JP2006517198A - ヒトまたは動物の組織、血液もしくは体液中のヘプシジンをスクリーニングすることによる疾患の診断方法およびそのための治療的使用 - Google Patents

Abstract

本発明は、プロヘプシジンおよびそのフラグメントを含むヘプシジンタンパク質の非生理的レベルを特徴とする疾患状態を診断するための方法およびキットに関しており、この方法は、被験者から組織または液体サンプルを入手するステップと、このサンプルをヘプシジンタンパク質の中央部分またはＣ末端に対応するポリペプチドに特異的に結合するそれらの抗体またはそのフラグメントと接触させるステップと、抗体およびポリペプチドの結合に基づくアッセイを使用してヘプシジンレベルを定量するステップとを含み、ヘプシジンの非生理的レベルが疾患状態を表示する。本発明は、さらにまた例えばヘプシジンを過剰発現させる、またはダウンレギュレートするためのような遺伝子工学的アプローチにおける用途のための診断方法およびキットに関する。本発明は、さらにヘプシジンおよびヘプシジンのアゴニストもしくはアンタゴニストを用いた被験者の治療による特定の疾患の治療的処置に関する。

Description

関連出願の相互参照
本出願は、２００２年１１月１９日に出願された特許出願第１０／２９９，４８６号の一部継続出願である、２００３年５月１９日に出願された特許出願第１０／４４１，０８９号の一部継続出願である。

鉄は、全ての生体組織の成長および発達にとって不可欠の必須微量元素である。鉄は、ＤＮＡ合成や広範囲に及ぶ代謝工程にとって欠くことができない。しかし、鉄代謝の障害は、鉄欠乏性貧血、ヘモジデリン沈着症、または鉄過剰性疾患であるヘモクロマトーシスを含むがそれらに限定されない、多数の重大な哺乳動物の疾患に関連があるとされてきた（Ｐｉｅｔｒａｎｇｅｌｏ，Ａ．（２００２）Ａｍ Ｊ Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔ．Ｌｉｖｅｒ Ｐｈｙｓｉｏｌ．２８２，Ｇ４０３−４１４；Ａｎｄｒｅｗｓ，Ｎ．Ｃ．（２０００）Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｇｅｎｏｍｉｃｓ Ｈｕｍ．Ｇｅｎｅｔ．１，７５−９８；Ｐｈｉｌｐｏｔｔ，Ｃ．Ｃ．（２００２）Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ ３５，９９３−１００１；Ａｎｄｅｒｓｏｎ ａｎｄ Ｐｏｗｅｌｌ（２００２）Ｉｎｔ Ｊ Ｈｅｍａｔｏｌ ７６，２０３−２０３；Ｂｅｕｔｌｅｒ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｄｒｕｇ−Ｍｅｔａｂ．Ｄｉｓｐｏｓ．２９，４９５−４９９）。生理的条件下では、ヒトの鉄含量は吸収を制御することによって調節される。哺乳動物では、鉄吸収は主として十二指腸および上部空腸において発生し、それにより鉄の貯蔵が生理的に制御される唯一のメカニズムである（Ｐｈｉｌｐｏｔｔ，Ｃ．Ｃ．（２００２）Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ ３５，９９３−１００１）。吸収された後、鉄は循環中トランスフェリンに結合し、身体全体の組織へ送達される。鉄貯蔵の主要部位である肝臓では、トランスフェリンに結合した鉄は伝統的なトランスフェリン受容体（ＴｆＲｌ）（Ｃｏｌｌａｗｎ ｅｔ ａｌ．（１９９０）Ｃｅｌｌ ６３，１０６１−１０７２）を介し、またおそらくより多くの量は、近年同定された同種トランスフェリン受容体２（ＴｆＲ２）（Ｋａｗａｂａｔａ ｅｔ ａｌ．（１９９９）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７４，２０８２６−２０８３２）を介して、受容体媒介性エンドサイトーシスによって細胞内に取り込まれる。このタンパク質の細胞外ドメインは、ＴｆＲｌの対応する部分と４５％同一である（Ｉｄ．）。ＴｆＲ２は、さらにまた二鉄トランスフェリンに結合して鉄の取り込みを促進することもできる。ＴｆＲ２における突然変異は、鉄ホメオスタシスにおけるＴｆＲ２の重要な役割を示す特定の形態のヘモクロマトーシスと関連付けられてきた（Ｐｈｉｌｐｏｔｔ，Ｃ．Ｃ．（２００２）Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ ３５，９９３−１００１；Ｃａｍａｓｅｈｅｌｌａ ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｎａｔ．Ｇｅｎｅｔ．２５，１４−１５；Ｆｌｅｍｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９９，１０６５３−１０６５８）。ＴｆＲ２は主として肝臓内で発現するが（Ｆｌｅｍｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄｉ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９７，２２１４−２２１９；Ｓｕｂｒａｍａｎｉａｍ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．３６，２３５−２３９）、正確な細胞局在はいまだ不明である。

鉄欠乏性である個体では鉄吸収を強化するフィードバック機構が存在するが、鉄過剰であるヒトでは鉄吸収が減少する（Ｐｉｅｔｒａｎｇｅｌｏ，Ａ．（２００２）Ａｍ Ｊ Ｐｈｙｓｉｏｌ Ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔ Ｌｉｖｅｒ Ｐｈｙｓｉｏｌ ２８２，Ｇ４０３−４１４；Ｐｈｉｌｐｏｔｔ，Ｃ．Ｃ．（２００２）Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ ３５，９９３−１００１；Ａｎｄｅｒｓｏｎ ａｎｄ Ｐｏｗｅｌｌ（２００２）Ｉｎｔ Ｊ Ｈｅｍａｔｏｌ ７６，２０３−２０３）。しかし遺伝性ヘモクロマトーシス（ＨＨ）では、この調節機構が損傷していると思われる。鉄過剰にもかかわらず、食事から吸収される鉄の量が上昇し、内臓中の過剰な鉄の蓄積を引き起こし、内臓障害および機能不全を生じさせる。腸が身体の鉄要求量変化に対応する分子機構に関しては十分には理解されていない。これに関連して、近年同定された哺乳動物ペプチドであるヘプシジン（Ｋｒａｕｓｅ ｅｔ ａｌ．（２０００）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ ４８９，１４７−１５０；Ｐａｒｋ ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７６，７８０６−７８１０）は、鉄ホメオスタシスを調節する重要なシグナリング成分であると予測される（Ｐｈｉｌｐｏｔｔ Ｃ．Ｃ．（２００２）Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ ３５，９９３−１００１；Ｎｉｃｏｌａｓ ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９９，４５９６−４６０１）。

ヘプシジンは、主として肝臓で産生する、システインに富む小さなペプチドである。この分子は、腸内の鉄の吸収を調節し、マクロファージからの鉄の遊離を阻害する。ヘプシジンは最初に、抗菌活性を示すヒト血漿および尿中で２５アミノ酸（ａａ）ペプチドとして単離された（Ｋｒａｕｓｅ ｅｔ ａｌ．（２０００）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ ４８９，１４７−１５０；Ｐａｒｋ ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７６，７８０６−７８１０）。引き続いて、鉄によって調節された肝特異的遺伝子を探索して、マウスにおける８３ａａ前駆体ならびにラットおよびヒトにおける８４ａａ前駆体をコードするヘプシジンｃＤＮＡが同定された（Ｐｉｇｅｏｎ ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７６，７８１１−７８１９）。ヒトヘプシジンのｃＤＮＡ構造は、ヒトヘプシジンが８４アミノ酸プレプロペプチドとして翻訳され、アミノ末端で６０アミノ酸残基プロヘプシジンペプチドへプロセシングされ、さらに２５アミノ酸ヘプシジンペプチドにプロセシングされることを示唆している（Ｐａｒｋ ｅｔ ａｌ．（２００１））。

ヘプシジンの発現は、ｈｆｅ−／−マウスにおいて見いだされる表現型と同一の表現型に似ている上流刺激因子２（Ｕｓｆ２）遺伝子の標的破壊に起因する鉄過剰を示すマウスでは無効にされ（Ｎｉｃｏｌａｓ Ｇ，ｅｔ ａｌ（２００１）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９８，８７８０−８７８５）、このペプチドが鉄代謝において極めて重要な役割を果たすという結論を導く。これとは対照的に、ヘプシジンの過剰発現はトランスジェニックマウスにおいて重度の鉄欠乏性貧血を生じさせることが証明されており（Ｎｉｃｏｌａｓ ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９９，４５９６−４６０１）、これはヘプシジンが鉄ホメオスタシスの主要な調節因子であることを示している。さらに、近年の研究は、ｈｆｅノックアウトマウスでは肝ヘプシジン発現が減少し（Ａｈｍａｄ ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｂｌｏｏｄ Ｃｅｌｌｓ Ｍｏｌ Ｄｉｓ ２９，３６１−３６６）、ヘプシジンペプチドにおける突然変異には重度の若年性ヘモクロマトーシスが関連している（Ｒｏｅｔｔｏ ｅｔ ａｌ．（２００３）Ｎａｔ Ｇｅｎｅｔ ３３，２１−２２）ことを示しており、鉄過剰の分子病因論の理解において新しい展望を開いてきた。しかし、ヘプシジンが身体内鉄貯蔵のバランスを取る、または生理的状態および病理的状態において食事性鉄吸収を調整する機構はまだ同定されていない。

この点で、このペプチドの細胞局在および様々な鉄の状態の調節は、ヘプシジン機能の研究において極めて重要である。様々な器官中のヒトおよびマウスヘプシジンｍＲＮＡレベルについてのノーザンブロット分析により、ヘプシジンは主として肝臓内で発現することが明らかになったが（Ｋｒａｕｓｅ ｅｔ ａｌ．（２０００）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ ４８９，１４７−１５０；Ｐａｒｋ ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７６，７８０６−７８１０；Ｎｉｃｏｌａｓ ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９９，４５９６−４６０１）、このペプチドの細胞局在に関するデータは存在していない。

本発明は、ヘプシジンによる哺乳動物細胞の鉄取り込みの調節ならびに鉄代謝の障害に関係する疾患の診断におけるヘプシジンおよび／またはヘプシジン特異的抗体の使用に関する。本発明の診断用検出キットは、ヒトまたは動物いずれかの全集団のスクリーニングおよびこれらの疾患を有する被験者を同定する際に特に有用なことがある。

本発明の１つの態様は、非生理的レベルのヘプシジンを特徴とする疾患状態を診断するための方法であって、前記方法は、被験者から組織もしくは液体サンプルを入手するステップと、このサンプルをヘプシジンの中央部分（アミノ酸２０から５０）またはＣ末端（アミノ酸６５から８４）からのポリペプチドに特異的に結合する抗体もしくはそのフラグメントと接触させるステップと、抗体およびポリペプチドの結合に基づくアッセイを使用してヘプシジンレベルを定量するステップとを含み、非生理的レベルのヘプシジンが疾患状態を表示する。本発明の１つの態様では、ヒト血漿中のプロヘプシジンの検出を可能にする高感受性の診断方法およびキットが確立された。本発明は、上記で言及した疾患の治療中および治療後の進行のパラメーターとしてのヘプシジンを測定するためにヘプシジン抗体ならびに診断方法およびキットを使用できる、広範囲の治療上の展望を開く。

本発明の１つの実施形態は、プロヘプシジンおよびそのフラグメントを含むヘプシジンタンパク質の生成および精製に関する。本発明のまた別の実施形態は、ヘプシジン特異的抗体、またはそれらのフラグメントもしくは変異体に関し、それらは順に、疑わしいヒトまたは動物においてプロヘプシジンを含むヘプシジンタンパク質を検出するためのイムノアッセイに使用できる。

本発明のまた別の態様では、ヘプシジンによる診断方法およびキットは、例えばヘプシジンを過剰発現させる、またはダウンレギュレートするためのような遺伝子工学的アプローチに使用できる。

本発明のさらにまた別の態様では、ヘプシジンは、ヘプシジン、およびヘプシジンのアゴニストもしくはアンタゴニストを用いて患者を治療することによって、本明細書に記載の疾患の治療的処置に使用できる。細胞中への鉄取り込みは、ヘプシジンの濃度を変化させ、鉄またはＴｆＲ２受容体へのヘプシジンの結合を阻害することによって調整できよう。したがって、ヘプシジン、およびヘプシジンのアゴニストもしくはアンタゴニストは鉄代謝の障害が存在する状態の治療において有用な可能性がある。例えば、そのような物質は上記の疾患などの治療において有用なことがある。

本発明のこれらやその他の態様は、以下の図面および詳細な説明を参照することによってより明解に理解されるであろう。

本発明では、ヘプシジンが哺乳動物細胞による鉄取り込みを調節すること、そしてヘプシジンの非生理的発現が鉄代謝の分布に関係する疾患を生じさせることについて記載する。本明細書で使用する用語「ヘプシジン」は、プロヘプシジン、ヘプシジン、もしくはそのフラグメントを意味する。血液中のヘプシジンの生理的濃度は、約５０から約１５０ｎｇ／ｍＬの範囲内である。非生理的濃度はこの範囲より下方または上方である。非生理的量のヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントは、鉄欠乏性貧血などの鉄欠乏症または過剰を生じさせる鉄代謝の障害；ヘモジデリン沈着症およびヘモクロマトーシスもしくは続発性ヘモクロマトーシス、セルロプラスミン欠乏症、低トランスフェリン血症、無トランスフェリン血症などの遺伝性および非遺伝性鉄過剰疾患；不確定原因の鉄過剰疾患、例えば胆管系の疾患、肝疾患、特にアルコール性肝疾患、非アルコール性脂肪肝炎、ならびに慢性Ｂ型およびＣ型肝炎感染症；鉄芽球性貧血、サラセミアなどの鉄を利用する疾患；白血病、赤血球増加症、大赤血球性、小赤血球性もしくは正赤血球性貧血、網状赤血球増加症を伴う貧血、溶血性貧血などの血液学的疾患；感染症および疾患に起因する細網内皮系の障害；炎症および敗血症を含む感染症；癌、肉腫、リンパ腫などの非生理的ヘプシジン濃度を生じさせる免疫学的疾患および腫瘍；アルツハイマー病およびウィルソン病などの神経変性性疾患と関連している。この発見によって、ヘプシジンタンパク質およびそのフラグメントについてのアッセイの開発、それに続くそれらの天然の構成および生理的活性を保持しながらの精製が可能になった。本発明は、一部には、ある種の障害に罹患している患者においてはヒトまたは動物の組織、血液および体液中にヘプシジンタンパク質が存在するという発見に基づいている。

本発明は、これらの障害の患者におけるプロヘプシジンを含むヘプシジンタンパク質がヒトまたは動物の組織、血液および体液中において、これらの障害の患者ではない正常なヒトまたは動物の組織、血液および体液中において見いだされる濃度を大きく超える濃度で存在するという最初の証明を提供する。これは、患者からの組織、血液もしくは体液のサンプルを検査するステップと、ヘプシジンタンパク質および／またはプロヘプシジンの存在および量を検出するステップと、によって達成される。本発明による、組織、血液もしくは体液中のプロヘプシジンもしくはそのフラグメントを含むあらゆるヘプシジンタンパク質の検出および定量的測定は、罹患患者において本明細書に記載の疾患の臨床的診断を裏付け、またその疾患の経過を追跡する際に有用である。本発明は、そのような疾患を安定化させる、そのような疾患の発生を減少させる、または予防するという能力について検査される薬剤を用いた治療の期間中およびそれに続く期間にその疾患をモニタリングする際にも有用である。

説明する目的でのみ、本発明を、（ａ）プロヘプシジンもしくはそのフラグメントを含むヘプシジンタンパク質を生成するステップ、（ｂ）プロヘプシジンもしくはそのフラグメントを含むヘプシジンタンパク質に特異的に結合する抗体を生成するステップ、（ｃ）本明細書に記載の疾患の亜型を診断する、またはモニタリングするための診断アッセイおよびキット、（ｄ）ヘプシジンもしくはプロヘプシジンを過剰発現させる、およびダウンレギュレートするための方法、および（ｅ）本明細書に記載の疾患の治療に関して記載する。

本発明の１つの態様では、本出願人らは生理的状態および関連疾患においてヘプシジンが果たす役割を決定する方法を提供する。本発明のまた別の態様では、本出願人らはヘプシジン前駆体分子の中央部分およびＣ末端に対する特異的抗体を提供する。本発明のこの態様では、これらの抗体を使用してヒトおよびモルモット肝中のヘプシジンの細胞局在が明示された。ＨＨ、慢性腎不全（ＣＲＩ）および腎性貧血（ＲＡ）を有する患者のヒト血清中のプロヘプシジンを検出する高感受性ＥＬＩＳＡを確立した。本出願人らは、プロヘプシジンが肝細胞側底膜を越えて血液中へ遊離させられ、腎排泄を受けることを記載してきた。ヘプシジンの血清中レベルはＨＨおよび慢性ＲＡでは顕著にダウンレギュレートされるので、ヘプシジンはこれらの疾患の病態生理において何らかの役割を果たすはずである。

ヘプシジンタンパク質の産生
血液および体液からのヘプシジンタンパク質の単離
本発明のために、用語「ヘプシジンタンパク質」は、Ｐｉｇｅｏｎ ａｎｄ ｃｏ−ｗｏｒｋｅｒｓ（（２００１）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７６，７８１１−７８１９）によって発表された予測アミノ酸配列と約８０％のアミノ酸配列同一性を共有する哺乳動物ヘプシジンポリペプチドであると定義されている。本明細書で提供するヘプシジンタンパク質には、プロヘプシジン、ヘプシジンおよびそのフラグメントが含まれる。本明細書で提供するヘプシジンタンパク質には、さらにまた精製ヘプシジンタンパク質に類似するがその修飾が自然に提供される、または意図的に組換え作製されるアミノ酸配列を特徴とするタンパク質が含まれる。例えば、当業者であれば、公知の技術を使用してヘプシジンペプチドまたはＤＮＡ配列を修飾することができる。ヘプシジンタンパク質配列における当該の修飾には、コーディング配列中の選択されたアミノ酸残基の変更、置換、取替え、挿入または欠失が含まれてよい。例えば、分子の立体配座を変化させるために１つ以上のシステイン残基が欠失していてよい、または他のアミノ酸と取り替えられてよい。そのような変更、置換、取替え、挿入または欠失のための技術は当業者には周知である（例えば、米国特許第４，５１８，５８４号を参照）。好ましくは、そのような変更、置換、取替え、挿入または欠失は、そのタンパク質の所望の活性を保持する。タンパク質機能にとって重要であるヘプシジンタンパク質の領域は、一本鎖もしくは二本鎖アミノ酸とアラニンとの系統的置換、およびその後の結果として生じたアラニンを含有する変形を生物活性について検査することによるアラニンスキャン法を含む、当分野において知られている様々な方法によって決定できる。このタイプの分析は、生物活性における１つ以上の置換アミノ酸の重要性を決定する。

ヘプシジンタンパク質の産生は、当業者に知られている標準技術を使用して、ヘモクロマトーシス、鉄欠乏性貧血、ヘモジデリン沈着症、肝硬変およびその他の本明細書に記載の疾患に罹患しているヒトまたは動物の組織、血液もしくは体液からヘプシジンタンパク質を単離するステップによって遂行できる。本発明に含まれるそのような技術は、さらにまた適切な培地中での宿主細胞の培養を増殖させるステップと、細胞またはその中で細胞が増殖する培養からヘプシジンタンパク質を精製するステップとを含む、ヘプシジンタンパク質を産生する方法に関する。

当分野において知られている様々な方法を利用すると、本発明の単離ヘプシジンタンパク質のいずれか１つを入手できる。例えば、ヘプシジンタンパク質は、さらにまた、ヘプシジンタンパク質をコードするｃＤＮＡをクローニングおよびシーケンシングすることによって予測されるように、ヘプシジンタンパク質のアミノ酸配列の化学合成（Ｐｉｇｅｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７６，７８１１−７８１９）によって産生することもできる。このヘプシジンタンパク質配列情報を利用すると、当分野において知られている標準ペプチド合成方法を使用して化学合成されるヘプシジンタンパク質のフラグメントの適切なアミノ酸配列を予測することができる。これらの方法には、Ｒ．Ｂｒｕｃｅ Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄ，（Ｅｒｉｃｋｓｏｎ ａｎｄ Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄ，「Ｓｏｌｉｄ−Ｐｈａｓｅ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ」，ｉｎ Ｔｈｅ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ，Ｖｏｌｕｍｅ ２，Ｈ．Ｎｅｕｒａｔｈ ＆ Ｒ．Ｈｉｌｌ（Ｅｄｓ．）Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ ｐｐ．２５５−２５７；Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄ，（１９８６）「Ｓｏｌｉｄ ｐｈａｓｅ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ」，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４２：３４１−３４７）によって考案された固相法が含まれる。固相法では、アミノ酸がポリスチレンビーズなどの不溶性マトリックスに結合している増殖中のペプチド鎖へ段階的に添加される。この方法の主要な利点は、各段階の所望の生成物が急速に濾過かつ洗浄できるビーズに結合させられる点であり、このため中間物を精製する必要が回避される点である。これらの反応は全てが単一容器中で実施されるので、生成物の反復輸送に起因する損失が排除される。この化学的ペプチド合成の固相法は容易に自動化できるので、約５０残基を含有するペプチドを良好な収率および純度で日常的に合成することが実行可能になる（Ｓｔｅｗａｒｔ ａｎｄ Ｙｏｕｎｇ，（１９８４）Ｓｏｌｉｄ Ｐｈａｓｅ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ，２ｎｄ ｅｄ．，Ｐｉｅｒｃｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．；Ｔａｍ ｅｔ ａｌ．，（１９８３）Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１０５：６４４２）。例えば、図９に示したアミノ酸残基１から５０、または３４から８４に対応するヘプシジンタンパク質フラグメントを合成できよう。最も単純なレベルでは、ヘプシジンタンパク質の小ペプチドおよびフラグメントを産生するためには、市販で入手できるペプチド合成装置が特に有用である。フラグメントは、例えば天然ヘプシジンタンパク質に対する抗体を生成する際に有用である。

当業者は、タンパク質を単離する公知の方法にしたがって本発明の単離ヘプシジンタンパク質の１つを容易に入手することができる。これらの方法には、イムノクロマトグラフィー、ＨＰＬＣ、サイズ排除クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、およびイムノアフィニティクロマトグラフィーが含まれるが、それらに限定されない。例えば、Ｓｃｏｐｅｓ，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ：Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ（１９９４）；Ｓａｍｂｒｏｏｋ，ｅｔ ａｌ．，ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ；Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙを参照されたい。

最後に、ヘプシジンタンパク質をさらに精製するためには、例えばペンダントメチル基もしくは他の脂肪族基を有するシリカゲルなどの疎水性ＲＰ−ＨＰＬＣ媒質を使用する１つ以上の逆相高性能液体クロマトグラフィー（ＲＰ−ＨＰＬＣ）ステップを使用できる。実質的に均質な単離組換えヘプシジンタンパク質を提供するためには、上記の精製ステップの一部または全部を様々な組み合わせで使用することができる。このように精製したヘプシジンタンパク質には実質的に他の哺乳動物タンパク質が含まれておらず、本発明によって単離タンパク質であると定義されている。

ヘプシジンタンパク質の配列は、タンパク質シーケンシングのＥｄｍａｎ分解法を使用して同定できる。この方法は、クロマトグラフィー法による引き続いての配列同定法のためにペプチドのアミノ末端から１回に１つのアミノ酸残基を連続的に除去する。例えば、Ｋｏｎｉｇｓｂｅｒｇ ａｎｄ Ｓｔｅｉｎｍａｎ，（１９７７）Ｓｔｒａｔｅｇｙ ａｎｄ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｏｆ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ，ｉｎ Ｎｅｕｒａｔｈ ａｎｄ Ｈｉｌｌ（ｅｄｓ．），Ｔｈｅ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ（３ｒｄ ｅｄ．）Ｖｏｌ．３，ｐｐ．１−１７８，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓに記載された技術を参照されたい。さらに、ヘプシジンタンパク質の配列分析は、（Ｈｅｗｉｃｋ ｅｔ ａｌ．，（１９８１）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ，２５６：７９９０−７９９７；Ｓｔｅｉｎ ａｎｄ Ｕｎｄｅｆｒｉｅｎｄ，（１９８４）Ａｎａｌｙ．Ｃｈｅｍ．，１３６：７−２３）に記載された技術にしたがった自動液相アミノ酸シークエネーターを使用して加速することができ、それによってピコモル量のヘプシジンタンパク質の分析が可能になる。

精製ヘプシジンタンパク質は、ヘプシジンタンパク質に結合する分子を同定するために、当分野において周知のインビトロ結合アッセイに使用できる。これらの分子には、例えば小分子、コンビナトリアル・ライブラリーからの分子、抗体またはその他のタンパク質が含まれるが、それらに限定されない。結合アッセイで同定された分子は、次に当分野において周知のインビボ組織培養または動物モデル中でのアゴニストまたはアンタゴニスト活性について検査される。手短には、分子は複数の細胞培養または動物中で滴定され、次に動物／細胞の細胞死／動物死または長期生存のいずれかについて検査される。

さらに、結合分子は例えばリシンもしくはコレラ菌などの毒素、または細胞にとって毒性である他の化合物と複合している場合がある。毒素結合分子複合体は次に、ヘプシジンタンパク質に対する結合分子の特異性によって腫瘍または他の細胞を標的とされる。

組換えヘプシジンタンパク質のクローニングおよび発現
他の実施形態では、ヘプシジンタンパク質の産生は組換えＤＮＡ工学技術によって達成できる。例えば、適切なヘプシジンヌクレオチドのコーディング配列は、適切な宿主細胞中で合成する、クローニングする、および発現させることができる。ヘプシジンタンパク質をコードするＤＮＡ配列は知られているので（Ｐｉｇｅｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７６，７８１１−７８１９）、ヘモクロマトーシス、鉄欠乏性貧血、ヘモジデリン沈着症、肝硬変および本明細書に記載の他の疾患に罹患しているヒトまたは動物患者由来の肝組織から調製したｃＤＮＡライブラリーを特定のヘプシジンタンパク質ｃＤＮＡについてスクリーニングするためのＤＮＡプローブは、当分野において知られている標準方法によって合成することができる。これらのＤＮＡプローブはさらに、当業者には周知の方法を使用してこれらのｃＤＮＡライブラリーからヘプシジンタンパク質遺伝子の全ファミリーを単離するために使用できる。例えば、Ｍａｎｉａｔｉｓ ｅｔ ａｌ．，（１９８２）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｎ．Ｙ．，Ｃｈａｐｔｅｒ ７に記載された技術を参照されたい。

ハイブリダイゼーション方法は、標識化混合合成オリゴヌクレオチドプローブを使用することによる組換えクローンのスクリーニングのために有用であり、各プローブは、潜在的に、変性二本鎖ＤＮＡの非均質混合物を含有するハイブリダイゼーションサンプル中の特異的ＤＮＡ配列の完全相補体である。そのようなスクリーニングのために、ハイブリダイゼーションは好ましくは一本鎖ＤＮＡまたは変性二本鎖ＤＮＡのどちらかについて実施される。非特異的結合を回避するように向けられたストリンジェントなハイブリダイゼーション条件を使用することによって、例えば、その完全相補体である混合物中のその一本鎖プローブに対する標的ＤＮＡのハイブリダイゼーションによって特異的ＤＮＡクローンのオートラジオグラフィーによる視認が可能になる（Ｗａｌｌａｃｅ，ｅｔ ａｌ．，（１９８１）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，９：８７９）。

あるいは、そのタンパク質に対する抗体を使用して、少なくとも１つのエピトープを有する本発明のヘプシジンタンパク質に対して発現ライブラリーを間接的にスクリーニングすることができる。そのような抗体はポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体のどちらであってもよく、ヘプシジンタンパク質の存在を表示する発現産物を検出するために使用できる。一般に、λｇｔ１１ライブラリーは、Ｈｕｙｎｈ，ｅｔ ａｌ．，（１９８５）（ｉｎ ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ，Ｄ．Ｍ．Ｇｌｏｖｅｒ，ｅｄ．，１：４９）の方法によって免疫学的に構築かつスクリーニングされる。

ヘプシジンタンパク質をコードする特異的ＤＮＡ配列の発生は、さらにまた、（１）ゲノムＤＮＡからの二本鎖ＤＮＡ配列の単離と、（２）当該タンパク質にとって必要なコドンを提供するためのＤＮＡ配列の化学的製造と、によって入手できる。

ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）技術を利用すると、引き続くヘプシジンタンパク質ｃＤＮＡのクローニングおよび発現のために、ヘプシジンファミリーの個々のメンバーを増幅させることができる（例えば、米国特許第４，６８３，２０２号；第４，６８３，１９５号；第４，８８９，８１８号；Ｇｙｌｌｅｎｓｔｅｎ ｅｔ ａｌ．，（１９８８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ’ｌ Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８５：７６５２−７６５６；Ｏｃｈｍａｎ ｅｔ ａｌ．，（１９８８）Ｇｅｎｅｔｉｃｓ，１２０：６２１−６２３；Ｔｒｉｇｌｉａ ｅｔ ａｌ．，（１９８８）Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ．Ｒｅｓ．，１６：８１５６；Ｆｒｏｈｍａｎ ｅｔ ａｌ．，（１９８８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ’１ Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８５：８９９８−９００２；Ｌｏｈ ｅｔ ａｌ．，（１９８９）Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４３：２１７−２２０を参照）。

ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントのコーディング配列および適切な転写／翻訳制御シグナルを含有する発現ベクターを構築するために、当業者に周知の方法を使用することができる。これらの方法には、インビトロ組換えＤＮＡ技術、合成技術およびインビボ組換え／遺伝子組換え法が含まれる。例えば、Ｍａｎｉａｔｉｓ ｅｔ ａｌ．，１９８２，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｎ．Ｙ．，Ｃｈａｐｔｅｒ １２に記載された技術を参照されたい。

ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントを発現させるためには、様々な宿主発現ベクター系を利用できる。これらにはヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントに対するコーディング配列を含有する組換えバクテリオファージＤＮＡ、プラスミドＤＮＡもしくはコスミドＤＮＡ発現ベクターを用いて形質転換された細菌などの微生物；ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントに対するコーディング配列を含有する組換え酵母発現ベクターを用いて形質転換された酵母；ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントに対するコーディング配列を含有する組換えウイルス発現ベクター（例、バキュロウイルス）を用いて感染させた昆虫細胞系；またはヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントに対するコーディング配列を含有する組換えウイルス発現ベクター（例、アデノウイルス、ワクシニアウイルス）を用いて感染させた動物細胞系が含まれるが、それらに限定されない。

これらのベクターの発現要素は、それらの強度および特異性が相違する。利用される宿主／ベクター系に依存して、構成性および誘導性プロモーターを含む多数の適切な転写および翻訳要素のいずれかを発現ベクターにおいて使用できる。例えば、細菌系中でクローニングすると、バクテリオファージλ、ｐｌａｃ、ｐｔｒｐ、ｐｔａｃ（ｐｔｒｐ−ｌａｃハイブリッドプロモーター）などのｐＬなどの誘導性プロモーターを使用できる。昆虫細胞系中でクローニングすると、バキュロウイルスポリヘドリンプロモーターなどのプロモーターを使用できる。哺乳動物細胞系中でクローニングすると、アデノウイルス後期プロモーターまたはワクシニアウイルス７．５Ｋプロモーターなどのプロモーターを使用できる。組換えＤＮＡまたは合成技術により産生したプロモーターは、さらにまたヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントに対する挿入されたコーディング配列の転写を提供するために使用できる。

酵母では、構成性または誘導性プロモーターを含有する多数のベクターを使用できる。概論については、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ．２，（１９８８）Ｅｄ．Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．，Ｇｒｅｅｎｅ Ｐｕｂｌｉｓｈ．Ａｓｓｏｃ．＆ Ｗｉｌｅｙ Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ Ｃｈ．１３；Ｇｒａｎｔ ｅｔ ａｌ．，（１９８７）Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ａｎｄ Ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ Ｖｅｃｔｏｒｓ ｆｏｒ Ｙｅａｓｔ，ｉｎ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，Ｅｄｓ．Ｗｕ ＆ Ｇｒｏｓｓｍａｎ，（１９８７）Ａｃａｄ．Ｐｒｅｓｓ，Ｎ．Ｙ．，Ｖｏｌ．１５３，ｐｐ．５１６−５４４；Ｇｌｏｖｅｒ，（１９８６）ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ｖｏｌ．ＩＩ，ＩＲＬ Ｐｒｅｓｓ，Ｗａｓｈ．，Ｄ．Ｃ．Ｃｈ．３；ａｎｄ Ｂｉｔｔｅｒ，（１９８７）Ｈｅｔｅｒｏｌｏｇｏｕｓ Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｉｎ Ｙｅａｓｔ，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，Ｅｄｓ．Ｂｅｒｇｅｒ ＆ Ｋｉｍｍｅｌ，Ａｃａｄ．Ｐｒｅｓｓ，Ｎ．Ｙ．，Ｖｏｌ．１５２，ｐｐ．６７３−６８４；およびＴｈｅ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ ｔｈｅ Ｙｅａｓｔ Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ，（１９８２）Ｅｄｓ．Ｓｔｒａｔｈｅｒｎ ｅｔ ａｌ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ，Ｖｏｌｓ．Ｉ ａｎｄ ＩＩを参照されたい。酵母中での相補性アッセイのためには、ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントに対するｃＤＮＡを、酵母２μ円の存在に起因して酵母中で自発的に複製する酵母エピソームプラスミド（ＹＥｐ）内にクローニングすることができる。ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントの配列はＡＤＨもしくはＬＥＵ２などの構成性酵母プロモーターまたはＧＡＬなどの誘導性プロモーターのどちらかの後方でクローニングされてよい（Ｃｌｏｎｉｎｇ ｉｎ Ｙｅａｓｔ，Ｃｈ．３，Ｒ．Ｒｏｔｈｓｔｅｉｎ（１９８６）Ｉｎ ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｖｏｌ．１１，Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ，Ｅｄ．ＤＭ Ｇｌｏｖｅｒ，ＩＲＬ Ｐｒｅｓｓ，Ｗａｓｈ．，Ｄ．Ｃ．）。構築物は、同源ヘプシジンタンパク質ｍＲＮＡまたは酵母遺伝子に対応するヘプシジンタンパク質ｍＲＮＡの５’および３’非翻訳領域を含有していてよい。ＹＥｐプラスミドは高い効率で形質転換し、これらのプラスミドは極度に安定性である。あるいはまた、酵母染色体内への異種ＤＮＡ配列の統合を促進するベクターが使用されてもよい。

ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントを発現させるために使用できる特に良好な発現系は昆虫系である。そのような１つの系では、Ａｕｔｏｇｒａｐｈａ ｃａｌｉｆｏｒｎｉｃａ核多核体病ウイルス（ＡｃＮＰＶ）が異種遺伝子を発現させるためのベクターとして使用される。ウイルスは、Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ細胞中で増殖する。ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントのコーディング配列は、ウイルスの非必須領域（例えばポリヘドリン遺伝子）内にクローニングしてＡｃＮＰＶプロモーター（例えばポリヘドリンプロモーター）の制御下に置くことができる。ポリヘドリン遺伝子の挿入の成功は非閉塞性組換えウイルス（すなわち、ポリヘドリン遺伝子によってコードされたタンパク質性被膜が欠如するウイルス）の産生を生じさせる。これらの組換えウイルスは、次にその中で挿入遺伝子が発現するＳｐｏｄｏｐｔｅｒａ ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ細胞を感染させるために使用される。（例えば、Ｓｍｉｔｈ ｅｔ ａｌ．，（１９８３）Ｊ．Ｂｉｏｌ．，４６：５８６；Ｓｍｉｔｈ、米国特許第４，２１５，０５１号を参照）。さらに、バキュロウイルス／昆虫細胞発現系のための材料および方法は、例えばＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社（米国カリフォルニア州サンディエゴ）（ＭａｘＢａｔ（商標）キット）からのキット形で市販で入手することができ、そのような方法は参照して本明細書に組み込まれるＳｕｍｍｅｒｓ ａｎｄ Ｓｍｉｔｈ，Ｔｅｘａｓ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ Ｓｔａｔｉｏｎ Ｂｕｌｌｅｔｉｎ Ｎｏ．１５５５（１９８７）に記載されているように、当分野において周知である。本明細書で使用するように、本発明のヘプシジンポリヌクレオチドを発現することができる昆虫細胞は形質転換されている。

アデノウイルスを発現ベクターとして使用した場合は、ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントのコーディング配列を後期プロモーターおよび三連リーダー配列などのアデノウイルス転写／翻訳制御複合体へライゲートすることができる。このキメラ遺伝子は次に、インビボまたはインビトロ組換えによってアデノウイルスゲノム内に挿入することができる。ウイルスゲノムの非必須領域（例、領域Ｅ１もしくはＥ３）内への挿入は、感染した宿主中で生育性であり、そしてヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントを発現することができる組換えウイルスを生じさせるであろう。（例えば、Ｌｏｇａｎ ＆ Ｓｈｅｎｋ，（１９８４）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，（ＵＳＡ）８１：３６５５−３６５９を参照）。あるいは、ワクシニア７．５Ｋプロモーターが使用されてもよい。（例えば、Ｍａｃｋｅｔｔ ｅｔ ａｌ．，（１９８２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，（ＵＳＡ）７９：７４１５−７４１９；Ｍａｃｋｅｔｔ ｅｔ ａｌ．，（１９８４）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，４９：８５７−８６４；Ｐａｎｉｃａｌｉ ｅｔ ａｌ．，（１９８２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，７９：４９２７−４９３１を参照）。

挿入されたヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントのコーディング配列を効率的に翻訳するためには、特異的開始シグナルが必要になることがある。これらのシグナルには、ＡＴＧ開始コドンおよび隣接配列が含まれる。それの固有の開始コドンおよび隣接配列を含む全ヘプシジンタンパク質ゲノムが適切な発現ベクター内に挿入されると、追加の翻訳制御シグナルが不要になる可能性がある。しかし、ヘプシジンタンパク質コーディング配列の一部分しか挿入されない場合は、ＡＴＧ開始コドンを含む外因性翻訳制御シグナルが提供されなければならない。さらに、開始コドンは、全挿入物の翻訳を保証するためにヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントのコーディング配列のリーディングフレームと同位相でなければならない。これらの外因性翻訳制御シグナルおよび開始コドンは、天然および合成の両方の様々な起源由来であってよい。発現効率は、適切な転写エンハンサー要素、転写ターミネーターなどを包含することによって強化できる（例えば、Ｂｉｔｔｅｒ ｅｔ ａｌ．，（１９８７）Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌ．，１５３：５１６−５４４を参照）。

さらに、挿入された配列の発現を調節する、または所望の特定方法で遺伝子産物を修飾およびプロセシングする宿主細胞株を選択することができる。ある種のプロモーターによって駆動される発現は、一定の誘導物質（例、メタロチオネインプロモーターに対する亜鉛およびカドミウムイオン）の存在によって上昇させることができる。このため、遺伝子組換えにより作製されたヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントの発現は制御できる。これは、クローン化異種遺伝子のタンパク質産物が宿主細胞にとって致死性である場合は重要である。さらに、タンパク質の機能にとってはタンパク質産物の修飾（例、グリコシル化）およびプロセシング（例、開裂）が重要なことがある。種々の宿主細胞は、タンパク質の翻訳後プロセシングおよび修飾のために特徴的かつ特異的機構を有する。発現した異種タンパク質の正確な修飾およびプロセシングを保証するためには、適切な細胞系または宿主系を選択できる。

ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントのコーディング配列を含有し、そして生物学的に活性なヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントの遺伝子産物を発現する宿主細胞は、少なくとも４種の一般的アプローチによって同定できる。（ａ）ＤＮＡ−ＤＮＡハイブリダイゼーション；（ｂ）「マーカー」遺伝子機能の存在もしくは不在；（ｃ）宿主細胞中のヘプシジンタンパク質ｍＲＮＡ転写体の発現によって測定される転写レベルの評価；および（ｄ）イムノアッセイまたはその生物活性によって測定されるヘプシジンタンパク質遺伝子産物の検出。

第１アプローチでは、発現ベクター内に挿入されたヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントのコーディング配列の存在は、実質的に近年に記載されたように（Ｐｉｇｅｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７６，７８１１− ７８１９）ヘプシジンタンパク質のコーディング配列もしくはその特定部分と相同であるヌクレオチド配列を含むプローブを使用してＤＮＡ−ＤＮＡハイブリダイゼーションによって検出できる。

第２アプローチでは、組換え発現ベクター／宿主系は一定の「マーカー」遺伝子機能（例、チミジンキナーゼ活性、抗体に対する抵抗性、メトトレキセートに対する抵抗性、形質転換表現型、バキュロウイルス中での閉塞体形成など）の存在もしくは不在に基づいて同定および選択することができる。例えば、ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントのコーディング配列をベクターのマーカー遺伝子配列内に挿入すると、マーカー遺伝子機能の不在によってヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントのコーディング配列を含有する組換体を同定できる。あるいは、使用される同一もしくは相違するプロモーターの制御下でヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントのコーディング配列と平行に配置すると、マーカー遺伝子は、ヘプシジンコーディング配列の発現を制御することができる。誘導または選択に反応したマーカーの発現は、ヘプシジンタンパク質コーディング配列の発現を示唆している。

第３アプローチでは、ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントのコーディング領域についての転写活性をハイブリダイゼーションアッセイによって評価できる。例えば、ＲＮＡは実質的に（Ｐｉｇｅｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７６，７８１１−７８１９）に記載されているようにヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントのコーディング配列またはそれらの特定部分と相同であるプローブを使用するノーザンブロットによって単離および分析することができる。あるいは、そのようなプローブに対するハイブリダイゼーションのために宿主細胞の全核酸を抽出およびアッセイすることができる。

第４アプローチでは、ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントの産物の発現は、例えばウェスタンブロット法、放射性免疫沈降法、酵素結合イムノアッセイなどのイムノアッセイによるように免疫学的に評価できる。

ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントを発現する組換体が同定されると、遺伝子産物が分析されなければならない。これはその産物の物理的、免疫学的または機能的特性に基づくアッセイによって達成できる。例えば、本発明の方法には、本発明のヘプシジンポリヌクレオチドを含有する適切な発現ベクターを含有する宿主細胞がコードされたヘプシジンタンパク質の発現を可能にする条件下で培養される、ヘプシジンタンパク質を産生するための工程が含まれる。ヘプシジンタンパク質は、培養から、便宜的には培地から、または宿主細胞から調製された溶解液から回収し、さらに精製することができる。好ましい実施形態には、そのような工程によって産生したタンパク質がそのタンパク質の全長形または成熟形である実施形態が含まれる。

本発明は、本発明の核酸フラグメントまたは本発明の核酸フラグメント変性変異体によってコードされた単離ヘプシジンタンパク質をさらに提供する。「変性変異体」とは、本発明の核酸フラグメント（例、ＯＲＦ）とは核酸配列が相違するが、しかし遺伝コードの縮重のために同一タンパク質配列をコードするヌクレオチドフラグメントを意図する。本発明の好ましい核酸フラグメントは、タンパク質をコードするＯｒｂである。

本発明のヘプシジンタンパク質は、あるいはまたヘプシジンタンパク質を発現するように変化させられた細胞から精製することができる。本明細書で使用するように、細胞は、その細胞が遺伝子操作を通してそれが通常は産生しない、またはその細胞が通常は低レベルで産生するヘプシジンタンパク質を産生するようにさせられた場合に所望のポリペプチドまたはタンパク質を発現するように変化させられる。当業者であれば、本発明のヘプシジンタンパク質を産生する細胞を精製するために組換えまたは合成配列のどちらかを真核細胞または原核細胞内へ導入および発現させるための方法を容易に採用することができる。

本発明のヘプシジンタンパク質は、さらにまたトランスジェニック動物の産物として、例えばヘプシジンタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含有する体細胞または胚細胞を特徴とするトランスジェニックウシ、ヤギ、ブタ、またはヒツジの乳汁の構成成分として発現させることもできる。

ヘプシジンタンパク質は、知られている従来型化学合成によって産生させることもできる。合成手段によって本発明のヘプシジンタンパク質を構築する方法は当業者には知られている。合成法により構築したヘプシジンタンパク質配列は、天然ヘプシジンタンパク質と一次、二次または三次構造および／または立体配座特徴を共有することによって、タンパク質活性を含むそれらと共通する生物学的特性を有する可能性がある。そこで、それらは治療用化合物のスクリーニングおよび抗体を発生させるための免疫学的工程において天然の精製ヘプシジンタンパク質に対する生物学的に活性な、または免疫学的代用物として使用できる。

本発明のヘプシジンタンパク質は、組換えタンパク質を発現させるために適切な培養条件下で形質転換宿主細胞を培養することによって調製することができる。結果として生じる発現したヘプシジンタンパク質は次に、ゲル濾過およびイオン交換クロマトグラフィーなどの知られている精製工程を使用して、そのような培養から（すなわち、培地または細胞抽出液から）精製することができる。ヘプシジンタンパク質の精製は、そのタンパク質に結合する物質を含有しているアフィニティーカラム、コンカナバリンＡ−アガロース、ｈｅｐａｒｉｎ−ｔｏｙｏｐｅａｒｌ（商標）もしくはＣｉｂａｃｒｏｍ ｂｌｕｅ ３ＧＡ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（商標）などの親和性樹脂にわたる１つ以上のカラムステップ、フェニルエーテル、ブチルエーテル、もしくはプロピルエーテルなどの樹脂を使用する疎水性相互作用クロマトグラフィーを含む１つ以上のステップ、またはイムノアフィニティクロマトグラフィーをさらに含むことができる。

あるいは、本発明のヘプシジンタンパク質はさらにまた精製を容易にする形態で発現させることができる。例えば、それはマルトース結合タンパク質（ＭＢＰ）、グルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）またはチオレドキシン（ＴＲＸ）の融合タンパク質などの融合タンパク質として、またはＨｉｓタグとして発現させることができる。そのような融合タンパク質の発現および精製のためのキットは、Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ ＢｉｏＬａｂ社（マサチューセッツ州ベバリー）、Ｐｈａｒｍａｃｉａ社（ニュージャージー州ピスカタウェイ）およびＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社各々から市販で入手できる。ヘプシジンタンパク質はさらにまた１つのエピトープを用いてタグ付けし、引き続いてそのようなエピトープに向けられた特異的抗体を使用することによって精製できる。そのようなエピトープの１つ（「ＦＬＡＧ（登録商標）」）はＫｏｄａｋ社（コネチカット州ニューヘブン）から市販で入手できる。

タンパク質活性の全体または一部（例、ＴｆＲ２受容体への結合、ヘプシジン特異的抗体への結合など）を維持すると予想され、スクリーニングまたは他の免疫学的方法のために有用であるヘプシジンタンパク質／ペプチドの配列のその他のフラグメントおよび誘導体もまた本明細書の開示を前提にすると当業者であれば容易に作製することができる。そのような修飾は本発明によって包含されている。

ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントは、それが遺伝子配列の一部分である全遺伝子配列の発現から生じたのか、またはキメラタンパク質の産生を指示するためにライゲートされる２つ以上の遺伝子配列の結果として生じたのかにはかかわらず免疫反応性のはずである。この反応性は、放射性免疫沈降法、放射性免疫競合法、またはイムノブロットなどの免疫学の標準技術によって明示できる。

ヘプシジンタンパク質もしくはそのフラグメントを定義する抗体の生成
当分野において知られている様々な方法を使用すると、ヘプシジンタンパク質の中央部分（アミノ酸２０から５０）またはエピトープのＣ末端（アミノ酸６５から８４）に対する抗体を産生することができる。ヘプシジン特異的抗体はそれらのエピトープに結合するが、他の知られている配列には結合しない。そのような抗体には、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、キメラ抗体、一本鎖抗体、ＦａｂフラグメントおよびＦａｂ発現ライブラリーが含まれるが、それらに限定されない。抗体を産生させるためには、ウサギ、マウス、ラットなどを含むがそれらに限定されない様々な宿主動物を特定ヘプシジンタンパク質もしくは合成ヘプシジンタンパク質を用いた注射によって免疫にすることができる。免疫学的反応を増加させるためには、宿主の種に依存して、フロイントの（完全および不完全）アジュバント、水酸化アルミニウムなどのミネラルゲル、リゾレシチンなどの界面活性剤、プルロニックポリオール、ポリアニオン、ペプチド、油性エマルジョン、アオガイヘモシアニン、ジニトロフェノール、ならびにＢＣＧ（ｂａｃｉｌｌｅ Ｃａｌｍｅｔｔｅ−Ｇｕｅｒｉｎ）およびｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐａｒｖｕｍなどの潜在的に有用なヒトアジュバントを含むがそれらに限定されない様々なアジュバントを使用できる。

ポリクローナル抗体は、例えばウマ、ウシ、様々な鳥類、ウサギ、マウス、またはラットなどの種々の温血動物から当業者が容易に生成することができる。手短には、ヘプシジンは、フロイントの完全もしくは不完全アジュバントなどのアジュバントの腹腔内、筋肉内、眼内、または皮下注射を通して動物を免疫にするために利用される。数回のブースター免疫後に、血清サンプルが収集され、ヘプシジンに対する反応性について試験される。特に好ましいポリクローナル抗血清は、これらのアッセイの１つでバックグラウンドより少なくとも３倍以上高いシグナルを生じさせるであろう。動物の力価がヘプシジンに対する反応性に関してプラトーに到達すると、週１回の出血、または動物を放血させることのどちらかによってより大量の抗血清を容易に入手できる。

ヘプシジンのペプチドに対するモノクローナル抗体は、培養中の連続的細胞系による抗体分子の産生を提供するいずれかの技術を使用することによって調製できる。これらには、Ｋｏｈｌｅｒ ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，（Ｎａｔｕｒｅ，（１９７５）２５６：４９５−４９７）によって最初に記載されたハイブリドーマ技術、より近年のヒトＢ細胞ハイブリドーマ技術（Ｋｏｓｂｏｒ ｅｔ ａｌ．，（１９８３）Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ Ｔｏｄａｙ，４：７２）およびＥＢＶ−ハイブリドーマ技術（Ｃｏｌｅ ｅｔ ａｌ．，（１９８５）Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ，Ａｌａｎ Ｒ．Ｌｉｓｓ，Ｉｎｃ．，ｐｐ．７７−９６）が含まれるが、それらに限定されない。本発明の追加の実施形態では、ヘプシジンタンパク質／ペプチドに特異的なモノクローナル抗体は、近年の工学技術を利用して無菌動物中に生成することができる（ＰＣＴ／ＵＳ９０／０２５４５）。本発明によると、ヒト抗体を使用でき、そしてヒトハイブリドーマを使用することによって（Ｃｏｔｅ ａｔ ａｌ．，（１９８３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，８０：２０２６−２０３０）またはインビトロでＥＢＶウイルスを用いてヒトＢ細胞を形質転換させることによって（Ｃｏｌｅ ｅｔ ａｌ．，（１９８５）ｉｎ，Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ，Ａｌａｎ Ｒ．Ｌｉｓｓ，ｐｐ．７７−９６）入手できる。実際に、本発明により、「キメラ抗体」の産生のために開発された技術（Ｍｏｒｒｉｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，（１９８４）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，８ １：６８５１−６８５５；Ｎｅｕｂｅｒｇｅｒ ｅｔ ａｌ．，（１９８４）Ｎａｔｕｒｅ，３１２：６０４−６０８；Ｔａｋｅｄａ ｅｔ ａｌ．，（１９８５）Ｎａｔｕｒｅ，３１４：４５２−４５４）は、適切な生物活性を備えるヒト抗体分子由来の遺伝子と一緒に、適切な抗原特異性を備えるマウス抗体分子由来の遺伝子をスプライシングすることによって使用できる。そのような抗体は本発明の結果である。

本発明によると、ヘプシジンタンパク質特異的一本鎖抗体を産生するために一本鎖抗体を産生するために記載された技術（米国特許第４，９４６，７７８号）を適合させることができる。

本発明の追加の実施形態は、ヘプシジンタンパク質／ペプチドに対する所望の特異性を備えるモノクローナルＦａｂフラグメントの迅速かつ容易な同定を可能にするＦａｂ発現ライブラリーを構築するために記載された技術（Ｈｕｓｅ ｅｔ ａｌ．，（１９８９）Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４６：１２７５−１２８１）を利用する。

ヘプシジンタンパク質に対する特異的結合部位を含有する抗体フラグメントは、公知の技術によって生成できる。例えば、そのようなフラグメントには、抗体分子のペプシン消化によって生成できるＦ（ａｂ’）₂フラグメントおよびＦ（ａｂ’）₂フラグメントのジスルフィド架橋を減少させることによって生成できるＦａｂフラグメントが含まれるが、それらに限定されない。

診断アッセイおよびキット
本発明のさらにまた別の目的は、ヘモクロマトーシス、鉄欠乏性貧血、ヘモジデリン沈着症、肝硬変および本明細書に記載のその他の疾患に罹患している個体からヘプシジンタンパク質を検出するための診断アッセイに使用するための試薬を提供することである。

この実施形態の１つの様式では本発明のヘプシジンタンパク質はヘモクロマトーシス、鉄欠乏性貧血、ヘモジデリン沈着症、肝硬変および本明細書に記載のその他の疾患に罹患しているそれらの個体を検出するためのイムノアッセイにおける抗原として使用できる。本発明のヘプシジンタンパク質、ポリペプチドおよび／またはペプチドは、ほんの少数を挙げると、ラジオイムノアッセイ、酵素結合免疫吸着アッセイ、「サンドイッチ」アッセイ、沈降素反応、ゲル拡散免疫拡散アッセイ、凝集アッセイ、蛍光イムノアッセイ、タンパク質Ａイムノアッセイおよび免疫電気泳動法アッセイを含むがそれらに限定されない当分野において知られているいずれかのイムノアッセイシステムで使用できる。米国特許第４，６２９，７８３号およびその中で言及された特許もまた適切なアッセイについて記載している。

本発明によると、様々な形態のヘプシジンタンパク質に対して産生したモノクローナルまたはポリクローナル抗体は、ヘモクロマトーシス、鉄欠乏性貧血、ヘモジデリン沈着症、肝硬変および本明細書に記載のその他の疾患に罹患している患者を診断するために血液、脊髄液またはその他の体液のサンプルに対するイムノアッセイにおいて使用できる。

本発明の１つの実施形態では、血液サンプルは静脈切開によって患者から採取され、ＥＤＴＡなどの抗凝固剤と接触させられ、混合され、６００ｇで１０分間遠心され、血漿が当分野において一般的であるように採取される、または脊髄液サンプルは腰椎穿刺によって患者から採取される。

本明細書に記載の抗体は、組織、血液もしくは体液のサンプル中のヘプシジンタンパク質の存在を決定するために多数の様々なイムノアッセイにおける基本的試薬として使用できる。一般的に述べると、抗体は定性的であっても定量的であろうと、あらゆるタイプのイムノアッセイにおいて使用できる。これには非競合タイプの２サイト・サンドイッチアッセイおよび１サイト・イムノアッセイの両方、ならびに伝統的競合結合アッセイが含まれている。

検出の容易さ、およびその定量的性質のために特に好ましいのは、多数の変形が存在するサンドイッチアッセイまたは二重抗体アッセイであり、その全てが本発明に包含されることが意図されている。

例えば、典型的なフォワードサンドイッチアッセイでは、非標識抗体が例えばマイクロタイタープレートウエルのような固体基質上に固定され、そして検査対象のサンプルが結合した分子と接触させられる。抗体−抗原二元複合体の形成を許容するために十分な期間である適切なインキュベーション時間後、次に検出可能なシグナルを誘導できるレポーター分子で標識された二次抗体が添加され、相違する部位での抗原との結合および抗体−抗原−標識抗体の三元複合体の形成を可能にする十分な時間にわたりインキュベーションが継続される。未反応物質は洗い流され、既知量の抗原を含有するコントロールサンプルとの比較によって定量できるシグナルの観察によって抗原の存在が決定される。フォワードサンドイッチアッセイの変形には、サンプルおよび抗体の両方が結合抗体へ同時に添加される同時アッセイ、または標識抗体および検査対象のサンプルが最初に結合され、インキュベートされ、そして非標識表面結合抗体へ添加される逆サンドイッチアッセイが含まれる。これらの技術は当業者には周知であり、小さな変形の可能性は容易に明白であろう。本明細書で使用する用語「サンドイッチアッセイ」は、基本的２サイト法の全ての変形を包含することが意図されている。

本発明のサンドイッチアッセイについては、唯一の限定因子は両方の抗体がヘプシジンタンパク質に対して相違する結合特異性を有することにある。そこで、多数の組み合わせが考えられる。

より特別な実施例として、典型的なフォワードサンドイッチアッセイでは、一次抗体は固体支持体へ共有的、または受動的のどちらかで結合させられる。固体表面は通常はガラスまたはポリマーであり、最も一般的に使用されるポリマーは、セルロース、ポリアクリルアミド、ナイロン、ポリスチレン、ポリ塩化ビニルまたはポリプロピレンである。固体支持体は、チューブ、ビーズ、ディスクもしくはマイクロプレート、またはイムノアッセイを実施するために適切な任意のその他の表面であってよい。結合工程は、当分野において周知である。結合に続いて、固相−抗体複合体は検査サンプルの調製において洗浄される。検査対象のヘプシジンタンパク質を含有する体液のアリコートが次に固相複合体に添加され、ヘプシジンタンパク質に対して特異的な抗体へ提示されたいずれかのヘプシジンタンパク質の結合を可能にするために十分な時間にわたり２５℃でインキュベートされる。次に二次抗体が固相複合体へ添加され、一次抗体―抗原固相複合体への結合を可能にする十分な追加の時間にわたり２５℃でインキュベートされる。二次抗体はレポーター分子へ結合させられ、レポーター分子の可視シグナルを使用してサンプル中の抗原への二次抗体の結合が表示される。本明細書で使用する用語「レポーター分子」は、その化学的性質によって、抗原結合抗体の検出を許容する分析的に検出可能なシグナルを提供する分子を意味する。検出は、サンプル中の抗原の量の決定を可能にするために少なくとも相当に定量可能でなければならないが、これは絶対的な意味で計算できる、または知られている正常レベルの抗原を含有する標準物質（または一連の標準物質）との比較で行うことができる。

このタイプのアッセイで最も一般的に使用されるレポーター分子は、酵素または蛍光体のどちらかである。酵素イムノアッセイの場合には、酵素は、しばしばグルタルアルデヒドまたは過ヨウ素酸塩によって、二次抗体へコンジュゲートさせられる。しかし容易に認識されるように、極めて広範囲の様々なコンジュゲーション技術が存在しており、当業者には周知である。一般に使用される酵素には、特にホースラディッシュペルオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、β−ガラクトシダーゼおよびアルカリホスファターゼが含まれる。特定酵素と一緒に使用される基質は、対応する酵素による加水分解後に一般に検出可能な変色を産生させるために選択される。例えば、アルカリホスファターゼコンジュゲートと一緒に使用するためにはｐ−ニトロフェニルホスフェートが適切である；ペルオキシダーゼコンジュゲートのためには、１，２−フェニレンジアミンまたはトルイジンが通例使用される。さらにまた、上記の色素原基質以外の蛍光産物を産生する蛍光原基質を使用することもまた可能である。全ての場合に、酵素標識抗体が第１抗体−ヘプシジンタンパク質複合体に添加され、その複合体に結合させられ、そして次に過剰な試薬が洗い流される。次に適切な基質を含有する溶液が抗体−抗原−標識抗体の三元複合体へ添加される。基質は二次抗体に結合した酵素と反応し、定性的可視シグナルを生じさせ、これはさらに通常は分光光度法によって定量すると血清サンプル中に存在する抗原の量の評価を可能にする。

あるいは、フルオレセインまたはローダミンなどの蛍光化合物は、それらの結合能力を変化させずに抗体へ化学結合することもできる。特定波長の光線を用いて照明して活性化させると、蛍光色素標識抗体は光線エネルギーを吸収し、特徴的な長い波長での光線の放射に続いて分子に励起性の状態を誘導する。発光は、光線顕微鏡を用いて可視的に検出できる特徴的な色として現れる。酵素イムノアッセイ（ＥＩＡ）におけるように、蛍光標識抗体は一次抗体−ヘプシジンタンパク質複合体へ結合させられる。未結合試薬を洗浄した後、残っている三次複合体は次に適切な波長の光線に暴露させられ、そして観察された蛍光は抗原の存在を指摘する。免疫蛍光法およびＥＩＡ法はどちらも当分野において極めて良好に確立されており、本発明の方法のためには特に好ましい。しかし、放射性同位体、化学発光または生物発光分子などの他のレポーター分子もまた使用できる。当業者には、必要な使用に適応させるために手順を変化させる方法は容易に明白であろう。

あるいは、ヘプシジンタンパク質を含有するヒトの血液または脊髄液のいずれかである検査対象のサンプルは１サイトイムノアッセイに使用できるが、サンプルは固体基質へ共有的または非共有的のどちらかで付着させられる。非標識抗ヘプシジンタンパク質抗体は固体基質上に結合したサンプルと接触させられる。抗体−抗原二元複合体の形成を許容するために十分な期間である適切なインキュベーション時間後、次に検出可能なシグナルを誘導することのできるレポーター分子で標識された二次抗体が添加され、抗原−抗体−標識抗体の三元複合体の形成を可能にする十分な時間にわたりインキュベーションが継続される。１サイト・イムノアッセイのためには、二次抗体は、当該のヘプシジンタンパク質に対して特異的である抗体と結合できる一般的抗体（すなわち、免疫グロブリンに対する異種抗体、特にレポーター分子に結合した抗−（ＩｇＭおよびＩｇＧ）抗体）であってよい。

ヘプシジン遺伝子（突然変異または正常）は鉄代謝のアッセイに利用できる。この遺伝子は、いずれかの付随分子と共に、もしくは伴わずに、ヒトもしくは動物被験者、健常被験者由来の細胞系もしくは一次細胞中、または他の有機体（齧歯類、昆虫、細菌、両生類など）由来の細胞中で発現する。これらの細胞による鉄の取り込みは、例えば放射性同位体を使用して測定される。さらに、ヘプシジン遺伝子産物への鉄の結合もまた測定できる。そのような実験は、鉄の取り込み、結合、ならびに細胞による、もしくは細胞中の輸送におけるヘプシジン遺伝子およびヘプシジン遺伝子産物の役割を評価するのに役立つ。

治療的処置
本発明の１つの態様では、ヘプシジンによる診断方法およびキットは、例えばヘプシジンを過剰発現する、またはダウンレギュレートするためのような遺伝子工学的アプローチに使用できる。一定の治療用途では、ヘプシジン遺伝子、突然変異ヘプシジン遺伝子、ヘプシジンタンパク質、または突然変異ヘプシジンタンパク質の発現および／または機能をダウンレギュレートするのが望ましい。例えば、鉄が例えばある種の貧血（すなわち、サラセミア、溶血性貧血、輸血）で、身体内の蓄積量が少ない状態では、正常ヘプシジン遺伝子もしくは正常ヘプシジンタンパク質のダウンレギュレーションが望ましい。他方、鉄が身体内に過剰に蓄積されている状態では、突然変異ヘプシジン遺伝子またはヘプシジンタンパク質のダウンレギュレーションが望ましい。

上記のように、正常または突然変異ヘプシジンタンパク質に特異的な抗体を調製できる。そのような抗体は、本明細書に記載の疾患において治療的に使用できる。例えば、突然変異タンパク質に関連する機能が正常ヘプシジンタンパク質機能をアップレギュレートして身体内の鉄の過剰蓄積をもたらす場合に、突然変異または正常ヘプシジン遺伝子の作用を遮断するために使用できる。同様に、抗体は身体内の鉄の過少蓄積を引き起こすヘプシジンタンパク質の作用を遮断するために治療的に使用できる。

同様の方法で、正常または突然変異形のいずれかであるヘプシジン遺伝子は、その遺伝子またはその転写体に対して向けられたアンチセンスオリゴヌクレオチドの使用を通してダウンレギュレートすることができる。上記で考察したように抗体と結び付けて類似の戦略を利用できる。アンチセンスオリゴヌクレオチドの設計に関する考察および使用についての特に貴重な概論については、その開示がこれにより参照して組み込まれるＵｈｌｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９０）Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｒｅｖｉｅｗｓ ９０：５４３−５８４を参照されたい。本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドは、いずれかの知られている化学的オリゴヌクレオチド合成方法によって合成できる。そのような方法は、一般に、例えばＷｉｎｎａｃｋｅｒ Ｃｈｉｒｕｒｇ（１９９２）６３：１４５に記載されている。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、最も有益には市販で入手できるいずれかの自動核酸合成装置を利用して調製される。そのような装置の１つであるＡｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製３８０Ｂ型ＤＮＡ合成装置は、β−シアノエチルホスホロアミダイトの化学的性質を利用する。

ヘプシジン遺伝子に相補的であるＤＮＡの完全ヌクレオチド合成は知られているので、ｃＤＮＡ配列のｍＲＮＡ転写体もまた知られている。したがって、そのような転写体のいずれかの部分とハイブリダイズ可能なアンチセンスオリゴヌクレオチドは、当業者に知られているオリゴヌクレオチド合成方法によって調製できる。本発明の実践ではいずれかの長さのオリゴヌクレオチドを利用できるが、１２塩基より短い配列は標的ｍＲＮＡへハイブリダイズする際に特異性が小さく、酵素消化によってより容易に破壊され、そして酵素消化によって不安定化される可能性がある。したがって、１２ヌクレオチド以上を有するオリゴヌクレオチドが好ましい。長い配列、特に約４０ヌクレオチドを越える配列は、標的細胞による取り込みが低下するために、翻訳を阻害することに有効性がいくらか低い可能性がある。そこで、好ましいのは１２〜４０ヌクレオチド、より好ましいのは１５〜３０ヌクレオチド、最も好ましいのは１８〜２６ヌクレオチドのオリゴマーである。特に最も好ましいのは１８〜２４ヌクレオチドの配列である。

本発明のさらにまた別の態様では、ヘプシジンは、ヘプシジン、ならびにヘプシジンのアゴニストまたはアンタゴニストを用いて患者を治療することによって、本明細書に記載の疾患の治療に使用できる。細胞中の鉄取り込みは、ヘプシジンの濃度を変化させることによって、および／または鉄またはトランスフェリン受容体へのヘプシジン結合を阻害することによって調節できる。したがって、ヘプシジン、およびヘプシジンのアゴニストもしくはアンタゴニストは鉄代謝の障害が存在する状態の治療において有用な可能性がある。例えば、そのような物質はヘモクロマトーシス、神経変性疾患、虚血性脳卒中もしくは外傷を含む虚血性組織損傷、心疾患、および腫瘍、特に皮膚癌、ならびに本明細書に記載のその他の疾患などの状態の治療において有用なことがある。

本発明は、さらにまたヘプシジンを使用する鉄代謝を変調する方法を包含している。特に、本発明は鉄代謝における障害を含有する状態を治療するための方法であって、鉄変調量のヘプシジン、またはヘプシジンの刺激剤、アゴニストもしくはアンタゴニストを投与するステップを含む方法に関する。本発明の方法を使用して治療できる鉄代謝の障害を含む状態には、例えば、ヘモクロマトーシス、神経変性性疾患、虚血性脳卒中もしくは外傷を含む虚血性組織損傷、心疾患、および腫瘍、特に皮膚癌ならびに本明細書に記載のその他の疾患が含まれる。ヘプシジンのアゴニストもしくはアンタゴニストである物質は、その物質がヘプシジンと鉄との、またはヘプシジンとトランスフェリン受容体ＴｆＲｌもしくはＴｆＲ２との結合活性に及ぼす作用、またはその物質がヘプシジンを発現できる細胞中のヘプシジンの発現に及ぼす作用を決定することによって同定でき、この細胞は、それらの表面上でヘプシジンを発現するように遺伝子組換えにより作製された細胞を含む。

このため本発明は、１つの態様で、ヘプシジンのアゴニストもしくはアンタゴニストを同定する方法に関しており、これは、ヘプシジンが鉄に結合できる条件下でヘプシジンのアゴニストもしくはアンタゴニストであることが疑われる物質とヘプシジンおよび鉄とを反応させるステップと、鉄に結合したヘプシジンの量を測定するステップと、鉄と結合したヘプシジンの量をコントロールについて決定した量と比較することによってその物質の作用を決定するステップとを含む。本発明は、さらにまたヘプシジンのアゴニストもしくはアンタゴニストを同定する方法に関しており、この方法は、ヘプシジンがトランスフェリン受容体に結合できる条件下でヘプシジンのアゴニストもしくはアンタゴニストであることが疑われる物質とヘプシジンおよびトランスフェリン受容体とを反応させるステップと、トランスフェリン受容体に結合したヘプシジンの量を測定するステップと、トランスフェリン受容体と結合したヘプシジンの量をコントロールについて決定した量と比較することによってその物質の作用を決定するステップとを含む。

本発明はさらにまた、ヘプシジンのアゴニストもしくはアンタゴニストを同定する方法に関しており、この方法は、ヘプシジンのアゴニストもしくはアンタゴニストであることが疑われる物質とヘプシジンを産生する細胞とを反応させるステップと、細胞によって発現したヘプシジンの量を測定するステップと、ヘプシジンの発現量をコントロールについて決定した量と比較することによってその物質の作用を決定するステップとを含む。本発明はさらにまた、ヘプシジン媒介性鉄取り込みのアゴニストもしくはアンタゴニストを同定する方法に関しており、この方法は、鉄の存在下およびトランスフェリンの不在下においてその表面上でヘプシジンを発現する細胞とヘプシジンのアゴニストもしくはアンタゴニストであることが疑われる物質とをインキュベートするステップと、細胞内への鉄取り込み量を測定するステップと、および細胞内の鉄取り込み量とその物質の不在下でのコントロールインキュベーションからの細胞内の鉄取り込み量とを比較することによってヘプシジン媒介性鉄取り込みのアゴニストもしくはアンタゴニストを同定するステップとを含む。

本発明の一部の実施形態では、ヘモクロマトーシスなどの一次鉄過剰疾患もしくは症候群、または例えば繰り返しの輸血のような二次的原因により引き起こされた他の鉄過剰状態の症状を有する患者において治療使用するためのヘプシジンペプチドが提供される。ヘプシジンペプチドは、全長ヘプシジンまたはヘプシジンの一部のフラグメントであってよい。好ましくは、ヘプシジンペプチドはヘプシジンの２８から４７または７０から８０のアミノ酸残基を含む。ヘプシジンの予測されるアミノ酸配列ならびにゲノムおよびｃＤＮＡ配列は、これによりそれらの全体が参照して組み込まれる（Ｋｒａｕｓｅ ｅｔ ａｌ．，（２０００）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．４８０，１４７−１５０；Ｐｉｇｅｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７６，７８１１−７８１９）に提供された。ヘプシジンタンパク質もしくそのフラグメントは、例えば複合体の形状にあるβ−２−ミクログロブリンと一緒に投与されてよい。一部の実施形態では、約２０アミノ酸より大きいヘプシジンタンパク質はβ−２−ミクログロブリンとの複合体で投与される。

本発明の一部の実施形態では、ヘプシジンタンパク質もしくはトランスフェリン受容体のアゴニストもしくはアンタゴニストが提供される。ヘプシジンポリペプチドのアゴニスト、および／またはトランスフェリン受容体のアンタゴニストは例えば原発性もしくは続発性鉄過剰疾患もしくは症候群の治療において有用であるが、他方ヘプシジンポリペプチドのアンタゴニスト、またはトランスフェリン受容体のアゴニストは例えば貧血症などの鉄欠乏性状態の治療において有用である。他の実施形態では、野生型ヘプシジンタンパク質のアンタゴニストとして機能する突然変異ヘプシジンタンパク質／ペプチドが提供される。アンタゴニストもしくはアゴニストは、トランスフェリン受容体、またはヘプシジンタンパク質の中央部分（アミノ酸２０から５０）もしくはＣ末端領域（アミノ酸６５から８４）に対して向けられた抗体であってよい。本発明の一部の実施形態では、ヘプシジンポリペプチドはトランスフェリン受容体のアンタゴニストとして機能できる。本発明のさらにまた別の実施形態では、ペプチドミメティックは、当分野において周知の技術を使用してヘプシジンタンパク質および／またはトランスフェリン受容体のアンタゴニストもしくはアゴニストとして設計できる。

トランスフェリン受容体のためのリガンドは、アンタゴニストであってもアゴニストであっても、トランスフェリン受容体に結合する能力について本明細書に記載の技術を使用してスクリーニングすることができる。さらに、トランスフェリン受容体へのヘプシジン結合に対する競合は、当分野において周知の技術を使用して実施できる。リガンド、またはより一般的には、ヘプシジンタンパク質に対する結合パートナーは、例えば本明細書に記載の技術を使用して、ヘプシジンポリペプチドのβ−２−ミクログロブリンへの複合体化を阻害する能力についてスクリーニングすることができる。

本発明の一部の実施形態では、トランスフェリンのアゴニストもしくはアンタゴニストは、同様に、患者の肝細胞またはリンパ球などの細胞内に輸送される鉄の量を増加または減少させるために利用される。例えば、薬物、治療薬、アゴニストもしくはアンタゴニストの有効性は、その調節をインビトロ細胞系中でモニタリングされるスクリーニングプログラムにおいて同定できる。様々な突然変異ヘプシジンタンパク質／ペプチドを発現する宿主細胞系は一次スクリーニング系として使用するために適合する。候補薬は、これらの細胞とのインキュベーションおよびヘプシジン遺伝子に依存する細胞機能を測定することによって、または適正なヘプシジンタンパク質のフォールディングまたはプロセシングを測定することによって評価できる。そのようなアッセイは、さらにまたヘプシジン遺伝子機能の研究によって決定されるような受容体様活性、鉄輸送および代謝、遺伝子転写またはその他の上流もしくは下流生物学的機能を測定するステップも必要とすることがある。

あるいは、無細胞系を利用することもできる。精製ヘプシジンタンパク質は、無細胞系中でスクリーニングされる人工の膜もしくは小胞および薬物内で再構成することができる。そのような系はしばしばより便宜的であり、本質的には高スループットタイプのスクリーニングおよび自動化にとってより扱いやすい。

ヘプシジンタンパク質の純度を決定するための基準には、タンパク質科学の分野にとって標準的な基準が含まれる。これらには、Ｎ末端アミノ酸決定法、一次元および二次元ポリアクリルアミドゲル電気泳動法、ならびに銀染色法が含まれる。精製タンパク質はドラッグデザインにおいて役立つように二次および三次構造の決定に関する研究、そして分子の生物学的機能についてのインビトロ研究において使用するために有用である。

本発明の一部の実施形態では、構造の知見および知られているヘプシジンタンパク質の機能相互関係からヘプシジン遺伝子およびヘプシジンタンパク質活性を調節するための薬剤を設計できる。このため、Ｘ線結晶学検査、コンピュータ援用分子モデリング（ＣＡＭＭ）、定量的もしくは定性的構造−活性関係（ＱＳＡＲ）、および類似の工学技術の使用による合理的ドラッグデザインはさらに新薬発見の努力に焦点を合わせることができる。合理的設計は、ヘプシジンタンパク質活性と相互作用してヘプシジンタンパク質活性を修飾できるタンパク質もしくは合成構造の予測を可能にする。そのような構造は、化学合成できる、または生体組織中で発現することができる。このアプローチは、Ｃａｐｓｅｙ ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ Ｈｕｍａｎ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｄｒｕｇｓ，Ｓｔｏｃｋｔｏｎ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８８）において検討されている。さらに、コンビナトリアルライブラリーを設計し、合成し、スクリーニングプログラムにおいて使用できる。

本発明に基づく、またはそれに由来する治療薬を投与するために、改善された輸送、送達、耐性などを提供するために適切な担体、賦形剤、およびその他の物質を調製物中に組み込めることは理解されるであろう。

全ての製薬専門家に知られている処方集では極めて多数の調製物を見いだすことができる。Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，（１５ｔｈ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ，Ｅａｓｔｏｎ，Ｐａ．（１９７５））、特にその中のＢｌａｕｇ，Ｓｅｙｍｏｕｒによる第８７章。これらの調製物には、例えば、粉末、ペースト、軟膏、ゼリー、ろう、オイル、脂質、無水吸収基剤、水中油型もしくは油中水型エマルジョン、カーボワックスエマルジョン（様々な分子量のポリエチレングリコール）、半流動ゲル、およびカーボワックスを含有する半流動混合物が含まれる。

上記の調製物は、調製物中の活性物質がその調製物によって不活化されない、そしてその調製物が生理学的に適合性であることを条件に、本発明による治療および療法において適切な可能性がある。

本発明は、本明細書に記載の実施形態には限定されず、本発明の範囲から逸脱せずに修飾または変更することができる。

ヒト肝組織および組織標本中でのヘプシジンの発現
本研究で使用したヒト肝サンプル（ｎ＝７）は、肝転移を伴う成人被験者における部分的肝切除術後に入手した。健常組織は、免疫組織化学検査のために４％パラホルムアルデヒド中で固定するか、またはＲＴ−ＰＣＲ、ウェスタンブロットおよび免疫蛍光分析のために液体窒素中で急速冷凍した。

モルモット（ｎ＝７）およびマウス（ｎ＝５）に麻酔をかけ、引き続いて頸椎脱臼によって致死させた。肝臓、骨格筋および心臓からの組織標本を切除し、ウェスタンブロット分析のために液体窒素中で急速冷凍するか、またはパラホルムアルデヒド中で固定した。

ペプチド合成、免疫方法、および抗体
公表されたプロヘプシジン配列（Ｋｒａｕｓｅ ｅｔ ａｌ．，（２０００）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．４８０，１４７−１５０；Ｐｉｇｅｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７６，７８１１−７８１９）から、ペプチドであるヘプシジン−（２８−４７）およびヘプシジン−（７０−８４）を、標準Ｆｍｏｃプロトコール（Ｃｅｔｉｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９４），Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１，２９３５−２９３９）を使用してＣ末端アミドとして合成した。これらのペプチドはｍ−マレイミドベンゾイル−Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステルを使用してアオガイヘモシアニンへ結合させ、そして２匹のＳＰＦウサギ（Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ Ｉｆｆａ Ｃｒｅｄｏ）を各ペプチドコンジュゲート（Ｅｕｒｏｇｅｎｔｅｃ社、ベルギー国スラン）により免疫にした。本研究では、ＥＬＩＳＡによって力価を試験した後、ヘプシジン−（７０−８４）に対して向けられた［ＥＧ（１）−ＨｅｐＣ］ならびに各々ヘプシジン−（２８−４７）に対して向けられたＥＧ（１）−ＨｅｐＮおよびＥＧ（２）−ＨｅｐＮの３種の抗血清を使用した（図１）。（ヘプシジン２８−４７：ＰＱＱ ＴＧＱ ＬＡＥ ＬＱＰ ＱＤＲ ＡＧＡ ＲＡ（配列番号３）、ヘプシジン７０−８４：ＣＧＣ ＣＨＲ ＳＫＣ ＧＭＣ ＣＫＴ（配列番号４））。抗血清を生成させるために使用したペプチドエピトープは、ＢＬＡＳＴ Ｐ２探索によって確証されたようにこれまでに報告されたいずれのタンパク質に対しても相同性を提示しなかった。

あるいはマウスＴｆＲ２（ＢｉｏＴｒｅｎｄ社、ドイツ国ケルン）に対するＢＴ−ＴＦＲ２１Ｓ抗体は、例えばヒトＴｆＲ２−αの対応する領域に対して６８％配列相同性を示しているαおよびβアイソフォームへスプライシングしたマウスＴｆＲ２−α（ＴｆＲ２）のマウスの細胞質Ｎ末端に対して産生した。例えばＦｌｅｍｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９７，２２１４−２２１９）を参照されたい。この抗体をウサギにおいて生成し、アフィニティ精製した。

ヒト肝における発現分析
ＲＮＡ単離は、ＤＮＡ消化を含むＱｉａｇｅｎ ＲＮＡｅａｓｙキットを使用して実施した。逆転写（ＲＴ）−ＰＣＲ分析は、以前に記載のとおりに（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９９，６７９６−６８０１；Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．１６１，６５５−６６４）、５−３’方向付けに提示された以下のプライマーおよび仕様ヒトヘプシジン（ＧｅｎＢａｎｋデータベース受託番号ＮＭ０２１１１７５）、ヌクレオチド位置１４７〜１６５および３３８〜３１６に対応する５’−ＣＴＧ ＣＡＡ ＣＣＣ ＣＡＧ ＧＡＣ ＡＧＡＧ−３’（配列番号５）、および５，ＧＧＡ ＡＴＡ ＡＡＴ ＡＡＧ ＧＡＡ ＧＧＧ ＡＧＧ ＧＧ−３’（配列番号６）を使用して実施した。ヌクレオチド位置２４９６〜２５１５および２６９４〜２６７５に対応するヒトＴｆＲ２（＃ＡＦ０６７８６４）、５’−ＧＡＴ ＴＣＡ ＧＧＧ ＴＣＡ ＧＧＧ ＡＧＧ ＴＧ−３’（配列番号７）および５’−（ＧＡＡ ＧＧＧ ＧＣＴ ＧＴＧ ＡＴＴ ＧＡＡ ＧＧ−３’（配列番号８）。９４℃、４分間での初期変性後；反応液には３５サイクルの次の加熱プログラムを受けさせた。９４℃で３０秒間、６０℃で３０秒間、および７２℃で３０秒間；このプログラムの後には最後に７２℃での５分間の鎖延長ステップが続いた。増幅産物は、臭化エチジウム染色した１．８％の８９ｍＭ Ｔｒｉｓ／８９ｍＭホウ酸／２ｍＭ ＥＤＴＡ（ｐＨ ８．３）アガロースゲル上でランさせた。有意なレベルのゲノムＤＮＡの増幅は、適切なコントロールによって排除した。

ＨＥＰＧ２細胞中での発現分析
ヒト肝臓癌ＨｅｐＧ２細胞をＧｅｒｍａｎ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ ａｎｄ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ（ドイツ国ブラウンシュヴァイク）から入手し、１０％（ｖ／ｖ）熱不活化ＦＢＳ、ペニシリン（１００単位／ｍＬ）、およびストレプトマイシン（１００ｍｇ／ｍＬ）を補給したＲＰＭＩ １６４０培地（Ｇｉｂｃｏ社、ドイツ国カールスルーエ）中の５％ ＣＯ₂中において３７℃で増殖させた。細胞は、上記のプライマー仕様を使用してＲＴ−ＰＣＲによって分析した。免疫蛍光アッセイ顕微鏡検査のためにＨｅｐＧ２細胞をメタノール中で４分間かけて固定したガラススライド上で増殖させ、そしてＰＢＳ中の０．５％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を用いて透過処理した。ヘプシジン（１：２０００）およびＴｆＲ２抗体（１：１０００）の６０分間に渡るインキュベーション、およびそれに続くＣｙ−３−結合抗ウサギ抗体（Ｄｉａｎｏｖａ社、ドイツ国ハンブルク）と一緒のインキュベーション後に、適切なフィルターを使用してＯｌｙｍｐｕｓ ＡＸ７０顕微鏡下で免疫染色を調査した。

血清、組織およびＨＥＰＧ２細胞からのヘプシジンおよびＴＦＲ２の抽出
ヘプシジンのより大きな起源として、本出願人らは慢性腎不全の患者から収集した血清を使用した。ヘプシジンを抽出するため、０．０１Ｎ ＨＣｌを用いて２０ｍＬの血清サンプルを１：１に希釈し、濃ＨＣｌを用いてｐＨ ３．０へ調整した。冷凍組織およびＨｅｐＧ２細胞を０．５Ｍ酢酸中で混合し、（Ｃｅｔｉｎ ｅｔ ａｌ．（１９９４）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９１，２９３５−２９３９；Ｃｅｔｉｎ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９２，５９２５−５９２９）に記載されたように８分間沸騰させた。Ｕｌｔｒａ−Ｔｕｒｒａｘホモジナイザー（Ｊａｎｋｅ ＆ Ｋｕｎｋｅｌ、ドイツ国シュタウフェン）を用いて均質化した後、サンプルは４℃で２０分間かけて２０，０００×ｇで遠心し、上清を孔径０．４５μｍのフィルターに通して濾過した。タンパク質を濃縮させるため、血清サンプル、細胞および全組織抽出液をオクタデカシリル（Ｃ１８）Ｓｅｐ−Ｐａｋカートリッジ（Ｗａｔｅｒｓ社、マサチューセッツ州）へ塗布した。カラムを０．０１Ｍ ＨＣｌで洗浄し、３０％（ｖ／ｖ）の２−プロパノール／３０％（ｖ／ｖ）のメタノール／０．０１Ｍ ＨＣｌを用いて溶離させた（Ｃｅｔｉｎ ｅｔ ａｌ．（１９９４）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９１，２９３５−２９３９）。タンパク質分画を凍結乾燥させ、使用時まで−８０℃で貯蔵した。ＴｆＲ２分析のために、組織および細胞は１００ｍＭ ＮａＣＩ、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ ７．４）、１０％グリセロール、１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、２ｍｇ／ｍＬのロイペプチン、２ｍｇ／ｍＬのペプスタチン、および１ｍＭのフッ化フェニルメチルスルホニルを含有するＴｒｉｓ−ＨＣｌバッファー中で均質化させ、そして４℃で３０分間にわたり１００，０００ｇで遠心した。

免疫ブロット分析
ウェスタンブロット分析のために、タンパク質抽出液は４％（ｗ／ｖ）ＳＤＳ（Ｍｅｒｃｋ社、ドイツ国ダルムシュタット）、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ ８．１５）、１ｍＭ ＥＤＴＡ、３．２４ｍＭジチオスレイトール（Ｒｏｔｈ社、ドイツ国カールスルーエ）、１２．５％（ｗ／ｖ）グリセロール（Ｍｅｒｃｋ社）、および０．００２％ブロモフェノールブルー（Ｍｅｒｃｋ社）を含むサンプルバッファー中において９４℃で７分間インキュベートした。ヘプシジンを検出するために、１６．５％トリシン−ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲルを公表されたプロトコール（Ｃｅｔｉｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９４），Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１，２９３５−２９３９；Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９９，６７９６−６８０１；Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．１６１，６５５− ６６４；Ｃｅｔｉｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９２，５９２５−５９２９）によって使用した。ＴｆＲ２イムノブロットは、８％ ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲルを使用して実施した。電気泳動法後に、半乾式ブロット法によって疎水性フッ化ポリビニリデンを基剤とする膜（Ｐａｌｌ社、英国ポーツマス）上にタンパク質を移した。これらの膜は、上記の希釈率でヘプシジンまたはＴｆＲ２抗体と一緒に一晩インキュベートした。１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ ８．０）、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、および０．０５％ Ｔｗｅｅｎ ２０を含有するＴｒｉｓ−緩衝生理食塩液中で洗浄した後、色原体としてのニトロブルーテトラゾリウムおよび５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリルホスフェート（Ｓｉｇｍａ社）を使用してアルカリホスファターゼ結合ヤギ抗ウサギ抗体（希釈率１：５０，０００；Ｓｉｇｍａ社）とのインキュベーション後に各免疫反応性タンパク質を可視化した。ウェスタンブロット上の免疫反応は、抗体と対応するペプチド免疫原とのプレインキュベーション後に特異的に遮断された。第２ヤギ抗ウサギ抗体との公差反応性は、適切なコントロールによって排除した（Ｃｅｔｉｎ ｅｔ ａｌ．（１９９４）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９１，２９３５−２９３９；Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９９，６７９６−６８０１；Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．（２００２）Ａｍ Ｊ Ｐａｔｈｏｌ １６１，６５５−６６４；Ｃｅｔｉｎ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９２，５９２５− ５９２９）。

免疫組織化学検査および免疫蛍光法
組織を４％パラホルムアルデヒド中で１８時間にわたり４℃で固定した。段階的希釈率でのエタノール中での脱水後、標本はパラフィン中に包埋した。パラフィン切片（５μｍ）をヘプシジン（抗体ＥＧ（ｌ）−ＨｅｐＮ、ＥＧ（２）−ＨｅｐＮ、およびＥＧ（ｌ）−ＨｅｐＣ、各希釈率１：２０００）またはＴｆＲ２（抗体ＢＴ−ＴＦＲ２１−Ｓ．希釈率１：１０００）に対して、以前に記載したとおりのアビジン−ビオチン−ペルオキシダーゼ複合体（ＡＢＣ）法およびインキュベーション順序（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９９，６７９６−６８０１；Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．１６１，６５５−６６４）によって免疫染色した。これらの切片は各抗体と一緒に４℃で２４時間インキュベートし、次に希釈率１：２００のビオチニル化抗ウサギＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ社、米国ペンシルベニア州ウェストグローブ）と一緒に３０分間インキュベートした。これらの切片は次にＰＢＳ中で希釈して前形成したビオチン−ペルオキシダーゼ／ストレプトアビジン（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ社）の複合体と一緒に３０分間インキュベートした（最終濃度：ビオチン−ペルオキシダーゼ、０．７μｇ／ｍＬ；ストレプトアビジン、５μｇ／ｍＬ）。抗原−抗体結合部位は、０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ ７．６）中の０７ｍＭ塩酸ジアミノベンジジン／０．００２％ Ｈ₂Ｏ₂中での切片のインキュベーションによって可視化された。

免疫蛍光顕微鏡検査のために、ヒト肝からの組織切片（２〜４μｍ）はクライオトーム（ＦｒｉｇｏＣｕｔ ２８００Ｅ；Ｌｅｉｃａ社、ドイツ国Ｎｕｓｓｌｏｃｈ）を用いて調製し、２時間をかけて風乾し、そして低温アセトン（−２０℃）中で１０分間かけて固定した。二重免疫蛍光標識化は、特異的ヘプシジン抗体（希釈率１：１０００）および希釈率１：３０の小管Ｐ−糖タンパク質（Ｃｅｎｔｏｃｏｒ社、ペンシルベニア州マルヴァーン）に対して産生されたモノクローナル抗体Ｃ２１９（ｉｄ．）を使用して以前に記載されたとおり実施した（Ｒｏｓｔ ｅｔ ａｌ．，（１９９９）Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ ２９，８１４−８２１）。各抗血清とのインキュベーション後、マウスおよびウサギＩｇＧ（Ｄｉａｎｏｖａ社、ドイツ国ハンブルク）に対するＣｙ２−（１：２００）およびＣｙ３−（１：６００）標識抗体とのインキュベーションによって染色を実施した。顕微鏡写真は、デジタルカメラ（ｃｏｌｏｒ ｖｉｅｗ １２，ｓｏｆｔ ｉｍａｇｉｎｇ ｓｙｓｔｅｍ ＳＩＳ社、ドイツ国ミュンスター）および分析ソフトウエア（ＳＩＳ社、ドイツ国ミュンスター）を装備したＯｌｙｍｐｕｓ ＡＸ７０顕微鏡を用いて撮影した。

特異性コントロール
方法依存性の非特異性は、（Ｃｅｔｉｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９４），Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１，２９３５−２９３９；Ｃｅｔｉｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９２，５９２５−５９２９）に記載されたようにコントロールをランすることによって排除した。抗体特異性は、抗体と同種および異種抗原ペプチドとの前吸着によって試験した（６．２５〜１００μｇ／ｍＬの抗血清）（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９９，６７９６−６８０１；Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．１６１，６５５−６６４）。抗体と６．２５μｇ／ｍＬという低い濃度での同種抗原との前吸着は肝組織および細胞中での免疫染色を完全に遮断したが、抗体と１００μｇ／ｍＬまでの濃度の異種抗原との前吸着は免疫染色に影響を及ぼさなかった。

ヘプシジンＥＬＩＳＡ競合結合アッセイ
血清サンプルは、２６例の健常個体（女性１３例、男性１３例、年齢２６〜６４歳、平均４３歳）、瀉血療法を受けた患者（１５例）および受けていない患者（２０例）を含むＨＦＥにおけるＣ２８２Ｙ突然変異に対するＨＨホモ接合性を備える患者３５例（女性１４例、男性２１例、年齢２３〜８２歳、平均５４歳）、ならびに長期的血液透析を受けている腎不全の患者５９例（女性３３例、男性２６歳、年齢２６〜９６歳、平均５７歳）から入手した。サンプル収集中には、患者が感染しないように細心の注意を払った。腎不全症群の患者１９例は、最大値１１ｇ／ｄｌのヘモグロビン値を特徴とする腎性貧血を有していた。慢性腎不全症を有する全患者は、３，０００ＩＥの組換えヒトエリスロポエチン（ＥＰＯ）を用いて週２〜３回治療した。１０ｍＬの血液サンプルは氷温血清チューブ内に採取し、４℃で１０分間、２，５００×ｇで遠心した。測定は、４０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ ７．３）、１００ｍＭ ＮａＣｌを含有するＴｒｉｓ緩衝生理食塩液（ＴＢＳ）中に１：４０００で希釈したウサギ抗ヘプシジン抗体ＥＧ（２）−ＨｅｐＮで被覆された（２００μＬ／ウエル）９６ウエルマイクロタイタープレートを使用して２回ずつ実施した。様々な量の合成ペプチド（０、２０、１００、５００、および１，０００ｎｇ／ｍＬ）またはヒト血清サンプルを含有する標準物質５０μＬと、Ｎ末端がビオチニル化されたヘプシジン−（２８−４７）（Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｓｐｅｃｉａｌｔｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、ドイツ国ハイデルベルク）１５０μＬとを各ウエルに添加し（２ｎｇ／ウエル）、室温で１時間インキュベートした。ＴＢＳＴ（０．０５％ Ｔｗｅｅｎ ２０を含むＴＢＳ）を用いて洗浄した後、ビオチニル化抗原−抗体複合体は、基質のテトラメチルベンジジン（ＤＲＧ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ社、ドイツ国マールブルク）を用いてストレプトアビジン−ペルオキシダーゼ酵素（Ｄａｋｏ社、ドイツ国ハンブルク）によって検出された。呈色反応は１Ｍ Ｈ₂ＳＯ₄を用いて停止させ、この溶液の吸光度を波長４５０／６３０ｎｍで読み取った。

当該の４つの群中で測定したヘプシジン値をＥＸＣＥＬのスプレッドシート内に入力し、ＳＡＳ ＷＩＮ Ｖｅｒｓｉｏｎ ８．２を使用して評価した。測定値は、診断グループ毎の次の要約統計量：観察回数、相加平均、標準偏差、最小値、中央値、および最大値によって要約した。可能性のある群間差はペアワイズＷｉｌｃｏｘｏｎ Ｕ検定を用いて分析した。有意性レベルは５％（０．０５）に設定した。プロヘプシジンと鉄、フェリチンまたはトランスフェリンとの相関関係はＳｐｅａｒｍａｎ順位相関によって分析した。

肝およびＨＥＰＧ２細胞中のヘプシジンおよびＴＦＲ２の発現
ＲＴ−ＰＣＲ分析は、ヘプシジンがヒト肝で発現することを証明した（Ｇｅｈｒｋｅ ｅｔ ａｌ．（２００３）Ｂｌｏｏｄ ＭＳ＃２００２−１１−３６１０．Ｒ２）。同様に、１９２−ｂｐの予測されたＰＣＲ産物がＨｅｐＧ２細胞（コントロール）中で検出されたが、これらは既にヘプシジンを発現することが証明された（Ｐｉｇｅｏｎ Ｃ ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７６，７８１１−７８１９；Ｇｅｈｒｋｅ ｅｔ ａｌ．（２００３）（図２Ａ）。さらに、ＲＴ−ＰＣＲ分析は、ＴｆＲ２がヒト肝およびＨｅｐＧ２細胞中で発現することを明確に解明した（データは示していない）。

ウェスタンブロット分析では、全ヘプシジン抗体［ＥＧ（ｌ）−ＨｅｐＮ、ＥＧ（２）−ＨｅｐＮ、およびＥＧ（１）−ＨｅｐＣ］は一致してヒトおよびモルモット肝の抽出液中で〜１０ｋＤａの免疫反応性バンドを同定した。この肝ペプチドは、ＨｅｐＧ２細胞のホモジネート中でヘプシジン抗体によって認識された免疫反応性バンドと共移動した（図２Ｂ〜Ｄ）。全抗体は、さらにまたヒトおよびモルモット肝抽出液もしくはＨｅｐＧ２細胞抽出液を負荷した全レーンにおいて〜２０ｋＤａで免疫反応性タンパク質を同定した。骨格筋抽出液（コントロール）のウェスタンブロット分析は、１０ｋＤａの免疫反応性バンドも２０ｋＤａのバンドも示さなかった（図２Ｂ〜Ｄ）。ＴｆＲ２抗体ＢＴ−ＴＦＲ２１−Ｓを用いたウェスタンブロット分析は、マウス肝の抽出液中で予想された（Ｆｌｅｍｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９７，２２１４−２２１９）〜１０５ｋＤａタンパク質の染色を生じさせた。ヒト肝およびＨｅｐＧ２細胞の抽出液中では、〜９５ｋＤａの免疫反応性ＴｆＲ２および少ない程度で〜１０５ｋＤａの免疫反応性タンパク質が同一抗体によって認識された（データは示していない）。心臓（コントロール組織）中では、免疫反応性は検出されなかった。

ＨＥＰＧ２細胞中の免疫蛍光
エピトープ特異的抗ヘプシジン抗体を使用して、ＨｅｐＧ２細胞中のヘプシジンペプチドの発現を免疫蛍光分析により調査した。全抗体は同様に、強力な免疫反応性を生じさせたＨｅｐＧ２細胞中でヘプシジンを同定した（図３）。ヘプシジンの細胞局在に一致して、ＴｆＲ２抗体は同一細胞中でＴｆＲ２を検出した（データは示していない）。

ヘプシジンおよびＴＦＲ２の細胞局在および細胞内局在
様々な領域特異的抗体を用いた免疫組織化学的試験は一致して、ヘプシジンをヒト肝の肝細胞へ局在化した（図４）。クッパー細胞、内皮細胞、胆管、および血管系ではヘプシジン免疫反応性は完全に欠如していた。同一抗体は、モルモット肝においても強度のヘプシジン免疫反応性を検出した（図４）。肝小葉はヘプシジン免疫反応性に関して不均一であった。肝小葉内では、ヘプシジン免疫反応性細胞は主として門脈周囲体に位置しており、ヘプシジン陽性細胞の頻度は門脈三管から中心静脈に向かって連続的に減少した（図５）。顕著にも、ヘプシジン陽性細胞間には明確な細胞間の相違が存在した。大多数の肝細胞はヘプシジンに対して強度に陽性であったが、他の肝細胞はほんのかすかな染色しか示さなかった、またはヘプシジンに対して完全に非反応性であった（図５）。細胞内レベルでは、免疫組織化学によってヘプシジン免疫反応性は肝細胞の側底（＝洞様）膜ドメインに限定された。各細胞の頂端膜ドメインでは免疫反応性は見いだされなかった（図２）。同様に、免疫蛍光分析は側底膜ドメインでヘプシジンに対する強力な免疫反応性を証明した；小管Ｐ−糖タンパク質に対して産生されたＣ２１９抗体を用いた二重染色によって明らかになったように頂端膜ドメインからの免疫反応性は見られなかった（Ｒｏｓｔ ｅｔ ａｌ．（１９９９）Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ ２９，８１４−８２１）（データは示していない）。

ヘプシジンの局在に対応して、タンパク質特異的抗体ＢＴ−ＴＦＲ２１−Ｓはヒトおよびマウス肝中でＴｆＲ２を検出した。細胞レベルでは、ＴｆＲ２は肝細胞の側底膜で見いだされたが、これは免疫反応性の強度に関する明確な細胞間の相違を明らかにした（データは示していない）。不均質性は肝小葉内でも観察され、中心静脈から門脈三管に向かって免疫反応性が増加した。

ヒト血漿中のヘプシジンプロペプチドの検出
特異的Ｎ末端ヘプシジン抗体ＥＧ（２）−ＨｅｐＮを用いて、高い再現性および感受性を備える安定性プロヘプシジンＥＬＩＳＡアッセイ（ＤＲＧ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ社、ドイツ国マールブルク）が開発された。図６から明らかなように、ＥＬＩＳＡは、ヒト血清中のプロヘプシジン濃度が決定される範囲である４から４００ｎｇ／ｍＬまでの間の最高解像力を示した。特異性コントロールとして、異種ペプチドを用いてＥＬＩＳＡにおけるインキュベーションを実施した。異種ペプチドを使用したときに、交差反応性は観察されなかった。

血中のプロヘプシジンの存在は、ウェスタンブロット分析により確証された。全ヘプシジン抗体は、ヒト血清の抽出液中で肝組織およびＨｅｐＧ２細胞抽出液中の免疫反応性ヘプシジンと一緒に正確に共移動した〜１０ｋＤａ分子量の単一ヘプシジン免疫反応性バンドを同定した（図２、Ｂ〜Ｄ）。

ＥＬＩＳＡの特性
このアッセイの感受性は３．９５ｎｇ／ｍＬであった。最も低い標準物質（２０ｎｇ／ｍＬ）との重複は見られなかった。ゼロ標準物質に溶解させたヒトプロヘプシジンの連続希釈液は９０．６〜１１１．６％の範囲内の回収率でプロヘプシジンＥＬＩＳＡの検量線と平行にランした。予測濃度からの観察されたパーセンテージとして表示した回収率は９１．８％から１０５．７％であった。アッセイ範囲の全域で試験したプロヘプシジンの３種の濃度で良好な精度が証明された（全ＣＶ＜１０％）。

遺伝性ヘモクロマトーシス、慢性腎不全症および腎性貧血中のプロヘプシジンレベル
高感受性ヘプシジンＥＬＩＳＡを使用して、５１．６〜１５３．４ｎｇ／ｍＬ（血清）（平均値±ＳＥ；１０６．２±３２．１ｎｇ／ｍＬ）の範囲内のプロヘプシジンが健常志願者２６例のコントロール群中で検出された（図７、表１）。ＨＨ患者では、プロヘプシジンの濃度は１２．１から１５３．９ｎｇ／ｍＬ（血清）（平均値±ＳＥ；７０．２±３８．１ｎｇ／ｍＬ）であった。これらの濃度は、コントロール被験者の濃度と比較して有意に低かった（Ｐ＜０．０５）（図７、表１）。ＣＲＩに罹患している患者の血清中のプロヘプシジン濃度は３１．１から４７１．３ｎｇ／ｍＬ（平均値±ＳＥ；１４８１±８８．０ｎｇ／ｍＬ）まで変動し、コントロール被験者（Ｐ＜０．０１）およびＨＨ（Ｐ＜０．００１）における濃度と比較して有意に増加した。これとは対照的に、ＲＡを有する血液透析患者中のプロヘプシジンレベル（１１５．０±５３．１ｎｇ／ｍＬ；範囲、２０．５〜２５２．４ｎｇ／ｍＬ）（Ｐ＝０．０５）はＣＲＩ患者と比較して有意に低下した（図７、表１）。

プロヘプシジンと鉄、フェリチンまたはトランスフェリン飽和との間で、本出願人らのサンプル（ＨＨ、ＣＲＩ、およびＲＡからの血清）中で有意な相関は見いだされなかった（図８）。ゼロからの差についての試験は有意性を示さなかった。

考察
特異的プライマーを用いたＲＴ−ＰＣＲ分析は、ヘプシジンが、多くの態様において正常肝細胞の生理学を示している明確に分化した肝細胞癌細胞系であるＨｅｐＧ２細胞（コントロール）中で高度に発現することを証明した（Ａｄｅｎ ｅｔ ａｌ．（１９７９）Ｎａｔｕｒｅ ２８２，６１５−６１６）。ＨｅｐＧ２細胞中に上首尾で使用された適切なプライマー仕様および組み合わせを使用して、ＲＴ−ＰＣＲ試験はヒト肝中でのヘプシジンの発現を確証した。ヘプシジン前駆体分子中の様々なエピトープを認識する３種の相違する抗体（図１）は、ウェスタンブロット分析によって、ＨｅｐＧ２細胞中だけではなく、２つの種であるヒトおよびモルモットの肝抽出物中でも、〜１０ｋＤａの免疫反応性ペプチドを同定した。この免疫反応性ペプチドの見かけの分子量は、ｃＤＮＡ配列からのヘプシジンプロホルモンに対して推定された予測分子量にしたがっている（Ｐｉｇｅｏｎ Ｃ ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７６，７８１１−７８１９）（図１）。興味深いことに、〜２０ｋＤａの第２免疫反応性バンドはＨｅｐＧ２細胞ならびにヒトおよびモルモット肝の抽出物中で全ヘプシジン抗体によって検出されたが、コントロール組織中では欠如していた。この免疫反応性タンパク質は、ダイマータイプのヘプシジンを反映する可能性がある。実際に、以前の研究では、凝集特性および可能性のあるマルチマーの形成がヘプシジン−２５については記載されているがヘプシジン−２０については記載されていない（Ｈｕｎｔｅｒ ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７７，３７５９７−３７６０３）。

領域特異的および分子ドメイン特異的ヘプシジン抗体を用いた免疫細胞化学的研究は、既に分子生物学技術によって証明されたように、これらの細胞中でのヘプシジンの発現を示すＨｅｐＧ２細胞中の強力な免疫反応性を解明した（Ｇｅｈｒｋｅ ｅｔ ａｌ．（２００３）Ｂｌｏｏｄ ＭＳ＃２００２−１１−３６１０．Ｒ２）。これらの様々なヘプシジン抗体を使用した免疫組織化学的および免疫蛍光検査は、ヒトおよびモルモット肝中で、ヘプシジンが特に主として門脈三管の周囲に位置する肝細胞中に特異的に局在することを示した。ヒトおよびモルモット肝中だけではなくＨｅｐＧ２細胞中での様々な領域特異的抗体による一致した染色は、肝細胞がヘプシジンの起源であることを指摘している。ヘプシジン免疫反応性は門脈周囲帯から中心静脈に向かって減少した。この門脈小葉内での帯域は、門脈周囲肝細胞が腸から鉄富裕な血液を輸送する門脈静脈への初回通過アクセスを有するので、機能的有意性を有する可能性がある。顕著にも、ヘプシジンの発現または分泌における細胞間の相違を反映する可能性があるヘプシジン免疫反応性の密度に関してヘプシジン陽性細胞間には明確な細胞間の相違が存在した。

細胞内レベルでは、ヘプシジンは肝細胞の側底膜ドメインに集中していた。頂端膜ドメインでは、免疫反応性は見いだされなかった。細胞内レベルでのヘプシジンの離散的な分布パターンからは、ヘプシジンの肝洞様血管内への遊離が側底膜へ向けられたことを推論できる。この指向性の分泌経路はヒト血清中でのヘプシジンプロホルモンの検出（図１）によって追加して立証された（下記参照）。その結果、これらの所見はプロヘプシジンの分泌を介して内分泌腺法で鉄代謝を調節できるというさらなる証拠を提供している。

ＴｆＲ２ならびに各標的膜ドメインの発現および細胞分布を分析するために、細胞レベルでのＲＴ−ＰＣＲ、ウェスタンブロットおよび免疫組織化学的研究を実施した。以前の研究で証明されたように、ＲＴ−ＰＣＲ分析はＴｆＲ２がヒト肝中で高度に発現することを解明した。（Ｆｌｅｍｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄｉ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９７，２２１４−２２１９）。このタンパク質の存在は、ヒトおよびマウスＴｆＲ２に対して特異的なＢＴ−ＴＦＲ２１−Ｓ抗体を使用してウェスタンブロット試験によって確証された。〜１０５ｋＤａの免疫反応性タンパク質はマウス肝抽出物中で検出された。免疫反応性ＴｆＲ２のこの分子量は予想された９５ｋＤａ（Ｆｌｅｍｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄｉ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９７，２２１４−２２１９）よりわずかに大きく、以前に記載されたように（Ｋａｗａｂａｔａ ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７５，１６６１８−１６６２５）何らかの翻訳後修飾を表す場合がある。しかし同一条件下で、ＴｆＲ２−抗体は予想分子量９５ｋＤａのタンパク質およびヒト肝抽出物中では低い親和性を備える１０５ｋＤａタンパク質を同定した。ヒトおよびマウス肝のイムノブロット間の矛盾は、種間の相違に起因すると考えられる。

免疫組織化学的検査は、ＴｆＲ２がヒトおよびマウス肝の肝細胞に局在することを解明した。ヘプシジンの細胞分布に一致して、タンパク質特異的抗体はＴｆＲ２を排他的に側底膜に局在化した。このタイプのＴｆＲ２の膜特異的関連は特に、二鉄トランスフェリンに結合して血液から肝細胞内へのトランスフェリン結合鉄の取り込みを媒介することによって鉄代謝に関係している、ＴｆＲ２の側底膜活性化を支持している（Ｐｈｉｌｐｏｔｔ，Ｃ．Ｃ．（２００２）Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ ３５，９９３−１００１；Ｓｕｂｒａｍａｎｉａｍ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．３６，２３５−２３９）。注目すべきことに、ヘプシジンについて記載されたものに類似する小葉帯域がＴｆＲ２について観察され、免疫反応性は門脈周囲帯から中心静脈に向かって減少した。

細胞レベルでのヘプシジンとＴｆＲ２との相互作用が以前の研究で考察されているので（Ｎｉｃｏｌａｓ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９８，８７８０−８７８５；Ｆｒａｚｅｒ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ １２３，８３５−８４４）、ＨｅｐＧ２細胞−明確に分化した肝細胞癌細胞系（Ａｄｅｎ ｅｔ ａｌ．，（１９７９）Ｎａｔｕｒｅ ２８２，６１５−６１６）中のヘプシジンとＴｆＲ２との共在が分析され、多くの態様において正常肝細胞の生理学的性質が証明された。ヒト肝中で使用されて成功した適切なプライマー仕様および組み合わせを使用するＲＴ−ＰＣＲ試験は、ＨｅｐＧ２細胞中のヘプシジンおよびＴｆＲ２の発現を同定した。翻訳レベルでは、ＨｅｐＧ２細胞中のヘプシジンおよびＴｆＲ２の存在は、肝組織由来の対応する免疫反応性バンドと共移動する正確な分子量の免疫反応性タンパク質バンドを生じたウェスタンブロット試験によって確証された。ＨｅｐＧ２細胞中の各タンパク質の共局在化は、対応する領域特異的および分子ドメイン特異的抗体を使用する免疫細胞化学によって特に実証された。全抗体は、ＨｅｐＧ２細胞中のヘプシジン標識化を証明しており、これらの細胞中の顆粒免疫反応性パターンを解明し、これは電子顕微鏡によって肝細胞中で既に証明されている小さな分泌小胞へのペプチドの局在化を推測させる（Ｓｃｈｗａｒｔｚ ｅｔ ａｌ．，（１９８５）ＥＭＢＯ Ｊ．４，８９９−９０４）。ＴｆＲ２は、固有の分布パターンを伴って、ＨｅｐＧ２細胞へ免疫細胞化学的に局在化された。

転写レベルおよび翻訳レベルでの本試験データに基づくと、ヘプシジンおよびＴｆＲ２は肝臓内で共発現し、肝細胞の側底膜ドメインに共局在化される。細胞レベルでのＴｆＲ２およびヘプシジンの一致する局在化に加えて、門脈周囲帯における集中した免疫反応性および中心静脈に向かって減少する染色を伴う肝小葉内のこれらの分子の類似の分布もまた検出された。共通（側底）膜ドメインおよびそれらの類似の小葉帯域におけるこれらのタンパク質の調整発現は、調節性ペプチドホルモンヘプシジンとＴｆＲ２を介してのトランスフェリン結合鉄の取り込みとの形態機能的結合を支持している。実際に、様々なデータがヘプシジンとＴｆＫ２との相互作用を実証している。第一に、おそらくはＴｆＲ２によって感知されるトランスフェリン飽和における変化は肝性ヘプシジンの発現を調節する（Ｐｈｉｌｐｏｔｔ，Ｃ．Ｃ．（２００２）Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ ３５，９９３−１００１）。第二に、ヒト肝上での定量的ＲＴ−ＰＣＲ分析から明らかなように、ＴｆＲ２の肝性発現はトランスフェリン飽和によって調節されるヘプシジン発現と有意に相関している（Ｓ．Ｇ．Ｇｅｈｒｋｅ，Ｈ．Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．、未公表データ）。第三に、ヘプシジンおよびＴｆＲ２は共通細胞膜ドメインに共局在しており、突然変異の症例ではＴｆＲ２（Ｆｌｅｍｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９９，１０６５３−１０６５８）およびヘプシジン（Ｎｉｃｏｌａｓ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９８，８７８０−８７８５）の発現を無効にする部位である門脈周囲帯における強力な免疫反応性を伴う同様の小葉分布を明らかにしているが、ヘプシジン（Ｚｈｏｕ ｅｔ ａｌ．，（１９９８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９５，２４９２−２４９７；Ｌｅｖｙ ｅｔ ａｌ．，（１９９９）Ｂｌｏｏｄ ９４，９−１１）およびＢ２ｍ（Ｓａｎｔｏｓ ｅｔ ａｌ．，（１９９６）Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１８４，１９７５−１９８５）の肝性鉄過負荷も発生する。第四に、ＴｆＲ２遺伝子における突然変異はヘモクロマトーシスを引き起こすと報告された（Ｃａｍａｓｅｈｅｌｌａ ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｎａｔ．Ｇｅｎｅｔ．２５，１４−１５）。これは、順に鉄吸収の上昇を生じさせる減少したヘプシジン発現の結果として発生する可能性がある（Ｎｉｃｏｌａｓ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９８，８７８０−８７８５）。

ＨｅｐＧ２細胞中のヘプシジンおよびＴｆＲ２の同時の存在およびそれらの肝臓内での共通する極性局在および小葉分布は、ヘプシジンがトランスフェリン飽和によって調節され、そして順にヘプシジン発現を変調させるＴｆＲ２へ形態機能的に結合した内因性肝性ペプチドであることを指示している。そこで、ヘプシジンのシグナル経路に関する研究から関連する所見が得られると予想される。

肝臓などの血液形成組織および鉄貯蔵部位は食事性鉄に対する身体の要求を指示する腸細胞へシグナルを伝送するので（Ｐｈｉｌｐｏｔｔ Ｃ．Ｃ．（２００２）Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ ３５，９９３−１００１）、ヘプシジンは肝細胞から分泌され、腸性鉄吸収を調節する候補シグナル因子である。しかし本発明の以前には、血液中における一定の分子形態のヘプシジンの存在については論争があった（Ｋｒａｕｓｅ ｅｔ ａｌ．（２０００）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ ４８９，１４７−１５０；Ｐａｒｋ ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７６，７８０６−７８１０；Ｈｕｎｔｅｒ ｅｔ ａｌ．（００２）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７７，３７５９７−３７６０３）。

ヘプシジンのプロホルモンが血液中に分泌されるかどうかを分析するため、そして健常志願者および様々な疾患を有する患者のヒト血清中のプロヘプシジンレベルの範囲を評価するために、ヘプシジンプロホルモンに対して産生されたＮ末端抗体ＥＧ（２）−ＨｅｐＮを適用することによってＥＬＩＳＡが開発された。Ｃ末端抗体ＥＧ（ｌ）−ＨｅｐＣはドットブロット（データは示していない）、ウェスタンブロット、免疫組織化学、および免疫蛍光の実験（図１〜４）において特異的結果を明らかにしたが、ＥＬＩＳＡでは免疫反応性を入手することはできなかった。ヘプシジンの緻密なフォールディングパターンおよびその三次構造は、ＥＧ（ｌ）−ＨｅｐＣ抗体が循環中ヘプシジンを同定する能力がないことの原因である可能性がある。

抗体ＥＧ（２）−ＨｅｐＮを用いたＥＬＩＳＡは３．９５ｎｇ／ウエルの検出限界をもつ高再現性、安定性および感受性ならびに４から４００ｎｇ／ｍＬの範囲内の強力な分解能を特徴とした。この範囲はヘプシジン濃度が決定された範囲であった。健常個体（ｎ＝２６）由来のヒト血清中で、プロヘプシジンは５１．６から１５３．４ｎｇ／ｍＬ（平均値±ＳＥ；１０６．２±３２．１ｎｇ／ｍＬ）の範囲内で測定されたが、これは知られている調節性ペプチドホルモンの濃度に匹敵しており、ヒト尿中のヘプシジン濃度より約１１倍高い（Ｐａｒｋ ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７６，７８０６−７８１０）。興味深いことに、測定された濃度は、このペプチドが強力な調節を受ける可能性があることを示す広範囲のプロヘプシジンを示した。

ｃＤＮＡ構造は、ヘプシジンが、２０〜２５アミノ酸ペプチドへＮ末端でプロセシングされる８４ａａプレプロペプチドとして翻訳されることを示唆している（Ｐａｒｋ ｅｔ ａｌ．（２００１）（図１および９））。単一配列開裂部位に対する強力なコンセンサス配列は６０残基プロペプチドを生じさせるであろうＧｌｙ²⁴とＳｅｒ²⁵との間に位置するが、以前の研究は肝組織および血液のような天然起源からより大きなプロペプチドを単離することに失敗した（Ｐａｒｋ ｅｔ ａｌ．（２００１））。技術的困難に加えて、肝臓中の富裕なプロペプチドコンバターゼは一定のプロペプチドの単離を阻害することがある。これに関連して、近年の研究は、血液（Ｋｒａｕｓｅ ｅｔ ａｌ．（２０００）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ ４８９，１４７−１５０）および尿（Ｐａｒｋ ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７６，７８０６−７８１０）中において２つの研究グループによって記載されたヒトにおけるヘプシジンの循環形態がこのタンパク質のＣ末端２０−２５アミノ酸から構成されることを証明している。しかし、本発明のＥＬＩＳＡ測定はヘプシジン前駆体のＮ末端に対して産生された特異的抗体を用いて実施され、これは２０−２５アミノ酸のプロセシングされた形態の他に、ヘプシジンプロホルモンが分泌され、ヒト血液中で循環することを示している。実際に、血液中へのプロヘプシジンの潜在的遊離がウェスタンブロット分析によって確証された。全ヘプシジン抗体はヒト血清の抽出液中で肝臓およびＨｅｐＧ２細胞の組織抽出物中の免疫反応性ヘプシジンと一緒に正確に共移動した〜１０ｋＤａの単一ヘプシジンバンドを同定した（ポジティブコントロール；図１）。１０ｋＤａより小さいヘプシジンフラグメントは検出されなかった。ヒト血清中のプロヘプシジンの存在は、肝細胞が内分泌経路を介する食事性鉄吸収を減少させる可能性があるヘプシジンのプロホルモンを分泌することを示している。

鉄過剰を有する患者におけるヘプシジンの有意性を分析するために、本発明は検査下の全ＨＨ患者において検出される鉄過剰の典型的特性を有するＨＦＥにおけるＣ２８２Ｙ突然変異に対してホモ接合性であるＨＨ患者３５例の血清中のヘプシジン濃度を提供する。ヘプシジン濃度は、以前に想定されたように腸性鉄吸収を減少させるためにこれらの個体においては増加しなかった（Ｆｌｅｍｉｎｇ ａｎｄ Ｓｌｙ（２００１）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９８，８１６０−８１６２）。ＨＨ患者の血清中のプロヘプシジンレベルは、非処置患者においてだけではなく、週１回の瀉血療法を受けている個体においても予想外にダウンレギュレートされた。健常志願者と比較して、プロヘプシジン濃度は１０６．２から７０．２ｎｇ／ｍＬ（血清）へ顕著に低下した。処置および非処置ＨＨ患者間で相違は観察されなかった。これらの所見は、肝ヘプシジン発現がｈｆｅノックアウトマウス（Ａｈｍａｄ ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｂｌｏｏｄ Ｃｅｌｌｓ Ｍｏｌ Ｄｉｓ ２９，３６１−３６６；Ｍｕｃｋｅｎｔｈａｌｅｒ ｅｔ ａｌ．（２００３）Ｎａｔ Ｇｅｎｅｔ ３４，１０２−１０７）およびＨＦＥ関連性ヘモクロマトーシス患者においては有意に低下していることを証明した以前のＨＨ試験と一致している。それらはさらに一次ヒト肝細胞およびＨｅｐＧ２細胞の鉄負荷がヘプシジンｍＲＮＡをダウンレギュレートすることを証明しているインビトロ試験とも一致している（Ｇｅｈｒｋｅ ｅｔ ａｌ．（２００３）Ｂｌｏｏｄ ＭＳ＃２００２−１１−３６１０．Ｒ２；Ｎｅｍｅｔｈ ｅｔ ａｌ．（２００３）Ｂｌｏｏｄ １０１，２４６１−２４６３）。鉄吸収がＨＨでは鉄過剰にもかかわらず強化され（Ｐｉｅｔｒａｎｇｅｌｏ Ａ．（２００２）Ａｍ Ｊ Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔ Ｌｉｖｅｒ Ｐｈｙｓｉｏｌ ２８２，Ｇ４０３−４１４；Ｐｈｉｌｐｏｔｔ Ｃ．Ｃ．（２００２）Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ ３５，９９３−１００１；Ａｎｄｅｒｓｏｎ ａｎｄ Ｐｏｗｅｌｌ（２００２）Ｉｎｔ Ｊ Ｈｅｍａｔｏｌ ７６，２０３−２０７）、そして構成性ヘプシジン発現はヘモクロマトーシスのマウスモデルでは鉄過剰を防止するので（Ｎｉｃｏｌａｓ ｅｔ ａｌ．（２００３）Ｎａｔ Ｇｅｎｅｔ ３４，９７−１０１）、ＨＨ患者ではヘプシジン調節は中断されると想定される。低下した濃度のヘプシジンは、明らかに上昇した腸性鉄吸収を十分に阻害することはできない。さらにこれらの所見は、肝ヘプシジン発現がｈｆｅノックアウトマウス（Ａｈｍａｄ ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｂｌｏｏｄ Ｃｅｌｌｓ Ｍｏｌ Ｄｉｓ ２９，３６１−３６６；Ｍｕｃｋｅｎｔｈａｌｅｒ ｅｔ ａｌ．（２００３）Ｎａｔ Ｇｅｎｅｔ ３４，１０２−１０７）およびＨＨ患者（Ｂｒｉｄｌｅ ｅｔ ａｌ．（２００３）Ｌａｎｃｅｔ ３６１，６６９− ６７３）においては有意に低下しているという所見に基づくと、鉄過剰にもかかわらずＨＨにおけるプロヘプシジンアップレギュレーションの欠如は、ＨＦＥが血清中ヘプシジンレベルの調節に関係している可能性があることを指摘している。

以前の研究は尿によるヘプシジン排泄が血清中フェリチン濃度と明確に相関することを証明しているが（Ｎｅｍｅｔｈ ｅｔ ａｌ．（２００３）Ｂｌｏｏｄ １０１，２４６１−２４６３）、本研究では、ＨＨもしくは透析患者における循環中プロヘプシジンと血清中鉄もしくはフェリチンレベルとの間で相関関係は見いだされなかった。同様に、プロヘプシジンと、肝ヘプシジンの発現を調節すると言われている（Ｇｅｈｒｋｅ ｅｔ ａｌ．（２００３））トランスフェリン飽和との間の相関関係も検出されなかったが、検査下のＨＨ患者はヘプシジンに影響を及ぼすパラメーターを表す貧血、低酸素症または炎症の影響を受けなかった。これらのデータは、鉄貯蔵による血清中のプロヘプシジンレベルの調節が複雑な間接的作用を含むことを示唆している（Ｎｅｍｅｔｈ ｅｔ ａｌ．（２００３）Ｂｌｏｏｄ １０１，２４６１−２４６３）。

ヘプシジンは尿からも単離されているが、本発明は腎不全症患者におけるヘプシジン調節の評価を提供する。ＨＨ患者および健常被験者とは対照的に、ＣＲＩ患者の血清中の免疫反応性プロヘプシジン濃度は健常被験者における１０６．２ｎｇ／ｍＬから１４８．１ｎｇ／ｍＬへ有意に増加した。透析患者における増加したプロヘプシジンレベルは、腎臓が循環中ペプチドの代謝および／または排出に関係している可能性を示唆している。しかし、尿中ヘプシジンは血液から濾過されるだけであるのか、または腎臓起源であるのかについては現在は不明である。本発明に基づくと、ヘプシジンは腎尿細管細胞中でも見いだされたので（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．（２００３）、未公表データ）、ヘプシジンが少なくとも一部には腎臓から遊離されることを排除できない。

本発明は、正色素性、正球性赤血球を特徴とする進行性腎不全の明確に認識された合併症であるＲＡを有する透析患者におけるプロヘプシジン血清中レベルの決定を提供する。健常被験者と比較して、免疫反応性プロヘプシジン濃度はＲＡ患者においては有意に高くはなかった（平均値、１１５．０ｎｇ／ｍＬ）。ペプチドホルモンの蓄積をもたらすこれらの患者における末期腎不全にもかかわらず、プロヘプシジンレベルは貧血を伴わない透析患者におけるより有意に低かった（平均値、１４８．１ｎｇ／ｍＬ）。本発明から、ＲＡにおけるヘプシジン調節は炎症または肝細胞腺腫の貧血におけるヘプシジン調節とは相違すると結論される。ＲＡにおけるプロヘプシジンのダウンレギュレーションは、腸による鉄吸収および細網内皮系マクロファージからの鉄遊離を強化させるためのペプチドの反応性の生理的変調を反映している。本発明は、プロヘプシジンがＥＰＯ療法にもかかわらず貧血を伴わないＣＲＩ患者群では増加することを提供する。そこで、ヘプシジンが失血のためにＲＡでは減少すると結論され、これがヘプシジンのダウンレギュレーションの理由である可能性がある（Ｎｉｃｏｌａｓ ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ １１０，１０３７−１０４４）。

本発明は、ヒト血清中のプロヘプシジンレベルを測定するためのＥＬＩＳＡを提供する。このアッセイは非侵襲性である上に容易に実施することができ、したがってルーチン作業のために適切である。プロヘプシジンアッセイは、その精度、感受性、再現性およびヒト血清サンプルのヘプシジン−（２８−４７）の正確な決定に基づいている。本ＥＬＩＳＡの適用は、数種の鉄代謝障害に罹患している患者におけるプロヘプシジンの検出および決定を初めて可能にする。様々な鉄の状態におけるプロヘプシジン作用の正確な分子機序を同定するためにはより詳細な研究が必要とされる。本発明は、さらにまたヘプシジンのアゴニストおよびアンタゴニストが鉄障害の予防および治療における潜在的薬物であることを提供する。

ヘプシジンの役割を理解するためには、ペプチドの細胞起源およびシグナル経路についての知識が必須である。この点に関し、本発明は、肝細胞の側底膜ドメインに局在している部位であるヒトおよびモルモット肝中のヘプシジン免疫反応性について記載する。以前の研究は、これらの細胞と吸収性腸細胞との間に関連がある推測していた（Ｈｕｎｔｅｒ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，Ｍ２０５３０５２００；Ａｎｄｅｒｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．Ｔｒａｎｓ．３０，７２４−７２６）。本発明は、ヒト血漿中でのプロヘプシジンの検出について記載し、それにより、内分泌経路を介する食事性鉄吸収を減少させ得るヘプシジンのプロホルモンを、肝細胞が分泌することを示す。さらに、ヘプシジンはＨｅｐＧ２細胞中で検出され、その細胞中に新規発見のトランスフェリン受容体タイプ２も見いだされた（データは示していない）。

ヒトまたは動物の血清およびその他の体液中におけるヘプシジンの定量的測定のための酵素イムノアッセイ
本発明の１つの実施形態では、ヘプシジン酵素イムノアッセイ（「ＥＩＡ」）が使用される。ＥＩＡは、競合原理に基づく固相酵素結合免疫吸着検定法（ＥＬＩＳＡ）である。９６ウエルマイクロタイタープレートのマイクロタイターウエルは、ヘプシジン−（２８−４７）に対して向けられたポリクローナルウサギ抗ヘプシジン抗体で塗布される。サンプル中に存在する未知量のプロヘプシジンおよびビオチン分子と共役結合した固定量のヘプシジン−（２８−４７）は、ウエル上に固定されたヘプシジン抗体の結合部位を得るために競合する。１時間のインキュベーション後、競合反応を停止させるためにマイクロタイタープレートが洗浄される。引き続くインキュベーション後に、結合ビオチン分子がストレプトアビジンホースラディッシュペルオキシダーゼを用いて検出される。１時間半のインキュベーション後、プレートは２回洗浄される。基質溶液を添加した後、ヘプシジン濃度は測定された光学密度と反比例している。

材料：
ウエルを抗ヘプシジン抗体で塗布したマイクロタイターウエル（９６ウエル）；試薬：ビオチンコンジュゲート（ビオチンにコンジュゲートしたヘプシジン）７ｍＬ；基準標準物質セット、各１．０ｍＬ；０、２０、１００、５００、１，０００、２，０００ｎｇ／ｍＬ；プロヘプシジンコントロール、低および高、２バイアル（凍結乾燥物）；試薬：酵素複合体（ホースラディッシュペルオキシダーゼにコンジュゲートしたストレプトアビジン（「ＨＲＰ」））１４ｍＬ；試薬：基質溶液 − ＨＳ−ＴＭＢ、１４ｍＬ；停止液、０．５Ｍ Ｈ₂ＳＯ₄、１４ｍＬ；洗浄液、４０×、３０ｍＬ；マイクロタイタープレートリーダー（４５±１０ｎｍ）（例、ＤＲＧ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ社マイクロタイタープレートリーダー）；５０および１００μＬのディスポーザブルチップを備える精密マイクロピペット；標準型の冷蔵庫；吸収紙；脱イオン水。

この実施形態を好ましい材料に関して記載してきたが、本発明の分野における当業者であれば本発明において他の材料を使用できることを理解するであろう。例えば、当業者は、本発明においてビオチン／ストレプトアビジン以外の相補的結合成分ならびにホースラディッシュペルオキシダーゼ／過酸化物以外の酵素／基質の組み合わせを使用できることを理解するであろう。

貯蔵条件
２〜８℃で貯蔵したときに、未開封試薬は使用期限までは反応性を維持するであろう。この期限の経過後に試薬を使用しないこと。マイクロタイターウエルは２〜８℃で貯蔵しなければならない。ホイル包装が開封されると、再度密に閉鎖するために注意を払わなければならない。塗布されたマイクロタイターウエルの免疫反応性は、開封されているが、乾燥剤を含有する緊密に閉鎖されたプラスチック製ファスナー付きパウチ中で約６週間安定性である。

標本の収集および調製
本アッセイでは、ヒトまたは動物の血清またはＥＤＴＡ血漿を使用しなければならない。生物学的サンプルの特別な前処理は不要である。生物学的サンプルは２４時間までは２〜８℃で貯蔵することができるが、これより長期間については−２０℃以下で冷凍しなければならない。肉眼的に溶血した、または肉眼的に脂肪血性である標本は使用しないこと。その他のサンプル材料については、特別な抽出プロトコールが必要になることがある。

アッセイの性能：一般的所見
全ての試薬および標本は、使用前に室温にしなければならない。全ての試薬は、泡立たせずに混合しなければならない。

テストがいったん開始されると、全ステップを中断させずに完了しなければならない。

交差汚染を回避するためには、各試薬、標準物質または標本に対して新しいディスポーザブルのプラスチック製ピペットチップを使用すること。基質溶液および停止液を分注するためには、金属製パーツを備えるピペットを避けること。

標準物質およびサンプルをウエルの底部にピペットで移す。酵素コンジュゲートおよび停止液をピペットで添加するためには、ピペットをウエルの上方で垂直位置に保持し、酵素コンジュゲートとサンプルまたは標準物質との、および停止液と基質溶液との完全な混合が達成されるように、ウエルの中心に相当する溶液を分注する。

アッセイを開始する前に、全試薬を用意し、キャップを取り外し、必要な全てのウエルをホルダー内に固定することなどが推奨される。これは中断せずに各ピペット操作ステップを実施するために同等の経過時間を保証するであろう。

一般的に、酵素反応は時間および温度と線形に比例している。これは一定の物理的−化学的条件のために内挿を可能にする。試験ランにおいてゼロ標準物質の吸光度が１．０未満またはマイクロタイタープレート分光計の性能上限より上方にある場合は、色の最終酵素的形成のインキュベーション時間を３０もしくは１０分間へ延長または短縮することができる。各ランにおいてキャリブレーターがアッセイされるので、吸光度の変動は結果に影響を及ぼさない。

基質液は無色またはかすかなブルーもしくはグリーンでなければならない。この溶液がダークブルーである場合、試薬は使用不能なので廃棄しなければならない。

基質溶液とのインキュベーション中には、マイクロタイタープレート上への直射日光を回避すること。

試薬の調製
基準標準物質およびコントロール：１．０ｍＬの二重蒸留水を用いて標準物質／コントロールバイアルの凍結乾燥内容物を再構成する。注意：再構成した標準物質／コントロールは２〜８℃で６日間は安定である。より長期間にわたり貯蔵するためには−２０℃で冷凍する。洗浄液：４０倍に濃縮した洗浄液（含量：３０ｍＬ）へ脱イオン水を添加して最終量を１２００ｍＬとする。希釈洗浄液は、室温で２週間は安定である。

アッセイ方法
所望の数の被覆されたストリップをホルダー内に固定する。
５０μＬのヘプシジン標準物質を適切なウエル内に分注する。
５０μＬのサンプルを選択したウエル内に分注する。
５０μＬのビオチンコンジュゲートを各ウエル内に分注する。
プレートを１０秒間、完全に混合する。このステップで完全に混合することが重要である。
室温で６０分間インキュベートする。
ウエルの中身を力強く振とうする。
希釈洗浄液を用いてウエルを３回すすぎ洗いする（１ウエル当たり４００μＬ）。残っている液滴を取り除くために吸収紙上でウエルを激しくぶつける。
全ウエルに１００μＬのストレプトアビジンＨＲＰ複合体を添加する。
室温で３０分間インキュベートする。
ウエルの含量を元気よく振とうする。
希釈洗浄液を用いてウエルを３回すすぎ洗いする（１ウエル当たり４００μＬ）。残っている液滴を取り除くために吸収紙上にウエルを激しくぶつける。
指定時間間隔で、各ウエルに１００μＬの基質溶液を添加する。
室温で１５分間インキュベートする。
ステップ１０と同一時間間隔で各ウエルに１００μＬの停止液を添加することにより酵素反応を停止させ、４５０±１０ｎｍで各ウエルの吸光度を決定する。

最終反応安定性
ステップ１５から３０分間以内にウエルを読み取ることが推奨される。
結果の計算
４５０±１０ｎｍで吸光度を決定できるあらゆるマイクロウエルリーダーを使用できる。各サンプルのテストステロン値を以下のとおりに入手する。
ａ．線形−線形または半対数グラフ用紙を使用して、各基準標準物質の平均吸光度（Ｙ）をその対応する濃度（Ｘ）（ｎｇ／ｍＬ）に対してプロットすることによって検量線を構成する。検量線を構成するためには、４パラメーターロジスティック関数を推奨する。
ｂ．必要であれば初期サンプル希釈率を掛けることによって、この検量線からの単純な内挿によって各サンプルの平均吸光度を使用して対応するテストステロン値を決定する。

ＤＲＧ ＥＬＩＺＡ ＭＡＴ ３０００およびＤＲＧ回帰プログラムは、読取りおよび４パラメーターロジスティック関数を使用したコンピュータ援用解釈を可能にする。

検量線の例
以下のデータは証明することだけを目的としており、アッセイ時点のデータ生成の代わりに使用することはできない。

性能特性：感受性
図６は、ｎｇ／ｍＬ単位でのヘプシジン−（２８−４７）の濃度および波長４５０ｎｍでのＥＬＩＳＡ溶液の吸光度を示している循環中ヒトプロヘプシジン検量線に対する代表的ＥＬＩＳＡを示している。

分析感受性は、平均値からゼロ標準物質の２１回の反復分析（ｎ＝２１）の２ＳＤ（ＳＤ＝０．０５５）を差し引くことにより計算した。

このアッセイの感受性は３．９５ｎｇ／ｍＬであった。このアッセイの直線性は、相違するヘプシジンレベルを有するサンプル（血清）をゼロ標準物質で希釈することによって評価した。希釈サンプル中のヘプシジン含量をＥＬＩＳＡによってアッセイした。各サンプルおよび回収率（％）については３種の希釈率を計算した。

ヘプシジンの分析的回収率は、血清サンプル中の３種の濃度で推定した。様々な初期ヘプシジン濃度を備えるサンプルへ、非標識ヘプシジンの量を増加させながら（５０ｎｇ／ｍＬ、２５０ｎｇ／ｍＬ、５００ｎｇ／ｍＬ）添加した。各サンプル（スパイクされていない、スパイクされている）をアッセイした。ヘプシジン濃度を測定し、回収率（％）を計算した。

アッセイ内精度（ラン内）変動は、相違するヘプシジン含量を含む３つのコントロールサンプルの反復測定（ｎ＝１２）によって決定した。
サンプル１：平均値＝４２６．７；ＳＤ＝２０．２；ＣＶ（％）＝４．６９
サンプル２：平均値＝２１０．７；ＳＤ＝８．５８；ＣＶ（％）＝４．０７
サンプル３：平均値＝１１０．７；ＳＤ＝４．７４；ＣＶ（％）＝４．２８

アッセイ間精度（ラン間）変動は、３種の相違するロットのキット中の相違する３つのコントロールサンプル（ｎ＝２３）の反復測定（３×）によって決定した。
サンプル１：平均値＝４３１．９６；ＳＤ＝２０．８；ＣＶ（％）＝４．８２
サンプル２：平均値＝２１６．１７；ＳＤ＝１４．４４；ＣＶ（％）＝６．６８
サンプル３：平均値＝１０９．８；ＳＤ＝１０．７２；ＣＶ（％）＝９．７６

ヒト腎臓中のヘプシジンの発現
ヘプシジンは遠位尿細管中で発現し、尿中に遊離される。
鉄ホメオスタシスは食事性鉄の吸収によって主として消化管内で制御されると広く考えられている。しかし、近年の研究は腎臓もまた鉄代謝に関係することを証明している。鉄調節性および抗菌性ペプチドであるヘプシジンはヒト尿から最初に単離されたので、本出願人は哺乳動物の腎臓におけるヘプシジンの細胞局在および細胞内局在を調査し、血清および尿中のプロヘプシジン濃度を分析するためにＥＬＩＳＡアッセイを開発した。

ヘプシジンの発現および細胞局在は、ヘプシジン特異的ポリクローナル抗血清を用いてヒト、マウス、およびラット腎においてＲＴ−ＰＣＲ、ウェスタンブロット、および免疫細胞化学検査によって証明された。その血清中および尿中濃度は感受性ＥＬＩＳＡによって決定された。

ヘプシジンは、ヒト、マウス、およびラット腎中で発現する。領域特異的抗血清を用いたウェスタンブロット分析は、プロヘプシジンの見かけの分子量に対応する〜９．５ｋＤａのペプチドを同定した。局在試験は、ヘプシジンが腎皮質および腎の髄質外層中の遠位尿細管で発現することを明らかにした。細胞内レベルでは、ヘプシジンは尿中での追加の存在に基づいて、明白に尿中へ頂端で遊離される分泌性尿細管細胞の頂端膜ドメインに局在する。上昇したレベルのプロヘプシジン（１５６．８ｎｇ／ｍＬ、健常志願者１０４．２ｎｇ／ｍＬ）はＣＲＩ患者において決定されたが、これは腎臓が循環中ホルモンを代謝および／または排泄できることを示している。

哺乳動物の腎臓中でのヘプシジンの発現から、本出願人らは鉄調節性ホルモンであるヘプシジンが内因性腎ペプチドであり、ヘプシジンは腎によって排泄／代謝されるだけではなく、腎尿細管系においても合成かつ尿中へ管腔を通して遊離されると結論する。腎臓中のヘプシジンの局在は、このペプチドが腎尿細管系において調節的役割を果たすことを意味している。

緒言
近年の研究は、ＨＦＥ−関連性ヘモクロマトーシスにおける異常なヘプシジン発現（Ｍｕｃｋｅｎｔｈａｌｅｒ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｎａｔ Ｇｅｎｅｔ，３４：１０２−１０７）および中断したヘプシジン調節（Ｂｒｉｄｌｅ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｌａｎｃｅｔ，３６１：６６９−６７３；ａｎｄ Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊）ならびにヘプシジン突然変異と重度の若年性ヘモクロマトーシス（Ｒｏｅｔｔｏ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｎａｔ．Ｇｅｎｅｔ．，３３：２１− ２２）との関連を見いだした。これらの観察所見に基づくと、ヘプシジンが小腸における鉄吸収およびマクロファージからの鉄遊離の負の調節因子として作用する鉄ホメオスタシスにとって重要な構成要素であることが示唆されている（Ｎｉｃｏｌａｓ ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９９，４５９６−４６０１）。

大多数の研究はヘプシジン産生の主要部位である（Ｐａｒｋ ｅｔ ａｌ．；Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊）肝臓中でのヘプシジンの調節および機能に集中しているが、このペプチドが腎臓および尿管においても役割を果たす可能性があるという指摘も集まっている（Ｉｄ．，Ｗａｒｅｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ａｍ Ｊ Ｐｈｙｓｉｏｌ Ｒｅｎａｌ Ｐｈｙｓｉｏｌ、印刷に先行する電子出版；およびＦｅｒｇｕｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｋｉｄｎｅｙ Ｉｎｔ．，６４：１７５５−１７６４）。鉄ホメオスタシスは食事からの取り込みレベルでは主として消化管内で制御されると広く考えられている。生体中には鉄の分泌経路がないというのが現在の定説である。しかし、近年の研究は腎臓が鉄のホメオスタシスにおいて重要な役割を果たすことを証明している（Ｗａｒｅｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ａｍ Ｊ Ｐｈｙｓｉｏｌ Ｒｅｎａｌ Ｐｈｙｓｉｏｌ．、印刷に先行する電子出版；Ｆｅｒｇｕｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｋｉｄｎｅｙ Ｉｎｔ，６４：１７５５−１７６４；およびＧｕｎｓｈｉｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９７）Ｎａｔｕｒｅ，３８８：４８２−４８８）。糸球体による限外濾過によって有意な比率の血清中の鉄を入手することができ、糸球体で濾過された鉄の大多数は再吸収される（Ｗａｒｅｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｊ Ｐｈｙｓｉｏｌ，５２４．２：５８１−５８６）。

したがって、ヘプシジンが局所ペプチドとして腎臓内にも存在するかどうかを分析するのは合理的である。このため、本出願人らはヘプシジン前駆体分子の様々なエピトープに対して抗血清を産生し、転写および翻訳レベルで３種の哺乳動物種について調査した。本出願人らの所見は、腎臓における血清中ヘプシジンの排泄の他に、このペプチドが哺乳動物の腎の遠位尿細管細胞中の内因性ホルモンとしても産生され、尿中に管腔を通して遊離されることを示しており、これは腎臓および／または尿管中でのヘプシジンの調節性の役割を意味している。

材料および方法
組織および組織の調製：本研究で使用したヒト腎サンプル（ｎ＝５）は副腎腫を有する成人患者における腎切除術後に入手した。本研究で使用したヒト肝サンプル（ｎ＝７）は肝転移を伴う成人患者における部分的肝切除術後に入手した（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊）。健常組織を免疫組織化学検査のためには４％パラホルムアルデヒドまたはブアン固定液中で固定するか、またはＲＴ−ＰＣＲおよびウェスタンブロットのためには液体窒素中で急速冷凍した。ラット（ｎ＝５）およびマウス（ｎ＝５）に麻酔をかけ、引き続いて頸椎脱臼によって致死させた。腎臓および肝臓からの組織標本を切除し、ＲＴ−ＰＣＲまたはウェスタンブロット分析のためには液体窒素中で急速冷凍するか、またはパラホルムアルデヒド中で固定した。

ペプチド合成、免疫方法、および抗体：公表されたプロヘプシジン配列（Ｋｒａｕｓｅ ｅｔ ａｌ．，（２０００）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．４８０，１４７−１５０；Ｐｉｇｅｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７６，７８１１−７８１９）から、ペプチドであるヘプシジン−（２８−４７）およびヘプシジン−（７０−８４）を、標準Ｆｍｏｃプロトコール（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９９：６７９６−６８０１；ａｎｄ Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ａｍ Ｊ Ｐａｔｈｏｌ．，１６１：６５５−６６４）を使用してＣ末端アミドとして合成した。これらのペプチドはｍ−マレイミドベンゾイル−Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステルを使用してアオガイヘモシアニンへ結合させ、そして２匹のＳＰＦウサギ（Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ−Ｉｆｆａ Ｃｒｅｄｏ）を各ペプチドコンジュゲート（Ｅｕｒｏｇｅｎｔｅｃ社、ベルギー国スラン）により免疫した。抗体ＥＧ（ｌ）−ＨｅｐＣ、ＥＧ（２）−ＨｅｐＣ［各々プロヘプシジン−（７０−８４）に対して向けられた］、ならびにＥＧ（ｌ）−ＨｅｐＮおよびＥＧ（２）−ＨｅｐＮ［各々プロヘプシジン−（２８−４７）に対して向けられた］が生成され、特性付けられ、そして使用された（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊）。

腎臓中での発現分析：ＧｅｎＢａｎｋ ｃＤＮＡ配列に基づいて、以下のプライマーを構築かつ使用した。５’−３’の方向で与えられるヒトヘプシジン（データベース受託番号：ＮＭ０２１１７５）５’−ＣＴＧ ＣＡＡ ＣＣＣ ＣＡＧ ＧＡＣ ＡＧＡ Ｇ−３’および５’−ＧＧＡ ＡＴＡ ＡＡＴ ＡＡＧ ＧＡＡ ＧＧＧ ＡＧＧ ＧＧ−３’；ラットヘプシジン（＃ＮＭ０５３４６９）、５’−ＡＣＡ ＧＡＡ ＧＧＣ ＡＡＧ ＡＴＧ ＧＣＡ ＣＴ−３’および５’−ＧＡＡ ＧＴＴ ＧＧＴ ＧＴＣ ＴＣＧ ＣＴＴ ＣＣ−３’、マウスヘプシジン−１（＃ＮＭ０３２５４１）、５’−ＣＧＡ ＴＡＣ ＣＡＡ ＴＧＣ ＡＧＡ ＡＧＡ ＧＡＡ ＧＧ−３’および５’−ＴＴＣ ＡＡＧ ＧＴＣ ＡＴＴ ＧＧＴ ＧＧＧ ＧＡ−３’。これらのプライマーは以前報告された配列に対する相同性を示さなかった。

ＲＮＡ単離は、ＤＮＡ消化を含むＱｉａｇｅｎ社製ＲＮＡｅａｓｙキットを使用して実施した。逆転写（ＲＴ）−ＰＣＲ分析は、以前に記載のとおりに実施した（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ，９９：６７９６−６８０１；およびＫｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ａｍ Ｊ Ｐａｔｈｏｌ．，１６１：６５５−６６４）。９４℃、４分間での初期変性後；反応液には３０サイクルの次の加熱プログラムを受けさせた。９４℃で３０秒間、６０℃で３０秒間、および７２℃で３０秒間；このプログラムの後には最後に７２℃での５分間の鎖延長ステップが続いた。増幅産物は、臭化エチジウム染色した１．８％の８９ｍＭ Ｔｒｉｓ／８９ｍＭ ホウ酸／２ｍＭ ＥＤＴＡ（ｐＨ ８．３）アガロースゲル上でランさせた。特異性についてのコントロールとして、増幅したＰＣＲ産物をＭＷＧ−Ｂｉｏｔｅｃｈによってシーケンシングした。

免疫ブロット分析：ウェスタンブロット実験を１６．５ ％のトリシン−ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル上で実施した。ヒト、マウス、およびラットの腎および肝、ならびにヒト尿由来のタンパク質（各実験のために５０ｍＬ）を公表されたプロトコール（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊；Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ，９９：６７９６−６８０１；およびＫｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ａｍ Ｊ Ｐａｔｈｏｌ．，１６１：６５５−６６４）によって抽出した。電気泳動法後に、半乾式ブロット法によって疎水性フッ化ポリビニリデンを基剤とする膜（Ｐａｌｌ社、英国ポーツマス）上にタンパク質を移した。１：１０００で希釈したヘプシジン抗体と一緒に膜を一晩インキュベートした。１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ ８．０）、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、および０．０５％ Ｔｗｅｅｎ ２０を含有するＴｒｉｓ−緩衝生理食塩液中で洗浄した後、色原体としてのニトロブルーテトラゾリウムおよび５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリルホスフェート（Ｓｉｇｍａ社）を使用してアルカリホスファターゼ結合ヤギ抗ウサギ抗体（希釈率１：５０，０００；Ｓｉｇｍａ社）とのインキュベーション後に免疫反応性タンパク質を可視化した。ウェスタンブロット上の免疫反応は、抗体と対応するペプチド免疫原とのプレインキュベーション後に特異的に遮断された。第２ヤギ抗ウサギ抗体との交差反応性は適切なコントロールによって排除した（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ，９９：６７９６−６８０１；およびＫｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ａｍ Ｊ Ｐａｔｈｏｌ，１６１：６５５−６６４）。

免疫細胞化学的プロトコール：組織を４％パラホルムアルデヒド中、またはブアン固定液中に４℃で１８時間固定し、パラフィン中に包埋した。パラフィン切片（４〜５μｍ）をヘプシジン（抗体ＥＧ（ｌ）−ＨｅｐＮ、ＥＧ（２）−ＨｅｐＮ、ＥＧ（ｌ）−ＨｅｐＣ、およびＥＧ（２）−ＨｅｐＣ、各希釈率１：２０００）に対してアビジン−ビオチン−ペルオキシダーゼ複合体（ＡＢＣ）法によって免疫染色した。インキュベーション順序および抗原−抗体結合部位の可視化は以前に詳述したように実施した（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊；Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９９：６７９６−６８０１；およびＫｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ａｍ Ｊ Ｐａｔｈｏｌ １６１：６５５−６６４）。手短には、これらの切片は各抗体と一緒に４℃で２４時間インキュベートし、次に希釈率１：２００のビオチニル化抗ウサギＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ社、米国ペンシルベニア州ウェストグローブ）と一緒に３０分間インキュベートした。これらの切片は次にＰＢＳ中で希釈した前形成したビオチン−ペルオキシダーゼ／ストレプトアビジン（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ社）の複合体と一緒に３０分間インキュベートした（最終濃度：ビオチン−ペルオキシダーゼ、０．７μｇ／ｍＬ；ストレプトアビジン、５μｇ／ｍＬ）。抗原−抗体結合部位は、０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ ７．６）中の０．７ｍＭ塩酸ジアミノベンジジン／０．００２％ Ｈ₂Ｏ₂中での切片のインキュベーションによって検出した。

特異性コントロール：方法依存性の非特異性は、公表されたようにコントロールをランすることによって排除した（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊）。抗体特異性は、抗体と同種および異種抗原ペプチドとの前吸着によって試験した（６．２５〜１００μｇ／ｍＬの抗血清）（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９９：６７９６−６８０１；およびＫｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ａｍ Ｊ Ｐａｔｈｏｌ １６１：６５５−６６４）。抗体と６．２５μｇ／ｍＬという低い濃度での同種抗原との前吸着は腎臓中での免疫染色を完全に遮断したが、抗体と１００μｇ／ｍＬまでの濃度の異種抗原との前吸着は免疫染色に影響を及ぼさなかった。

ヘプシジンのＥＬＩＳＡ競合結合アッセイ：血清および尿サンプルを個体２２例（女性１１例、男性１１例、年齢２３〜５９歳、平均３９歳）から入手し、および血清サンプルは長期血液透析を受けている腎不全症を有する患者２２例から入手した（女性１１例、男性１１例、年齢２５〜７７歳、平均４８歳）。慢性腎不全症を有する全患者は、３，０００ ＩＥの組換えヒトエリスロポエチン（ＥＰＯ）を用いて週２〜３回治療した。サンプル収集中には、健常志願者および患者が感染も出血もしないように細心の注意を払った。１０ｍＬの血液サンプルは血清チューブ内に採取し、１０ｍＬの尿サンプルは採尿チューブ中に採取し、４℃で１０分間、２，５００×ｇで遠心した。測定は、以前に記載したように（８）９６ウエルマイクロタイタープレートを使用して２回ずつ実施した。手短には、１：４，０００で希釈したウサギ抗ヘプシジン抗体ＥＧ（２）−ＨｅｐＮ２００μＬ／ウエルで、マイクロタイタープレートを被覆した。様々な量の合成ペプチド（０、２０、１００、５００、および１，０００ｎｇ／ｍＬ）またはヒト血清および尿サンプルを含有する標準物質５０μＬならびにＮ末端がビオチニル化されたヘプシジン−（２８−４７）（Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｓｐｅｃｉａｌｔｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、ドイツ国ハイデルベルク）１５０μＬを各ウエルに添加し（２ｎｇ／ウエル）、室温で１時間インキュベートした。ＴＢＳＴ（０．０５％ Ｔｗｅｅｎ ２０を含むＴＢＳ）を用いて洗浄した後、基質のテトラメチルベンジジン（ＤＲＧ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ社、ドイツ国マールブルク）を用いてストレプトアビジン−ペルオキシダーゼ酵素（Ｄａｋｏ社、ドイツ国ハンブルク）によってビオチニル化抗原−抗体複合体を検出した。呈色反応は１Ｍ Ｈ₂ＳＯ₄を用いて停止させ、この溶液の吸光度は波長４５０／６３０ｎｍで読み取った。

統計的分析：データは平均値±ＳＥＭとして表示した。統計的分析はスチューデントのｔ検定によって評価した。Ｐ＜０．０５である差を有意であると見なした。

結果
哺乳動物腎臓中のヘプシジンの発現：ＲＴ−ＰＣＲ分析は、肝臓（陽性コントロール、Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊を参照）だけではなくヒト、ラットおよびマウス腎においてもヘプシジンの明白な発現を解明した（図１０）。これらの動物種の肝臓（データは示していない）および腎臓中で、ヒトに対する１９２ｂｐの予想ＰＣＲ産物、マウスに対する１９３ｂｐの産物、ラットに対する２０１ｂｐの産物が検出された。配列分析により、ＰＣＲ生成産物が対応するペプチドのｃＤＮＡと完全相同性を有することが解明された。

翻訳レベルでは、ヘプシジンの存在が領域特異的抗体を用いてのウェスタンブロット試験によって確証された（図１０）。ヘプシジン前駆体分子のＣおよびＮ末端に対して向けられた抗血清は一致して、ヒト、ラットおよびマウス腎の抽出物中において〜９．５ｋＤａの免疫反応性バンドを同定した。

ヘプシジンの細胞局在：領域特異的ヘプシジン抗血清を用いた免疫組織化学的試験は、一致してヘプシジンをヒト、マウス、およびラット腎の遠位尿細管中へ局在化した（図１１〜１５）。近位腎尿細管、集合管、および糸球体には完全にヘプシジン免疫反応性が欠如していた。免疫反応性遠位尿細管は腎皮質および腎の髄質外層へ限定され、腎の髄質内層はヘプシジンに対する免疫染色を示さなかった（図１１、１２）。注目すべきことに、ヘプシジン陽性尿細管細胞間には明確な細胞間の相違が存在した。大多数の尿細管細胞はヘプシジンに対して強度に陽性であったが、他はほんのかすかな免疫反応性しか示さないか、またはヘプシジンに対して完全に非反応性であった（図１４）。著しくは、調査した全切片において、ヘプシジン抗血清は遠位尿細管を内張りしている上皮細胞の細胞質中で糸球体免疫反応性パターンを明らかにした（図１１、１２）。一部の組織では、ヘプシジン陽性細胞は分泌性細胞の頂極で濃縮した強力な免疫反応性を示したが（図１３、１５）、各細胞の側底膜ドメインでは免疫反応性は見いだされなかった。

血清および尿中のヘプシジンプロペプチドの検出：特異的Ｎ末端ヘプシジン抗体ＥＧ（２）−ＨｅｐＮを用いて、高い再現性および感受性を備える安定性ヘプシジンＥＬＩＳＡアッセイが開発された（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊）。図１６に見られるように、ＥＬＩＳＡはヒト血清中にプロヘプシジンが存在することを明らかにした。プロヘプシジンは、健常被験者の血清中で６８．５から１３９．２ｎｇ／ｍＬ（平均値±ＳＥ；１０４．２±１９．５ｎｇ／ｍＬ）の範囲内で測定された。慢性腎不全に罹患している患者の血清中のプロヘプシジン濃度は６３．９から３２７．３ｎｇ／ｍＬ（平均値±ＳＥ；１５６．８±６１．９ｎｇ／ｍＬ）まで変動し、コントロール群における濃度と比較して有意に増加した。

感受性ヘプシジンＥＬＩＳＡを使用して、プロヘプシジンはコントロール群からのヒト尿中では１３．９から４５６．０ｎｇ／ｍＬ（平均値±ＳＥ；１８０．１±９４．８ｎｇ／ｍＬ）の範囲内で検出された。ヒト尿中のプロヘプシジンの存在は、さらにウェスタンブロット分析によっても確証された。ヘプシジン抗血清はヒト尿の抽出物中で腎組織中の免疫反応性ヘプシジンと一緒に正確に共移動した〜９．５ｋＤａ分子量の単一ヘプシジン免疫反応性バンドを同定した（図１０）。

考察
新規ホルモンであるヘプシジンは抗菌性ペプチドそして鉄ホメオスタシスの中心的調節因子である（Ｐａｒｋ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ，２７６：７８０６−７８１０；Ｋｒａｕｓｅ ｅｔ ａｌ．，（２０００）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ，４８０：１４７−１５０；Ｐｉｇｅｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ，２７６：７８１１−７８１９；Ｎｉｃｏｌａｓ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ，９８：８７８０−８７８５；およびＮｉｃｏｌａｓ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ，９９：４５９６−４６０１）。以前の研究では、肝臓がヘプシジンの主要起源であることが証明された（Ｐａｒｋ ｅｔ ａｌ．，ＣＨ（２００１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ，２７６：７８０６−７８１０；およびＫｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊）。ヘプシジンは最初にヒト尿（Ｐａｒｋ ｅｔ ａｌ．，（２００１））および血液濾液（Ｋｒａｕｓｅ ｅｔ ａｌ．，（２０００））から単離されたが、腎臓ではこの調節ペプチドの発現は検出されなかった（Ｐｉｇｅｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００１））。

肝臓で使用して成功した適切なプライマー仕様および組み合わせ（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊；およびＧｅｈｒｋｅ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｂｌｏｏｄ，１０２：３７１−３７６）を使用して、本ＲＴ−ＰＣＲ分析は、ヘプシジンが肝臓中だけではなく、ヒト、ラット、およびマウスの３種の哺乳動物種の腎臓中でも発現することを明白に証明した。シーケンシング分析は生成したＰＣＲ産物の特異性を解明した。

腎臓中の翻訳されたヘプシジンペプチドの存在を検証するために、本出願人らはヘプシジンに対する大量の領域特異的抗血清を産生し、それらをウェスタンブロット分析および免疫組織化学において使用した。ウェスタンブロット分析は、腎臓中でのヘプシジンの発現を確証した。ヘプシジン前駆体分子中の様々なエピトープを認識する４種の抗血清は３種の動物種の腎臓中で〜９．５ｋＤａの免疫反応性ペプチドを同定したが、これは各ｃＤＮＡ配列から推定されたヘプシジンプロホルモンの分子量に対応する（Ｐｉｇｅｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００１））。この免疫反応性ペプチドの見かけの分子量もまた、肝臓中で検出されたヘプシジンプロホルモンの分子量と一致している（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊）。出願人らの所見は、ヘプシジンが腎臓中にも存在するので、ヘプシジンが肝特異的ではないことを明確に証明した。

４種の領域特異的ヘプシジン抗血清を用いた免疫組織化学的調査によって、ヒト、マウス、およびラットの腎臓中では、ヘプシジンが腎皮質および髄質外層の尿細管系に特異的に局在することが明らかになった。これらの免疫反応性尿細管は、光学顕微鏡で検出されたそれらの典型的な形態学的特徴によって遠位腎尿細管であると同定された。ヒトにおいてだけではなくマウスおよびラットの腎臓中での様々な領域特異的抗体による一致した染色は、遠位尿細管が腎ヘプシジンの起源であることを指摘している。近位腎尿細管、集合管、および糸球体または腎臓の髄質内層中ではヘプシジンに対する免疫反応性が検出されなかった。

腎皮質および髄質外層では、ヘプシジンの免疫反応性は遠位尿細管の上皮分泌性細胞に限定された。注目すべきことに、全ヘプシジン抗血清は糸球体免疫反応性パターンを生じさせたが、これは既に電子顕微鏡によってこれらの細胞中で同定されている各細胞の小さな分泌小胞またはリソソーム中にこのペプチドが局在することを推定させる（ｖａｎ Ｋａｔａｃｈａｌａｎ ＭＡ，Ｋｒｉｔｚ Ｗ：Ｐａｔｈｏｌｏｇｙ ｏｆ ｔｈｅ ｋｉｄｎｅｙ．Ｅｄｉｔｅｄ ｂｙ ＪＣ Ｊｅｎｎｅｔｔｅ，ＪＬ Ｏｌｄｓｏｎ，ＭＭ Ｓｃｈｗａｒｚ，ＳＧ Ｓｉｌｖｅｒ：Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，Ｈｅｐｔｉｎｓｔａｌｌ’ｓ，１９９８，ｐｐ ３−６６）。顕著にも、ヘプシジンの発現または分泌における細胞間の相違を反映する可能性があるヘプシジン免疫反応性の密度に関して同一尿細管の上皮細胞間には明確な細胞間の相違が存在した。注目すべきことに、一部の尿細管ではヘプシジンの免疫反応性は上皮細胞の全細胞質中に存在したが、他の尿細管中では強力なヘプシジンの免疫反応性は分泌性細胞の頂極に集中していた。この細胞レベルでのヘプシジンの特有の分布パターンは、ヘプシジンの管腔を介する遊離を前提としている。本出願人らは、腎尿細管細胞の側底膜ドメインではヘプシジン発現を検出しなかった。これは、腎ヘプシジンが尿細管を内張している分泌性細胞によって血中に遊離されないことを示唆している。

身体の鉄ホメオスタシスの制御は主として近位小腸における食事からの鉄取り込みの緊密な調節に依存すると広く考えられている。しかし、近年の研究は腎臓が鉄ホメオスタシスにおいて重要な役割を果たすことを証明している（Ｗａｒｅｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ａｍ Ｊ Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｒｅｎａｌ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．、印刷に先行する電子出版；Ｆｅｒｇｕｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｋｉｄｎｅｙ Ｉｎｔ，６４：１７５５−１７６４；およびＧｕｎｓｈｉｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９７）Ｎａｔｕｒｅ，３８８：４８２−４８８）。Ｗａｒｅｉｎｇおよび共同研究者らは、代謝的に重大な量の鉄が糸球体で濾過され、実際的に尿中へ排泄されるのは濾過された鉄の０．８〜１．５％に過ぎないことを納得できるように証明することができた（Ｗａｒｅｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．，５２４．２：５８１−５８６）。そこで、腎尿細管に沿って鉄再吸収のための極めて有効な経路があり、強力な調節が行われるに違いない。実際に、Ｆｅｒｇｕｓｏｎおよび共同研究者らは、腎臓の尿細管系中で二価金属トランスポーター１（ＤＭＴ−１）を局在することができた（Ｆｅｒｇｕｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ａｍ Ｊ Ｐｈｙｓｉｏｌ Ｒｅｎａｌ Ｐｈｙｓｉｏｌ．，２８０：Ｆ８０３−Ｆ８１４）。このタンパク質は、消化管による食事性鉄の取り込みのための主要経路であると提案されている（Ｇｕｎｓｈｉｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９７））。注目すべきことに、ＤＭＴ−１発現は、本出願人らもまたヘプシジンを見いだした場所である腎皮質および髄質外層の尿細管細胞の頂端膜ドメインで最高であることが証明されている。さらに、近年の研究は、変化した食事性鉄の摂取が腎ＤＭＴ−１発現を強力に調節することを証明している（Ｗａｒｅｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２００３））。ヘプシジン発現が十二指腸ＤＭＴ−１の発現と逆相関していることを証明するこれらの所見およびデータ（Ｆｒａｚｅｒ ｅｔ ａｌ．，（２００２）Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ，１２３：８３５−８４４）に基づくと、本出願人らは腎鉄輸送においてヘプシジンが調節性の役割を果たすことを提案している。

尿中へのヘプシジンの遊離の可能性は、ウェスタンブロット試験によって実証された。領域特異的ヘプシジン抗血清は、一致して、腎組織抽出物の場合と同様に免疫反応性プロヘプシジンと正確に共移動する正確な分子量（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊）の強力に標識されたバンドを同定した。これらの所見は、プロヘプシジンが分泌性遠位尿細管によって合成され、そこでは尿細管タンパク質分解および再循環を免れる尿中へ管腔を通して遊離されることを明らかに示している。ヒト尿中のプロヘプシジン濃度を測定するために、３．９５ｎｇ／ウエルの検出感受性を備える高感受性ＥＬＩＳＡを開発した。すでにＥＬＩＳＡ実験（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊）で使用されて成功を収めているヘプシジン抗血清ＥＧ（２）−ＨｅｐＮを用いたＥＬＩＳＡ分析は、健常被験者の尿中で１３．９から４５６．０ｎｇ／ｍＬ（平均値±ＳＥ；１８０．１±９４．８ｎｇ／ｍＬ）の範囲内の高濃度のプロヘプシジンを明らかにした。この濃度は、同一個人の循環中のプロヘプシジン濃度（６８．５から１３９．２ｎｇ／ｍＬ；平均値±ＳＥ、１０４．２±１９．５ｎｇ／ｍＬ）より相当に高い。注目すべきことに、循環中プロヘプシジンと血清中鉄もしくはフェリチンレベルとの間で相関は見いだされなかった（Ｋｕｌａｋｓｉｚ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｇｕｔ、近刊）。同様に、尿中プロヘプシジンと肝中ヘプシジン発現を調節すると提案されている血清中鉄もしくはフェリチンレベル（Ｐｉｇｅｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ，２７６：７８１１−７８１９；Ｎｅｍｅｔｈ ｅｔ ａｌ．，（２００２ Ｂｌｏｏｄ，１０１：２４６１−２４６３；およびＧａｎｚ Ｔ，（２００３）Ｂｌｏｏｄ，１０２：７８３−７８８）との間でも相関は検出されなかった（データは示していない）。このため、本出願人らは腎／尿中プロヘプシジンの調節は血清中鉄もしくはフェリチンによる直接的影響を受けないと提案する。

長期的血液透析を受けている腎不全症患者におけるプロヘプシジン調節の評価は、これらの患者の血清中のプロヘプシジン濃度は健常被験者における１０４．２ｎｇ／ｍＬから１５６．８ｎｇ／ｍＬへ有意に増加することを明らかにした。透析患者における増加したプロヘプシジンレベルは、腎臓がヘプシジンの合成に関係しているだけではなく、それらが循環中ペプチドの代謝および／または排出にも関係している可能性を示唆している。興味深いことに、最新の研究では、腎ホルモンであるエリスロポエチンが肝ヘプシジン遺伝子発現をダウンレギュレートすることが証明されている（Ｎｉｃｏｌａｓ（２００２）Ｂｌｏｏｄ Ｃｅｌｌｓ，Ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ，ａｎｄ Ｄｉｓｅａｓｅｓ，２９：３２７−３３５）。したがって、透析患者における増加したプロヘプシジン濃度についてまた別の説明は、末期腎不全症において一様に遭遇するエリスロポエチンの相対欠乏性であろう（Ｅｃｋａｒｄｔ ＫＵ，（２０００）Ｃｌｉｎ．Ｎｅｐｈｒｏｌ，５３：Ｓ２−８；およびＳａｎｔｏｒｏ Ａ：（２００２）Ｒｅｖ Ｃｌｉｎ Ｅｘｐ Ｈｅｍａｔｏｌ，Ｓｕｐｐｌ １：１２−２０）。しかし、本出願人らはヘプシジン阻害性ホルモンであるエリスロポエチンを用いて治療された慢性腎不全症患者において測定されたプロヘプシジンの増加したレベルを報告しているが、これはヘプシジンの腎濾過を支持している。本発明の１つの実施形態は、尿中ヘプシジンが一部は腎臓、そして一部は肝臓を起源とすることを提供する。このため、測定された尿中プロヘプシジンが遊離された腎ペプチドおよび排泄された循環中ペプチドの総計であることに注目しなければならない。

これらをまとめると、近年の研究は腎臓が鉄ホメオスタシスにおいて重要な役割を果たすことを証明しているが（Ｗａｒｅｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ａｍ Ｊ Ｐｈｙｓｉｏｌ Ｒｅｎａｌ Ｐｈｙｓｉｏｌ、印刷に先行する電子出版；Ｆｅｒｇｕｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００３）Ｋｉｄｎｅｙ Ｉｎｔ，６４：１７５５−１７６４；Ｇｕｎｓｈｉｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９７）Ｎａｔｕｒｅ，３８８：４８２−４８８；Ｗａｒｅｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｊ Ｐｈｙｓｉｏｌ，５２４．２：５８１−５８６およびＦｅｒｇｕｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ａｍ Ｊ Ｐｈｙｓｉｏｌ Ｒｅｎａｌ Ｐｈｙｓｉｏｌ，２８０：Ｆ８０３−Ｆ８１４）、腎鉄輸送の調節機構についてのデータは存在しない。これに関連して、本出願人らは３種の哺乳動物種の腎臓中で最初にヘプシジンを局在した。本出願人らの所見は、ヘプシジンが肝臓特異的ではないことを示している。腎臓における血清中ヘプシジンの排泄の他に、ペプチドは分泌性腎遠位尿細管中の内因性ホルモンとしても産生され、尿中に管腔を通して遊離されることを示しており、これは腎臓および／または尿管中でのヘプシジンの調節性の役割を意味している。腎尿細管系におけるヘプシジンの調節機構は、今後の研究で分析されなければならない。

ヒト膵臓中のヘプシジンの発現
本研究に使用した膵臓組織は、膵臓癌に罹患している患者におけるホイップル手術後に入手した。肝臓および腎臓で使用されて成功を収めている適切なプライマー仕様および組み合わせを使用して、このＲＴ−ＰＣＲ分析は、ヘプシジンが肝臓および腎臓中だけではなく、ヒト膵臓中でも発現することを明らかにした。シーケンシング分析は、生成したＰＣＲ産物の特異性を解明した。

特異的抗体を用いたウェスタンブロット分析は、膵臓中での翻訳レベルでのヘプシジンの発現を確証した。同一抗体を使用して、ヘプシジンは免疫組織化学によって膵臓中で局在化された。パラフィン切片は、ヘプシジンの免疫反応性が膵臓内分泌腺に局在することを明らかにした。膵臓外分泌腺では免疫反応性が見いだされなかった。

本発明は、プロヘプシジンおよびそのフラグメントを含むヘプシジンタンパク質の非生理的レベルを特徴とする疾患状態を診断することに関連する用途を有している。

本明細書では特定実施形態を参照しながら本発明について記載してきたが、これらの実施形態は本発明の原理および用途の単なる例示であることを理解されたい。このため、代表的な実施形態に多数の修飾を加えられること、そして添付の特許請求項によって規定された本発明の精神および範囲から逸脱することなく他の配置を考案できることを理解されたい。

本明細書に言及した全ての特許文献および非特許文献は、本発明が関係する当業者の技術レベルを示している。これらの出版物および特許出願は全て、各々の出版物および特許出願が特別かつ個別に参照してここに組み込まれると指示されているのと同一程度に参照して本明細書に組み込まれる。

Ｎ末端での典型的な２４ａａシグナルペプチド（ａａ２４と２５との間の線は推定シグナル配列開裂部位を示している）、３５ａａプロ領域、ならびに矢印で示したようにそれらのＮ末端短縮だけが相違するＣ末端２０−、２２−、および２５−ａａヘプシジンペプチドを含有するヒトヘプシジン前駆体タンパク質のアミノ酸配列を示した図である。ヘプシジン前駆体からのシグナルペプチドの開裂後、６０ａａから構成されるプロヘプシジン分子が産生する。ヘプシジン２５において提案されたジスルフィド結合性は、破線によって示したように１−８、２−７、３−６、および４−５である（Ｈｕｎｔｅｒ ｅｔ ａｌ．，２０から）。抗体記号によって示したように、抗血清ＥＧ（１および２）−ＨｅｐＮはヘプシジン前駆体ａａ２８−４７に対して産生され、抗血清ＥＧ（１）−ＨｅｐＣはａａ７０−８４に対して産生される。 下記を示した図である。（Ａ）：ヘプシジンの遺伝子発現を示しているヒト肝（レーン２および３）およびＨｅｐＧ２細胞（レーン４および５）のＲＴ−ＰＣＲ分析。塩基対ＤＮＡ格子が示されている（レーン１および７）。レーン６は陰性コントロールを示している。（Ｂ〜Ｄ）：抗体ＥＧ（１）−ＨｅｐＮ（Ｂ）、ＥＧ（２）−ＨｅｐＮ（Ｃ）およびＥＧ（１）−ＨｅｐＣ（Ｄ）を用いた、モルモット（レーン１）およびヒト肝（レーン２）の抽出物ならびにＨｅｐＧ２細胞（レーン３）、ヒト血清（レーン４）、およびモルモット骨格筋（レーン５、コントロール）中でのヘプシジンのウェスタンブロット分析。全抗体を用いて入手した１０および２０ｋＤａでの免疫反応性バンドがヘプシジン前駆体中で様々なエピトープを認識することに留意されたい（使用した分子量マーカー：ホスホリラーゼＢ、１０５ｋＤａ；グルタミン酸脱水素酵素、５３ｋＤａ；炭酸脱水酵素、３４ｋＤａ；ミオグロビンブルー、２３ｋＤａ；ミオグロビンレッド、１７ｋＤａ；リゾチーム、１３ｋＤａ；アプロチニン、７ｋＤａ；インスリン、３ｋＤａ）。 抗体ＥＧ（１）−ＨｅｐＮ（Ａ）、ＥＧ（２）−ＨｅｐＮ（Ｂ）、およびＥＧ（１）−ＨｅｐＣ（Ｃ）を用いた免疫蛍光顕微鏡によるＨｅｐＧ２細胞中のヘプシジンの検出を示した図である（スケールバー：８μｍ）。 モルモット（Ａ〜Ｆ）およびヒト（Ｇ〜Ｉ）肝中のヘプシジンの細胞局在を示した図である。領域特異的抗体ＥＧ（１）−ＨｅｐＮ（Ａ、Ｄ、Ｇ）、ＥＧ（２）−ＨｅｐＮ（Ｂ、Ｅ、Ｈ）およびＥＧ（１）−ＨｅｐＣ（Ｃ、Ｆ、Ｉ）を用いて免疫染色したパラフィン切片は、肝細胞の側底膜ドメイン（矢印）での明確な免疫反応性を示している。（倍率：Ａ〜Ｃ、×１８０；Ｄ〜Ｉ、×５４０）。 肝小葉内のヘプシジンの明白な帯状構造を示しているモルモット肝の免疫組織化学的切片（Ａ、抗体ＥＧ（１）−ＨｅｐＮ；Ｂ、抗体ＥＧ（２）−ＨｅｐＮ；Ｃ、抗体ＥＧ（１）−ＨｅｐＣ）を示した図である。免疫反応性は門脈周囲帯域（星印）から中心静脈（矢じり）に向かって減少している。中心静脈周囲の肝細胞中では免疫反応性が見いだされないことに留意されたい（Ｂにおける矢印は門脈三管を示している）。（Ａ〜Ｃ、×１８０） 循環中ヒトプロヘプシジンについてのＥＬＩＳＡ結果を示した図である。ｎｇ／ｍＬ単位でのヘプシジン−（２８−４７）の濃度および波長４５０ｎｍでのＥＬＩＳＡ溶液の吸光度を示している代表的検量線である。ヘプシジン−（２８−４７）の濃度が４から４００ｎｇ／ｍＬの範囲内では分解能が高いことに留意されたい。 健常志願者２６例（コントロール）、慢性腎不全症患者４０例、慢性腎不全症および腎性貧血を有する患者１９例、ならびに遺伝性ヘモクロマトーシス患者３５例中での静脈血清中プロヘプシジン濃度値のボックスプロットを示した図である。ボックス内の線は中央値を示し、円は平均値を示している。ボックスの下縁および上縁は、第１および第３四分位を示し、ひげは最小値および最大値を示している。破線は、循環中免疫反応性プロヘプシジンに対するコントロール群の平均レベルを記している（１０６．１６ｎｇ／ｍＬ）。 治療を受けた、および受けていないＨＨ患者のサンプル中でのプロヘプシジンと鉄との相関関係（Ａ）、フェリチンとの相関関係（Ｂ）およびトランスフェリン飽和との相関関係（Ｃ）を示した図である。本出願人らのサンプル中では顕著な相関が見いだされなかったことに留意されたい。 ＧｅｎＢａｎｋデータベース受託番号ＮＭ０２１１７５およびＡＡＨ２０６１２各々から再現したヘプシジンの１つの形態の完全ヌクレオチド（配列番号１）およびアミノ酸配列（配列番号２）を示している。 下記を示した図である。（Ａ）：ヘプシジンの遺伝子発現を示しているヒト（レーン２）、マウス（レーン３）、およびラット（レーン４）腎のＲＴ−ＰＣＲ分析。塩基対ＤＮＡ格子が示されている（レーン１および５）。（Ｂ、Ｃ）：抗体ＥＧ（２）−ＨｅｐＮ（Ｂ）、およびＥＧ（１）−ＨｅｐＣ（Ｃ）を用いてヒト（レーン１）、ラット（レーン２）、およびマウス（レーン３）腎の抽出物中、ならびにヒト尿（レーン４）中のヘプシジンのウェスタンブロット分析。両方の抗体を用いて入手した９．５ｋＤａでの免疫反応性バンドがヘプシジン前駆体中で相違するエピトープを認識することを留意されたい（使用した分子量マーカー：ホスホリラーゼＢ、１０５ｋＤａ；グルタミン酸脱水素酵素、５３ｋＤａ；炭酸脱水酵素、３４ｋＤａ；ミオグロビンブルー、２３ｋＤａ；ミオグロビンレッド、１７ｋＤａ；リゾチーム、１３ｋＤａ；アプロチニン、７ｋＤａ；インスリン、３ｋＤａ） ラット腎皮質中のヘプシジンの細胞局在を示した図である。領域特異的抗体ＥＧ（ｌ）−ＨｅｐＣ（Ａ）、ＥＧ（２）−ＨｅｐＣ（Ｂ）、ＥＧ（１）−ＨｅｐＮ（Ｃ）、およびＥＧ（２）−ＨｅｐＮ（Ｄ）を用いて免疫染色したパラフィン切片は、腎皮質の遠位尿細管中の明確な免疫反応性を示している。一部の尿細管では免疫反応性は上皮細胞の細胞質（矢印）内に分布しているが、他の尿細管中では免疫反応性は各細胞の頂極（Ｄ、矢じり）に局在している。腎糸球体（星印）にはヘプシジン免疫反応性が欠如することに留意されたい。（倍率：Ａ、×９０；Ｂ〜Ｄ、×１８０） ラット（ＡおよびＣ）およびマウス（ＢおよびＤ）腎中でのヘプシジンの組織分布を示した図である。抗体ＥＧ（２）−ＨｅｐＮを用いての免疫組織化学検査結果は、黒色弧状点線によって示される外帯（ｏｓ）と内帯（ｉｓ）との間のヘプシジン免疫反応性の顕著な減少を伴う髄質外層（ＡおよびＢ）を示している。ＣおよびＤは、髄質内層（ｍ）内でのヘプシジン免疫反応性の欠如を示している。皮質（ｃ）中では強度の免疫反応性が観察されている。（倍率：Ａ、Ｂ、およびＤ、×９０；Ｃ、×１８０） 抗体ＥＧ（１）−ＨｅｐＮ（Ａ）、ＥＧ（２）−ＨｅｐＮ（ＢおよびＤ）、およびＥＧ（１）−ＨｅｐＣ（Ｃ）を用いたラット腎中のヘプシジンの細胞内局在を示した図である。一部の遠位尿細管では免疫反応性は上皮細胞の細胞質（矢印）内に分布しているが、他の尿細管中では免疫反応性は各細胞の頂極に向かって強度に集中している（黒色矢じり）。腎糸球体（星印）および近位尿細管（透明矢じり）にはヘプシジン免疫反応性が欠如することに留意されたい。（倍率：Ａ〜Ｄ、×３６０） ヒト腎臓中のヘプシジンの細胞局在を示した図である。抗体ＥＧ（１）−ＨｅｐＮ（Ａ）、ＥＧ（２）−ＨｅｐＮ（ＢおよびＤ）、およびＥＧ（１）−ＨｅｐＣ（Ｃ）は腎皮質遠位尿細管（矢印）中の明確な免疫反応性を示している。同一尿細管では、細胞質染色を伴う強度の（黒色矢じり）およびかすかな（透明矢じり）免疫反応性の上皮細胞を示しているヘプシジン免疫反応性の細胞内の相違が存在する。糸球体（星印）中では免疫反応性は見られない。（倍率：Ａ〜Ｃ、×１８０；Ｄ、×３６０） 抗体ＥＧ（１）−ＨｅｐＮ（Ａ）、ＥＧ（２）−ＨｅｐＮ（ＢおよびＤ）、およびＥＧ（２）−ＨｅｐＣ（Ｃ）を用いたヒト腎中の遠位尿細管細胞の頂極でのヘプシジン免疫反応性の検出を示した図である。分泌性上皮細胞の頂極（黒色矢じり）では強度の免疫染色が見られるが、一部の細胞はヘプシジン免疫反応性が欠如する（透明矢じり）ことに留意されたい。星印は腎糸球体を示している。（倍率：Ａ〜Ｃ、×１８０；Ｄ、×３６０）。 健常志願者２２例（コントロール）および慢性腎不全を有する患者２２例における静脈血清および尿中プロヘプシジン濃度値のボックスプロットを示した図である。ボックス内の線は中央値を示し、円は平均値を示している。ボックスの下縁および上縁は、第１および第３四分位を示し、ひげは最小値および最大値を示している。破線は、循環中免疫反応性プロヘプシジンに対するコントロール群の平均レベル（１０４．２ｎｇ／ｍＬ）を記している。

【配列表】

Claims (20)

1. 非生理的レベルのヘプシジンにより疾患状態を診断する方法であって、前記方法は、被験者から組織または液体サンプルを入手するステップと、前記サンプルをヘプシジンの中央部分もしくはカルボキシ末端エピトープ１つ以上に特異的に結合する抗体もしくはそのフラグメントと接触させるステップと、前記サンプル中のヘプシジンレベルを定量するステップと、を含み、非生理的レベルのヘプシジンが前記疾患状態を表示する、方法。
2. 前記抗体がヘプシジンのアミノ酸２８から４７内に含有される中央部分エピトープに特異的に結合する、請求項１記載の方法。
3. 前記抗体がヘプシジンのアミノ酸７０から８４内に含有されるカルボキシ末端エピトープに特異的に結合する、請求項１記載の方法。
4. 前記定量ステップが、ラジオイムノアッセイ、酵素結合免疫吸着アッセイ、サンドイッチアッセイ、沈降反応、ゲル免疫拡散アッセイ、凝集アッセイ、蛍光免疫法、タンパク質Ａイムノアッセイおよび免疫電気泳動アッセイからなる群から選択されるアッセイを実施するステップを含む、請求項１記載の方法。
5. 非生理的レベルのヘプシジンにより疾患状態を検出するキットであって、前記キットは、ヘプシジンの中央部分もしくはカルボキシ末端エピトープ１つ以上に特異的に結合する抗ヘプシジン抗体もしくはそのフラグメントと、前記抗体もしくはそのフラグメントに直接的もしくは間接的に結合する試薬１種とを含む、キット。
6. 前記抗ヘプシジン抗体もしくはそのフラグメントが支持体上に固定される、請求項５記載のキット。
7. 前記試薬が第１結合分子と複合したヘプシジンを含む、請求項５記載のキット。
8. 第１結合分子がビオチンである、請求項７記載のキット。
9. 前記キットが、第２結合分子と複合した１種の酵素および前記酵素の基質をさらに含む、請求項８記載のキット。
10. 第２結合分子がストレプトアビジンである、請求項９記載のキット。
11. 前記酵素がホースラディッシュ・ペルオキシダーゼであり、前記基質が過酸化物を含む、請求項９記載のキット。
12. ヘプシジンの中央部分もしくはカルボキシ末端エピトープ１つ以上に特異的に結合する抗体またはそのフラグメント。
13. 前記中央部分エピトープがヘプシジンのアミノ酸２８から４７内に含有されている、請求項１２記載の抗体。
14. 前記カルボキシ末端エピトープがヘプシジンのアミノ酸７０から８４内に含有されている、請求項１２記載の抗体。
15. 前記ヘプシジンがプロヘプシジン、ヘプシジンもしくはそのフラグメントを含む、請求項１記載の方法。
16. 前記ヘプシジンがプロヘプシジンを含む、請求項１記載の方法。
17. 前記ヘプシジンがプロヘプシジンもしくはヘプシジンを含む、請求項５記載のキット。
18. 前記ヘプシジンがプロヘプシジンを含む、請求項５記載のキット。
19. 前記ヘプシジンがプロヘプシジンもしくはヘプシジンを含む、請求項１２記載のヘプシジン。
20. 前記ヘプシジンがプロヘプシジンを含む、請求項１２記載のヘプシジン。
    

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