JP2002542823A

JP2002542823A - ラミニン２とその使用方法

Info

Publication number: JP2002542823A
Application number: JP2000615754A
Authority: JP
Inventors: ピーターユルチェンコ、
Original assignee: ユニヴァースティオブメディシンアンドデンティストリーオブニュージャージーロバートウッドジョンソンメディカルスクール
Priority date: 1999-04-30
Filing date: 2000-04-28
Publication date: 2002-12-17
Also published as: AU4496800A; WO2000066730A2; EP1173568A2; WO2000066730A3; US6632790B1

Abstract

(57)【要約】本発明は、実質的に精製されたラミニン２、組換えラミニン２を製造する方法、組換えラミニン２を発現する細胞、ならびに実質的に精製されたラミニン２を用いて、抹消神経系神経再生を加速するための方法および細胞付着および移行を促進するための方法を提供する。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】相互参照本出願は、米国仮特許出願番号６０／１３１７２０、出願日１９９９年４月３
０日、出願番６０／１３９１９８、出願日１９９９年６月１５日、出願番号６０
／１５５９４６、出願日１９９９年９月２４日の優先権を請求するものであり、
これらいずれもが本文中にその全文が本願明細書に引用されるものとする。

【０００２】発明の分野本出願は組み替え型ラミニン５およびその利用方法に関する。

【０００３】発明の背景基底膜は、細胞の成長、組織発達および組織保持に中心的な役割を担う、シー
ト状の細胞関連細胞外マトリックスである。これらはほとんど全ての組織内に存
在し、胚成長の初期段階に出現する。

【０００４】基底膜はさまざまな構造的かつ細胞相互作用機能の中心となるものである（た
とえば、ＭａｌｉｎｄａとＫｌｅｉｎｍａｎ，Ｉｎｔ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅ
ｍ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．２８：９５７−９５９（１９９６）；Ａｕｍａ
ｉｌｌｅｙとＫｒｉｅｇ．Ｊ．Iｎｖｅｓ．Ｄｅｒｍａｔｏｌｏｇｙ１０
６：２０９−２１４（１９９６）を参照）。たとえば、１．基底膜は細胞に接着基底を与えることで、組織の構造支持体として役立つ。

【０００５】２．基底膜は細胞の遊走を妨げ、受動的に高分子交換を調整する組織間の選択透
過性バリヤーをつくっている。これらの特性は、重要な濾過機構として機能し、
大半の蛋白質および細胞に対して不透過性であり、有効な血液組織バリヤーをつ
くっている腎臓の腎糸球体基底膜により説明される。

【０００６】３．基底膜は、胚形成および傷の修復の間に細胞遊走および細胞伸張を促進する
ことができる高度に相互作用的な表面を形成する。傷を受けた場合、基底膜は表
層をつくり、その上で細胞が再生し、正常な組織機能を復活させる。

【０００７】４．基底膜は、分化および組織保持にとって重要な細胞を接触させるためにその
構造内に暗号化された情報を持っている。この情報はｉｎｔｅｇｒｉｎｓ（イン
テグリン）、ｄｙｓｔｒｏｇｌｙｃａｎ（ジストログリカン）、細胞表面ｐｒｏ
ｔｅｏｇｌｙｃａｎｓ（プロテオグリカン）などのさまざまなレセプターを通し
て細胞に伝達される。シグナルの伝達はマトリックスリガンドおよび、十分な親
和力で相互作用する、対応するレセプターの存在にだけ依存しているのではなく
、三次元マトリックス「ｌａｎｄｓｃｐｅ」におけるリガンド密度のような組織
分布的要素、さらにレセプターをクラスター形成する基底膜構成成分の性能にも
依存する。これらのマトリックス蛋白質は長く生きることができるため、基底膜
はそれに関連する基底膜内部に常在性細胞および過渡性細胞のための「表面メモ
リ」をつくる。

【０００８】基底膜は主としてラミニンおよびＩＶ型コラーゲンヘテロ三量体で構成され、
これらの構成成分はさらに複合重合体構造として組織化される。現在まで、６つ
の型のＶＩコラーゲン鎖および少なくとも１２のラミニンサブユニットが特定さ
れている。これらの鎖は割り当てられた単独の機能を有し、特定の時間的（発達
途中の）および空間的（組織部位特定）パターンと共に発現する。

【０００９】ラミニンは本来基底膜に常在するヘテロ三量体のグリコプロテインファミリー
である。これらは隣接する細胞レセプターとの結合相互作用を介して機能し、ラ
ミニンネットワークを形成する。ラミニンは、細胞／組織表現型の保持ならびに
組織修復および発育における細胞成長および分化を促進する上で重要である。

【００１０】ラミニンは大形の多領域蛋白質で、共通の構造的機構を持つ。ラミニン分子は
一つの分子内にさまざまなマトリックスおよび細胞相互作用機能を統合している
。

【００１１】ラミニン分子はコイルドコイル領域により互いに連結したα−、β−およびγ
−鎖から構成されている。この構造内において、他のラミニンおよび基底膜分子
へ向けての結合活性、および膜結合レセプターを有する領域が識別できる。領域
ＶＩ、ＩＶｂ、およびＩＶａは球状構造をしており、領域Ｖ、IIIｂ、IIIａ（シ
ステインリッチＥＧＦ［上皮成長因子］様要素を含む）はロッド状構造を形成す
る（Ｋａｍｉｇｕｃｈｉｅｔａｌ．，Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｎｅｕｒｏｓｃ
ｉ．２１：９７−１２５（１９９８））。３つの鎖の領域ＩおよびＩＩは三本
鎖コイルドコイル構造（長腕）の形成に参加している。

【００１２】表１は、各ラミニンが構成される個々の鎖を示いる。

【００１３】

【表１】ラミニンの４つの構造的に定義されたファミリーグループが特定されている。
５つの特定されたラミニン分子の第１グループはは全てβ１およびγ１鎖を共有
しており、それらのα鎖構造により変化する（α１〜α５）。５つの特定された
ラミニン分子の第２グループは全てβ２およびγ１鎖を共有しており、これもα
鎖構造により変化する。第３の特定されたラミニン分子のグループは、α３β３
γ２の鎖構造を持つ一つの特定されたメンバー、ラミニン５を有している。第４
の特定されたラミニン分子のグループは、新たに特定されたγ３鎖（α２β１γ
３）を持つ特定されたメンバー、ラミニン１２を有する。

【００１４】領域構造と機能との間の関係を解き明かす進展があった（たとえば、Ｗｅｗｅ
ｒとＥｎｇｖａｌｌ，Ｎｅｕｒｏｍｕｓｃ，Ｄｉｓｏｒｄ．６：４０９−
４１８（１９９６）を参照）。異なる鎖の相同領域間で全配列の類似点は異なる
が、これは領域ＶＩにおいてもっとも高く（ラミニン重合において重要な役割を
行っていると考えられる）、それに領域Ｖが続き（蛋白質−蛋白質相互作用に関
わっている可能性がある）、さらにIII（ｅｎｔａｃｔｉｎ（エンタクチン）／
ｎｉｄｏｇｅｎ（ニドゲン）結合、細胞接着部位の可能性）、もっとも低いのが
領域Ｉ、II（いずれも分子間集合に関わっていると考えられ、細胞接着部位を含
む可能性がある）およびＧである。全ての領域が３つのすべての型の鎖内に存在
するわけではない。球形Ｇ領域（細胞レセプター結合に関わっていると考えられ
る）はα鎖にだけ存在する。その他の領域は特定の鎖型内の全ての鎖にには存在
しない可能性がある。たとえば領域ＶＩはα３、α４、γ２鎖から不在である（
ＷｅｗｅｒとＥｎｇｖａｌｌ、１９９６）。

【００１５】大形サイズ（６００ｋＤ以上）であることかつ単一構造であるため、ラミニ
ン分子は電子顕微鏡で解析することが可能である（ＷｅｗｅｒとＥｎｇｖａｌｌ
、１９９６）。通常ラミニンは電子顕微鏡において十字型をした分子として現れ
る。十字の三本の短腕が３つの分離したラミニン鎖のそれぞれのアミノ末端部分
を示している（鎖毎に一本の短腕）。十字の長腕は、共にコイルドコイル構造を
形成する３つの鎖ののＣ末端部で構成されている（ＷｅｗｅｒとＥｎｇｖａｌｌ
、１９９６）。長腕は球形Ｇ領域で終わっている。

【００１６】長腕のコイルドコイル領域は、ラミニンの３つの鎖の組み立てにとって極めて
重要である（Ｙｕｒｃｈｅｎｃｏｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ，
Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９４：１０１８９−１０１９４（１９９７））。ジスル
フィドは架橋結合し、長腕のもっとも中央に近い領域内で３つの鎖を安定させ、
長腕のもっとも末端領域でβおよびγを結合する。

【００１７】培養した筋管骨格およびシュヴァン細胞で導かれた研究に基づく、ラミニンレ
セプター促進性自己組織化のモデルにより、ラミニンが、リガンドを含まない場
合、流体膜内に自由に放散するそれらのレセプターと結合することが予想された
。レセプターの関わりによりラミニンは高度に局所性の二次元濃度内に追いやら
れ、それらの規則正しい表面ポリマーへの質量作用駆動集合を容易にする。この
過程では、それに関わるレセプターもまた再組織化され、細胞骨格再編成が伴う
（Ｃｏｌｏｇｎａｔｏ，Ｊ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．１４５：６１９−６３
１（１９９９））。この再編成で、レセプターが活性化され、細胞発現、形態お
よび／または挙動の変化を伴うシグナル伝達を引き起こす。

【００１８】ラミニンレセプターのある分類物はインテグリンであり、これは多くの細胞−
マトリックスおよび細胞−細胞相互作用を仲介する細胞表面レセプターである。
インテグリンはヘテロ二量体であり、αおよびβサブユニットからなる。１６α
および８βサブユニットが知られており、現在まで、少なくとも２２通りのαお
よびβサブユニットの組み合わせが識別されている。いくつかのインテグリンは
既知のリガンドを一つまたは数個しか持たないが、その他のものは極めて不規則
である。インテグリンへの結合は一般に低親和性であり、二価のカチオンに依存
している。それらのリガンドへの結合により活性化されたインテグリンはキナー
ゼ活性化カスケードを通して、限局的な接着および分裂促進因子活性化キナーゼ
のようなシグナルを伝達する。いくつかの異なるインテグリンは多少特異的にさ
まざまなラミニン異性体を結合させる（Ａｕｍａｉｌｌｅｙｅｔａｌ．，
ＩｎＴｈｅＬａｍｉｎｉｎｓ，ＴｉｍｐｌとＥｋｂｌｏｍ，ｅｄｓ．，ＨａｒｗｏｏｄＡｃａｄｅｍｉｃＰｕｂｌｉｓｈｅｒ，Ａｍｅｓｔｅｒ
ｄａｍ．ｐｐ．１２７−１５８（１９９６））。

【００１９】ラミニン２は、α２（４００ｋＤ）、β１（約１００ｋＤ）、γ１（約１
００ｋＤ）鎖から構成される。α２鎖のＣ−末端Ｇ領域は、α−ジストログリ
カンへの結合に関与する大形の球状構造を形成している（Ｋａｍｉｇｕｃｈｉ
ｅｔａｌ．，１９９８）。

【００２０】ラミニン１の短腕領域は自己凝集プロセスに関わり（ＳｃｈｉｔｔｎｅｙとＹ
ｕｒｃｈｅｎｏ，Ｊ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．１１０：８２５−８３２（１
９９０））、かつＩＶ型コラーゲン型のような細胞外マトリックス構成成分を伴
う。α１（ラミニン１）とα２鎖との間の相同性は５８．６％である。特にＮ−
末端領域におけるα１とα２鎖との間の有意相同性、およびそれらの同一βおよ
びγ鎖から、ラミニン２はラミニン１に類似した構造組織を有することが示唆さ
れている（Ｋａｍｉｇｕｃｈｉｅｔａｌ．，１９９８）。

【００２１】元々ラミニン２はプラセンタ、横紋筋、シュヴァン細胞の基底膜で見つかった
（ＬｅｉｖｏとＥｎｇｖａｌｌ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｅ
ｉ．ＵＳＡ８５：１５４４−５４８８（１９９８））。普通の成人ではラ
ミニン２が骨格筋の基底膜において優勢であり、ここで、細胞外マトリックスお
よび副筋細胞膜細胞骨格を結合することにより筋細胞膜対して機械的再強化を行
うのに役立っている（Ｓａｎｅｓｅｔａｌ．，Ｊ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ
．１１１：１６８５−１６９９（１９９０））。

【００２２】ラミニン２の構造または発現に悪影響を及ぼす遺伝的欠陥が、大半の先天性筋
ジストロフィー（ＣＭＤ）の原因である。ラミニン２は、骨格筋発育中に筋管を
安定させるために、またＣＭＤにおいて認められる病理学的現象のいくつかを説
明していると考えられているアポトーシスを防止するために特に必要であること
が分かっている（Ｋａｍｉｇｕｃｈｉｅｔａｌ．，１９９８）。

【００２３】インビトロ研究によって、部分的に精製したラミニン２が筋管生存および表現
型保持にとって重要であることが証明された（Ｖａｃｈｏｎｅｔａｌ．，
Ｊ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．１３４：１４８３−１４９７（１９９６））。生
体内実験では、一次筋細胞移植によるＣＭＤ動物モデルのラミニンα２欠陥にお
いて、部分的なラミニンα２鎖修復が認められた（Ｖｉｌｑｕｉｎｅｔａｌ
．，Ｊ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．１３３：１８５−１９７）。

【００２４】ラミニン２はまた、発育中および成熟した末梢神経の神経内基底膜に存在する
主要なラミニン異性体であり、シュヴァン細胞遊走、神経突起成長、および神経
突起再分化（Ｋａｍｉｇｕｃｈｉｅｔａｌ．，１９９８）、ならびにオリ
ゴデンドロサイトによるミエリン形成を促進することが示された（Ｂｕｔｔｅｒ
ｙｅｔａｌ．，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．１４：１９
９−２１２（１９９９））。さまざまな実験の結果、ラミニン１よりもむしろラ
ミニン２が、特に早期発育段階におけるシュヴァン細胞／基底膜の相互作用に重
要であることが示された（Ｋａｍｉｇｕｃｈｉｅｔａｌ．，１９９８）。
その他の研究で部分的に精製されたラミニン２が神経細胞遊走および軸索成長を
促進することが証明された（ＡｇｉｕｓとＣｏｃｈａｒｄ，Ｊ．Ｎｅｕｒｏ
ｓｃｉ．１８−３２８−３３８（１９９８）；Ｋａｍｉｇｕｃｈｉｅｔ
ａｌ．，１９９８；Ｕ．Ｓ．ＰａｔｅｎｔＮｏｓ．５，４４４，１５８
；５，８７２，２３１；５，６２４．９０５；と５，８６３，７４３；Ｂａ
ｔｅｓとＭｅｙｅｒ，Ｄｅｖｅｌｏｐ．Ｂｉｏｌ．１８１：９１−１０１
（１９９７））。ラミニン２欠陥ＣＭＤ動物モデルにおいては、ＣＭＤには抹消
運動神経の不良髄鞘形成が伴い、ラミニン２が末梢ミエリン形成に重要な役割を
行っていることが示された。

【００２５】部分的に精製したラミニン２はまた、細胞遊走およびさまざまなタイプの細胞
、特に筋肉細胞および神経細胞起始細胞の基質への付着を促進することが分かっ
た（Ｕ．Ｓ．ＰａｔｅｎｔＮｏ．５，４４４．１５８；Ｗｈｉｔｅｅ
ｔａｌ．，Ａｍ．Ｊ．Ｒｅｓｐ．Ｂｉｏｌ．２０：７８７−７９６
（１９９９）；Ｅｎｇｖａｌｌｅｔａｌ．，Ｅｘｐ．ＣｅｌｌＲｅ
ｓ．１９８：１１５−１２３（１９９２））。

【００２６】さらにライ菌の神経屈性の分子基底が、シュヴァン細胞軸索単位上のラミニン
２のＧ領域へのライ菌の特定結合に起因しうることが証明され、一方α−ジスト
ログリカン（αＤＧ）はライ菌に対するシュヴァン細胞レセプターとして役立つ
ことが分かった（Ｒａｍｂｕｋｋａｎａｅｔａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ２８
２：２０７６−２０７９（１９９８）；Ｒａｍｂｕｋｋａｎａｅｔａｌ．
，Ｃｅｌｌ８８；８１１−８２１（１９９７））。未変性αＤＧは、原発性
シュヴァン細胞に結合するラミニン２媒介ライ菌を競合的に阻止することが証明
された（Ｒａｍｂｕｋｋａｎａｅｔａｌ．，１９９８）。

【００２７】このようにラミニン２およびそれらの断片に対する研究および治療への応用は
、末梢神経系（ＲＮＳ）神経再分化、退行性筋障害の処置、その結果として血管
形成、細胞付着および遊走の促進、生体外細胞治療、医療機器の生体適合性の向
上、移植片利用の改善、改良された細胞培養装置および培地の調製を含むが、そ
れらに限定されるものではない。

【００２８】現在、研究または治療目的のために細胞または組織源から実質的に適切な精製
されたラミニン２を単離する方法はなく、また組み替え型のヘテロ三量体ラミニ
ン２の生成のための方法も開発されていない。ラミニン２はプラセンタ、または
量は少ないが骨格筋から部分的に精製することができる。ヒトのプラセンタでは
ほんの数ミリグラムの蛋白質しか得ることができない（Ｃｈｅｎｇｅｔａｌ
．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７２：３１５２５−３２，１９９７
）が、このラミニンは通常だいたい同等モル量のラミニン４（α２β２γ１）と
蛋白質ニドゲン（エンタクチン）を含んでいる。ニドゲンはかなり強力であるが
非共有結合の会合によりラミニンに結合している。ラミニン４の大半は、追加の
工程を行っても除去することが難しく、かなりのラミニン４の混入が残存する。
ニドゲンを除去するには変性条件が必要である。

【００２９】したがって、当業では実質的に精製されたラミニン−２の適量、およびラミニ
ン２を生成する方法が必要である。好ましい生成方法は、組み替え型ラミニン−
２を生成するために選ばれた株細胞を操作する組み替え型ＤＮＡ技術を使用する
ことである。組み替え型に基づくラミニン−２生成方法は、組織からの生成また
は培地中の細胞株からの単離全般にわたっていくつかの利点がある。

【００３０】１．組み替えにより生成された蛋白質には病原菌がない。これは内在性細胞培
養生成蛋白質についても同様であるが、ヒト組織から取り出された蛋白質は、Ｈ
ＩＶ、肝炎、その他の感染因子による汚染の危険を持っている。

【００３１】２．蛋白質の発現レベルおよびそれに由来する産出量は、コード化された蛋白
質の生成を高める遺伝的に操作した遺伝子／ベクターを使用することで改善する
ことが可能である。

【００３２】３．商業的に存続可能な親和性精製方法のための結合部位を提供する蛋白質鎖
に至るさらなるペプチド配列を操作することが可能である。

【００３３】４．本方法は、付加、置換、除去、および／またはその他の蛋白質領域構造の
修飾により蛋白質構造／機能の変性に役立つ。たとえば、合成基質への適切な結
合部位において、インテグリン結合部位（たとえばＲＧＤ）、切り替えインテグ
リン認識部位を導入する、または操作することが望ましい場合がある。このよう
に、ラミニン鎖を発現する発現ベクターを創ることで、将来使用するための大き
な適用性を生じさせ、２時的「合成」ラミニン生成の基礎を創ることになる。

【００３４】発明の概要本発明は、実質的に精製されたラミニン２タンパク質、実質的に精製された組
換えラミニン２（本明細書中にて、以後、γ−ラミニン２と記す）を製造するた
めの方法、および実質的に精製されたラミニン２を、抹消神経再生、変性筋肉異
常の治療、脈管形成調節、細胞付着および移行の促進、エクスビボ細胞療法、移
植組織の「正着」の改善、医療用具の生体適合性の改善、および改善された細胞
培養装置および培地の調製を含むが、それらに限定されない研究および治療のた
めに用いる方法についての当該技術分野における要望を満たすものである。

【００３５】一つの態様において、本発明は、ラミニンα２、β１およびγ１鎖のうちの少
なくとも一つをコード化する発現ベクター（複数を含む）を用いてトランスフェ
クションされた哺乳動物細胞を提供し、この細胞がγ−ラミニン２を分泌する。

【００３６】もう一つの態様において、本発明は、実質的に精製されたラミニン２、および
γ−ラミニン２を生成するための方法を提供する。

【００３７】さらなる実施形態において、本発明は、新規の単離されたラミニン２α２核酸
およびα２タンパク質を提供する。この実施形態において、タンパク質生成物は
、以前に報告されている配列を基準として、カルボキシル末端にさらに３０個の
アミノ酸を含有する。

【００３８】さらなる態様において、本発明は、実質的に精製されたラミニン２を含むか、
または新規組換えα２タンパク質を製薬上許容され得る担体と共に含む医薬品組
成物を提供する。こうした医薬品組成物には、細胞外基質成分などのその他の化
合物が任意に供給される。

【００３９】本発明は、抹消神経再生、変性筋肉異常の治療、脈管形成調節、細胞付着およ
び移行の促進、エクスビボ細胞療法、医療用具の生体適合性の改善、移植組織の
「正着」の改善、および改善された細胞培養装置および培地の調製のための方法
をさらに提供し、この方法には、所望の結果のために有効な量の実質的に精製さ
れたラミニン２またはその医薬品組成物の提供することが含まれる。

【００４０】さらなる態様において、本発明は、改善された医療用具または移植組織を提供
し、この改善には、用具または移植組織に、所望の塗布のために有効な量の実質
的に精製されたラミニン２またはその医薬品組成物を塗布することが含まれる。
こうした用具に、細胞外基質成分などのその他の化合物を任意に供給して、医療
用具または移植組織の生体適合性または有効性をさらに改善することができる。

【００４１】さらなるにおいて、本発明は、細胞培養装置への細胞の付着のために有効な量
の実質的に精製されたラミニン２またはその医薬品組成物によって、細胞のその
後の増殖／分化／うっ血に備える、改善された細胞培養装置を提供する。

【００４２】もう一つの態様において、本発明は、実質的に精製されたラミニン２を含む細
胞培養増殖捕捉を提供する。もう一つの態様において、本発明は、改善された細
胞培養増殖培地を提供し、この改善には、実質的に精製されたラミニン２を増殖
培地に添加することが含まれる。

【００４３】好ましい実施形態の詳細な説明本明細書は、すべての参考文献、特許および特許出願の全文を引例として包含
する。

【００４４】別に述べない限り、本出願内で利用する技術は、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏ
ｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ（Ｓａｍｂｒｏｏｋ，ｅｔ
ａｌ．，１９８９，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔ
ｏｒｙＰｒｅｓｓ）、ＧｅｎｅＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎＴｅｃｈｎｏｌｏｇ
ｙ（ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ．１８５，ｅｄｉｔ
ｅｄｂｙＤ．Ｇｏｅｄｄｅｌ，１９９１，ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，
ＳａｎＤｉｅｇｏＣＡ）、“ＧｕｉｄｅｔｏＰｒｏｔｅｉｎＰｕｒｉ
ｆｉｃａｔｉｏｎ”ｉｎＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（Ｍ．
Ｐ．Ｄｅｕｔｓｈｃｅｒ，ｅｄ．，（１９９０）ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ
，Ｉｎｃ．）；ＰＣＲＰｒｏｔｏｃｏｌｓ：ＡＧｕｉｄｅｔｏＭｅｔｈ
ｏｄｓａｎｄＡｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ（Ｉｎｎｉｓ，ｅｔａｌ．，１９
９０，ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，ＳａｎＤｉｅｇｏ，ＣＡ），Ｃｕｌｔ
ｕｒｅｏｆＡｎｉｍａｌＣｅｌｌｓ：ＡＭａｎｕａｌｏｆＢａｓｉ
ｃＴｅｃｈｎｉｑｕｅ，２^ｎｄＥｄ．（Ｒ．Ｉ．Ｆｒｅｓｈｎｅｙ，１９８
７，Ｌｉｓｓ，Ｉｎｃ．，ＮｅｗＹｏｒｋ，ＮＹ），ＧｅｎｅＴｒａｎｓｆ
ｅｒａｎｄＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎＰｒｏｔｏｃｏｌｓ，ｐｐ．１０９−１
２８，ｅｄ．Ｅ．Ｊ．Ｍｕｒｒａｙ，ＴｈｅＨｕｍａｎａＰｒｅｓｓＩｎ
ｃ．，Ｃｌｉｆｔｏｎ，Ｎ．Ｊ．）、およびｔｈｅＡｍｂｉｏｎ１９９８
Ｃａｔａｌｏｇ（Ａｍｂｉｏｎ，Ａｕｓｔｉｎ，ＴＸ）などのいくつかのよく知
られている参考文献のいずれかにおいて見つけることができる。

【００４５】本出願中で用いる「ラミニン２」は、γ−ラミニン２と、組織供給源からの実
質的に精製されたラミニン２との両方を含む。

【００４６】本出願中で用いる用語「γ−ラミニン２」は、α２、β１およびγ１鎖から選
択されるラミニン２鎖をコード化する核酸配列を少なくとも一つ含む一つ以上の
発現ベクターを用いてトランスフェクションされた細胞、それらの処理形態、ま
たはヘテロ三量体ラミニン２を形成することができ、ラミニン２の活性を維持す
ることができるそれらのその他のタンパク質によって発現される組換えラミニン
２を指す。従って、こうしたγ−ラミニン２は、単一生物からのまたは異なる生
物からのα２、β１およびγ１配列を含むことができる。ラミニン２鎖ＤＮＡ配
列および多様な生物からのそれらをコード化したタンパク質は、当該技術分野に
おいて既知である（例えば、Ｖｕｏｌｔｅｅｎａｈｏｅｔａｌ．，Ｊ．Ｂｉ
ｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６５：１５６１１−１５６１６（１９９０）；Ｋａｌｌｕｎ
ｋｉｅｔａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６６：２２１−２２８（１９
９１）；Ｐｉｋｋａｒａｉｎｅｎｅｔａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２
６３：６７５１−６７５８（１９８８）；ＳａｓａｋｉａｎｄＹａｍａｄａ
，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６２：１７１１１−１７１１７（１９８７）；Ｓ
ａｓａｋｉｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ，Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８４：９
３５−９３９（１９８７）；Ｐｉｋｋａｒａｉｎｅｎｅｔａｌ．，Ｊ．Ｂｉ
ｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６２：１０４５４−１０４６２（１９８７）；およびＢｅｒ
ｎｉｅｒｅｔａｌ．，ＭａｔｒｉｘＢｉｏｌ．１４：４４７−４５５（１
９９５）を参照のこと。すべての参考文献は、その全文を本明細書中に引例とし
て包含する）。

【００４７】本発明は、組換えヘテロ三量体ラミニン２を構成する一つまたは二つの鎖が内
在性ラミニン２鎖によってコード化されるようなラミニン分子を包含する。好ま
しい実施形態において、γ−ラミニン２は、哺乳動物のα２、β１およびγ１鎖
の各々をコード化する核酸配列を含む一つ以上の発現ベクターを用いてトランス
フェクションされる細胞、それらの処理形態、またはヘテロ三量体ラミニン２を
形成することができ、ラミニン２の活性を維持することができるそれらのその他
のタンパク質によって生成される。

【００４８】本発明において、ラミニン２は、シグナル配列の結果として、ＥＲ、分泌小疱
、および細胞外空間に方向を定めることができる分泌タンパク質、ならびに必ず
しもシグナル配列を含まずに細胞外空間に放出されるようなタンパク質である。
分泌タンパク質が細胞外空間に放出される場合、分泌タンパク質は、細胞外処理
を受けて「成熟」タンパク質を生成することができる。こうした処理事象は可変
性であり、従って、異なるバージョンの最終「成熟タンパク質」を生じる得る。
本発明の実質的に精製されたラミニン２には、全長といずれかのこうした処理ラ
ミニン２鎖との両方を含むヘテロ三量体が含まれる。

【００４９】本出願中で用いる用語「実質的に精製された」とは、そのように設計されたラ
ミニン２が、そのインビボでの細胞環境から分離されていることを意味する。

【００５０】本出願中で用いるラミニン２ポリペプチド鎖は、次の一つ以上に従うポリペプ
チド鎖を指す：（ａ）１．Ｒ１−Ｒ２−Ｒ３２．Ｒ１−Ｒ２−Ｒ３（ｅ）３．Ｒ３４．Ｒ３（ｅ）５．Ｒ１−Ｒ３６．Ｒ１−Ｒ３（ｅ）７．Ｒ２−Ｒ３８．Ｒ２−Ｒ３（ｅ）（ここで、Ｒ１は、アミノ末端メチオニンであり；Ｒ２は、ポリペプチドの分
泌の方向を定めることができるシグナル配列であり、このシグナル配列は、別の
分泌タンパク質の特定のラミニン鎖についての自然シグナル配列であってもよい
し、または人工配列であってもよく；Ｒ３は、α２、β１およびγ１鎖から選択
される分泌ラミニン鎖であり；およびＲ３（ｅ）は、（下記のものなどの）エピ
トープ標識をさらに含むα２、β１およびγ１鎖から選択される分泌ラミニン鎖
である）から成る群から選択されるポリペプチド構造を含み、ラミニン鎖アミノ酸配列内
のいずれの位置においても置換することができる；および／または（ｂ）開示するラミニン鎖ポリヌクレオチド配列（配列番号：１、３、５、７
、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、２７、２９、３１）
またはそれらの断片の一つ以上に実質的に類似したポリヌクレオチドによってコ
ード化される；および／または（ｃ）高または低厳密度条件のもとで、本明細書中で開示する組換えラミニン
２鎖ＤＮＡ配列（配列番号：１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１
９、２１、２３、２５、２７、２９、３１）、それらの断片、またはそれらの相
補的配列の一つ以上のコード領域へのハイブリッド形成を行うポリヌクレオチド
またはそれらのタンパク質によってコード化される；および／または（ｄ）開示するラミニン２ポリペプチド鎖アミノ酸配列（配列番号：２、４、
６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、２８、３０
、３２、またはそれらの断片）の一つ以上と少なくとも７０％の同一性、好まし
くは少なくとも８０％の同一性、および最も好ましくは少なくとも９０％の同一
性を有する。

【００５１】ここで“実質的類似の”というフレーズは、ここに開示されたラミニン２の配
列由来の、欠失、挿入、逆位、反復及び置換を含むがこれに限定されない１又は
それ以上の保存的変異を有するポリヌクレオチド又はポリペプチド配列を表すの
に使用され、ここで生じるラミニン鎖はここに開示されたものと機能的に同等で
ある。

【００５２】例えば保存的ポリヌクレオチド変異体はコード域、非コード域又はその両方に
変化を含むだろう。特に好適なものは、サイレント型の置換、付加又は欠失を生
じる変化を含むが、コードしたポリペプチドのアミノ酸配列は変えないポリヌク
レオチド変異体である。遺伝子コードの退縮によるサイレント型置換によって生
じるヌクレオチド変異体が好ましい。更には、５−１０、１−５、又は１−２ア
ミノ酸がいずれかの組み合わせで置換、欠失、又は付加される変異体も好ましい
。ポリヌクレオチド変異体は、特定の宿主に関するコドン発現を最適化すること
を含むが、これに限定されない様々な理由により作成される（ヒトｍＲＮＡ内の
コドンを大腸菌のような細菌性宿主に好適なコドンに変化させる）。

【００５３】天然に生ずる保存的変異体は“対立遺伝子変異体”と呼ばれ、生物の染色体上
のある遺伝子座を占有する遺伝子の複数の変化型の一つを表す（ＧｅｎｅｓＩＩ
、Ｌｅｗｉｎ、Ｂ、ｅｄ．、ＪｏｈｎＷｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ、ＮｅｗＹｏｒ
ｋ（１９８５））。これら対立遺伝子変異体はポリヌクレオチド及び／又はポリ
ペプチドレベルのいずれも変化できる。あるいは非天然的に生ずる保存的変異体
を、突然変異誘発技術又は直接合成により生成しても良いだろう。

【００５４】発現したラミニン鎖ポリペプチドの特性を改良又は変化させるために、蛋白質
工学及び組換えＤＮＡ技術の既知方法を使用して保存的ポリヌクレオチド変異体
が生成されるだろう。例えば、１またはそれ以上のアミノ酸が分泌蛋白質のＮ−
末端又はＣ−末端から削除することができる（例えばＲｏｎら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．
Ｃｈｅｍ２６８：２９８４−２９８８（１９９３）；Ｄｏｂｅｌｉら、Ｊ．Ｂ
ｉｏｔｅｃｈｏｎｏｌｏｇｙ７：１９９−２１６（１９８８）参照）。多くの
証拠が、変異体がしばしば天然に生ずる蛋白質の生物的活性に類似の生物活性を
保持することが示されている。（例えばＧａｙｌｅｅｔら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈ
ｅｍ２６８：２２１０５−２２１１１（１９９３））。更に、ポリペプチドの
Ｎ−末端又はＣ−末端より１又はそれ以上アミノ酸を削除した結果１又はそれ以
上の生物学的機能が変化し、又は消失した場合でさえ、その他生物学的活性は依
然保持されるだろう。

【００５５】表現形としてサイレントなアミノ酸の置換を作成する方法に関するガイダンス
はＢｏｗｉｅ、Ｊ．Ｕ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２４７：１３０６−１３１０（１
９９０）に提供されておいるが、そこで著者は変化させるアミノ酸配列の許容度
の研究に関する２つの主要な方策を示している。

【００５６】第１の方策は、進化の過程の自然選択によるアミノ酸置換の許容度を利用する
。様々な種のアミノ酸配列を比較することで、保存的アミノ酸を特定することが
できる。これら保存的アミノ鎖は蛋白質機能にとって重要であろう。これに対し
、自然選択により許容される置換アミノ酸位置は、これらの位置が蛋白質機能に
とって重要でないことを示している。即ち、アミノ酸置換許容位置は、蛋白質の
生物学的活性を保ちながら変えることができる。

【００５７】第２の方策は遺伝子工学を利用しクローン化遺伝子の特定位置に変化を導入し
、蛋白質機能にとって重要な領域を特定する。例えば部位特異的突然変異導入法
又はアラニン−スキャニング突然変異導入法（分子内の残基毎への単１アラニン
突然変異の導入）が使用できる（ＣｕｎｎｉｎｇｈａｍとＷｅｌｌｓ、Ｓｃｉｅ
ｎｃｅ２４４：１０８１−１０８５（１９８９））。次に生じた突然変異分子
を生物学的活性について試験できる。

【００５８】著者が記すように、これら２つの方策は蛋白質が意外な程アミノ酸置換に寛容
であることを表している。著者らは更にアミノ酸の変化が蛋白質内の特定アミノ
酸位置で許容されやすいことも示している。例えばほとんどの埋没（蛋白質の３
次構造内にある）アミノ酸残基は非極性側鎖を要求するのに対し、表面側鎖では
遺伝的に保存される特性は極僅かである。更に、許容される保存的アミノ酸置換
は脂肪族又は疎水性アミノ酸Ａｌａ、Ｖａｌ、ＬｅｕおよびＩｌｅの置換；ヒド
ロキシル残基Ｓｅｒ及びＴｈｒの置換；酸性残基Ａｓｐ及びＧｌｕの置換；アミ
ノ酸残基Ａｓｎ及びＧｌｎの置換、塩基性残基Ｌｙｓ、Ａｒｇ及びＨｉｓの置換
；芳香族残基Ｐｈｅ、Ｔｙｒ及びＴｒｐの置換、および小サイズアミノ酸Ａｌａ
，Ｓｅｒ、Ｍｅｔ及びＧｌｙの置換を含む。

【００５９】保存的アミノ酸置換以外に、本発明の“実質類似の”ポリペプチドは（ｉ）非
保存的アミノ酸残基の１またはそれ以上に置換にあって、前記置換アミノ酸残基
が遺伝子コードによりコードされたものでも、又はコードされたものでなくても
よい置換、又は（ｉｉ）置換基を有するアミノ酸残基の１またはそれ以上との置
換、あるいは（ｉｉｉ）成熟ポリペプチドと、ポリペプチドの安定性及び／又は
可溶性を増す化合物（例えばポリエチレングリコール）の様な他化合物との融合
、又は（ｉｖ）ポリペプチドとＩｇＧＦｃ融合域ペプチドの様な付加アミノ酸
又はリーダーあるいは分泌配列、又は精製を容易にする配列との融合を含む。こ
れら変異体ポリペプチドは、本発明によれば“実質的類似する”と考えられる。

【００６０】例えば、荷電アミノ酸と他荷電又は中性アミノ酸とのアミノ酸置換を含むポリ
ペプチド変異体は低凝集性といった変化した特性を有する蛋白質を生ずるだろう
。医薬製剤の凝集は、凝集対の免疫原活性により活性を低下させ、且つクリアラ
ンスを増加させる（Ｐｉｎｃｋａｒｄら、Ｃｌｉｎ．Ｅｘｐ．Ｉｍｍｕｎｏｌ、
２：３３１−３４０（１９６７）；Ｒｏｂｂｉｎｓら、Ｄｉａｂｅｔｅｓ３６
：８３８−８４５（１９８７）；Ｃｌｅｌａｎｄら、Ｃｒｉｔ．Ｒｅｖ．Ｔｈ
ｅｒａｐｅｕｔｉｃＤｒｕｇＣａｒｒｉｅｒＳｙｓｔｅｍｓ１０：３０
７−３７７（１９９３）。） “ハイブリダイゼーションの厳密性”とは、ここでは核酸ハイブリッドが安定
である条件を表すのに使用される。発明は更に高厳密性（ここで規定される如く
）下にここに開示されたラミニン鎖ポリヌクレオチドのコーディング配列又はそ
の相補体の全て又は一部とハイブリダイゼーションする核酸も含む。ハイブリダ
イゼーションする核酸のハイブリダイゼーション部位の長さは典型的には少なく
とも５０ヌクレオチドである。当業者既知の如く、ハイブリッドの安定性はハイ
ブリッドの融解温度（Ｔ_Ｍ）に反映される。Ｔ_Ｍは配列相同性が１％低下する毎
に約１−１．５℃低下する。一般にハイブリッドの安定性はナトリウムイオン濃
度と温度の関数である。典型的にはハイブリダイゼーション反応は低厳密性下に
実施され、続いて厳密性をより高く変えながら洗浄される。即ちここで使用する
如く、高厳密性とは５０％フォルムアミド、５×ＳＳＣ（７５０ｍＭＮａＣｌ
、７５ｍＭクエン酸ナトリウム）、５０ｍＭリン酸ナトリウム（ｐＨ７．６
）、５×デンハルト（Ｄｅｎｈａｒｄｔ‘ｓ）溶液、１０％硫酸デキストラン及
び２０μｇ／ｍｌの変性、剪断サケ精子ＤＮＡを含む溶液中、４２℃にて一晩イ
ンキュベーションし、続いてフィルターを０．１×ＳＳＣ内、約６５℃で洗浄す
ることを表す。

【００６１】またより低い厳密ハイブリダイゼーション条件にて本発明のポリヌクレオチド
とハイブリダイゼーションするラミニン２−コード核酸配列も予想される。ハイ
ブリダイゼーション及びシグナル検出の厳密性の変化は一次的にはフォルムアミ
ド濃度（フォルムアミドのパーセンテージが低い程厳密性も低くなる）；塩条件
、又は温度を操作することで達成される。例えば、より低い厳密性条件には６×
ＳＳＰＥ（２０×ＳＳＰＥ−３ＭＮａＣｌ；０．２ＭＮａＨ_２ＰＯ_４；０．
０２ＭＥＤＴＡ、ｐＨ７．４）、０．５％ＳＤＳ、３０％フォルムアミド、
１００ｕｇ／ｍｌサケ精子ブロッキングＤＮＡを含む溶液中での３７℃、一晩の
インキュベーション；続く１×ＳＳＰＥ、０．１％ＳＤＳによる５０℃での洗浄
を含む。加えて、より低い厳密性を達成するために、下記の厳密ハイブリダイゼ
ーションの洗浄が、高い塩濃度で行われてもよい（例５×ＳＳＣ）。

【００６２】上記条件の変更はハイブリダイゼーション実験でのバックグランドを抑制する
ことを目的に使用される別種ブロッキング試薬を含ませること、及び／又は交換
することで実行されることもできることに注意されたい。典型的なブロッキング
試薬にはデンハルト試薬、ＢＬＯＴＴＯ、へパリン、変性サケ精子ＤＮＡ、及び
市販製剤が含まれる。特異的ブロッキング試薬を含める場合には、適合性問題よ
り上記ハイブリダイゼーション条件の変更が必要になることもある。

【００６３】ここに使用する２アミノ酸又は２核酸の“同一性％”はＫａｒｌｉｎとＡｌｔ
ｓｃｈｕｌにより改良された（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９０：５８７３−５８７７，１９９３）ＫａｒｌｉｎとＡｌｔｓｃｈｕｌのア
ルゴリズムを利用し決定される（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳ
Ａ８７：２２６４−２２６８，１９９０）。この様なアルゴリズムはＡｌｔｓ
ｃｈｕｌら（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５；４０３−４１０、１９９０）のＮ
ＢＬＡＳＴ及びＸＢＬＡＳＴプログラムに取り込まれている。ＢＬＡＳＴヌクレ
オチド検索はＸＢＬＡＳＴプログラムを使用し、スコア＝１００，ワード長＝１
２で行われ、発明の核酸分子に相同なヌクレオチド配列を得る。ＢＬＡＳＴ蛋白
質検索はＮＢＬＡＳＴプログラムを使用し、スコア＝５０，ワード長＝３で行わ
れ、発明のポリペプチドに相同なアミノ酸配列を得る。比較目的のためのギャッ
プ入りアラインメントを得るために、ＧａｐｐｅｄＢＬＡＳＴをＡｌｔｓｃｈ
ｕｌら（ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄｓ、Ｒｅｓ．２５：３３８９−３４０２、１
９９７）記載の如くに利用した。ＢＬＡＳＴ及びＧａｐｐｅｄＢＬＡＳＴプロ
グラムを仕様する場合には、各プログラム（即ちＸＢＬＡＳＴ及びＮＢＬＡＳＴ
）の初期設定パラメーターが使用される。http://www.ncbi.nlm.nih gov.参照。

【００６４】本発明の別実施形態は配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１
８、２０、２２、２４、２６、２８、３０、３２又はその断片に含まれる１また
はそれ以上のポリペプチド配列に少なくとも７０％、好ましくは少なくとも８０
％、最も好ましくは少なくとも９０％の同一性を有するラミニン２鎖をコードす
るポリヌクレオチドを含む。

【００６５】ここに使用する如く“α２ポリヌクレオチド”は同一名のα２ラミニン鎖をコ
ードするポリヌクレオチドを表す。この様なポリヌクレオチドは、以下の１また
はそれ以上により特徴付けることができる：（ａ）前記ポリヌクレオチドのヌク
レオチドが配列番号２、４、６、８、１０、１２又はその断片に記載のアミノ酸
配列の１またはそれ以上に実質類似するアミノ酸配列をコードする；（ｂ）配列
番号２、４、６、８、１０、１２又はその断片に記載の１又はそれ以上の配列に
少なくとも７０％の同一性、好ましくは８０％の同一性、及び最も好ましくは少
なくとも９０％の同一性を共有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
；（ｃ）α２ポリヌクレオチドは配列番号１、３、５、７、９、１１、その断片
、又はその相補的配列の１またはそれ以上に記載のコーディング配列に低又は高
厳密条件下にハイブリダイズする；又は（ｄ）α２ポリヌクレオチドは（１）Ｒ
１−Ｒ２−Ｒ３；（２）Ｒ１−Ｒ２−Ｒ３（ｅ）；（３）Ｒ３；（４）Ｒ３（ｅ
）；（５）Ｒ１−Ｒ３；（６）Ｒ１−Ｒ３（ｅ）；（７）Ｒ２−Ｒ３；及び（８
）Ｒ２−Ｒ３（ｅ）より選択される一般構造を持つポリペプチドをコードし、前
記Ｒ１及びＲ２は上記に同じであり、Ｒ３及びＲ３（ｅ）は上記に同じであるが
分泌されたα２鎖ポリペプチドを含むものである。

【００６６】ここに使用する“β１ポリヌクレオチド”は同一名のβ１ラミニン鎖をコード
するポリヌクレオチドを表す。これらポリヌクレオチドは以下の１またはそれ以
上により特徴付けることができる（ａ）前記ポリヌクレオチドのヌクレオチドが
配列番号１４、１６、１８、２０又はその断片に記載のアミノ酸配列の１または
それ以上に実質類似するポリペプチドをコードする；（ｂ）配列番号１４、１６
、１８、２０又はその断片に記載の１又はそれ以上の配列に少なくとも７０％の
同一性、好ましくは８０％の同一性、及び最も好ましくは少なくとも９０％の同
一性を共有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド；（ｃ）β１ｃＤＮ
Ａｓはは配列番号１３、１５、１７、１９、その断片、又はその相補的配列の１
またはそれ以上に記載のコーディング配列に低又は高厳密条件下にハイブリダイ
ズする；又は（ｄ）β１ポリヌクレオチドは（１）Ｒ１−Ｒ２−Ｒ３；（２）Ｒ
１−Ｒ２−Ｒ３（ｅ）；（３）Ｒ３；（Ｒ４）Ｒ３（ｅ）；（５）Ｒ１−Ｒ３；
（６）Ｒ１−Ｒ３（ｅ）；（７）Ｒ２−Ｒ３；及び（８）Ｒ２−Ｒ３（ｅ）より
選択される一般構造を持つポリペプチドをコードし、前記Ｒ１及びＲ２は上記に
同じであり、Ｒ３及びＲ３（ｅ）は上記に同じであるが分泌されたβ１鎖ポリペ
プチドを含むものである。

【００６７】ここに使用する“γ１ポリヌクレオチド”は同一名のγ１ラミニン鎖をコード
するポリヌクレオチドを表す。これらポリヌクレオチドは以下の１またはそれ以
上により特徴付けることができる（ａ）前記ポリヌクレオチドのヌクレオチドが
配列番号２２、２４、２６、２８、３０、３２又はその断片に記載の酸配列の１
またはそれ以上に実質類似しているアミノ酸をコードする；（ｂ）配列番号２２
、２４、２６、２８、３０、３２又はその断片に記載の１又はそれ以上の配列に
少なくとも７０％の同一性、好ましくは８０％の同一性、及び最も好ましくは少
なくとも９０％の同一性を共有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
；（ｃ）γ１ポリヌクレオチドは配列番号２１、２３、２５、２７、２９、３１
、その断片、又はその相補的配列の１またはそれ以上に記載のコーディング配列
に低又は高厳密条件下にハイブリダイズする；又は（ｄ）γ１ポリヌクレオチド
は（１）Ｒ１−Ｒ２−Ｒ３；（２）Ｒ１−Ｒ２−Ｒ３（ｅ）；（３）Ｒ３；（Ｒ
４）Ｒ３（ｅ）；（５）Ｒ１−Ｒ３；（６）Ｒ１−Ｒ３（ｅ）；（７）Ｒ２−Ｒ
３；及び（８）Ｒ２−Ｒ３（ｅ）より選択される一般構造を持つポリペプチドを
コードし、前記Ｒ１及びＲ２は上記に同じであり、Ｒ３及びＲ３（ｅ）は上記に
同じであるが分泌されたβ１鎖ポリペプチドを含むものである。

【００６８】ここで使用する場合、用語“エピトープタグ”はキメラ蛋白質の一部として発
現されるポリペプチド配列を表し、前記エピトープタグはエピトープタグに対し
作製された抗体の結合に関する、又はタグを含む配列の親和性精製に利用できる
その他分子の結合に関する認識部位として機能する。

【００６９】ここで使用する場合、用語“生物適合性増加”は類似の非コート型生物材料に
関するラミニン２コート生物材料に関するインプラント周囲組織の急性又は慢性
炎症反応誘導低下及び適合な分化の破壊低下を表す。

【００７０】態様の一つでは、本発明はラミニン２のα２、β１及びγ１鎖又はその断片を
含む少なくとも１ポリペプチド配列をコードする核酸配列に動作可能に連結され
たプロモーター配列を含む発現ベクターをトンランスフェクションされたγ−ラ
ミニン２発現細胞にあって、該トランスフェクションされた細胞が組換え体ラミ
ニン鎖を含むヘテロトリマー型ラミニン２を分泌するである発現細胞を提供する
。好適な実施形態では、細胞はラミニン２のα２、β１及びγ１鎖又はその断片
のそれぞれを含むポリペプチド配列をコードする核酸配列に動作可能に連結され
たプロモーターを含む組換え体発現ベクターによりトランスフェクションされる
。トランスフェクション後細胞は、培地中にγ−ラミニン２を分泌する前にヘテ
ロトリマーを形成する各組換え体ラミニン２鎖を発現する。

【００７１】好適な実施形態では、α２、β１及びγ１ラミニン鎖、又はその断片をコード
するｃＤＮＡｓが発現ベクター内にサブクローニングされる。あるいは、１また
はそれ以上のイントロンを含むラミニン２α２、β１及び／又はγ１ゲノム配列
が利用できる。

【００７２】 γ−ラミニン２を発現し、分泌することができるいずれかの細胞が利用できる
。

【００７３】好ましくは真核生物細胞が使用され、最も好ましくは哺乳動物細胞が使用され、
これには腎臓及び上皮細胞株が含まれるがこれに限定されない。最適な実施形態
では、哺乳動物細胞は内因性にはラミニン２鎖を全く発現しない。ラミニン２蛋
白質の畳み込み及び機能にとって炭水化物及びジスルフィドの翻訳後修飾が必要
であると信じられている。このことから機能的γ−ラミニン２の生産には真核生
物細胞の利用が好適であるが、例えば抗体作製のための抗原を得る為にその他シ
ステムも利用される。

【００７４】 “組換え体発現ベクター”には核酸コーディング域又は遺伝子を遺伝子産物の
発現に影響できるプロモーターと動作可能に連結させているベクターを含む。個
々の鎖、またはγ−ラミニン２を発現させるために使用されるプロモーター配列
は構成的（ＣＭＶ、ＳＶ４０、ＲＳＶ、アクチン、ＥＦを含むがこれに限定され
ない各種プロモーターの何れかにより作動する）または誘導的（テトラサイクリ
ン、エクジソン、ステロイド反応を含むが、これに限定されない複数の誘導型プ
ロモーターの何れかにより作動する）である。発現ベクターは宿主生物内におい
てエピソームとして、又は宿主染色体ＤＮＡ内に組み込まれることで複製可能で
なければならない。好適な実施形態では、発現ベクターはプラスミドを含む。し
かし、発明はウイルスの様な同等の機能を果たすその他発現ベクターを含むこと
を目的とする。

【００７５】実施形態の一つでは、ラミニン鎖ポリヌクレオチド配列の少なくとも１つ、ま
たはその断片は“エピトープタグ”をコードする核酸配列に動作可能に連結され
、その結果鎖の少なくとも１つは発現したエピトープタグを持つ融合蛋白質とし
て発現される。エピトープタグは、生じるｒ−ラミニン２が機能を維持する範囲
でγ−ラミニン２を含むポリペプチド鎖のアミノ末端、カルボキシ末端、または
内部分として発現できる。エピトープタグは、それが生じるγ−ラミニン２の親
和性精製のベースとして利用できる範囲で使用されるだろう。この様なエピトー
プタグの例にはＦＬＡＧ（シグマケミカル、セントルイス、ミズーリ（Ｓｉｇｍ
ａＣｈｅｍｉｃａｌ、Ｓｔ.Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ））、ｍｙｃ（９Ｅ１０）（イ
ンビトロゲン、カールスバッド、カリフォルニア（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａ
ｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）、６−Ｈｉｓ（インビトロゲン；ノバゲン、マジソン、ウ
イスコンシン（Ｎｏｖａｇｅｎ、Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ））及びＨＡ（ベーリン
ガーマンハイムバイオケミカルス（ＢｏｅｈｒｉｎｇｅｒＭａｎｈｅｉｍＢ
ｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ）。

【００７６】別の実施形態では、γ−ラミニン２鎖の一つは第１エピトープタグとの融合蛋
白質として発現され、そして少なくとも１の他γ−ラミニン鎖は第２エピトープ
タグとの融合蛋白質として発現される。これにより精製工程は簡便化され、より
高い回収が促進される。あるいは、同一エピトープタグを使用し、１より多いγ
−ラミニン鎖を有する融合蛋白質を作製できる。

【００７７】さらなる実施形態では、エピトープタグはγ−ラミニン２鎖から切り出し可能
に工夫することができる。あるいは、γ−ラミニン２鎖のいずれにもエピトープ
は融合されず、そしてγ−ラミニン２はラミニン２抗体に対する抗体又はその他
ラミニン２結合分子に対する抗体を使用するアフィニティークロマトグラフィー
を含むが、これに限定されない標準的技術により精製される。

【００７８】真核生物細胞への発現ベクターのトランスフェクションは、リン酸カルシウム
共沈殿法、エレクトロポレーション、又はリポゾーム媒介−、ＤＥＡＥデキスト
ラン媒介−、ポリカチオン媒介−、又はウイルス媒介トランスフェクションを含
むがこれに限定されない当業者既知の技術により達成できる。

【００７９】好適な実施形態では、細胞は安定的にトランスフェクションされる。安定トラ
ンスフェクション及び適切にトランスフェクションされた細胞の選別に関する方
法は当分野既知である。最適な実施形態では、ＣＭＶプロモーター駆動発現ベク
ターが胚性ヒト腎臓２９３細胞株に使用される。

【００８０】１つの例では、単一ラミニン鎖がトランスフェクションされた細胞からの媒体
がまずラミニン鎖特異的抗体を使用したウエスタンブロットで解析される。トラ
ンスフェクション後の単一ラミニン鎖の発現は一般には細胞内発現である。個々
のトランスフェクション鎖に対し反応性を示すクローンは、ＰＣＲ、逆転写−Ｐ
ＣＲ、又は核酸ハイブリダイゼーションの様な適当な方法により検証され、トラ
ンスフェクション遺伝子の取り込みが確認される。好ましくはこれらクローンか
らのゲノムＤＮＡ標本の分析はラミニン鎖−特異的プライマーペアを使用したＰ
ＣＲにより実施される。３種類全ての鎖を産生するトランスフェクションクロー
ンからの媒体は、ウエスタンブロット分析及び細胞結合アッセイを含む適当な方
法によりγ−ラミニン２分泌及び／又は活性に関し更に分析される。γ−ラミニ
ン２の活性は細胞接着及び蛋白質結合アッセイにて好ましく分析される。

【００８１】別の態様では、本発明は実質精製されたラミニン２、好ましくはγ−ラミニン
２を提供する。実施形態の一つでは、実質精製されたラミニン２はα２鎖ポリペ
プチドを含む第１鎖；β１鎖ポリペプチドを含む第２鎖；及びγ１鎖ポリペプチ
ドを含む第３鎖を含む。あるいはγ−ラミニン２は、配列番号２、４、６、８、
１０、１２又はその断片に示される配列の少なくとも一つに実質類似する第１鎖
；配列番号１２、１４、１６又は１８、又はその断片に示される配列の少なくと
も一つに実質類似する第２鎖；及び配列番号２０、２２、２４又は２６又はその
断片に示される配列の少なくとも一つに実質類似する第３鎖を含む。

【００８２】別の実施形態では、実質精製されたγ−ラミニン２は配列番号２、４、６、８
、１０、１２又はその断片に示される配列の少なくとも一つに少なくとも７０％
同一であるポリペプチドを含む第１鎖；配列番号１４、１６、１８、２０又はそ
の断片に示される配列の少なくとも一つに少なくとも７０％同一であるポリペプ
チドを含む第２鎖；及び配列番号２２、２４、２６、２８、３０、３２又はその
断片に示される配列の少なくとも一つに少なくとも７０％同一であるポリペプチ
ドを含む第３鎖であり、前記第１、第２及び第３ポリペプチドが組換え体ヘテロ
トリマー型ラミニン２に組み立てられるものである鎖を含む。

【００８３】実質精製されたヒトγ−ラミニン２の第１、第２又は第３鎖の少なくとも１つ
がエピトープを有する融合蛋白質として発現されることが好ましい。

【００８４】あるいはγ−ラミニン２はヘテロトリマーポリペプチド構造にあって、各個別
鎖が（１）Ｒ１−Ｒ２−Ｒ３；（２）Ｒ１−Ｒ２−Ｒ３（ｅ）；（３）Ｒ３；（
Ｒ４）Ｒ３（ｅ）；（５）Ｒ１−Ｒ３；（６）Ｒ１−Ｒ３（ｅ）；（７）Ｒ２−
Ｒ３；及び（８）Ｒ２−Ｒ３（ｅ）より成るグループから選択される一般構造を
含む構造を含み、前記Ｒ１はアミノ末端メチオニンであり；Ｒ２はポリペプチドを分泌に向かわ
せることができるシグナル配列であり、該シグナル配列は特定ラミニン鎖に関す
る天然シグナル配列、別分泌蛋白質のシグナル配列であり、又は人工配列でもよ
く；Ｒ３は分泌されたα２、β１、又はγ１ラミニン鎖であり；そしてＲ３（ｅ
）は、ラミニン鎖アミノ酸配列内に何れかの位置に配置できるエピトープタグ（
上記の様な）を更に含む分泌されたラミニンα２、β１及びγ１鎖である。

【００８５】好適実施形態では、γ−ラミニン２の精製はトランスフェクションされた細胞
からの媒体をアフィニティーカラムに通すことで達成される。例えば、組換え体
鎖の少なくとも１つに発現されたペプチドエピトープに結合する抗体又はその他
結合分子がアフィニティーカラムに結合され、そして媒体中に分泌されたγ−ラ
ミニン２を結合する。γ−ラミニン２はカラムに過剰のペプチドを流すことでカ
ラムからはずされる。溶出した蛋白質は必要に応じて続いて更に精製することが
できる。

【００８６】溶出分画はゲル電気泳動法及びウエスタンブロット分析を含む適当な方法によ
り分析される。別の実施形態では、ペプチドエピトープは精製後に切断できる。
別の実施形態では、それぞれが異なるエピトープタグを持つ２または３種類の別
のγ−ラミニン鎖を融合蛋白質として発現し、２回または３回の精製工程を経て
２重又は３重精製されたγ−ラミニン２を得る。エピトープタグは精製後にγ−
ラミニン２鎖より切り離す様に工夫することができる。あるいは、いずれのγ−
ラミニン２鎖にもエピトープタグを融合させず、そしてγ−ラミニン２はラミニ
ン２特異的抗体又はその他ラミニン２結合分子を使用するアフィニティークロマ
トグラフィーカラムを含むがこれに限定されない標準的技術により精製される。

【００８７】別の態様では、本発明は配列番号１に示す配列より成る、ラミニンα２鎖をコ
ードする新規ポリペプチドを提供する。別の態様では、本発明は配列番号２に示
す配列より成る新規ラミニン２αポリペプチドを提供する。これら配列は、ラミ
ニンα２鎖コーディング核酸が余分のヌクレオチドを含んでいること、そしてそ
の結果核酸が従来報告されていないＣ−末端３０個の追加アミノ酸をコードする
様になる点で従来報告の配列と異なる。

【００８８】本発明は、実質的に精製されたラミニン２、及び薬学的に許容されるキャリア
を含む薬学組成物をさらに提供する。好ましい態様において、該薬学組成物は、
実質的に精製されたγ−ラミニンを含む。本発明の本態様にしたがって、他の薬
剤は、処置するべき状態に基づいて該薬学組成物中に含むことができる。該薬学
組成物は、他のラミニン型、フィブロネクチン、ビトロネクチン、カドヘリン、
インテグリン、α−ディストログリカン、エンタクチン／ニドゲン、α−ディス
トログリカン、糖タンパク質、プロテオグリカン、ヘパラン硫酸グリカン、グリ
コサミノグリカン、上皮増殖因子、脈管内皮増殖因子、繊維芽細胞増殖因子、ま
たは神経増殖因子、及びそれのペプチドフラグメントを含むが、コラーゲンのい
ずれかに制限されない、他の化合物の１種又はそれ以上をさらに含み得る。別の
実施形態において、該薬学組成物は、薬学上許容されるキャリアと一緒に本発明
の新規ラミニンα２ポリペプチド鎖を含む。

【００８９】実質的に精製されたラミニン２を含む薬学調製物は、いずれかの適当な形態で
製造することができ、かつ一般に周知の薬学上許容されるキャリアのいずれかと
の組み合わせにおいて実質的に精製されたラミニン２を含む。該キャリアは、注
射可能なキャリア、局所キャリア、経皮キャリアなどとされ得る。該調製物は有
利には、軟膏、ゲル、クリーム、スプレー、分散物、懸濁物又はペーストのよう
な、局所適用のための形態とし得る。該調製物は、保存料、殺菌剤、抗真菌薬、
抗酸化剤、浸透圧剤、及び通常の組成物及び品質において類似の材料を有利には
さらに含み得る。本発明に従う使用のために好適な溶液は滅菌状態とされ、目的
とする適用のために有害でなく、かつ滅菌のような通常の薬学的処理を受けさせ
ることができ及び／又は保存料、安定化剤、湿潤剤、乳化剤、緩衝剤などのよう
な通常のアジュバントを含み得る。本発明の組成物を処方するために、それはＲ
ｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ，１
５ｔｈＥｄ．，ＭａｃｋＰｕｂｌｉｓｈｉｎｇＣｏ．，Ｅａｓｔｏｎ，Ｐ
ａ．（１９７５）を参照し得る。

【００９０】更なる態様において、本発明は、末梢神経再生、変性筋肉疾患の処置、新脈管
形成の調節、細胞接合と移動の促進、エクスビボ細胞治療、医療装置の生物和合
性の改善、移植片の“受け入れ”の改善、及び実質的に精製されたラミニン２の
有効量、又は望ましい結果のためのその薬学組成物を提供することを含む方法と
キットを提供する。これらの方法の全てにおいて、γ−ラミニン２の使用が好適
である。

【００９１】ここで用いたような、用語“移植片”は、天然及び人工器官の両方、同じく移
植片をさす。

【００９２】末梢神経疾患の処置は、共通の外科手術の問題である。神経疾患は、外傷、慢
性的抑圧、虚血、放射線、治療の誤り及び他の原因から生じ得る。神経が部分的
に又は完全に分裂された疾患の重篤な形態は、現存の治療によって治療すること
は困難か又は不可能である。基底膜ラミニンは、そのような神経疾患に従う軸策
及びシュヴァン細胞を再生するための移動ガイドを提供することにおいて重要な
役割を演じる。成功裏の再生のための予後は、該基底膜が完全性を維持するなら
ば顕著に良好である。

【００９３】最近、作動可能な移植片として基底ラミニン被覆生体材料を用いることの有効
性が２つの実験におけるラットモデルで実証された（Ｋａｕｐｐｉｌａら、Ｅｘ
ｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．１２３：１８１−１９１（１９９３）；Ｔｏｎｇら、Ｂｒａ
ｉｎＲｅｓ．６６３：１５５−１６２）。最初の実験において、ウシ腱コラー
ゲンＩ移植片シートは、巻回した移植片の末端に縫合したラット坐骨神経（取り
出した８ｍｍ）の切断末端で、部分的に精製された非組換えマウスラミニン１を
植え付けた。術後４ヶ月での電気生理学的及び挙動測定による判断として、冒さ
れた脚の機能は、横断した神経セグメントを再生するために均等なレベルでラミ
ニン移植片で再生された（冒されていない対側性の神経に対して〜６０−８０％
）。その著者は、該ラミニン移植片が疼痛の幾らかの徴候が生じたことをさらに
報告した。第２の実験において、著者は精製された、非−組換えラミニンとフィ
ブロネクチンでコラーゲン繊維をコーティングすること、及びコラーゲンスリー
ブ中に修飾した繊維を挿入することによって移植片を作製した。長さ約１ｃｍの
この移植片は、横断した座骨神経の近傍及び末梢末端に再度縫合した。軸策／シ
ュヴァン細胞増殖は、末梢神経基部で最後の再接合を持った移植片を生じた。光
学及び電子顕微鏡によって、必須の構造／細胞要素の再生が移植片材料の最後の
再吸収とともに該移植片で見出された。該ラミニン／フィブロネクチン被覆は、
該コラーゲン繊維単独は神経を再生するために十分でないことから必須であった
。

【００９４】Ｋａｕｐｐｉｌａら及びＴｏｎｇらの実験は、再生における基底膜ラミニン成
分の価値を実証するのみでなく、治療的有効性も実証する。Ｉ型コラーゲンと精
製した胎盤ラミニン（優勢なラミニンＩ）で被覆した凹状神経再生導管を用いる
神経再生のための類似の方法もまた開示されている。（米国特許第５，０１９，
０８７号）したがって、一つの実施形態において、本発明は、神経の再生を促進するため
、実質的に精製されたラミニン２、またはその薬学組成物の有効量で神経移植片
をコーティングすることを含む、末梢神経再生を促進する方法を提供する。ラミ
ニン２は、発育している神経内基底膜及び成熟末梢神経に存在する優勢なラミニ
ンのイソ型であり、かつ神経細胞移動及び再生、軸策成長、稀突起神経膠細胞に
よるミエリン膜形成、およびシュヴァン細胞移動を促進することが示された。（
Ｋａｍｉｇｕｃｈｉら、（１９９８）；ＡｇｉｕｓとＣｏｃｈａｒｄ，Ｊ．Ｎｅ
ｕｒｏｓｃｉ．１８：３２８−３３８（１９９８）；米国特許第５，４４４，１
５８号；Ｂｕｔｔｅｒｙら、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．１４：１９
９−２１２（１９９９）；ＢａｔｅｓとＭｅｙｅｒ，Ｄｅｖｅｌｏｐ．Ｂｉｏｌ
．１８１：９１−１０１（１９９７））。本発明は、神経移植片をコーティング
するための、かつそれによって神経及びシュヴァン細胞移動、軸策移動、ミエリ
ン膜形成、および神経再生を促進する、実質的に精製されたラミニン２、又はそ
の薬学組成物の十分な供給を提供する。該移植片は、神経移植片、又は人工移植
片を含むことができる。生物再吸収及び非再吸収材料の両方は、神経ギャップを
架橋するためのチューブに使用されている。（例えば、Ｎｙｉｌａｓ，ら、（Ｔ
ｒａｎｓ．Ｓｏｃ．Ｂｉｏｍａｔｅｒ．，６，８５，１９８３）、Ｍｏｌａｎｄ
ｅｒ，ら、（Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ，Ｖｏｌ．４，ｐｐ．２７６−２８０，
１９８３年１０月）、Ｃｏｌｉｎ，ら、（ＪｏｕｒｎａｌｏｆＤｅｎｔａｌ
Ｒｅｓｅａｒｃｈ１９８４年７月、ｐｐ．９８７−９９３を参照）。

【００９５】別な実施形態において、γ−ラミニン２は、変性筋肉疾患の治癒を促進するた
めに用いられる。ラミニン２は、筋管生存及び表現型の維持のために重要である
ことが知られる。（Ｖａｃｈｏｎら、Ｊ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．１３４：１４８
３−１４９７（１９９６））。インビトロ実験で部分的に精製されたラミニン２
が筋芽細胞融合及び筋管形成を促進することが実証されている。（Ｖａｃｈｏｎ
ら、Ｊ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．１３４：１４８３−１４９７（１９９６））。イ
ンビボ実験では、一次筋肉細胞移植によってラミニンα２欠損、ＣＭＤ動物モデ
ルにおける部分的なラミニンα２鎖再生が示されている。（Ｖｉｌｑｕｉｎら、
Ｊ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．１３３：１８５−１９７（１９９６））。このように
、γ−ラミニン２、または本発明の新規なラミニンα２鎖を発現する哺乳類細胞
は、ラミニンα２欠損によって特徴付けられる筋ジストロフィーのような変性筋
肉疾患に罹った患者を治療するため、細胞治療用に使用できる。

【００９６】部分的に精製したラミニン２は、各種の細胞型、特に筋肉細胞と神経又は間葉
起源の細胞の移動及び基質への接合を促進することもまた示されている。（米国
特許第５，４４４，１５８号；Ｗｈｉｔｅら、Ａｍ．Ｊ．Ｒｅｓｐ．Ｂｉｏｌ．
２０：７８７−７９６（１９９９）；Ｅｎｇｖａｌｌら、Ｅｘｐ．ＣｅｌｌＲ
ｅｓ．１９８：１１５−１２３（１９９２））このように、別な実施形態において、実質的に精製されたラミニン２、または
その薬学組成物は、医薬装置、組織培養プレート、移植片、及び最初に体外移植
されたヒト組織を維持しかつ外植のための重要なリガンド物質を提供するための
細胞培養培地に添加できる。これは、過去１０年にわたって多くの研究者によっ
て観測されている有効性、すなわち非常に多種の細胞の接着、拡散、増殖、及び
分化した表現型の維持のための至適な表面を提供する基底膜、特にラミニンを提
供する。実質的に精製されたラミニン２のこの特性は、適当なドナーを見出すた
め、及び移植及び身体遺伝子治療のための細胞集団の移植のために実験室で実行
される時点でヒト細胞の維持を許容するため、医療装置の生体和合性を増加する
ために利用できる。エクスビボ治療のための可能性のある標的細胞は、筋肉及び
神経起源の細胞、リンパ球および免疫系の細胞、膵臓小島、甲状腺傍、副腎、下
垂体、肝臓、心筋及び幹細胞を含む。

【００９７】別な実施形態において、本発明は、インビボとエクスビボの両方の細胞と組織
を再生するための方法を提供する。組織操作のための現行のアプローチの多くは
、細胞塊及び組織継代培養に増殖及び分化できる適当な細胞で播種されるコラー
ゲン／ポリマー足場で始められる。これらの方法の進展において、細胞増殖と組
織発育が増加されるであろうとの予測と共に、試みでは細胞の相互作用のために
より自然な表面を提供するためその足場にコーティングが加えられている。実質
的に精製したラミニン２によるこれら材料のコーティングは、正常細胞粘着性、
細胞増殖及び組織発育を促進する自然なリガンド相互作用表面を提供する。この
ように、実質的に精製したラミニン２の有効性は、組織再生行動を顕著に改善す
ることが予期される。

【００９８】ラミニン、またはラミニンを含む細胞抽出物は、二相性手法において新脈管形
成を調節することが示されている。（例えば、Ｎｉｃｏｓｉａら、Ｄｅｖ．Ｂｉ
ｏｌ．１６４：１９７−２０６（１９９４）；Ｂｏｎｆｉｌら、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃ
ａｎｃｅｒ５８：２３３−２３９（１９９４）参照）。より低い濃度で（３０
−３００μｇ／ｍｌ）、ラミニン−エンタクチン複合体は三次元培養において新
脈管形成を刺激し、一方同じ複合体は３０００μｇ／ｍｌで新脈管形成を阻害し
た。したがって、別な態様において、本発明は、新脈管形成を調節するためラミ
ニン２又はその薬学組成物の有効量を組織又は培養基質と接触することを含む、
新脈管形成を調節するための方法を提供する。一つの実施形態において、該ラミ
ニン２は、新脈管形成を促進するためのラミニン２の有効量を組織又は培養基質
と接触することによって新脈管形成を促進するために使用される。別な実施形態
において、該ラミニン２は、新脈管形成を阻害するためのラミニン２の有効量を
組織又は培養基質と接触させることによって、新脈管形成を阻害するために使用
される。新脈管形成を調節するためにラミニン２を接触させる培養基質の実例は
、組織工学の目的のためのそれらである。

【００９９】更なる態様において、本発明は改善された生物和合性を持った医療装置を含み
、該装置は、単独又は装置表面の生物和合性を増加するために用いる他のタンパ
ク質又は薬剤との組み合わせにおいて実質的に精製されたラミニン２、又はその
薬学組成物で被覆される。該被覆された装置は、細胞接合を刺激し、かつ器具の
挿入部位での減少された炎症及び／又は感染を提供する。

【０１００】好ましくは、該装置はステンレス鋼又はチタンのいずれか一方で作られた生物
和合性金属で作られ又は被覆される。代わりに、該装置は、セラミック材料、ま
たはポリエステル、ポリグリコール酸またはポリガラクトース−ポリグリコール
酸共重合体を含むがそれに制限されないポリマーで作られ又は被覆される。

【０１０１】本発明の一つの特有な使用は、標的表面に対する神経、骨格筋、内皮又は間葉
細胞粘着を増加することである。例えば、血管移植及びステントは、内皮細胞接
合を促進するため、および移植片又はステント表面への血小板粘着を最小限にす
るために実質的に精製されたラミニン２でコートされ得る。代わりに、骨又は結
合組織移植片又は人工器官は、適切な細胞型の粘着及び移植の改善された有効性
を刺激するために実質的に精製したラミニン２で被覆され得る。

【０１０２】もし該装置がメッシュ、シート又は織布の形態で天然又は人工の生物和合性材
料で作られるならば、実質的に精製されたラミニン２は、その表面に直接付着し
得る。適当な細胞は、歯科用橋脚歯、針、金属ピン又は棒、留置カテーテル、結
腸瘻チューブ、手術用メッシュ及び実質的に精製したラミニン２によるコーティ
ングが望まれるいずれかの他の装置を含む外植可能な又は移植可能な装置を形成
するためのマトリックス上で培養され得る。代わりに、該装置は移植してよく、
かつ細胞はインビボでの接合を許容してよい。

【０１０３】実質的に精製されたラミニン２のカップリングは、非−共有（吸着によるよう
な）、または共有手段によってなし得る。該装置は、実質的に精製されたラミニ
ン２又はその薬学組成物中に浸漬され、インキュベートされ、またはスプレーさ
れ得る。

【０１０４】実質的に精製された本発明のラミニン２を用いた各種治療用の投薬措置は、損
傷または症状の種類、年齢、体重、性別、個人の医学的症状、症状の重傷度、投
与経路を含む各種の要因に基づく。したがって投与措置は幅広く変化することが
あるが、標準方法を用いる医師によって日常的に決定することができる。ラミニ
ンはきわめて強力な分子であり、細胞当たり１〜数個の分子が効果を生ずること
ができる。それゆえ、送達が最適化されれば、リリットル当たりピコグラムの範
囲で有効な投薬を行える。ラミニンは場合によっては、基底膜において不溶形で
存在し、ラミニンのアイソフォームまたは条件によって、約５０μｇ／ｍｌの低
い濃度で重合することができる。ラミニンは２〜３ｍｇ／ｍｌの濃度でゲルに重
合することも可能である。そのため、約１ｎｇ／ｍｌ〜１０ｍｇ／ｍｌの投薬レ
ベルは本明細書で開示されたすべての方法に有用であり、約１μｇ／ｍｌ〜約３
ｍｇ／ｍｌが好ましい。

【０１０５】本発明は、望ましい装置に適した細胞によってインキュベーションする前に、
装置を実質的に精製されたラミニン２をコーティングすることを含む、（上で開
示した）装置への細胞結合を誘発する方法も提供する。

【０１０６】本発明の別の態様においては、細胞の結合および増殖／分化／停滞を刺激する
ための、実質的に精製されたラミニン２の有効量を細胞に接触させることによっ
て、実質的に精製されたラミニン２を、これに限定されるわけではないが、神経
単位、骨格筋、繊維芽細胞、シュヴァン細胞、間充織起源細胞、内皮細胞などの
細胞を培養するのに用いる。実質的に精製されたラミニン２は、細胞培地中に与
えることも、または細胞培地補足物として与えることも可能であり、あるいは細
胞成長基質の表面をコーティングすることもある。好ましい実施形態において、
方法はさらに細胞を、これに限定されるわけではないが、任意のコラーゲン、他
の種類のラミニン、フィブロネクチン、ビトロネクチン、カドヘリン、エンタク
チン／ニドゲン、αージストログリカン、糖タンパク質、プロテオグリカン、硫
酸ヘパリン、プロテオグリカン、グリコサミノグリカン、上皮成長因子または神
経成長因子およびそのペプチドフラグメントを含む別の化合物に接触させること
を含む。

【０１０７】細胞は一次細胞または細胞培養細胞系を含む。本発明の本態様の方法は、生体
内、生体外または試験管内で使用できる。

【０１０８】好ましい実施形態において、γ−ラミニン２は、基質への細胞吸着を促進し、
細胞の増殖／分化／停止を促進するために、基質表面のコーティングに使用でき
る。本明細書で使用する基質は、望ましいどの基質でもよい。実験室で使用する
ために、基質はガラスやプラスチックなどの簡単なものでよい。生体内では、基
質は細胞成長を維持可能な、任意の生体適合性物質でよい。適切な基質物質は、
コラーゲン、再生コラーゲン、ポリグリコール酸、ポリガラクトース、ポリ乳酸
またはその誘導体などの物質；チタンおよびステンレス鋼などの生体適合性金属
；ヒドロキシアパタイトなどの人工材料を含むセラミック物質、ポリエステルお
よびナイロン；ポリスチレン；ポリアクリル酸塩；ポリテトラフルオロエチレン
を含むポリマーおよび生体分子がただちに付着するその他の物質から作成された
、あるいはそれらでコーティングされた造形品を含む。

【０１０９】別の態様において、本発明は、細胞の結合、次の増殖、分化および停止のため
の細胞培養装置に細胞が付着するために有効な量の実質的に精製されたラミニン
２を与えることによって、培養中の細胞の付着と増殖のための細胞成長基質を提
供する。基質は上述した任意の基質より成る。γ−ラミニン２が、好ましくは約
１ｎｇ／ｍｌ〜約１０ｍｇ／ｍｌ、さらに好ましくは１ｎｇ／ｍｌ〜約１０μｌ
／ｍｌの濃度で基質表面にコーティングされる。

【０１１０】本発明の別の態様において、改良細胞培地が提供され、ここで改良には、細胞
の付着、増殖、分化または停止を促進するために有効な量の実質的に精製された
ラミニン２を細胞培地に添加することを含む。細胞の成長を維持可能などの細胞
培地でも、本発明によって使用できる。このような細胞培地は、これに限定され
るわけではないが、バーゼル培地イーグル、ダルベッコ改良イーグル培地、Ｉｓ
ｃｏｖｅの改良ダルベッコ培地、マッコイ培地、最小必須培地、Ｆ−１０栄養
混合物、Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ（Ｒ）血清低減培地、ＲＰＭＩ培地、マクロファー
ジ−ＳＦＭ培地またはその組合せが含まれる。

【０１１１】改良細胞培地は、濃縮形（すなわち１０Ｘ）または非濃縮形のどちらでも提供
可能であり、液体、粉末または凍結乾燥物のいずれとしても提供できる。細胞培
養は化学的に規定してもよく、血清補足物を含んでいてもよい。細胞培地は、Ｇ
ＩＢＣＯＢＲＬ（メリーランド州ゲティスバーグ）およびＳｉｇｍａ（ミズー
リ州セントルイス）などの多くの供給元から市販されている。別の実施形態にお
いて、γ−ラミニン２は細胞培地補足物として使用される。

【０１１２】本発明は、本明細書に添付された請求項によって定義されるように、単に説明
用に示され、本発明の範囲を制限するものと解釈されるべきではない、添付の実
施例を参照すればさらによく理解できる。

【０１１３】実施例組換えラミニン−２ヒトβ１鎖およびヒトγ鎖の完全に開いた読取枠用のｃＤＮＡコード化につい
て述べられている（Ｋａｌｌｕｎｋｉｅｔａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃ
ｈｅｍ．２６６：２２１−２２８（１９９１）；Ｐｉｋｋａｒａｉｎｅｎｅ
ｔａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６２：１０４５４−１０４６
２（１９８７）；Ｐｉｋｋａｒａｉｎｅｎｅｔａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．
Ｃｈｅｍ．２６３：６７５１−６７５８（１９８８）；Ｐｉｋｋａｒａｉｎ
ｅｎｅｔａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２０９：５７１−
５８２（１９９２））。γ１ｃＤＮＡは、ＦＬＡＧペプチドエピトープタグ（
ＳＥＱＩＤＮＯ：２５）の３’末端（Ｃ−終端末に該当）挿入コード化を含
むように修飾された。完全なヒトラミニンα２ｃＤＮＡは、（Ｅｈｒｉｇｅ
ｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８７：３２６
４−３２６８（１９９０））Ｃ−終端（３’−末端）ｃＤＮＡを用いて、（Ｖｕ
ｏｌｔｅｅｎａｈｏｅｔａｌ．，Ｊ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．１２４：
３８１−３９４（１９９４））で述べられている、大型（開いた読取枠の約２／
３）のｃＤＮＡから作成される。β１、γ１およびα２ｃＤＮＡはそれぞれ、
ｐＣＩＳ（Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ、カリフォルニア州サウスサンフランシスコ）、
ｐＲＣ−ＣＭＶ、およびｐＣＥＰ４（ＩｎＶｉｔｒｏｇｅｎ，Ｉｎｃ．，カ
リフォルニア州カールスバッド）哺乳類発現ベクターに挿入した。それぞれ独立
したプロモータのもとで、ｐＲＣ−ＣＭＶは、ネオ（Ｇ４１８）発現カセットを
含み、ｐＣＥＰ４はピューロマイシン発現カセットを含んでいた。γ１−ＦＬＡ
Ｇ発現ベクターによるヒト胚腎臓２９３細胞（アデノウィルス形質転換、ＡＴＣ
ＣＣＲＬ１５７３）の形質移入は、以前述べたように（Ｙｕｒｃｈｅｎｃｏ
ｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９４：１
０１８９−９４（１９９７））、３５ｍｍプラスチック皿でのリン酸カルシウム
沈殿によって行った。ラミニンγ１発現安定クローンは、Ｇ４１８抗生物質の存
在下で選択された。これらの細胞は、免疫ブロットにおいてラミニンとＦＬＡＧ
特異性抗体の両方と反応したラミニンγ１鎖を発現することがわかっている。こ
のようなクローンの１つは次に、α２とβ１ラミニン鎖の両方についてコード化
する発現ベクターＤＮＡとともに形質移入された。新しいクローンは、Ｇ４１８
＋ピューロマイシンの存在下で選択された。クローン（＃４４と呼ばれる）は、
胎盤ラミニンおよびα２−Ｇ領域、β１鎖およびＦＬＡＧエピトープタグに特異
的なポリクローナル抗体を用いて、３つすべてのラミニン２鎖を発現すると判定
された（Ｃｈｅｎｇｅｔａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７２
：３１５２５−３２（１９９７）；Ｒａｍｂｕｋｋａｎａｅｔａｌ．，Ｃ
ｅｌｌ８８：８１１−８２１（１９９７））。このクローンは組織培養でも伸
長する。調整された血清含有培地を回収し、分泌されたタンパク質を精製するた
めにプールした。

【０１１４】組換えラミニン２の精製１００ｍｌのプールされた調整培地のための手順を述べる。精製は涼しい室内
で４〜１０℃にて実施した。小型のカラムに２ｍｌのヘパリン−セファロース４
Ｂビードを詰め、水で２：１に希釈したＴｒｉｓ緩衝液で平衡にした（５０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、１ＭＭＥＤＴＡおよび０．１ｍＭＰＭ
ＳＦを含む）。培地はカラムを通過させた。カラムを次に数倍量のＴｒｉｓ緩衝
液で洗浄して、ＮａＣｌ濃度を低下させた。１ｍｌの抗ＦＬＡＧＭ２アガロー
ス親和性ゲル懸濁液（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ、ミズーリ州セントルイス）
を調製物に添加し、ＦＬＡＧエピトープタグを含む組換えタンパク質を吸収させ
るのに用いた。Ｔｒｉｓ緩衝液で５回洗浄した後、（１ｍｌ当たり）０．１ｍｇ
のＦＬＡＧペプチド（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）を添加して、ビードから組
換えラミニンタンパク質を溶離させた。スピンカラムによって、タンパク質から
ペプチドが遊離された。組換えタンパク質はＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電
気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）（図１）、免疫ブロット法、Ｐｔ／Ｃロータリーシ
ャドウ電子顕微鏡（図２）によって特徴付けられる。

【０１１５】調整培地からの組換えラミニン２の回収量は、６μｇ／ｍｌの精製タンパク質
であった（１００ｍｌバッチ調製物から決定）。組換えラミニンには、３個のＣ
ｏｏｍａｓｓｉｅブルー染色バンドがあり、大きい方のバンドはα２サブユニッ
トに相当する（図１）。通常見られるのは、一部の未処理（すなわち未開裂）α
２鎖である。開裂鎖は高分子量バンド（約３００ｋＤａ）と７５ｋＤａバンドを
含み、後者は予測されたＧフラグメントであった（Ｃｈｅｎｇｅｔａｌ．，
Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７２：３１５２５−３２（１９９７）。ラ
ミニン２の２種類の形は、ヘパリン親和性クロマトグラフィーから分離できる。

【０１１６】図２は、０．１５Ｍ重炭酸アンモニウム中に透析し、グリセロール：培養液
の最終比が６：４になるようにグリセロールと混合し、新たに割ったマイカに噴
霧した、精製γ−ラミニン２の電子顕微鏡写真である。サンプルをＢａｌｚａｒ
ｓＢＡＦ−５００Ｋフリーズエッチ装置中に排出し、述べたように０．９ｎｍ
Ｐｔ／Ｃによって８°の角度でロータリーシャドーした（Ｙｕｒｃｈｅｎｃｏ
ｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．ＡｃａｄＳｃｉ．９４：１０
１８９−９４（１９９７））。図からわかるように、γ−ラミニン２は、内在的
に発現されるラミニン分子によく見られる十字形構造を示す。

【０１１７】機能的データ組換えラミニン２は、共重合アッセイにおいて自己集合活性を持つことがわか
っている（図３）。γ−ラミニン２の一定のわずかな量を、（それぞれ少量のウ
シ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含む）別々の管において、ラミニン１の濃度を増
加させて混合し、述べられているように３７℃でインキュベートした（Ｃｈｅｎ
ｇｅｔａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７２：３１５２５−３
２（１９９７）。インキュベート混合物は次に遠心分離して、上澄（Ｓ）および
ポリマーペレット（Ｐ）画分を得た。ＦＬＡＧ特異性抗体によって、ラミニン２
が検出された。さらに高い濃度では、ペレット画分で多くのラミニン２画分が得
られ、これはラミニン型重合の証拠である。

【０１１８】 γ−ラミニン２はＣ２Ｃ１２の付着と広がりを維持することもわかったが（図
４）、ＨＴ１０８０線維肉腫については維持しない（データは示していない）。
培養筋芽細胞を、あらかじめ２つのγ−ラミニン２（左の２本の棒）、あるいは
Ｇ領域に各種欠失があるγ−ラミニン２でコーティングした９６ウェル培養皿に
、すべて５μｇ／ｍｌの濃度で添加した。（α７β１インテグリン結合部位を含
む）Ｇ１−３サブ領域、または（デストログリカン部位も除去する）Ｇすべての
欠失は、結合を大幅に減少させる。

【０１１９】ヒトラミニンα２ポリヌクレオチドおよびポリペプチド我々は、ヒトラミニンα２核酸およびタンパク質配列の公表された配列（Ｅｈ
ｒｉｇｅｔａｌ．，ＰＮＡＳ８７：３２６４−３２６８（１９９０））
が正しくないと判定した。核酸配列の３’末端付近に位置する、誤って欠落され
たＧ塩基は、早期に切断されたラミニンアルファ２−Ｇ領域の予測につながる。
α２鎖タンパク質の正しいアミノ酸配列は、図５に示す。

【０１２０】誤った配列の最も深刻な結果の１つは、Ｇ領域の末端が、各種ラミニンで保存
されているシステイン残基を欠くと予測されていて、本明細書に示した正しい配
列には存在していることである。このシステインは、Ｇ領域における別のシステ
インと対となり、タンパク質立体配座に関して重要である。さらに、正しい配列
が用いられる場合、見かけ上のＣ末端に配置されるエピトープタグは実際に枠外
となるため、エピトープタグは機能しない。

【０１２１】本発明は上記の特定の好ましい実施形態によって制限されない。当業熟練者は
、本発明の概念から逸脱せずに、開示した好ましい実施形態に対する各種の変更
を思いつくであろう。このような変更はすべて、本発明の範囲内とする。

【配列表】

【図面の簡単な説明】

【図１】ラミニン１と比較した組換えラミニン２のクーマシーブルー染色ＳＤＳ−ポリ
アクリルアミドゲルの写真である。

【図２】精製組換えラミニン２の電子顕微鏡写真である。

【図３】ラミニン２の共重合を示す免疫ブロットである。

【図４】組換えラミニン２に対するＣ２Ｃ１２筋芽細胞の密着を示すグラフである。

【図５】ラミニンα２ｃＤＮＡの正しい配列および演繹アミノ酸配列を示す。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ａ６１Ｐ 21/00 Ｃ０７Ｋ 14/78 ４Ｃ０８７ 25/00 Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ４Ｈ０４５Ｃ０７Ｋ 14/78 Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡＣ１２Ｎ 5/10 5/00 ＢＣ１２Ｐ 21/02 Ａ６１Ｋ 37/02 (31)優先権主張番号６０／１４３，２８９ (32)優先日平成11年７月12日(1999．7．12) (33)優先権主張国米国（ＵＳ） (31)優先権主張番号６０／１５５，９４５ (32)優先日平成11年９月24日(1999．9．24) (33)優先権主張国米国（ＵＳ） (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ，ＵＧ，ＺＷ )，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＲ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＤＭ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＡ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＴＺ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＡ，ＺＷ (72)発明者ユルチェンコ、ピーターアメリカ合衆国 08854−5635 ニュージャージー州ピスカタウェイホウズレーン 675 ユニヴァースティオブメディシンアンドデンティストリーオブニュージャージーロバートウッドジョンソンメディカルスクールＦターム(参考） 4B024 AA01 BA80 CA01 DA02 GA11 HA03 4B064 AG01 CA10 CA19 CC24 CE12 DA01 4B065 AA90X AA90Y AB01 AC12 AC14 BA02 BD14 CA24 CA44 4C081 AA01 AB01 AB11 AB31 BA13 CD111 4C084 AA02 AA06 AA07 AA13 BA44 CA53 NA14 ZA011 ZA012 ZA941 ZA942 ZC611 ZC612 4C087 AA02 AA05 BB65 NA14 ZA01 ZA94 ZC61 4H045 AA10 AA20 AA30 CA40 DA50 EA21 EA23 EA34 FA74 GA26

Claims

【特許請求の範囲】

【請求項１】実質的に精製されたラミニン２。
【請求項２】組換えラミニン２を含む、請求項１に記載の実質的に精製さ
れたラミニン２。
【請求項３】 α２ラミニン鎖に実質的に類似したポリピプチドを含む第一
鎖； β１ラミニン鎖に実質的に類似したポリペプチドを含む第二鎖；および γ１ラミニン鎖に実質的に類似したポリペプチドを含む第三鎖を含み、この第一、第二および第三鎖を組合わせて組換えヘテロ三量体ラミニン２にす
る、請求項２に記載の実質的に精製された組換えラミニン２。
【請求項４】高厳密度条件のもとで、配列番号：１、３、５、７、９、１
１またはそれらの断片の一つ以上のコード領域へのハイブリッド形成を行うポリ
ヌクレオチドによってコード化された第一鎖；高厳密度条件のもとで、配列番号：１３、１５、１７、１９またはそれらの断
片の一つ以上のコード領域へのハイブリッド形成を行うポリヌクレオチドによっ
てコード化された第二鎖；および高厳密度条件のもとで、配列番号：２１、２３、２５、２７、２９、３１また
はそれらの断片の一つ以上のコード領域へのハイブリッド形成を行うポリヌクレ
オチドによってコード化された第三鎖を含み、この第一、第二および第三鎖を組合わせて組換えヘテロ三量体ラミニン２にす
る、請求項２に記載の実質的に精製された組換えラミニン２。
【請求項５】配列番号：２、４、６、８、１０、１２またはそれらの断片
の一つ以上と少なくとも７０％は同一であるポリペプチドを含む第一鎖；配列番号：１４、１６、１８、２０またはそれらの断片の一つ以上と少なくと
も７０％は同一であるポリペプチドを含む第二鎖；および配列番号：２２、２４、２６、２８、３０、３２またはそれらの断片の一つ以
上と少なくとも７０％は同一であるポリペプチドを含む第三鎖を含み、この第一、第二および第三鎖を組合わせて組換えヘテロ三量体ラミニン２にす
る、請求項２に記載の実質的に精製された組換えラミニン２。
【請求項６】第一、第二および第三ポリペプチド鎖を含み、この第一、第二および第三ポリペプチド鎖が、（１）Ｒ１−Ｒ２−Ｒ３；（２
）Ｒ１−Ｒ２−Ｒ３（ｅ）；（３）Ｒ３；（４）Ｒ３（ｅ）；（５）Ｒ１−Ｒ３
；（６）Ｒ１−Ｒ３（ｅ）；（７）Ｒ２−Ｒ３；および（８）Ｒ２−Ｒ３（ｅ）
（ここで、Ｒ１は、アミノ末端メチオニンであり；Ｒ２は、ポリペプチドの分泌
の方向を定めることができるシグナル配列であり、このシグナル配列は、別の分
泌タンパク質の特定のラミニン鎖についての自然シグナル配列であってもよいし
、または人工配列であってもよく；Ｒ３は、第一ポリペプチド鎖についての分泌
α２ラミニン鎖、第二ポリペプチド鎖についての分泌β１ラミニン鎖、および第
三ポリペプチド鎖についてのγ１ラミニンであり；およびＲ３（ｅ）は、Ｒ３と
同一であるが、エピトープ標識をさらに含む）から成る群から選択される一般構造を各々含む、請求項２に記載の実質的に精製
された組換えラミニン２。
【請求項７】組換えラミニン２を発現する宿主細胞。
【請求項８】細胞が、ラミニンα２ポリペプチドに実質的に類似した組換えポリペプチドを含む第一
鎖；ラミニンβ１ポリペプチド配列に実質的に類似した組換えポリペプチドを含む
第二鎖；およびラミニンγ１ポリペプチド配列に実質的に類似した組換えポリペプチドを含む
第三鎖を含む組換えラミニン２を発現し、この細胞が、第一、第二および第三鎖を発現し、この第一、第二および第三鎖
を組合わせて組換えラミニン２にし、これが培養細胞によって培地に分泌される
、請求項７に記載の組換えラミニン２を発現する宿主細胞。
【請求項９】細胞が、高厳密度条件もとで、配列番号：１、３、５、７、９、１１またはそれらの断
片の一つ以上のコード領域へのハイブリッド形成を行うポリペプチドによってコ
ード化された第一鎖；高厳密度条件もとで、配列番号：１、１５、１７、１９またはそれらの断片の
一つ以上のコード領域へのハイブリッド形成を行うポリペプチドによってコード
化された第二鎖；および高厳密度条件もとで、配列番号：２１、２３、２５、２７、２９、３１または
それらの断片の一つ以上のコード領域へのハイブリッド形成を行うポリペプチド
によってコード化された第三鎖を含む組換えラミニン２を発現し、この細胞が、第一、第二および第三鎖を発現し、この第一、第二および第三鎖
を組合わせて組換えラミニン２にし、これが培養細胞によって培地に分泌される
、請求項７に記載の組換えラミニン２を発現する宿主細胞。
【請求項１０】細胞が、配列番号：２、４、６、８、１０、１２またはそれらの断片の一つ以上と少な
くとも７０％は同一であるポリペプチドを含む第一鎖；配列番号：１４、１６、１８、２０またはそれらの断片の一つ以上と少なくと
も７０％は同一であるポリペプチドを含む第二鎖；および配列番号：２２、２４、２６、２８、３０、３２またはそれらの断片の一つ以
上と少なくとも７０％は同一である組換えポリペプチドを含む第三鎖を含む組換
えラミニン２を発現し、この細胞が、第一、第二および第三鎖を発現し、この第一、第二および第三鎖
を組合わせて組換えラミニン２にし、これが培養細胞によって培地に分泌される
、請求項７に記載の組換えラミニン２を発現する宿主細胞。
【請求項１１】細胞が、第一、第二および第三ポリペプチド鎖を含む組換
えラミニン２を発現し、この第一、第二および第三ポリペプチド鎖が、（１）Ｒ１−Ｒ２−Ｒ３；（２
）Ｒ１−Ｒ２−Ｒ３（ｅ）；（３）Ｒ３；（４）Ｒ３（ｅ）；（５）Ｒ１−Ｒ３
；（６）Ｒ１−Ｒ３（ｅ）；（７）Ｒ２−Ｒ３；および（８）Ｒ２−Ｒ３（ｅ）
（ここで、Ｒ１は、アミノ末端メチオニンであり；Ｒ２は、ポリペプチドの分泌
の方向を定めることができるシグナル配列であり、このシグナル配列は、別の分
泌タンパク質の特定のラミニン鎖についての自然シグナル配列であってもよいし
、または人工配列であってもよく；Ｒ３は、第一ポリペプチド鎖についての分泌
α２ラミニン鎖、第二ポリペプチド鎖についての分泌β１ラミニン鎖、および第
三ポリペプチド鎖についてのγ１ラミニンであり；およびＲ３（ｅ）は、Ｒ３と
同一であるが、エピトープ標識をさらに含む）から成る群から選択される一般構造を各々含む、請求項７組換えラミニン２を発
現する宿主細胞。
【請求項１２】宿主細胞が哺乳動物細胞である、請求項７〜１１のいずれ
かに記載の宿主細胞。
【請求項１３】第一、第二または第三鎖の少なくとも一つがエピトープ標
識を有する融合タンパク質として発現される、請求項１２に記載の宿主細胞。
【請求項１４】ａ．請求項１２に記載の宿主細胞を提供すること；ｂ．細胞培地中、組換えラミニン２鎖の発現を誘導する条件のもとで、細胞を
増殖させること；ｃ．細胞培地をアフィニティークロマトグラフィカラム（このカラムは、組換
えラミニン２と結合する化合物を収容している）に通すこと；ｄ．アフィニティーカラムを洗浄して、非結合材料を除去すること；およびｅ．カラムから結合組換えラミニン２を溶離することを含む、組換えラミニン２を精製する方法。
【請求項１５】請求項１４の方法に従って単離した実質的に精製された組
換えラミニン２。
【請求項１６】ａ．ラミニン２；およびｂ．製薬上許容され得る担体を含む医薬品組成物。
【請求項１７】ラミニン２が組換えラミニン２を含む、請求項１６に記載
の医薬品組成物。
【請求項１８】その必要がある哺乳動物に、神経再生を促進するために有
効な量の請求項１〜５および１５のいずれかに記載のラミニン２を投与すること
を含む、哺乳動物の神経再生を促進する方法。
【請求項１９】その必要がある組織と、脈管形成を調節するために有効な
量の請求項１〜５および１５のいずれかに記載のラミニン２とを接触させて、脈
管形成を調節することを含む、脈管形成を調節するための方法。
【請求項２０】医療用具と、医療用具の生体適合性を改善するために有効
な量の請求項１〜５および１５のいずれかに記載のラミニン２とを接触させるこ
とを含む、医療用具の生体適合性を改善するための方法。
【請求項２１】医療用具の生体適合性を改善するために有効な量の請求項
１〜５および１５のいずれかに記載のラミニン２を有する医療用具を含む、改善
された医療用具。
【請求項２２】細胞と、表面への細胞接着を促進するために有効な量の請
求項１〜５および１５のいずれかに記載のラミニン２とを接触させることを含む
、表面への細胞接着を促進するための方法。
【請求項２３】改善が、細胞増殖表面への細胞付着を促進するために有効
な量の請求項１〜５および１５のいずれかに記載のラミニン２で被覆された細胞
増殖表面を提供することから成る、改善された細胞増殖表面。
【請求項２４】その必要がある哺乳動物に、神経再生を促進するために有
効な量の請求項１６または１７に記載の医薬品組成物を投与することを含む、哺
乳動物の神経再生を促進するための方法。
【請求項２５】その必要がある組織と、脈管形成を調節するために有効な
量の請求項１６または１７に記載の医薬品組成物とを接触させることを含む、脈
管形成を調節するための方法。
【請求項２６】医療用具と、医療用具の生体適合性を改善するために有効
な量の請求項１６または１７に記載の医薬品組成物とを接触させることを含む、
医療用具の生体適合性を改善するための方法。
【請求項２７】医療用具の生体適合性を改善するために有効な量の請求項
１６または１７に記載の医薬品組成物を有する医療用具を含む、改善された医療
用具。
【請求項２８】細胞と、表面への細胞接着を促進するために有効な量の請
求項１６または１７に記載の医薬品組成物とを接触させることを含む、表面への
細胞接着を促進するための方法。
【請求項２９】改善が、細胞増殖表面への細胞付着を促進するために有効
な量の請求項１６または１７に記載の医薬品組成物で被覆された細胞増殖表面を
提供することから成る、改善された細胞増殖表面。
【請求項３０】配列番号１に示す配列から本質的に成る単離された組替え
ラミニンα２鎖ポリヌクレオチド。
【請求項３１】配列番号２に示す配列から本質的に成る実質的に精製され
たラミニンα２鎖ポリペプチド。
【請求項３２】配列番号１のポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
【請求項３３】請求項３２の発現ベクターを用いてトランスフェクション
される宿主細胞。
【請求項３４】請求項７〜１３および３３のいずれかに記載の宿主細胞を
その必要がある哺乳動物に投与することを含み、この宿主細胞が、変性筋肉異常を治療するために有効な量の組換えラミニン２
または組換えラミニンα２鎖ポリペプチドを分泌する、哺乳動物の変性筋肉異常
を治療するための方法。