JP2002539765A - 糞便サンプル調製のための方法 - Google Patents
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Abstract
(57)【要約】
本発明は、関連するDNAの収率を増加させるための糞便サンプルの調製のための方法を提供し、さらに結腸直腸癌を示す特徴に関して標的DNAを単離および分析するための方法を提供する。癌性結腸直腸病巣または前癌性結腸直腸病巣の存在について患者をスクリーニングするための方法もまた、提供される。好ましい実施形態では、本発明の方法は、代表的な糞便サンプルを溶媒中でホモジナイズして、少なくとも5:1の溶媒体積の糞便質量に対する比を有するホモジナイズされたサンプル混合物を形成する工程、次いで標的(ヒト)DNAに関してホモジナイズされたサンプルを濃縮する工程を包含する。
Description
【0001】 (関連出願) 本願は、1997年6月15日に出願された米国特許出願番号08/876,
638の一部継続出願である。
638の一部継続出願である。
【0002】 (発明の分野) 本発明は、患者における結腸癌を早期検出するための方法、より詳細には、核
酸の収率を増加させるための糞便サンプルを調製するための方法に関する。
酸の収率を増加させるための糞便サンプルを調製するための方法に関する。
【0003】 (発明の背景) 糞便サンプルは頻繁に、医学的な診断分析のために調製されなければならない
。糞便サンプルは、寄生虫感染、細菌感染または細菌感染から炎症性腸疾患およ
び結腸直腸癌の範囲である医学的状態の診断のために分析され得る。
。糞便サンプルは、寄生虫感染、細菌感染または細菌感染から炎症性腸疾患およ
び結腸直腸癌の範囲である医学的状態の診断のために分析され得る。
【0004】 結腸直腸癌は、西側社会では死亡の主な原因である。しかし、早期に診断され
た場合、癌性組織の除去により効果的に処置され得る。結腸直腸癌は、結腸直腸
上皮に由来し、代表的には、発生の初期段階の間は、広範囲には血管化されない
(そして従って、侵襲性ではない)。結腸直腸癌は、結腸または直腸の上皮内層
の単一変異細胞のクローン増殖から生じると考えられる。身体中に広がる高度に
血管化した、侵襲性、および最終的には転移性の癌への遷移は、通常、十年以上
かかる。癌が侵襲性の前に検出される場合、癌性組織の外科的な除去は、効果的
な治療である。しかし、結腸直腸癌は、疼痛および黒タール様便のような臨床的
な症状の発現の際にのみ、しばしば検出される。一般的に、そのような症状は、
疾患が十分に確立され、そしてしばしば転移が起こった後の場合のみに存在する
。従って、結腸直腸癌の早期の検出は、その罹患率を有意に減少させるために重
要である。
た場合、癌性組織の除去により効果的に処置され得る。結腸直腸癌は、結腸直腸
上皮に由来し、代表的には、発生の初期段階の間は、広範囲には血管化されない
(そして従って、侵襲性ではない)。結腸直腸癌は、結腸または直腸の上皮内層
の単一変異細胞のクローン増殖から生じると考えられる。身体中に広がる高度に
血管化した、侵襲性、および最終的には転移性の癌への遷移は、通常、十年以上
かかる。癌が侵襲性の前に検出される場合、癌性組織の外科的な除去は、効果的
な治療である。しかし、結腸直腸癌は、疼痛および黒タール様便のような臨床的
な症状の発現の際にのみ、しばしば検出される。一般的に、そのような症状は、
疾患が十分に確立され、そしてしばしば転移が起こった後の場合のみに存在する
。従って、結腸直腸癌の早期の検出は、その罹患率を有意に減少させるために重
要である。
【0005】 内視鏡的検査のような侵襲的な診断方法は、潜在的に癌性増殖の直接的な目視
同定、除去、および生検を可能にする。内視鏡は、高価で、不快で、本質的に危
険であり、従って、結腸直腸癌を有する集団を同定するために集団をスクリーニ
ングするための実用的な手段ではない。結腸直腸癌または結腸直腸前癌の存在を
示す特徴についての糞便サンプルの非侵襲的分析は、早期診断に関して好ましい
代替法であるが、この目的を信頼性良く達成する公知の診断方法は、利用可能で
はない。
同定、除去、および生検を可能にする。内視鏡は、高価で、不快で、本質的に危
険であり、従って、結腸直腸癌を有する集団を同定するために集団をスクリーニ
ングするための実用的な手段ではない。結腸直腸癌または結腸直腸前癌の存在を
示す特徴についての糞便サンプルの非侵襲的分析は、早期診断に関して好ましい
代替法であるが、この目的を信頼性良く達成する公知の診断方法は、利用可能で
はない。
【0006】 現在の非侵襲的スクリーニング方法は、糞便の潜血の存在について、または癌
胎児性抗原の上昇したレベルについて糞便サンプルをアッセイする工程を包含し
、その両方は、結腸直腸癌の存在を示唆する。さらに、分子生物学の最近の発展
は、結腸直腸癌を示すある範囲のDNA変異または変化の存在を検出する可能性
の大きい方法を提供する。そのような変異の存在は、結腸直腸癌の種々の段階中
の糞便サンプル中で見出されるDNAにおいて検出され得る。しかし、糞便は、
患者由来、微生物由来、および食物由来の細胞および細胞の細片を含み、不均質
な細胞集団を生じる。これは、小規模の特異的な部分集団の検出が信頼性良く検
出されることを困難にする。
胎児性抗原の上昇したレベルについて糞便サンプルをアッセイする工程を包含し
、その両方は、結腸直腸癌の存在を示唆する。さらに、分子生物学の最近の発展
は、結腸直腸癌を示すある範囲のDNA変異または変化の存在を検出する可能性
の大きい方法を提供する。そのような変異の存在は、結腸直腸癌の種々の段階中
の糞便サンプル中で見出されるDNAにおいて検出され得る。しかし、糞便は、
患者由来、微生物由来、および食物由来の細胞および細胞の細片を含み、不均質
な細胞集団を生じる。これは、小規模の特異的な部分集団の検出が信頼性良く検
出されることを困難にする。
【0007】 ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)の使用は、核酸の検出をより慣用的にしたが
、いずれのPCRも、サンプル中のDNAの存在量により制限される。最小限の
物質の量が、特異的分析のために提示されなければならず、そしてサンプル中の
他の核酸に対して低い比率でサンプル中に提示される核酸を検出することを望む
場合(それはしばしば、結腸直腸癌のDNA特徴を検出するために糞便サンプル
を分析する場合である)、この制限はより関連する。低頻度の変異鎖が、PCR
の最初の数回において増幅されない場合、より後の回において変異鎖から得られ
る任意のシグナルは、バックグラウンドにより、または遍在性の野生型鎖の増幅
由来のシグナルと競合することにより不明瞭である。
、いずれのPCRも、サンプル中のDNAの存在量により制限される。最小限の
物質の量が、特異的分析のために提示されなければならず、そしてサンプル中の
他の核酸に対して低い比率でサンプル中に提示される核酸を検出することを望む
場合(それはしばしば、結腸直腸癌のDNA特徴を検出するために糞便サンプル
を分析する場合である)、この制限はより関連する。低頻度の変異鎖が、PCR
の最初の数回において増幅されない場合、より後の回において変異鎖から得られ
る任意のシグナルは、バックグラウンドにより、または遍在性の野生型鎖の増幅
由来のシグナルと競合することにより不明瞭である。
【0008】 結腸直腸癌の検出のための糞便サンプルの調製において遭遇するさらなる問題
は、糞便から十分な量の関連するDNAを抽出することの困難性である。糞便サ
ンプルは、慣用的に細胞細片、酵素、細菌(および関連した核酸)、および伝統
的なDNA抽出手順を妨害し得、そしてDNA収率を減少させ得る種々の他の化
合物を含む。さらに、糞便中のDNAは、しばしば消化されているかまたは部分
的に消化されているようであり、これは抽出方法の効率を減少させ得る。
は、糞便から十分な量の関連するDNAを抽出することの困難性である。糞便サ
ンプルは、慣用的に細胞細片、酵素、細菌(および関連した核酸)、および伝統
的なDNA抽出手順を妨害し得、そしてDNA収率を減少させ得る種々の他の化
合物を含む。さらに、糞便中のDNAは、しばしば消化されているかまたは部分
的に消化されているようであり、これは抽出方法の効率を減少させ得る。
【0009】 (発明の要旨) 糞便サンプルからの核酸の収率が、サンプル中の糞便質量に対して最適な比の
溶媒体積を提供することにより増加することは、現在、認識されている。従って
、本発明は、サンプルの核酸収率を増加させるための糞便サンプル調製プロトコ
ールを提供する。
溶媒体積を提供することにより増加することは、現在、認識されている。従って
、本発明は、サンプルの核酸収率を増加させるための糞便サンプル調製プロトコ
ールを提供する。
【0010】 好ましい実施形態では、本発明の方法は、代表的な糞便サンプルを溶媒中でホ
モジナイズして、少なくとも5:1の溶媒体積の糞便質量に対する比を有するホ
モジナイズされたサンプル混合物を形成する工程、次いで標的(ヒト)DNAに
関してホモジナイズされたサンプルを濃縮する工程を包含する。次いで、ヒトD
NAは、疾患の特徴について分析され得る。溶媒体積の糞便質量に対する適切な
比を提供することは、そのサンプルから得られる核酸の収率を増加させる。溶媒
体積の糞便質量に対する特に好ましい比は、約10:1と約30:1との間であ
り、より好ましくは、約10:1から約20:1までであり、そして最も好まし
くは、10:1である。
モジナイズして、少なくとも5:1の溶媒体積の糞便質量に対する比を有するホ
モジナイズされたサンプル混合物を形成する工程、次いで標的(ヒト)DNAに
関してホモジナイズされたサンプルを濃縮する工程を包含する。次いで、ヒトD
NAは、疾患の特徴について分析され得る。溶媒体積の糞便質量に対する適切な
比を提供することは、そのサンプルから得られる核酸の収率を増加させる。溶媒
体積の糞便質量に対する特に好ましい比は、約10:1と約30:1との間であ
り、より好ましくは、約10:1から約20:1までであり、そして最も好まし
くは、10:1である。
【0011】 本発明に従って糞便サンプルを調製するための好ましい溶媒は、Tris−E
DTA−NaClを含む緩衝液のような生理学的に適合性の緩衝液である。好ま
しい緩衝液は、約pH9.0で、約50mM〜約100mMのTris、約10
mM〜約20mMのEDTA、および約5mM〜約15mMのNaClを含むT
ris−EDTA−NaCl緩衝液である。特に好ましい緩衝液は、pH9.0
で、50mM Tris、16mM EDTAおよび10mM NaClである
。別の好ましい溶媒は、グアニジンイソチオシアネート(GITC)である。好
ましいGITC緩衝液は、約1M〜約5Mの濃度を有する。特に好ましいGIT
C緩衝液は、約3Mの濃度を有する。
DTA−NaClを含む緩衝液のような生理学的に適合性の緩衝液である。好ま
しい緩衝液は、約pH9.0で、約50mM〜約100mMのTris、約10
mM〜約20mMのEDTA、および約5mM〜約15mMのNaClを含むT
ris−EDTA−NaCl緩衝液である。特に好ましい緩衝液は、pH9.0
で、50mM Tris、16mM EDTAおよび10mM NaClである
。別の好ましい溶媒は、グアニジンイソチオシアネート(GITC)である。好
ましいGITC緩衝液は、約1M〜約5Mの濃度を有する。特に好ましいGIT
C緩衝液は、約3Mの濃度を有する。
【0012】 好ましい実施形態ではまた、方法は、例えば、標的ヒトDNAにハイブリダイ
ズする配列特異的な核酸プローブを用いて、ホモジナイズされたサンプル混合物
をヒトDNAに関して濃縮する工程をさらに包含する。
ズする配列特異的な核酸プローブを用いて、ホモジナイズされたサンプル混合物
をヒトDNAに関して濃縮する工程をさらに包含する。
【0013】 代替的な好ましい実施形態において、本発明の方法は、DNAについて生理学
的に受容可能な溶媒中で糞便サンプルをホモジナイズして、少なくとも5:1の
溶媒体積の糞便質量に対する比を有するホモジナイズされたサンプル混合物を形
成する工程;ホモジナイズされたサンプルが、少なくとも最小数Nの総DNA分
子を有することを確認して、低頻度の標的DNA分子の検出を容易にする工程;
および、好ましくはポリメラーゼ連鎖反応を用いて標的DNAを増幅することに
より、疾患の特徴に関して標的DNAを分析する工程を包含する。
的に受容可能な溶媒中で糞便サンプルをホモジナイズして、少なくとも5:1の
溶媒体積の糞便質量に対する比を有するホモジナイズされたサンプル混合物を形
成する工程;ホモジナイズされたサンプルが、少なくとも最小数Nの総DNA分
子を有することを確認して、低頻度の標的DNA分子の検出を容易にする工程;
および、好ましくはポリメラーゼ連鎖反応を用いて標的DNAを増幅することに
より、疾患の特徴に関して標的DNAを分析する工程を包含する。
【0014】 別の実施形態においては、本発明は、糞便から抽出されたDNAを分析するた
めの方法を提供し、この方法は、DNAについての溶媒中で糞便サンプルをホモ
ジナイズして、少なくとも5:1の溶媒体積の糞便質量に対する比を有するホモ
ジナイズされたサンプル混合物を形成する工程;ホモジナイズされたサンプルを
ヒトDNAに関して濃縮する工程;ホモジナイズされ濃縮されたサンプルが、少
なくとも最小数Nの総DNA分子を有することを確認して、低頻度の標的DNA
分子の検出を与える工程;および疾患を示すDNA特徴に関して標的DNAを分
析する工程を包含する。
めの方法を提供し、この方法は、DNAについての溶媒中で糞便サンプルをホモ
ジナイズして、少なくとも5:1の溶媒体積の糞便質量に対する比を有するホモ
ジナイズされたサンプル混合物を形成する工程;ホモジナイズされたサンプルを
ヒトDNAに関して濃縮する工程;ホモジナイズされ濃縮されたサンプルが、少
なくとも最小数Nの総DNA分子を有することを確認して、低頻度の標的DNA
分子の検出を与える工程;および疾患を示すDNA特徴に関して標的DNAを分
析する工程を包含する。
【0015】 本発明の方法は、結腸直腸癌を示す核酸の糞便サンプル中での存在についてス
クリーニングすることに有用である。このような方法は、代表的な糞便サンプル
(すなわち、少なくとも断面)を得る工程;少なくとも5:1の溶媒体積の糞便
質量に対する比を有する溶媒中でサンプルをホモジナイズする工程;サンプルを
標的ヒトDNAに関して濃縮する工程;および結腸直腸癌の特徴に関してDNA
を分析する工程を包含する。本発明書中で参考として援用される共有に係る同時
係属中の米国特許出願番号08/700,583において開示された方法のよう
なDNA特徴の種々の分析方法が存在する、。
クリーニングすることに有用である。このような方法は、代表的な糞便サンプル
(すなわち、少なくとも断面)を得る工程;少なくとも5:1の溶媒体積の糞便
質量に対する比を有する溶媒中でサンプルをホモジナイズする工程;サンプルを
標的ヒトDNAに関して濃縮する工程;および結腸直腸癌の特徴に関してDNA
を分析する工程を包含する。本発明書中で参考として援用される共有に係る同時
係属中の米国特許出願番号08/700,583において開示された方法のよう
なDNA特徴の種々の分析方法が存在する、。
【0016】 本発明の方法はまた、糞便の代表的な(すなわち、断面の)サンプルを得る工
程、ならびに界面活性剤およびプロテイナーゼおよび必要に応じてDNaseイ
ンヒビターを含む緩衝液のような緩衝液中で糞便サンプルをホモジナイズする工
程を包含する。
程、ならびに界面活性剤およびプロテイナーゼおよび必要に応じてDNaseイ
ンヒビターを含む緩衝液のような緩衝液中で糞便サンプルをホモジナイズする工
程を包含する。
【0017】 本発明の方法は、代表的な糞便サンプル中の形質転換された細胞の部分集団を
示すDNA特徴を検出するために、特におよび最も好ましく有用である。そのD
NA特徴は、例えば、点変異を含む変異、欠失、付加、転座、置換、およびヘテ
ロ接合性の喪失であり得る。本発明の方法は、さらに結腸の目視検査を含み得る
。最終的に、異常な組織の外科的な切除は、癌性組織または前癌性組織の広がり
を妨げるために行われ得る。
示すDNA特徴を検出するために、特におよび最も好ましく有用である。そのD
NA特徴は、例えば、点変異を含む変異、欠失、付加、転座、置換、およびヘテ
ロ接合性の喪失であり得る。本発明の方法は、さらに結腸の目視検査を含み得る
。最終的に、異常な組織の外科的な切除は、癌性組織または前癌性組織の広がり
を妨げるために行われ得る。
【0018】 従って、本発明の方法は、糞便サンプルのような不均質なサンプル中で癌性ま
たは前癌性の細胞の部分集団の存在についてスクリーニングする手段を提供する
。本発明の方法は、結腸上皮の病巣に関連する罹患率および死亡率を減少させる
。さらに、本発明の方法は、当該分野で現在利用可能な方法よりさらに正確かつ
簡便なスクリーニング方法を含む。なぜならば、そのような方法は、関連するD
NAの増加した収率を利用するからである。
たは前癌性の細胞の部分集団の存在についてスクリーニングする手段を提供する
。本発明の方法は、結腸上皮の病巣に関連する罹患率および死亡率を減少させる
。さらに、本発明の方法は、当該分野で現在利用可能な方法よりさらに正確かつ
簡便なスクリーニング方法を含む。なぜならば、そのような方法は、関連するD
NAの増加した収率を利用するからである。
【0019】 従って、本発明の方法は、不均質なサンプル中の低頻度のDNAの予想外およ
び増強された検出および分析を提供し、本明細書中で記載される方法の適用を介
して容易にされる。すなわち、その標的分子が低頻度のDNA分子であっても、
少なくとも5:1(体積対質量)の比で溶媒中での糞便サンプルのホモジナイゼ
ーション単独で、または本明細書中で開示されるサンプルの濃縮のための方法と
組み合せて、効果的かつ効率的な分析のために十分な数のDNA分子を得るため
の信頼できる方法を提供する。本発明のさらなる局面および利点は、本発明の以
下の詳細な説明に含まれる。
び増強された検出および分析を提供し、本明細書中で記載される方法の適用を介
して容易にされる。すなわち、その標的分子が低頻度のDNA分子であっても、
少なくとも5:1(体積対質量)の比で溶媒中での糞便サンプルのホモジナイゼ
ーション単独で、または本明細書中で開示されるサンプルの濃縮のための方法と
組み合せて、効果的かつ効率的な分析のために十分な数のDNA分子を得るため
の信頼できる方法を提供する。本発明のさらなる局面および利点は、本発明の以
下の詳細な説明に含まれる。
【0020】 (発明の詳細な説明) 本発明は、糞便からの核酸の抽出および分析のための改良された方法を提供す
る。本発明の方法に従い、糞便から抽出される核酸の収率は、糞便質量に対する
緩衝液体積の最適な比で緩衝液中で糞便をホモジナイズすることにより増加する
。収率は、ヒトDNAに関して濃縮することによりさらに改良される。改良され
た核酸収率は、糞便サンプルの核酸分析が、より少ない糞便体積について、より
効率的に行われることを可能にする。
る。本発明の方法に従い、糞便から抽出される核酸の収率は、糞便質量に対する
緩衝液体積の最適な比で緩衝液中で糞便をホモジナイズすることにより増加する
。収率は、ヒトDNAに関して濃縮することによりさらに改良される。改良され
た核酸収率は、糞便サンプルの核酸分析が、より少ない糞便体積について、より
効率的に行われることを可能にする。
【0021】 本発明の好ましい方法において、分析のために得られた糞便サンプルは、糞便
全体のうちの少なくとも断面を含む。本明細書中で参考として援用される米国特
許第5,741,650号において提供されるように、結腸上皮由来の細胞およ
び細胞の細片は、長手方向の線条において糞便上へ、および糞便中へ堆積する。
糞便のうちの少なくとも断面を得ることは、結腸上皮細胞および細胞の細片の代
表的なサンプリングが分析されることを確実にする。
全体のうちの少なくとも断面を含む。本明細書中で参考として援用される米国特
許第5,741,650号において提供されるように、結腸上皮由来の細胞およ
び細胞の細片は、長手方向の線条において糞便上へ、および糞便中へ堆積する。
糞便のうちの少なくとも断面を得ることは、結腸上皮細胞および細胞の細片の代
表的なサンプリングが分析されることを確実にする。
【0022】 一旦、糞便サンプルが収集されると、それは、生理学的に受容可能な溶媒中で
ホモジナイズされる。好ましいホモジナイゼーションの手段は、ガラスビーズを
用いる攪拌を用いる。生理学的に受容可能な溶媒は、生物学的サンプル物質の分
散のために適切であると当業者に一般的に公知である溶媒を含む。そのような溶
媒としては、20mM〜100mMのNaClまたはKClのような塩、および
必要に応じて1〜10%のSDSまたはTritonTMのような界面活性剤、お
よび/またはプロテイナーゼKのようなプロテイナーゼを(例えば、約20mg
/mlで)含むリン酸緩衝化生理食塩水が挙げられる。好ましい溶媒は、例えば
、1MのTris、0.5MのEDTA、5MのNaCl、およびpH9で、最
終濃度500mMのTris、16mMのEDTAおよび10mMのNaClに
するための水を含む、生理学的に適合性の緩衝液である。この緩衝液は、ホモジ
ナイゼーションの間に固体の糞便サンプルを分散する溶媒として作用する。出願
人は、このサンプルの固体質量に対する溶媒体積を増加させることが増加したD
NA収率を生じることを発見した。
ホモジナイズされる。好ましいホモジナイゼーションの手段は、ガラスビーズを
用いる攪拌を用いる。生理学的に受容可能な溶媒は、生物学的サンプル物質の分
散のために適切であると当業者に一般的に公知である溶媒を含む。そのような溶
媒としては、20mM〜100mMのNaClまたはKClのような塩、および
必要に応じて1〜10%のSDSまたはTritonTMのような界面活性剤、お
よび/またはプロテイナーゼKのようなプロテイナーゼを(例えば、約20mg
/mlで)含むリン酸緩衝化生理食塩水が挙げられる。好ましい溶媒は、例えば
、1MのTris、0.5MのEDTA、5MのNaCl、およびpH9で、最
終濃度500mMのTris、16mMのEDTAおよび10mMのNaClに
するための水を含む、生理学的に適合性の緩衝液である。この緩衝液は、ホモジ
ナイゼーションの間に固体の糞便サンプルを分散する溶媒として作用する。出願
人は、このサンプルの固体質量に対する溶媒体積を増加させることが増加したD
NA収率を生じることを発見した。
【0023】 本発明の方法によれば、溶媒(緩衝液)は、少なくとも約5:1の溶媒体積の
固体質量に対する比で、この固体サンプルに添加される。この溶媒体積の固体質
量に対する比は、好ましくは約10:1〜約30:1の範囲内であり、そしてよ
り好ましくは約10:1〜約20:1の範囲内である。最も好ましくは、この溶
媒体積の固体質量に対する比は、約10:1である。代表的に、溶媒体積はミリ
リットルで測定され得、そして固体質量は、ミリグラムで測定される得が、実施
者は、特定の質量単位および体積単位のスケールアップまたはスケールダウンに
かかわらず、質量に対する体積の比が一定のままであることを認識する。すなわ
ち、溶媒体積の固体質量に対する比はミリリットル:グラムまたはμl:μgと
して測定され得る。
固体質量に対する比で、この固体サンプルに添加される。この溶媒体積の固体質
量に対する比は、好ましくは約10:1〜約30:1の範囲内であり、そしてよ
り好ましくは約10:1〜約20:1の範囲内である。最も好ましくは、この溶
媒体積の固体質量に対する比は、約10:1である。代表的に、溶媒体積はミリ
リットルで測定され得、そして固体質量は、ミリグラムで測定される得が、実施
者は、特定の質量単位および体積単位のスケールアップまたはスケールダウンに
かかわらず、質量に対する体積の比が一定のままであることを認識する。すなわ
ち、溶媒体積の固体質量に対する比はミリリットル:グラムまたはμl:μgと
して測定され得る。
【0024】 本発明の好ましい実施形態では、このホモジナイズされたサンプルは、標的(
ヒト)DNAに関して濃縮される。本発明の文脈において、サンプルの「濃縮」
は、標的ヒトDNAの量に対して、サンプル中の所望でない非ヒトDNAの量を
減少させるためにサンプルを操作することを意味する。濃縮の技術は、標的DN
Aの配列特異的捕獲、または細菌の核酸の除去を含む。
ヒト)DNAに関して濃縮される。本発明の文脈において、サンプルの「濃縮」
は、標的ヒトDNAの量に対して、サンプル中の所望でない非ヒトDNAの量を
減少させるためにサンプルを操作することを意味する。濃縮の技術は、標的DN
Aの配列特異的捕獲、または細菌の核酸の除去を含む。
【0025】 本発明の好ましい実施形態では、濃縮の工程は、グアニジンイソチオシアネー
ト(GITC)などの生理学的に適合性の緩衝液中で行われる。次いで、捕獲プ
ローブは、混合物に添加されて標的DNAにハイブリダイズして、このサンプル
からの標的DNAの選択的な除去を容易にする。
ト(GITC)などの生理学的に適合性の緩衝液中で行われる。次いで、捕獲プ
ローブは、混合物に添加されて標的DNAにハイブリダイズして、このサンプル
からの標的DNAの選択的な除去を容易にする。
【0026】 標的DNAの配列特異的捕獲は、最初にサンプルDNAを変性させて、一本鎖
DNAを形成することにより、達成され得る。次いで、標的ポリヌクレオチドの
少なくとも一部分(例えば、p53対立遺伝子中、またはその近くの配列)に対
して相補的である十分な量の配列特異的オリゴヌクレオチドプローブが、添加さ
れる。この(ビオチンで標識された)プローブ配列を、相補的標的DNA配列に
ハイブリダイズさせる。次いで、アビジンまたはストレプトアビジンでコートさ
れたビーズが、添加され、そしてビオチン化されたハイブリッドに親和性結合に
より付着する。このビーズは、単離を容易にするために磁化され得る。
DNAを形成することにより、達成され得る。次いで、標的ポリヌクレオチドの
少なくとも一部分(例えば、p53対立遺伝子中、またはその近くの配列)に対
して相補的である十分な量の配列特異的オリゴヌクレオチドプローブが、添加さ
れる。この(ビオチンで標識された)プローブ配列を、相補的標的DNA配列に
ハイブリダイズさせる。次いで、アビジンまたはストレプトアビジンでコートさ
れたビーズが、添加され、そしてビオチン化されたハイブリッドに親和性結合に
より付着する。このビーズは、単離を容易にするために磁化され得る。
【0027】 プローブ−標的ハイブリッドの分離後、得られたDNAは、捕獲プローブ技術
を介して通常導入されるインヒビターを含み、インヒビターを除去するために繰
り返し洗浄される。本発明の方法において、洗浄は好ましくは、1MのGITC
および0.1%の界面活性剤(例えば、Igepal(Sigma))を用いて
約4回行われる。GITCは、PCRに関連するDNAポリメラーゼを含むDN
Aポリメラーゼの公知のインヒビターであるので、次いで、最初の洗浄には好ま
しくは、この混合物からGITCを除去するための、標準の洗浄緩衝液(例えば
、Tris−EDTA−NaCl)を用いた二回の洗浄が続く。
を介して通常導入されるインヒビターを含み、インヒビターを除去するために繰
り返し洗浄される。本発明の方法において、洗浄は好ましくは、1MのGITC
および0.1%の界面活性剤(例えば、Igepal(Sigma))を用いて
約4回行われる。GITCは、PCRに関連するDNAポリメラーゼを含むDN
Aポリメラーゼの公知のインヒビターであるので、次いで、最初の洗浄には好ま
しくは、この混合物からGITCを除去するための、標準の洗浄緩衝液(例えば
、Tris−EDTA−NaCl)を用いた二回の洗浄が続く。
【0028】 最終的に、標的DNAは、加熱することにより、少ない体積の蒸留水の中に溶
出される。ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を用いたアッセイ、制限酵素断片長
多型(RFPL)分析または他の核酸分析方法は、結腸直腸癌または結腸直腸前
癌のような障害を示すDNAの特徴を検出するために用いられ得る。特に有用な
いくつかの分析技術は、同時係属中の出願である出願番号08/700,583
、08/815,576および08/877,333に記載され、これらの開示
は、参考として本明細書中に援用される。
出される。ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を用いたアッセイ、制限酵素断片長
多型(RFPL)分析または他の核酸分析方法は、結腸直腸癌または結腸直腸前
癌のような障害を示すDNAの特徴を検出するために用いられ得る。特に有用な
いくつかの分析技術は、同時係属中の出願である出願番号08/700,583
、08/815,576および08/877,333に記載され、これらの開示
は、参考として本明細書中に援用される。
【0029】 代替的な実施形態では、ホモジナイズされたサンプルは、このサンプルが低頻
度の標的DNA分子の検出を与える少なくとも最小数(N)の総DNA分子を有
することを決定するために実験される。サンプル中の分析された分子の数は、こ
の分析が低頻度の事象を検出する能力を決定する。PCRの場合では、PCR効
率が100%に近い場合、投入した分子の数は、約500でなければならない。
PCR効率が低下するにつれて、必要とされる投入分子の数は増加する。初めの
数回では分子は増幅されないので、投入分子の最小数を分析することは、PCR
において低頻度の事象が検出されない可能性を減少させる。従って、本発明の方
法は、規定された信頼レベルで低頻度の分子事象を検出するために、分析されな
ければならないサンプル分子の閾値の数を決定する工程を包含する。
度の標的DNA分子の検出を与える少なくとも最小数(N)の総DNA分子を有
することを決定するために実験される。サンプル中の分析された分子の数は、こ
の分析が低頻度の事象を検出する能力を決定する。PCRの場合では、PCR効
率が100%に近い場合、投入した分子の数は、約500でなければならない。
PCR効率が低下するにつれて、必要とされる投入分子の数は増加する。初めの
数回では分子は増幅されないので、投入分子の最小数を分析することは、PCR
において低頻度の事象が検出されない可能性を減少させる。従って、本発明の方
法は、規定された信頼レベルで低頻度の分子事象を検出するために、分析されな
ければならないサンプル分子の閾値の数を決定する工程を包含する。
【0030】 同時係属中の出願番号 [代理人文書番号EXT−021](これは参考
として本明細書中に援用される)においてより十分に記載されるように、低頻度
標的DNA分子の増幅および分析を可能にするためにサンプル中に存在しなけれ
ばならないDNA分子の最少数Nの決定は、PCRにおける確率過程のモデルに
基づく。PCR効率についての予め設定または決定された値、およびサンプルに
おける野生型DNAに対する変異DNAの比を利用して、このモデルは、規定の
統計学的な信頼レベル内で、低頻度分子が増幅されることを確実にするためにP
CRに提示されなければならない分子数を予測する。
として本明細書中に援用される)においてより十分に記載されるように、低頻度
標的DNA分子の増幅および分析を可能にするためにサンプル中に存在しなけれ
ばならないDNA分子の最少数Nの決定は、PCRにおける確率過程のモデルに
基づく。PCR効率についての予め設定または決定された値、およびサンプルに
おける野生型DNAに対する変異DNAの比を利用して、このモデルは、規定の
統計学的な信頼レベル内で、低頻度分子が増幅されることを確実にするためにP
CRに提示されなければならない分子数を予測する。
【0031】 当業者は、サンプル中に存在する分子の最少数Nの決定が、上記に詳細に記載
された濃縮技術の代わりに、またはそれに加えて用いられ得、本発明の方法にお
ける信頼の置ける結果を確実にすることを認識する。
された濃縮技術の代わりに、またはそれに加えて用いられ得、本発明の方法にお
ける信頼の置ける結果を確実にすることを認識する。
【0032】 あるいは、本発明の方法はまた、糞便ホモジネートからの総DNAを単離する
ために用いられ得る。ホモジナイズされた混合物は、細胞の細片および糞便物か
ら作製されたペレット、および核酸および会合したタンパク質、脂質などを含む
上清を形成するために遠心分離される。この上清は、20%SDSのような界面
活性剤、およびタンパク質を分解できる酵素(例えば、プロテイナーゼK)で処
理される。次いで、上清は、フェノール−クロロホルム抽出される。次いで、得
られた、精製された核酸は当該分野で公知の手段によって沈澱される。次いで、
当該分野の種々の技術は、得られた核酸を操作するために用いられ得、その技術
としては特定の核酸のさらなる精製または単離が挙げられる。
ために用いられ得る。ホモジナイズされた混合物は、細胞の細片および糞便物か
ら作製されたペレット、および核酸および会合したタンパク質、脂質などを含む
上清を形成するために遠心分離される。この上清は、20%SDSのような界面
活性剤、およびタンパク質を分解できる酵素(例えば、プロテイナーゼK)で処
理される。次いで、上清は、フェノール−クロロホルム抽出される。次いで、得
られた、精製された核酸は当該分野で公知の手段によって沈澱される。次いで、
当該分野の種々の技術は、得られた核酸を操作するために用いられ得、その技術
としては特定の核酸のさらなる精製または単離が挙げられる。
【0033】 本発明の方法はまた、プールされたDNAサンプルの分析のために有用である
。出願番号09/098,180、および米国特許第5,670,325号(こ
れらの両方は、本明細書中で、参考として援用される)においてより詳細に記載
されているように、プールされたゲノムDNAサンプルの列挙する分析は、疾患
の存在または見込みを決定するために使用される。集団の健康なメンバー由来の
プールされたゲノムDNAおよび集団の病的なメンバー由来のプールされたゲノ
ムDNAが得られる。一ヌクレオチド多型部位での各々の改変体の数または量は
、各々のサンプルで決定される。その数または量は、健康な集団から得られたサ
ンプル中に存在する改変体と病的な集団から得られたサンプルに存在する改変体
との間に統計学的有意差が存在するか否かを決定するために分析される。統計学
的有意差は、この多型遺伝子座が疾患のマーカーであることを示す。
。出願番号09/098,180、および米国特許第5,670,325号(こ
れらの両方は、本明細書中で、参考として援用される)においてより詳細に記載
されているように、プールされたゲノムDNAサンプルの列挙する分析は、疾患
の存在または見込みを決定するために使用される。集団の健康なメンバー由来の
プールされたゲノムDNAおよび集団の病的なメンバー由来のプールされたゲノ
ムDNAが得られる。一ヌクレオチド多型部位での各々の改変体の数または量は
、各々のサンプルで決定される。その数または量は、健康な集団から得られたサ
ンプル中に存在する改変体と病的な集団から得られたサンプルに存在する改変体
との間に統計学的有意差が存在するか否かを決定するために分析される。統計学
的有意差は、この多型遺伝子座が疾患のマーカーであることを示す。
【0034】 これらの方法は、疾患と関連する核酸(例えば、多型改変体)を同定するため
に使用され得る。このような方法は、病的な集団のメンバーにおいて核酸(好ま
しくは、一塩基)の数を計数するまたはその量を決定する工程、および、健康な
集団のメンバーにおいて同じ核酸の数を計数するまたはその量を決定する工程を
含む。2つの集団の間の核酸の数における統計学的有意差は、問い合わせられた
遺伝子座が疾患に関連することを示す。
に使用され得る。このような方法は、病的な集団のメンバーにおいて核酸(好ま
しくは、一塩基)の数を計数するまたはその量を決定する工程、および、健康な
集団のメンバーにおいて同じ核酸の数を計数するまたはその量を決定する工程を
含む。2つの集団の間の核酸の数における統計学的有意差は、問い合わせられた
遺伝子座が疾患に関連することを示す。
【0035】 一旦、本発明の方法によるか、または適切なデータベースを調査することのい
ずれかにより多型遺伝子座が同定されると、このような方法は、多型遺伝子座で
いずれの改変体が疾患に関連しているのかを決定するために有用である。この場
合、列挙する方法は、病的な集団のメンバーにおける第一の改変体の数と、健康
な集団のメンバーにおける同じ遺伝子座での第二の改変体の数との間の統計学的
有意差が存在するか否かを決定するために使用される。統計学的有意差は、病的
な集団のメンバーにおけるこの改変体が疾患に関するマーカーとして有用である
ことを示す。この情報を使用して、患者は、疾患と関連すると考えられる改変体
の存在についてスクリーニングされ、そのような改変体の存在は疾患の存在また
は疾患に対する素因を示す。
ずれかにより多型遺伝子座が同定されると、このような方法は、多型遺伝子座で
いずれの改変体が疾患に関連しているのかを決定するために有用である。この場
合、列挙する方法は、病的な集団のメンバーにおける第一の改変体の数と、健康
な集団のメンバーにおける同じ遺伝子座での第二の改変体の数との間の統計学的
有意差が存在するか否かを決定するために使用される。統計学的有意差は、病的
な集団のメンバーにおけるこの改変体が疾患に関するマーカーとして有用である
ことを示す。この情報を使用して、患者は、疾患と関連すると考えられる改変体
の存在についてスクリーニングされ、そのような改変体の存在は疾患の存在また
は疾患に対する素因を示す。
【0036】 本発明の方法は、krasのような結腸直腸癌において推定される変異を有す
る遺伝子を含む核酸の単離および分析に対して特に有用である。kras遺伝子
は、30kbpを超える長さを有し、低分子量GTP結合タンパク質として特徴
付けられる189アミノ酸タンパク質をコードする。この遺伝子は、単一の点変
異により悪性の性質を獲得し、最も一般的な単一点変異は、12番目のアミノ酸
で起こる。いくつかの研究は、ヒトにおける原発性結腸直腸腺癌細胞の約40%
が変異形態のkras遺伝子を含むことを確認している。従って、kras遺伝
子は、本発明の結腸直腸癌の検出方法に対して特に適切な標的である。
る遺伝子を含む核酸の単離および分析に対して特に有用である。kras遺伝子
は、30kbpを超える長さを有し、低分子量GTP結合タンパク質として特徴
付けられる189アミノ酸タンパク質をコードする。この遺伝子は、単一の点変
異により悪性の性質を獲得し、最も一般的な単一点変異は、12番目のアミノ酸
で起こる。いくつかの研究は、ヒトにおける原発性結腸直腸腺癌細胞の約40%
が変異形態のkras遺伝子を含むことを確認している。従って、kras遺伝
子は、本発明の結腸直腸癌の検出方法に対して特に適切な標的である。
【0037】 この目的に向けて、出願人は、krasヌクレオチド配列に関する適切で例示
的な捕獲プローブを構築した。CP1と命名された捕獲プローブは以下の配列:
5’GCC TGC TGA AAA TGA CTG AAT ATA AA
C TTG TGG TAG T3’(配列番号1)を有し、好ましくは、単離
を容易にするために5’末端でビオチン化される。以下により十分に例示される
ように、CP1は、krasDNAの配列特異的捕獲において効果的である。
的な捕獲プローブを構築した。CP1と命名された捕獲プローブは以下の配列:
5’GCC TGC TGA AAA TGA CTG AAT ATA AA
C TTG TGG TAG T3’(配列番号1)を有し、好ましくは、単離
を容易にするために5’末端でビオチン化される。以下により十分に例示される
ように、CP1は、krasDNAの配列特異的捕獲において効果的である。
【0038】 抽出されたkrasDNA配列の分析のための適切なPCRプライマーもまた
、決定された。プライマーA1は、配列:5’C CTG CTG AAA A
TG ACT GAA3’(配列番号2)を有し、そしてプライマーB1は配列
:5’CAT GAA AAT GGT CAG AGA AA3’(配列番号
3)を有する。このPCRプライマーA1およびB1、ならびに捕獲プローブC
P1は、図1に示され、図1は、krasヌクレオチド配列(塩基対6282〜
6571(配列番号4))に対するそれらの関連性を示している。当業者は、当
該分野で周知の技術を使用して、krasあるいは他の標的遺伝子またはヌクレ
オチド配列に対する他の適切な捕獲プローブおよびPCRプライマーを構築し得
る。
、決定された。プライマーA1は、配列:5’C CTG CTG AAA A
TG ACT GAA3’(配列番号2)を有し、そしてプライマーB1は配列
:5’CAT GAA AAT GGT CAG AGA AA3’(配列番号
3)を有する。このPCRプライマーA1およびB1、ならびに捕獲プローブC
P1は、図1に示され、図1は、krasヌクレオチド配列(塩基対6282〜
6571(配列番号4))に対するそれらの関連性を示している。当業者は、当
該分野で周知の技術を使用して、krasあるいは他の標的遺伝子またはヌクレ
オチド配列に対する他の適切な捕獲プローブおよびPCRプライマーを構築し得
る。
【0039】 従って、溶媒体積の糞便質量に対する比が少なくとも5:1であるような体積
の溶媒中で糞便サンプルをホモジナイズする工程、および/またはヒトDNAに
関してそのサンプルを濃縮する工程を包含する、本発明の方法は、最少数Nの総
DNA分子を有するサンプルを得るための手段を提供し、低頻度の標的DNA分
子の検出を容易にする。従って、これらの方法は、不均質サンプルにおいて低頻
度のDNAの小さい部分を信頼がおけるように検出することが今や可能であると
いう意外な結果を提供する。
の溶媒中で糞便サンプルをホモジナイズする工程、および/またはヒトDNAに
関してそのサンプルを濃縮する工程を包含する、本発明の方法は、最少数Nの総
DNA分子を有するサンプルを得るための手段を提供し、低頻度の標的DNA分
子の検出を容易にする。従って、これらの方法は、不均質サンプルにおいて低頻
度のDNAの小さい部分を信頼がおけるように検出することが今や可能であると
いう意外な結果を提供する。
【0040】 以下の実施例は、本発明に従う方法のさらなる詳細を提供する。しかし、本発
明の多数のさらなる局面は、以下の実施例を考慮すれば明らかとなる。
明の多数のさらなる局面は、以下の実施例を考慮すれば明らかとなる。
【0041】 (実施例1:糞便サンプルの調製) 排泄された糞便を、患者から収集し、サンプルとして使用するためにこの糞便
の断面部分を取り出した。サンプルの質量を決定した後、約10×体積のTri
s−EDTA−NaCl溶解緩衝液を試験管中の固体サンプルに加えた。緩衝液
の最終濃度は、約9.0のpHで、500mMのTris、16mMのEDTA
、および10mMのNaClであった。4つの10mmのガラス玉をその管の中
に置き、その内容物をExactorIIシェーカー中で15分間ホモジナイズ
した。次いで、そのホモジナイズした混合物を、室温で5分間、静置した。次い
で、その管をSorvall遠心分離機中で、10,000rpmで5分間、遠
心し、そしてその上清を清浄な試験管に移した。その管に20% SDS水溶液
を0.5%の最終濃度になるように加えた。プロテイナーゼKをまた、500m
g/mlの最終濃度になるようにその管に加えた。次いで、その管を37℃で一
晩インキュベートした。
の断面部分を取り出した。サンプルの質量を決定した後、約10×体積のTri
s−EDTA−NaCl溶解緩衝液を試験管中の固体サンプルに加えた。緩衝液
の最終濃度は、約9.0のpHで、500mMのTris、16mMのEDTA
、および10mMのNaClであった。4つの10mmのガラス玉をその管の中
に置き、その内容物をExactorIIシェーカー中で15分間ホモジナイズ
した。次いで、そのホモジナイズした混合物を、室温で5分間、静置した。次い
で、その管をSorvall遠心分離機中で、10,000rpmで5分間、遠
心し、そしてその上清を清浄な試験管に移した。その管に20% SDS水溶液
を0.5%の最終濃度になるように加えた。プロテイナーゼKをまた、500m
g/mlの最終濃度になるようにその管に加えた。次いで、その管を37℃で一
晩インキュベートした。
【0042】 インキュベーション後、その管の内容物を同体積のフェノール/クロロホルム
を用いて抽出し、3500rpmで3分間で遠心分離した。次いで、水層を新し
い管に移し、同体積のクロロホルムで3回抽出し、3500rpmで3分間遠心
した。次いで、水層を新しい管に移し、その水性部分に0.1×体積の3MのN
aOAcを加え、次いで、それを、同体積のイソプロパノールを用いて抽出し、
12,000rpmで5分間遠心分離した。上清を捨て、ペレットを10mlの
70%エタノールを用いて洗浄し、12,000rpmで5分間遠心分離した。
上清を捨て、単離されたDNAを含むそのペレットを、管を逆さにすることによ
り乾燥した。
を用いて抽出し、3500rpmで3分間で遠心分離した。次いで、水層を新し
い管に移し、同体積のクロロホルムで3回抽出し、3500rpmで3分間遠心
した。次いで、水層を新しい管に移し、その水性部分に0.1×体積の3MのN
aOAcを加え、次いで、それを、同体積のイソプロパノールを用いて抽出し、
12,000rpmで5分間遠心分離した。上清を捨て、ペレットを10mlの
70%エタノールを用いて洗浄し、12,000rpmで5分間遠心分離した。
上清を捨て、単離されたDNAを含むそのペレットを、管を逆さにすることによ
り乾燥した。
【0043】 (実施例2) 質量に対する溶媒体積の比の比較分析を行った。3つの異なる糞便サンプルを
上記のように調製した。SS88−3×と命名した第一のサンプルを、3:1と
いう体積の質量に対する比の緩衝液中でホモジナイズした。SS88−5×と命
名した第二のサンプルを、5:1の比でホモジナイズし、SS88−10×と命
名した第三のサンプルを、10:1の比でホモジナイズした。
上記のように調製した。SS88−3×と命名した第一のサンプルを、3:1と
いう体積の質量に対する比の緩衝液中でホモジナイズした。SS88−5×と命
名した第二のサンプルを、5:1の比でホモジナイズし、SS88−10×と命
名した第三のサンプルを、10:1の比でホモジナイズした。
【0044】 各々のサンプル由来の総DNAを、100μlの100mMのTris、10
mMのEDTA緩衝液中で再懸濁し、125Vの定電圧で約1時間の電気泳動の
ために10μlのアリコートを4%アガロースゲルへロードした。その結果を図
2に示す。図2に示すように、溶媒の質量に対する比が3×から10×まで増加
するにつれて、総DNAの収率は、増加した。
mMのEDTA緩衝液中で再懸濁し、125Vの定電圧で約1時間の電気泳動の
ために10μlのアリコートを4%アガロースゲルへロードした。その結果を図
2に示す。図2に示すように、溶媒の質量に対する比が3×から10×まで増加
するにつれて、総DNAの収率は、増加した。
【0045】 (実施例3) 4つの等価なサンプルの第二のセットを、単一の糞便サンプルから調製した。
4つのサンプルの各々は、同質量であり、実施例1に記載するように、各々5:
1、10:1、20:1、および30:1の溶媒体積の糞便質量に対する比でホ
モジナイズした。ホモジナイゼーション後、各々のサンプルを8つのアリコート
に細分し、4つはRNaseを用いて処理し、そして4つは未処理とした。次い
で、総DNAを上記のように単離し、アガロースゲルで分析した。
4つのサンプルの各々は、同質量であり、実施例1に記載するように、各々5:
1、10:1、20:1、および30:1の溶媒体積の糞便質量に対する比でホ
モジナイズした。ホモジナイゼーション後、各々のサンプルを8つのアリコート
に細分し、4つはRNaseを用いて処理し、そして4つは未処理とした。次い
で、総DNAを上記のように単離し、アガロースゲルで分析した。
【0046】 その結果を図3に示す。示されるように、10:1の比は、核酸の最も高い収
率を生じた。図3はまた、各々の糞便サンプルからのDNAの収率に対するRN
ase処理の効果を示す。この図に示されるように、RNase処理は、サンプ
ルからRNAを実質的に除去するが、DNAは無傷のままである。この結果は、
溶媒体積の糞便質量に対する最適な比が、糞便サンプルからのDNAの収率を大
きく増加させることを示す。
率を生じた。図3はまた、各々の糞便サンプルからのDNAの収率に対するRN
ase処理の効果を示す。この図に示されるように、RNase処理は、サンプ
ルからRNAを実質的に除去するが、DNAは無傷のままである。この結果は、
溶媒体積の糞便質量に対する最適な比が、糞便サンプルからのDNAの収率を大
きく増加させることを示す。
【0047】 (実施例4:標的DNAの配列特異的捕獲) 一旦、糞便から抽出されたら、配列特異的捕獲プローブを用いて、特異的核酸
を単離する。総DNAを、実施例1に記載される方法に従って、糞便サンプルか
ら抽出した。そのペレット化したDNAを、1mlのTE緩衝液に再懸濁した。
この溶液の100μlのアリコートを取り出して新しい管に入れ、最終濃度が3
MのGITCになるように、6Mのグアニジンイソチオシアネート(GITC)
100μlを加えた。大過剰のビオチン化したkras捕獲プローブCP1を、
そのサンプルに加えた。その混合物を95℃で5分間加熱し、DNAを変性し、
次いで37℃で5分間冷却した。最終的に、プローブおよび標的DNAを室温で
30分間ハイブリダイズさせた。ストレプトアビジンでコートされた磁化ビーズ
(320mg)(Dynal Corp.)を、400μlの蒸留水に懸濁し、
そして混合物に加えた。簡単に混合した後、その管を室温で30分間維持した。
を単離する。総DNAを、実施例1に記載される方法に従って、糞便サンプルか
ら抽出した。そのペレット化したDNAを、1mlのTE緩衝液に再懸濁した。
この溶液の100μlのアリコートを取り出して新しい管に入れ、最終濃度が3
MのGITCになるように、6Mのグアニジンイソチオシアネート(GITC)
100μlを加えた。大過剰のビオチン化したkras捕獲プローブCP1を、
そのサンプルに加えた。その混合物を95℃で5分間加熱し、DNAを変性し、
次いで37℃で5分間冷却した。最終的に、プローブおよび標的DNAを室温で
30分間ハイブリダイズさせた。ストレプトアビジンでコートされた磁化ビーズ
(320mg)(Dynal Corp.)を、400μlの蒸留水に懸濁し、
そして混合物に加えた。簡単に混合した後、その管を室温で30分間維持した。
【0048】 一旦、親和性結合が完了したら、サンプルに磁界を適用し、(サンプルからハ
イブリダイズした複合体を用いて、および用いずにの、両方で)磁化した単離ビ
ーズをサンプルの外に引き出した。次いで、そのビーズを、1MのGITC/0
.1% Igepal(Sigma,St.Louis,MO)溶液中で15分
間で4回洗浄し、その後、洗浄緩衝液(1MのNaClを含むTE)を用いて1
5分間で2回洗浄し、複合化したストレプトアビジンを単離した。最終的に、そ
のビーズに10μlの蒸留水を加え、95℃で3分間加熱し、そのDNAを溶出
した。配列決定および/またはゲル電気泳動は、kras特異的DNAの捕獲の
確認を可能にする。
イブリダイズした複合体を用いて、および用いずにの、両方で)磁化した単離ビ
ーズをサンプルの外に引き出した。次いで、そのビーズを、1MのGITC/0
.1% Igepal(Sigma,St.Louis,MO)溶液中で15分
間で4回洗浄し、その後、洗浄緩衝液(1MのNaClを含むTE)を用いて1
5分間で2回洗浄し、複合化したストレプトアビジンを単離した。最終的に、そ
のビーズに10μlの蒸留水を加え、95℃で3分間加熱し、そのDNAを溶出
した。配列決定および/またはゲル電気泳動は、kras特異的DNAの捕獲の
確認を可能にする。
【0049】 従って、本発明の方法は、糞便からのDNAの収率の増加を生じ、それにより
、標的核酸のより効率的な配列特異的捕獲を可能にする。本発明の方法は、糞便
中に存在する疾患関連核酸変異を検出する能力における改良を提供する。当業者
は、本発明の上記の説明の検査について有用な本発明のさらなる適用および実施
形態を見出す。従って、本発明は、添付の特許請求の範囲の範囲によってのみ限
定される。
、標的核酸のより効率的な配列特異的捕獲を可能にする。本発明の方法は、糞便
中に存在する疾患関連核酸変異を検出する能力における改良を提供する。当業者
は、本発明の上記の説明の検査について有用な本発明のさらなる適用および実施
形態を見出す。従って、本発明は、添付の特許請求の範囲の範囲によってのみ限
定される。
【図面の簡単な説明】
【図1】 図1は、kras遺伝子(塩基対6282〜6571)の部分ヌクレオチド配
列、およびkrasヌクレオチド配列に対する捕獲プローブCP1、PCRプラ
イマーA1、およびPCRプライマーB1の位置の提示である。
列、およびkrasヌクレオチド配列に対する捕獲プローブCP1、PCRプラ
イマーA1、およびPCRプライマーB1の位置の提示である。
【図2】 図2は、実施例2に記載されているように抽出した非切断DNAを用いてゲル
電気泳動を行った結果の、Stratagene Eagle Eye II
Still Video System (Stratagene,La,Jo
lla,CA)を用いて作成された画像である。
電気泳動を行った結果の、Stratagene Eagle Eye II
Still Video System (Stratagene,La,Jo
lla,CA)を用いて作成された画像である。
【図3】 図3は、実施例3に記載されているように抽出したDNAを用いてゲル電気泳
動を行った結果の、Stratagene Eagle Eye II Sti
ll Video System (Stratagene,La,Jolla
,CA)を用いて作成された画像である。
動を行った結果の、Stratagene Eagle Eye II Sti
ll Video System (Stratagene,La,Jolla
,CA)を用いて作成された画像である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) G01N 33/566 C12N 15/00 A (72)発明者 ラピダス, スタンリー エヌ. アメリカ合衆国 ニューハンプシャー 03110, ベッドフォード, オールド エバーグリーン ロード 12 (72)発明者 ラドクリッフェ, ゲイル イー. アメリカ合衆国 マサチューセッツ 01604, ウスター, パリサデス スト リート 11 Fターム(参考) 4B024 AA11 CA01 CA09 HA12 HA13 4B063 QA01 QA12 QA13 QQ62 QR16 QR31 QR41 QR50 QR51 QR56 QR66 QR83 QS10 QS11 QS25
Claims (48)
- 【請求項1】 糞便から抽出されたDNAを分析するための方法であって、
以下: 糞便サンプルをDNAについての溶媒中でホモジナイズして、少なくとも5:
1の溶媒体積の糞便質量に対する比を有するホモジナイズされたサンプル混合物
を形成する工程; 該ホモジナイズされたサンプルをヒトDNAに関して濃縮する工程;および 疾患の特徴に関して該ヒトDNAを分析する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項2】 前記溶媒体積の糞便質量に対する比が約10:1〜約30:
1である、請求項1に記載の方法。 - 【請求項3】 前記溶媒体積の糞便質量に対する比が約10:1〜約20:
1である、請求項2に記載の方法。 - 【請求項4】 前記溶媒体積の糞便質量に対する比が約10:1である、請
求項2に記載の方法。 - 【請求項5】 前記溶媒が生物学的物質を分散させる緩衝液を含む、請求項
1に記載の方法。 - 【請求項6】 前記緩衝液がTris−EDTA−NaClを含む、請求項
5に記載の方法。 - 【請求項7】 前記Tris−EDTA−NaCl緩衝液が、約pH9.0
で最終濃度が約50mMのTris、約16mMのEDTAおよび約10mMの
NaClを含む、請求項6に記載の方法。 - 【請求項8】 前記溶媒がグアニジンイソチオシアネート緩衝液を含む、請
求項1に記載の方法。 - 【請求項9】 前記グアニジンイソチオシアネート緩衝液が約1M〜約5M
の最終濃度を含む、請求項8に記載の方法。 - 【請求項10】 前記グアニジンイソチオシアネート緩衝液が約3Mの最終
濃度を含む、請求項9に記載の方法。 - 【請求項11】 前記濃縮する工程が、前記DNAと配列特異的捕獲プロー
ブとを接触させることを包含する、請求項1に記載の方法。 - 【請求項12】 前記溶媒が界面活性剤およびプロテイナーゼを含む、請求
項1に記載の方法。 - 【請求項13】 前記DNAがヒトDNAである、請求項1に記載の方法。
- 【請求項14】 患者における結腸直腸癌性病巣または結腸直腸前癌性病巣
の存在についてのスクリーニングの方法であって、該方法は、以下の工程: 該患者によって排泄された、糞便の少なくとも断面の部分を含むサンプルを得
る工程; 溶媒中で該サンプルをホモジナイズして、少なくとも5:1の溶媒体積の糞便
質量に対する比を有するホモジナイズされたサンプル混合物を形成する工程; 標的ヒトDNAに関して該サンプルを濃縮する工程;および 該結腸直腸癌性病巣または結腸直腸前癌性病巣の存在を示すDNA特徴に関し
て、該標的ヒトDNAを分析する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項15】 前記分析する工程がポリメラーゼ連鎖反応を用いて前記D
NAを増幅することを包含する、請求項14に記載の方法。 - 【請求項16】 前記DNA特徴が多型の遺伝子座を含むヘテロ接合性の喪
失を含む、請求項14に記載の方法。 - 【請求項17】 前記DNA特徴が変異である、請求項14に記載の方法。
- 【請求項18】 前記変異がヘテロ接合性の喪失およびマイクロサテライト
不安定性からなる群から選択される、請求項17に記載の方法。 - 【請求項19】 前記DNA特徴が癌抑制対立遺伝子の欠失を含む、請求項
14に記載の方法。 - 【請求項20】 請求項14に記載の方法であって、前記分析する工程が、
前記サンプル中の細胞の部分集団において変異していることが公知または疑われ
る番号Xの第一の対立遺伝子と、該サンプル中の細胞の部分集団において変異し
ていないことが公知または疑われる番号Yの第二の対立遺伝子との間に差が該サ
ンプル中に存在するか否かを決定する工程を含み、統計学的有意差の存在は、該
サンプル中の細胞の部分集団における変異および癌性病巣または前癌性病巣の潜
在的な存在を示す、方法。 - 【請求項21】 請求項14に記載の方法であって、前記分析する工程が、
前記サンプル中の多くの標的癌抑制対立遺伝子と、該サンプル中の多くの非癌関
連参照対立遺伝子との間で差が存在するか否かを決定する工程を含み、統計学的
有意差の存在は、該サンプル中の細胞の部分集団における標的癌抑制対立遺伝子
の欠失および癌性病巣または前癌性病巣の潜在的な存在を示す、方法。 - 【請求項22】 請求項14に記載の方法であって、前記分析する工程がさ
らに以下の工程: a)前記サンプル中多型遺伝子座で、母性対立遺伝子の量を検出する工程; b)該サンプル中多型遺伝子座で、父性対立遺伝子の量を検出する工程;およ
び c)母性対立遺伝子の量と父性対立遺伝子の量との間で、差が存在するか否か
を決定する工程、 を包含し、統計学的有意差の存在は、該サンプル中の細胞の部分集団における多
型遺伝子座での欠失および病巣の潜在的な存在を示す、方法。 - 【請求項23】 前記多型遺伝子座が一塩基多型であり、そして該多型遺伝
子座が前記母性対立遺伝子と前記父性対立遺伝子との間でヘテロ接合性である、
請求項22に記載の方法。 - 【請求項24】 請求項22に記載の方法であって、前記検出する工程が以
下: a)前記一塩基多型に隣接する母性対立遺伝子および父性対立遺伝子の両方の
前記多型遺伝子座の一部分にプローブをハイブリダイズする工程; b)前記サンプルを検出可能に標識されたジデオキシヌクレオシド三リン酸の
混合物に、該ジデオキシヌクレオシド三リン酸の該一塩基多型への適切な結合を
可能にする条件下で曝す工程; c)該サンプルを洗浄する工程;および d)該サンプルに残存する、各々の検出可能に標識されたジデオキシヌクレオ
シド三リン酸の量を計数する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項25】 前記検出可能な標識が、放射性同位体、蛍光化合物、およ
び粒子からなる群から選択される、請求項24に記載の方法。 - 【請求項26】 請求項14に記載の方法であって、前記分析する工程が一
ヌクレオチド多型遺伝子座においてヘテロ接合性を検出するための方法を含み、
以下の工程: a)プローブを一塩基多型に隣接する配列にハイブリダイズする工程; b)前記サンプルを、複数の異なる標識されたジデオキシヌクレオチドに曝す
工程; c)該サンプルを洗浄する工程; d)いずれの該ジデオキシヌクレオチドが該プローブ中へ組み込まれるかを決
定する工程;および e)該一ヌクレオチド多型部位におけるヘテロ接合性を該プローブに取り込ま
れた2つのジデオキシヌクレオチドの検出として検出する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項27】 請求項14に記載の方法であって、前記分析する工程が以
下: (a)前記サンプルをハイブリダイゼーション条件下で複数の第一のオリゴヌ
クレオチドプローブおよび複数の第二のオリゴヌクレオチドプローブに曝し、そ
れにより以下: (1)該第一のオリゴヌクレオチドプローブを、該生物の野生型細胞に特有
の第一のポリヌクレオチドセグメントのコピーに対してハイブリダイズし、そし
て (2)該第二のオリゴヌクレオチドプローブを、結腸直腸癌細胞で欠失また
は変異していると疑われる野生型ゲノム領域に特有の第二のポリヌクレオチドセ
グメントのコピーに対してハイブリダイズする、工程; (b)該第一のプローブと該第一のセグメントとの間で形成された二重鎖の第
1の数および該第二のプローブと該第二のセグメントとの間で形成された二重鎖
の第2の数を検出する工程;ならびに (c)該第一のプローブと該第一のセグメントとの間で形成された二重鎖の数
と、該第二のプローブと第二のセグメントとの間で形成された二重鎖の数との間
に差が存在するか否かを決定する工程、 を包含し、統計学的有意差の存在は、該サンプルにおける結腸直腸癌性病巣また
は前癌性病巣の存在を示す、方法。 - 【請求項28】 前記第一のオリゴヌクレオチドプローブおよび前記第二の
オリゴヌクレオチドプローブが各々異なる検出可能な標識に結合する、請求項2
7に記載の方法。 - 【請求項29】 請求項27に記載の方法であって、ここで、 前記第一のオリゴヌクレオチドプローブが第一の粒子に、1つの粒子に対して
1つの第一のオリゴヌクレオチドプローブの比で付着し、そして前記第二のオリ
ゴヌクレオチドプローブが該第一の粒子とは検出可能に異なる第二の粒子に、1
つの第二の粒子に対して1つの第二のオリゴヌクレオチドプローブの比で付着し
、ここで、 該検出する工程は、ハイブリダイズしてない第一のオリゴヌクレオチドプロー
ブおよび第二のオリゴヌクレオチドプローブからハイブリダイズした第一のオリ
ゴヌクレオチドプローブおよび第二のオリゴヌクレオチドプローブを分離する工
程、続いて、ハイブリダイズした第一のオリゴヌクレオチドプローブおよび第二
のオリゴヌクレオチドプローブを検出器に通過させて、該第1の数および該第2
の数を決定する工程を含む、方法。 - 【請求項30】 前記第一の粒子および前記第二の粒子が検出可能に異なる
サイズの粒子である、請求項29に記載の方法。 - 【請求項31】 前記第一の粒子および前記第二の粒子が検出可能に異なる
色の粒子である、請求項29に記載の方法。 - 【請求項32】 請求項27に記載の方法であって、その工程(a)の前に
さらに、前記サンプル中の二本鎖DNAを一本鎖DNAに変換する工程、ならび
に前記第一のポリヌクレオチドセグメントおよび前記第二のポリヌクレオチドセ
グメントに対する相補体を除去する工程を包含する、方法。 - 【請求項33】 請求項32に記載の方法であって、前記除去する工程が、
前記相補体を磁気粒子に付着した核酸プローブにハイブリダイズさせる工程、お
よび続いて前記サンプルから該磁気粒子を除去する工程を包含する、方法。 - 【請求項34】 請求項14に記載の方法であって、前記分析する工程が前
記サンプル中の標的対立遺伝子での核酸配列の変化を検出するための方法を包含
し、以下の工程: (a)(i)該サンプル中の野生型標的対立遺伝子の量および (ii)該サンプル中の参照対立遺伝子の量 を決定する工程;ならびに (b)該サンプル中の該標的対立遺伝子における核酸配列の変化を検出する工
程、 を包含し、該決定する工程において得られた該野生型標的対立遺伝子の量と該参
照対立遺伝子の量との間の統計学的有意差が、核酸配列の変化を示す、方法。 - 【請求項35】 請求項34に記載の方法であって、前記決定する工程が、
前記サンプルを、前記野生型対立遺伝子の一部分とのハイブリダイズが可能であ
る第一のオリゴヌクレオチドプローブ、および前記参照対立遺伝子の一部分への
ハイブリダイズが可能である第二のオリゴヌクレオチドプローブに曝す工程、な
らびに該サンプルからハイブリダイズしてない第一のオリゴヌクレオチドプロー
ブまたは第二のオリゴヌクレオチドプローブのどれをも除去する工程を包含する
、方法。 - 【請求項36】 患者における結腸直腸癌性病巣または前癌性病巣の存在に
ついてスクリーニングするための方法であって、該方法は以下の工程: 該患者により排泄された糞便の少なくとも断面部分を含むサンプルを得る工程
; 該サンプルを溶媒中でホモジナイズして、少なくとも5:1の溶媒体積の糞便
質量に対する比を有するホモジナイズされたサンプル混合物を形成する工程; 該サンプルが少なくとも最小限の数Nの総DNA分子を有するか否かを決定し
て、低頻度の標的DNA分子の検出を与える工程; 前記結腸直腸癌性病巣または前記前癌性病巣の存在を示すDNA特徴に関して
、該標的DNAを分析する工程、 を包含する方法。 - 【請求項37】 患者における結腸直腸癌性病巣または前癌性病巣の存在に
ついてスクリーニングするための方法であって、該方法は、以下の工程: 該患者によって排泄された糞便の少なくとも断面部分を含むサンプルを得る工
程; 該サンプルを溶媒中でホモジナイズして、少なくとも5:1の溶媒体積の糞便
質量に対する比を有するホモジナイズされたサンプル混合物を形成する工程; 該ホモジナイズされたサンプルを標的ヒトDNAに関して濃縮する工程; 該サンプルが少なくとも最小限の数Nの総DNA分子を有するか否かを決定し
て、低頻度の標的DNA分子の検出を与える、工程; 該結腸直腸癌性病巣または該前癌性病巣の存在を示すDNA特徴に関して、該
標的ヒトDNAを分析する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項38】 前記分析する工程が、ポリメラーゼ連鎖反応を用いて前記
DNAを増幅する工程を含む、請求項36に記載の方法。 - 【請求項39】 前記分析する工程が、ポリメラーゼ連鎖反応を用いて前記
DNAを増幅する工程を含む、請求項37に記載の方法。 - 【請求項40】 前記濃縮する工程が、前記DNAと配列特異的捕獲プロー
ブとを接触させる工程を包含する、請求項37に記載の方法。 - 【請求項41】 前記溶媒が、約10mMと約20mMとの間のEDTAを
含む、請求項1に記載の方法。 - 【請求項42】 前記溶媒が、約16mMのEDTAを含む、請求項1に記
載の方法。 - 【請求項43】 前記溶媒が、約10mMと約20mMとの間のEDTAを
含む、請求項14に記載の方法。 - 【請求項44】 前記溶媒が、約16mMのEDTAを含む、請求項14に
記載の方法。 - 【請求項45】 前記溶媒が、約10mMと約20mMとの間のEDTAを
含む、請求項36に記載の方法。 - 【請求項46】 前記溶媒が、約16mMのEDTAを含む、請求項36に
記載の方法。 - 【請求項47】 前記溶媒が、約10mMと約20mMとの間のEDTAを
含む、請求項37に記載の方法。 - 【請求項48】 前記溶媒が、約16mMのEDTAを含む、請求項37に
記載の方法。
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