JP2003509050A - テトラヒメナから得られるδ−６−デサチュラーゼをコードする核酸、その産生と使用 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 本発明は、テトラヒメナから得られ、商業的に価値ある多不飽和脂肪酸（いわゆるＰＵＦＡ：多不飽和脂肪酸）の生合成に関与する繊毛虫特異的Δ−６−デサチュラーゼをコードする、核酸（群）に関する。本発明のヌクレオチド配列およびそれから得ることのできるポリペプチド配列は、他の既知の天然デサチュラーゼに比べて、驚くべき程に低い配列同一性を示す。本発明はまた、Δ−６−不飽和脂肪酸、特にＧＬＡの産生増加を目的とした、繊毛虫、好ましくはテトラヒメナ、特にテトラヒメナ・サーモフィラでの過度に発現するための核酸の使用に関する。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【発明の属する技術分野】

本発明は、テトラヒメナΔ−６−デサチュラーゼ、それをコードする核酸およ
びその調製および使用に関する。

【０００２】

【従来の技術】

本発明は、真核生物において商業的に価値のある多不飽和脂肪酸（これは、Ｐ
ＵＦＡ、すなわちポリ不飽和脂肪酸（ｐｏｌｙｕｎｓａｔｕｒａｔｅｄ ｆａｔ
ｔｙ ａｃｉｄｓ）と称する）の生合成に関与する、繊毛虫特異のΔ−６−デサ
チュラーゼをコードするテトラヒメナからの核酸に関する。これに関して、本発
明による核酸、および、それから得ることのできるポリペプチドは、他の既知の
天然デサチュラーゼと驚くべき程ほとんど配列同一性を示さない。本発明はさら
に、脂肪酸構成（スペクトル）を特異的に修飾する目的で、特にＰＵＦＡの形成
を増加する目的で、真核生物、特に繊毛虫、好ましくはテトラヒメナ、特に好ま
しくはテトラヒメナ・サーモフィラにおいて過度に発現するための核酸の使用に
関する。

【０００３】 本発明による核酸は、繊毛虫から、好ましくはテトラヒメナから、特に好まし
くはテトラヒメナ・サーモフィラ、非常に高含量のＧＬＡを有するＧＬＡ産生生
物、から得ることができる。

【０００４】 図１は、真核生物における、ＰＵＦＡ生合成の一般的なスキーム、および関与
する酵素を示す（Ｇｉｌｌ＆Ｖａｌｉｖｅｔｙ、Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏｔｅｃｈ
ｎｏｌ．１９９７、１５：４０１〜４０９に従って作成）。 ステアリン酸（１８：０）からオレイン酸（１８：１Δ９）への変換は、Δ−
９−デサチュラーゼにより触媒される。オレイン酸は、Δ−１２−デサチュラー
ゼによりリノール酸（１８：２Δ９、１２；ＬＡと略称）に変換され、これは、
次いで、Δ−６−デサチュラーゼにより、γ−リノレン酸（１８：３、Δ６、９
、１２；ＧＬＡと略称）に、または、Δ−１５−デサチュラーゼによりα−リノ
レン酸（１８：３Δ９、１２、１５；ＡＬＡと略称）に変換される。

【０００５】 脂肪酸は、エロンガーゼの作用により伸長され、その結果、例えば、ジホモ−
γ−リノレン酸（２０：３Δ８、１１、１５；ＤＧＬＡと略称）が、γ−リノレ
ン酸から形成され、ジホモ−γ−リノレン酸は、次いで、Δ−５−デサチュラー
ゼによりアラキドン酸（２０：４Δ５、８、１１、１５；ＡＲＡと略称）に変換
される。これは、プロスタグランジン、プロスタサイクリン、トロンボキサンお
よびロイコトリエンなどの生理活性エイコサノイドの直接的な前駆体である。

【０００６】 ＬＡからＧＬＡへのΔ−６−デサチュラーゼによる変換は、ＧＬＡから得られ
るＰＵＦＡ（以下ではΔ−６−不飽和脂肪酸と称する）形成の律速段階であるこ
とが判明した（Ｈｕａｎｇ ＹＳ＆Ｍｉｌｌｓ ＤＥ（１９９６）γ−リノレン
酸、代謝および栄養および医薬におけるその役割。イリノイ州シャンペイン所在
ＡＯＣＳ Ｐｒｅｓｓ、１９９６）。

【０００７】 Δ−６−デサチュラーゼ活性を有する酵素は、テトラヒメナ・セトサおよびＴ
．ピリフォルミスに存在することが知られているが（Ｐｅｎｇ，Ｙ．Ｍ．および
Ｅｌｓｏｎ，Ｃ．Ｅ．（１９７１）Ｊ．Ｎｕｔｒ．１０１、１１７７〜１１８４
）、繊毛虫から得られ、このような活性を有する均一タンパク質はこれまで入手
できなかった（例えば、Ｋｏｌｌ，ＭおよびＥｒｗｉｎ，Ｊ．Ａ．（１９９０）
Ｊ．Ｐｒｏｔｏｚｏｏｌ．３７（３）２２９〜２３７）。

【０００８】 脊椎動物は、脂肪酸に９位より後に二重結合を挿入できないので、ＬＡおよび
ＡＬＡなどの不飽和脂肪酸は、脊椎動物が合成できない必須栄養分であり、食事
では、基本的に植物源から得られる（図１参照）。

【０００９】 哺乳類では、Δ−６−デサチュラーゼによってＬＡをＧＬＡに変換できる。こ
のＧＬＡはＡＲＡの前駆体であり、この前駆体は大半のプロスタグランジンの必
須前駆体である。ＥＰＡの前駆体のステアリドン酸（１８：４Δ６、９、１２、
１５）のＡＬＡからの形成は、同様に、Δ−６−デサチュラーゼにより触媒され
る。従って、Δ−６−デサチュラーゼは、エイコサノイド生合成の最初の必須段
階である（図１参照）。

【００１０】 哺乳類では、Δ−６−デサチュラーゼの活性は、アルコール消費、ストレス、
栄養不足および加齢プロセスなどの因子により損なわれ得ることが分かった（Ｈ
ｕａｎｇ＆Ｍｉｌｌｓ、１９９６；Ｈｏｒｒｏｂｉｎ（１９９０）Ｒｅｖ．Ｃｏ
ｎｔｅｍｐ．Ｐｈａｒｍａｃｏｔｈｅｒ．１：１〜４５；Ｂｏｌｔｏｎ−Ｓｍｉ
ｔｈ Ｃ ｅｔ ａｌ．（１９９７）Ｅｕｒ．Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｎｕｔｒ．５１：
６１９〜６２４；Ｌｅｖｅｎｔｈａｌ ＬＪ ｅｔ ａｌ．（１９９３）Ａｎｎ
．Ｉｎｔｅｒｎ．Ｍｅｄ．１１９：８６７〜８７３）。そのため、ＧＬＡの供給
が不十分となり、従って、すでに前記したように、ＬＡからのＧＬＡの形成はＰ
ＵＦＡ合成の律速段階であるので、最終的にＧＬＡから得られる分子、例えば、
ＡＲＡおよびそれから形成される生理的に重要なエイコサノイドが欠乏する（Ｂ
ｒｅｎｎｅｒ ＲＲ（１９７６）Ａｄｖ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．Ｂｉｏｌ．８３：８
５〜１０１；Ｎａｋａｈａｒａ Ｔ ｅｔ ａｌ．（１９９３）Ｊ．Ｊｐｎ．Ｏ
ｉｌ Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．４２：２４２〜２５３；Ｃｈａｐｋｉｎ，ＲＳ（１９
９８）必須脂肪酸の再評価、食物中の脂肪酸およびその健康との関連性、第２版
（Ｃｈｏｗ ＣＫ編）ＮＹ州ニューヨーク所在Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ）。

【００１１】 ＧＬＡの供給は、Δ−６−デサチュラーゼ脂肪酸の細胞内レベルの減少を補充
し、かつ、これらの脂肪酸の要求の増加にも対応する（Ｈｏｒｒｏｂｉｎ（１９
９０））。それ故、食事を介してＧＬＡを取込むことは、ＧＬＡから得られる分
子の生合成に有利である（Ｆａｎ，ＹＹ＆Ｃｈａｐｋｉｎ，ＲＳ（１９９８）Ｊ
．Ｎｕｔｒ．１２８：１４１１〜１４１４）。

【００１２】 ＧＬＡがヒトの生体に多くの異なるプラスの影響を奏効するという知見は、こ
れまで、多くの科学的研究により支持されている。従って、臨床試験により、例
えばアトピー性湿疹（Ｓｈｉｍａｓａｋｉ，Ｈ：ＰＵＦＡ含量およびアトピー性
湿疹に罹患した小児の血漿中のｎ−６、ｎ−３代謝物のプロフィルに対するγ−
リノレン酸の豊富な油の食事による摂取の効果、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｂｉｏｃｈｅｍ
．Ｎｕｔｒ（１９９５）１９（３）、１８３〜１９２）、慢性関節リウマチ（Ｚ
ｕｒｉｅｒ ＲＢ、Ｒｏｓｓｅｔｔｉ ＲＧ、Ｊａｃｏｂｓｏｎ ＥＷ、ＤｅＭ
ａｒｃｏ ＤＭ、Ｌｉｕ ＮＹ、Ｔｅｍｍｉｎｇ ＪＥ、Ｗｈｉｔｅ ＢＭ、Ｌ
ａｐｏｓａｔａ Ｍ（１９９６）慢性関節リウマチのγ−リノレン酸による処置
：無作為プラセボ対照試験 Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ Ｒｈｅｕｍ．３９（１１）１
８０８〜１８１７）、アテローム性動脈硬化症（Ｌｅｎｇ ＧＣ、Ｌｅｅ ＡＪ
、Ｆｏｗｋｅｓ ＦＧＲ、Ｊｅｐｓｏｎ ＲＧ、Ｌｏｗｅ ＧＤＯ、Ｓｋｉｎｎ
ｅｒ ＥＲ、Ｍｏｗａｔ ＢＦ、末梢動脈疾患におけるγ−リノレン酸およびエ
イコサペンタエン酸の無作為対照試験、Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ
（１９９８）１７／６ ２６５〜２７１）、糖尿病性神経障害（Ｐｆｅｉｆｅｒ
ＭＡ、Ｓｃｈｕｍｅｒ ＭＰ（１９９５）糖尿病性神経障害の臨床試験：過去
、現在および未来、Ｄｉａｂｅｔｉｓ ４４（１２）１３５５〜６１）、偏頭痛
（Ｗａｇｎｅｒ Ｗ、Ｎｏｏｔｂａａｒ−Ｗａｇｎｅｒ Ｕ（１９９７）γ−リ
ノレン酸およびα−リノレン酸による偏頭痛の予防的処置、Ｃｅｐｈａｌａｌｇ
ｉａ １７／２ １２７〜１３０）、精神分裂病（Ｖａｄｄａｄｉ，ＫＳ（１９
８２）精神分裂病の処置におけるプロスタグランジンＥ１前駆体の使用に関する
観察、Ｂｉｏｌ．Ａｓｐｅｃｔｓ Ｓｃｈｉｚｏｐｈｒ．Ａｄｄｉｃｔ．１８３
〜９１．刊行者：英国チェスター所在Ｗｉｌｅｙ）および癌（Ｋａｉｒｅｍｏ
ＫＪＡ、Ｊｅｋｕｎｅｎ ＡＰ、Ｋｏｒｐｐｉ−Ｔｏｍｍｏｌａ ＥＴ、Ｐｙｒ
ｈｏｎｅｎ ＳＯ（１９９７）肝臓灌流および膵臓癌の組織に対するγ−リノレ
ン酸リチウムの効果、Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ １７／５ Ｂ
３７２９〜３７３６）に対するＧＬＡのプラスの効果が実証された。これらの
研究は、病気像において統計的にも臨床的にも有意な改善を達成した。これに関
連して、ＧＬＡの効果は、特に、生合成においてＧＬＡが前駆分子となっている
エイコサノイド（プロスタグランジン、プロスタサイクリン、トロンボキサンお
よびロイコトリエン）を形成することによる（図１）。

【００１３】 これらの正の特性のために、医薬産業、化粧品産業、動物食餌産業および食品
産業において、ＧＬＡは広く応用される（Ｈｏｒｒｏｂｉｎ（１９９０）、Ｈｏ
ｒｒｏｂｉｎ（１９９２）Ｐｒｏｇ．Ｌｉｐｉｄ．Ｒｅｓ．３１：１６３〜１９
４；Ｃｈａｐｋｉｎ（１９９８）、Ｆａｎ＆Ｃｈａｐｋｉｎ（１９９８））。

【００１４】 ヒトおよび動物に見出される大半のＰＵＦＡは、食事から直接得られるか、ま
たは、食事をとおして供給される必須脂肪酸のデサチュラーゼおよびエロンガー
ゼによる変換により形成される。この理由から、これらのＰＵＦＡが天然に存在
する生物から得られるＰＵＦＡ生合成遺伝子は、商業的関心が高い。ＰＵＦＡの
商業的製造は、生物または細胞で、特異的かつ機能的に系の中でこれらの遺伝子
を発現することにより達成できる。この理由から、ＰＵＦＡ生合成に関与するデ
サチュラーゼおよびエロンガーゼをコードする遺伝子が求められ、そして、ＰＵ
ＦＡおよびＰＵＦＡ油を商業的に確実かつ経済的方法により得る上でこれらの遺
伝子の使用が必要となる。

【００１５】 どの商業的に使用される油料種子もＧＬＡを産生しない。これに対し、ＧＬＡ
は、一般のオオマツヨイグサ（Ｏｅｎｏｔｈｅｒａ ｂｉｅｎｎｉｓ、約１０％
のＧＬＡ）、ルリヂサ（Ｂｏｒａｇｏ ｏｆｆｉｃｉｎａｌｉｓ、約２３％）お
よびクロクサスグリの実（Ｒｉｂｅｓ ｎｉｇｒｕｍ、約１８％）などの種々の
植物の種子から得られた油にしか存在しない。

【００１６】 これに加えて、真菌ＭｕｃｏｒおよびＭｏｒｔｉｅｒｅｌｌａ（約２５％まで
）、藍藻Ｓｐｉｒｕｌｉｎａ（約１２〜１８％）、およびその他の種々の微生物
が、ＧＬＡ源であることが知られている。テトラヒメナ（４７％まで；Ｈｉｌｌ
，ＤＬ（１９７２）テトラヒメナの生化学および生理、第３章、４６〜７３、Ａ
ｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ、ニューヨーク、ロンドン；Ｅｒｗｉｎ，Ｊ＆Ｂｌ
ｏｃｈ，Ｋ（１９６３）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２３８：１６１８〜１６２４
）などの繊毛虫は、特に豊富なＧＬＡ源であると報告されている。Ｐｈｉｌｌｉ
ｐｓ＆Ｈｕａｎｇは、ＧＬＡの天然源に関する良好な総説を提供している（Ｐｈ
ｉｌｌｉｐｓ ＪＣ、Ｈｕａｎｇ ＹＳ（１９９６）γ−リノレン酸の天然源お
よび生合成：総説、１〜１３：γ−リノレン酸、代謝および栄養および医薬にお
けるその役割、Ｈｕａｎｇ ＹＳ、Ｍｉｌｌｓ ＤＥ（編）イリノイ州シャンペ
イン所在ＡＯＣＳ Ｐｒｅｓｓ、１９９６）。

【００１７】 しかし、これらの天然源からのＧＬＡの商業的単離は、いくつかの欠点を伴う
。これらの生物から得られる油の品質および量の両方が変化し、場合によっては
、油の組成は非常に不均一である。よって、ＧＬＡを濃縮するために面倒で費用
のかかる精製段階の使用が必要となる。これに加えて、ＧＬＡ含有植物の栽培は
、あまり経済的なプロセスではない（Ｈａｎｓｅｎ ＣＥら（１９９１）Ｊ．Ｓ
ｃｉ．Ｆｏｏｄ Ａｇｒｉｃ．５４：３０９〜３１２）。

【００１８】 ＧＬＡ含有油を得る空間的／時間的収量は、高等植物よりも、ＧＬＡ産生微生
物の方が顕著に良好であることが判明した。この理由から、微生物を使用したＧ
ＬＡの発酵による生産は、他のＧＬＡ源に向けての見込みある別法を提供する。
多くの微生物の脂肪酸構成（スペクトル）は、しばしば、高等生物のそれよりも
かなり単純である。これは、精製において大きな利点を提供する特徴である。ま
た、発酵による生産は、気候、栄養分の供給等の外的因子に依存しない。さらに
、このように調製したＰＵＦＡは、例えば、環境汚染の源となり得る汚染物質を
あまり含まない。さらなる利点は、天然源から得られたＧＬＡとは対照的に、発
酵プロセスにより単離したＧＬＡは、入手の点で変動を受けない。

【００１９】 発酵によりＧＬＡを単離するシステムを開発する試みがすでになされている（
Ｒａｔｌｅｄｇｅ Ｃ（１９９３）Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏｃｈｅｍ．１１：２７
８〜２８４；Ｒａｔｌｅｄｇｅ Ｃ（１９８９）Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．Ｔｒ
ａｎｓ．１７：１１３９〜１１４１；Ｇｏｓｓｅｌｉｎ Ｙ ｅｔ ａｌ．（１
９８９）Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｌｅｔｔ．１１：４２３〜４２６；ＷＯ８６／
０３５１８）。しかし、発酵によりＧＬＡを製造するのに微生物を商業的に使用
する場合、ＰＵＦＡ産生微生物の発酵は、比較的面倒で費用がかかり、結果とし
てあまり経済的ではないために、ＧＬＡの含量を高くすることが望ましい（上記
のＲａｔｌｅｄｇｅ１９９３参照）。テトラヒメナ・サーモフィラは、ＧＬＡが
比較的高い含量であるため（上記参照）、発酵によりＧＬＡを得るのに特に適し
ている。テトラヒメナは、発酵槽で容易に培養でき、高い細胞密度が達成できる
（Ｋｉｙ，Ｔ．＆Ｔｉｅｄｔｋｅ（１９９２）Ａｐｐｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．
Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．３７、５７６〜５７９；Ｋｉｙ，Ｔ．＆Ｔｉｅｄｔｋｅ
，Ａ（１９９２）Ａｐｐｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．３８
、１４１〜１４６）。

【００２０】

【発明が解決しようとする課題】

それ故、本発明の目的は、Δ−６−デサチュラーゼ活性を有するポリペプチド
をコードし、ＧＬＡおよび／またはΔ−６−不飽和脂肪酸の増大のために、宿主
生物、好ましくはテトラヒメナに機能的に発現および過度に発現されるテトラヒ
メナからの核酸を提供することである。

【００２１】

【課題を解決するための手段】

本発明は、それ故、配列番号１に示し、そして配列番号２に示したアミノ酸配
列を有するΔ−６−デサチュラーゼをコードする核酸、またはその機能的変異体
、および少なくとも８個のヌクレオチド、好ましくは少なくとも１５または２０
個のヌクレオチドを含み、特に少なくとも１００個のヌクレオチド、特に少なく
とも３００個のヌクレオチドを含む、その一部に関する（以下で「本発明による
核酸（群）」と称する）。本発明はさらに、同様に、配列番号３に示し、ゲノム
配列を含み、Δ−６−デサチュラーゼをコードする配列に加えて、イントロン、
プロモーターおよびフランキング配列などの非コード核酸配列も含む核酸に関す
る。

【００２２】 配列番号１に示した完全核酸は、３５２個のアミノ酸を含み、４１．８ｋＤａ
の理論的分子量を有するタンパク質をコードする。本発明による配列解析により
、この核酸は、テトラヒメナΔ−６−デサチュラーゼをコードする核酸であるこ
とが確認される。

【００２３】 相同性比較を使用して、核酸配列（配列番号１）から得られ、配列番号２に示
した、タンパク質配列を、Δ−６−デサチュラーゼと同定した。ＢＬＡＳＴＰ機
能（Ａｌｔｓｃｈｕｌ ｅｔ ａｌ．（１９９７）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ
Ｒｅｓ．２５：３３８９〜３４０２）を、相同性比較に使用した。デサチュラ
ーゼ、特にΔ−６−デサチュラーゼ（Ｅ．Ｃ．１．１４．９９．２５；リノレオ
イル−ＣｏＡデサチュラーゼ）を、データベースから相同タンパク質であると同
定した（図２及び図３参照）。

【００２４】 これに関連して、既知のΔ−６−デサチュラーゼは、本発明によるポリペプチ
ド配列と最大２５％の同一性を示す（図４〜８参照）。 本発明によるポリペプチド配列を用いた種々の既知のΔ−６−デサチュラーゼ
のマルチプルアラインメントを図９に示す。

【００２５】 相同性は、特に、ヒスチジンボックスなどの保存ドメインに見出される（Ｌｏ
ｓ＆Ｍｕｒａｔａ、１９９８、Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ １
３９４：３〜１５；Ｓｈａｎｋｌｉｎ，Ｊ ｅｔ ａｌ．、１９９７、Ｐｒｏｃ
．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９２、６７４３〜６７４７）。これに
加えて、チトクロムｂ５ドメインを他の真核Δ−６−デサチュラーゼのものと同
じと同定することができた（Ｌｅｄｅｒｅｒ，Ｆ．（１９９４）Ｂｉｏｃｈｉｍ
ｉｅ ７６、６７４〜６９２；Ｃｈｏら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．１９９９、
２７４（１）：４７１〜４７７）。

【００２６】 本発明によるポリペプチド配列は、Δ−６−デサチュラーゼと同定できるが、
他のΔ−６−デサチュラーゼとはかなり異なる。３５２アミノ酸がある配列が、
他の真核Δ−６−デサチュラーゼよりも約２０％短いことは特に驚きである。こ
れに加えて、配列は、強く保存された領域で多くの独特の差異を示す。かくて、
他のΔ−６−デサチュラーゼでは１００％保存されているＨＨＬＦＰモチーフは
、ＨＨＦＦＰに変換している（図９参照）。これらの理由から、既知のデサチュ
ラーゼと本発明によるポリペプチド配列の同一度は、驚くべき程に低い。

【００２７】 脂肪酸構成（スペクトル）は、例えば、テトラヒメナでデサチュラーゼを特に
過度に発現することにより有意に修飾できる（表１および２参照）。これらの環
境下で、飽和脂肪酸と不飽和脂肪酸の比は、有意により多くの不飽和脂肪酸の方
向に転換する。ここで特に興味深いのは、このようにして達成できるＧＬＡの生
産性の増加である。

【００２８】 好ましい実施形態において、本発明による核酸は、ＤＮＡまたはＲＮＡ、好ま
しくは二本鎖ＤＮＡ、特に核酸配列を有するＤＮＡ、または３３位から１０９１
位までの配列番号１に示したような核酸配列の機能的変異体である。本発明によ
ると、２つの位置が、コード領域の開始および終結を決定する。

【００２９】 本発明によると、「機能的変異体」なる語は、テトラヒメナΔ−６−デサチュ
ラーゼに機能的に関連した核酸を意味すると理解される。関連核酸の例は、例え
ば、他の繊毛虫細胞由来の核酸、または対立遺伝子の変異体または同義性の変異
体である。本発明は、同様に、本発明による核酸の機能的変異体を包含し、これ
は、異常なコドン使用度のために（Ｗｕｉｔｓｃｈｉｃｋ ＪＤ、Ｋａｒｒｅｒ
ＫＭ（１９９９）テトラヒメナ・サーモフィラにおけるゲノムＧ＋Ｃ含量、コ
ドン使用度、開始コドン内容および翻訳終結部位の解析、Ｊ．Ｅｕｋａｒｙｏｔ
．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．１９９９ ４６（３）：２３９〜４７）、選択した発現
系において本発明による核酸が適合することを必要とする。

【００３０】 一方、これは、繊毛虫でグルタミンをコードし、大半の他の発現系では終結コ
ドンであるコドンＴＡＡおよびＴＡＧを、ＣＡＡおよびＣＡＧで置換することに
関する。これに加えて、当業者は、本発明による核酸を、異なる発現系の、ある
特定のコドン優先度（これをコドン使用度と称する）に最適に適合させることに
は慣れている。 核酸は、特異的に塩基を置換することにより既知の方法で修飾できるか、また
は必要な核酸を、人工的に調製したオリゴヌクレオチドから得ることができる。
好ましい発現系における配列の適合は、例えば、既知のコドン使用度の表（例え
ば、インターネット：ＧｅｎＢａｎｋから作表したコドン使用度：ｈｔｔｐ：／
／ｗｗｗ．ｄｎａ．ａｆｆｒｃ．ｇｏ．ｊｐ．／〜ｎａｋａｍｕｒａ／ＣＵＴＧ
．ｈｔｍｌ）に基づいて、実施できる。本発明は、核酸の一部しか含まない核酸
の変異体も包含する。

【００３１】 本発明によると、「変異体」なる語は、広義の意味において、相同性、特に約
６０％、好ましくは約７５％、特に約９０％および特に約９５％の配列同一性を
示す核酸を意味すると理解される。

【００３２】 本発明による核酸の断片部分は、例えば、他の機能的変異体の同定のためのプ
ローブとして、またはアンチセンス核酸として個々のエピトープの調製に使用で
きる。例えば、少なくとも約８個のヌクレオチドを含む核酸は、アンチセンス核
酸として使用するのに適し、一方、少なくとも約１５個のヌクレオチドを含む核
酸は、ＰＣＲ法でプライマーとして使用するのに適し、少なくとも約２０個のヌ
クレオチドを含む核酸は、他の変異体の同定に適し、そして少なくとも約１００
個のヌクレオチドを含む核酸は、プローブとしての使用に適する。

【００３３】 別の好ましい実施形態において、本発明による核酸は、１つ以上の非コード配
列（とりわけＵＴＲ）を含む。非コード配列は、例えば、Δ−６−デサチュラー
ゼコード遺伝子の制御発現のためのイントロン配列または、プロモーターまたは
エンハンサー配列などの調節配列である。それ故、本発明は、配列番号３に示し
た本発明による核酸に関し、この核酸は、テトラヒメナ・サーモフィラから単離
でき、イントロン、プロモーターおよびＵＴＲを含むΔ−６−デサチュラーゼの
ゲノム配列を示す。

【００３４】 さらなる実施形態において、本発明による核酸は、それ故、ベクター、好まし
くは発現ベクターに含まれる。

【００３５】 発現ベクターは、例えば、原核または真核発現ベクターであり得る。大腸菌で
の発現用の原核発現ベクターの例は、Ｔ７発現ベクターｐＧＭ１０（Ｍａｒｔｉ
ｎ、１９９６）であり、これは、Ｎ−末端Ｍｅｔ−Ａｌａ−Ｈｉｓ６タグをコー
ドし、また、その発現タンパク質が、Ｎｉ２＋−ＮＴＡカラムにより有利に精製
されることを可能にするものである。

【００３６】 サッカロミセス・セレビジアエでの発現に適した真核発現ベクターの例は、ベ
クターｐ４２６Ｍｅｔ２５またはｐ４２６ＧＡＬ１（Ｍｕｍｂｅｒｇ ｅｔ ａ
ｌ．（１９９４）Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２２、５７６７）であるが、
昆虫細胞での発現に適した前記ベクターの例は、ＥＰ−Ｂ１−０１２７８３９ま
たはＥＰ−Ｂ１−０５４９７２１に開示されたようなバキュロウイルスベクター
であり、哺乳類細胞での発現に適したベクターの例は、一般に入手できるＳＶ４
０ベクターである。

【００３７】 一般に、発現ベクターはまた、大腸菌での発現用のｔｒｐプロモーター（例え
ば、ＥＰ−Ｂ１−０１５４１３３）、酵母での発現用のＡＤＨ−２プロモーター
（Ｒｕｓｓｅｌ ｅｔ ａｌ．（１９８３）、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５８
、２６７４）、昆虫細胞での発現用のバキュロウイルスポリヘドリンプロモータ
ー（例えば、ＥＰ−Ｂ１−０１２７８３９参照）、および、例えばＭＭＴＶ（マ
ウス哺乳類腫瘍ウイルス；Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ．（１９８１）Ｎａｔｕｒｅ、２
１４、２２８）から得られた初期ＳＶ４０プロモーターまたはＬＴＲプロモータ
ーなどの、宿主細胞に適した調節配列を含む。

【００３８】 例えばＧａｅｒｔｉｇ ｅｔ ａｌ．（（１９９９）Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔ
ｅｃｈ １７：４６２〜４６５）またはＧａｅｒｔｉｇ＆Ｋａｐｌｅｒ（（１９
９９）Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ ６２：４８５〜５００）に
よって記載されたベクターは、テトラヒメナの形質転換およびテトラヒメナにお
ける発現に適する。

【００３９】 本発明による核酸は、例えば、化学的に、例えばホスホトリエステル法に従っ
て、配列番号１および３に開示した配列を使用して、または、配列番号２に開示
したペプチド配列及び列挙した遺伝子コード（例えば、Ｕｈｌｍａｎ，Ｅ＆Ｐｅ
ｙｍａｎ，Ａ（１９９０）Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｒｅｖｉｅｗｓ、９０、５４３、
Ｎｏ．４）を使用して合成できる。本発明による核酸を得る別の可能性は、適切
なプローブを使用して、Δ−６−デサチュラーゼ活性を有する生物から調製した
適切な遺伝子ライブラリーから前記核酸を単離することである（例えば、Ｓａｍ
ｂｒｏｏｋ，Ｊ ｅｔ ａｌ．（１９８９）分子クローニング：実験マニュアル
第２版、コールドスプリングハーバー、ニューヨーク）。適切なプローブの例は
、約１００から１０００ヌクレオチド長を有する、好ましくは約２００から５０
０ヌクレオチド長を有する、特に約３００から４００ヌクレオチド長を有する、
一本鎖ＤＮＡ断片であり、その配列は、配列番号１または３に示した核酸配列か
ら得ることができる。

【００４０】 この理由から、本発明は、また、本発明による核酸を調製するプロセスに関し
、前記核酸は、化学合成されるか、またはプローブを使用して遺伝子ライブラリ
ーから単離される。

【００４１】 本発明はさらにまた、配列番号２に示したアミノ酸配列を有するポリペプチド
自体、またはその機能的変異体、および、少なくとも６個のアミノ酸を含む、好
ましくは少なくとも１２個のアミノ酸を含む、特に少なくとも６５個のアミノ酸
を含む、特に少なくとも１５０個のアミノ酸を含む、その一部に関する（以下に
おいて「本発明によるポリペプチド」と称する）。例えば、約６〜１２アミノ酸
長、好ましくは約８アミノ酸長のポリペプチドは、担体に結合した後に、特定の
ポリクローナルまたはモノクローナル抗体の調製に使用できる、エピトープを含
むことができる（これに関しては、例えば、米国特許第５，６５６，４３５号参
照）。少なくとも約６５個のアミノ酸長を有するポリペプチドは、担体を全く用
いずに、ポリクローナルまたはモノクローナル抗体の調製に直接使用できる。

【００４２】 本発明の意味内で、「機能的変異体」なる語は、本発明によるペプチドに機能
的に関連した、すなわちΔ−６−デサチュラーゼ活性を示すポリペプチドを意味
すると理解される。

【００４３】 広義の意味において、配列番号２に示したアミノ酸配列を有するポリペプチド
と、配列相同性、特に約７０％、好ましくは約８０％、特に約９０％、特に約９
５％の配列同一性を有するポリペプチドを意味するとも理解される。

【００４４】 好ましいのは、保存されたヒスチジンボックス領域およびチトクロムｂ５ドメ
インを有するポリペプチドである。特に好ましいのは、ＨＨＦＦＰモチーフを含
む本発明によるポリペプチドである。

【００４５】 「機能的変異体」なる語は、さらにまた、ポリペプチドにおける約１〜６０、
好ましくは約１〜３０、特に約１〜１５、特に約１〜５個の範囲のアミノ酸の欠
失を含む。例えば、最初のアミノ酸メチオニンを、ポリペプチドの機能を有意に
変化させることなく欠失することができる。 「機能的変異体」なる語はまた、本発明による上記のポリペプチドを含む融合
タンパク質を含み、融合タンパク質それ自体は、すでに、Δ−６−デサチュラー
ゼの機能を有しているか、または融合部分をとり除いた後にはじめて特異的機能
を獲得できる。これらの融合タンパク質は、特に、約１〜２００、好ましくは約
１〜１５０、特に約１〜１００、特に約１〜５０個のアミノ酸の非繊毛虫配列の
構成部分を含む融合タンパク質を含む。

【００４６】 非繊毛虫ペプチド配列の例は、例えば、大腸菌ガラクトシダーゼから得られる
、または、ヒスチジンタグ、例えばＭｅｔ−Ａｌａ−Ｈｉｓ６タグと称される、
原核ペプチド配列である。ヒスチジンタグと称されるものを含む融合タンパク質
は、金属イオン含有カラム、例えば、Ｎｉ²⁺−ＮＴＡカラムを用いて、発現タン
パク質を精製するのに特に適切である。「ＮＴＡ」は、キレート剤のニトリロト
リ酢酸（キアゲンＧｍｂＨ、Ｈｉｌｄｅｎ）を意味する。

【００４７】 本発明によるポリペプチドの一部はエピトープを表し、例えば、このエピトー
プは、抗体により特異的に認識可能である。 本発明によるポリペプチドは、例えば、当業者に既知の方法に従って、本発明
の核酸を、すでに上記したような適切な発現系で発現することにより調製できる
。 適切な宿主細胞の例は、大腸菌株ＤＨ５、ＨＢ１０１またはＢＬ２１、酵母株
サッカロミセス・セレビジアエ、昆虫細胞系例えばスポドプテラ・フルジペルダ
から得られるレピドプテラン、または、ＣＯＳ、Ｖｅｒｏ、２９３およびＨｅＬ
ａなどの動物細胞であり、その全てが一般的に入手できる。

【００４８】 特に、ポリペプチドの前記部分はまた、古典的ペプチド合成（メリーフィール
ド技術）により合成できる。それらは、特に、このようにして、本発明によるポ
リペプチドのさらなる機能的変異体を得るために、適切な遺伝子発現ライブラリ
ーをスクリーニングすることに使用できる抗血清を得ることに適する。 本発明は、それ故また、本発明の核酸を適切な宿主細胞で発現し、適切な場合
には単離する、本発明によるポリペプチドの調製法に関する。

【００４９】 本発明はまた、本発明によるポリペプチドに特異的に反応する抗体に関し、こ
こで上記のポリペプチド部分それ自体は免疫原性であるか、またはウシ血清アル
ブミンなどの適切な担体に結合させることにより、免疫原性となることができる
、またはその免疫原性を増加させることができる。

【００５０】 抗体はポリクローナルまたはモノクローナルである。同様に、本発明に関する
調製は、例えば、哺乳動物、例えばウサギを、本発明によるポリペプチドまたは
前記のその一部を用いて、適切な場合には例えばフロイントアジュバントおよび
／水酸化アルミニウムゲルの存在下で免疫化することによる既知の方法に従って
行なう（例えば、Ｄｉａｍｏｎｄ，Ｂ．Ａ．ｅｔ ａｌ．（１９８１）Ｔｈｅ
Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ、１３４４
）。次いで、既知の方法を使用して、免疫反応の結果として動物に形成されたポ
リクローナル抗体をすぐに血液から単離し、それらを、例えばカラムクロマトグ
ラフィーにより精製できる。Ｃ末端デサチュラーゼ断片が、例えば、ＮＨＳ活性
化されたＨｉＴｒａｐカラムに結合している、抗体のアフィニティ精製が好まし
い。

【００５１】 モノクローナル抗体は、例えば、Ｗｉｎｔｅｒ＆Ｍｉｌｓｔｅｉｎ（Ｗｉｎｔ
ｅｒ，Ｇ．＆Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｃ．（１９９１）Ｎａｔｕｒｅ、３４９、２９
３）の既知の方法に従って調製できる。

【００５２】 Δ−６−デサチュラーゼは、すでに他の生物で記載されているが、テトラヒメ
ナは組換え法により生産性の高い商業的に重要な株を作成する出発点として、お
よび、ＰＵＦＡ生合成の遺伝子源としての両方の使用に適している。なぜなら、
ＧＬＡを産生する場合に空間的／時間的収量が特に高いからである。従って、Ｇ
ＬＡ産生繊毛虫テトラヒメナ・サーモフィラから得られるΔ−６−デサチュラー
ゼおよびその使用を本発明に記載する。

【００５３】 脂肪酸構成（スペクトル）の組成を特異的に修飾するために組換え法を使用す
ることは、Ｎａｐｉｅｒ Ｊ ｅｔ ａｌ．（Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｐｌａｎｔ
Ｂｉｏｌ．（１９９９）１２３〜１２７）、Ｍｕｒｐｈｙ＆Ｐｉｆｆａｎｅｌ
ｌｉ（Ｓｏｃ．Ｅｘｐ．Ｂｉｏｌ．Ｓｅｍｉｎ．Ｓｅｒ．６７（植物脂質生合成
）、（１９９８）９５〜１３０）およびＦａｃｃｉｏｔｔｉ＆Ｋｎａｕｆ（Ａｄ
ｖ．Ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈ．６：光合成における脂質：構造、機能および遺伝子
学、Ｓｉｅｇｅｎｔｈａｌｅｒ＆Ｍｕｒａｔａ（編）Ｋｌｕｗｅｒ Ａｃａｄｅ
ｍｉｃ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ、オランダ（１９９８）２２５〜２４８）に記載
されている。

【００５４】 ＷＯ９８／４６７６３、ＷＯ９８／４６７６４およびＷＯ９８／４６７６５の
文書は、真菌Ｍｏｒｔｉｅｒｅｌｌａから得られたデサチュラーゼおよびＰＵＦ
Ａ産生における遺伝子の使用、およびまたデサチュラーゼのいくつかの部分的配
列を記載する。第ＷＯ９３／０６７１２および第ＷＯ９６／２１０２２は、シア
ノバクテリウムからおよびルリヂサから得られたΔ６−デサチュラーゼ、および
、シアノバクテリアおよび植物でのＰＵＦＡの産生におけるこれらの配列の使用
をも記載する。第ＷＯ９９／２７１１１は、線虫から得られたデサチュラーゼお
よびＰＵＦＡの産生におけるその使用を記載する。

【００５５】 Δ−６−デサチュラーゼは文献にも開示されている。しかし、これらのΔ−６
−デサチュラーゼは、特に、植物（ルリヂサ（Ｓａｙａｎｏｖａ ｅｔ ａｌ．
（１９９７）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ １９９７、９４
：４２１１〜４２１６）、ヒメツリガネゴケ（Ｇｉｒｋｅ ｅｔ ａｌ．、（１
９９８）Ｐｌａｎｔ−Ｊ．１９９８ １５（１）：３９〜４８）、ヒマワリ（Ｓ
ｐｅｒｌｉｎｇ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１９
９５、２３２：７９８〜８０５））、真菌（モルチェレラ）、動物（マウス、ラ
ット、カエノラブディティス（Ｎａｐｉｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９８）Ｂｉｏ
ｃｈｅｍ．Ｊ．３３０（２）、６１１〜６１４））、およびシアノバクテリウム
（Ｒｅｄｄｙ ｅｔ ａｌ．（１９９３）Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ．１９
９３、２９３〜３００）から得られたΔ−６−デサチュラーゼである。

【００５６】 一般に、目的は、栽培植物、特にセイヨウアブラナ、ヒマワリおよびその他な
どの油料種子における、これらの遺伝子の機能的で異種的な発現である。しかし
、これまで刊行された全ての場合において、ＧＬＡ収量は非常に低い、および／
またはΔ−６−デサチュラーゼ活性を有し、遺伝子工学により生産されたＧＬＡ
産生生物は、商業的な重要性がない（Ｋｎｕｔｚｏｎ＆Ｋｎａｕｆ（１９９８）
Ｓｏｃ．Ｅｘｐ．Ｂｉｏｌ．Ｓｅｍｉｎ．Ｓｅｒ．６７：２８７〜３０４）。

【００５７】 Ｍｕｒｐｈｙ（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｐｉｎｉｏｎ ｉｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏ
ｌｏｇｙ（１９９９）１０：１７５〜１８０）およびＫｎｕｔｚｏｎ＆Ｋｎａｕ
ｆ（１９９８）は、例えば、トランスジェニック植物において脂肪酸スペクトル
を特異的に修飾する上での問題および困難を記載している。

【００５８】 前述のテトラヒメナのＧＬＡの含量が高いということから、組換え法により、
高度に生産的で商業的に重要な株を開発するために、この生物由来のＰＵＦＡ生
合成遺伝子を使用することが有利である。テトラヒメナは大量培養で良好に、高
い細胞密度で培養できる可能性があるということから、このように高度に生産的
で商業的に興味ある株を、組換え法により作製するために、テトラヒメナそれ自
体を使用することはさらに有利である。さらに、本発明の核酸を用いて、テトラ
ヒメナ以外の他の生物を、ＧＬＡおよび他のΔ−６−不飽和脂肪酸の産生に使用
することもできる。

【００５９】 テトラヒメナを発酵することによるＧＬＡの調製は、高等生物に比べて、脂肪
酸構成（スペクトル）がかなり単純であるため、特に有利である。これに加えて
、発酵的産生は、気候、栄養分供給等の外的因子に影響されない。さらに、この
ように得られた産物は、例えば、天然から得られる産物の場合にみられる環境汚
染により生じ得る不純物をあまり含まない。

【００６０】 繊毛虫特異的テトラヒメナΔ−６−デサチュラーゼをコードする本発明による
核酸を使用して、ＧＬＡおよびΔ−６−不飽和脂肪酸を産生するか、または、前
記脂肪酸の含量が実質的に野生型細胞（この場合、テトラヒメナ・サーモフィラ
）と比べて増加している、トランスジェニック生物を産生できる（表１および２
参照）。これらのトランスジェニック生物は、本発明による核酸配列を有するか
、または、機能的にそれを発現する、好ましくは繊毛虫、特に好ましくはテトラ
ヒメナである。このようなデサチュラーゼの発現により、Δ−６−不飽和脂肪酸
またはそれから得られる二次産物が比較的増加する。この増加は、ＰＵＦＡ合成
に関与する酵素および基質の濃度の変化に基づく。

【００６１】 本発明は、ＰＵＦＡ、特にＧＬＡおよびそれから得られるＰＵＦＡ、またはＧ
ＬＡから得られる他の二次産物、またはΔ−６−不飽和脂肪酸の商業的生産に使
用できる（図１参照：ＰＵＦＡ生合成）。ＧＬＡに加えて、このように、ＡＬＡ
を不飽和化することにより、例えば、産業で頻繁に使用される原材料であるステ
アリドン酸（１８：４Δ６、９、１２、１５）を調製できる。

【００６２】 特殊な実施形態では、本発明によるΔ−６−デサチュラーゼをコードする核酸
を、適切な調節配列と機能的に組合せて使用することにより、酵素の発現を増加
し、よってＧＬＡ産生生物でのＧＬＡ含量を増加するか、またはＬＡ産生生物で
ＧＬＡを産生できる。これに関連して、ヒマワリ、セイヨウアブラナおよび大豆
などの油を産生する生物、および他の生物も同様に、特に関心をひく。これに加
えて、例えばΔ−１２−デサチュラーゼ（例えば、Ｓａｋｕｒａｄａｎｉ Ｅ
ｅｔ ａｌ．（１９９９）Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２６１：８１２〜８２
０、Ｏｋｕｌｅｙ ｅｔ ａｌ．、Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ（１９９４）６（１）
１４７〜５８）を同時に使用することにより、ＬＡを全く含まないか、ＬＡをほ
とんど含まない生物または細胞で、前記ＰＵＦＡを産生できる。同様に、ＧＬＡ
およびΔ−６−不飽和脂肪酸の産生のために、ＧＬＡの生成に関与する３つのデ
サチュラーゼ、すなわちΔ６、Δ９およびΔ１２の組合せを使用できる。さらに
、ＰＵＦＡ生合成（図１参照）に関与する他の遺伝子と合わせることは、本発明
の別の好ましい実施形態を構成し、ＧＬＡおよびΔ−６−不飽和脂肪酸は、ＧＬ
Ａが基質として作用する他の酵素により転換され、それにより、例えば、ＡＲＡ
（２０：４）およびＧＬＡから得られる他の分子を調製することが可能である。

【００６３】 さらに、本発明は、新規ＧＬＡ含有栄養源、または、ＧＬＡまたは他のΔ６−
不飽和脂肪酸から得ることのできる分子（特にＰＵＦＡ、例えばＡＲＡ）の豊富
な栄養源の調製に使用できる。

【００６４】 さらに、本発明は、Δ−６−デサチュラーゼ遺伝子またはその一部を含む発現
生成体、および異種調節配列とΔ−６−デサチュラーゼをコードする配列の機能
的組合せも記載する。

【００６５】 本発明はさらに、記載のΔ−６−デサチュラーゼをコードするＤＮＡ配列およ
び上記のΔ−６−デサチュラーゼ遺伝子の機能的生成体を使用することにより、
ＧＬＡ含量の増加した（表１および２参照）、トランスジェニック生物の調製に
関する。

【００６６】 ゲノムＤＮＡおよびｍＲＮＡを単離するための、および、ゲノムライブラリー
およびｃＤＮＡライブラリーを調製するための、多くの十分に確立された方法が
知られている（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．（１９８９）分子クロ
ーニング：実験マニュアル、コールドスプリングハーバー、ＮＹ）。 本発明に記載のデサチュラーゼまたはその一部を含む適切なベクターは、例え
ばＡｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．（Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．（１９９５）
分子生物学の現在のプロトコル、Ｇｒｅｅｎ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ａｓｓｉ
ｃｉａｔｅｓ、ニューヨーク）およびＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．（１９８
９）に記載されているような、当業者に既知の方法を使用して調製できる。

【００６７】 Δ−６−デサチュラーゼをコードする配列を含むベクターを、感染、トランス
フェクション、電気穿孔法、粒子による撃ち込みおよび他の方法により細胞に導
入できる。その場合、形質転換は、一般に、外来ＤＮＡの細胞への導入を意味す
ると理解される。その実施法は十分に確立され、当業者に既知の方法で実施でき
る（例えばＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．（１９８９）、Ｐｏｔｒｙｋｕｓ
Ｉ（１９９１）Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｐｌａｎｔ．Ｂｉｏｌ．Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ
．Ｂｉｏｌ．４２：２０５〜２２５、Ｃｈｒｉｓｔｏｕ Ｐ（１９９３）Ｃｕｒ
ｒ．Ｏｐｐ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．４：１３５〜１４１）。

【００６８】 ベクターも記載され、これらのベクターは、本発明のＤＮＡ配列または配列の
一部を、宿主細胞の中で活性であるプロモーターまたは他の調節エレメントとの
機能的組合せで含む。好ましい実施形態において、これらの調節エレメントは、
繊毛虫、特にテトラヒメナで機能的に活性である核酸配列、例えばヒストンＨ４
およびαおよびβ−チューブリンおよびその他のプロモーターである。

【００６９】 記載のΔ−６−デサチュラーゼをコードする配列を組換え発現する生物も、本
発明に記載されている。それによって、これらの生物でΔ６−ＰＵＦＡを産生す
る可能性に加えて、例えば、組換えΔ６−デサチュラーゼまたはその一部を、標
準的なタンパク質精製法（例えばＡｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．（１９９５））
を使用して単離する可能性もある。種々の生物でΔ−６−デサチュラーゼをコー
ドする配列の発現に使用できるベクターは、当業者に既知の方法で調製できる。
適切なベクターに関する詳細な情報は、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ
．（１９８９）、Ｇｏｅｄｄｅｌ編（１９９０）Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚ
ｙｍｏｌｏｇｙ １８５ Ａｃａｄｅｍｉｃ ＰｒｅｓｓおよびＰｅｒｂａｌ（
１９８８）分子クローニングの実践的なガイド、Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ａｎｄ
Ｓｏｎｓ社に見出し得る。 これらのベクターは、好ましくは、プロモーター、エンハンサーエレメント、
上流活性化配列等の、発現に影響を及ぼす配列エレメント含む。誘導性および構
成性プロモーター、または、例えば、組織特異的プロモーターは、発現の奏効に
適する。カリフラワーモザイクウイルス（ＣａＭＶ）３５Ｓプロモーター（Ｒｅ
ｓｔｒｅｐｏ ｅｔ ａｌ．（１９９０）Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ ２ ９８７）
、または、例えば、種子発達に関連して活性化されるプロモーターが、植物細胞
での発現に適している。

【００７０】 使用するベクターは、好ましくはシャトルベクターである（Ｗｏｌｋ ｅｔ
ａｌ．（１９８４）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、１５６１
〜１５６５、Ｂｕｓｔｏｓ ｅｔ ａｌ．（１９９１）Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ
．１７４：７５２５〜７５３３）。

【００７１】 好ましい実施形態において、本発明による核酸は、強力なプロモーター制御下
でテトラヒメナにおいて発現する（例えばテトラヒメナβ−チューブリンプロモ
ーター、Ｇａｅｒｔｉｇ ｅｔ ａｌ．（１９９９）Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅ
ｃｈ．）。形質転換は、好ましくは、Ｇａｅｒｔｉｇら（１９９９）Ｎａｔｕｒ
ｅ Ｂｉｏｔｅｃｈ．１７：４６２〜４６５（または例えば、Ｇａｅｒｔｉｇ＆
Ｇｏｒｏｖｓｋｙ（１９９２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ
８９：９１９６〜９２００）に記載の方法に従って行なうことができる。例え
ば、テトラヒメナ・サーモフィラα−またはβ−チューブリンプロモーターを、
発現の調節エレメントとして使用できる。形質転換したテトラヒメナ細胞を選択
培地で同定し、次いで、強化し培養する。細胞から脂質（リポイド）を単離する
ために標準的な方法を使用できる（例えば、Ｄａｈｍｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９
８９）Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｏｉｌ Ｃｈｅｍｉｃａｌ
Ｓｏｃｉｅｔｙ ６６、５４３）。脂肪酸のメチルエステルは、ガスクロマトグ
ラフィーにより解析できる。

【００７２】 本発明による単離した核酸またはその一部はまた、他の生物から、特に例えば
他の原生生物から、特に繊毛虫から関連遺伝子を単離するのに使用できる。本発
明による核酸またはその一部は、相同遺伝子を単離するための、標識プローブと
して使用できる。他の生物から単離しておいた核酸にプローブをハイブリダイズ
することにより相同核酸配列を同定および単離できる。プローブは、当業者に既
知の方法で標識できる（Ａｕｓｕｂｅｌ、Ｓａｍｂｒｏｏｋ（上記参照））。 放射性ヌクレオチド、または蛍光分子、ジゴキシゲニン、ビオチン、磁性分子
または酵素などの検出可能な分子に連結したヌクレオチドが、例えば、プローブ
の標識に適する。相同ＤＮＡ配列は、異種ＤＮＡにプローブをハイブリダイズさ
せた後に標識を検出することにより、同定および単離する。ｃＤＮＡライブラリ
ーまたはゲノムライブラリーは、相同配列の探索に適している。これに加えて、
サザンおよびノザンブロットが、相同配列の検出に適する。別に、標識プローブ
を選択的に保持すること（例えば磁気を使用して）により、標識プローブとハイ
ブリダイズする相同ＤＮＡを単離できる。

【００７３】 交差ハイブリダイゼーションを使用した相同遺伝子の単離およびクローニング
は、当業者に既知であり、例えばＡｕｓｕｂｅｌら（１９９５、分子生物学の現
在のプロトコル、Ｇｒｅｅｎ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓ、
ニューヨーク）またはＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．（１９８９、分子クロー
ニング）に記載された方法により行なうことができる。

【００７４】 さらに、単離ＤＮＡ配列およびそれがコードするタンパク質配列に基づいて、
ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）による相同核酸配列の増幅に使用できる、オリ
ゴヌクレオチドを設計できる。

【００７５】 相同タンパク質を単離する別の可能性は、それらを、本発明の配列によりコー
ドされる、タンパク質またはその一部に対して指向された特定の抗体（例えばペ
プチド抗体）を使用して検出することにある。

【００７６】

【発明の実施の形態】

最も重要な配列の説明 配列番号１：テトラヒメナ・サーモフィラΔ−６−デサチュラーゼのΔ−６−
デサチュラーゼをコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列。開始および終結コド
ンを強調している。

【００７７】 配列番号２：特殊な繊毛虫コドン使用度を考慮して、配列番号１から推定した
テトラヒメナΔ−６−デサチュラーゼのタンパク質配列（Ｗｕｉｔｓｃｈｉｃｋ
ＪＤ、Ｋａｒｒｅｒ ＫＭ（１９９９）またはＣＵＴＧ（ＧｅｎＢａｎｋから
作表したコドン使用度）：ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｄｎａ．ａｆｆｒｃ．ｇｏ．
ｊｐ．／〜ｎａｋａｍｕｒａ／ＣＵＴＧ．ｈｔｍｌ）。

【００７８】 配列番号３：テトラヒメナ・サーモフィラΔ−６−デサチュラーゼのゲノムヌ
クレオチド配列。

【００７９】

【実施例】

以下の実施例は、本発明をこれらの実施例に制限されることなく説明するもの
である。 実施例１ 生物および培養条件 テトラヒメナ・サーモフィラ（Ｂ１８６８ＶＩＩ、Ｂ２０８６ ＩＩ、Ｂ＊Ｖ
Ｉ、ＣＵ４２７、ＣＵ４２８およびＣＵ５２２株、米国ジョージア州アーセンズ
所在ジョージア大学のＪ．Ｇａｅｒｔｉｇ博士より親切にも提供された）を、修
飾ＳＰＰ培地（２％プロテオースペプトン、０．１％酵母抽出物、０．２％グル
コース、０．００３％Ｆｅ−ＥＤＴＡ（Ｇａｅｒｔｉｇ ｅｔ ａｌ．（１９９
４）ＰＮＡＳ ９１：４５４９〜４５５３））またはスキムミルク培地（２％ス
キムミルク粉末、０．５％酵母抽出物、１％グルコース、０．００３％Ｆｅ−Ｅ
ＤＴＡ）またはＭＹＧ培地（２％スキムミルク粉末、０．１％酵母抽出物、０．
２％グルコース、０．００３％Ｆｅ−ＥＤＴＡ）中、抗生物質溶液（１００Ｕの
ペニシリン／ｍｌ、１００μｇのストレプトマイシン／ｍｌおよび０．２５μｇ
のアムホテリシンＢ／ｍｌ（ＳＰＰＡ培地））を加えた存在下で、３０℃で、２
５０ｍｌの三角フラスコ中５０ｍｌの容量で振盪（１５０ｒｐｍ）しながら培養
した。 プラスミドおよびファージを、大腸菌ＸＬ１−ＢｌｕｅＭＲＦ’、ＴＯＰ１０
Ｆ’、またはＪＭ１０９で複製し、選び出した。細菌を、標準的な濃度の抗生物
質を含む、ＬＢまたはＮＺＹ培地中で標準的な条件下で培養した（Ｓａｍｂｒｏ
ｏｋら（１９８９）分子クローニング：実験マニュアル、コールドスプリングハ
ーバー研究所、コールドスプリング、ニューヨーク）。

【００８０】 実施例２ テトラヒメナ・サーモフィラｃＤＮＡライブラリーの調製 テトラヒメナ・サーモフィラ全ＲＮＡを、グアニジンチオシアネート／フェノ
ール／クロロホルム法を使用して単離した（Ｃｈｏｍｚｙｎｓｋｉ＆Ｓａｃｃｈ
ｉ（１９８７）Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１６１：１５６〜１５９）。ｍＲＮ
Ａを、オリゴテックス−ｄＴビーズ（キアゲン）を使用して全ＲＮＡから単離し
た。ｃＤＮＡを、ストラタジーンＺＡＰ発現ｃＤＮＡ合成法およびクローニング
キットを使用して合成した。ＥｃｏＲＩアダプターをライゲートし、ＸｈｏＩで
消化した後、ＤＮＡを、アガロースゲル上で分離し、サイズ分画した（Ｓ：５０
０〜１５００ｂｐ、Ｂ：１５００ｂｐより大きい）。ＤＮＡを、ゲル（クイアク
イックゲル抽出キット、キアゲン）から単離し、ＥｃｏＲＩおよびＸｈｏＩで切
断しておいた、ＺＡＰ 発現ベクターにライゲートした。ライゲートしたＤＮＡ
を、インビトロでファージにパッケージングし（ストラタジーン ギガパックＩ
ＩＩゴールド）、ファージを、大腸菌 ＸＬ１−Ｂｌｕｅ ＭＲＦ’中で複製し
た。ＳｃＤＮＡライブラリーは、平均挿入サイズが１．１ｋｂの約５×１０⁵個
のクローンを含むが、ＢｃＤＮＡライブラリーは、平均挿入サイズが２ｋｂの約
６×１０⁴個のクローンを含んでいる。

【００８１】 実施例３ Δ−６−デサチュラーゼ特異的プライマーを使用したＲＴ−ＰＣＲ 既知のデサチュラーゼの配列と比較することにより、保存領域を同定できた。
特殊な繊毛虫コドン使用度ないしテトラヒメナコドン使用度を考慮に入れ、特に
強く保存されたアミノ酸領域ＷＷＫＷＮＨＮＡＨＨ（配列番号４）およびＧＧＬ
ＱＦＱＩＥＨＨＬＦＰ（配列番号５）のＰＣＲプライマーを設計することができ
た（Ｗｕｉｔｓｃｈｉｃｋ，ＪＤ、Ｋａｒｒｅｒ ＫＭ（１９９９）テトラヒメ
ナ・サーモフィラにおけるゲノムＧ＋Ｃ含量、コドン使用度、開始コドン内容お
よび翻訳終結部位の解析、Ｊ．Ｅｕｋａｒｙｏｔ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．４６（
３）２３９〜４７；Ｍａｒｔｉｎｄａｌｅ（１９８９）Ｊ．Ｐｒｏｔｏｚｏｏｌ
．３６、１：２９〜３４、ＣＵＴＧ、（ＧｅｎＢａｎｋから作表したコドン使用
度）：ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｄｎａ．ａｆｆｒｃ．ｇｏ．ｊｐ．／〜ｎａｋａ
ｍｕｒａ／ＣＵＴＧ．ｈｔｍｌ）。

【００８２】 プライマー１（センス）：５’−ＴＧＧＴＧＧＡＡＲＴＧＧＡＭＮＣＡＹＡＡ−
３’（配列番号６） プライマー２（アンチセンス）：５’−ＣＧＤＧＧＲＡＡＮＡＲＲＴＧＲＴＧＴ
ＴＣ−３’（配列番号７） １００ｎｇの単離ｍＲＮＡを、ＡＭＶ逆転写酵素（ベーリンガーマンハイム）
を使用する第一鎖合成に使用した。反応は、５０ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ８．
５）、８ｍＭ ＭｇＣｌ₂、３０ｍＭ ＫＣｌ、１ｍＭ ＤＴＴ、１ｍＭ ｄＮ
ＴＰ、２ｐｍｏｌのオリゴ−ＤＴアンカープライマー（５’−ＧＡＣＣＡＣＧＣ
ＧＴＡＴＣＧＡＴＧＴＣＧＡＣＴ（１６）Ｖ−３’；配列番号８）、２単位のＡ
ＭＶ逆転写酵素、２０μｌの容量中６０分間５５℃、続いて１０分間６５℃で、
製造業者のプロトコルに従って実施した。 この第一鎖反応の１／１０を、ＰＣＲに使用した。ＰＣＲは、１×キアゲンＨ
ｏｔＳｔａｒＴａｑＰＣＲ緩衝液（キアゲン）、ｐＨ８．７（２０℃）、１０ｐ
ｍｏｌの各Δ−６−デサチュラーゼ特異的プライマー、各場合とも２００μＭの
ｄＮＴＰ、１．５ｍＭ ＭｇＣｌ₂、１単位のＨｏｔＳｔａｒＴａｑポリメラー
ゼ（キアゲン）を含む、２５μｌの容量中で実施した。 ＰＣＲは、以下の条件下で実施した：最初に９５℃で１５分間で変性、これに
次いで、各場合とも９４℃で３０秒間、４５℃で３０秒間、７２℃で１分間から
なる３５サイクル、最後に７２℃で１０分間。 ＰＣＲ断片を、ベクターｐＣＲ２．１に、Ｔ／Ａクローニング（インビトロゲン
）によりライゲートし、大腸菌 ＴＯＰ１０Ｆ’（インビトロゲン）で複製した
。プラスミドＤＮＡを、陽性クローンから単離し（Ｑｉａｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ、
キアゲン）配列決定した。

【００８３】 実施例４ 完全Δ−６−デサチュラーゼをコードするｃＤＮＡの単離 このように決定した配列に基づいて、新規オリゴヌクレオチドを、ＰＣＲ用に
設計した： プライマーｄ６／１−Ｆ（センス）：５’−ＧＧＡＡＴＣＡＣＡＡＴＣＡＡＣＡ
ＴＣＡＴＡＴＧＴＴＣＡＣ−３’（配列番号９）および プライマーｄ６／１−Ｒ（アンチセンス）：５’−ＣＴＴＣＧＴＣＣＴＴＴＡＧ
ＡＡＴＧＴＴＧＴＴＴＧＴＧＡＡＣ−３’（配列番号１０） 完全Δ−６−デサチュラーゼをコードするｃＤＮＡを、ＰＣＲにより、ｃＤＮＡ
ライブラリーから、これらのプライマーをベクター特異的プライマー（Ｔ３およ
びＴ７）と組合せて使用して単離した。２μｌ（１０⁵ｐｆｕ／μｌ）のｃＤＮ
Ａライブラリーを、ＰＣＲに使用した（上記参照）。 上記の条件とは別に、ＰＣＲを、以下のプロトコルに従って実施した：９５℃
で１５分間変性し、これに次いで、９４℃で２０秒間、５７℃で２０秒間および
７２℃で１分間からなる３５サイクル、最後に７２℃で１０分間。 ＰＣＲ産生物を、ＰＣＲにも使用したプライマーを使用して配列決定した。この
ように得られた配列情報に基づいて、ｃＤＮＡ配列の５’末端に位置する新規プ
ライマーを設計した： プライマーｄ６−５’−Ｆ：ＡＧＴＡＡＧＣＡＡＡＣＴＡＡＡＴＴＴＡＡＡＡＡ
ＡＣＡＡＧＣ（配列番号１１） このプライマーを、ベクター特異的プライマーと組合せて使用して、ＰＣＲ（Ｐ
ＣＲ条件については上記参照）により完全ｃＤＮＡを増幅および単離することが
できた。プラスミドｐＤＥＳ６は、このＰＣＲ産生物をベクターｐＣＲ２．１に
クローニングすることにより得た。

【００８４】 実施例５ テトラヒメナ・サーモフィラゲノムＤＮＡライブラリーの調製 ゲノムＤＮＡを、尿素法（Ｇａｅｒｔｉｇら、１９９４）により、テトラヒメ
ナから単離し、ＥｃｏＲＩで切断した。切断ＤＮＡを、ＥｃｏＲＩで同様に切断
しておいた、λベクター（Ｚａｐ Ｅｘｐｒｅｓｓ、ストラタジーン）にライゲ
ートした。さらなる処理は、ｃＤＮＡライブラリーの場合に記載した手順に応じ
て行った。

【００８５】 実施例６ Δ−６−デサチュラーゼゲノム配列の単離 Δ−６−デサチュラーゼのゲノム配列を、ＰＣＲを用いて調べた。最初に、全
コード配列およびイントロンを含む、約２２００ｂｐのサイズのＰＣＲ産生物を
、ゲノムＤＮＡから、ｃＤＮＡの５’および３’末端からのプライマーを使用し
て作製した： ｄ６−５’−Ｆ：ＡＧＴＡＡＧＣＡＡＡＣＴＡＡＡＴＴＴＡＡＡＡＡＡＣＡＡＧ
Ｃ（配列番号１２） ｄ６−３’−Ｒ：ＧＧＴＣＣＴＴＣＡＴＧＡＡＴＣＴＴＡＡＧＧＴＴＣＣＡＣＴ
ＴＣ（配列番号１３） ゲノムウォーカーシステム（クロンテック）を使用して、Δ−６−デサチュラ
ーゼ遺伝子のフランキング配列を単離した。このシステムからの普遍的なプライ
マーおよび決定しておいたΔ−６−デサチュラーゼ配列に基づいた特異的プライ
マー、すなわち、 ｄ６−５’−Ｒ：ＣＴＴＡＡＧＴＣＴＴＡＴＣＡＡＣＴＣＣＣＡＴＡＡＴＧＣ（
配列番号１４） ｄ６−３’−Ｆ：ＧＡＡＧＴＧＧＡＡＣＣＴＴＡＡＧＡＴＴＣＡＴＧＡＡＧＧＡ
ＣＣ（配列番号１５） を使用して、テトラヒメナΔ−６−デサチュラーゼ遺伝子のフランキング領域を
単離できた。ゲノム配列の完全構造を図１１に示す。

【００８６】 実施例７ ｐＢＤＥＳ６発現生成体の調製 ベクターｐＢＩＣＨ３（Ｇａｅｒｔｉｇ ｅｔ ａｌ．、１９９９、Ｎａｔｕ
ｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈ．１７：４６２〜４６５）は、テトラヒメナ・サーモフィ
ラＢＴＵ１遺伝子の非コード調節配列によりフランキングされる、Ｉｃｈｔｈｙ
ｏｐｈｔｈｉｒｉｕｓ Ｉ抗原（Ｇ１）プレタンパク質をコードする配列を含む
。開始点にＮｓｉＩ切断部位を含む、修飾プラスミド（ｐＢＩＣＨ３−Ｎｓｉ）
（米国ＧＡ州アセンズ所在ジョージア大学のＪ．Ｇａｅｒｔｉｇ博士より親切に
も提供された）を使用して、Δ−６−デサチュラーゼ発現生成体ｐＢＤＥＳ６を
調製した。このために、ＰＣＲを使用して、テトラヒメナΔ−６−デサチュラー
ゼをコードする配列の始点および終点にＮｓｉＩおよびＢａｍＨＩ切断部位を挿
入した。Δ−６−デサチュラーゼ（ｐＤＥＳ６）の完全ｃＤＮＡ配列を含む、単
離プラスミドを、ＰＣＲの鋳型として使用した。

【００８７】 プライマー Ｄ６−Ｎｓｉ−Ｆ：５’−ＧＣＡＴＴＡＴＧＣＡＴＧＴＴＧＡＴＡＡＧＡＣＴＴ
ＡＡＧＡＡＧ−３’（配列番号１６） Ｄ６−Ｂａｍ−Ｒ：５’−ＴＡＴＧＧＡＴＣＣＴＣＡＡＡＧＧＴＧＡＧＡＴＴＴ
ＴＴＣＡＡＡＡＡＴＡＧ−３’（配列番号１７） は、ＮｓｉＩおよびＢａｍＨＩ切断部位によりフランキングされる、Δ−６−デ
サチュラーゼをコードする完全配列を含む、ＰＣＲ産生物を作製した。ＰＣＲ産
生物およびプラスミドｐＢＩＣＨ３−Ｎｓｉを、制限酵素ＮｓｉＩおよびＢａｍ
ＨＩで切断し、アガロースゲル上で精製し、共にライゲートした（プラスミド作
製図参照）。得られたｐＢＤＥＳ６発現生成体は、ＢＴＵ１遺伝子の調節配列の
正しいリーディングフレーム内に挿入された、完全Δ−６−デサチュラーゼをコ
ードする配列を含んでいる（図１２参照）。 テトラヒメナを形質転換するために、生成体を、制限酵素ＸｂａＩおよびＳａ
ｌＩで消化することにより線形化した。形質転換が成功裡にできれば、ＢＴＵ１
遺伝子を、相同的組換えにより、これらの生成体と交換し、よって、細胞はパク
リタキセルに耐性となった。

【００８８】 実施例８ 形質転換体の脂肪酸構成（スペクトル）の決定 脂肪酸構成（スペクトル）は、フレームイオン化検出器（米国ウィルミントン
所在ヒューレットパッカード社）ガスクロマトグラフ（ＨＰ ＧＣ ６８９０）
を使用して決定した。使用したカラムはＦＦＡＰ（遊離脂肪酸相）Ｐｅｒｍｂｏ
ｎｄ（Ｍａｃｈｅｒｅｙ＆Ｎａｇｅｌ ＧｍｂＨ、デューレン）であった。脂肪
酸は、脂肪酸メチルエステル標準の保持時間との比較により同定した。既知濃度
の標準に基づいて、試料中の脂肪酸の濃度を決定することができた。 脂肪酸スペクトルを決定するために、単離した形質転換体を、２４〜９６時間
、ＭＹＧ培地中で３０℃で１５０ｒｐｍで培養した。５０ｍｌの培養液を、１５
００Ｇで１５分間遠心分離し、その後、上澄を廃棄し、ペレットを−８０℃で凍
結し、続いて凍結乾燥した。５０ｍｇの凍結乾燥試料を秤量し、１ｍｌの２０％
メタノール性ＨＣｌおよび１ｍｌのメタノール性標準溶液（１ｍｇ／ｍｌ）で処
理した。脂肪酸を遊離し、それらを脂肪酸メチルエステルにエステル交換するた
めに、試料を、６０℃で２時間、封をした試験管の中で水浴中で撹拌し、次いで
室温まで冷却した。次いで、１ｍｌの炭酸水素ナトリウム飽和水溶液を加えて、
注意深く混合しながら、試料を中和した。脂肪酸メチルエステルを、ｎ−ヘキサ
ンを添加することにより抽出した。続いて、調製物を、激しく十分に混合し、４
３００ｒｐｍで２分間遠心分離することにより相分離を起こした。上の有機相の
約２／３を取り出し、１μｌの試料を、ＧＣカラムに注入し、分析した。

【００８９】

【表１】

【００９０】

【表２】

【００９１】 これらの条件下で、形質転換体は、非形質転換株ＣＵ５２２と比べて２２〜３
２％増加した、全脂肪酸スペクトル中のＧＬＡ含量を示している（表１）。ＧＬ
Ａ含量の変動に加えて、高含量の不飽和脂肪酸への、脂肪酸スペクトルの顕著な
変動も驚きである。形質転換体では、不飽和（主）脂肪酸と飽和（主）脂肪酸の
比も、ほぼ２倍である（表２）。

【００９２】 実施例９ Δ−６−デサチュラーゼノックアウト生成体ｐｇＤＥＳ６：：ｎｅｏの調製 ノックアウト生成体を調製するために、プラスミドｐ４Ｔ２−１ΔＨ３（Ｇａ
ｅｒｔｉｇ ｅｔ ａｌ．（１９９４）Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２２：
５３９１〜５３９８）からのｎｅｏカセットを、Δ−６−デサチュラーゼゲノム
配列に挿入した。このｎｅｏカセットは、テトラヒメナヒストンＨ４プロモータ
ーの制御下のネオマイシン耐性遺伝子およびＢＴＵ２遺伝子の３’−フランキン
グ配列からなる。テトラヒメナでは、この生成体は、パロモマイシンに対する耐
性を媒介する。プラスミドｐ４Ｔ２−１ΔＨ３をＥｃｏ ＲＶ／ＳｍａＩで切断
し、約１．４ｋｂサイズのｎｅｏカセット断片を、ＥｃｏＲＶで切断しておいた
プラスミドｐｇＤＥＳ６に含まれるテトラヒメナΔ−６−デサチュラーゼゲノム
配列にライゲートした（図１４参照）。これにより、プラスミドｐｇＤＥＳ６：
：ｎｅｏが得られる。形質転換が成功裡にできれば、Δ−６−デサチュラーゼを
コードする遺伝子を、この生成体と、相同的組換えにより交換し、よって、細胞
はパロモマイシンに耐性となった。

【００９３】 実施例１０ デサチュラーゼ発現生成体ｐＢＤＥＳ６を使用したテトラヒメナの巨核形質転
換 ５×１０⁶個のテトラヒメナ・サーモフィラ細胞（ＣＵ５２２）を、形質転換
に使用した。細胞を、２５０ｍｌの三角フラスコ中５０ｍｌのＳＰＰＡ培地中、
３０℃で１５０ｒｐｍで振盪しながら、細胞密度が約３〜５×１０⁵細胞／ｍｌ
に達するまで培養した。細胞を、５分間遠心分離（１２００Ｇ）することにより
ペレット化し、細胞ペレットを、５０ｍｌの１０ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ７．
５）に再懸濁し、前記のように遠心分離した。この洗浄段階を繰り返し、細胞を
、細胞密度３×１０⁵細胞／ｍｌで、１０ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ７．５、抗
生物質も加える）に再懸濁し、その後、それらを２５０ｍｌの三角フラスコに移
し、３０℃で１６〜２０時間振盪せずにインキュベートした（飢餓期）。飢餓期
後、細胞数を、再度決定し、その後細胞を、上記のように遠心分離し、その後、
１０ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）で、５×１０⁶細胞／ｍｌの濃度まで調
整した。１ｍｌの細胞を形質転換に使用した。形質転換は、微粒子撃ち込みによ
り行なった（下記参照）。

【００９４】 再生のために、細胞を、ＳＳＰＡ培地にとり、３０℃で三角フラスコ中で振盪
せずにインキュベートした。３時間後、パクリタキセル（登録商標）を加えて、
最終濃度を２０μＭとし、細胞を、１００μｌずつ、９６穴マイクロタイタープ
レートに移した。細胞を、３０℃で、湿気のある暗いボックス中でインキュベー
トした。２〜３日後、パクリタキセル耐性クローンを同定できた。陽性クローン
を、２５μＭのパクリタキセルを含む新しい培地に接種することにより移した。
完全「表現型組合せ」（Ｇａｅｒｔｉｇ＆Ｋａｐｌｅｒ（１９９９））は、細胞
を、濃度をあげたパクリタキセル（８０μＭまで）中で培養することにより行な
った。クローンを解析するために、約４ｍｌの培養液を、パクリタキセル含有Ｓ
ＰＰＡ中で増殖し、その後、ＤＮＡを単離し（Ｊａｃｅｋ Ｇａｅｒｔｉｇ ｅ
ｔ ａｌ．（１９９４）ＰＮＡＳ ９１：４５４９〜４５５３）、ＢＴＵ１座に
組込んだＤＮＡを、ＰＣＲにより増幅した。 使用したプライマーは、ＢＴＵ１特異的プライマーＢＴＵ１−５’Ｆ（ＡＡＡ
ＡＡＴＡＡＡＡＡＡＧＴＴＴＧＡＡＡＡＡＡＡＡＣＣＴＴＣ、開始コドンの約５
０ｂｐ上流、配列番号１８）およびＢＴＵ１−３’Ｒ（ＧＴＴＴＡＧＣＴＧＡＣ
ＣＧＡＴＴＣＡＧＴＴＣ、終結コドンの３ｂｐ下流、配列番号１９）であった。 ＰＣＲ産生物を、非切断状態で、または、ＨｉｎｄＩＩＩまたはＥｃｏＲＶ（
ｐＢＤＥＳ６）またはＥｃｏＲＩ（ｐＢＤＥＳ９）で切断しておいて、１％アガ
ロースゲル上で解析した。完全「表現型組合せ」は、ＢＴＵ１特異的プライマー
（Ｇａｅｒｔｉｇ＆Ｋａｐｌｅｒ（１９９９））を使用して、ＲＴ−ＰＣＲによ
り確認した。

【００９５】 実施例１１ ノックアウト生成体ｐｇＤＥＳ６：：ｎｅｏを使用した、テトラヒメナの微小
核および巨核形質転換 異なる対を形成する型（ＣＵ４２８ＶＩＩおよびＢ２０８６ＩＩ）のテトラヒ
メナ株を、別々に、ＳＰＰＡ培地中で、３０℃で振盪（１５０ｒｐｍ）しながら
、三角フラスコ中で培養した。細胞密度が３〜５×１０⁵細胞／ｍｌの時に、細
胞を、５分間室温で遠心分離（１２００Ｇ）した。細胞を、３回、５０ｍｌの１
０ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）で洗浄し、最後に、５０ｍｌの１０ｍＭト
リス−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）に再懸濁し、その後、抗生物質溶液を加えた。細胞
を３０℃で振盪せずに三角フラスコ中でインキュベートした。約４時間後、２つ
の培養液を再度計測し、１０ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）で３×１０⁵細
胞／ｍｌまで希釈し、その後、３０℃でさらに１６〜２０時間インキュベートし
た。この飢餓期後に、２つの培養液からの同じ（絶対）数の細胞を、２Ｌ三角フ
ラスコ中で混合した。細胞を３０℃でインキュベートし（コンジュゲーションの
開始）、コンジュゲーションの効率を、２時間後に決定した。形質転換を成功さ
せるためには、約３０％の細胞が、この時点で対として存在すべきである。 微小核形質転換のために、各場合とも、１×１０⁷のコンジュゲート細胞（５
×１０⁶対）を、コンジュゲート開始の３時間、３．５時間、４時間および４．
５時間後に、１２００Ｇで５分間遠心分離し、細胞ペレットを１ｍｌの１０ｍＭ
トリス−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）に再懸濁した。 新規巨核原生生物の形質転換のために、細胞を、上記のように、コンジュゲー
ト開始の１１時間後に遠心分離し、トリス−ＨＣｌに再懸濁した。形質転換は、
微粒子撃ち込みにより行なった（上記参照）。Δ−６−デサチュラーゼノックア
ウト変異体を培養するために、２００μｇのルリヂサ油（２０〜２５％ＧＬＡ；
シグマ）を培地に加えた。

【００９６】 パロモマイシン耐性を選抜することにより、形質転換した細胞を同定できた。
微小核の形質転換の場合、パロモマイシン（最終濃度１００μｇ／ｍｌ）を、コ
ンジュゲート開始の１１時間後に加え、細胞を、１００μｌずつ９６穴マイクロ
タイタープレートに分配した。細胞を、３０℃の加湿ボックス中でインキュベー
トした。２〜３日後に耐性クローンを同定できた。６−メチルプリンに対する巨
核形質転換体の耐性に基づいて、真の微小核形質転換体を識別できた。 巨核を形質転換する場合、パロモマイシン（最終濃度１００μｇ／ｍｌ）を、
形質転換の約４時間後に加え、細胞を、１００μｌずつ９６穴マイクロタイター
プレートに分配した。細胞を３０℃の加湿ボックス中でインキュベートした。２
〜３日後に耐性クローンを同定できた。陽性クローンを、１２０μｇのパロモマ
イシン／ｍｌを含む新しい培地に接種することにより移した。完全「表現型組合
せ」（Ｇａｅｒｔｉｇ＆Ｋａｐｌｅｒ（１９９９））は、この高いパロモマイシ
ン濃度中で細胞を培養することにより数世代後に達成された。Ｂ＊ＶＩ株と微小
核形質転換体を交雑することにより、ホモ接合性ノックアウト変異体を作成する
ことができた（Ｂｒｕｎｓ＆Ｃａｓｓｉｄｙ−Ｈａｎｌｅｙ、Ｍｅｔｈｏｄｓ
ｉｎ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ、第６２巻（１９９９）２２９〜２４０）。

【００９７】 実施例１２ 微粒子銃による形質転換（微粒子撃ち込み） テトラヒメナ・サーモフィラを、Ｂｒｕｎｓ＆Ｃａｓｓｉｄｙ−Ｈａｎｌｅｙ
Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ、第６２巻（１９９９）５０
１〜５０２）；Ｇａｅｒｔｉｇ ｅｔ ａｌ．（１９９９）Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉ
ｏｔｅｃｈ．１７：４６２〜４６５）またはＣａｓｓｉｄｙ−Ｈａｎｌｅｙ ｅ
ｔ ａｌ．（（１９９７）Ｇｅｎｅｔｉｃｓ １４６：１３５〜１４７）に記載
のように、微粒子銃による形質転換により形質転換した。バイオリスティック（
登録商標）ＰＤＳ−１０００／Ｈｅ粒子送達系（バイオラッド）の操作は、添付
マニュアルに詳述されている。形質転換のために、６ｍｇの金粒子（０．６μｍ
；バイオラッド）に、１０μｇの線形化プラスミドＤＮＡ（Ｓａｎｆｏｒｄ ｅ
ｔ ａｌ．（１９９１）Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ３：３〜１６；Ｂｒｕｎ
ｓ＆Ｃａｓｓｉｄｙ−Ｈａｎｌｅｙ（１９９９）Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｃｅｌ
ｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ、第６２巻：５０１〜５１２）を装着する。

【００９８】 金粒子の調製：６０ｍｇの０．６μｍの金粒子（バイオラッド）を、１ｍｌの
エタノールに再懸濁した。このために、粒子を、３回、各場合について１〜２分
間、ボルテックスで激しく混合した。続いて、粒子を１分間遠心分離（１０００
０Ｇ）し、上澄をピペットを使用して注意して取り出した。金粒子を、１ｍｌの
無菌水に再懸濁し、上記のように遠心分離した。この洗浄段階を、１回繰り返し
、粒子を、１ｍｌの５０％グリセロールに再懸濁し、１００μｌずつ−２０℃で
保存した。 形質転換体の調製：マクロ担体ホールダー、マクロ担体およびストップスクリ
ーンを、数時間、１００％エタノール中で保存し、一方、破裂ディスクはイソプ
ロパノールに保存した。マクロ担体を、続いて、マクロ担体ホールダーに挿入し
、風乾した。

【００９９】 金粒子にＤＮＡを装着する：全段階を、４℃で実施した。金粒子、調製したベ
クター、２．５Ｍ ＣａＣｌ₂、１Ｍスペルミジンおよび７０％および１００％
エタノールを、氷上で冷却した。１０μｌの線形ベクターＤＮＡ（１μｇ／ｍｌ
）を、１００μｌの調製した金粒子に加え、混合物を、注意して１０秒間ボルテ
ックスにかけた。続いて、１００μｌの２．５Ｍ ＣａＣｌ₂を、最初に加え、
その後、混合物を１０秒間ボルテックスにかけ、次いで、４０μｌの１Ｍスペル
ミジンを加え、混合物を注意して１０分間ボルテックスにかけた。２００μｌの
７０％エタノールを添加した後、粒子を１分間ボルテックスにかけ、次いで１０
０００ｇで１分間遠心分離した。ペレットを、２０μｌの１００％エタノールに
再懸濁し、遠心分離し、次いで３５μｌの１００％エタノールに再懸濁した。こ
のように調製しておいた粒子をピペットを使用して、注意してマクロ担体の中心
に加えた。続いて、マクロ担体を、形質転換が生じるまで、吸湿性シリカゲルを
含むボックスに保存した。

【０１００】 形質転換：１ｍｌの調製細胞（上記参照）を、ペトリ皿中の、１０ｍＭトリス
−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）で加湿しておいた丸いフィルターの中心に加え、バイオ
リスティック（登録商標）ＰＤＳ−１０００／Ｈｅ粒子送達システム形質転換チ
ャンバー中の最も低いスライドイン棚に挿入した。形質転換は、形質転換チャン
バー中、９００ｐｓｉの圧力と（２つの４５０ｐｓｉの破裂ディスク）、２７イ
ンチＨｇの減圧下で、調製した金粒子を使用して実施した。次いで、細胞を、直
ちに、５０ｍｌのＳＰＰＡ培地を含む三角フラスコに移し、振盪せずに３０℃で
インキュベートした。

【配列表】

【図面の簡単な説明】

【図１】 ＰＵＦＡ生合成の図である。

【図２】 タンパク質データベースと、配列番号２に示したタンパク質配列を、ＢＬＡＳ
ＴＰのデータベースで比較した結果を示す図である。

【図３】 タンパク質データベースと、配列番号２に示したタンパク質配列を、ＢＬＡＳ
ＴＰのデータベースで比較した結果を示す図である。

【図４】 既知のデサチュラーゼと、配列番号２に示したタンパク質配列のアラインメン
トの図である。

【図５】 既知のデサチュラーゼと、配列番号２に示したタンパク質配列のアラインメン
トの図である。

【図６】 既知のデサチュラーゼと、配列番号２に示したタンパク質配列のアラインメン
トの図である。

【図７】 既知のデサチュラーゼと、配列番号２に示したタンパク質配列のアラインメン
トの図である。

【図８】 既知のデサチュラーゼと、配列番号２に示したタンパク質配列のアラインメン
トの図である。

【図９】 既知のデサチュラーゼと、配列番号２に示したテトラヒメナ ポリペプチド配
列のマルチプルアラインメント。チトクロムｂ５ドメイン由来のヒスチジンボッ
クスおよび保存ＨＰＧＧモチーフに下線を付してある。

【図１０】 既知のデサチュラーゼと、配列番号２に示したテトラヒメナ ポリペプチド配
列のマルチプルアラインメント。チトクロムｂ５ドメイン由来のヒスチジンボッ
クスおよび保存ＨＰＧＧモチーフに下線を付してある。

【図１１】 配列番号１および３に示したテトラヒメナΔ−６−デサチュラーゼ遺伝子の構
造図である。

【図１２】 ｐＢＤＥＳ６Δ−６−デサチュラーゼ発現生成体の調製を示す図である。

【図１３】 ｐｇＤＥＳ６：：ｎｅｏノックアウト生成体の調製を示す図である。

【図１４】 テトラヒメナ野生型株（ＣＵ５２２）の脂肪酸構成（スペクトル）（主脂肪酸
）と、テトラヒメナｐＢＤＥＳ６形質転換体（ＡＸ６０１およびＡＸ６０４）の
脂肪酸のスペクトルの比較を示す図である。

【手続補正書】特許協力条約第３４条補正の翻訳文提出書

【提出日】平成１３年１１月８日（２００１．１１．８）

【手続補正１】

【補正対象書類名】明細書

【補正対象項目名】特許請求の範囲

【補正方法】変更

【補正の内容】

【特許請求の範囲】

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ， ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，Ｋ Ｅ，ＬＳ，ＭＷ，ＭＺ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ，ＵＧ ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ， ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＧ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ， ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＢＺ，Ｃ Ａ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＲ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＤＭ ，ＤＺ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，ＧＥ，ＧＨ， ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ，ＪＰ，Ｋ Ｅ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＡ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ， ＭＷ，ＭＸ，ＭＺ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，Ｒ Ｕ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ ，ＴＲ，ＴＴ，ＴＺ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ， ＹＵ，ＺＡ，ＺＷ (72)発明者 ドミニツキィ アネェテ ドイツ国 ヘヒテルスハイマー ベルク 25、 55270 ケライン−ヴィンテルンハ イム Ｆターム(参考） 2B030 AA02 AB03 AD08 CA17 CA19 CB03 CD02 CD07 CD09 4B024 AA01 AA03 AA05 BA08 CA04 CA09 FA02 GA11 HA03 4B050 CC04 DD07 LL01 LL02 LL05 4H045 AA11 DA75

Claims (16)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 配列番号２に示したアミノ酸配列を有するテトラヒメナから
   得られるΔ−６−デサチュラーゼをコードする核酸、またはその機能的変異体、
   および、配列番号１が請求項の一部である、少なくとも８個のヌクレオチドを含
   むその一部。
2. 【請求項２】 繊毛虫から得られることを特徴とする請求項１に記載の核酸
   。
3. 【請求項３】 テトラヒメナ・サーモフィラから得られることを特徴とする
   請求項１または２に記載の核酸。
4. 【請求項４】 ＤＮＡまたはＲＮＡ、好ましくは二本鎖ＤＮＡであることを
   特徴とする請求項１から３のいずれか一項に記載の核酸。
5. 【請求項５】 ３３位から１０９１位までの配列番号１に示した核酸配列を
   有するＤＮＡであることを特徴とする請求項１から４のいずれか一項に記載の核
   酸。
6. 【請求項６】 １つ以上の非コード配列を含むことを特徴とする請求項１か
   ら５のいずれか一項に記載の核酸。
7. 【請求項７】 配列番号３に示した請求項１から６のいずれか一項に記載の
   単離核酸、またはその機能的変異体、および、配列番号３が請求項の一部である
   、少なくとも８個のヌクレオチドを含むその一部。
8. 【請求項８】 ベクターに、好ましくは発現ベクターに含まれることを特徴
   とする請求項１から７のいずれか一項に記載の核酸。
9. 【請求項９】 核酸は、構成性および／または誘導性プロモーターと、およ
   び所望により終結シグナルと機能的に結合していることを特徴とする請求項８に
   記載の発現ベクター。
10. 【請求項１０】 核酸を化学的に合成する、または核酸をプローブを使用し
    て遺伝子ライブラリーから単離することを特徴とする請求項１から７のいずれか
    一項に記載の核酸の調製方法。
11. 【請求項１１】 配列番号２に示したアミノ酸配列を有するポリペプチドま
    たはその機能的変異体、および少なくとも６個のアミノ酸を含むその一部。
12. 【請求項１２】 適切な発現系または宿主生物において請求項１から７のい
    ずれか一項に記載の核酸を発現することを特徴とする請求項１１に記載のポリペ
    プチドの調製方法。
13. 【請求項１３】 請求項１１に記載のポリペプチドに対向する抗体。
14. 【請求項１４】 請求項１から１０のいずれか一項に記載の核酸を有するト
    ランスジェニック生物。
15. 【請求項１５】 植物または繊毛虫から選び出される、請求項１１に記載の
    トランスジェニック生物。
16. 【請求項１６】 繊毛虫においてΔ−６−デサチュラーゼ−依存性脂肪酸を
    増強するための、請求項１から７に記載の核酸および／または請求項１１に記載
    のポリペプチドの使用。