で殺菌活性は認め
られず、1000μg/mlの濃度でも低い殺菌活性しか認められなかった。同様に、ドメインII
（DII）単量体を含むペプチドBPI.８ならびにドメインIII（DIII）単量体を含むペプチド
BPI.13は、BPI.13の活性の量ががrBPI23のそれより大きいにもかかわらず、低レベルの殺
菌活性しか認められなかった。驚くべきことに、ドメインII（DII）二量体BPI.７とドメ
インII−ドメインIII（DII-DIII）ヘテロ二量体BPI.30は高い殺菌活性を示し、そして、
ドメインIII二量体BPI.29は緩慢な殺菌活性を示した。これら結果は、ここで同定されたB
PI機能領域のペプチドが、BPI分子の殺菌活性とは質的に異なる殺菌活性を有しているこ
とを実証している。
図10dと10eは、本明細書に記載したホモ−ならびにヘテロ二量体が、感受性細菌とは質
的にも量的にも異なる殺菌活性スペクトルを有していることをさらに実証している。図10
dは、KlebsiellaPneumoniae細菌を用いた放射拡散分析の結果を示している。DII-DIIIヘ
テロ二量体BPI.30は、この細菌に対して最高の殺菌活性を示し、DIIIホモ二量体BPI.29は
、緩慢な活性レベルを示し、また、DII二量体（BPI.7）とDIII単量体（BPI.13）は低レベ
ルの活性を示した。DII単量体を含むBPI.８は、800μg/mlの濃度でも殺菌活性を示さず、
このことは試験したE．coli株で見られたこのペプチドの殺菌活性の欠如と符合するもの
である。
図10eは、グラム陽性細菌であるStaphylococcusaureusを用いた放射拡散実験で認めら
れた殺菌活性のレベルを示している。DII-DIIIヘテロ二量体BPI.30は、この細菌に対して
最高の殺菌活性を示し、DIIIホモ二量体BPI.29は、緩慢な活性レベルを示し、また、DII
二量体（BPI.7）とDIII単量体（BPI.13）は低レベルの活性を示した。DII単量体を含むBP
I.８は、800μg/mlの濃度でも殺菌活性を示さず、このことは試験した他の細菌で見られ
たこのペプチドの殺菌活性の欠如と符合するものである。
これら結果は、本明細書で開示したホモ−ならびにヘテロ二量体が、殺菌活性が検出さ
れるために必要なペプチドの活性量ならびに最小有効濃度の双方に関して変化する、様々
な程度の殺菌活性を呈することを示している。また、これら結果は、BPIの殺菌活性とは
量的に、そして驚くべきことに質的にも相違する活性であることを示している。
実施例16
BPI機能領域混合ペプチドの他の殺菌活性
実施例15に開示した実験結果を考慮し、他の細菌ならびに微生物に対するドメインII−
ドメインIII混合ペプチドの殺菌活性を、BPIドメインIIペプチドならびにBPIドメインIII
ペプチドの殺菌活性と比較した。上述した以下のBPI機能領域ペプチドを、放射拡散殺菌
活性（実施例２）および上記実施例15にも記載した培地殺菌活性（実施例13）に用いた。
これら結果を、図11a-11qに記載した。これら図面には、以下の細菌株を用いた殺菌性検
定の結果を記されている。
Figure 2008101026
 これら実験の結果を、以下にまとめた。試験したBPIペプチドのいずれにも、Serratia ma
rcescens（図11f）あるいはProteus mirabilis（図11g）に対する殺菌活性は認められな
かった。BPI.８は、約2000pmolにまで濃度を上げても、試験した生物に対する殺菌活性は
認められなかった。BPI.13とBPI.30では、Pseudomonasaeruginosa（図11a）、E．coli O1
8:K1:H7（図11b）、Klebsiella Pneumoniae（図11c）およびE．coliO75（図11d）に対す
る殺菌活性は認められなかった。さらに、BPI.30は、Salmonella Lyphurium（図11h）、
そして培地検定にてE．coli O86a:K51（図11j）とE．coli O4:K12（図11k）に対して殺菌
活性を呈した。BPI.23は、放射拡散分析にて、E．coliO86a:K61（図11i）に対して殺菌活
性を呈した。また、BPI.30は、ヒトの血清にて、E．coli O86a:K61（図11l）に対して殺
菌活性を呈した。
本発明によって提供されたBPIペプチドの殺菌力を、グラム陽性細菌に対しても試験し
た。驚くべきことに、試験したBPIペプチドは、約20から約2000pmolの範囲の量にて、Sta
phylococcusaureus（図11e）、Streptococcus Pneumonia（図11m）、Bacillus megateriu
m（図11n）を用いた放射拡散分析にてある程度の殺菌活性を示した。これら結果は、抗生
物質ゲンタマイシンならびにバンコマイシン（図11o）の殺菌活性と匹敵していた。
最も驚くべきことに、あるペプチドBPI.13は、Candida albicans（図11pと11q）を用い
た培地検定にて、殺真菌活性を示した。これら図面にあるように、BPI.13の活性は、BPI.
２、BPI.29、BPI.30およびBPI.48よりもさらに低いレベルと明確に識別できる。これら結
果は、本発明のBPI機能領域ペプチドが、天然BPI に関して先に報告された活性とは、質
的に異なる抗微生物活性を有することを実証している。
実施例17
BPI機能領域混合ペプチドのヘパリン中和活性
実施例14で調製したBPI機能領域混合ペプチドのinvitroならびにin vivoでのヘパリン
中和力を、ヘパリン処置した血液および血漿の凝固時間に関するヘパリンの阻害効果を中
和するこれらペプチドの性能を検定することにより決定した。
In vitroにて、BPI機能領域混合ペプチドの効果を、活性化局部トロンビン活性化時間
（APTT）のヘパリン介在による伸長に関して決定した。APTTは、治療のために投与したヘ
パリンのような、トロンビン形成の内因性あるいは外因性阻害体の存在によって長くなる
。このように、ヘパリンの抗凝固効果を中和する薬剤は、試験によって測定したAPTTを短
縮するであろう。クエン酸化したヒトの血漿（200ml）を、15μｌの希釈剤（0.15M塩化ナ
トリウム、0.1MTris-HCl、pH 7.4）あるいは25μg/mlのヘパリン（187単位/mg）も含む15
μｌの希釈剤のいずれかと共に、37℃で、１分間インキュベートした。15μｌの様々な濃
度（0.0から56μg/ml）のrBPI23、rBPI21Δcys、あるいはBPI混合ペプチドBPI.29（DIII
ホモ二量体）およびBPI.30（ヘテロ二量体DII+DIII）を添加し、即座に、トロンビン試薬
（カタログNo.845-4、Shigma Chemical社、セントルイス、ミズーリ州）の100μｌを添加
した。BBL Fibrometer（BectonDickenson Microbiology System社、コッキィースビル、
メリーランド州）を用いて凝固時間（トロンビン時間）を測定した。その結果を、図12a
、12bおよび12eに示した。図12aは、ヘパリンにより伸長したAPTTに、rBPI23あるいはrBP
I21Δcysの様々な量を添加して生じた相対減少を示している。これら結果は、これらBPI-
関連タンパク質のそれぞれが、APTTのヘパリン介在による伸長を支持するものである。図
12bは、BPI混合ペプチドBPI.29とBPI.30も、APTTのヘパリン介在による伸長を阻害するこ
とを示している。図12eは、非対数目盛でのBPI.30によって得られた結果を示す。図12gは
、この検定におけるヘパリン処置した血液の凝固時間に関して、BPI.29、 BPI.30およびB
PI.７が最大の効果を呈することを示している。この検定におけるヘパリン処置した血液
の凝固時間の減少に関して、BPI.３とrBPI23ではわずかなに、また、BPI.14、BPI.２、BP
I.４、BPI.５、BPI.７、rBPI25、rBPIおよびrBPI21Δcysのすべてでは、ほとんど効果が
認められなかった。
ヘパリン処置したラットでのAPTTに関する例示したBPI混合ペプチドのin vivo効果を決
定し、rBPI23でのin vivo効果と比較した。APTTは、治療のために投与したヘパリンのよ
うな、トロンビン形成の内因性あるいは外因性阻害体の存在によって長くなる。ヘパリン
の抗凝固効果を中和する薬剤は、この試験によって測定したAPTTを短縮するであろう。NI
Hのガイドラインに沿って飼育したSprague-Dawleyラットに、尾の静脈から丸薬の点滴静
注によって100単位/kgのヘパリンを投与し、rBPI23と比較して量を変化させた試験タンパ
ク質あるいは対照タンパク質を５分後に投与した。試験タンパク質あるいは対照タンパク
質を投与して２分後に、腹部大動脈から採取した血液試料からAPTTを決定した。未処置動
物ならびにBPIペプチドでのみ処置した動物のAPTTも決定した。図12cでは、局部トロンボ
プラスチン時間のヘパリン介在により伸長のrBPI23阻害の用量依存性を示し、約５mg/kg
の投与によれば、ヘパリン処置とBPI-処置した動物のAPTTは、未処置対照動物のそれとほ
とんど同等であることを示している。BPI.10ペプチドの投与は、ヘパリン処置した動物で
のAPTTが、BPI.10のみで処置した対照動物でのAPTTと実質的に同等であった。BPI.30を用
いて同様の結果が得られた（図12f）。
これら結果は、BPI機能領域混合ペプチド（例えば、BPI.10とBPI.30）およびrBPI23が
、凝固プロテアーゼのヘパリン阻害を効率良く中和することを示している。これら特徴に
基づいて、本発明のBPI機能領域混合ペプチドは、プロタミン硫酸に関して推薦された一
般的な用量にて、ヘパリン抗凝固効果を臨床的に中和する上で有用であると考えられるが
、その物質が、降圧効果ならびにアナフィラキシー様効果までをも備えることは期待でき
ない。
実施例18
BPI機能領域置換変異ペプチドの調製ならびに機能活性分析
機能領域IIおよびIIIから得たペプチドに関して得られた結果は、これらペプチドでの
機能的に重要なアミノ酸をさらに決定する動機付けとなった。従って、ドメインIIおよび
IIIのアミノ酸配列を含む一連のペプチドを、アラニン残基で置換した。置換実験に用い
たドメインペプチドの詳細を、図13（ドメインII：IKISGKWKAQKRFLK、配列番号：７）と
図14（ドメインIII:KSKVGWLIQLFHKK、配列番号：13）に示した。これら一連のペプチドを
、先の実施例ですでに述べた、Limulus遊走細胞溶解検定（LAL）にて、ヘパリン結合親和
性（Kd）、ヘパリン結合性（Hep-CAP）およびLPS中和活性を、そして、同じく先の実施例
ですでに述べた、放射拡散分析（RAD）を用いたE．coliJ5に対する殺菌活性を決定するた
めに試験を行った。
表５（ドメインII）ならびに表６（ドメインIII）に示した結果は、BPI機能領域IIなら
びに機能領域IIIペプチドとそのアラニン置換変異ペプチドとの間での、これら分析（相
対的相違としているLAL分析を除く）での活性の倍数単位の相違に関して表現してある。
ドメインIIペプチドでは、ほとんどのアラニン置換ペプチドで、放射拡散分析での殺菌
活性が、約２から10倍減少した。この総合的なパターンの例外として、BPI.19（Gly89→A
la89）、BPI.22（Lys92→Ala92）、BPI.23（Gln94→Ala94）、およびBPI.24（Lys95→Ala
95）がある。これとは対照的に、LAL分析では、ほとんどのアラニン置換ペプチドでは大
差はなかったが、BPI.17（Ile87→Ala87）、およびBPI.21（Trp91→Ala91）では、この分
析にて、活性の緩やかな減少と大幅な減少が認められた。BPI.21では、これら結果は、こ
のペプチドの殺菌活性が10倍以上減少したことと符合するものであり、また、91位のアミ
ノ酸（自然配列でのトリプトファン残基）が、ペプチドの生物学的活性において特に重要
であることを示すものである。
たいていの場合、ヘパリン結合性と結合力に関するアラニン置換の効果は、未置換ペプ
チドの２倍程度に満たないものである。一つの例外として、未置換ペプチドよりも４倍も
の減少を示したBPI.21のヘパリン結合能力がある。このことは、これらペプチドの様々な
活性の一つであるTrp91での置換に対する感受性に係る初期の結果を支持するものである
。たいていの場合、ヘパリン結合性ならびにヘパリン結合力双方のKdに関する効果は同様
であり、また同じ大きさであった。ある事例では、Kdがわずかに増大したり（BPI.18;Ser
88→Ala88）、あるいはわずかに減少したり（BPI.24）したものの、置換ペプチドのヘパ
リン結合力は減少した。Kdが増大したり（BPI.20;Lys90→Ala90）あるいは減少したり（B
PI.19）しても、その結合力に変化が無かった事例もある。ある事例では、親和性が何ら
の影響も受けずに残存し、結合力がほぼ２倍減少したものがあった（BPI.25;Arg96→Ala9
6）。
これら結果は、ドメインII配列（Trp91）に少なくとも一つの重要な残基があり、ドメ
インIIペプチドの活性が、他のドメインIIアミノ酸残基のアラニン置換によって、ほとん
どの部分が、最小限の影響しか受けていないことを示している。
ドメインIIIペプチドでは、ほとんどのアラニン置換ペプチドで、放射拡散分析での殺
菌活性が、約２から５倍減少した。この総合的なパターンの例外として、BPI.35（Gly152
→Ala152）、BPI.39（Gln156→Ala156）、BPI.42（His159→Ala159）、およびBPI.44（Ly
s161→Ala161）がある。LAL分析では、ほとんどのアラニン置換ペプチドでは大差はなか
ったが、BPI.31（Lys148→Ala148）、BPI.32（Trp149→Ala149）、BPI.33（Lys150→Ala1
50）、およびBPI.34（Val151→Ala151）では、この分析にて緩やかなLPS結合活性が、ま
た、BPI.36（Trp133→Ala133）およびBPI.40（Leu157→Ala157）では、この分析にて大き
なLPS結合活性が認められた。BPI.36とBPI.40双方では、これら結果は、これらペプチド
の殺菌活性が５倍以上減少したことと符合するものであり、また、自然配列での疎水性の
Trp153とLeu157が、ペプチドの生物学的活性において特に重要であることを示すものであ
る。
ヘパリン結合性と結合力に関するアラニン置換の効果は、未置換ペプチドの５倍程度に
満たない大きさである。ドメインIIアラニン置換ペプチドでの知見とは異なり、たいてい
の場合、ヘパリン結合性ならびにヘパリン結合力双方のKdに関するアラニン置換による効
果のタイプは同様であり、また同じ大きさであった。ある事例（BPI.42;His159→Ala159
）では、Kdがわずかに減少しても（1.2倍）、ヘパリン結合力に変化が無かった。ある一
つの事例のみで、ヘパリン結合性ならびにヘパリン結合力双方のKdはわずかに増大し（BP
I.35;Gly152→Ala153）、その増加率はわずか10％であった。
ドメインIIアラニン置換ペプチドでの結果と同様、ドメインIII配列に少なくとも一つ
の重要な残基（Trp153）があり、また他に少なくとも一つの残基（Leu157）の重要性が残
されている。ドメインIIアラニン置換ペプチドとは異なり、この結果は、置換したものの
ほぼ半分が、試験で得られた活性において少なくとも２倍の差異があることを示している
。６つの事例において、試験した４つの活性がすべて減少しており、また、10個の殺菌活
性での事例において、ヘパリン結合性ならびにヘパリン結合力のKdが減少した。一つの事
例（BPI.35;Gly152→Ala152）のみに、殺菌力、ヘパリン結合性Kd、およびヘパリン結合
力において、わずかではあるが、その活性の増大が認められた。
これら結果は、疎水性アミノ酸残基Trp91、Trp153およびLeu157のアラニン置換が、これ
らBPI機能領域置換ペプチドの活性に大きな効果を付与することを示すものである。この
結果は、rBPI23のカチオン特性からして、予期できないものである。実際のところ、リシ
ンがアラニンもしくはフェニルアラニンで置換されたドメインIIアラニン置換ペプチド（
例えば、BPI.24、BPI.73）は、劇的な活性の向上を呈している。
Figure 2008101026
 実施例19
BPI機能領域ペプチドの生物学的活性の要旨
ペプチドの構成種類別の分布を、以下の表７に記した。
本発明のBPI機能領域ペプチドあるいはその典型的なサブペプチドを、以下の生物学的
活性、すなわち、グラム陰性ならびにグラム陽性細菌、および他の特定の微生物に対する
殺菌活性、LPS結合性ならびにLPS中和活性、およびヘパリン結合性ならびにヘパリン中和
活性について分析した。
BPI機能領域ペプチドを、実施例８および６のそれぞれに記載したE．coliJ5細菌に関す
る殺菌活性ならびにヘパリン中和活性について分析した。グラム陰性細菌E．coli J5（ラ
フ）ならびにE．coli O113（スムース）およびグラム陽性細菌S.aureusに対する、本発明
の例示的に示したペプチドに関する分析の結果を表８に示した。殺菌活性は、30mm2の殺
菌面積を生成するに必要なペプチドの量（pmol/ウェルおよびμg/ウェル）として表現し
た。
Figure 2008101026
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 rBPI23と等モルのBPI.84が、E．coliJ5細菌に対する殺菌活性を呈することが認められた
。
本発明のBPI機能領域ペプチドのヘパリン結合性実験の結果を、図15a-15eならびに図16
に示し、また、ヘパリン結合データが親和性（nM）と結合能力（ng）で表現した表９に示
した。ヘパリン濃度の上昇に対して結合したヘパリンの量を記入し、非直線最小二乗法（
GraFit，v.2.0，Erithacus Software，ロンドン、英国）による標準化方程式にデータを
当てはめることで、結合定数（Kd）と結合力を算出した。
Figure 2008101026
Figure 2008101026
Figure 2008101026
Figure 2008101026
 既定変数としての殺菌活性および予定変数としてのヘパリン結合力と親和性（Kd）を用い
て多重回帰解析を行って、代表的なBPI機能領域ペプチド間の関連性を研究した。この解
析にて、ヘパリン結合力のみが、殺菌活性と顕著に関連していること（ヘパリン結合力、
ｐ＝0.0001、およびヘパリン親和性、ｐ＝0.6007）が示された。換言すれば、ペプチドが
最大量結合するヘパリンの量（すなわち、結合力）は、殺菌活性と密接な関連性を有して
おり、また、ヘパリン滴定（すなわち、親和性）にて50％飽和に達するまでの時間と関連
しないのである。LPS結合拮抗性ならびに中和活性に関するデータから、ヘパリン結合力
から殺菌活性が最も容易に予測できることも明らかとなった。例えば、BPI.７、BPI.29、
BPI.30,，BPI.46、BPI.47、BPI.48、BPI.63、BPI.65（還元）、BPI.69、BPI.73、BPI.58
、MAP.１およびMAP.２は、非常に大きなヘパリン結合力を呈するだけでなく、高い殺菌活
性も有していた。多重抗原性ペプチド（MAPペプチド）は、Posnettand Tam，1989，Metho
ds in Enzymology 178，739-746に記載された分枝リシン核に関する多重結合のペプチド
である。これとは逆に、BPI.２、BPI.４、BPI.８、BPI.14、BPI.53およびBPI.54のヘパリ
ン結合力は小さく、よって、殺菌活性はほとんどあるいは全く認められない。
BPI機能領域混合ペプチドBPI.30（ドメインII−ドメインIIIペプチドを含む）ならびに
BPI.74（ドメインIII-ドメインIIペプチドを含む）を、グラム陰性ならびにグラム陽性細
菌に対する殺菌活性、およびヘパリン結合性ならびに中和活性に関して比較を行った。こ
れらの結果は、混合ペプチドの構成順序を変えることで、相対活性レベルの変化が確認さ
れた。例えば、BPI.74は、BPI.30と比較して、殺菌活性が大きく減少していた。具体的に
は、BPI.74はE．coli J5細菌に対する殺菌活性が10倍も低く、E．coliO111:B4細菌に対す
る殺菌活性では50倍の低さ、そして、S．aureusに対する殺菌活性は3.5倍の低さであった
ヘパリン結合力が２倍低下したこと、ならびにヘパリン親和性が２倍増大したことも観察
された。
他の殺菌性ならびに内毒素結合性タンパク質も、ヘパリン結合力について試験した。セ
クロピンＡ、マガイニンIIアミド、ポリミキシンＢペプチド、およびLimulus抗-LPS因子
（LALF）を、実施例３に記載の直接ヘパリン結合検定法にて分析した。マガイニンIIアミ
ド（Sigma社、セントルイス、ミズーリ州）は、セクロピンＡ（Sigma社、242ng/２μg，K
d=395nM）、LALF（Assoc．ofCape Cod）ウッズホール、マサチューセッツ州、195.3ng/２
μｇペプチド，Kd=1.29μM）、およびPMBペプチド（BachemBiosciences社、フィラデルフ
ィア、ペンシルベニア州、58.0ng/２μｇペプチド，Kd=309mM）と比較して、極めて高い
ヘパリン結合力を示した（437.7ngヘパリン／２μｇペプチド、Kd=3.17μM）。マガイニ
ンIIアミドは、第８、13および15位がアラニンで置換された、マガイニン天然配列の置換
変異体である。マガイニンIIアミドは、その天然配列よりも、小さな溶血活性を有してい
ると報告されている。
上記した結果は、BPIペプチドのデータにより実証されたヘパリン結合性、LPS結合性、
および殺菌活性との間の関連性を示唆するものであり、他のLPS結合性タンパク質もヘパ
リンに結合することを示唆するものである。より活性な殺菌性タンパク質である、セクロ
ピンＡとマガイニンIIアミドは相応じて、他の一連のLPS結合性タンパク質の中でも最高
のヘパリン結合力を有している。
BPI機能領域ペプチドの付加変異体のあるタイプは、BPI機能領域ペプチドのアミノあるい
はカルボキシ末端のいずれかに、D-アラニン-D-アラニンを組み込んだものである。この
方法によれば、D-アラニンを付加することで、グラム陽性細菌に大きな殺菌活性を付与で
きる。グラム陽性細菌での細胞壁の生合成は、D-アラニン-D-アラニンに特異的に結合し
、利用するトランスペプチド反応を含む。ペニシリンのようなβ−ラクタム抗生物質は、
効率良くこれと同じ反応を阻害する。活性殺菌性ペプチドへのD-アラニン-D-アラニン組
み込みは、グラム陽性細菌の活発の成長している細胞壁をペプチドの目標とすべきである
。
BPI機能領域ペプチドのドメインII置換において、Ly95をアラニンで置換することにより
（BPI.24）、予想もしない改善が認められた。引き続いて第95位のフェニルアラニンを置
換することで（BPI.73）、アラニン置換体と比較して改善された活性が認められた。驚く
べきことに、D-Pheで95位を置換したもの（BPI.76）は、出発ペプチド（BPI.2）よりも低
レベルの活性にまで、劇的に減少した。この異性体効果は、このペプチドの相互作用が立
体特異的であり、BPI.73がBPI.76と比較してより活性な立体配座に適合できることを示す
ものである。かような立体特異性、特に、他の残基でこの現象が研究された後でのこの立
体特異性は、薬作用発生団の開発のための重要な決定を促す。
本明細書で定義したBPIの機能領域から誘導したペプチドは、疎水性アミノ酸（特に、
トリプトファン）が至適活性を得る上で最も重要であると決定するための利用されてきた
。この知見は、BPIのカチオン性からして予想できないものである。実際のところ、ドメ
インIIでは、リシンがアラニンあるいはフェニルアラニンで置換された場合、そお活性は
劇的に増大する（BPI.24、BPI.73）。機能領域ペプチドを組み合わせることで、最も活性
のある置換ペプチドを三つのドメインから選択したものの組み合わせを含めて、各ペプチ
ドの活性強度は増大される。
新たに合成したペプチドそれぞれの純度を、VYDAC C-18カラム（25cm×4.6mm、５μm粒
径、30nm孔径、Separation Group社、ヘスペリア、カリフォルニア州）を用いた分析用逆
相HPLCによって決定した。水中の５％アセトニトリル/0.1％トリフルオロ酢酸（TFA）を
移動相Ａとし、また、80％アセトニトリル/0.065％TFAを移動相Ｂとして、HPLCを実施し
た。溶出物を、分光光度計を用いて、220nmにて測定した。流速は、1.0ml/分であった。
勾配溶出条件は、各ペプチドが好適に分解されるように選択した。純度を、全ピーク面積
に占める主要ピークの面積の割合で表現した（表10参照）。新たに合成したペプチドの純
度と同定を、VGBiotech Bio-Q質量分析計を用いて電子噴射イオン化質量分析によって決
定した。表10には、質量分析ならびにHPLCによる、例示的に示した本発明のペプチドの純
度解析の結果のまとめを示した。
Figure 2008101026
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 BPI.13 ならびに他の選択したペプチドを、半調製逆相VYDACC-18カラム（25cm×10mm、10
μm粒径、30nm孔径）を用いて精製した。BPIを精製するために、以下の勾配を用いた。す
なわち、流速2.0ml/分にて、26.7％Ｂから33％B。BPI.13を移動相Ａに8.8mg/mlの濃度で
溶解し、0.5mlの量を注入した。注射を３回実施し、各注射での主要ピークを回収した。
回収物をまとめ、SpeedVacを用いて蒸発乾燥した。
得られた物質（精製したものをBPI.13と称する）の純度を、解析用逆相システムと上述
した勾配溶出条件を用いて決定した。この解析にて、BPI.13は 98％の純度であった。BPI
.13の純度と同定を、VGBiotech Bio-Q質量分析計を用いて電子噴射イオン化質量分析によ
って決定した。見かけの分子量は、1711.0（推定分子量は、1711.1）であった。質量分析
にて、不純物は検出されなかった。BPI.13の復元率は55％であり、出発物質の69％が所望
のペプチドであったものと考えられる。
上述したようにして、本発明のペプチドをさらに精製した場合、ペプチド、例えば、BP
I.13PとBPI.30Pの生物学的活性の大きさは、化学純度が増大した時に、増大することが認
められた。このことは、観察された生物学的活性がペプチドそれ自体によるものであるこ
とを示すものである。特に、ペプチド調製物の純度が98％にまで増大することで、約69％
の純度のBPI.13によるCandidaalbicansの完全に新規で予想だにしなかった抗真菌活性は
さらに改善された。
実施例20
結合性分析ならびに中和分析を用いた BPI機能領域ペプチドの解析
Ａ．LPS結合性分析
BPI機能領域ペプチドをLPS結合性分析に適用した。
まず、これら分析を、Gazzano-Santro et al.,前出に記載されているようにして行った。
すなわち、E．coli株J5リピドＡの懸濁液を超音波処理し、0.2μg/mlの濃度になるまでメ
タノールで希釈し、その50μｌをウェル（Immulon２ Removawell Strips、Dynatech社）
に吸収させた。37℃での一晩のインキュベートに続いて、37℃で、３時間、D-PBS/0.1％B
SAの溶液215μｌでウェルをブロッキングした。その後、ブロッキング緩衝液を廃棄し、
ウェルをD-PBS（D-PBS/T）中の0.05％Tween-20の溶液で洗浄し、D-PBS/T中の［125I］-rB
PI23の溶液50μｌを用いて、４℃で、一晩インキュベートし（9.9μCi／μｇの比活性で
、234,000cpmの総数）、そして、BPI機能領域ペプチドの濃度を増大した。このインキュ
ベーションの後、D-PBS/Tでウェルを３回洗浄し、結合した放射能をガンマカウンターを
用いて計測した。D-PBS/BSAで処置した処置したウェルへの結合は、非特異的なバックグ
ラウンドの結合と考えられ、これは特異的に結合した放射能を生成するために各ウェルに
結合した全放射能から差し引かれる。
これら実験の結果を、図17a（各ペプチドの濃度をnMで示した）と図17b（各ペプチドの
濃度をμg/mlで示した）に示した。未標識rBPI23を用いた拮抗実験を、比較のために示し
た。これらの結果は、試験したペプチドのすべてが、rBPI23により、程度は異なるものの
、LPS結合性を拮抗することを示した。
二倍量の［125I］-rBPI23（10μCi／μｇの比活性で、454,000cpmの総数）を用いて、全
血の有無の下で、rBPI23によるBPI.10のLPS結合親和性と比較しながら、この実験を繰り
返した。図18に示した結果にあるように、モル基準にて、BPI.10が、この分析で放射標識
したrBPI23で拮抗したrBPI23と同等の強度である２の因子に属することが実証された。
総数225,000cpmの［125I］-rBPI23が用いられたこと、リピドＡが0.5mg/mlの濃度で使
用されたことを除いて、上述した実験と同様にして、ペプチドBPI.７、BPI.29およびBPI.
30を用いて実験を繰り返した。図19に示した結果にあるように、モル基準にて、これらペ
プチドが、リピドＡに結合した未標識のrBPI23よりも、６から10倍劣った強度しか有して
いないことが実証された。
BPI機能領域ペプチドBPI.２、BPI.３、BPI.４、BPI.５、BPI.７、BPI.13、BPI.14、BPI.2
9、BPI.30およびBPI.48、ならびにこれら分析での対照としてのrBPI、rBPI21Δcysおよび
rLBP25を用いた拮抗試験にて、放射標識した組換えLPS結合タンパク質（［125I］-rLBP）
を放射標識したrBPI23に代えて使用したことで、第二の結合検定を実施した。これら実験
にて、リピドＡを、メタノール中で0.7μg/mlの濃度でウェルに吸収させた。放射標識し
たrLBP（3.45μCi／μｇの比活性で、650,000cpmの総数）のインキュベーションを、連続
的に増大せしめた濃度のBPIペプチドの存在下で、37℃で、2.5時間実施した。これらの結
果を、図20aと図20bに示した。IC50値（すなわち、放射標識したrLBP25のリピドＡ結合が
、ペプチドが無い場合に達成した値の半分にまで阻害される濃度）を、表11に示した。
Figure 2008101026
 三番目の結合分析にて、ヒトの内皮細胞（HUVEC）でインキュベーションした、放射標
識したLPSへ結合するBPI機能領域ペプチドの能力を試験した。この検定では、HUVEC細胞
にBPIペプチドが一旦結合したLPSへの結合力を測定した。HUVEC細胞を、D-PBS/BSAの500
μｌの溶液にて、１μg/mlあるいは３μg/mlのいずれかの濃度の様々なBPIペプチドの存
在下、４℃で、３時間インキュベートした。このインキュベーションに続いて、細胞を氷
冷したD-PBS/BSAで二回洗浄し、D-PBS/BSA中の［125I］-RaLPS（4.6×106cpm／μgの比活
性で、340,000 cpmの総数）の500μｌの溶液にて、４℃で、さらに2.5時間インキュベー
トした。ウェルをD-PBS/BSAで三回洗浄し、１Ｍの水酸化ナトリウムの500μｌで可溶化し
、そして溶解物をガンマーカウンターで計測した。図21に示したこれら結果は、BPI.29と
BPI.30がHUVEC細胞に結合する一方で、LPSへの結合力を保持していることを示している。
Ｂ．TNF細胞毒性を用いたBPI機能領域ペプチドのLPS中和活性スクリーニング分析
腫瘍壊死因子（TNF）細胞毒性分析を用いて、LPS中和活性のためのスクリーニング検定
を行った。ビタミンＤを補充した培地で成長したヒト単球細胞系（THP-1:受託No．TIB202
、AmericanType Culture Collection、ロックヴィル、メリーランド州）は、LPSで刺激す
ることで、TNFを用量依存性で生成する。マウス繊維芽細胞（L929細胞；ATCCNo．CCL1）
は、TNF-媒介した細胞の殺傷に感受性があり、この細胞殺傷性も用量依存性である。この
ように、L929細胞の細胞殺傷性の程度は、 THP-1細胞と接触する遊離LPSの量の感受性の
指標でもある、THP-1細胞でのTNF誘発の程度に関する感受性分析を提供するものである。
BPI機能領域ペプチドあるいはrBPI23によるLPS結合性および中和は、標準化した分析にて
L929細胞の量を減らすのみならず、生成したTNFの量も減らすTHP-1細胞に接触した遊離LP
Sの量を減少せしめる。このように、以下の分析は、本発明のBPI機能領域ペプチドのLPS
結合性および中和能力を評価するための鋭敏な方法を提供する。
10％FCSとビタミンＤを補充したRPMI培地（GIBCO、ロングアイランド、ニューヨーク州
）にてTHP-1細胞を、約150,000細胞／mlの密度になるまで、３日間、攪拌培養した。そし
て、細胞を、150,000細胞／mlの密度で丸底96ウェルカルチャープレートに置き、５ng/ml
のE．coli01113 LPSと共に、FCSとビタミンＤのいずれかを欠いたRPMI培地で、37℃で、
６時間インキュベートした。対照ウェルにも、濃度を約0.1μg/mlから約100μg/mlに変化
させて、rBPI23あるいはBPI機能領域ペプチドを置いた。このインキュベーションの後、
細胞をペレット化するために約600×ｇで遠心分離し、50μｌRPMI／10％FCS中のウェル当
たり50,000のL929細胞を並列的に調製した96ウェル平底培養皿に、50μｌの上清を添加し
た。
皿当たり約100万個の密度になるまで、L929細胞をRPMI／10％FCS培地にて単相増殖させ
、実験前日に１：２に分割し、そして実験当日に約70％の集密になるよう一晩成長させる
。96ウェルプレートに置く20分前に、この70％集密にアクチノマイシンＤを、最終濃度が
１μg/mlになるよう添加する。L929細胞プレートを、哺乳類細胞成長のための標準的条件
下で、THP-1上清と共に、37℃で、16時間（一晩）インキュベートした。3-［（4,5-ジメ
チル）-チオゾール-2-イル］-5-（3-カルボキシメトキシフェニル）-2-（4-スルフォニル
）-2H-テトラゾリウム（分子内塩）を含む２mlのCellTitre96（登録商標）AQeuous溶液（
Promega社、マジソン、ウィスコンシン州）中の100μｌのフェナジンメチルスルフォン酸
を希釈することで調製した20μｌの溶液を各ウェルに添加した。培養基を、37℃で、２−
４時間インキュベートし、そして、490nm（A490）での吸光度を決定するために、分光測
光的に解析した。実験結果を、約10ng/mlから約10mg/mlにまでTNFの量を変化させて作成
した半対数標準曲線と相関させて評価した。
これら実験の結果を、図22a-22hに示した。図22aには、５ng/ml LPSの有無によるL929
細胞の培養におけるA490とTNF濃度との間の関連を示している。これら結果は、分析用培
地中のLPSの有無にかかわらず、A490とTNF濃度との間にはほぼ同じ直線の関係が認められ
た。図22bには、TNFを増量したヘパリンの存在下でL929細胞と共にイキュベートした実験
を示している。これら結果は、１ng/mlと0.1ng/mlの濃度のTNFについて、一定で特徴的な
A490を示しており、このことはTNFによるL929細胞の死滅にヘパリンが影響していないこ
とを示すものである。図22cは、５ng/ml LPSの存在下にてTHP-1培養を表示した濃度でイ
ンキュベートした場合、rBPI21Δcysが、死滅したTNF-媒介L929細胞の量を減少せしめた
ことを示す対照実験を表している。図22dは、L929細胞の死滅分析により測定した、THP-1
細胞によるLPS刺激したTNF生成でのBPIが媒介した阻害を阻害することで、ヘパリンがrBP
I21Δcysと結合するために、LPSと拮抗することを示している。
図22e は、TNFが媒介したL929細胞の死滅分析の測定での、A490とTNFとの標準曲線であ
り、図22gは、約３つの対数（約1000倍）のTNF濃度範囲にわたる半対数記録での、標準曲
線の直線性を示している。図22fは、約100,000THP-1細胞と少なくとも５ng/mlの濃度のLP
Sを用いることで、TNFの検出可能な量が最も容易に作りだせる分析でのTHP-1細胞の依存
性を示している。最後に、図22hは、この分析がLPS刺激に応答したTNFのTHP-1細胞の生成
に依存していること、そして、ヒト組織球リンパ腫細胞（U937：ATCCNo.：CRL1593）が、
THP-1細胞のための分析で用いても、検出可能なTNFを生成しなかったことを示している。
この分析は、本発明のBPI機能領域ペプチドのLPS結合性ならびに中和能力を分析するた
めに用いた。これら結果を、図12に示し、そこでは、試験したペプチドが、TNF媒介したL
929細胞の死滅による測定から、THP-1細胞でのLPS刺激したTNFの生成を阻害する能力があ
ることを示すものである。
Figure 2008101026
 Ｃ．細胞性一酸化窒素生成を用いたBPI機能領域 ペプチドのLPS中和活性スクリーニン
グ分析
BPI機能領域ペプチドの他のLPS中和活性スクリーニング分析を、LPSで処置したマウス
細胞での一酸化窒素生成に関する分析を用いて実施した（Lorsbachet al.，1993，J．Bio
l．Chem．268，1908-1913を参照のこと）。この分析にて、マウスのRAW 264.7細胞（ATCC
受託No．T1B71）を、細菌性LPSで処置した。その細胞を、96ウェルプレートでインキュベ
ートし、そして、γ−インターフェロン、rLBP、胎児ウシ血清（FBSまたは清浄ヒト血清
（NHS）、あるいはrBPI21Δcysの有無の下で、E．coli O113 LPSあるいはチモサンで、２
時間にわたって刺激した。このインキュベーションの後、細胞を新鮮な培地で洗浄し、10
％FCSを含んだ培地で一晩インキュベートした。一酸化窒素は、培地に蓄積した細胞から
放出され、そして自然に窒素に変換される。その窒素は、添加したスルファニルアミドの
一級アミンと反応し、ジゾアニウム塩を形成する。そして、この塩は添加したナフチルエ
チレンジアミンと反応し、赤系アゾ染料を形成する。グリース反応を、室温にて、約10分
間実施した。生成した一酸化窒素の量を、550nmの波長での分光測光による吸光度で決定
したグリース反応の標準曲線から見積もった。
この分析の結果を、図23aから23cに示した。図23aは、γ−インターフェロンの存在下
での一酸化窒素生成の依存性を示している。このインターフェロン効果は、100単位／ml
の濃度で飽和することで認められた。図23bは、精製組換えタンパク質として、あるいは
細胞インキュベーション培地のFBSあるいはNHS補充物の成分のいずれかとして添加したLB
Pの存在に関するLPS刺激した一酸化窒素の依存性を示している。図23cは、30-100ng/mlの
IC50を有する、LPS刺激した一酸化窒素の、rBPI23が媒介した阻害を示している。これら
結果は、この分析が、BPIおよび本明細書に開示したBPI機能領域ペプチドのLPS中和活性
を測定するための簡便で、安価で、生理学的精度の高い分析システムであることを実証し
ている。
BPI機能領域ペプチドを用いて行った分析の結果を、刺激していない細胞による一酸化
窒素のバックグラウドの生成を「NOLPS」と称した図24a-24gに示した。図24aと24bには、
チモサンおよびLPSそれぞれで刺激した一酸化窒素生成のrBPI、rBPI21ΔcysおよびrBPI25
による阻害を示している。チモサン刺激した一酸化窒素生成の阻害は、いずれのBPIタン
パク質濃度でも認められなかった（図24a）。これとは対照的に、LPS刺激した一酸化窒素
の生成は、これらrBPI関連タンパク質とのインキュベーションによる濃度依存的方法にて
阻害された（図24b）。図24c（チモサン）および図24d（LPS）は、BPI.２、BPI.３、BPI.
４、BPI.７およびBPI.14、そして比較のためのrBPI21ΔcysとのRAW264.7細胞のインキュ
ベーションによる一酸化窒素の生成効果を示している。天然BPIにて認められるように、
チモサン刺激による一酸化窒素の生成は、いずれのBPI機能領域ペプチドのとのインキュ
ベーションによっても阻害されなかった（高濃度のBPI.７によるわずかな阻害の可能性を
除く；図24c）。一方で、LPS刺激した一酸化窒素生成は、rBPI21Δcysによって効果的に
阻害されたが、BPI.３とBPI.７ではわずかにしか阻害されなかった（図24d）。
BPI.５、BPI.13、BPI.29およびBPI.30、そして並行して比較するためのrBPI21Δcysを
用いて実験を繰り返した。RAW264.7細胞によるチモサン刺激した一酸化窒素生成は、高濃
度（〜100μg/ml）のBPI.30で阻害されたが、他のBPI機能領域ペプチドならびにrBPI21Δ
cysによる一酸化窒素の生成阻害は認められなかった（図24e）。LPS刺激した一酸化窒素
の生成はrBPI21Δcysによって効率良く阻害され、また本実験にて試験したすべての機能
領域ペプチドにより、様々な、小さな阻害が認められた（図24f）。
BPIタンパク質およびペプチドに関するIC50（すなわち、RAW264.7細胞によるチモサン
あるいはLPS刺激した一酸化窒素の生成が、阻害剤を使用しない場合の半分にまで低減し
た時の阻害剤の濃度）を、これら実験結果から算出し、図24gに示した。BPI.30の場合を
除いて、これら実験でのBPI機能領域ペプチドあるいはrBPI21Δcys、rBPIあるいはrLBPの
いずれについてもチモサン媒介した一酸化窒素の生成の阻害は認められず、チモサン刺激
した一酸化窒素の生成の阻害に関するBPI.30のIC50は、10から100μg/mlの間であった。
この分析にて、BPI.３、BPI.５、BPI.13、BPI.29およびBPI.30は、検出可能なLPS中和レ
ベルを示し、これらペプチドのIC50相対値を図24gに示した。
Ｄ．細胞増殖分析を用いたBPI機能領域ペプチドの LPS中和活性スクリーニング分析
BPI機能領域ペプチドの評価のために、他のLPS中和活性スクリーニング分析を行った。
LPSで処置したマウス細胞での細胞増殖の阻害のためのこの感受性試験は、標準曲線との
併用でヒト血漿中のLPSレベルの定量にも利用できる。
この分析にて、10mMHEPES緩衝液（pH 7.4）、２mMのＬ−グルタミン酸、ペニシリン（100
単位/ml）、ストレプトマイシン（100μg/ml）、0.075％重炭酸ナトリウム、0.15M 2-メ
ルカプトエタノール、および10％胎児ウシ血清（Hyclone社、ローガン、ユタ州）を補充
したRPMI 1640培地（GIBCO社）にて維持したRAW264.7細胞（ATCC受託No．T1B71）を、ま
ず、分析の24時間前に、50単位/ml組換えマウスγ−インターフェロン（Genzyme社、ケン
ブリッジ、マサチューセッツ州）の存在下でのインキュベーションにより誘発した。そし
て、誘発した細胞を機械的に回収し、500×ｇで、４℃で遠心分離し、50mlのRPMI1640培
地（補充物を含まない）に再懸濁し、さらに、遠心分離とRPMI 1640培地（補充物を含ま
ない）への懸濁を行った。これら細胞の数を計測し、２×105細胞/mlの濃度に調整し、そ
の100μｌ分画を96ウェルマイクロ滴定プレートの各ウェルに添加した。血清を含まないR
PMI1640培地での１ng/mlの濃度（この濃度は、LPS濃度を50pg/mlから100ng/ml に変化さ
せた滴定実験による結果から得たものである）である100μl/ウェル分画に添加されたE．
coliO113 LPS（対照標準、Assoc．of CapeGod、ウッズホール、マサチューセッツ州）と
共に、これら細胞を約15時間インキュベートした。このインキュベーションは、25ng/ml
から50μg/mlに濃度を変化させたBPI機能領域ペプチドの有無を含めて実施した。組換え
ヒトBPIを、１μg/mlの濃度での正の対照として用いた。この分析を開始して５時間後に
、１μCi／ウェル［3H］-チミジンの添加により細胞の増殖を定量的に測定した。15時間
のインキュベーションの後、細胞用ハーベスター（InotechBiosystems社、INB-384、試料
加工ならびにフィルター計測システム、ランシン、ミシガン州）を用いて、標識した細胞
をガラス繊維フィルターに回収した。
この分析の結果を、図26a-26cに示した。図26aには、血清成分として、あるいは組換え
LBPとして（１μg/mlの濃度で）反応混合物に添加したLBPの存在下での、RAW264.7細胞増
殖のLPS媒介した阻害の依存性を示している。図26bと26cは、上記分析にて認められたBPI
機能領域ペプチドの挙動パターンを示している。BPI.５は、5.3±0.6μg/mlのEC50（すな
わち、LPSの成長阻害効率が50％に転じる時のペプチド濃度）を示した。BPI.81は、RAW26
4.7細胞に関するLPSの成長阻害効率を好転することはできなかったが、14±0.2μg/mlのI
C50（すなわち、ペプチドを添加せずとも、RAW細胞成長が50％以上阻害する時のペプチド
濃度）の成長阻害を示した。BPI.98は、0.16±0.08μg/mlのEC50と、16.5±1.9μg/mlのI
C50を示した。そして、BPI.86は、0.13±0.04μg/mlのEC50と、37.5±12.5μg/mlのIC50
を示した。この分析で試験したすべてのペプチドの結果を、表13に示した。
Figure 2008101026
Figure 2008101026
 Ｅ．全血でのLPS誘発したTNF生成の阻害に基づくLPS中和活性スクリーニング分析
本発明のBPI機能領域ペプチドのLPS中和活性を、全血に関して以下のようにして分析し
た。健康なヒトから採取した新鮮な血液を、吸引チューブ（ACD社、ラザフォード、ニュ
ージャージー州）に回収した。血液の分画（170μl）を、2.5ng/mlのE．coli0113 LPSを
含んだ10μｌのカルシウムイオンとマグネシウムイオンを欠いたPBSと共に混合し、そし
て、0.5から50μg/mlの範囲で濃度を変化させた本発明によるBPIペプチドの20μｌと共に
混合した。これら混合物を、37℃で、４時間インキュベートし、55μｌの氷冷したカルシ
ウムイオンとマグネシウムイオンを欠いたPBSを添加して反応を停止し、次いで、500×ｇ
で、７分間遠心分離を行った。そして、その上清を汎用のELISAキット（Biokine（登録商
標）ELISATest、T-cellsciences社、ケンブリッジ、マサチューセッツ州）を用いて、TNF
レベルに関して分析を行った。
二つの異なる採取源から得た全血試料を用いた代表的なペプチドに係るこれら実験の結
果を、図27と表14に示した。図27は、BPI機能領域ペプチドBPI.７、BPI.13およびBPI.29
によるTNF阻害の比較と、参照のためのrBPI21Δcysを用いた結果を示している。これら結
果を、IC50として定量して表14に記載し、また上記Ｃ節で記載したRAW264.7細胞による一
酸化窒素生成を用いた分析によるLPS中和活性との比較を行った。
Figure 2008101026
 Ｆ．トリプトファン蛍光消失を用いた LPSおよびヘパリン結合分析
約280nm から290nm、好ましくは、285nmの波長の光で励起すれば、天然のアミノ酸トリ
プトファンは、300nmから400nmの波長の光（すなわち、蛍光）を発する。かような蛍光に
より生じた発光量は、pHおよび緩衝液条件、ならびにタンパク質と他の分子との間の相互
結合作用を含めた条件によって作用されることが知られている。ドメインIIとIIIから誘
導したあるBPI機能領域ペプチドはトリプトファン残基を含んでおり、トリプトファン蛍
光は、本発明のBPI機能領域ペプチドとLPSあるいはヘパリンとの間の相互結合作用を検定
するために用いた。
本発明のBPI機能領域ペプチドのトリプトファン蛍光を、LPSあるいはヘパリンの有無に
よって、SPEXFluorolog蛍光計を用いて決定した。0.25nmのスリット幅で285nmの光で、試
料を励起させた。1.25nmのスリット幅を用いて 300nmから400nmの間にて放出波長を走査
した。約５分間隔で３回にわたって実施した決定値の平均としてデータを蓄積した。循環
式ウォーターバスを用いて、実験中の試料の温度を25℃あるいは37℃に保った。LPSに結
合することでトリプトファン残基固有の蛍光が影響を受けるタンパク質である、カニ内毒
素結合タンパク質（CEBP）を正の対照として用いた。（Wainwrightet al.，1990，Cellul
ar and Molecular Aspects of Endotoxin Reactions．Nowotny etal.，eds.，Elsevier S
cience Publishing B.V.，The Netherlands．pp.315-325を参照のこと）
これら実験の結果を、表15に示した。Kd値は、消失データのスキャットカードタイプの
スターン−フォルマー・プロットにおけるプロット勾配の逆関数として決定した。BPI.10
、BPI.46およびBPI.47に関するデータを比較することで、Kdの減少（LPSへの親和力の増
大を示している）と、蛍光消失率の増大が認められた。これらペプチドの間での相違は、
BPI.10と比較して、BPI.48にて非極性残基での塩基性および極性アミノ酸の置換があるこ
とを意味する。これとは対照的に、ヘパリン結合性のKdが増大しているので、対応して増
大している蛍光消失率は検出されなかった。この結果は、LPS結合と比較して、ヘパリン
結合の部位あるいは性質が根本的に相違するものであることを示唆するものである。
Figure 2008101026
 Ｆ．ヘパリンが媒介したトロンビン時間の伸長の中和分析
ヘパリンが媒介したトロンビン時間の伸長、すなわち、トロンビンと血漿の混合物の凝
固に要する時間に関する、BPI機能領域ペプチドの効果を研究した。治療的に投与された
ヘパリンのような、トロンビン形成の内因性あるいは外因性阻害剤の存在によりトロンビ
ン時間は長くなる。ヘパリンの抗凝固効果を中和する薬剤は、この試験で測定されるトロ
ンビン時間を短くするであろう。
これら実験にて、MLAElextra 800凝固計時器を用いてトロンビン凝固時間を決定した。
再調製した血漿（200μｌ、Sigma Chemical社、No．855-10）を、反応用キュベットにて
、37℃で２分間インキュベートした。トロンビン凝固用試薬（100μｌ、Baxter Diagnost
ics社、B4233-50）を、インキュベーションの後に反応用キュベットに添加し、そして凝
固時間を測定した。血漿の添加に先行して、ヘパリンナトリウム（13μｌ、PBS中の40μg
/ml、SigmaChemical社、H3393）と、例示的なBPI機能領域ペプチド（約0.05μg/mlから約
10μg/mlまでの様々な希釈液の10μl）を反応用キュベットに添加し、トロンビン凝固時
間に関するこれらペプチドの効果を試験した。TCT凝固時間（トロンビン時間）を、表示
したBPIペプチドを用いて測定し、その結果を図28と表16に示した。図28と以下の表16に
示したこれら結果は、トロンビン時間の伸長をもたらすヘパリンが媒介した阻害によって
、試験したBPI機能領域ペプチドがヘパリンを中和したことを実証するものである。この
阻害のIC50を定量し、以下の表16に示した。
Figure 2008101026
 実施例21
Martigel（登録商標）膜基質でのinvivoでのヘパリン /FGF誘発した血管形成の阻害に
基づくヘパリン中和分析
本発明のBPI機能領域ペプチドを、マウスにおけるinvivoでの、ヘパリン誘発した血管
形成を阻害する能力について分析した。液体Martigel（登録商標）（Collaborative Biom
edicalProducts社、ベッドフォード、マサチューセッツ州）を４℃で維持し、Passaniti
et al．（1992，Lab．Invest．67：519-528）に記載されているようにして、液体状態の
ゲルに血管形成因子を添加した。ヘパリン（Sigma社、セントルイス、ミズーリー州）を
、1,250〜10,000単位/mlの範囲の様々な濃度になるように滅菌したPBSに溶解した。組換
え繊維芽細胞成長因子（bhFGF；BACHEMBioscience社、フィラデルフィア、ペンシルベニ
ア州）を、滅菌したPBSで200ng/mlにまで希釈した。2.5μｌの希釈したヘパリン溶液と、
2.5μｌの組換えbhFGFを、マウス注射単位用量当たり0.5mlのMartigel（登録商標）に添
加した。BPI機能領域ペプチドを、実験用動物当たり10μl/0.5mlのMartigel（登録商標）
画分中の0.5〜50μg/ml（最終濃度）の範囲の様々な濃度になるように、このMartigel（
登録商標）混合物に添加した。10μｌの滅菌したPBSを、対照動物に注射したMartigel（
登録商標）画分中のBPI機能領域ペプチドと交換した。
６〜８週齢のオスのC57BL/6Jマウス（Jackson Laboratory、バーハーバー、メイン州）
に、上述したようにして調製したMartigel（登録商標）の0.5mlの画分を、背中の中線に
向けて皮下注射した。注射して７日後、Martigel（登録商標）ゲルを切り出し、500μｌ
のドラブキンの試薬（Sigma社）中に置いた。全タンパク質ならびにヘモグロビン含有量
を、ゲルを機械的に均質化した後にドラブキンの試薬に蓄えられているゲルについて決定
した。全タンパク質レベルを、汎用されているキット（DCProtein Assay、Bio-Rad社、リ
ッチモンド、カリフォルニア州）に組み込まれている、マイクロプレート分析を用いて決
定した。ヘモグロビン濃度は、Sigma Procedure ＃525と、この分析に用いるSigma社（セ
ントルイス、ミズーリー州）から供給された試薬を用いて測定した。ヘモグロビンレベル
は、全タンパク質濃度との相関が認められた。
組織染色のために用いるゲルは、ドラブキンの試薬中に置くよりもむしろ、動物から切
除して直ちにホルマリン固定した。ホルマリン固定したゲルは、凍結切片のために、Tiss
ue-Tek O.C.T.化合物（Miles社、エルクハート、インディアナ州）に埋設した。凍結切片
の薄片を、（Humason，1979，AnimalTissue Techniques，4th Ed．W.H．feeman社、サン
フランシスコ、カリフォルニア州、Ch.9，pp.111-131に記載されているようにして）ヘマ
トキシリンとエオシンで染色した。
本発明のBPI機能領域ペプチドの効果を、BPIペプチドを用いずに調製したMartigel（登
録商標）ゲル薄片での血管形成の阻害に関して、凍結染色した切片について顕微鏡的に観
察した。血管形成の阻害の程度を、BPI機能領域ペプチドを含むゲル薄片にて認められる
標準的な量のヘモグロビンを用いて定量した。
実施例22
慢性炎症疾患：コラーゲン誘発あるいはコラーゲン 反応性モデルでのBPI機能領域ペプ
チドの解析
コラーゲン誘発した関節炎モデルでの効果をみるために、BPI機能領域ペプチドを投与
した。具体的には、Stuart et al．（1982，J．Clin．Invest．69：673-683）の方法に従
って、尾の付け根にウシ・タイプIIコラーゲンの皮内免疫処置することで、マウスに関節
炎を誘発した。一般に、マウスは、コラーゲンで免疫処置してから21日後に関節炎症状を
呈した。処置したマウスの関節炎スコアを、21−25日目のそれぞれに、BPI機能領域ペプ
チド、対照rBPI23あるいはrBPI、あるいは緩衝液のいずれかの用量を尾の静脈から静脈注
射して処置したマウスを、120日の期間にわたって盲目的に評価した。
具体的には、ウシ・タイプIIコラーゲン（Southern Biotechnology Associates社、バ
ーミングハム、イリノイ州）を、約20−25ｇの体重のグループに属するオスのマウス（Mo
use/DBA/1J）に対して、０日目に、尾の付け根に皮内注射（0.1mg／マウス）して投与し
た。BPI機能領域ペプチド、rBPI23およびrBPIを、0.5M塩化ナトリウムと20mM酢酸ナトリ
ウム（pH6.0）を含む緩衝液に溶解し、そして、様々な濃度で投与するためにPBS緩衝液で
希釈した。対照には、PBS緩衝液のみ（0.1ml）を投与した。
コラーゲン誘発した関節炎モデルは、プロタミン硫酸との比較において、BPI機能領域
ペプチドの挙動を評価するためにも用いた。具体的には、上述したようにしてBPIペプチ
ドをPBSに溶解し、そして、様々な濃度で投与した。他の試験物質も以下の用量で投与し
た。すなわち、プロタミン硫酸（SigmaChemical社、セントルイス、ミズーリー州）（0.1
3mg／マウス）、タウマチン（0.12mg／マウス）、およびPBS緩衝液（0.1ml）である。コ
ラーゲンを投与して28から32日目の各日に、尾の静脈に静脈注射することで、試験物質あ
るいは対照物質をマウスの集団に投与した。
BPI 機能領域ペプチドも、Yonget al.，（1988，Microbial Pathogenesis 4：305-310
）の方法に従って、Yersinia anterocolitica反応性関節炎モデルにおける反応性関節炎
を処置するためにも投与した。具体的には、マウスに非敗血症性の関節炎を誘発するよう
に計算した４×108の細菌の用量で予めYersinia anterocolitica cWA 0:8 T2（すなわち
、Yong et al.，前出による有毒プラスミドを欠いている）を静脈注射したDBA/2Jマウス
にBPIペプチドを投与した。マウスの集団には、尾の静脈に静脈注射することで、試験物
質あるいは対照物質を投与した。
Borrelia burgdorferiはライム疾患の病原であり、関節炎に関連し、そして、E．coli
の細胞壁とは異なるが、構造的には共通性があるその細胞壁にLPS-様複合体を有している
。Limulus遊走細胞溶解物（LAL）阻害検定でのB．burgdorferi LPSの阻害における、BPI
機能領域ペプチドを投与することによる効果を決定した。具体的には、実施例４に記載の
方法に従ったLAL分析を実施し、2.5μg/mlのB．burgdorferiz LPSおよび２ng/mlのE．col
i 0113 LPS投与した場合のBPIペプチドの効果を測定した。
実施例23
マウス悪性黒色腫細胞転移モデルでの BPI機能領域ペプチドの解析
BPI機能領域ペプチド、プロタミン、あるいは対照用緩衝液を、マウス悪性黒色腫細胞
転移モデルでの効果を試験するために投与した。具体的には、C57BL/6Jマウスの集団に、
０日目に、尾の静脈に105のB16.F10悪性黒色腫細胞を静脈注射した。様々な濃度のBPI機
能領域ペプチドを、第１、３、６、８、10、13、15、17および19日目に、尾の静脈から投
与した。正の対照としてプロタミン硫酸（0.13mg/マウス）あるいは負の対照としてPBS緩
衝液（0.1ml／マウス）を、対照マウスの集団に対して同様に投与した。実験動物を、20
日目に頸部脱臼によって屠殺し、肺組織を観察した。各肺葉に、気管から３mlの水を注入
して灌流させて膨らませた。表面上の腫瘍小結節を顕微鏡で計測し、マウスの集団当たり
に見つかった腫瘍の数を、統計学上の有意差について解析した。
実施例24
マウス脳毛細血管の内皮細胞増殖分析での BPI機能領域ペプチドの解析
BPI 機能領域ペプチドを、すべての内皮細胞増殖検定での効果について試験した。これ
らの実験のために、Bauer（1989，MicrovascularResearch 37：148-161）に記載されたマ
ウスの脳の毛細血管細胞（EC）を、イーグルの塩、Ｌ−グルタミン酸、および2.2g/lの重
炭酸ナトリウム（GIBCO、グランドアイランド、ニューヨーク州）を含み、加熱して不活
性化した10％胎児子ウシ血清（FCS：IrvineScientific社、イルビン、カリフォルニア州
）と１％ペニシリン／ストレプトマイシン（GIBCO）を足した培地199に移した。融合細胞
の回収を、トリプシン−EDTA（GIBCO）を用いた３分間のトリプシン処理によって実施し
た。増殖分析を、標準平板96ウェル・マイクロタイタープレートに、新たに回収したECを
置いて行った。この分析での各ウェルについて、最終体積を200μl/ウェルに維持した。
各ウェルに、総計４×104個のEC細胞と、様々な濃度のBPIペプチドあるいは対照用緩衝液
が添加された。５％二酸化炭素のインキュベーター内での48時間の培養の後、10μｌの培
地199中の１μCiの［3H］チミジンを、各ウェルに添加した。24時間放射物質を適用させ
た後、トリプシン処理によってEC細胞をガラス微小繊維フィルターに回収し、そして、取
り込まれた［3H］チミジンをガス比例式固相ベータ計測器で定量した。
EC 細胞に関するBPIペプチドの直接的な結合の研究を、集密フラスコから10倍量の細胞を
回収し、そして、トリプシン処理した細胞を12.5mlの培養培地で再懸濁することで実施し
た。次いで、細胞懸濁液の0.5mlを、標準24ウェル組織培養プレートの各ウェルに添加し
、一晩インキュベートした。カルシムとマグネシウムを含む燐酸緩衝化生理食塩水（GIBC
O）中の0.1％ウシ血清アルブミンで、そのプレートを洗浄した。洗浄した後、各ウェルに
0.5mlのBSA/PBSを添加した。EC細胞増殖の濃度依存性阻害を、［3H］チミジンの取り込み
の減少に関して測定した。
実施例25
動物モデルでのBPI機能領域ペプチドの解析
Ａ．マウス内毒素血症モデルでの解析
BPI機能領域ペプチドを、マウス内毒素血症モデルでの効果について試験した。少なく
とも15匹のマウスからなる集団に、LD50の用量（例えば、40mg/kg）で内毒素（例えば、E
．coliO111:B4、Sigma Chemical社、セントルイス、ミズーリー州）の静脈注射によって
投与した。これに続いて、約0.lmg/kgから約100mg/kg、好ましくは、約１から50mg/kgの
範囲の濃度のペプチドの二回目の静脈注射を行った。ペプチドを含まない緩衝液の注射を
、負の対照マウスに対して行った。７日間にわたって実験動物を観察し、死亡率を記録し
た。本発明のペプチドの効果を、ペプチド投与したマウスと対照マウスとの比較において
、内毒素血症に関連する死亡率の減少によって測定した。
Ｂ．マウス腹膜炎モデルでの解析
BPI機能領域ペプチドを、マウス急性腹膜炎モデルでの効果について試験した。少なく
とも15匹のマウスからなる集団に、107個の活性E．coli細菌株O7:K1を含んだ0.5mlを与え
、そして、約0.1mg/kgから約100mg/kgの範囲の濃度のBPI機能領域ペプチドの1.0mlの溶液
で処置した。ペプチドを含まない緩衝液の注射を、負の対照マウスに対して行った。７日
間にわたって実験動物を観察し、死亡率を記録した。効果的なBPI機能領域ペプチドによ
れば、対照マウスとの比較において、試験区マウスの死亡率の減少をもたらした。
実施例26
ヒト内毒素中和モデルでのin vivoでの BPI機能領域ペプチドの治療的使用
細菌性内毒素の静脈注入により内毒素血症にしたヒトにおけるBPI機能領域ペプチドの効
果を調査するために、1994年１月24日に出願された、共同所有に係る、係属中の米国特許
出願No．08/188,221に記載されているようにして、二重盲検法を立案し、そして実施した
。
これまでの開示は、本発明の特定の態様を説明するものであり、そのすべての変更と同
等の改良は、添付の請求の範囲の記載した本発明の趣旨と範疇に属するものであることを
理解されたい。
図1aと1bは、臭化シアンとrBPI23のタンパク質分解断片のHPLC吸収スペクトルを示している。 図1aと1bは、臭化シアンとrBPI23のタンパク質分解断片のHPLC吸収スペクトルを示している。 図２は、rBPI23のタンパク質分解断片のLAL阻害活性の結果を示すグラフである。 図３は、15−マーのBPIペプチドを用いたヘパリン結合分析の結果を示すグラフである。 図４は、15−マーのBPIペプチドを用いたLimulus遊走細胞溶解（LAL）阻害分析の結果を示すグラフである。 図５は、15−マーのBPIペプチドを用いた放射拡散殺菌性分析の結果を示すグラフである。 図６は、ヘパリン結合性分析でのBPI機能領域ペプチドの効果を示すグラフである。 図7aと7bは、トロンビンのATIII/ヘパリン阻害に関するBPI機能領域ペプチドの効果を示すグラフである。 図7aと7bは、トロンビンのATIII/ヘパリン阻害に関するBPI機能領域ペプチドの効果を示すグラフである。 図8aと8bは、LAL阻害分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図9aは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図9bは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図9cは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図9dは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図9eは、E．coli培地分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図9fは、E．coli培地分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図10a、10b、10c、10dおよび10eは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域を結合したペプチドの結果を示すグラフである。 図10a、10b、10c、10dおよび10eは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域を結合したペプチドの結果を示すグラフである。 図10a、10b、10c、10dおよび10eは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域を結合したペプチドの結果を示すグラフである。 図10a、10b、10c、10dおよび10eは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域を結合したペプチドの結果を示すグラフである。 図10a、10b、10c、10dおよび10eは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域を結合したペプチドの結果を示すグラフである。 図11a、11b、11c、11d、11e、11f、11g、11hおよび11iは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11a、11b、11c、11d、11e、11f、11g、11hおよび11iは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11a、11b、11c、11d、11e、11f、11g、11hおよび11iは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11a、11b、11c、11d、11e、11f、11g、11hおよび11iは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11a、11b、11c、11d、11e、11f、11g、11hおよび11iは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11a、11b、11c、11d、11e、11f、11g、11hおよび11iは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11a、11b、11c、11d、11e、11f、11g、11hおよび11iは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11a、11b、11c、11d、11e、11f、11g、11hおよび11iは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11a、11b、11c、11d、11e、11f、11g、11hおよび11iは、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11jと11kは、培養培地で成長した細菌細胞に関する殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11jと11kは、培養培地で成長した細菌細胞に関する殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11lは、ヒトの血清で行った殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドBPI.30の結果を示すグラフである。 図11mと11nは、グラム陽性細胞を用いた放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11mと11nは、グラム陽性細胞を用いた放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11oは、S．aureus細胞を用いた、ゲンタマイシンとバンコマイシンとの比較における、放射拡散殺菌性分析でのBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11pと11qは、培養培地で成長したC．albicans細胞を用いた細胞毒性分析におけるBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図11pと11qは、培養培地で成長したC．albicans細胞を用いた細胞毒性分析におけるBPI機能領域ペプチドの結果を示すグラフである。 図12a、12b、12c、12d、12e、12fおよび12gは、BPI機能領域ペプチドを用いたヘパリン中和分析の結果を示すグラフである。 図12a、12b、12c、12d、12e、12fおよび12gは、BPI機能領域ペプチドを用いたヘパリン中和分析の結果を示すグラフである。 図12a、12b、12c、12d、12e、12fおよび12gは、BPI機能領域ペプチドを用いたヘパリン中和分析の結果を示すグラフである。 図12a、12b、12c、12d、12e、12fおよび12gは、BPI機能領域ペプチドを用いたヘパリン中和分析の結果を示すグラフである。 図12a、12b、12c、12d、12e、12fおよび12gは、BPI機能領域ペプチドを用いたヘパリン中和分析の結果を示すグラフである。 図12a、12b、12c、12d、12e、12fおよび12gは、BPI機能領域ペプチドを用いたヘパリン中和分析の結果を示すグラフである。 図12a、12b、12c、12d、12e、12fおよび12gは、BPI機能領域ペプチドを用いたヘパリン中和分析の結果を示すグラフである。 図13は、BPIドメインIIペプチドBPI.２（BPI配列のアミノ酸配列85−99；配列番号：７）の構造を示す概略図である。 図14は、BPIドメインIIIペプチドBPI.11（BPI配列のアミノ酸配列148−161；配列番号：13）の構造を示す概略図である。 図15a、15b、15c、15dおよび15eは、BPI機能領域置換ペプチドを用いたヘパリン結合分析の結果を示すグラフである。 図15a、15b、15c、15dおよび15eは、BPI機能領域置換ペプチドを用いたヘパリン結合分析の結果を示すグラフである。 図15a、15b、15c、15dおよび15eは、BPI機能領域置換ペプチドを用いたヘパリン結合分析の結果を示すグラフである。 図15a、15b、15c、15dおよび15eは、BPI機能領域置換ペプチドを用いたヘパリン結合分析の結果を示すグラフである。 図15a、15b、15c、15dおよび15eは、BPI機能領域置換ペプチドを用いたヘパリン結合分析の結果を示すグラフである。 図16は、様々なBPI機能領域ペプチドを用いたヘパリン結合実験の結果を示すグラフである。 図17aと17bは、合成BPI機能領域ペプチドと放射標識したrBPI23との間でのリピドＡ結合拮抗活性の結果を示すグラフである。 図18は、血液あるいは燐酸緩衝化生理食塩水での合成BPI.10ペプチドと放射標識したrBPI23との間でのリピドＡ結合拮抗活性の結果を示すグラフである。 図19は、合成BPIペプチドであるBPI.７、BPI.29およびBPI.30と放射標識したrBPI23との間でのリピドＡ結合拮抗活性の結果を示すグラフである。 図20aと20bは、BPI機能領域ペプチドと放射標識したrBPI23との間でのリピドＡ結合拮抗活性の結果を示すグラフである。 図21は、HUVEC細胞に予め結合したBPI機能領域ペプチドを用いたリピドＡ結合拮抗活性分析の結果を示すグラフである。 図22a、22b、22cおよび22dは、BPIのLPS中和活性を測定する細胞性TNFの細胞毒性分析に対して様々なパラメーターが影響することを示すグラフである。 図22e、22f、22gおよび22hは、BPIのLPS中和活性を測定する細胞性TNFの細胞毒性分析に対して様々なパラメーターが影響することを示すグラフである。 図23a、23bおよび23cは、γ−インターフェロンの存在下での一酸化窒素ならびにLPS刺激したRAW264.7細胞でのLBPの生成依存性、およびrBPI23を用いた一酸化窒素の生成阻害を示すグラフである。 図23a、23bおよび23cは、γ−インターフェロンの存在下での一酸化窒素ならびにLPS刺激したRAW264.7細胞でのLBPの生成依存性、およびrBPI23を用いた一酸化窒素の生成阻害を示すグラフである。 図23a、23bおよび23cは、γ−インターフェロンの存在下での一酸化窒素ならびにLPS刺激したRAW264.7細胞でのLBPの生成依存性、およびrBPI23を用いた一酸化窒素の生成阻害を示すグラフである。 図24a、24b、24c、24d、24eおよび24fは、チモサンあるいはLPSで刺激したRAW264.7細胞による一酸化窒素の生成阻害能力が反映された BPI機能領域ペプチドによるLPS中和を示すグラフである。 図24a、24b、24c、24d、24eおよび24fは、チモサンあるいはLPSで刺激したRAW264.7細胞による一酸化窒素の生成阻害能力が反映された BPI機能領域ペプチドによるLPS中和を示すグラフである。 図24a、24b、24c、24d、24eおよび24fは、チモサンあるいはLPSで刺激したRAW264.7細胞による一酸化窒素の生成阻害能力が反映された BPI機能領域ペプチドによるLPS中和を示すグラフである。 図24a、24b、24c、24d、24eおよび24fは、チモサンあるいはLPSで刺激したRAW264.7細胞による一酸化窒素の生成阻害能力が反映された BPI機能領域ペプチドによるLPS中和を示すグラフである。 図24a、24b、24c、24d、24eおよび24fは、チモサンあるいはLPSで刺激したRAW264.7細胞による一酸化窒素の生成阻害能力が反映された BPI機能領域ペプチドによるLPS中和を示すグラフである。 図24a、24b、24c、24d、24eおよび24fは、チモサンあるいはLPSで刺激したRAW264.7細胞による一酸化窒素の生成阻害能力が反映された BPI機能領域ペプチドによるLPS中和を示すグラフである。 図24gは、RAW264.7細胞によるチモサンあるいはLPSで刺激した一酸化窒素の生成阻害における合成BPIペプチドのIC50値を示すグラフである。 図25は、三つの機能領域を示すrBPI23の概要である。 図26aは、rLBPの存在に関して、RAW264.7細胞の増殖のLPS-介在した阻害の依存性を示すグラフである。 図26bと26cは、実施例20Dの分析にて用いたBPI機能領域ペプチドのパターンを示すグラフである。 図26bと26cは、実施例20Dの分析にて用いたBPI機能領域ペプチドのパターンを示すグラフである。 図27は、実施例20Eの分析にて用いた様々なBPI機能領域ペプチドによる全血でのTNF阻害の比較を示すグラフである。 図28は、様々なBPI機能領域ペプチドを用いた実施例20Gに記載のトロンビン凝固時間分析の結果を示すグラフである。
（配列表）
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Claims (2)

  1. ヒトの殺菌性／透過性が向上したタンパク質（ＢＰＩ）のヘパリン結合性ペプチドの有効量を対象に投与すること
    を含む、ヘパリンの抗凝固効果を中和する方法。
  2. 以下の（ａ）または（ｂ）：
    （ａ）ヒトの殺菌性／透過性が向上したタンパク質（ＢＰＩ）の１７位から４５位のアミノ酸配列によってそのアミノ酸配列が示される、ペプチド；
    （ｂ）（ａ）のアミノ酸配列における１個または数個のアミノ酸の置換、付加、もしくは欠失によって（ａ）のペプチドから誘導される、ペプチド；
    のペプチドであって、該（ａ）および（ｂ）は、ＢＰＩの生物学的活性、すなわち、ヘパリン結合活性またはヘパリン中和活性のうちの少なくとも１つを有する、ペプチド。
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