JP2005530493A - ムチン融合ポリペプチドワクチン、組成物およびそれらの使用方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、癌のような疾患を予防および処置する際のタンパク質ワクチンの組成物および方法ならびにそれらの使用に関する。
α−Gal(Galα1,3Galβ1,4GlcNAcβ1−R)糖質エピトープは、特に、旧世界ザル(Old World Monkey)、サル(ape)およびヒトを除いて、動物界全体を通じて発現される。これらの種は、その生合成を担うα1,3ガラクトシルトランスフェラーゼをコードする遺伝子における不活性変異が原因で、そのエピトープを欠いている。この変異が存在する動物において、この変異は、脂質によって、および種々のキャリアタンパク質上の両方に保持される。このエピトープを欠く種(例えば、ヒト)は、おそらく、腸内細菌叢の細菌莢膜多糖に対する免疫応答の結果として、α−Galを認識する抗体を有する。抗α−Gal(抗Gal)抗体は、全ての抗体のクラスおよびサブクラスにあり、ヒトIgGの1%程度が、この特異性を有する。
本発明は、Galα1,3Gal置換タンパク質がワクチンの免疫原性を増すという発見に一部基づく。ムチン(これは、α1,3ガラクトシルトランスフェラーゼの標的である)は、ワクチンにおいて特に有用である。
本発明は、Galα1,3galエピトープを有するムチン融合タンパク質が有効なアジュバントであるという発見に一部基づく。
本発明のワクチンは、アジュバントポリペプチドおよび抗原を含む。このアジュバントポリペプチドは、融合タンパク質であり、抗原は、免疫応答が哺乳動物において誘導される任意の化合物または分子である。
種々の局面において、本発明は、糖タンパク質(例えば、ムチンポリペプチド)の少なくとも一部を含む第1のポリペプチドを含むアジュバント融合タンパク質を提供し、この第1のポリペプチドは、第2のポリペプチドに作動可能に連結されている。「少なくとも一部分」とは、ムチンポリペプチドが少なくとも1つのムチンドメイン(例えば、O結合型グリコシル化部位)を含むことを意味する。本明細書中で使用される場合、「融合タンパク質」または「キメラタンパク質」とは、非ムチンポリペプチドに作動可能に連結されたムチンポリペプチドの少なくとも一部分を含む。「ムチンポリペプチド」とは、ムチンドメインを有するポリペプチドをいう。このムチンポリペプチドは、1個、2個、3個、5個、10個、20個またはそれ以上のムチンドメインを有する。このムチンポリペプチドは、O−グリカンで置換されたアミノ酸配列によって特徴づけられる任意の糖タンパク質である。例えば、ムチンポリペプチドは、2つ毎または3つ毎のアミノ酸がセリンまたはスレオニンである。ムチンポリペプチドは、分泌タンパク質である。あるいは、このムチンポリペプチドは、細胞表面タンパク質である。
本発明のワクチンはまた、抗原を含む。「抗原」は、免疫応答が望まれる任意の化合物を含む。抗原は、身体に導入される場合、免疫応答(例えば、B細胞からの抗体の生成、T細胞の活性化および増大、ならびにサイトカイン発現(例えば、インターロイキン))を刺激する任意の物質を含む。「B細胞」または「Bリンパ球」とは、活性化される場合、抗体の生成を担う免疫細胞を意味する。「T細胞」または「Tリンパ球」とは、細胞傷害性T細胞およびヘルパーT細胞としてさらに規定される、リンパ球のクラスのメンバーを意味する。T細胞は、抗原を特徴づけるエピトープを同定し、T細胞が外来物質として認識する罹患した細胞を攻撃および破壊する、免疫応答全体を調節および調整する。抗原としては、例えば、毒素、細菌、外来血球、および移植した器官の細胞が挙げられる。好ましくは、その抗原は、C型肝炎、HIV、B型肝炎、パピローマウイルス、マラリア、結核、単純ヘルペスウイルス、クラミジア、およびインフルエンザ、またはそれらの生物学的成分(例えば、ウイルスポリペプチドまえたは細菌ポリペプチド)である。本発明の実施形態において、アジュバントポリペプチドは、抗原に共有結合される。
本発明の別の局面は、ムチンポリペプチド、またはその誘導体、フラグメント、アナログもしくはホモログをコードする核酸を含むベクター、好ましくは、発現ベクターに関する。種々の局面において、そのベクターは、免疫グロブリンポリペプチド、またはその誘導体、フラグメント、アナログもしくはホモログをコードする核酸に作動可能に連結されたムチンポリペプチドをコードする核酸を含む。さらに、そのベクターは、α1,3ガラクトシルトランスフェラーゼ、またはポリペプチドをグリコシル化するために有用な類似の酵素をコードする核酸、および抗原をコードする核酸を含む。本明細書中で使用される場合、用語「ベクター」とは、別の核酸(これに対してそのベクターが連結される)を輸送し得る核酸分子をいう。ベクターの1つの型は、「プラスミド」であり、プラスミドとは、さらなるDNAセグメントが連結される管状の二本鎖DNAループをいう。ベクターの別の型は、ウイルスベクターであり、ここでさらなるDNAセグメントは、ウイルスゲノムに連結される。特定のベクターは、これが導入される宿主細胞において自己複製し得る(例えば、細菌の複製機点を有する細菌ベクターおよび哺乳動物のエピソームベクター)。他のベクター(例えば、非エピソーム哺乳動物ベクター)は、宿主動物に導入される際に、宿主細胞のゲノムに組み込まれ、それにより、宿主ゲノムとともに複製される。さらに、特定のベクターは、これらが作動可能に連結される遺伝子の発現を指向し得る。このようなベクターは、本明細書中で「発現ベクター」といわれる。一般に、組換えDNA技術において有用な発現ベクターは、しばしば、プラスミドの形態である。本明細書中において、「プラスミド」および「ベクター」は、プラスミドがベクターの最も一般的に使用される形態であるので、交換可能に使用される。しかし、本発明は、等価な機能を提供する、ウイルスベクターのような他の形態の発現ベクター(例えば、複製欠損レトロウイルス、アデノウイルスおよびアデノ随伴ウイルス)を含むことが意図される。
本発明のワクチンおよび融合タンパク質および核酸は、薬学的組成物に処方され得る。これらの組成物は、上記の物質のうちの1つに加えて、薬学的に受容可能な賦形剤、キャリア、緩衝液、安定化剤または当業者に周知の他の物質を含み得る。このような物質は、非毒性であるべきであり、活性成分の有効性を妨害するべきでない。キャリアまたは他の物質の正確な性質は、投与経路(例えば、経口、静脈内、皮内または皮下、経鼻、筋肉内、腹腔内またはパッチ経路)に依存し得る。
本発明のワクチンは、アジュバントポリペプチドを欠く他のワクチンより、優れた免疫防御特性および免疫治療特性を有する。ムチン−Ig融合タンパク質含有ワクチンは、増強した免疫原性、安全性、寛容性および有効性を有する。例えば、本発明のワクチンの増強した免疫原性は、免疫応答(例えば、抗体生成および/または分泌、活性化ならびにT細胞の増殖、およびサイトカイン発現(例えば、インターロイキンの生成))の刺激によって測定されるように、比較する非アジュバントポリペプチド含有ワクチンより、1.5倍、2倍、3倍、5倍、10倍、20倍、50倍、100倍、またはそれ以上大きいものであり得る。
本発明は、細胞における抗体の生成および/または分泌を増大または刺激する方法を提供する。この細胞は、抗体を形成する細胞(例えば、B細胞)である。あるいは、この細胞は、B細胞による抗体生成を増大させる細胞(例えば、T細胞(ThおよびTc)、マクロファージ、樹状細胞)である。
本発明は、免疫細胞(例えば、B細胞またはT細胞)を活性化または刺激する方法を提供する。T細胞活性化は、カルシウム媒介性細胞内cGMPの増加、またはIL−2の細胞表面レセプターの増加によって規定される。例えば、T細胞活性化の増加は、T細胞とワクチンとを接触させた後の、ワクチン非存在下と比較した、カルシウム媒介性細胞内cGMPおよびIL−2レセプターの増加によって特徴づけられる。細胞内cGMPは、例えば、市販の試験キットを用いた競合的免疫アッセイまたはシンチレーション近接アッセイによって測定される。細胞表面IL−2レセプターは、例えば、IL−2レセプター抗体(例えば、PC61抗体)への結合を決定することによって測定される。免疫細胞活性化はまた、当該分野で公知の方法により、B細胞増殖活性、ポリクローナル免疫グロブリン(Ig)生成、および抗原特異的抗体形成を測定することによって、決定され得る。
(発現ベクターの構築)
ブタα1,3 GTを、ブタ脾臓cDNAから、そのコード配列の5’末端に相補的な6つのコドン、Kozak翻訳開始コンセンサス配列およびHind3制限部位を有する正方向プライマー、ならびにそのコード配列の3’末端に相補的な6つのコドン、翻訳停止およびNotI制限部位を有する逆方向プライマーを用いてPCR増幅した。増幅した1,3GT cDNAを、Hind3およびNot1を用いてCDM8のポリリンカーにクローニングした。P−セレクチン糖タンパク質リガンド−1コード配列を、HL−60 cDNAライブラリーからPCRによって得て、Hind3およびNotIを用いてCDM8にクローニングし、DNA配列決定によって確認した。ムチン/免疫グロブリン発現プラスミドを、PSGL−1の細胞外部分のPCR増幅したcDNAをインフレームで、BamHI部位を介して、CDM7において発現カセットとして運ばれるマウスIgG2bのFc部分(ヒンジ、CH2およびCH3)に連結することによって構築した。
トランスフェクションカクテルを、39μlの20%グルコース、39μgのプラスミドDNA、127μlのdH2O、および15.2μlの0.1M ポリエチレンイミン(25kDa;Aldrich,Milwaukee,WI)を5mlポリスチレン管中に混合することによって調製した。全てのトランスフェクション混合物において、13μgのPSGL−1/mIgG2bプラスミドを使用した。種々のグリコシルトランスフェラーゼについて13μgのプラスミドを添加し、必要な場合、CDM8プラスミドを添加して、合計39μgのプラスミドDNAにした。混合物を、10mlの培養培地中、約70%コンフルエントのその細胞に添加する前に、室温で10分間放置した。7日後、細胞上清を回収し、細片を遠沈し(1400×g、15分)、NaN3を最終濃度0.02%(w/v)になるように添加した。
PSGL−1/mIgG2b融合タンパク質を、4℃において一晩転倒混和することによって、50μlのヤギ抗mIgGアガロースビーズ(100:1スラリー;Sigma)で回収した上清から精製した。融合タンパク質を有するビーズを、PBS中で3回洗浄し、その後の分析のために使用した。代表的には、サンプルを、50μlの2×還元サンプル緩衝液中に溶解し、10:1のサンプルを、各ウェルにロードした。
PNGaseFキット(Roche Diagnostics,Indianapolis,IN)を、N−グリカン脱グリコシル化のために使用した。製造業者によって提供されたプロトコルをわずかに改変して、使用した。1.5mlのエッペンドルフチューブに、20μlの反応緩衝液を、アガロースビーズ上の精製PSGL−1/mIgG2bと混合し、3分間沸騰させた。その混合物を遠沈し、10μlの上清を新しいエッペンドルフチューブに移した。10μlのPNGaseF、またはネガティブコントロールとして10μlの反応緩衝液を添加した。チューブを、1.5時間、37℃でインキュベートした。インキュベーション後、20μlの2×還元サンプル緩衝液および10μlのH2Oを添加し、サンプルを、3分間沸騰させた。
96ウェルELISAプレート(Costar 3590,Corning,NY)に、50μlの50mM 炭酸緩衝液(pH9.6)中、0.5μg/ウェルのアフィニティー精製ヤギ抗mIgG特異的抗体(Sigma)を室温で2時間コーティングした。0.05% Tween含有PBS(PBS−T)中の3%ウシ血清アルブミン(BSA)300μlを用いて4℃で一晩ブロッキングし、その後の洗浄の後、50μlのサンプル上清を添加し、培養培地で連続希釈した。洗浄した後、プレートを、50μlのヤギ抗mIgM−HRP(Sigma)(ブロッキング緩衝液中で1:10,000希釈)とともに2時間インキュベートした。発色溶液については、1錠の3,3’,5,5’−テトラメチルベンジジン(Sigma)を、11mlの0.05M クエン酸/リン酸緩衝液(3μlの30%(w/v)H2O2を含有)中に溶解した。100μlの発色溶液を添加した。その反応を、25μlの2M H2SO4で停止した。そのプレートを、450nmおよび540nmで自動化マイクロプレートリーダー(Bio−Tek Instruments,Winooski,VT)で読み取った。標準物質として、精製mIgG Fcフラグメント(Sigma)の培養培地中での希釈系列を、三連で使用した。
SDS−PAGEを、5% 濃縮ゲルおよび8%の分離ゲルを用いてLaemmliの方法(1970)によって行い、分離したタンパク質を、以前に記載されたように(Liuら,1997)、HybondTM−C extra膜に電気泳動的にブロットした。0.05% Tween−20含有Tris緩衝化生理食塩水(TBS−T)(3% BSAを含む)中で一晩ブロッキングした後、膜をTBS−Tで3回洗浄した。次いで、それらを、マウス抗ヒト血液型A(全ての型)(mIgM,Dako,Carpinteria,CA)または抗ヒトH型1(mIgG3,Signet;Dedham,MA)、H型2(mIgM,Dako)もしくはH型3(mIgM,ハイブリドーマHH14,ATCC HB9299)とともに、1時間室温にてインキュベートした。全ての抗体を、TBS−T中の3% BSAで1:200に希釈した。例外として、H型3抗体は、TBS−T中3% BSAで1μg/mlの濃度に希釈した。膜をTBS−Tで3回希釈し、その後、TBS−T中の3% BSAで1:2000希釈した、二次西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)結合体化抗体であるヤギ抗mIgM(Cappel,Durham,NC)またはヤギ抗mIgG3(Serotec,Oxford,England)とともに、室温で1時間インキュベートした。結合した二次抗体を、ECLキット(Amersham Pharmacia Biotech,Uppsala,Sweden)を使用して、製造業者の説明書に従って、化学発光によって可視化した。PSGL−1/mIgG2b自体を検出するために、HRP標識ヤギ抗mIgG(Sigma)を、上記のように、TBS−T中の3% BSAで1:10,000希釈で使用したが、二次抗体とはインキュベートしなかった。
ヒトIgG、IgMおよびIgAを、ヤギ抗ヒトIgG(Fc特異的;A−3316,Sigma)、ヤギ抗ヒトIgM(μ−鎖特異的;A−9935,Sigma)、およびヤギ抗ヒトIgA(α−鎖特異的;A−269 1,Sigma)のアガロースビーズを使用して20名を超える健常な血液ドナーからプールしたヒトAB血清から精製した。簡潔には、5mlのスラリー(2.5mlの包装されたビーズ)を、カラム(10mm直径)に注ぎ、PBSで洗浄した。10μlのヒトプールAB血清を、蠕動ポンプを用いて1ml/分でアプライし、数カラム容量のPBSで洗浄し、0.1Mグリシン、0.15M NaCl、pH2.4で、流速1ml/分を用いて溶出した。1ml画分を0.7mlの中和緩衝液(0.2M Tris/HCl,pH9)を含むチューブに回収した。280nmの吸光度を分光光度計で読み取り、タンパク質を含む管をプールし、1% PBSに対して透析し、凍結乾燥した。凍結乾燥した免疫グロブリンを、蒸留水中に再懸濁し、濃度を、IgGについては16mg/mlに、IgAについては4mg/mlに、そしてIgMについては2mg/mlに調節した。
ブタα1,3GTプラスミドとともに、ベクタープラスミドCDM8、PSGL−1/mIgG2bプラスミド、またはPSGL−1/mIgG2bでトランスフェクトしたCOS−7 m6細胞からの上清を、トランスフェクションして約7日後に回収した。分泌ムチン/Ig融合タンパク質を、抗マウスIgGアガロースビーズに吸収することによって精製し、SDS−PAGEおよび検出のためにBandereia simplicifoliaイソレクチンB4(BSA 1134)を用いるウェスタンブロッティングに供した。図1において認められるように、その融合タンパク質は、145kDの見かけの分子量を有する広いバンドとして還元条件下で移動し、これは、銀染色でも比較的弱くしか染色されなかった。サイズの不均一性(約125〜165kDa)および弱い染色は、高度にグリコシル化されたムチン型タンパク質の挙動に関して、前の観察と一致している。この融合タンパク質は、ホモダイマーとして生成される可能性が最も高い。なぜなら、非還元条件下でのSDS−PAGEにより、250kDaを超える見かけの分子量の2本のバンドが明らかになったからである。それぞれ、同数のPSGL−1/mIgG2bプラスミド単独またはα1,3 GTプラスミドとともにトランスフェクトしたCOS細胞に由来する2つの上清からアフィニティー精製した融合タンパク質の量は、同様であった。BSA 1134でエレクトロブロットされた膜をプロービングすると、ブタα1,3GTで同時トランスフェクトした後に得た融合タンパク質の強い染色が明らかになった(図1)。α1,3 GT cDNAの同時トランスフェクトなしのCOS−7 m6細胞において生成されたPSGL−1/mIgG2b融合タンパク質はまた、COS細胞が、類人猿に由来し、旧世界ザルがα1,3 GT活性を欠くという事実にもかかわらず、BSA IB41レクチンで弱い染色を示した。このことは、BSA 1134レクチンがGalα1,3Galエピトープよりわずかに広い特異性を有することを示す。にもかかわらず、ブタα1,3GT cDNAの同時トランスフェクションは、高度にGalα1,3Gal置換されたPSGL−1/mIgG2b融合タンパク質の発現を支持した。
本明細書中に記載のデータを、以下の試薬および方法を使用して生成した。
COS−7 m6細胞(Seed,1987)、CHO−K1(ATCC CCL−61)、およびSV40ラージT抗原発現293ヒト胚性腎臓細胞株(293T;B.Seedにより提供された腎臓)を、10% ウシ胎仔血清(GibcoBrl,Life Technologies)、25μg/ml硫酸ゲンタマイシン(Sigma,St.Louis,MO)および2mM グルタミン(GibcoBrl,Life Technologies)を補充したダルベッコ改変イーグル培地(GibcoBrl,Life Technologies,Paisley,Scotland)中で培養した。細胞を2〜4日ごとに継代した。そのHH14ハイブリドーマ(ATCC HB− 9299;米国特許第4,857,639号)を、10% ウシ胎仔血清、100U/mlのペニシリン、100μg/μlのストレプトマイシン、および2mM グルタミンを補充したRPMI 1640(GibcoBrl,Life Technologies)中で培養した。
架橋剤N−[γ−マレイミドブチリルオキシ]スルホスクシンイミドエステル(Sulfo−GMBS)(22324, PIERCE,Rockford.IL 61105)。オボアルブミン(A−7641,Sigma,St.Louis,Mo 63178)。Galα1,3Gal置換PSGL1/mIgG2b。カップリング緩衝液:20mM リン酸ナトリウム、0.15M NaCl、0.1M EDTA、pH7.2 Hi TrapTM脱塩カラム(17−1408−01,Amersham Biosciences,SE−75184 Uppsala,Sweden)。HiPrepTM 16/60 SephacrylTM S−200カラム(17−1166−01,Amersham Biosciences,SE−75184 Uppsala,Sweden)。
実施例1に記載のGalα1,3Gal置換PSGL1/mIgG2bを、カップリング緩衝液で濃度2mg/mlに再懸濁した。200μlの再懸濁Galα1,3Gal置換PSGL1/mIgG2bを、10mlの管に移した。2mgのSulfo−GMBSを、1mlの結合緩衝液に溶解し、100μlのSulfo−GMBS溶液を、Galα1,3Gal置換PSGL1/mIgG2bを含む試験管にすぐに移した。室温で2時間インキュベートする。脱塩カラムを15mlのカップリング緩衝液で平衡化する。300μlの反応溶液をHiTrapTM脱塩カラムにFPLCシステムを用いてアプライする。カップリング緩衝液の0.5mlのアリコートを溶出する。280nmの吸光度により溶出したタンパク質をモニターする。マレイミド活性化Galα1,3Gal置換PSGL1/mIgG2bは、画分5〜6に溶出するはずである。500μlのカップリグ緩衝液中に2mgのオボアルブミンを室温で一晩溶解する。オボアルブミン溶液を、マレイミド活性化Galα1,3Gal置換PSGL1/mIgG2bを含むプールした画分に添加する。室温で3時間インキュベートする。8M グアニジン溶液を、グアニジンの濃度が6Mに達するまで結合体化オボアルブミン−PSGL−1/mIgG2bタンパク質を含む試験管に添加する。HiPrepTM 16/60 SephacrylTM S−200カラムを100mlのPBSで平衡化する。4.5mlの反応容量を、FPLCシステムでそのカラムにアプライする。1.0mlアリコートのPBSで溶出する。280nmの吸光度により、タンパク質溶出をモニターする。カップリングタンパク質は、画分35〜38に溶出するはずである(図6および7を参照のこと)。水に対する透析によりPBSを除去する。カップリングタンパク質を凍結し、凍結乾燥する。そのカップリングタンパク質をELISAおよびウェスタンブロッティング分析によって特徴付けする。
本発明は、その詳細な説明と共に記載されてきたが、前述の説明は、例示することが意図されるのであって、本発明の範囲を制限しない。本発明の範囲は、添付の特許請求の範囲によって規定される。他の局面、利点、および改変は、上記の特許請求の範囲の範囲内である。
Claims (28)
- 精製ワクチンであって、該ワクチンは以下:
(a)第2のポリペプチドに作動可能に連結された第1のポリペプチドを含むアジュバントポリペプチドであって、該第1のポリペプチドは、ムチンポリペプチドであり、α1,3ガラクトシルトランスフェラーゼによりグリコシル化され、該第2のポリペプチドは、免疫グロブリンポリペプチドの少なくとも1つの領域を含む、アジュバントポリペプチド、ならびに
(b)抗原、
を含む、精製ワクチン。 - 請求項1に記載のワクチンであって、前記アジュバントポリペプチドは、前記抗原に作動可能に連結される、ワクチン。
- 請求項1に記載のワクチンであって、前記アジュバントポリペプチドは、前記抗原に共有結合されている、ワクチン。
- 請求項1に記載のワクチンであって、前記第1のポリペプチドは、PSGL−1、MUC1、MUC2、MUC3、MUC4、MUC5a、MUC5b、MUC5c、MUC6、MUC11、MUC12、CD34、CD43、CD45、CD96、GlyCAM−1、MAdCAM、またはそれらのフラグメントからなる群より選択される、ワクチン。
- 請求項1に記載のワクチンであって、前記第1のポリペプチドは、P−セレクチン糖タンパク質リガンド−1の少なくとも1つの領域を含む、ワクチン。
- 請求項1に記載のワクチンであって、前記第1のポリペプチドは、P−セレクチン糖タンパク質リガンド−1の細胞外部分を含む、ワクチン。
- 請求項1に記載のワクチンであって、前記第1のポリペプチドは、ヒトP−セレクチン糖タンパク質リガンド−1のアミノ酸19〜319を含む、ワクチン。
- 請求項1に記載のワクチンであって、前記第1のポリペプチドは、複数のGalα1,Galエピトープを含む、ワクチン。
- 請求項6に記載のワクチンであって、前記第1のポリペプチドは、野生型P−セレクチン糖タンパク質リガンド−1ポリペプチドより多くのGalα1,3Galエピトープを含む、ワクチン。
- 請求項6に記載のワクチンであって、前記第1のポリペプチドは、野生型P−セレクチン糖タンパク質リガンド−1ポリペプチドより2倍多くのGalα1,3Galエピトープを含む、ワクチン。
- 請求項6に記載のワクチンであって、前記第1のポリペプチドは、野生型P−セレクチン糖タンパク質リガンド−1ポリペプチドより3倍多くのGalα1,3Galエピトープを含む、ワクチン。
- 請求項1に記載のワクチンであって、前記第2のポリペプチドは、重鎖免疫グロブリンポリペプチドの領域を含む、ワクチン。
- 請求項1に記載のワクチンであって、前記第2のポリペプチドは、免疫グロブリン重鎖のFc領域を含む、ワクチン。
- 請求項1に記載のワクチンであって、前記アジュバントポリペプチドは、二量体である、ワクチン。
- 請求項1に記載のワクチンであって、前記抗原は、C型肝炎、HIV、B型肝炎、パピローマウイルス、マラリア、結核、単純ヘルペスウイルス、クラミジア、およびインフルエンザ、またはこれらの生物学的成分からなる群より選択される、ワクチン。
- 請求項1に記載のワクチンであって、前記抗原は、腫瘍関連抗原である、ワクチン。
- 請求項16に記載のワクチンであって、前記腫瘍関連抗原は、乳房、肺、結腸、前立腺、膵臓、頸部および黒色腫の腫瘍関連抗原からなる群より選択される、ワクチン。
- 請求項2に記載のワクチンをコードする、単離された核酸。
- 請求項18に記載の核酸を含む、ベクター。
- 請求項19に記載のベクターを含む、細胞。
- アジュバント化合物をさらに含む、請求項1に記載のワクチン。
- 癌を発症させる危険性のあるヒト被験体における免疫の方法であって、該方法は、請求項1に記載のワクチンを該被験体に投与する工程を包含する、方法。
- 癌に罹患した被験体における癌の症状を防止または改善する方法であって、該方法は、有効用量の請求項1に記載のワクチンを該被験体に投与する工程を包含する、方法。
- 請求項23に記載の方法であって、前記癌は、乳房、肺、結腸、前立腺、膵臓、頸部および黒色腫からなる群より選択される、方法。
- 細胞における抗体分泌を増大させる方法であって、該方法は、該細胞と精製ワクチンとを接触させる工程を包含し、該ワクチンは、以下:
(a) 第2のポリペプチドに作動可能に連結された第1のポリペプチドを含むアジュバントポリペプチドであって、ここで該第1のポリペプチドは、ムチンポリペプチドであり、α1,3ガラクトシルトランスフェラーゼによりグリコシル化され、該第2のポリペプチドは、免疫グロブリンポリペプチドの少なくとも1つの領域を含む、アジュバントポリペプチド、ならびに
(b)抗原、
を含み、その結果、該細胞における該抗体分泌が増大される、精製ワクチンである、方法。 - 請求項25に記載の方法であって、前記細胞は、B細胞およびT細胞からなる群より選択される、方法。
- 免疫細胞活性化を増す方法であって、該方法は、該免疫細胞と精製ワクチンとを接触させる工程を包含し、該ワクチンは、以下:
(a)第2のポリペプチドに作動可能に連結された第1のポリペプチドを含むアジュバントポリペプチドであって、該第1のポリペプチドは、ムチンポリペプチドであり、α1,3ガラクトシルトランスフェラーゼによりグリコシル化され、該第2のポリペプチドは、免疫グロブリンポリペプチドの少なくとも1つの領域を含む、アジュバントポリペプチド、ならびに
(b)抗原、
を含み、その結果、該細胞の活性化が増大される、精製ワクチンである、方法。 - 請求項27に記載の方法であって、前記細胞は、B細胞およびT細胞からなる群より選択される、方法。
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