JP2005524617A - アロエ・ベラから得られる負に荷電した多糖 - Google Patents
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Abstract
Description
a)その多糖は60-100%の範囲内で70-90%のD-マンノース、40-0%の範囲内で30-10%のD-グルコース、および0-10%の他の単糖類を含み、
b)その多糖は負に荷電しており、且つ、
c) その多糖類は正に荷電したカラムに結合する、
という特性を有している組成物を提供するものである。2番目に示したより広い範囲は、示された単糖が広い範囲内の重量パーセンテージである多糖は本発明の範囲内である事を示すが、より狭い範囲内にあるような重量パーセンテージのものは好適である。組成物に関連する全てのパーセンテージは重量パーセンテージに関する。
a)植物または動物抽出物のサブ分画であって、例えばアロエまたはアロエ・ベラ抽出物を、1つはサブ画分Iと名付けられる±5Kd以上のみかけの分子量を有しもの、1つは±5Kd以下のみかけの分子量を有するもの、の2つの画分にサブ分画し、
b) サブ画分Iを、例えばDEAE-セファロースカラム、DEAE-セファデックスカラムまたはDEAE-セルロースカラム等の正に荷電したカラムに通し、
c) サブ画分Iの前記カラムに結合した部分を、例えば塩化ナトリウム溶液等の塩溶液で溶出し、サブ画分I-DIを得て、
d) I-DIを、例えば窒素圧力下でPM10膜を通じて脱塩および限外濾過し、アロエ・ベラ抽出物の元来の容量の0.1までI-DIを濃縮し、
e)必要に応じて、300 kD以上、100-300 kD、50-100 kDおよび10-50 kDの望みのみかけの分子量を有するI-DIのサブ画分を、特にXM-300、XM-100、XM-50および最終的にはPM-10膜による一連の限外濾過により、あるいはSuperoseカラムによる分離用FPLCにより調製する、
という工程からなる。
mucはムチンのみを含んでいる正コントロールであり、
AVはアロエ・ベラ抽出物の2-16倍の希釈幅におけるムチンとの共培養物であり、
AV-3とAV-4は1:1のアロエゲル生成物であり、AV-B, AV-D, AV-E とAV-Fは40,10,5と2.5倍にそれぞれ濃縮された市販のアロエ・ベラ起源であり、
A490nmは二連、ムチンについては四連におけるウェルあたりの吸光値である。
mucはムチンのみを含んでいる正コントロールであり、
AV-2は異なった濃度の1:1のアロエゲル生成物であり
A490nmは二連、ムチンについては四連におけるウェルあたりの吸光値である。
a. 通常の様子、
b. FITC標識したヘリコバクター・ピロリおよび全画分Iとインキュベートした連
続切片、
c. FITC標識したヘリコバクター・ピロリおよびアロエ・ベラサブ画分が存在しな
いコントロールと同一である画分I-D0とインキュベートした連続切片である。
DEAE=ジエチルアミノエチル
FITC=フルオレセイン5-イソチオシアネート
HPAEC-PAD=律動的な電流滴定検出による高pHアニオン交換クロマトグラフィー
BCA=重シンコニン酸
ELISA=酵素免疫測定法
A490nm=490nmにおける吸光度
NMR=核磁気共鳴分析法
−カポジ肉腫関連ヘルペスウイルス、ヘルペス単純ウイルスのようなウイルス、
−カンジダ種、ブラストミセス・デルマチチジスなどの真菌;皮膚への付着は上皮微小血管内皮細胞への付着もまた含む、
によって引き起こされる皮膚の疾患。
−ウシ角結膜炎の感染源であるモラクセラ・ボウビス、
によって引き起こされる眼病。
−インフルエンザ菌、肺炎連鎖球菌およびモラクセラ・カタラーリスのような中耳炎および鼻咽頭感染に関与する細菌、
によって引き起こされる耳、鼻、咽頭の疾患。
−ポルフィロモナス・ギンギバリスおよびストレプトコッカス・サリバリウス、ストレプトコッカス・オラーリス、フゾバクテリウム・ヌクレアタムおよびプレボテラ・インテルメディアなどの歯周病源性細菌
−デンティコーラ、ペクチノボーラム、ソクランスキーおよびビンセンティーなどのトレポネーマ属に分類される全ての口腔スピロヘータ、
−マイコプラズマ・サリバリウム、
−鼻ポリープ症に関与する微生物、
−副鼻腔炎に関与する微生物、
によって引き起こされる、歯のプラークのバイオフィルムが歯科疾患の進展に極めて重要な役割を果たし、多糖が歯のバイオフィルムの生態系に非常に重要である、口腔の疾患。
−マイコプラズマ・ゲニタリウム、
−膣トリコモナス、
−カンジダ種、
−卵管上皮組織に付着する淋菌、
−梅毒の顕著な組織病理学的な特徴である脈管周囲炎、内皮細胞の異常および梅毒の主たる臨床的な特徴である種々の皮膚障害に関連する梅毒トレポネーマ、
−大腸菌、
−シトロバクター種、
によって引き起こされる泌尿器領域の疾患。
−プロテウス・ミラビリス
−クロストリジウム・ディフィシレ、ウェルシュ菌、クロストリジウム・ビフェルメンタスのなどのクロストリジウム種、
−赤痢菌などのシゲラ種、
−マイコプラズマ・ガリセプティカムなどのマイコプラズマ種、
−エンテロコッカス種、
−バクテロイデス・フラギリス、
−バチルス種、
−リステリア・モノサイトゲネス、
−A型肝炎ウイルス、
−カンピロバクター・ジェジュニ、
−ネズミチフス菌、
−腸炎エルシニアおよびエルシニア・シュードツベルクローシス、
−エアロモナス・ベロニイ・バイオバー・ソブリア(Aeromonas veronii biovar sobria)、
−哺乳類宿主のみならず植物に潜在的に寄生するモデル植物病原菌である、エルウィニア・クリサンセミ(Erwinia chrysanthemi)
によって引き起こされる内蔵疾患。
−肺炎桿菌、
−百日咳菌、ボルデテラ・パラパーツシスとボルデテラ・ブロンチセプティカなどのボルデテラ種
−細胞内寄生虫および主要なヒト病原菌であるレジオネラ属の細菌、
−子供の下部呼吸器領域の感染を潜在的に引き起こす呼吸器合胞体ウイルス(RSV)、
−肺炎マイコプラズマ、
−前喘息様の変化の誘導を起こすリノウイルス、
−通常は肺に発生し、酵母と肺胞の上皮細胞の間の相互作用に関与しているクリプトコックス・ネオフォルマンス、
−化膿連鎖球菌またはストレプトコッカス・ゴルドニイイなどのストレプトコッカス種、
−重要な呼吸器病原体であるエシェリキア・ニューモウニア、
−その各々が、嚢胞性線維症を有する異なった患者の唾液から単離され、文献に良く記載された少なくとも5つの細菌性ゲノムーバー(genomovars)からなる、バークホールデリア・セパシア複合体、
−家畜反芻動物の最も重要な呼吸器病原体の一つであって、新生期、離乳期および成長期の子羊、子牛およびヤギにおいて急性肺炎の大発生を引き起こす、マンハイミア(パスツレラ)・ヘモリティカ。それは成熟動物においても肺炎の重大な原因でもある、
−動物をマンハイミア・ヘモリティカ感染にかかりやすくする、ライノトラケイティス(rhinotracheitis)ウイルス、パラインフルエンザ-3ウイルスまたはウシ呼吸器合胞体ウイルス、
によって引き起こされる呼吸器領域の疾患。
−細菌性心内膜炎におけるストレプトコッカス・サングイス、
−細菌性心内膜炎における表皮ブドウ球菌
−血管内感染における黄色ブドウ球菌および大腸菌などの、グラム陽性およびグラム陰性細菌、
−コクサッキー(Coxsackie)ウイルス、
−ロタウイルス、
−ネズミサイトメガウイルス、
−アデノウイルス
−髄膜炎菌、
−クラミジア・ニューモニエ、
−回旋糸状虫に感染した人におけるグラム陰性リケッチアに関連するウォルバシア細菌、
−ライム病スピロヘータであるボレリア・ブルグドルフェリー(Borrelia burgdorferi)、
−Q熱の病因であるQ熱リケッチア、
−アコーレプラズマ・ライドラウィー、
−細胞内侵入はバルトネラ・バシリフォルミスによって引き起こされるカリントン病の重要な観点である。この病気の血液段階と組織段階の両者においてその生物の赤血球および内皮細胞への最初の付着が関与している。
−ヒトにおける侵入性の全身病を作ると知られている二形性(dimorphic)真菌であるブラジル・パラコクシジオイデス、
によって引き起こされる器官、血液、リンパ液、血管およびリンパ系の疾患。
材料:
最大ベッド容積が2mlの使い捨てのポリスチレンカラムをピアス、ロックフォード、アイルランドから入手した。セファデックスG-25ファイン、DEAE-セファロース、ファーストフロー5ml脱塩カラムとスーパーロース200 HJR10/30および1mlモノQ HR5/5カラムは、アマシャム・ファルマシア・バイオテック、アプサラ、スエーデンから購入した。10mlから50mlの濾過ユニットのみならずある範囲の限外濾過膜を、アミコン社、レキシントン、USAとミリポア、ベッドフォード、USAから得た。カルボパックTM アミノトラップガードカラム(10×32mm)と組合わせたカルボパックTM MAIとPAI分析カラム(4×250mm)、およびHPAEC-PADシステムは、ディオネックス、サニーダール、カリフォルニア、USAから得た。フルオロトラック600高結合平底96穴マイクロタイタープレートは、グレイナー、フリッケンハウゼン、ドイツから得た。高分子量ヒト唾液ムチンのみならず、唾液ムチンに対するマウス抗ヒトモノクローナル抗体(MabF2)は、口腔生化学科、ACTA、アムステルダムのE.ベールマン博士から親切にも提供された。アグルチンに富むヒト唾液は、口腔生化学科、ACTA、アムステルダムのA.J.M.リグテンバーグ博士からの親切な贈り物である。西洋ワサビペルオキシダーゼ標識したヤギ抗マウスIgGとIgMは、アメリカン・クアレックス、サン・クレメンテ、カリフォルニア、USAから得た。フルオレセイン5-イソチオシアネート(FITC)はシグマ、セントルイス、ミズーリ、USAから得た。
アロエ・ベラ抽出物(AV-1からAV-7, AV-15, AV-16およびAV-AからAV-F)は、ビオクリンB.V(デルフト、オランダ)から提供され、種々の市販品由来であった。AV-A, AV-3とAV-4はアロエベラ抽出物およびゲルを1:1の比で含み、AV-BとAV-Dはそれぞれ40と10の因数(ファクター)を有する市販由来物の濃縮物である。AV-2抽出物は813から325μgのグルコースとマンノースをそれぞれ含んでいる。AV-16は、更に述べるようにアロエベラ内部ゲルの薄切片生成物の濾過した樹液から、30kDのカットオフを有するホローファイバー膜を通じたクロスフロー法により、限外濾過によって調製され、引き続いて10倍濃縮する。AV-5, AV-6, AV-7およびAV-Eは凍結乾燥粉末として、AV-FとAV-17は吹きつけ乾燥した粉末として得られた。
50-150mlのアロエ・ベラ抽出物および再構成された粉末を、15℃、15,000Xgで45分間遠心分離した。ペレットを廃棄して上清を0.2μmの膜で濾過した。日常的に、得られた透明な溶液を必要に応じて少ないベッド容積(1から5ml)のセファデックスG-25にかけて、この物質に親和性を有するアロエ・ベラ成分(画分III、アロエ・ベラNAG-25抽出物とも示される、下記を見よ)を除去した。画分I(±5kD以上のみかけ分子量)と画分II(±5kD以下のみかけ分子量)を、結合した2つの5mlの脱塩カラム(ファルマシア)を通じたFPLC(アクタエクスプローラー10S、アマシャム/ファルマシア、アプサラ、スエーデン)によって調製し、5ml/分の流速でミリQ水でそれらを溶出し、190と280nmの間の種々の波長で吸光度を測定した。これは、得られた抽出物の0.5ml容量を自動的に繰り返し注入し、アクタエクスプローラー10Sを用いた導電率の変化に基づいて2つの画分の分離と採取を行う事によって行なわれた。画分IIを凍結乾燥し、引き続いて抽出物の元来の容量の0.1のミリQ水に溶解し、使用するまで-20℃で貯蔵した。画分IをDEAE-セファロースカラムにかけ(ミリQ水中で調製、50mlの元の抽出物に対して10mlのベッド容積)、2カラム容積のミリQ水で洗浄し、保持されなかった画分(I-D0)と保持が弱かった画分(I-DW)を採取した。結合した物質(I-D1)を、0.5M NaClのミリQ水溶液の1カラム容量で溶出した。窒素圧力下、10-または50mlの濾過ユニットを用いてPM10膜を通じた限外濾過を行い、画分I-D0をアロエ・ベラ抽出物の元の容量の0.1まで濃縮した。画分I-D1を上記の自動操作によって脱塩し、続いてPM-10フィルターによる限外濾過によってアロエ・ベラ抽出物の元の容量の0.1まで濃縮した。いくつかの実験においては、みかけの分子量が300以上、100-300、50-100と10-50kDであるサブ画分が、XM-300, XM-100, XM-50と最終的にはPM-10膜を通じて、画分I-D0とI-D1のそれぞれから、一連の限外濾過によって調製された。代わりに、匹敵するサブ画分を、スーパーロース200 HR10/30を通じた分離用FPLCによって調製した。各サブ画分を、ミリQ水を3回添加する事によって洗浄し、から10回添加して最終的な容量を得た;次のフィルターを通じた濾過に先んじて、最初の洗浄液が次の画分に加えられた。更に使用するまで、全ての画分の等分量を-20℃で貯蔵した。
2リットルのアロエ・ベラ抽出物から開始した10gの噴霧乾燥したアロエ・ベラ噴霧乾燥抽出物を200mlのミリQ中に溶解し、セファデックスG-25カラム(5cm幅と10cm高さ;ミリQ水中で調製;流速7.5ml/分)に通し、セファデックスG-25のマトリックスに親和性を有する物質を除去し、低分子量分子の含量を減らした。引き続いてカラムをミリQで洗浄し、アロエ・ベラNAG-25抽出物を60-310mlの溶出物として採取した。
野生型ヘリコバクター・ピロリ(H.pylori:ATCC 43504)を、F. Namavar et al., Infection Immunity, 66, 444-447 (1998)によって述べられたように、血液寒天培地DENTプレート上に微好気性条件下で生育させた。外部膜への接着を含んでいるH.pylori抽出物はS-層と呼ばれるが、2つまたはそれ以上の寒天プレートに由来する密集生育した細菌培養物から調製された。細菌を0.15M NaCl中に懸濁し、1分間ボルテックスし、5000Xgで30分間遠心分離した。BCAプロテインアッセイ(ピアス、ロックフォード、USA)により蛋白質濃度を測定した後、細菌抽出物を含んでいる上清を-80℃で貯蔵した。FITC標識したH.pyloriを、0.1mg/mlのFITCを含んでいる0.2Mの炭酸緩衝液(pH8.0)1ml中で、その細菌を暗所においてアルブミン(PBST-BSA)で15分間インキュベートすることにより調製し、その細胞を同じ緩衝液中に0.13-0.20 のA600nm単位の濃度で懸濁し、使用するまで0.1ml等量で貯蔵した。
フルオトラック600プレートを、被覆緩衝液(0.1M炭酸ナトリウム(pH9.6))に溶かした、ある希釈幅の唾液ムチン(ヘリコバクター・ピロリと緑膿菌について)またはアグルチンを富ませたヒト唾液(ストレプトコッカス・ミュータンスとストレプトコッカス・サングイスについて)で被覆した。プレートを4℃で一晩インキュベートし、続いてPBS-0.1%ツイーン20(洗浄緩衝液)で4回洗浄した。サイト-13で標識された細菌(50μL)をウェルに添加し、続いて50μlのアロエ・ベラI-D1サンプルの希釈物または水(正のコントロール)を添加した。ムチンを被覆していないウェルを負のコントロールとした。37℃で1時間インキュベートした後、プレートを洗浄緩衝液で洗浄した。フルオロスター・ギャラクシーで蛍光を測定し、励起波長と放出波長はそれぞれ485と520nmであった。
単糖の解析は100℃で2Mの三フルオロ酢酸中で画分を4時間加水分解した後に、カルボパックTM MAIカラム上で律動的な電流検出法(HPAEC-PAD)を有する高pHのアニオン交換クロマトグラフィーにより行った。0.2M NaOHで0.4ml/分の流速でカラムを溶出し、標準糖類の混合物によって校正した。
(唾液ムチンへのヘリコバクター・ピロリの付着の阻害)
アロエ・ベラ抽出物またはサブ画分による、ヘリコバクター・ピロリのヒト唾液ムチンへの結合の阻害は、確立されたELISA(上記に示したF.Navamarらを見よ)によって検討され、その中で、ヘリコバクター・ピロリのS-層の調製物で被覆されたマイクロタイタープレート(100μl/ウェル;10-20μg蛋白質/ml;4℃で16時間;洗浄緩衝液PBS(pH7.5)-0.1%ツイーン20(v/v)(PBST))を、希釈幅のアトエ・ベラ抽出物または画分の存在下または非存在下で、37℃で2時間ヒト唾液ムチンと二連でインキュベートした。インキュベーション混合液の総容量は100μlであり、それは唾液ムチン(0.2-0.5μg/ml)50μlとアロエ・ベラサンプルの希釈液50μlからなり、両者は50mM酢酸ナトリウム-150mM NaCl-0.5%ツイーン20(pH5.0)溶液であった。モノクローナル抗体F2は、唾液ムチン上に発現したスルフォ-ルイスa基を認識し、ペルオキシダーゼ標識したヤギ抗マウス抗体を使用してPBSTで洗浄した後に結合しているムチンの量の検出を行ったが、それは例えばE.VeermanらによってGlycobiology 7, 737 (1997)において先立って述べられたように行なわれた。
(胃粘膜へのヘリコバクター・ピロリ付着の阻害)
FITC標識した細菌の胃洞区域への付着は、Borenら(上を見よ)に従って検出した。6μmのヒト胃洞の逐次切片は、正常組織および軽度と中等度の炎症と化生性組織を有する患者から得られ、病理学科から提供された。逐次切片はキシレン中で脱パラフィン処理され(10分、3回洗浄)、続いてエタノール中で5分間3回洗浄し、ゆっくりと流れるミリQ水中で再水和化し、PBS中で5分間3回洗浄した。PAPペンPA03(ダイアグノスティックスBV, オイトホルン、オランダ)により切片の周囲に円を描き、続いて湿った条件下で0.1mlのPBST-BSAと4℃で少なくとも1時間インキュベートした。最終的に緩衝液を、FITC標識した細菌にPBST-BSAに溶かしたAV-5抽出物またはサブ画分の希釈幅をプラスしたもの0.1ml、あるいはそれをマイナスしたもの(正のコントロール)0.1mlで置き換えた。切片を暗所で1時間インキュベートした。回転テーブル上でPBST-BSAで6回洗浄することにより、結合しない細菌を除去した。最終的に、ニコンデジタルカメラDxM1200とニコンACT-1カメラコントロールプログラムを有するニコンエクリプス顕微鏡(ユビコン、ブンニック、オランダ)を用いた蛍光顕微鏡のために切片をカバーガラスで封入する前に、切片にグリセロールのPBS溶液(1:1 v/v)を作用させた。
(MUC5標識した多穴プレートへのヘリコバクター・ピロリ付着の阻害)
蛍光阻害アッセイの生物細菌のDNAは蛍光色素サイト-13で標識されているが、そのアッセイにおいてその細菌はアロエ・ベラI-D1調製物の有無において、指示された希釈率を有する唾液ムチンMUC-5またはアグルチンを高めた唾液により被覆された96穴プレート中でインキュベートした。各ウェルにおいて同量のサイト-13標識された細菌が存在する。細菌と共培養する場合には、全てのウェルは各実験で同量のアロエ・ベラ調製物を含んでいる。全てのアッセイは二連でおこなった。
(MUC-5で標識された多ウェルプレートでのサイト-13標識された緑膿菌の付着の阻害)
AV-16 I-D1調製物の効果を、2つの緑膿菌株である緑膿菌PA025と緑膿菌PA14において試験した。0.01mlのAV-16 I-D1画分中の物質の量は、2.5mlのAV-16から得られた。プレートに結合した細菌の量は被覆されたMUC-5の量に依存していた。それらの結果をそれぞれ表4と5に示す。0.01mlのAV-16 I-D1と共培養すると、細菌の結合が強く阻害されるという結果となった。阻害は濃度依存的であると予備実験により示唆された。被覆されたMUC-5の量が低下した時に阻害は増加したからである。
(プレートに被覆されたアグルチンを高めた唾液へのサイト-13標識したストレプトコッカス・ミュータンスとストレプトコッカス・サングイスの付着の阻害)
ストレプトコッカス・ミュータンスとストレプトコッカス・サングイスの2つの株で、AV-16 I-D1抽出物の効果を試験した。プレートに結合した細菌の量は、プレートに被覆したアグルチンを高めた唾液の量に依存していた。0.01mlのAV-16-D1と共培養すると、細菌の結合が強く阻害されるという結果となった。0.01mlのAV-16-D1中の物質の量は、2.5mlのアルエ・ベラ16から得られた。
Claims (26)
- アロエ・ベラから得られる多糖からなり、下記の:
a)該多糖は60-100%のD-マンノース、40-0%のD-グルコース、および0-10%の他の単糖からなり、
b)該多糖は負に荷電しており、
c) 該多糖類は正に荷電したカラムに結合する、
という性質を有する、単離された形態の組成物。 - アロエ・ベラから得られる多糖からなり、下記の:
a)該多糖は70-90%のD-マンノース、30-10%のD-グルコース、および0-10%の他の単糖からなり、
b)該多糖は負に荷電しており、
c) 該多糖類は正に荷電したカラムに結合する、
という性質を有する、請求項1記載の単離された形態の組成物。 - 前記多糖は約100-300kDの平均分子量を有する、請求項1または請求項2記載の組成物。
- 前記多糖はD-マンノースおよびD-グルコースを約5から20の範囲の比で含む、請求項1から請求項3のいずれか一つの請求項記載の組成物。
- 請求項1から請求項4のいずれか一つの請求項記載の組成物を調製する製造工程であって、下記の:
a)アロエ・ベラ抽出物を、1つはサブ画分Iと名付けられている±5kD以上の見かけ分子量を有するもの、1つは±5kD以下の見かけ分子量を有するもの、の2つの画分にサブ分画し、
b)サブ画分Iを正に荷電したカラムに通し、
c)前記カラムに結合したサブ画分Iの部分を塩溶液で溶出し、サブ画分I-DIを得て、
d)I-DIを脱塩および限外濾過し、
e)必要に応じて、300kD以上、100-300kD、50-100kDおよび10-50kDの望みの見かけ分子量を有するI-DIのサブ画分を調製する、
という工程段階からなることを特徴とする、前記製造工程。 - 工程段階の前に、セファデックスG-25カラムにかける予備精製工程を適用し、前記カラムに親和性を有する物質を除去することを特徴とする、請求項5記載の製造工程。
- 工程段階bの間にDEAE-セファデックスまたはDEAE-セファロースカラムにかけることを特徴とする、請求項5または請求項6記載の製造工程。
- 一連の限界濾過またはスーパーロ−ス(Superose)カラムにかける分離用FPLCを適用することを特徴とする、請求項5から請求項7のいずれか一つの請求項記載の製造工程。
- 請求項1から請求項4のいずれか一つの請求項記載の組成物からなる、植物または動物NAG-25抽出物。
- 前記植物がアロエである、請求項9記載の植物NAG-25抽出物。
- 前記アロエがアロエ・ベラである、請求項10記載の植物NAG-25抽出物。
- 対応する未処理抽出物をセファデックスG-25カラムにかけて前記カラムに対する親和性を有する物質を除去する精製段階を適用することを特徴とする、請求項9から請求項11のいずれか一つの請求項記載の植物または動物NAG-25抽出物を調製するための製造工程。
- 請求項1から請求項4のいずれか一つの請求項記載の組成物からなるアロエ限外濾過抽出物。
- 対応するアロエ抽出物を限外濾過にかけることを特徴とする、請求項13記載のアロエ限外濾過抽出物を調製する製造工程。
- 食物サプリメントまたは食事療法用食品として使用するための、下記の:
請求項1から請求項4のいずれか一つの請求項記載の組成物、または請求項9から請求項11のいずれか一つの請求項記載の植物または動物NAG-25抽出物、または請求項12記載のアロエ限外濾過抽出物、
の一つまたはそれ以上から選択された組成物。 - 自己医療または化粧品として使用するための、下記の:
請求項1から請求項3のいずれか一つの請求項記載の組成物、または請求項8から請求項10のいずれか一つの請求項記載の植物または動物NAG-25抽出物、または請求項12記載のアロエ限外濾過抽出物、
の一つまたはそれ以上から選択された組成物。 - 医薬として使用するための、下記の:
請求項1から請求項3のいずれか一つの請求項記載の組成物、または請求項8から請求項10のいずれか一つの請求項記載の植物または動物NAG-25抽出物、または請求項12記載のアロエ限外濾過抽出物、
の一つまたはそれ以上から選択された組成物。 - 抗菌、抗ウイルスおよび抗炎症の手段、の中の一つまたはそれ以上から選択された用途のためである、請求項15から請求項17のいずれか一つの請求項記載の組成物。
- 微生物細菌、ウイルスおよび真菌の中のいずれか一つによる感染を防御または治癒するためである、請求項18記載の組成物。
- ヘリコバクター・ピロリ、緑膿菌、ストレプトコッカス・ミュータンスおよびストレプトコッカス・サングイスからなる群から選択された一つまたはそれ以上の細菌による感染を防御するためである、請求項19記載の組成物。
- 感染性微生物による感染の防御または治癒または炎症の防御または治癒の薬剤としての、下記の:
請求項1から請求項4のいずれか一つの請求項記載の組成物、または請求項9から請求項11のいずれか一つの請求項記載の植物または動物NAG-25抽出物、または請求項13記載のアロエ限外濾過抽出物、
の一つまたはそれ以上から選択された組成物の使用方法。 - 錠剤、カプセルまたはシロップとしての経口的な剤形であって、下記の:
請求項1から請求項4のいずれか一つの請求項記載の組成物、または請求項9から請求項11のいずれか一つの請求項記載の植物または動物NAG-25抽出物、または請求項13記載のアロエ限外濾過抽出物、
の一つまたはそれ以上のものから選択された組成物、および必要に応じて補助薬からなる前記剤形。 - クリームまたはゲルとしての局所的な剤形であって、下記の:
請求項1から請求項4のいずれか一つの請求項記載の組成物、または請求項9から請求項11のいずれか一つの請求項記載の植物または動物NAG-25抽出物、または請求項13記載のアロエ限外濾過抽出物、
の一つまたはそれ以上のものから選択された組成物、および必要に応じて補助薬からなる前記剤形。 - 注射液としての注射可能な剤形であって、下記の:
請求項1から請求項4のいずれか一つの請求項記載の組成物、または請求項9から請求項11のいずれか一つの請求項記載の植物または動物NAG-25抽出物、または請求項13記載のアロエ限外濾過抽出物、
の一つまたはそれ以上のものから選択された組成物および必要に応じて補助薬からなる前記剤形。 - 生体の細胞膜への微生物の付着を阻害、防御または打破するための方法であって、請求項22から請求項24のいずれか一つの請求項記載の剤形を前記生物へ投与することからなる前記方法。
- 請求項22から請求項24のいずれか一つの請求項記載の剤形を、生体の細胞膜への微生物の付着を阻害、防御または打破するための薬剤を製造するために使用する方法。
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