JP2007068534A - 核酸回収方法、微小流路、並びに核酸回収装置 - Google Patents

Abstract

【課題】カオトロピックイオンの存在下で核酸をシリカに吸着させ、核酸を回収する技術において、核酸回収効率を高くすること。
【解決手段】流路中にシリカマイクロビーズの集積部分が形成され、該部分の内径が０．３２〜１．００ｍｍである微小流路に、カオトロピックイオンで処理した核酸溶液を通過させ、前記シリカマイクロビーズに核酸を吸着させる手順を少なくとも含む核酸回収方法を提供する。また、シリカマイクロビーズの平均粒径は、１０μｍ以下であることことが好ましい。
【選択図】図２

Description

本発明は、核酸回収方法、微小流路、並びに核酸回収装置に関する。より詳細には、流路中にシリカマイクロビーズの集積部分が形成され、該部分の内径が０．３２〜１．００ｍｍである微小流路に、カオトロピックイオンで処理した核酸溶液を通過させる、核酸回収方法、前記微小流路、並びに該微小流路を有する核酸回収装置、などに関する。

近年のゲノム解析の進展などに伴い、遺伝子検査を医療現場などに導入する試みが行われている。遺伝子検査は、生物試料から採取などした核酸について行う検査・解析のことである。遺伝子検査により、遺伝性疾患及びその発症リスク、感染症（病原微生物）、悪性腫瘍などを高精度に検出できる可能性がある。

例えば、人体などから血液や組織を採取し、遺伝子検査を行う場合、血液などの生物試料から、核酸のみを回収・抽出する必要がある。

核酸の回収・抽出方法として、例えば、ＢＯＯＭ法が知られている。ＢＯＯＭ法は、カオトロピック試薬とシリカなどとを組み合わせた核酸抽出技術であり、カオトロピックイオンの存在下で、核酸がシリカ表面に吸着することを利用したものである。

なお、先行文献として、例えば、特許文献１には、シリカに核酸を吸着させる核酸精製方法が、特許文献２には、ガラスビーズに核酸を吸着させる核酸分離方法が、それぞれ記載されている。
特開２００５−１１０５０３号公報 特開２００２−２０９５８０号公報

従来の核酸回収・抽出手段は、シリカなどを、ガラス繊維やメンブレン（膜状物）などに固着する場合が多かった。そのため、シリカ粒子間の空隙が多く、核酸回収効率が低いという課題があった。そこで、本発明では、核酸回収効率を高くすることを、主な目的とする。

本発明では、流路中にシリカマイクロビーズの集積部分が形成され、該部分の内径が０．３２〜１．００ｍｍである微小流路に、カオトロピックイオンで処理した核酸溶液を通過させ、前記シリカマイクロビーズに核酸を吸着させる手順を少なくとも含む、核酸回収方法を提供する。

微小流路中にシリカマイクロビーズの集積部分を形成することにより、シリカ粒子間の空隙を少なくできるため、核酸回収効率を高くできる。加えて、微小流路の内径を０．３２〜１．００ｍｍにし、また、シリカマイクロビーズの平均粒径は、１０μｍ以下にすることにより、核酸回収効率をより高くできる。

上記に加えて、シリカマイクロビーズに、粒径５μｍの場合の比表面積が３２０ｍ^２／ｇ以上のものを用いてもよい。これにより、核酸回収量自体を増大させることができるため、核酸回収効率もさらに高くできる。

上述の手段は、例えば、核酸を供給する流路を備えたＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応）装置、ＤＮＡチップなどに核酸を供給する流路を有する核酸回収装置、などに適用できる。

本発明により、核酸回収効率を高くすることができる。

＜本発明に係る微小流路について＞
本発明に係る微小流路の例について、以下説明する。

本発明に係る微小流路は、内径が０．３２〜１．００ｍｍの部分を少なくとも有し、該部分に、シリカマイクロビーズの集積部分を形成する。

微小流路の上流側から下流側に、核酸を含有する溶液（生物試料など）を通過させる。核酸溶液がカオトロピックイオン溶液で処理されている場合、該領域を通過する際に、集積したシリカマイクロビーズが、核酸を吸着する。

微小流路は、内径が０．３２〜１．００ｍｍの部分を少なくとも有していればよい。例えば、フューズドシリカ、プラスチック、金属などのマイクロチューブを用いて、微小流路を形成してもよく、また、シリコンなどの基板表面にエッチングなどを施し、微小流路を形成してもよい。

また、微小流路内の所定箇所に、白金などを蒸着し、流路内に電場を印加できる構成にしてもよい。例えば、生物試料から核酸を回収する場合、試料中にタンパク質など他の荷電物質も含有する。そのため、それらの物質が、シリカ表面に吸着する場合がある。それに対し、例えば、カオトロピックイオン存在下で、流路内に電場を印加することにより、核酸がシリカ表面に吸着したままの状態で、タンパク質などをシリカから遊離させることができる。従って、核酸抽出の精度を高くできる。

シリカマイクロビーズは、ビーズの表面にシリカ粒子が固着したものであればよい。シリカマイクロビーズの平均粒径は１０μｍ以下であることが好ましい。平均粒径１０μｍ以下のマイクロビーズを用いることにより、微小粒子内へ充填できるマイクロビーズの量を増やすことができ、また、表面積も増大するため、核酸の回収効率を高くできる。但し、シリカマイクロビーズの平均粒径が小さすぎる場合、溶液の通過速度が遅くなり、また、目詰まりを起こしやすくなる。

また、シリカマイクロビーズは、比表面積（所定の大きさに換算した場合の表面積）が、大きいほうが、より好適である。比表面積が大きいと、核酸回収量が増大するため、核酸回収効率もさらに高くできる。

＜本発明に係る核酸回収方法について＞
本発明に係る核酸回収方法の例について、以下説明する。

本発明に係る核酸回収方法は、例えば、上述の微小流路に、カオトロピックイオンで処理した核酸溶液を通過させ、前記シリカマイクロビーズに核酸を吸着させる手順を少なくとも含む。

核酸溶液は、核酸を含んでいるものであればよい。血液など、細胞を含有する生物試料の場合、例えば、細胞膜を溶解などさせて、細胞溶解液を調製し、核酸溶液として用いる。その際、前処理として、フィルターなどを用いて、夾雑物を除去してもよい。

カオトロピックイオンを含む溶液中に核酸が存在する場合、核酸は、シリカマイクロビーズに吸着する。そのため、予め、カオトロピックイオンで処理した核酸溶液を、微小流路に注入する必要がある。カオトロピック物質としては、例えば、グアニジン塩（グアニジンチオアシネート、グアニジン塩酸塩など）、ヨウ化カリウム、ヨウ化ナトリウム、ＳＣＮ⁻の塩などが、挙げられる。

核酸溶液やその他の各種試薬を微小流路に導入し、シリカマイクロビーズの集積部分を通過させるための送液手段は、公知の手段を採用でき、特に限定されない。例えば、マイクロポンプなどを用いて、溶液などを吸引又は押出してもよいし、遠心力などを用いてもよい。

シリカマイクロビーズに吸着した核酸を溶出・回収する手段は、公知の手段を採用でき、特に限定されない。この核酸回収方法では、カオトロピックイオンによる処理を行うため、カオトロピックイオンを含まない溶液（純水や所定のバッファーなど）を流すことにより、核酸を遊離・溶出させることができる。その際、例えば、電界を印加して、遊離・溶出した核酸を強制的に正極側に移動させ、核酸を回収してもよい。

実施例１では、微小流路にシリカマイクロビーズの集積部分を形成し、該流路に核酸溶液を通過させ、核酸を回収する場合において、微小流路の口径と核酸の回収効率との相関性を検討した。実験手順の概要は次の通りである。

はじめに、実験に用いる流路系（図１参照）の組み立てを行った。まず、口径の異なる５種類のチューブを準備した。準備したチューブは、口径０．３２ｍｍのフューズドシリカチューブ、同０．５ｍｍのＰＥＥＫ（ポリエチルエーテルケトン、以下同じ）チューブ、同０．７５ｍｍのＰＥＥＫチューブ、同１．０ｍｍのステンレスチューブ、同４．０ｍｍのステンレスチューブ、の５種類である。チューブの長さは、すべて１０ｃｍとした。次に、チューブの上流側（図中右側）に、連結部品を介して、シリンジを接続した。また、カラムの下流側（図中左側）に、連結部品を介して、ルアーロック式ニードルを接続し、ルアーロック式ニードルに、シリンジを取り付けた。チューブのルアーロック式ニードル側には、ポア径２μｍのフィルターを設置した。

続いて、チューブ内にシリカマイクロビーズの集積部分を形成した。まず、中空シリカマイクロビーズ（粒径２〜２０μｍ、Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅｓ社製）を純水中に分散させ、その分散液を上流側のシリンジに入れた。次に、下流側のシリンジを引きながら、上流側のシリンジを押し、チューブ内に前記分散液を注入した。注入された中空シリカマイクロビーズは、ルアーロック式ニードル側のフィルターに堰き止められる。そこで、下流側のシリンジを引きながら、上流側のシリンジを押し、水分を除去し、中空シリカマイクロビーズを、チューブ内の下流側に集積させた。集積部分の長さは、注入する前記分散液の量を調節することにより、制御した。

続いて、核酸溶液を、この流路系に注入した。核酸溶液の調製は、ＲＮｅａｓｙ Ｐｒｏｔｅｃｔ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社製、以下「キット」とする。）のプロトコルに従って行った。まず、１２０−ｍｅｒのデオキシアデノシンからなる合成一本鎖ＤＮＡ（ポリＡ）を、ＲＮａｓｅ−ｆｒｅｅ ｗａｔｅｒ（キット中の試薬、以下同じ）で溶解して、５μｇ／２９μＬのポリＡ溶液を調製した。次に、その溶液に、Ｂｕｆｆｅｒ ＲＬＴ（グアニジン塩を含むカオトロピックイオン試薬、キット中の試薬、以下同じ）を１００μＬ加え、混合した。次に、その溶液に、９９．５％エタノール（和光純薬株式会社製）を７２μＬ加え、混合した。次に、上流側及び下流側のシリンジを用いて、上記と同様の方法により、調製した核酸溶液を、チューブ内に注入した。

続いて、チューブ内を洗浄後、中空シリカマイクロビーズに捕捉された核酸を回収した。まず、キット中のＢｕｆｆｅｒ ＲＰＥ（キット中の試薬、以下同じ）２８０μＬを、上記と同様の方法により、チューブ内に注入し、チューブ内を洗浄した。この手順により、中空シリカマイクロビーズに捕捉された核酸以外の物質を除去した。次に、ＲＮａｓｅ−ｆｒｅｅ ｗａｔｅｒ５０μＬを、上記と同様の方法により、チューブ内に注入し、この流路系を通過させた後、通過した溶液を回収した。この手順により、中空シリカマイクロビーズに捕捉された核酸を、溶液中に溶出した。

そして、分光光度計（２６０ｎｍ）を用いて、回収した核酸溶液の定量を行った。結果を図２及び図３に示す。

図２は、中空シリカマイクロビーズの量と、核酸回収量（定量結果）との相関を示すグラフ、図３は、核酸の回収効率を示すグラフ、である。図２中、横軸（Ａｄｓｏｒｂｅｎｔ ａｍｏｕｎｔ）は、マイクロビーズの量を、縦軸（Ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ａｍｏｕｎｔ）は、回収された核酸量（定量結果）を、図中の各プロットはチューブの口径ごとの結果を、それぞれ示す。図３中、横軸（Ａｄｓｏｒｂｅｎｔ ａｍｏｕｎｔ）は、図２と同様、マイクロビーズの量を、縦軸（Ａｍｏｕｎｔ／Ａｄｓｏｒｂｅｎｔ ａｍｏｕｎｔ）は、マイクロビーズ１ｍｇ当たりの回収核酸量（核酸の回収効率）を、図中の各プロットはチューブの口径ごとの結果を、それぞれ示す。なお、両図は、回収した核酸溶液５０μＬ当たりの結果である。

図２では、用いたマイクロビーズの量と回収核酸量が、ほぼ比例していた。チューブの口径が大きくなると、充填できるマイクロビーズの量も多くなるため、それに比例して、回収核酸量も増加した。一方、図３では、チューブの口径が小さいほど、核酸の回収効率が高かった。

以上の結果は、流路の内径が小さいほど、マイクロビーズ当たりの核酸回収量が大きく、核酸の回収効率が高いことを示す。本実験結果が示す、好適な流路の内径は、０．３２〜１．００ｍｍである。

なお、微小流路の内径を小さくすることにより核酸回収量が増大する理由は、次の通りであると推測する。微小流路の内径を小さくすると、流路の内壁面の面積が減少するため、内壁面近傍を通過する核酸分子数は減少する。そのため、核酸は、シリカ粒子に捕捉されやすくなり、核酸回収量が増大する。また、微小流路の内径を小さくすると、流量や流速が不均一な部分が生じにくいため、核酸分子とシリカ粒子との吸着が均一に行われる。そのため、核酸回収量が増大する。加えて、微小流路の内径を小さくすることにより、流路の断面方向の勾配を減少できるため、核酸分子とシリカ粒子との吸着が均一に行われ、核酸回収量が増大する。

実施例２では、微小流路にシリカマイクロビーズの集積部分を形成し、該流路に核酸溶液を通過させ、核酸を回収する場合において、シリカマイクロビーズの粒径と核酸の回収効率との相関性を検討した。

実験手順の概要は、実施例１と同様である。本実験では、粒径の異なる２種類の中空シリカマイクロビーズを用いた。用いた中空シリカマイクロビーズは、平均粒径１０μｍ（粒径２〜２０μｍ）のものと、平均粒径６０μｍ（粒径１５〜１３５μｍ）のもの、の２種類である。各マイクロビーズを、チューブ内に８６μｇ充填した。チューブは、口径０．７５ｍｍ、長さ１０ｃｍのＰＥＥＫチューブを用いた。

その結果、平均粒径１０μｍのマイクロビーズを用いた場合、核酸を１μｇ程度回収できた。一方、平均粒径６０μｍのマイクロビーズを用いた場合、核酸をほとんど回収できなかった。従って、本実験結果は、微小流路にシリカマイクロビーズの集積部分を形成し、核酸を回収する場合、マイクロビーズの粒径は小さいほうがよいことを示す。本実験結果が示す、好適なマイクロビーズの平均粒径は、１０μｍ以下である。

実施例３では、微小流路にシリカマイクロビーズを充填して核酸を回収する場合における核酸回収効率と、メンブレン（膜状物）にシリカを固着させ核酸を回収する場合における核酸回収効率と、を比較した。

微小流路にシリカマイクロビーズを充填して核酸を回収する場合の実験手順は、実施例１などと同様に行った。まず、内径が１ｍｍのチューブ内に、中空シリカマイクロビーズ（平均粒径１０μｍ）の集積部分を形成した。次に、シリンジを用いて、核酸溶液をチューブ内に注入し、シリカマイクロビーズに核酸を捕捉させた後、ＲＮａｓｅ−ｆｒｅｅ ｗａｔｅｒをチューブ内に注入して、核酸を溶液中に溶出した。

一方、膜状物（メンブレン）にシリカを固着させ核酸を回収する場合の実験手順は、前記ＲＮｅａｓｙ Ｐｒｏｔｅｃｔ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔのプロトコルに従い行った。まず、キットに付属する遠心カラム（ＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉｓｐｉｎ Ｃｏｌｕｍｎ、以下同じ）に核酸溶液を入れた。次に、遠心処理により、遠心カラム内のシリカゲルメンブレンに核酸溶液を通過させ、該メンブレンに核酸を捕捉させた。次に、夾雑物を洗浄後、前記ＲＮａｓｅ−ｆｒｅｅ ｗａｔｅｒをカラム内に注入し、核酸を溶液中に溶出した。

結果を表１に示す。なお、表１には、５０μＬのＲＮａｓｅ−ｆｒｅｅ ｗａｔｅｒを用いて核酸の溶出を行った場合と、同じく２００μＬのＲＮａｓｅ−ｆｒｅｅ ｗａｔｅｒを用いて核酸の溶出を行った場合の、両方の結果を示す。表中、「核酸回収効率」は、核酸回収量を、用いたシリカの量で除した値である。

表１の結果が示す通り、核酸の回収量は、メンブレンにシリカを固着させ核酸を回収する場合のほうが高いが、核酸の回収効率は、口径１ｍｍのチューブに中空シリカマイクロビーズを充填して核酸を回収する場合のほうが高かった。従って、本実験結果は、微小流路にシリカマイクロビーズを充填して核酸を回収することにより、核酸の回収効率を高くでき、かつ、用いるシリカの量を少なくできることを示す。

実施例４では、比表面積の大きなシリカマイクロビーズを用いた場合における核酸回収量について、検討した。実験手順は次の通りである。

比表面積の大きなシリカマイクロビーズとして、「Ｉｎｅｒｔｓｉｌ ＳＩＬ−１５０Ａ」（ジーエルサイエンス社製、以下、「Ｉｎｅｒｔｓｉｌ」とする。）を用いた。Ｉｎｅｒｔｓｉｌは、粒径５μｍの場合の比表面積が３２０ｍ^２／ｇである。

まず、口径０．７５ｍｍのチューブを用いて、実施例１などと同様に流路系を組立て、チューブ内に、０．９８ｍｇのＩｎｅｒｔｓｉｌを注入し、Ｉｎｅｒｔｓｉｌの集積部分を形成した。次に、１２０−ｍｅｒのデオキシアデノシンからなる合成一本鎖ＤＮＡ（ポリＡ）を、ＲＮａｓｅ−ｆｒｅｅ ｗａｔｅｒで溶解した後、Ｂｕｆｆｅｒ ＲＬＴ（グアニジン塩を含むカオトロピックイオン試薬）を２００μＬ加え、次に、７０．０％エタノール（和光純薬株式会社製）を加え、核酸溶液を調製した。次に、その核酸溶液を、チューブ内に注入した後、Ｂｕｆｆｅｒ ＲＰＥを用いて洗浄し、夾雑物を除去した。次に、ＲＮａｓｅ−ｆｒｅｅ ｗａｔｅｒ２００μＬで、核酸を溶出した。そして、回収した核酸溶液を紫外線吸収スペクトルで定量した。なお、対照として、実施例１などで用いた中空シリカマイクロビーズ（比表面積は０．６ｍ^２／ｇであると推定する。）により核酸を回収した場合、及び、前記キットに付属する遠心カラムを用いて核酸を回収した場合、について、同様に定量した。

結果を、図４に示す。図４の縦軸（Ｒｅｃｏｖｅｒｙ）は、核酸回収量を示す。図中、「Ｓｐｉｎ ｃｏｌｕｍｎ」は、前記キットに付属する遠心カラムを用いて核酸を回収した場合の核酸回収量を、「Ｉｎｅｒｔｓｉｌ」は、シリカマイクロビーズとして、Ｉｎｅｒｔｓｉｌを用いた場合の核酸回収量を、「ＨＧＢ」は中空シリカマイクロビーズを用いた場合の核酸回収量を、それぞれ示す。

図４に示す通り、Ｉｎｅｒｔｓｉｌを用いた場合、中空シリカマイクロビーズを用いた場合の約１０倍、遠心カラムを用いた場合の約６倍、核酸を回収できた。従って、本実験結果は、比表面積の大きなシリカマイクロビーズを用いることにより、実施例１などと同じ流路系を用いながら、核酸回収量をさらに大きくできることを示す。

実施例５では、シリカマイクロビーズの集積部分が形成された微小流路を用いて、実際に、生細胞からのｔｏｔａｌＲＮＡの回収を行った。実験手順の概要は次の通りである。

はじめに、生細胞を溶解するとともに、夾雑物を除去した。本実験では、生細胞として、ＨｅＬａ細胞を用いた。まず、細胞数１０^５〜１０^６のＨｅＬａ細胞を、ＰＡＸＧｅｎｅ（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いて溶解し、細胞溶解液を得た。次に、その細胞溶解液を、スピンフィルターを有するカラムに入れ、遠心処理して、夾雑物を除去した（前処理フィルタリング）。前処理フィルタリングは、一回又は二回行った。

続いて、前処理フィルタリングした細胞溶解液を、流路系に注入し、核酸をシリカに吸着させた。流路系は、実施例１などと同様のものを組み立て、用いた。チューブは、口径が０．７５ｍｍのものを用いた。シリカマイクロビーズには、実施例４で用いたＩｎｅｒｔｓｉｌを用いた。本実験では、Ｉｎｅｒｔｓｉｌを０．５ｍｇ充填したものと１．０ｍｇ充填したものの２種類を準備した。前処理フィルタリングした細胞溶解液に、５０μＬエタノールを加えた後、その溶液を、前記流路系に注入した。そして、細胞溶解液に、Ｉｎｅｒｔｓｉｌの集積部分を通過させ、生細胞中に含有した核酸を、Ｉｎｅｒｔｓｉｌに吸着させた。

続いて、シリカに吸着させた核酸を、シリカを洗浄後、溶出し、定量した。まず、チューブ内に、Ｂｕｆｆｅｒ ＲＷ１（前記キット中の試薬、ＱＩＡＧＥＮ社製）７００μＬ、及び、Ｂｕｆｆｅｒ ＲＰＥ２ｍＬを順に通過させ、流路系内を洗浄した。次に、ＲＮａｓｅ ｆｒｅｅ ｗａｔｅｒ２００μＬを通過させ、Ｉｎｅｒｔｓｉｌに捕捉された核酸を、溶液中に溶出した。そして、回収した核酸溶液を紫外線吸収スペクトルで定量した。

なお、対照として、前処理フィルタリングした細胞溶解液から、前記キットに付属する遠心カラムを用いて核酸を回収し、前記と同様の方法により、定量した。

結果を、図５に示す。図５の縦軸（Ｒｅｃｏｖｅｒｙ）は、核酸回収量を示す。図中、「Ｓｐｉｎ Ａｄｓｏｒｂｅｎｔ」は、前記キットに付属する遠心カラムを用いて核酸を回収した場合における核酸回収量を、「０．７５ｍｍ ｃａｐｉｌｌａｒｙ Ａｄｓｏｒｂｅｎｔ ０．５ｍｇ」は、口径０．７５ｍｇのチューブにＩｎｅｒｔｓｉｌを０．５ｍｇ充填した場合における核酸回収量を、「０．７５ｍｍ ｃａｐｉｌｌａｒｙ Ａｄｓｏｒｂｅｎｔ １．０ｍｇ」は、口径０．７５ｍｇのチューブにＩｎｅｒｔｓｉｌを１．０ｍｇ充填した場合における核酸回収量を、それぞれ示す。図中、「１ Ｐｒｅｆｉｌｔｅｒｉｎｇ」は、細胞溶解液の前処理フィルタリングを一回行った場合の核酸回収量を、「２ Ｐｒｅｆｉｌｔｅｒｉｎｇ」は、細胞溶解液の前処理フィルタリングを二回行った場合の核酸回収量を、それぞれ示す。

図５の結果は、微小流路にシリカを充填して核酸を回収する場合でも、比表面積の大きなシリカマイクロビーズを用いることにより、メンブレンにシリカを固着させ核酸を回収する場合と、ほぼ同等にまで、核酸回収量を増大できることを示す。即ち、本実験結果は、実際に生物試料から核酸を回収する場合において、微小流路に比表面積の大きなシリカマイクロビーズを充填することにより、従来の方法とほぼ同等にまで、核酸回収量を増大でき、かつ、核酸回収効率を従来の方法よりも高くできることを示す。

実施例６では、ポア径１０μｍのフィルターを用いて試料の前処理フィルタリングを行ってから、ｔｏｔａｌＲＮＡを回収した。実験手順の概要は次の通りである。

はじめに、試料の調製を行った。試料の調製には、上述のＲＮｅａｓｙ Ｐｒｏｔｅｃｔ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社製）に付属する試薬を用いた。ＨｅＬａ細胞を培養し、キット中のＢｕｆｆｅｒ ＲＬＴを用いて細胞を溶解した後、プロトコルに従って、細胞溶解液を得た。

続いて、その細胞溶解液の前処理フィルタリングを行った。ポア径１０μｍの遠心フィルター付きスピンカラム（「ＭｉｃｒｏＳｐｉｎ Ｅｍｐｔｙ Ｃｏｌｕｍｎｓ」、ＧＥヘルスケア バイオサイエンス株式会社製）に細胞溶解液を入れ、遠心処理して夾雑物を除去した。さらに、それぞれポア径が５μｍの遠心フィルター付きスピンカラム（「Ａｍｉｃｏｎ Ｕｌｔｒａｆｒｅｅ−ＭＣ」、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製）を用いて夾雑物を除去した。

そして、前記キットを用いてｔｏｔａｌＲＮＡを回収し、分光光度計（２６０ｎｍ）を用いて、回収したｔｏｔａｌＲＮＡの定量を行った。

結果を図６及び図７に示す。図６はポア径１０μｍの遠心フィルター付きスピンカラムによるフィルタリング処理を行った場合における全フィルター処理終了後の最終濾過量を示すグラフ、図７は同じくｔｏｔａｌＲＮＡ回収量を示すグラフである。両図中のグラフの横軸は、ポア径１０μｍの遠心フィルターの使用の有無を表す。図６中のグラフの縦軸は最終濾過量（単位：μＬ）を、図７中のグラフの縦軸はｔｏｔａｌＲＮＡ回収量（単位：ｎｇ）を、それぞれ表す。

図６に示す通り、ポア径１０μｍの遠心フィルターを用いて前処理フィルタリングを行った場合、全フィルター処理終了後の最終濾過量が、ポア径１０μｍの遠心フィルターを用いなかった場合と比較して、顕著に増加した。また、ポア径１０μｍの遠心フィルターを用いなかった場合、ポア径５μｍのフィルターに目詰まりが生じていた。これらの結果は、細胞溶解液中には、１０μｍ以上の夾雑物が多く含有することを示す。

また、図７に示す通り、ポア径１０μｍの遠心フィルターを用いて前処理フィルタリングを行った場合、ｔｏｔａｌＲＮＡ回収量が、ポア径１０μｍの遠心フィルターを用いなかった場合と比較して、顕著に増加した。この結果は、ポア径１０μｍの遠心フィルターを用いて前処理フィルタリングを行うことにより、ポア径５μｍのフィルターへの目詰まりを抑制でき、それにより、ｔｏｔａｌＲＮＡの回収効率を高くできることを示す。

従って、本実験結果は、ポア径１０μｍ近傍（例えば、ポア径６μｍ〜２５μｍ）の遠心フィルターなどを用いて試料の前処理フィルタリングを行うことにより、核酸回収効率を増加できることを示唆する。

遺伝子検査などでは、血液などの生物試料から核酸のみを抽出し、抽出した核酸をＤＮＡチップなどの各反応領域に供給し、核酸検出装置などで、解析を行う。本発明を用いることにより、例えば、生物試料をＤＮＡチップなどに供給する流路において、生物試料から核酸を抽出し、その抽出液をＤＮＡチップに供給することができる。即ち、例えば、本発明を核酸供給装置に組み込むことにより、生物試料から抽出した核酸を、より簡易に、かつ、自動処理で、ＤＮＡチップの反応領域などに供給できる。
また、その核酸供給装置自体を、核酸解析装置に組み込むこともできる。これにより、生物試料の供給から遺伝子解析までの一連の操作を自動化できる可能性があり、また、装置の一体化・小型化を実現できる可能性がある。

本発明は、ＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応）を実施可能な装置、例えば、ＰＣＲ装置、シークエンサーなどの装置、にも組み込むことができる。例えば、生物試料に微小流路を通過させ、抽出した核酸溶液を反応領域に供給することにより、ＰＣＲなどの前処理を簡略化できる。また、これにより、一連の操作の自動化や装置の小型化を実現できる。

実施例１などにおいて、実験に用いた流路系を示す模式図。 実施例１において、中空シリカマイクロビーズの量と、核酸回収量（定量結果）との相関を示すグラフ。 実施例１において、核酸の回収効率を示すグラフ。 実施例４において、比表面積の大きなシリカマイクロビーズを用いた場合における核酸回収量を示すグラフ。 実施例５において、ＨｅＬａ細胞から抽出した核酸回収量を示すグラフ。 実施例６において、ポア径１０μｍの遠心フィルター付きスピンカラムによるフィルタリング処理を行った場合における全フィルター処理終了後の最終濾過量を示すグラフ。 実施例６において、ポア径１０μｍの遠心フィルター付きスピンカラムによるフィルタリング処理を行った場合におけるｔｏｔａｌＲＮＡ回収量を示すグラフ。

Claims (8)

1. 流路中にシリカマイクロビーズの集積部分が形成され、該部分の内径が０．３２〜１．００ｍｍである微小流路に、カオトロピックイオンで処理した核酸溶液を通過させ、前記シリカマイクロビーズに核酸を吸着させる手順を少なくとも含む、核酸回収方法。
2. 前記シリカマイクロビーズの平均粒径が１０μｍ以下であることを特徴とする請求項１記載の核酸回収方法。
3. 前記シリカマイクロビーズは、粒径５μｍの場合の比表面積が３２０ｍ^２／ｇ以上であることを特徴とする請求項１記載の核酸回収方法。
4. 前処理として、試料のフィルタリングを行う手順を含む請求項１記載の核酸回収方法。
5. カオトロピックイオンで処理された生物試料から核酸を回収するための微小流路であって、
   流路中にシリカマイクロビーズの集積部分が形成され、該部分の内径が０．３２〜１．００ｍｍである微小流路。
6. 前記シリカマイクロビーズの平均粒径が１０μｍ以下であることを特徴とする請求項５記載の微小流路。
7. 前記シリカマイクロビーズは、粒径５μｍの場合の比表面積が３２０ｍ^２／ｇ以上であることを特徴とする請求項５記載の微小流路。
8. 生物試料をＤＮＡチップに供給する流路中に、請求項５記載の微細流路を有する、核酸供給装置。