JP2003250529A - 分解方法、浄化方法および分解菌 - Google Patents
分解方法、浄化方法および分解菌Info
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Abstract
したNocardioides属の一部の菌(Nocardioides sp. H-
1)(S12)を添加する(S13)とともに、区域に
栄養源および酸素を供給し(S14)、浄化する。
Description
が困難であるといわれている生物難分解性化合物を特定
の微生物を用いて分解する分解方法、その分解方法を利
用した物質の浄化方法、およびこれに利用される分解菌
に関する。
いて、より広範かつ詳細な調査が進むにつれて、様々な
物質による汚染が顕在化し、その対策が求められてい
る。
のような油類の他にダイオキシン類、PCB、ハロゲン
化炭化水素、フェノール類などの有機化学物質があげら
れ、これら有機化学物質に汚染されている場合には、こ
れら有機化学物質を分離したり、分解して浄化する必要
がある。
手法と、生物化学的手法に大別することができる。物理
化学的手法としては酸化剤を添加して酸化処理する方
法、還元剤を添加して脱ハロゲン化反応等により毒性の
低減を図る方法、高温により熱分解する方法、洗浄液に
より汚染物質を抽出して分離する方法等がある。しか
し、このような物理化学的手法では、加熱や薬剤添加に
より汚染物質だけでなく浄化対象物質の性状を大きく変
えてしまうという問題があり、また一般的に薬剤や設備
費等のコストが高くなるという問題もある。
物質濃度の低減を図る方法は、バイオレミディエーショ
ンと呼ばれ、環境に与える負荷が小さいこと、通常微生
物および微生物の活性を高めるための栄養源を添加する
のみであるため低コストで浄化が可能であるというメリ
ットがある。
法であるバイオレミディエーションとしては、汚染現場
に存在する微生物を酸素、栄養源等の添加により活性を
高めて浄化を促進するバイオスティミュレーションと、
汚染物質に対して優れた浄化能を有する微生物を外部か
ら添加して浄化を行うバイオオーギュメンテーションを
あげられる。
染の原因となる化学物質には多種多様のものがあり、中
には、微生物による分解が難しい物質もある。
は、一般に生物難分解性であり、これらの分解能を有す
る微生物の報告例は少ない。また、汚染物質としてよく
取り上げられるダイオキシンについても、白色不朽菌な
ど、菌体外酵素を生成してこれを分解する菌の報告もあ
るが、それ自体を資化し得る微生物の報告は希有であ
る。
あり、生物難分解性化合物を特定の微生物を用いて効率
的に分解する方法を提供することを目的とする。
環を有する難分解性物質を分解する能力を有する微生物
を鋭意探索した結果、Nocardioides属の一部の菌にベン
ゼン環を有する生物難分解性化合物を資化し増殖し得る
微生物を発見し、これを用いることにより生物難分解性
化合物を分解し、これらに汚染された物質の浄化を効率
的に行うことができることを見出した。すなわち、Noca
rdioides属の微生物は、生物難分解性化合物によって汚
染された土壌、排水、地下水、底質、飛灰等の浄化に好
適に使用できる。
機化合物を、Nocardioides属の微生物を用いて分解する
ことを特徴とする。
解性有機化合物に、別に培養したNocardioides属の微生
物を添加し、前記生物難分解性有機化合物を分解するこ
とを特徴とする。
香族化合物であることが好適である。
ンゼン環を有する化合物であることが好適である。
機塩素化合物であることが好適である。
cardioides sp. H-1であることが好適である。
方法によって、前記生物難分解性有機化合物によって汚
染された物質を浄化することを特徴とする。
ニル分解能を有するNocardioides sp. H-1で特定される
分解菌に関する。
て、詳細に説明する。
染された神奈川県引地川および埼玉県綾瀬川および大阪
府能勢町の河川水、底泥および土壌を採取した。そし
て、採取した試料について、次のような培養を行った。
験管に試料5mLおよびRM2無機塩合成培地3mLを
添加した。また、底泥および土壌についてはRM2無機
塩合成培地を添加してよく混合した後に上澄み液をL字
試験管に8mL入れた。
代表として2%ジベンゾフランを含有したヘプタメチル
ノナン溶液0.5mLを添加して30℃、120rpm
の条件下で3日間振とう培養を行った。
吸光度)の上昇および溶液に変色が見られたものを選択
し、これらの培地をSP寒天培地、ポリミキシンB添加
SP寒天培地およびジベンゾフランを塗布したRM2無
機塩合成寒天培地に塗布して30℃で7日間培養した。
ベンゾフランを塗布したRM2無機塩合成寒天培地に植
え継ぐことを2回繰り返すことによりクリーンアップを
行ってジベンゾフラン資化性を有する菌株を得た。
液の組成を以下に示す。
す。
量元素溶液組成を示す。
タミン溶液組成を示す。
rdioides sp. H-1 FERM P−18744(受託番
号)の性状を示す。
陽性、SP寒天培地上で薄い乳白色の滑らかなコロニー
を形成する。また光学顕微鏡による観察では約1〜2μ
mの桿菌で運動性はみられない。
囲はpH5〜8で、至適pHは7であった。Catalase試
験、Oxidase試験、炭水化物の資化、加水分解試験等の
生理活性試験結果を表5に示した。なお、比較のため、
近縁種と考えられるNocardioides simplexとN.nitrophe
nolicusについて報告されている性状を併記した。
n、Sodium Citrate、Erythritol、D-Arabinose、L-Xylo
se、Adonitol、Galactose、L-Sorbose、Dulcitol、Inoc
itol、Solbitol、α-Methyl-D-Mannoside、α-Methyl-D
-Glucoside、N-Acetyl-Gulcosamine、Amygdaline、Lact
ose、Melibiose、Inuline、Melezitose、D-Raffinose、
Glycogene、Xylitol、β-Gentiobiose、D-Lyxose、D-Ta
gatose、D-Fucose、L-Fucose、D-Arabitol、L-Arabito
l、Gluconate、2-Keto-Gluconate、5-Keto-Gluconateの
資化・加水分解試験は全株で陰性を示した。
的にNocardioides simplexや、N.nitrophenolicusと
は、異なっていることが分かった。
RNA遺伝子塩基配列解析の結果によると、分離菌はN.
simplexともっとも近縁であると考えられたため、N.sim
plexおよびその近縁種のDNAとのハイブリダイゼーシ
ョンを行った。その結果、N.simplexとは48%の相同
性を示したが、他の4菌種とは30%以下の低い値を示
した。また、N.nitrophenolicusとの相同性は51%で
あった。
た菌株はN.simplexおよびN.nitrophenolicusに遺伝的に
比較的近い新種であることが分かった。
菌株もしくは同属の近縁種で同等の分解性を有する菌が
汚染物質中に存在する場合には栄養塩および酸素等の供
給を行うことによってNocardioides属の活性を高め、浄
化を促進することができる。また、汚染物質にこの菌株
もしくは同属の近縁種で同等の分解性を有する菌が確認
できない場合には、本菌株を大量培養して汚染物質中に
添加することができる。その際の添加方法としては液体
培地に懸濁させた状態もしくは担体等に付着させた状態
のいずれの方法でもよいが、他の菌体との競合を避け、
Nocardioides属を優先的に生育させることが望ましい。
担体としては活性炭やポリウレタンフォーム等の一般的
な生物処理に使用される担体のほかにゲル中に固定化す
る方法なども好適である。さらに、汚染物質が排水の場
合には通常の生物処理装置の後段に本属を優先的に生育
させた反応器を配置する方法なども採用できる。
的に生育し得る環境中では本属との接触前に汚染物質を
熱処理もしくは薬品処理、紫外線処理、オゾン処理、ろ
過(孔径1μm以下、より望ましくは0.45μm以
下)などの方法によって汚染物質中の競合細菌濃度を低
下させておくことが望ましい。
変性が起こる60℃以上(より望ましくは80℃以上)
の加熱を行うことが望ましく、薬品による殺菌を行う場
合には3%以上の過酸化水素水溶液や60%以上のエタ
ノール水溶液を用いることが適当である。またこれらの
殺菌方法を併用することもできる。
が挙げられるが、汚染物質中にこれらの栄養源が十分に
存在する場合には添加の必要がない場合もある。
リウム、硝酸ナトリウム、硝酸、硝酸カルシウム、リン
酸アンモニウム、硫酸アンモニウム、尿素など窒素元素
を含む化合物を幅広く使用することができる。また、汚
染物質が土壌のような固形物の場合には、徐々に分解
し、アンモニウムイオンを放出するような緩効性窒素源
を利用することもできる。これらの緩効性窒素源として
はイソブチルアルデヒド加工尿素、アセトアルデヒド加
工尿素、ホルムアルデヒド加工尿素、リン酸グアニル尿
素等が容易に入手できる。
トリウム、リン酸アンモニウム等のリン酸塩等、リン元
素を含む化合物を広く用いることができる。また汚染物
質中で徐々にリン酸を放出するような緩効性リン酸肥料
が容易に入手できるためこれらを用いることも有効であ
る。
持続させるという観点で言えば、即効性の栄養源と緩効
性栄養源を混合して用いることも有効である。また、窒
素およびリンの添加量は対象とする汚染有機物質の量に
よって決定され、菌体構成元素の理論式から求められる
割合であるC:N:P=100:5:1以上の割合で窒
素およびリンを添加することが望ましい。この状態で静
置することにより汚染物質の分解は促進されるが、菌体
の至適温度が30℃付近であること、好気性の菌株であ
ることを考慮すると、冬場には保温を行い、酸素を供給
するため対象汚染物質が液体の場合にはエアーパージ、
固体の場合には混合操作等を行うことが望ましい。ま
た、酸素供給には過酸化水素含有薬剤や市販の固体酸素
供給剤等を添加することも有効である。
に示すように、まず汚染区域について、滅菌処理を行う
(S11)。また、並行して、分解菌(Nocardioides s
p. H-1)を培養しておく(S12)。そして、滅菌処理
を行った汚染区域に培養菌を添加する(S13)ととも
に、栄養源、酸素を供給する(S14)。これによっ
て、汚染区域(土壌、地下水等)において、分解菌が優
先的に増殖し、処理対象となっている生物難分解性化合
物が分解される。
汚泥処理などの処理を経た処理水について、活性炭など
を用いた吸着処理を行い難分解性化合物を濃縮し、これ
を上述の分解菌を用いて分解処理することも考えられ
る。
ャップ付き試験管(容量約20mL)にRM2無機塩培
地約8mLを加え、Nocardioides sp. H-1を接種した。
ここに2%ジベンゾフラン含有ヘプタメチルノナン0.
5mLを添加し、120rpm,30℃の条件下で振と
う培養を行った。この時の溶液におけるOD600の変
化を測定することによりジベンゾフラン資化能の測定を
行った。
れ、本菌株がジベンゾフラン資化、分解能を有すること
が確認された。
ランをビフェニルに変えて同一条件下での測定を行っ
た。
フェニルも資化、分解可能であることが確認された。
角フラスコにSP培地約200mLを入れ、オートクレ
ーブで滅菌した後、Nocardioides sp. H-1を接種し、1
20rpm,30℃の条件下で振とう培養を行った。十
分な菌体濃度の上昇が確認された後に3000rpmの
遠心分離器で沈降させ、滅菌したRM2無機塩培地で二
回洗浄を行い集積菌を得た。次に容量700mLのバイ
アル瓶に滅菌したRM2培地200mLを加え、先に集
積した菌株を懸濁させた後にcis−およびtrans
−1,3−ジクロロプロペンをそれぞれ1.5mg/L
となるように添加し、密栓して100rpm,30℃の
条件下で3日間振とうを行った。その後溶液の一部を採
取してGC−MSによる定量を行った。また、比較とし
て同様にNocardioidessp. H-1で調整して120℃,1
5分の条件で滅菌したものにcis−およびtrans
−1,3−ジクロロプロペンをそれぞれ1.5mg/L
となるように添加し、反応させたものについても測定を
行った。
であるジクロロプロペンの分解性も非常に良いことが確
認された。
および塩素化された物質まで幅広い生物難分解性物質を
分解、資化し得ることが明らかとなった。この菌を用い
ることにより様々な生物難分解性処理できる。
一部の菌を用いることにより生物難分解性化合物を効率
的に分解し、物質の浄化を効率的に行うことができる。
Claims (8)
- 【請求項1】 生物難分解性有機化合物を、Nocardioid
es属の微生物を用いて分解することを特徴とする生物難
分解性化合物の分解方法。 - 【請求項2】 生物難分解性有機化合物に、別に培養し
たNocardioides属の微生物を添加し、前記生物難分解性
有機化合物を分解することを特徴とする生物難分解性有
機化合物の分解方法。 - 【請求項3】 前記生物難分解性有機化合物が、芳香族
化合物であることを特徴とする請求項1または2に記載
の分解方法。 - 【請求項4】 前記生物難分解性有機化合物が、ベンゼ
ン環を有する化合物であることを特徴とする請求項1ま
たは2に記載の分解方法。 - 【請求項5】 前記生物難分解性有機化合物が、有機塩
素化合物であることを特徴とする請求項1または2に記
載の分解方法。 - 【請求項6】 前記Nocardioides属の微生物が、Nocard
ioides sp. H-1であることを特徴とする請求項1〜5の
いずれか1つに記載の分解方法。 - 【請求項7】 請求項1〜6のいずれか1つに記載の分
解方法によって、前記生物難分解性有機化合物によって
汚染された物質を浄化することを特徴とする浄化方法。 - 【請求項8】 ジベンゾフラン、ビフェニル分解能を有
するNocardioides sp. H-1で特定される分解菌。
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-
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