JP2002515241A - アミノ酸修飾ポリペプチド - Google Patents
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- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
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Abstract
(57)【要約】
通常アミノ酸アナログを含むポリペプチドを提供しない細胞により産生されるポリペプチドへのある種のアミノ酸アナログ取込みは、細胞をこのようなアミノ酸アナログを含有する増殖培地に曝露することにより達成される。取込みの程度は、培地中のアミノ酸アナログ濃度の調節および／または培地浸透圧の調節により制御することができる。このような取込みは、ポリペプチドの化学的及び物理的特徴を変更しかつ研究することを可能にする。
Description
【０００１】1.技術分野 ポリペプチドの特性を増強する、あるいは、改変するようなアミノ酸を取り込
んだ、操作されたポリペプチド。
んだ、操作されたポリペプチド。
【０００２】2.関連技術の説明 遺伝子操作は、ある生物体から別の生物体へとポリペプチド産生を移すことを
可能とする。その場合、元の宿主に固有の産生装置の一部がレシピエントに移植
される。しばしば、元の宿主は、レシピエントに含まれないまたは導入されない
ようなポリペプチド産生に関連したある独自のプロセシング経路を発達させてい
る。例えば、哺乳類細胞は、システムのタンパク質産物に独自の特性を付与する
翻訳後酵素システムの複合体セットを含んでいることはよく知られている。通常
哺乳類細胞によって産生されるタンパク質をコードしている遺伝子が細菌又は酵
母細胞に導入される場合、このタンパク質は、このような翻訳後修飾を受けず、
このタンパク質は当初意図されたようには機能しないことがある。
可能とする。その場合、元の宿主に固有の産生装置の一部がレシピエントに移植
される。しばしば、元の宿主は、レシピエントに含まれないまたは導入されない
ようなポリペプチド産生に関連したある独自のプロセシング経路を発達させてい
る。例えば、哺乳類細胞は、システムのタンパク質産物に独自の特性を付与する
翻訳後酵素システムの複合体セットを含んでいることはよく知られている。通常
哺乳類細胞によって産生されるタンパク質をコードしている遺伝子が細菌又は酵
母細胞に導入される場合、このタンパク質は、このような翻訳後修飾を受けず、
このタンパク質は当初意図されたようには機能しないことがある。
【０００３】 通常、生体細胞におけるポリペプチド又はタンパク質の合成過程は、DNAのRNA
への転写及びRNAのタンパク質への翻訳を含んでいる。３つの形態のRNAがタンパ
ク質合成に関与している：メッセンジャーRNA(mRNA)は、遺伝情報をリボソームR
NA(rRNA)から作られているリボソームに伝える一方で、トランスファーRNA(tRNA
)は、細胞プールの遊離アミノ酸に連結している。アミノ酸／tRNA複合体は、mRN
Aのコドンの隣に並び、実際の認識及び結合はtRNAにより媒介される。細胞は、
組み合わされて種々の順列配列でタンパク質へ取り込まれる最大２０種のアミノ
酸を含むことができる。各アミノ酸は、他の19種のアミノ酸と区別され、かつア
ミノアシル-tRNAシンテターゼとして知られている酵素によりｔRNAに装荷さる。
原則として、アミノ酸／tRNA複合体は、極めて特異的であり、通常的確な立体化
学的配置を持つ分子のみが、特定のアミノアシル-tRNAシンテターゼにより作用
を受ける。
への転写及びRNAのタンパク質への翻訳を含んでいる。３つの形態のRNAがタンパ
ク質合成に関与している：メッセンジャーRNA(mRNA)は、遺伝情報をリボソームR
NA(rRNA)から作られているリボソームに伝える一方で、トランスファーRNA(tRNA
)は、細胞プールの遊離アミノ酸に連結している。アミノ酸／tRNA複合体は、mRN
Aのコドンの隣に並び、実際の認識及び結合はtRNAにより媒介される。細胞は、
組み合わされて種々の順列配列でタンパク質へ取り込まれる最大２０種のアミノ
酸を含むことができる。各アミノ酸は、他の19種のアミノ酸と区別され、かつア
ミノアシル-tRNAシンテターゼとして知られている酵素によりｔRNAに装荷さる。
原則として、アミノ酸／tRNA複合体は、極めて特異的であり、通常的確な立体化
学的配置を持つ分子のみが、特定のアミノアシル-tRNAシンテターゼにより作用
を受ける。
【０００４】 多くの生体細胞において、いくつかのアミノ酸が周囲環境から取入れられ、そ
の一部は細胞内において前駆体から合成され、次に細胞の外部から同化される。
ある場合には、細胞は栄養要求性であり、すなわち、通常の代謝及び繁殖が必要
とする最小限のもの以外の特異的増殖物質を必要とし、これを周囲環境から得な
ければならない。いくつかの栄養要求株は、特定のアミノ酸を供給するために外
部環境に左右される。この特徴は、アミノアシル-tRNAシンテターゼの立体化学
特性に関する前述の規則に対する比較的稀な例外を利用することで、ある種のア
ミノ酸アナログの、栄養要求株によって産生されるタンパク質への取込みを可能
にする。例えば、プロリンはこのような例外であり、すなわちプロリル-tRNA複
合体の合成に寄与するアミノ酸活性化酵素は、他のものほど特異的ではない。そ
の結果ある種のプロリンアナログが、細菌、植物及び動物の細胞システムに取込
まれる。Tanら、「プロリンアナログは培養においてヒトヒフ繊維芽細胞増殖及
びコラーゲン産生を阻害する(Proline Analogs Inhibit Human Skin Fibroblast
Growth and Collagen Production in Culture)」、Journal of Investigative
Dermatology、80:261-267(1983)を参照のこと。
の一部は細胞内において前駆体から合成され、次に細胞の外部から同化される。
ある場合には、細胞は栄養要求性であり、すなわち、通常の代謝及び繁殖が必要
とする最小限のもの以外の特異的増殖物質を必要とし、これを周囲環境から得な
ければならない。いくつかの栄養要求株は、特定のアミノ酸を供給するために外
部環境に左右される。この特徴は、アミノアシル-tRNAシンテターゼの立体化学
特性に関する前述の規則に対する比較的稀な例外を利用することで、ある種のア
ミノ酸アナログの、栄養要求株によって産生されるタンパク質への取込みを可能
にする。例えば、プロリンはこのような例外であり、すなわちプロリル-tRNA複
合体の合成に寄与するアミノ酸活性化酵素は、他のものほど特異的ではない。そ
の結果ある種のプロリンアナログが、細菌、植物及び動物の細胞システムに取込
まれる。Tanら、「プロリンアナログは培養においてヒトヒフ繊維芽細胞増殖及
びコラーゲン産生を阻害する(Proline Analogs Inhibit Human Skin Fibroblast
Growth and Collagen Production in Culture)」、Journal of Investigative
Dermatology、80:261-267(1983)を参照のこと。
【０００５】 例えばNorenら、「非天然アミノ酸のタンパク質への位置指定取込みの一般的
方法(A General Method For Site-Specific Incorporation of Unnatural Amino
Acids Into Protein)」、Science、244：182-188（1989）において、非天然ア
ミノ酸をタンパク質に取込む方法が説明されており、ここでは、化学的にアシル
化されたサプレッサーtRNAを使用して、停止コドンを問題のコドンをコードして
いる残基に置換したことに対応してアミノ酸が挿入される。更にDoughertyら、
「周期的セレノメチオニン残基を含有する遺伝子操作された反復ポリペプチドの
合成(Synthesis of a Genetically Engineered Repetitive Polypeptide Contai
ning Periodic Selenomethionine Residues)」、Macromoleculus、26(7):1779-1
781(1993)も参照できるが、これは大腸菌（E.coli）メチオニン栄養要求株にセ
レノメチオニン含有培地を施し、細胞によって産生された全てのタンパク質にお
いてセレノメチオニンが完全にメチオニンと置換され得ることを実験データを基
に仮定している。
方法(A General Method For Site-Specific Incorporation of Unnatural Amino
Acids Into Protein)」、Science、244：182-188（1989）において、非天然ア
ミノ酸をタンパク質に取込む方法が説明されており、ここでは、化学的にアシル
化されたサプレッサーtRNAを使用して、停止コドンを問題のコドンをコードして
いる残基に置換したことに対応してアミノ酸が挿入される。更にDoughertyら、
「周期的セレノメチオニン残基を含有する遺伝子操作された反復ポリペプチドの
合成(Synthesis of a Genetically Engineered Repetitive Polypeptide Contai
ning Periodic Selenomethionine Residues)」、Macromoleculus、26(7):1779-1
781(1993)も参照できるが、これは大腸菌（E.coli）メチオニン栄養要求株にセ
レノメチオニン含有培地を施し、細胞によって産生された全てのタンパク質にお
いてセレノメチオニンが完全にメチオニンと置換され得ることを実験データを基
に仮定している。
【０００６】 cis-ヒドロキシ-L-プロリンを使用して、培養された正常ヒフ繊維芽細胞（Tan
ら、前掲）及び鶏胚由来の腱細胞（Uittoら、「cis-4-ヒドロキシ-L-プロリンを
含有するプロコラーゲンポリペプチドは、過剰グリコシル化されかつ非らせんプ
ロ-γ-鎖として分泌される(Procollagen Polypeptide Containing cis-4-hydrox
y-L-proline are Overglycosylated and Secreted as Nonhelical Pro-γ-Chain
s)」、Archives of Biochemistry and Biophysics、185:1:214-221(1978)を参照
）のような真核細胞への取込みによるコラーゲンに対するその作用を試験した。
しかし研究者達は、trans-4-ヒドロキシプロリンが、原核細胞E. coliのプロリ
ン特異性tRNAに連結しないことを発見した。Papasら、「大腸菌のプロリンtRNA
へのアミノ酸結合の分析(Analysis of the Amino Acid Binding to the Proline
Transfer Acid Ribonucleic Synthetase of Escherichia coli)」、Journal of
Biological Chemistry、245:7:1588-1595(1970)を参照のこと。別の不首尾に終
わったtrans-4-ヒドロキシプロリンを原核細胞に取込む試みは、Demingら、「プ
ロリンアナログの人工タンパク質へのin vitro取込み(In Vitro Incorporation
of Proline Analogs into Artificial Proteins)」、Poly. Mater. Sci. Engin.
Proceed.、71:673-674(1994)に記載されている。Demingらは、特定のプロリン
アナログ、すなわちL-アゼチジン-2-カルボン酸、L-γ-チアプロリン、3,4-デヒ
ドロプロリン、及びL-trans-4-ヒドロキシプロリンのE. coli細胞において発現
される人工タンパク質への取込みの可能性を研究し報告している。L-アゼチジン
-2-カルボン酸、L-γ-チアプロリン及び3,4-デヒドロプロリンのみが、in vivo
においてE. coliのタンパク質へ取込まれたとして報告されている。
ら、前掲）及び鶏胚由来の腱細胞（Uittoら、「cis-4-ヒドロキシ-L-プロリンを
含有するプロコラーゲンポリペプチドは、過剰グリコシル化されかつ非らせんプ
ロ-γ-鎖として分泌される(Procollagen Polypeptide Containing cis-4-hydrox
y-L-proline are Overglycosylated and Secreted as Nonhelical Pro-γ-Chain
s)」、Archives of Biochemistry and Biophysics、185:1:214-221(1978)を参照
）のような真核細胞への取込みによるコラーゲンに対するその作用を試験した。
しかし研究者達は、trans-4-ヒドロキシプロリンが、原核細胞E. coliのプロリ
ン特異性tRNAに連結しないことを発見した。Papasら、「大腸菌のプロリンtRNA
へのアミノ酸結合の分析(Analysis of the Amino Acid Binding to the Proline
Transfer Acid Ribonucleic Synthetase of Escherichia coli)」、Journal of
Biological Chemistry、245:7:1588-1595(1970)を参照のこと。別の不首尾に終
わったtrans-4-ヒドロキシプロリンを原核細胞に取込む試みは、Demingら、「プ
ロリンアナログの人工タンパク質へのin vitro取込み(In Vitro Incorporation
of Proline Analogs into Artificial Proteins)」、Poly. Mater. Sci. Engin.
Proceed.、71:673-674(1994)に記載されている。Demingらは、特定のプロリン
アナログ、すなわちL-アゼチジン-2-カルボン酸、L-γ-チアプロリン、3,4-デヒ
ドロプロリン、及びL-trans-4-ヒドロキシプロリンのE. coli細胞において発現
される人工タンパク質への取込みの可能性を研究し報告している。L-アゼチジン
-2-カルボン酸、L-γ-チアプロリン及び3,4-デヒドロプロリンのみが、in vivo
においてE. coliのタンパク質へ取込まれたとして報告されている。
【０００７】 I型コラーゲンは、線維状、間質型コラーゲンの最も豊富な形であり、細胞外
マトリックスの主成分である。コラーゲンモノマーは、Gly-X-Yトリプレットの
反復配列として約1000個のアミノ酸残基からなる。X及びY位のおよそ35％が、プ
ロリン及び4-ヒドロキシプロリンで占拠されている。コラーゲンモノマーは、1
本のα2鎖及び2本のα1鎖からなる三重らせんへ会合している。三重らせんは会
合して、配向した強固な束(tight bundle)となった繊維になっている。コラーゲ
ン線維束は更に集合し、細胞外マトリックスへのスカフォールド(scafold)を形
成する。
マトリックスの主成分である。コラーゲンモノマーは、Gly-X-Yトリプレットの
反復配列として約1000個のアミノ酸残基からなる。X及びY位のおよそ35％が、プ
ロリン及び4-ヒドロキシプロリンで占拠されている。コラーゲンモノマーは、1
本のα2鎖及び2本のα1鎖からなる三重らせんへ会合している。三重らせんは会
合して、配向した強固な束(tight bundle)となった繊維になっている。コラーゲ
ン線維束は更に集合し、細胞外マトリックスへのスカフォールド(scafold)を形
成する。
【０００８】 哺乳類細胞において、コラーゲンの翻訳後修飾はその最終的な化学的及び物理
的特性に寄与しており、これはプロ領域(proregion)のタンパク質分解性消化、
リシン及びプロリンのヒドロキシル化、並びにヒドロキシル化されたリシンのグ
リコシル化を含んでいる。コラーゲンのタンパク質分解性消化は、N及びC末端の
プロ領域の切断に関連している。プロリンのヒドロキシル化がコラーゲンの力学
的特性に不可欠であることはわかっている。低レベルの4-ヒドロキシルプロリン
を有するコラーゲンは、壊血病に関連した続発症により明示されるように、力学
的特性が不良である。4-ヒドロキシプロリンは、ポリペプチド骨格において、水
素結合を介し、かつC-N結合のまわりの回転を制限することにより、三重らせん
に安定性を加える。安定構造が存在しない場合、天然の細胞酵素は、コラーゲン
ポリペプチドの分解を招く。 I型コラーゲンの構造的特質は、その一般に認識された生体適合性と共に、コ
ラーゲンを望ましい手術用インプラント材料にする。コラーゲンは、ウシのヒフ
又は腱から精製され、かつ止血鉗子、移植用ゲル、薬物送達ビヒクル及び骨代用
品を含む様々な医療用具の形で使用される。しかし、ヒトにウシコラーゲンが移
植される場合、即時型又は遅延型免疫応答を引き起こすことがある。
的特性に寄与しており、これはプロ領域(proregion)のタンパク質分解性消化、
リシン及びプロリンのヒドロキシル化、並びにヒドロキシル化されたリシンのグ
リコシル化を含んでいる。コラーゲンのタンパク質分解性消化は、N及びC末端の
プロ領域の切断に関連している。プロリンのヒドロキシル化がコラーゲンの力学
的特性に不可欠であることはわかっている。低レベルの4-ヒドロキシルプロリン
を有するコラーゲンは、壊血病に関連した続発症により明示されるように、力学
的特性が不良である。4-ヒドロキシプロリンは、ポリペプチド骨格において、水
素結合を介し、かつC-N結合のまわりの回転を制限することにより、三重らせん
に安定性を加える。安定構造が存在しない場合、天然の細胞酵素は、コラーゲン
ポリペプチドの分解を招く。 I型コラーゲンの構造的特質は、その一般に認識された生体適合性と共に、コ
ラーゲンを望ましい手術用インプラント材料にする。コラーゲンは、ウシのヒフ
又は腱から精製され、かつ止血鉗子、移植用ゲル、薬物送達ビヒクル及び骨代用
品を含む様々な医療用具の形で使用される。しかし、ヒトにウシコラーゲンが移
植される場合、即時型又は遅延型免疫応答を引き起こすことがある。
【０００９】 従って、研究者達は、その構造的特質を全て伴うヒト組換えコラーゲンを遺伝
子操作により商業的量で作製することを試みてきた。残念ながら、E. coliのよ
うなタンパク質の商業的大量生産者によるコラーゲンの産生は成功していない。
主要な問題点は、E. coliには存在しない酵素によるコラーゲンの大規模な翻訳
後修飾である。E. coli細胞がヒドロキシル化されていないコラーゲンプロリン
のプロリンヒドロキシル化を提供することができないということは、商業的量の
しっかりした構造のコラーゲンの製造を妨げている。
子操作により商業的量で作製することを試みてきた。残念ながら、E. coliのよ
うなタンパク質の商業的大量生産者によるコラーゲンの産生は成功していない。
主要な問題点は、E. coliには存在しない酵素によるコラーゲンの大規模な翻訳
後修飾である。E. coli細胞がヒドロキシル化されていないコラーゲンプロリン
のプロリンヒドロキシル化を提供することができないということは、商業的量の
しっかりした構造のコラーゲンの製造を妨げている。
【００１０】発明の概要 細胞によって産生されるポリペプチドへアミノ酸アナログを取込ませる方法で
あって、原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される細胞を提供すること、
trans-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プロ
リン及びそれらの組合せからなる群より選択される少なくとも1種のアミノ酸ア
ナログを含有する増殖培地を提供すること、および、前記細胞をそれらの増殖培
地に接触させ、そこで前記少なくとも1種のアミノ酸アナログが前記細胞に同化
され、かつ少なくとも1種のポリペプチドに取込まれることを含む、前記方法が
提供される。 更に、原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される細胞により産生される
ポリペプチド中のアミノ酸の、アミノ酸アナログによる置換法も提供され、これ
は、原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される細胞を提供すること、tran
s-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プロリン
及びそれらの組合せからなる群より選択される少なくとも1種のアミノ酸アナロ
グを含有する増殖培地を提供すること、および前記細胞を前記増殖培地に接触さ
せ、そこで前記少なくとも1種のアミノ酸が細胞に同化され、かつ少なくとも1種
のポリペプチドにおいて少なくとも1個の天然のアミノ酸と置換され取込まれる
ことを含む。
あって、原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される細胞を提供すること、
trans-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プロ
リン及びそれらの組合せからなる群より選択される少なくとも1種のアミノ酸ア
ナログを含有する増殖培地を提供すること、および、前記細胞をそれらの増殖培
地に接触させ、そこで前記少なくとも1種のアミノ酸アナログが前記細胞に同化
され、かつ少なくとも1種のポリペプチドに取込まれることを含む、前記方法が
提供される。 更に、原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される細胞により産生される
ポリペプチド中のアミノ酸の、アミノ酸アナログによる置換法も提供され、これ
は、原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される細胞を提供すること、tran
s-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プロリン
及びそれらの組合せからなる群より選択される少なくとも1種のアミノ酸アナロ
グを含有する増殖培地を提供すること、および前記細胞を前記増殖培地に接触さ
せ、そこで前記少なくとも1種のアミノ酸が細胞に同化され、かつ少なくとも1種
のポリペプチドにおいて少なくとも1個の天然のアミノ酸と置換され取込まれる
ことを含む。
【００１１】 ポリペプチドへ取込まれるアミノ酸アナログ量を制御する方法も提供され、こ
れは、原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される少なくとも第一の細胞を
提供すること、trans-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フ
ルオロ-L-プロリン及びそれらの組合せからなる群より選択される少なくとも1種
のアミノ酸アナログの第一の所定量を含有する増殖培地を提供すること、第一の
細胞を第一の増殖培地と接触させ、そこで第一のアミノ酸アナログ量が第一の細
胞に同化され、かつ少なくとも1種のポリペプチドに取込まれせることを含む。
少なくとも原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される第二の細胞も、tran
s-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プロリン
及びそれらの組合せからなる群より選択されるアミノ酸アナログの第二の所定量
を含有する第二の増殖培地と共に提供され、かつ少なくとも第二の細胞を第二の
増殖培地と接触させ、そこで第二のアミノ酸アナログ量が第二の細胞に同化され
、かつ少なくとも1種のポリペプチドに取込まれる。
れは、原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される少なくとも第一の細胞を
提供すること、trans-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フ
ルオロ-L-プロリン及びそれらの組合せからなる群より選択される少なくとも1種
のアミノ酸アナログの第一の所定量を含有する増殖培地を提供すること、第一の
細胞を第一の増殖培地と接触させ、そこで第一のアミノ酸アナログ量が第一の細
胞に同化され、かつ少なくとも1種のポリペプチドに取込まれせることを含む。
少なくとも原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される第二の細胞も、tran
s-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プロリン
及びそれらの組合せからなる群より選択されるアミノ酸アナログの第二の所定量
を含有する第二の増殖培地と共に提供され、かつ少なくとも第二の細胞を第二の
増殖培地と接触させ、そこで第二のアミノ酸アナログ量が第二の細胞に同化され
、かつ少なくとも1種のポリペプチドに取込まれる。
【００１２】 更に、細胞により産生される組換えポリペプチドの安定性を増大する方法が提
供され、これは、原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される細胞を提供す
ること、trans-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ
-L-プロリン及びそれらの組合せからなる群より選択されるアミノ酸アナログを
含有する増殖培地を提供すること、および、前記細胞を前記増殖培地に接触させ
、そこで前記アミノ酸アナログが前記細胞に同化され、かつ組換えポリペプチド
に取込まれ、これによりポリペプチドを安定化させることを含む。 細胞へのアミノ酸アナログの取込を増大させる、及び、アミノ酸アナログ／tR
NA形成を生じさせる方法も提供され、これも同じく、原核細胞及び真核細胞から
なる群より選択される細胞を提供すること、trans-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒ
ドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プロリン及びそれらの組合せからなる群
より選択されるアミノ酸アナログを含有する高張の増殖培地を提供すること、前
記細胞を前記高張の増殖培地に接触させること、そこで前記アミノ酸アナログが
前記細胞に同化され、かつアミノ酸アナログ／tRNA複合体へ取込まれることを含
む。前述の他のいずれかの方法において、細胞へのアミノ酸アナログの取り込み
増大のために、場合により高張の増殖培地を取り入れることができる。 原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される細胞、並びにtrans-4-ヒドロ
キシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プロリン及びそれら
の組合せからなる群より選択されるアミノ酸アナログを含有する高張の培地を含
む組成物も提供される。
供され、これは、原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される細胞を提供す
ること、trans-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ
-L-プロリン及びそれらの組合せからなる群より選択されるアミノ酸アナログを
含有する増殖培地を提供すること、および、前記細胞を前記増殖培地に接触させ
、そこで前記アミノ酸アナログが前記細胞に同化され、かつ組換えポリペプチド
に取込まれ、これによりポリペプチドを安定化させることを含む。 細胞へのアミノ酸アナログの取込を増大させる、及び、アミノ酸アナログ／tR
NA形成を生じさせる方法も提供され、これも同じく、原核細胞及び真核細胞から
なる群より選択される細胞を提供すること、trans-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒ
ドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プロリン及びそれらの組合せからなる群
より選択されるアミノ酸アナログを含有する高張の増殖培地を提供すること、前
記細胞を前記高張の増殖培地に接触させること、そこで前記アミノ酸アナログが
前記細胞に同化され、かつアミノ酸アナログ／tRNA複合体へ取込まれることを含
む。前述の他のいずれかの方法において、細胞へのアミノ酸アナログの取り込み
増大のために、場合により高張の増殖培地を取り入れることができる。 原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される細胞、並びにtrans-4-ヒドロ
キシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プロリン及びそれら
の組合せからなる群より選択されるアミノ酸アナログを含有する高張の培地を含
む組成物も提供される。
【００１３】好ましい態様の詳細な説明 前掲のPapesら及びDemingら両者とは対照的に、原核細胞及び真核細胞は、意
外にもタンパク質にtrans-4-ヒドロキシプロリンを同化及び取込むようにするこ
とができる。このような同化及び取込みは、ポリペプチドの構造及び機能が、組
換え宿主の本来のタンパク質産生システムによってはもたらされないプロリンの
翻訳後のヒドロキシル化によって決まる場合に特に有用である。従って、E. col
iのような原核細胞、並びに通常プロリンをヒドロキシル化しないサッカロミセ
ス・セレビシアエ（Saccharomyces cerevisiae）、サッカロミセス・カールスベ
ルグンシス(Saccharomyces carlsbergnsis)及びシゾサッカロミセス・ポンベ(Sc
hizosaccharomyces pombe)のような真核細胞、並びに、更に、例えばスポドプテ
ラ・フルギペルダ(Spodoptera frugiperda)、トリコプラシアニ(Trichoplasia n
i)、ヘリオシス・ビレスセンス(Heliothis virescens)、ボンビック・モリ(Bomb
yx mori)を含む鱗翅目細胞株のような昆虫細胞であって、バキュロウイルスに感
染した昆虫細胞のような真核細胞；その構造及び機能がヒドロキシル化によって
左右されるある種のポリペプチドを充分に産生することができないCHO細胞、COS
細胞及びNIH3T3細胞を、ヒドロキシル化されたプロリンを有するポリペプチドを
産生するようにすることができる。取込みは、例えば最初にアミノ酸をプロリン
へ変更し、その後trans-4-ヒドロキシプロリンへ置換できる新たなプロリン位置
を作り出すことによってポリペプチドへtrans-4-ヒドロキシプロリンを追加する
こと、または、ポリペプチド中の天然に生じるプロリンをtrans-4-ヒドロキシプ
ロリンに置換することを含む。
外にもタンパク質にtrans-4-ヒドロキシプロリンを同化及び取込むようにするこ
とができる。このような同化及び取込みは、ポリペプチドの構造及び機能が、組
換え宿主の本来のタンパク質産生システムによってはもたらされないプロリンの
翻訳後のヒドロキシル化によって決まる場合に特に有用である。従って、E. col
iのような原核細胞、並びに通常プロリンをヒドロキシル化しないサッカロミセ
ス・セレビシアエ（Saccharomyces cerevisiae）、サッカロミセス・カールスベ
ルグンシス(Saccharomyces carlsbergnsis)及びシゾサッカロミセス・ポンベ(Sc
hizosaccharomyces pombe)のような真核細胞、並びに、更に、例えばスポドプテ
ラ・フルギペルダ(Spodoptera frugiperda)、トリコプラシアニ(Trichoplasia n
i)、ヘリオシス・ビレスセンス(Heliothis virescens)、ボンビック・モリ(Bomb
yx mori)を含む鱗翅目細胞株のような昆虫細胞であって、バキュロウイルスに感
染した昆虫細胞のような真核細胞；その構造及び機能がヒドロキシル化によって
左右されるある種のポリペプチドを充分に産生することができないCHO細胞、COS
細胞及びNIH3T3細胞を、ヒドロキシル化されたプロリンを有するポリペプチドを
産生するようにすることができる。取込みは、例えば最初にアミノ酸をプロリン
へ変更し、その後trans-4-ヒドロキシプロリンへ置換できる新たなプロリン位置
を作り出すことによってポリペプチドへtrans-4-ヒドロキシプロリンを追加する
こと、または、ポリペプチド中の天然に生じるプロリンをtrans-4-ヒドロキシプ
ロリンに置換することを含む。
【００１４】 大量生産生物体における組換えポリペプチド作製法はよく知られたものである
。プラスミド、ウイルス、コスミド及び人工染色体のような複製可能な発現ベク
ターは、所望のタンパク質をコードしている遺伝子を一方の宿主から他方へと輸
送するために常用されている。遺伝子クローニング、発現ベクターへの遺伝子ラ
イゲーション及びこのような発現ベクターによる宿主細胞の形質転換のいずれの
既知の方法も本発明の説明を進めるために使用することができると考えられる。 化学的及び物理的特性がtrans-4-ヒドロキシプロリンによって左右されるポリ
ペプチドへのtrans-4-ヒドロキシプロリンの取込みは、プロリンのtrans-4-ヒド
ロキシプロリンへの転換のための適当なシステムを有さない産生システムにおい
て有用であるのみではなく、更に通常はtrans-4-ヒドロキシプロリンを有さない
ポリペプチドの構造及び機能の研究においても有用である。本開示により、以下
のアミノ酸アナログも、取込むことができると考えられる：trans-4-ヒドロキシ
プロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プロリン及びそれらの組
合せ（以後「アミノ酸アナログ」と称する）。原核細胞及び真核細胞の使用は、
これらがこのようなポリペプチドの比較的安価な大量生産を可能にするので望ま
しい。これらのアミノ酸アナログをいずれの所望のポリペプチドにも取込むこと
ができると考えられている。好ましい実施態様において、原核細胞及び真核細胞
は、増殖培地中にアミノ酸アナログを添加する前に、培地中のプロリン量を減少
又は除去することにより、プロリンに対して飢餓状態にされる。
。プラスミド、ウイルス、コスミド及び人工染色体のような複製可能な発現ベク
ターは、所望のタンパク質をコードしている遺伝子を一方の宿主から他方へと輸
送するために常用されている。遺伝子クローニング、発現ベクターへの遺伝子ラ
イゲーション及びこのような発現ベクターによる宿主細胞の形質転換のいずれの
既知の方法も本発明の説明を進めるために使用することができると考えられる。 化学的及び物理的特性がtrans-4-ヒドロキシプロリンによって左右されるポリ
ペプチドへのtrans-4-ヒドロキシプロリンの取込みは、プロリンのtrans-4-ヒド
ロキシプロリンへの転換のための適当なシステムを有さない産生システムにおい
て有用であるのみではなく、更に通常はtrans-4-ヒドロキシプロリンを有さない
ポリペプチドの構造及び機能の研究においても有用である。本開示により、以下
のアミノ酸アナログも、取込むことができると考えられる：trans-4-ヒドロキシ
プロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プロリン及びそれらの組
合せ（以後「アミノ酸アナログ」と称する）。原核細胞及び真核細胞の使用は、
これらがこのようなポリペプチドの比較的安価な大量生産を可能にするので望ま
しい。これらのアミノ酸アナログをいずれの所望のポリペプチドにも取込むこと
ができると考えられている。好ましい実施態様において、原核細胞及び真核細胞
は、増殖培地中にアミノ酸アナログを添加する前に、培地中のプロリン量を減少
又は除去することにより、プロリンに対して飢餓状態にされる。
【００１５】 例えばニューイングランドバイオラボ社から市販されている、図１に示された
ようなプラスミドpMAL-c2のような、マルトース結合タンパク質(MBP)の遺伝子を
含む発現ベクターは、タンパク質合成及び同化作用が外部から供給されたプロリ
ンによって決まるような、E. coliのような原核細胞プロリン栄養要求株又はS.
cerevisiaeのような真核細胞の栄養要求株に形質転換される。原核細胞において
使用するための他の好ましい発現ベクターは、pKK-223（ファルマシア社）、pTR
C（インビトロゲン社）、pGEX（ファルマシア社）、pET（ノバゲン社）及びpQE
（キアゲン社）を含む市販されているプラスミドである。プロリルtRNAシンテタ
ーゼは、前述のアミノ酸アナログのいずれか一つとプロリンtRNAの誤アシル化を
行うのに十分な程曖昧である(promiscuaus)ので、タンパク質合成におけるプロ
リンのアミノ酸アナログへの置換が生じる。形質転換された細胞の細胞内取込み
においてプロリンと競合するのに充分量、すなわち典型的には約0.001M〜約0.1M
の範囲であり、より好ましくは約0.005M〜約0.5Mのアミノ酸アナログ（複数）が
増殖培地に添加される。充分な時間が経過した後、一般に約30分〜約24時間又は
それ以降、アミノ酸アナログ（複数）が、細胞により同化され、かつタンパク質
合成経路に取込まれる。図２に示されるように、trans-4-ヒドロキシプロリンの
細胞内濃度は、増殖培地内のtrans-4-ヒドロキシプロリン濃度が上昇するにつれ
て上昇する。好ましい実施態様において、原核細胞および／または真核細胞は、
増殖培地中にアミノ酸アナログが添加されるに先立ち、培地中のプロリン量を減
少又は除去することによりプロリンについて飢餓状態とされる。
ようなプラスミドpMAL-c2のような、マルトース結合タンパク質(MBP)の遺伝子を
含む発現ベクターは、タンパク質合成及び同化作用が外部から供給されたプロリ
ンによって決まるような、E. coliのような原核細胞プロリン栄養要求株又はS.
cerevisiaeのような真核細胞の栄養要求株に形質転換される。原核細胞において
使用するための他の好ましい発現ベクターは、pKK-223（ファルマシア社）、pTR
C（インビトロゲン社）、pGEX（ファルマシア社）、pET（ノバゲン社）及びpQE
（キアゲン社）を含む市販されているプラスミドである。プロリルtRNAシンテタ
ーゼは、前述のアミノ酸アナログのいずれか一つとプロリンtRNAの誤アシル化を
行うのに十分な程曖昧である(promiscuaus)ので、タンパク質合成におけるプロ
リンのアミノ酸アナログへの置換が生じる。形質転換された細胞の細胞内取込み
においてプロリンと競合するのに充分量、すなわち典型的には約0.001M〜約0.1M
の範囲であり、より好ましくは約0.005M〜約0.5Mのアミノ酸アナログ（複数）が
増殖培地に添加される。充分な時間が経過した後、一般に約30分〜約24時間又は
それ以降、アミノ酸アナログ（複数）が、細胞により同化され、かつタンパク質
合成経路に取込まれる。図２に示されるように、trans-4-ヒドロキシプロリンの
細胞内濃度は、増殖培地内のtrans-4-ヒドロキシプロリン濃度が上昇するにつれ
て上昇する。好ましい実施態様において、原核細胞および／または真核細胞は、
増殖培地中にアミノ酸アナログが添加されるに先立ち、培地中のプロリン量を減
少又は除去することによりプロリンについて飢餓状態とされる。
【００１６】 ヒトI型(α1)コラーゲンの遺伝子を含む発現ベクター（DNA配列は図３及び3A
に示す；プラスミド地図は図４に示す）は、タンパク質合成及び同化作用が外部
から供給されたプロリンによって決まる原核細胞または真核細胞のプロリン栄養
要求株に形質転換される。前述のように、プロリルtRNAシンテターゼは、アミノ
酸アナログ（複数）とプロリンtRNAの誤アシル化を行うのに十分な程曖昧である
ので、アミノ酸アナログ（複数）の置換が生じる。前述の培地中のアミノ酸アナ
ログ（複数）の量が、この場合も適用可能である。 ヒトI型(α1)コラーゲンの断片をコードしているDNAを含む発現ベクター（例
えば、DNA配列は図５に示し、プラスミド地図は図６に示す）は、前述のように
原核細胞または真核細胞のプロリン栄養要求株に形質転換される。同様に、コラ
ーゲン様ポリペプチドをコードしているDNAを含む発現ベクター（例えば、DNA配
列は図７に示し、アミノ酸配列は図８に示し、プラスミド地図は図９に示す）を
使って、前述のように原核細胞または真核細胞の栄養要求株が形質転換される。
コラーゲン様ペプチドとは、コラーゲンと少なくとも部分的な相同性を有し、か
つコラーゲンに類似した化学的及び物理的特性を示すものである。従って、コラ
ーゲン様ペプチドは、例えばX及びY位の約35％がプロリン及び4-ヒドロキシプロ
リンで占拠されているようなGly-X-Yトリプレットの反復配列からなる。本願明
細書に記された特定の好ましいコラーゲン断片及びコラーゲン様ペプチドは、細
胞外マトリックスに集成(assembling)することが可能である。前述のようなコラ
ーゲン断片及びコラーゲン様ペプチドの両方において、プロリルtRNAシンテター
ゼは、アミノ酸アナログ（複数）とプロリンtRNAの誤アシル化を行うのに十分な
程曖昧であるので、アミノ酸アナログ（複数）との置換が生じる。前述のアミノ
酸アナログ（複数）量が、この場合も適用可能である。
に示す；プラスミド地図は図４に示す）は、タンパク質合成及び同化作用が外部
から供給されたプロリンによって決まる原核細胞または真核細胞のプロリン栄養
要求株に形質転換される。前述のように、プロリルtRNAシンテターゼは、アミノ
酸アナログ（複数）とプロリンtRNAの誤アシル化を行うのに十分な程曖昧である
ので、アミノ酸アナログ（複数）の置換が生じる。前述の培地中のアミノ酸アナ
ログ（複数）の量が、この場合も適用可能である。 ヒトI型(α1)コラーゲンの断片をコードしているDNAを含む発現ベクター（例
えば、DNA配列は図５に示し、プラスミド地図は図６に示す）は、前述のように
原核細胞または真核細胞のプロリン栄養要求株に形質転換される。同様に、コラ
ーゲン様ポリペプチドをコードしているDNAを含む発現ベクター（例えば、DNA配
列は図７に示し、アミノ酸配列は図８に示し、プラスミド地図は図９に示す）を
使って、前述のように原核細胞または真核細胞の栄養要求株が形質転換される。
コラーゲン様ペプチドとは、コラーゲンと少なくとも部分的な相同性を有し、か
つコラーゲンに類似した化学的及び物理的特性を示すものである。従って、コラ
ーゲン様ペプチドは、例えばX及びY位の約35％がプロリン及び4-ヒドロキシプロ
リンで占拠されているようなGly-X-Yトリプレットの反復配列からなる。本願明
細書に記された特定の好ましいコラーゲン断片及びコラーゲン様ペプチドは、細
胞外マトリックスに集成(assembling)することが可能である。前述のようなコラ
ーゲン断片及びコラーゲン様ペプチドの両方において、プロリルtRNAシンテター
ゼは、アミノ酸アナログ（複数）とプロリンtRNAの誤アシル化を行うのに十分な
程曖昧であるので、アミノ酸アナログ（複数）との置換が生じる。前述のアミノ
酸アナログ（複数）量が、この場合も適用可能である。
【００１７】 本願明細書の開示によれば、コラーゲン、コラーゲン断片又はコラーゲン様ペ
プチドドメインを有する任意のポリペプチドを、アミノ酸アナログ（複数）を取
込むように作出することができると考えられている。このようなポリペプチドに
は、コラーゲン、コラーゲン断片又はコラーゲン様ペプチドドメイン並びに糖タ
ンパク質、タンパク質、ペプチド及びプロテオグリカンのような1種以上の生理
活性物質を取込む領域を有するドメインが含まれる。生理活性物質は、生体に存
在する生理的機能の制御又は修飾を発揮する。生理活性物質には、ホルモン、増
殖因子、酵素、リガンド及び受容体が含まれる。生理活性物質の多くの活性ドメ
インは同定されかつ単離されている。コラーゲン、コラーゲン断片又はコラーゲ
ン様ペプチドドメインを有するポリペプチドも同じく、このような生理活性物質
の活性断片である1個以上の生理的活性ドメインを取込むドメインを有すること
ができると考えられている。従って、原核細胞のプロリン栄養要求株又は真核細
胞のプロリン栄養要求株の適当な発現ベクターを使った形質転換、並びに形質転
換された栄養要求株の少なくとも1種のアミノ酸アナログを含有する増殖培地と
の接触により、アミノ酸アナログ（複数）を取込むようにキメラタンパク質が作
製される。例えば、コラーゲン／骨形成因子(BMP) キメラ構築物又は様々なコラ
ーゲン／増殖因子キメラ構築物が、本発明において有用である。このような増殖
因子はよく知られており、インスリン様増殖因子、トランスフォーミング増殖因
子、血小板由来増殖因子などを含む。図10は、コラーゲンをコードしているDNA
、コラーゲン断片をコードしているDNA又はコラーゲン様ペプチドをコードして
いるDNAの3'末端に融合されたBMPのDNAを示している。図11は、コラーゲン／BMP
構築物を含むpCBCプラスミド地図を示している。好ましい実施態様において、コ
ラーゲン、コラーゲン断片又はコラーゲン様ペプチドドメインを有するタンパク
質は、手術用インプラントとして使用することができる細胞外マトリックスを形
成するように集成されている。
プチドドメインを有する任意のポリペプチドを、アミノ酸アナログ（複数）を取
込むように作出することができると考えられている。このようなポリペプチドに
は、コラーゲン、コラーゲン断片又はコラーゲン様ペプチドドメイン並びに糖タ
ンパク質、タンパク質、ペプチド及びプロテオグリカンのような1種以上の生理
活性物質を取込む領域を有するドメインが含まれる。生理活性物質は、生体に存
在する生理的機能の制御又は修飾を発揮する。生理活性物質には、ホルモン、増
殖因子、酵素、リガンド及び受容体が含まれる。生理活性物質の多くの活性ドメ
インは同定されかつ単離されている。コラーゲン、コラーゲン断片又はコラーゲ
ン様ペプチドドメインを有するポリペプチドも同じく、このような生理活性物質
の活性断片である1個以上の生理的活性ドメインを取込むドメインを有すること
ができると考えられている。従って、原核細胞のプロリン栄養要求株又は真核細
胞のプロリン栄養要求株の適当な発現ベクターを使った形質転換、並びに形質転
換された栄養要求株の少なくとも1種のアミノ酸アナログを含有する増殖培地と
の接触により、アミノ酸アナログ（複数）を取込むようにキメラタンパク質が作
製される。例えば、コラーゲン／骨形成因子(BMP) キメラ構築物又は様々なコラ
ーゲン／増殖因子キメラ構築物が、本発明において有用である。このような増殖
因子はよく知られており、インスリン様増殖因子、トランスフォーミング増殖因
子、血小板由来増殖因子などを含む。図10は、コラーゲンをコードしているDNA
、コラーゲン断片をコードしているDNA又はコラーゲン様ペプチドをコードして
いるDNAの3'末端に融合されたBMPのDNAを示している。図11は、コラーゲン／BMP
構築物を含むpCBCプラスミド地図を示している。好ましい実施態様において、コ
ラーゲン、コラーゲン断片又はコラーゲン様ペプチドドメインを有するタンパク
質は、手術用インプラントとして使用することができる細胞外マトリックスを形
成するように集成されている。
【００１８】 別の側面において、標的細胞へのアミノ酸アナログ（複数）輸送の量は、増殖
培地の張度を制御することによって調節することができる。図12に示したように
、高張の増殖培地は、trans-4-ヒドロキシプロリンのE. coliへ取込みを増加さ
せる。増殖培地の浸透圧を増大する全ての既知の方法が、本願明細書における使
用に適しており、これは塩化ナトリウム、KCl、MgCl2などの塩、並びにスクロー
ス、グルコース、マルトースその他のような糖、並びにポリエチレングリコール
(PEG)、デキストラン、セルロースその他などのようなポリマー、並びにグリシ
ンのようなアミノ酸の添加を含む。増殖培地の浸透圧の上昇は、アミノ酸アナロ
グ（複数）のより大きい細胞内濃度、並びにアミノ酸アナログ（複数）のtRNAへ
のより高度の複合体化(complexation)を生じる。その結果、この細胞によって産
生されるタンパク質は、アミノ酸アナログのより高度の取込みを達成している。
図12は、等張及び高張の培地条件下でのプロリン及びヒドロキシプロリンのMBP
への取込の割合を、天然のMBPにおけるプロリンと比較して示している。この結
果、増殖培地におけるアミノ酸アナログ（複数）の濃度の調節に加えて、浸透圧
の操作は、前述のような原核細胞及び真核細胞へのそれらの取込みの調節、その
結果としての標的ポリペプチドへの取込みを調節するための二面的な解決方法を
もたらす。
培地の張度を制御することによって調節することができる。図12に示したように
、高張の増殖培地は、trans-4-ヒドロキシプロリンのE. coliへ取込みを増加さ
せる。増殖培地の浸透圧を増大する全ての既知の方法が、本願明細書における使
用に適しており、これは塩化ナトリウム、KCl、MgCl2などの塩、並びにスクロー
ス、グルコース、マルトースその他のような糖、並びにポリエチレングリコール
(PEG)、デキストラン、セルロースその他などのようなポリマー、並びにグリシ
ンのようなアミノ酸の添加を含む。増殖培地の浸透圧の上昇は、アミノ酸アナロ
グ（複数）のより大きい細胞内濃度、並びにアミノ酸アナログ（複数）のtRNAへ
のより高度の複合体化(complexation)を生じる。その結果、この細胞によって産
生されるタンパク質は、アミノ酸アナログのより高度の取込みを達成している。
図12は、等張及び高張の培地条件下でのプロリン及びヒドロキシプロリンのMBP
への取込の割合を、天然のMBPにおけるプロリンと比較して示している。この結
果、増殖培地におけるアミノ酸アナログ（複数）の濃度の調節に加えて、浸透圧
の操作は、前述のような原核細胞及び真核細胞へのそれらの取込みの調節、その
結果としての標的ポリペプチドへの取込みを調節するための二面的な解決方法を
もたらす。
【００１９】 ここで使用することのできる培地には、M9最少培地（ギブコライフテクノロジ
ー社から入手）、LB培地、NZCYM培地、テリフィック培地（terrific broth）、S
OB培地及びその他の当該技術分野においてよく知られた市販の増殖培地のいずれ
もが含まれる。 様々な組織に由来するコラーゲンは、trans-4-ヒドロキシプロリンを異なる量
含有することができる。例えば、骨のようなより大きい強度が必要な組織につい
ては、ヒフのような低い強度が求められる組織のコラーゲンよりも、より多いtr
ans-4-ヒドロキシプロリン残基が含まれる。本システムは、コラーゲン、コラー
ゲン断片、コラーゲン様ペプチド、並びに生理活性ドメインに融合されたコラー
ゲンドメイン、コラーゲン断片ドメイン、又はコラーゲン様ドメインを有するキ
メラペプチド中のtrans-4-ヒドロキシプロリン量を調節する方法を提供する。な
ぜなら、増殖培地中のtrans-4-ヒドロキシプロリン濃度の増減により、それに応
じてこのようなポリペプチドに取込まれるtrans-4-ヒドロキシプロリン量が増減
するからである。コラーゲン、コラーゲン断片、コラーゲン様ペプチド及び前述
のキメラペプチドは、所定のレベルのtrans-4-ヒドロキシプロリンを有するよう
に発現することができる。この方法において、細胞外マトリックスの物理的特性
は、最終用途の必要要件に応じて調節することができる。
ー社から入手）、LB培地、NZCYM培地、テリフィック培地（terrific broth）、S
OB培地及びその他の当該技術分野においてよく知られた市販の増殖培地のいずれ
もが含まれる。 様々な組織に由来するコラーゲンは、trans-4-ヒドロキシプロリンを異なる量
含有することができる。例えば、骨のようなより大きい強度が必要な組織につい
ては、ヒフのような低い強度が求められる組織のコラーゲンよりも、より多いtr
ans-4-ヒドロキシプロリン残基が含まれる。本システムは、コラーゲン、コラー
ゲン断片、コラーゲン様ペプチド、並びに生理活性ドメインに融合されたコラー
ゲンドメイン、コラーゲン断片ドメイン、又はコラーゲン様ドメインを有するキ
メラペプチド中のtrans-4-ヒドロキシプロリン量を調節する方法を提供する。な
ぜなら、増殖培地中のtrans-4-ヒドロキシプロリン濃度の増減により、それに応
じてこのようなポリペプチドに取込まれるtrans-4-ヒドロキシプロリン量が増減
するからである。コラーゲン、コラーゲン断片、コラーゲン様ペプチド及び前述
のキメラペプチドは、所定のレベルのtrans-4-ヒドロキシプロリンを有するよう
に発現することができる。この方法において、細胞外マトリックスの物理的特性
は、最終用途の必要要件に応じて調節することができる。
【００２０】 組換え法により作出されたヒトのコラーゲン、コラーゲン断片、コラーゲン様ペ
プチド及び前述のキメラポリペプチドは、ヒト以外の動物から得られるコラーゲ
ン及びその誘導体に勝る顕著な利点を有する。ヒト遺伝子を使用するので、この
コラーゲンは医療用インプラントとしての状況において異種移植片として作用す
ることがない。更に、天然のコラーゲンとは異なり、プロリンのヒドロキシル化
の程度を予め設定することができる。この前例のない制御の程度は、三重らせん
の安定化、線維形成及び生体活性に関するtrans-4-ヒドロキシプロリンの貢献の
詳細な研究を可能にする。加えて所望のコラーゲン線維の強度を基にした医療用
インプラントの設計が可能である。 下記の実施例は、例証を目的として記されており、本明細書における限定として
解釈してはならない。
プチド及び前述のキメラポリペプチドは、ヒト以外の動物から得られるコラーゲ
ン及びその誘導体に勝る顕著な利点を有する。ヒト遺伝子を使用するので、この
コラーゲンは医療用インプラントとしての状況において異種移植片として作用す
ることがない。更に、天然のコラーゲンとは異なり、プロリンのヒドロキシル化
の程度を予め設定することができる。この前例のない制御の程度は、三重らせん
の安定化、線維形成及び生体活性に関するtrans-4-ヒドロキシプロリンの貢献の
詳細な研究を可能にする。加えて所望のコラーゲン線維の強度を基にした医療用
インプラントの設計が可能である。 下記の実施例は、例証を目的として記されており、本明細書における限定として
解釈してはならない。
【００２１】実施例１ 膜横断輸送 アンピシリン耐性を付与されたプラスミド(pMAL-c2、図１)を有するE. coli株
DH5α（supE44 ΔlacU169(φ80lacZ ΔM15)hsdR17 recA1 endA1 gyrA96 thi-1 r
elA1）の培養物5mlを、コンフルエントになるまでルリア・ブロス中で増殖させ
た（接種後約16時間）。これらの細胞を用いて、M9最少培地（M9塩、2％グルコ
ース、0.01mg/mlチアミン、100μg/mlアンピシリン、全てのアミノ酸を20μg/ml
で補充）500mlを含有する1L振盪フラスコに接種し、これをAU600が1.0になるま
で増殖させた（18〜20時間）。この培養物を二分し、細胞を遠心により収集した
。一方の培養物からの細胞をM9培地250mlに、及び他方からのものを0.5M NaClを
含有するM9培地250mlに再懸濁した。これらの培養物を、空気式振盪機において2
0分間37℃で(225rpm)平衡化し、25mlアリコート10個に分けた。これらの培養物
を振盪機に戻し、蒸留水中の1Mヒドロキシプロリン125μlを各チューブに添加し
た。2、4、8、12及び20分後に、4本の培養チューブ（2本は等張、2本は高張）を
、1μmポリカーボネートフィルターで減圧濾過し、これをすぐに蒸留水中に0.2M
NaOH／2％SDSの1.2mlが入った2ml微量遠心チューブに移した。一晩溶解した後
、チューブからフィルターを慎重に取り除き、かつ上清緩衝液をGrantの方法（J
ournal of Clinical Pathology、17:685(1964)）に従ってヒドロキシプロリンに
ついてアッセイした。 trans-4-ヒドロキシプロリンの細胞内濃度対時間を、図
２に図示した。
DH5α（supE44 ΔlacU169(φ80lacZ ΔM15)hsdR17 recA1 endA1 gyrA96 thi-1 r
elA1）の培養物5mlを、コンフルエントになるまでルリア・ブロス中で増殖させ
た（接種後約16時間）。これらの細胞を用いて、M9最少培地（M9塩、2％グルコ
ース、0.01mg/mlチアミン、100μg/mlアンピシリン、全てのアミノ酸を20μg/ml
で補充）500mlを含有する1L振盪フラスコに接種し、これをAU600が1.0になるま
で増殖させた（18〜20時間）。この培養物を二分し、細胞を遠心により収集した
。一方の培養物からの細胞をM9培地250mlに、及び他方からのものを0.5M NaClを
含有するM9培地250mlに再懸濁した。これらの培養物を、空気式振盪機において2
0分間37℃で(225rpm)平衡化し、25mlアリコート10個に分けた。これらの培養物
を振盪機に戻し、蒸留水中の1Mヒドロキシプロリン125μlを各チューブに添加し
た。2、4、8、12及び20分後に、4本の培養チューブ（2本は等張、2本は高張）を
、1μmポリカーボネートフィルターで減圧濾過し、これをすぐに蒸留水中に0.2M
NaOH／2％SDSの1.2mlが入った2ml微量遠心チューブに移した。一晩溶解した後
、チューブからフィルターを慎重に取り除き、かつ上清緩衝液をGrantの方法（J
ournal of Clinical Pathology、17:685(1964)）に従ってヒドロキシプロリンに
ついてアッセイした。 trans-4-ヒドロキシプロリンの細胞内濃度対時間を、図
２に図示した。
【００２２】実施例２ 膜横断輸送に対する塩濃度の作用 膜横断輸送に対する塩濃度の作用を決定するために、実施例１と同様の方法を
行った。アンピシリン耐性を付与されたプラスミド(pMAL-c2、図１)を含むE. co
li株DH5α（supE44 ΔlacU169(φ80lacZ ΔM15)hsdR17 recA1 endA1 gyrA96 thi
-1 relA1）の培養物5mlを、コンフルエントになるまでルリア・ブロス中で増殖
させた（接種後約16時間）。これらの細胞を用いて、M9最少培地（M9塩、2％グ
ルコース、0.01mg/mlチアミン、100μg/mlアンピシリン、全てのアミノ酸を20μ
g/mlで補充）500mlを含有する1L振盪フラスコに接種し、これをAU600が0.6にな
るまで増殖させた。この培養物を三等分し、各々の細胞を遠心により収集し、か
つそれぞれ、M9培地150ml、0.5M NaClを含有するM9培地150ml、及び1.0M NaClを
含有するM9培地150mlに再懸濁した。これらの培養物を、振盪機において20分間3
7℃で(225rpm)平衡化とし、25mlのアリコート6個に分けた。これらの培養物を振
盪機に戻し、蒸留水中の1Mヒドロキシプロリン125μlを各チューブに添加した。
5及び15分後に、9本の培養チューブ（3本は等張、3 x 0.5M NaCl、3 x 1.0M NaC
l）を、1μmポリカーボネートフィルター上で減圧濾過し、これをすぐに蒸留水
中に0.2M NaOH／2％SDSの1.2mlが入った2ml微量遠心チューブに移した。一晩溶
解した後、チューブからフィルターを慎重に取り除きし、かつ上清緩衝液を前記
Grantの方法に従ってヒドロキシプロリンについてアッセイした。
行った。アンピシリン耐性を付与されたプラスミド(pMAL-c2、図１)を含むE. co
li株DH5α（supE44 ΔlacU169(φ80lacZ ΔM15)hsdR17 recA1 endA1 gyrA96 thi
-1 relA1）の培養物5mlを、コンフルエントになるまでルリア・ブロス中で増殖
させた（接種後約16時間）。これらの細胞を用いて、M9最少培地（M9塩、2％グ
ルコース、0.01mg/mlチアミン、100μg/mlアンピシリン、全てのアミノ酸を20μ
g/mlで補充）500mlを含有する1L振盪フラスコに接種し、これをAU600が0.6にな
るまで増殖させた。この培養物を三等分し、各々の細胞を遠心により収集し、か
つそれぞれ、M9培地150ml、0.5M NaClを含有するM9培地150ml、及び1.0M NaClを
含有するM9培地150mlに再懸濁した。これらの培養物を、振盪機において20分間3
7℃で(225rpm)平衡化とし、25mlのアリコート6個に分けた。これらの培養物を振
盪機に戻し、蒸留水中の1Mヒドロキシプロリン125μlを各チューブに添加した。
5及び15分後に、9本の培養チューブ（3本は等張、3 x 0.5M NaCl、3 x 1.0M NaC
l）を、1μmポリカーボネートフィルター上で減圧濾過し、これをすぐに蒸留水
中に0.2M NaOH／2％SDSの1.2mlが入った2ml微量遠心チューブに移した。一晩溶
解した後、チューブからフィルターを慎重に取り除きし、かつ上清緩衝液を前記
Grantの方法に従ってヒドロキシプロリンについてアッセイした。
【００２３】実施例３ E. coliにおけるプロリン飢餓条件の決定 アンピシリン耐性を付与されたプラスミドpMAL-cを含むプロリン栄養要求株E.
coli株NM519(pro-)を、M9最少培地（M9塩、2％グルコース、0.01mg/mlチアミン
、100μg/mlアンピシリン、プロリン以外の全てのアミノ酸を20μg/mlで、プロ
リンを12.5mg/lで補充）において増殖させ、AU600が0.53AUで一定になるまで（
接種後17時間）増殖させた。ヒドロキシプロリンを0.08Mになるよう添加し、1時
間以上の期間にわたってOD600が0.61AUになるまで増加することにより、ヒドロ
キシプロリンに依存した増殖が示された。
coli株NM519(pro-)を、M9最少培地（M9塩、2％グルコース、0.01mg/mlチアミン
、100μg/mlアンピシリン、プロリン以外の全てのアミノ酸を20μg/mlで、プロ
リンを12.5mg/lで補充）において増殖させ、AU600が0.53AUで一定になるまで（
接種後17時間）増殖させた。ヒドロキシプロリンを0.08Mになるよう添加し、1時
間以上の期間にわたってOD600が0.61AUになるまで増加することにより、ヒドロ
キシプロリンに依存した増殖が示された。
【００２４】実施例４ プロリン飢餓条件下のE. coliにおけるタンパク質へのヒドロキシプロリンの取
込み マルトース結合タンパク質(MBP)をコードしているDNAを含むプラスミドpMAL-c
2（ニューイングランドバイオラボ社から入手）を用いて、プロリン栄養要求株E
. coli NM519(pro-)を形質転換した。形質転換したNM519(pro-)の1L培養物2つを
、M9最少培地（M9塩、2％グルコース、0.01mg/mlチアミン、100μg/mlアンピシ
リン、プロリン以外の全てのアミノ酸を20μg/mlで、プロリンは12.5mg/lで補充
）中で増殖させ、かつAU600が0.53になるまで（接種後約17時間）増殖させた。
細胞を遠心により収集し、かつ1培養物中の培地を、0.08Mヒドロキシプロリンを
含有する等量のM9培地で交換し、かつ第二の培養物は、0.08Mヒドロキシプロリ
ン及び0.5M NaClを含有する等量のM9培地で交換した。1時間平衡に保った後、こ
れらの培養物を、1mMイソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシドで誘導した。
更に3.25時間増殖した後、細胞を遠心により収集し、10mM Tris-HCl(pH8)、1mM
EDTA、100mM NaCl(TEN緩衝液)10ml中に再懸濁し、かつ凍結及び超音波処理によ
り溶解した。この溶解液を、4mlアミロース樹脂スピンカラムの上を通過させ、
カラムをTEN緩衝液10mlで洗浄し、その後結合したMBPを10mMマルトースを含有す
るTEN緩衝液2mlで溶離することによって、MBPを精製した。溶離した試料は、窒
素下でアンプル中に等量の濃HCl(11.7M)と共に密封し、12時間120℃で加水分解
した。活性炭により透明化した後、試料中のヒドロキシプロリン含量を、HPLC及
び前記Grantの方法に従って測定した。trans-4-ヒドロキシプロリンの取込みパ
ーセントを、MBPへのプロリンと比較し、図12に図示した。
込み マルトース結合タンパク質(MBP)をコードしているDNAを含むプラスミドpMAL-c
2（ニューイングランドバイオラボ社から入手）を用いて、プロリン栄養要求株E
. coli NM519(pro-)を形質転換した。形質転換したNM519(pro-)の1L培養物2つを
、M9最少培地（M9塩、2％グルコース、0.01mg/mlチアミン、100μg/mlアンピシ
リン、プロリン以外の全てのアミノ酸を20μg/mlで、プロリンは12.5mg/lで補充
）中で増殖させ、かつAU600が0.53になるまで（接種後約17時間）増殖させた。
細胞を遠心により収集し、かつ1培養物中の培地を、0.08Mヒドロキシプロリンを
含有する等量のM9培地で交換し、かつ第二の培養物は、0.08Mヒドロキシプロリ
ン及び0.5M NaClを含有する等量のM9培地で交換した。1時間平衡に保った後、こ
れらの培養物を、1mMイソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシドで誘導した。
更に3.25時間増殖した後、細胞を遠心により収集し、10mM Tris-HCl(pH8)、1mM
EDTA、100mM NaCl(TEN緩衝液)10ml中に再懸濁し、かつ凍結及び超音波処理によ
り溶解した。この溶解液を、4mlアミロース樹脂スピンカラムの上を通過させ、
カラムをTEN緩衝液10mlで洗浄し、その後結合したMBPを10mMマルトースを含有す
るTEN緩衝液2mlで溶離することによって、MBPを精製した。溶離した試料は、窒
素下でアンプル中に等量の濃HCl(11.7M)と共に密封し、12時間120℃で加水分解
した。活性炭により透明化した後、試料中のヒドロキシプロリン含量を、HPLC及
び前記Grantの方法に従って測定した。trans-4-ヒドロキシプロリンの取込みパ
ーセントを、MBPへのプロリンと比較し、図12に図示した。
【００２５】実施例５ プロリン飢餓条件下での組込みベクターによるS. cerevisiaeにおけるタンパク
質へのヒドロキシプロリンの取込み 先に実施例４に示した方法を、プロリン生合成経路を途絶させる組込みベクタ
ーを用いて酵母において行った。ヒトI型コラーゲン(α1)をコードしている遺伝
子を、固有のシャトルベクターに、誘導性GAL10プロモーターの後ろに挿入した
。このプロモーター／遺伝子カセットは、S. cerevisiaeプロリンシンテターゼ
遺伝子由来の5'及び3'末端配列が側方にある。このプラスミドを5'及び3'の両末
端領域において制限消化により直線状化し、プロリン−原栄養性S. cerevisiae
株の形質転換に使用した。形質転換混合物を選択培地上に播種し、形質転換体を
選択した。相同的組換え及び遺伝子破壊により、この構築物は、安定した組込み
を形成すると同時にS. cerevisiae株をプロリン栄養要求性株へと転換する。単
一の形質転換体を選択し、YPD培地上で30℃で、OD600が2AUまで培養した。培養
物を遠心し、細胞を、プロリン以外の全てのアミノ酸を補充した酵母除外(dropo
ut)培地に再懸濁し、プロリン飢餓状態を示すOD600一定まで培養した。その後、
L-ヒドロキシプロリン0.08M及び2％(質量／体積(w/v))ガラクトースを添加した
。培養物を更に6〜48時間増殖させた。細胞を遠心により収集し（5000rpm、10分
間）、かつ機械的破壊により溶解した。ヒドロキシプロリン含有ヒトI型コラー
ゲン(α1)を、硫安分画及びカラムクロマトグラフィーにより精製した。
質へのヒドロキシプロリンの取込み 先に実施例４に示した方法を、プロリン生合成経路を途絶させる組込みベクタ
ーを用いて酵母において行った。ヒトI型コラーゲン(α1)をコードしている遺伝
子を、固有のシャトルベクターに、誘導性GAL10プロモーターの後ろに挿入した
。このプロモーター／遺伝子カセットは、S. cerevisiaeプロリンシンテターゼ
遺伝子由来の5'及び3'末端配列が側方にある。このプラスミドを5'及び3'の両末
端領域において制限消化により直線状化し、プロリン−原栄養性S. cerevisiae
株の形質転換に使用した。形質転換混合物を選択培地上に播種し、形質転換体を
選択した。相同的組換え及び遺伝子破壊により、この構築物は、安定した組込み
を形成すると同時にS. cerevisiae株をプロリン栄養要求性株へと転換する。単
一の形質転換体を選択し、YPD培地上で30℃で、OD600が2AUまで培養した。培養
物を遠心し、細胞を、プロリン以外の全てのアミノ酸を補充した酵母除外(dropo
ut)培地に再懸濁し、プロリン飢餓状態を示すOD600一定まで培養した。その後、
L-ヒドロキシプロリン0.08M及び2％(質量／体積(w/v))ガラクトースを添加した
。培養物を更に6〜48時間増殖させた。細胞を遠心により収集し（5000rpm、10分
間）、かつ機械的破壊により溶解した。ヒドロキシプロリン含有ヒトI型コラー
ゲン(α1)を、硫安分画及びカラムクロマトグラフィーにより精製した。
【００２６】実施例６ プロリン飢餓条件下のS. cerevisiaeにおける、非組込みベクターによるタンパ
ク質へのヒドロキシプロリンの取込み 先に実施例４に示した方法を、非組込みベクターを用いて酵母プロリン栄養要
求株において行った。ヒトI型コラーゲン(α1)をコードしている遺伝子を、選択
Ura+マーカー含むYEp24シャトルベクター中、誘導性GAL10プロモーターの後ろに
挿入した。得られたプラスミドを、スフェロプラスト形質転換によりプロリン栄
養要求株S. cerevisiaeに形質転換した。形質転換混合物を選択培地上にプレー
ティングし、形質転換体を選択した。単一の形質転換体を選択し、YPD培地上で3
0℃でOD600が2AUまで培養した。培養物を遠心し、細胞を、プロリン以外の全て
のアミノ酸を補充した酵母除外培地に再懸濁し、プロリン飢餓状態を示すOD600
一定まで培養した。その後、L-ヒドロキシプロリン0.08M及び2％(w/v)ガラクト
ースを添加した。培養物を更に6〜48時間増殖させた。細胞を遠心により収集し
（5000rpm、10分間）、かつ機械的破壊により溶解した。ヒドロキシプロリン含
有ヒトI型コラーゲン(α1)を、硫安分画及びカラムクロマトグラフィーにより精
製した。
ク質へのヒドロキシプロリンの取込み 先に実施例４に示した方法を、非組込みベクターを用いて酵母プロリン栄養要
求株において行った。ヒトI型コラーゲン(α1)をコードしている遺伝子を、選択
Ura+マーカー含むYEp24シャトルベクター中、誘導性GAL10プロモーターの後ろに
挿入した。得られたプラスミドを、スフェロプラスト形質転換によりプロリン栄
養要求株S. cerevisiaeに形質転換した。形質転換混合物を選択培地上にプレー
ティングし、形質転換体を選択した。単一の形質転換体を選択し、YPD培地上で3
0℃でOD600が2AUまで培養した。培養物を遠心し、細胞を、プロリン以外の全て
のアミノ酸を補充した酵母除外培地に再懸濁し、プロリン飢餓状態を示すOD600
一定まで培養した。その後、L-ヒドロキシプロリン0.08M及び2％(w/v)ガラクト
ースを添加した。培養物を更に6〜48時間増殖させた。細胞を遠心により収集し
（5000rpm、10分間）、かつ機械的破壊により溶解した。ヒドロキシプロリン含
有ヒトI型コラーゲン(α1)を、硫安分画及びカラムクロマトグラフィーにより精
製した。
【００２７】実施例７ バキュロウイルス発現システムにおけるタンパク質へのヒドロキシプロリンの取
込み ヒトI型コラーゲン(α1)をコードしている遺伝子を、pBacPAK8バキュロウイル
ス発現ベクター中、AcMNPVポリヘドロンプロモーターの後ろに挿入した。この構
築物を、SF9細胞へ、直線状化されたAcMNPV DNAと共に、標準のリン酸カルシウ
ム共沈殿法を用いて同時トランスフェクションした。トランスフェクタントを、
10％FBSを補充したTNM-FH培地中で27℃で4日間培養した。この培地を収集し、組
換えウイルス粒子をプラークアッセイにより単離した。組換えウイルスを用いて
、プロリンを除き10％FBS及び0.08Mヒドロキシプロリンを補充したGrace培地で
増殖しているSF9細胞1Lに感染させた。27℃で2〜10日間増殖させた後、細胞を遠
心により収集し、かつ機械的破壊により溶解した。ヒドロキシプロリン含有ヒト
I型コラーゲン(α1)を、硫安分画及びカラムクロマトグラフィーにより精製した
。
込み ヒトI型コラーゲン(α1)をコードしている遺伝子を、pBacPAK8バキュロウイル
ス発現ベクター中、AcMNPVポリヘドロンプロモーターの後ろに挿入した。この構
築物を、SF9細胞へ、直線状化されたAcMNPV DNAと共に、標準のリン酸カルシウ
ム共沈殿法を用いて同時トランスフェクションした。トランスフェクタントを、
10％FBSを補充したTNM-FH培地中で27℃で4日間培養した。この培地を収集し、組
換えウイルス粒子をプラークアッセイにより単離した。組換えウイルスを用いて
、プロリンを除き10％FBS及び0.08Mヒドロキシプロリンを補充したGrace培地で
増殖しているSF9細胞1Lに感染させた。27℃で2〜10日間増殖させた後、細胞を遠
心により収集し、かつ機械的破壊により溶解した。ヒドロキシプロリン含有ヒト
I型コラーゲン(α1)を、硫安分画及びカラムクロマトグラフィーにより精製した
。
【００２８】実施例８ プロリン飢餓条件下のE. coliにおける、ヒトコラーゲンタンパク質へのヒドロ
キシプロリンの取込み イソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシド(IPTG)-誘導性tacプロモーターの
後ろに配置されたヒトI型コラーゲン(α1)の遺伝子配列（図３及び3A）をコード
し、かつβ-ラクタマーゼもコードしているプラスミド（pHuCol、図２）を、Esc
herichia coli（大腸菌）プロリン栄養要求株NM519(pro-)に、標準の熱ショック
形質転換法により形質転換した。形質転換した培養物をアンピシリン100μg/ml
を含有しているルリア培地上にプレーティングし、一晩増殖させた後、アンピシ
リン−耐性単一コロニーを用い、アンピシリン100μg/mlを含有しているLB 5ml
に接種した。37℃で振盪しながら(225rpm)10〜16時間増殖させ、この培養物を用
いて、1.5Lの振盪フラスコ中のM9最少培地（M9塩、2％グルコース、0.01mg/mlチ
アミン、100μg/mlアンピシリン、プロリン以外の全てのアミノ酸を20μg/mlで
、プロリンを12.5mg/lで補充）1Lに接種した。接種後、37℃、225rpmで15〜20時
間培養した後、600nmでの光学濃度がおよそ0.5OD/mlで一定となった。細胞を遠
心（5000rpm、10分間）により収集し、培地をデカントし、かつ細胞を100μg/ml
アンピシリン、0.08M L-ヒドロキシプロリン及び0.5M NaClを含有するM9最少培
地1L中に再懸濁した。37℃、225rpmで1時間増殖後、IPTGを1mM添加し、この培養
物を更に5〜15時間増殖させた。細胞を遠心により収集し（5000rpm、10分間）、
かつ機械的破壊により溶解した。ヒドロキシプロリン含有ヒトI型コラーゲン(α
1)を、硫安分画及びカラムクロマトグラフィーにより精製した。
キシプロリンの取込み イソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシド(IPTG)-誘導性tacプロモーターの
後ろに配置されたヒトI型コラーゲン(α1)の遺伝子配列（図３及び3A）をコード
し、かつβ-ラクタマーゼもコードしているプラスミド（pHuCol、図２）を、Esc
herichia coli（大腸菌）プロリン栄養要求株NM519(pro-)に、標準の熱ショック
形質転換法により形質転換した。形質転換した培養物をアンピシリン100μg/ml
を含有しているルリア培地上にプレーティングし、一晩増殖させた後、アンピシ
リン−耐性単一コロニーを用い、アンピシリン100μg/mlを含有しているLB 5ml
に接種した。37℃で振盪しながら(225rpm)10〜16時間増殖させ、この培養物を用
いて、1.5Lの振盪フラスコ中のM9最少培地（M9塩、2％グルコース、0.01mg/mlチ
アミン、100μg/mlアンピシリン、プロリン以外の全てのアミノ酸を20μg/mlで
、プロリンを12.5mg/lで補充）1Lに接種した。接種後、37℃、225rpmで15〜20時
間培養した後、600nmでの光学濃度がおよそ0.5OD/mlで一定となった。細胞を遠
心（5000rpm、10分間）により収集し、培地をデカントし、かつ細胞を100μg/ml
アンピシリン、0.08M L-ヒドロキシプロリン及び0.5M NaClを含有するM9最少培
地1L中に再懸濁した。37℃、225rpmで1時間増殖後、IPTGを1mM添加し、この培養
物を更に5〜15時間増殖させた。細胞を遠心により収集し（5000rpm、10分間）、
かつ機械的破壊により溶解した。ヒドロキシプロリン含有ヒトI型コラーゲン(α
1)を、硫安分画及びカラムクロマトグラフィーにより精製した。
【００２９】実施例９ プロリン飢餓条件下のE. coliにおける、ヒトコラーゲンタンパク質断片へのヒ
ドロキシプロリンの取込み イソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシド(IPTG)-誘導性tacプロモーターの
後ろに配置されたヒトI型コラーゲン(α1)の最初の80個のアミノ酸の遺伝子配列
（図５）をコードし、かつβ-ラクタマーゼもコードしているプラスミド（pHuCo
l-F1、図６）を、Escherichia coliプロリン栄養要求株NM519(pro-)に標準の熱
ショック形質転換法により形質転換した。形質転換した培養物をアンピシリン10
0μg/mlを含有しているルリア培地（Luria Broth）(LB)上にプレーティングし、
一晩増殖させた後、アンピシリン−耐性単一コロニーを用いて、アンピシリン10
0μg/mlを含有しているLB 5mlに接種した。37℃で振盪しながら(225rpm)10〜16
時間増殖させ、この培養物を用いて、1.5Lの振盪フラスコ中のM9最少培地（M9塩
、2％グルコース、0.01mg/mlチアミン、100μg/mlアンピシリン、プロリン以外
の全てのアミノ酸を20μg/mlで、プロリンを12.5mg/lで補充）1Lに接種した。接
種後、37℃、225rpmで15〜20時間培養した後、600nmでの光学濃度がおよそ0.5OD
/mlで一定となった。細胞を遠心（5000rpm、10分間）により収集し、培地をデカ
ントし、かつ細胞を100μg/mlアンピシリン、0.08M L-ヒドロキシプロリン及び0
.5M NaClを含有するM9最少培地1L中に再浮遊した。37℃、225rpmで1時間増殖し
た後、IPTGを1mM添加し、この培養物を更に5〜15時間増殖させた。細胞を遠心に
より収集し（5000rpm、10分間）、かつ機械的破壊により溶解した。ヒドロキシ
プロリン含有ヒトI型コラーゲン(α1)を、硫安分画及びカラムクロマトグラフィ
ーにより精製した。
ドロキシプロリンの取込み イソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシド(IPTG)-誘導性tacプロモーターの
後ろに配置されたヒトI型コラーゲン(α1)の最初の80個のアミノ酸の遺伝子配列
（図５）をコードし、かつβ-ラクタマーゼもコードしているプラスミド（pHuCo
l-F1、図６）を、Escherichia coliプロリン栄養要求株NM519(pro-)に標準の熱
ショック形質転換法により形質転換した。形質転換した培養物をアンピシリン10
0μg/mlを含有しているルリア培地（Luria Broth）(LB)上にプレーティングし、
一晩増殖させた後、アンピシリン−耐性単一コロニーを用いて、アンピシリン10
0μg/mlを含有しているLB 5mlに接種した。37℃で振盪しながら(225rpm)10〜16
時間増殖させ、この培養物を用いて、1.5Lの振盪フラスコ中のM9最少培地（M9塩
、2％グルコース、0.01mg/mlチアミン、100μg/mlアンピシリン、プロリン以外
の全てのアミノ酸を20μg/mlで、プロリンを12.5mg/lで補充）1Lに接種した。接
種後、37℃、225rpmで15〜20時間培養した後、600nmでの光学濃度がおよそ0.5OD
/mlで一定となった。細胞を遠心（5000rpm、10分間）により収集し、培地をデカ
ントし、かつ細胞を100μg/mlアンピシリン、0.08M L-ヒドロキシプロリン及び0
.5M NaClを含有するM9最少培地1L中に再浮遊した。37℃、225rpmで1時間増殖し
た後、IPTGを1mM添加し、この培養物を更に5〜15時間増殖させた。細胞を遠心に
より収集し（5000rpm、10分間）、かつ機械的破壊により溶解した。ヒドロキシ
プロリン含有ヒトI型コラーゲン(α1)を、硫安分画及びカラムクロマトグラフィ
ーにより精製した。
【００３０】 本願明細書において明らかにした実施態様は様々な改変を行うことができるこ
とは言うまでもない。例えば、原核細胞及び真核細胞により産生されるいずれの
タンパク質も、本発明の開示に従い1個以上のアミノ酸アナログの取込みを行う
ことができると考えられる。従って前述の説明は、限定として解釈してはならず
、単に好ましい実施態様を例証するものとして解釈すべきである。当業者は、本
願明細書に添付されたクレームの範囲及び精神の範囲内のその他の変更を予想す
ることができるであろう。
とは言うまでもない。例えば、原核細胞及び真核細胞により産生されるいずれの
タンパク質も、本発明の開示に従い1個以上のアミノ酸アナログの取込みを行う
ことができると考えられる。従って前述の説明は、限定として解釈してはならず
、単に好ましい実施態様を例証するものとして解釈すべきである。当業者は、本
願明細書に添付されたクレームの範囲及び精神の範囲内のその他の変更を予想す
ることができるであろう。
【００３１】
（２）配列番号１の情報 （ｉ）配列の特徴 （Ａ）配列の長さ：3181塩基対 （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数：1本鎖 （Ｄ）トポロジー：未知 （ii）配列の種類：cDNA （xi）配列の記載：配列番号１ CAGCTGTCTT ATGGCTATGA TGAGAAATCA ACCGGAGGAA TTTCCGTGCC TGGCCCCATG 60 GGTCCCTCTG GTCCTCGTGG TCTCCCTGGC CCCCCTGGTG CACCTGGTCC CCAAGGCTTC 120
CCAAGGCTTC CAAGGTCCCC CTGGTGAGCC TGGCGAGCCT GGAGCTTCAG GTCCCATGGG 180
TCCCCGAGGT CCCCCAGGTC CCCCTGGAAA GAATGGAGAT GATGGGGAAG CTGGAAAACC 240
TGGTCGTCCT GGTGAGCGTG GGCCTCCTGG GCCTCAGGGT GCTCGAGGAT TGCCCGGAAC 300
AGCTGGCCTC CCTGGAATGA AGGGACACAG AGGTTTCAGT GGTTTGGATG GTGCCAAGGG 360
AGATGCTGGT CCTGCTGGTC CTAAGGGTGA GCCTGGCAGC CCTGGTGAAA ATGGAGCTCC 420
TGGTCAGATG GGCCCCCGTG GCCTGCCTGG TGAGAGAGGT CGCCCTGGAG CCCCTGGCCC 480
TGCTGGTGCT CGTGGAAATG ATGGTGCTAC TGGTGCTGCC GGGCCCCCTG GTCCCACCGG 540
CCCCGCTGGT CCTCCTGGCT TCCCTGGTGC TGTTGGTGCT AAGGGTGAAG CTGGTCCCCA 600
AGGGCCCCGA GGCTCTGAAG GTCCCCAGGG TGTGCGTGGT GAGCCTGGCC CCCCTGGCCC 660 TGCTGGTGCT GCTGGCCCTG CTGGAAACCC TGGTGCTGAT GGACAGCCTG GTGCTAAAGG 720
TGCCAATGGT GCTCCTGGTA TTGCTGGTGC TCCTGGCTTC CCTGGTGCCC GAGGCCCCTC 780 TGGACCCCAG GGCCCCGGCG GCCCTCCTGG TCCCAAGGGT AACAGCGGTG AACCTGGTGC 840 TCCTGGCAGC AAAGGAGACA CTGGTGCTAA GGGAGAGCCT GGCCCTGTTG GTGTTCAAGG 900 ACCCCCTGGC CCTGCTGGAG AGGAAGGAAA GCGAGGAGCT CGAGGTGAAC CCGGACCCAC 960 TGGCCTGCCC GGACCCCCTG GCGAGCGTGG TGGACCTGGT AGCCGTGGTT TCCCTGGCGC 1020
AGATGGTGTT GCTGGTCCCA AGGGTCCCGC TGGTGAACGT GGTTCTCCTG GCCCCGCTGG 1080
CCCCAAAGGA TCTCCTGGTG AAGCTGGTCG TCCCGGTGAA GCTGGTCTGC CTGGTGCCAA 1140
GGGTCTGACT GGAAGCCCTG GCAGCCCTGG TCCTGATGGC AAAACTGGCC CCCCTGGTCC 1200
CGCCGGTCAA GATGGTCGCC CCGGACCCCC AGGCCCACCT GGTGCCCGTG GTCAGGCTGG 1260
TGTGATGGGA TTCCCTGGAC CTAAAGGTGC TGCTGGAGAG CCCGGCAAGG CTGGAGAGCG 1320
AGGTGTTCCC GGACCCCCTG GCGCTGTCGG TCCTGCTGGC AAAGATGGAG AGGCTGGAGC 1380
TCAGGGACCC CCTGGCCCTG CTGGTCCCGC TGGCGAGAGA GGTGAACAAG GCCCTGCTGG 1440
CTCCCCCGGA TTCCAGGGTC TCCCTGGTCC TGCTGGTCCT CCAGGTGAAG CAGGCAAACC 1500
TGGTGAACAG GGTGTTCCTG GAGACCTTGG CGCCCCTGGC CCCTCTGGAG CAAGAGGCGA 1560
GAGAGGTTTC CCTGGCGAGC GTGGTGTGCA AGGTCCCCCT GGTCCTGCTG GACCCCGAGG 1620
GGCCAACGGT GCTCCCGGCA ACGATGGTGC TAAGGGTGAT GCTGGTGCCC CTGGAGCTCC 1680
CGGTAGCCAG GGCGCCCCTG GCCTTCAGGG AATGCCTGGT GAACGTGGTG CAGCTGGTCT 1740
TCCAGGGCCT AAGGGTGACA GAGGTGATGC TGGTCCCAAA GGTGCTGATG GCTCTCCTGG 1800
CAAAGATGGC GTCCGTGGTC TGACCGGCCC CATTGGTCCT CCTGGCCCTG CTGGTGCCCC 1860
TGGTGACAAG GGTGAAAGTG GTCCCAGCGG CCCTGCTGGT CCCACTGGAG CTCGTGGTGC 1920
CCCCGGAGAC CGTGGTGAGC CTGGTCCCCC CGGCCCTGCT GGCTTTGCTG GCCCCCCTGG 1980
TGCTGACGGC CAACCTGGTG CTAAAGGCGA ACCTGGTGAT GCTGGTGCCA AAGGCGATGC 2040
TGGTCCCCCT GGGCCTGCCG GACCCGCTGG ACCCCCTGGC CCCATTGGTA ATGTTGGTGC 2100
TCCTGGAGCC AAAGGTGCTC GCGGCAGCGC TGGTCCCCCT GGTGCTACTG GTTTCCCTGG 2160
TGCTGCTGGC CGAGTCGGTC CTCCTGGCCC CTCTGGAAAT GCTGGACCCC CTGGCCCTCC 2220
TGGTCCTGCT GGCAAAGAAG GCGGCAAAGG TCCCCGTGGT GAGACTGGCC CTGCTGGACG 2280
TCCTGGTGAA GTTGGTCCCC CTGGTCCCCC TGGCCCTGCT GGCGAGAAAG GATCCCCTGG 2340
TGCTGATGGT CCTGCTGGTG CTCCTGGTAC TCCCGGGCCT CAAGGTATTG CTGGACAGCG 2400
TGGTGTGGTC GGCCTGCCTG GTCAGAGAGG AGAGAGAGGC TTCCCTGGTC TTCCTGGCCC 2460
CTCTGGTGAA CCTGGCAAAC AAGGTCCCTC TGGAGCAAGT GGTGAACGTG GTCCCCCCGG 2520
TCCCATGGGC CCCCCTGGAT TGGCTGGACC CCCTGGTGAA TCTGGACGTG AGGGGGCTCC 2580
TGCTGCCGAA GGTTCCCCTG GACGAGACGG TTCTCCTGGC GCCAAGGGTG ACCGTGGTGA 2640
GACCGGCCCC GCTGGACCCC CTGGTGCTCC TGGTGCTCCT GGTGCCCCTG GCCCCGTTGG 2700
CCCTGCTGGC AAGAGTGGTG ATCGTGGTGA GACTGGTCCT GCTGGTCCCG CCGGTCCCGT 2760
CGGCCCCGCT GGCGCCCGTG GCCCCGCCGG ACCCCAAGGC CCCCGTGGTG ACAAGGGTGA 2820
GACAGGCGAA CAGGGCGACA GAGGCATAAA GGGTCACCGT GGCTTCTCTG GCCTCCAGGG 2880
TCCCCCTGGC CCTCCTGGCT CTCCTGGTGA ACAAGGTCCC TCTGGAGCCT CTGGTCCTGC 2940
TGGTCCCCGA GGTCCCCCTG GCTCTGCTGG TGCTCCTGGC AAAGATGGAC TCAACGGTCT 3000
CCCTGGCCCC ATTGGGCCCC CTGGTCCTCG CGGTCGCACT GGTGATGCTG GTCCTGTTGG 3060
TCCCCCCGGC CCTCCTGGAC CTCCTGGTCC CCCTGGTCCT CCCAGCGCTG GTTTCGACTT 3120
CAGCTTCCTC CCCCAGCCAC CTCAAGAGAA CGCTCACGAT GGTGGCCGCT ACTACCGGGC 3180
T 3181 （２）配列番号２の情報 （ｉ）配列の特徴 （Ａ）配列の長さ：240塩基対 （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数：一本鎖 （Ｄ）トポロジー：未知 （ii）配列の種類：cDNA （xi）配列の記載：配列番号２ CAGCTGTCTT ATGGCTATGA TGAGAAATCA ACCGGAGGAA TTTCCGTGCC TGGCCCCATG 60 GGTCCCTCTG GTCCTCGTGG TCTCCCTGGC CCCCCTGGTG CACCTGGTCC CCAAGGCTTC 120 CAAGGTCCCC CTGGTGAGCC TGGCGAGCCT GGAGCTTCAG GTCCCATGGG TCCCCGAGGT 180 CCCCCAGGTC CCCCTGGAAA GAATGGAGAT GATGGGGAAG CTGGAAAACC TGGTCGTCCT 240 （２）配列番号３の情報 （ｉ）配列の特徴 （Ａ）配列の長さ：100塩基対 （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数：一本鎖 （Ｄ）トポロジー：未知 （ii）配列の種類：cDNA （xi）配列の記載：配列番号３ GGATCCATGG GGCTCGCTGG CCCACCGGGC GAACCGGGTC CGCCAGGCCC GAAAGGTCCG 60 CGTGGCGATA GCGGGCTCCC GGGCGATTCC TAATGGATCC 100 （２）配列番号４の情報 （ｉ）配列の特徴 （Ａ）配列の長さ：２１アミノ酸 （Ｂ）配列の型：アミノ酸 （Ｃ）鎖の数：一本鎖 （Ｄ）トポロジー：未知 （ii）配列の種類：ペプチド （xi）配列の記載：配列番号４ Gly Leu Ala Gly Pro Pro Gly Glu Pro Gly Pro Pro Gly Pro Lys Gly l 5 10 15 Pro Arg Gly Asp Ser 20 （２）配列番号５の情報 （ｉ）配列の特徴 （Ａ）配列の長さ：３３０塩基対 （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数：一本鎖 （Ｄ）トポロジー：未知 （ii）配列の種類：cDNA （xi）配列の記載：配列番号５ CAGCGGGCCA GGAAGAAGAA TAAGAACTGC CGGCGCCACT CGCTCTATGT GGACTTCAGC 60 GATGTGGGCT GGAATGACTG GATTGTGGCC CCACCAGGCT ACCAGGCCTT CTACTGCCAT 120 GGGGACTGCC CCTTTCCACT GGCTGACCAC CTCAACTCAA CCAACCATGC CATTGTGCAG 180 ACCCTGGTCA ATTCTGTCAA TTCCAGTATC CCCAAAGCCT GTTGTGTGCC CACTGAACTG 240 AGTGCCATCT CCATGCTGTA CCTGGATGAG TATGATAAGG TGGTACTGAA AAATTATCAG 300 GAGATGGTAG TAGAGGGATG TGGGTGCCGC 330
CCAAGGCTTC CAAGGTCCCC CTGGTGAGCC TGGCGAGCCT GGAGCTTCAG GTCCCATGGG 180
TCCCCGAGGT CCCCCAGGTC CCCCTGGAAA GAATGGAGAT GATGGGGAAG CTGGAAAACC 240
TGGTCGTCCT GGTGAGCGTG GGCCTCCTGG GCCTCAGGGT GCTCGAGGAT TGCCCGGAAC 300
AGCTGGCCTC CCTGGAATGA AGGGACACAG AGGTTTCAGT GGTTTGGATG GTGCCAAGGG 360
AGATGCTGGT CCTGCTGGTC CTAAGGGTGA GCCTGGCAGC CCTGGTGAAA ATGGAGCTCC 420
TGGTCAGATG GGCCCCCGTG GCCTGCCTGG TGAGAGAGGT CGCCCTGGAG CCCCTGGCCC 480
TGCTGGTGCT CGTGGAAATG ATGGTGCTAC TGGTGCTGCC GGGCCCCCTG GTCCCACCGG 540
CCCCGCTGGT CCTCCTGGCT TCCCTGGTGC TGTTGGTGCT AAGGGTGAAG CTGGTCCCCA 600
AGGGCCCCGA GGCTCTGAAG GTCCCCAGGG TGTGCGTGGT GAGCCTGGCC CCCCTGGCCC 660 TGCTGGTGCT GCTGGCCCTG CTGGAAACCC TGGTGCTGAT GGACAGCCTG GTGCTAAAGG 720
TGCCAATGGT GCTCCTGGTA TTGCTGGTGC TCCTGGCTTC CCTGGTGCCC GAGGCCCCTC 780 TGGACCCCAG GGCCCCGGCG GCCCTCCTGG TCCCAAGGGT AACAGCGGTG AACCTGGTGC 840 TCCTGGCAGC AAAGGAGACA CTGGTGCTAA GGGAGAGCCT GGCCCTGTTG GTGTTCAAGG 900 ACCCCCTGGC CCTGCTGGAG AGGAAGGAAA GCGAGGAGCT CGAGGTGAAC CCGGACCCAC 960 TGGCCTGCCC GGACCCCCTG GCGAGCGTGG TGGACCTGGT AGCCGTGGTT TCCCTGGCGC 1020
AGATGGTGTT GCTGGTCCCA AGGGTCCCGC TGGTGAACGT GGTTCTCCTG GCCCCGCTGG 1080
CCCCAAAGGA TCTCCTGGTG AAGCTGGTCG TCCCGGTGAA GCTGGTCTGC CTGGTGCCAA 1140
GGGTCTGACT GGAAGCCCTG GCAGCCCTGG TCCTGATGGC AAAACTGGCC CCCCTGGTCC 1200
CGCCGGTCAA GATGGTCGCC CCGGACCCCC AGGCCCACCT GGTGCCCGTG GTCAGGCTGG 1260
TGTGATGGGA TTCCCTGGAC CTAAAGGTGC TGCTGGAGAG CCCGGCAAGG CTGGAGAGCG 1320
AGGTGTTCCC GGACCCCCTG GCGCTGTCGG TCCTGCTGGC AAAGATGGAG AGGCTGGAGC 1380
TCAGGGACCC CCTGGCCCTG CTGGTCCCGC TGGCGAGAGA GGTGAACAAG GCCCTGCTGG 1440
CTCCCCCGGA TTCCAGGGTC TCCCTGGTCC TGCTGGTCCT CCAGGTGAAG CAGGCAAACC 1500
TGGTGAACAG GGTGTTCCTG GAGACCTTGG CGCCCCTGGC CCCTCTGGAG CAAGAGGCGA 1560
GAGAGGTTTC CCTGGCGAGC GTGGTGTGCA AGGTCCCCCT GGTCCTGCTG GACCCCGAGG 1620
GGCCAACGGT GCTCCCGGCA ACGATGGTGC TAAGGGTGAT GCTGGTGCCC CTGGAGCTCC 1680
CGGTAGCCAG GGCGCCCCTG GCCTTCAGGG AATGCCTGGT GAACGTGGTG CAGCTGGTCT 1740
TCCAGGGCCT AAGGGTGACA GAGGTGATGC TGGTCCCAAA GGTGCTGATG GCTCTCCTGG 1800
CAAAGATGGC GTCCGTGGTC TGACCGGCCC CATTGGTCCT CCTGGCCCTG CTGGTGCCCC 1860
TGGTGACAAG GGTGAAAGTG GTCCCAGCGG CCCTGCTGGT CCCACTGGAG CTCGTGGTGC 1920
CCCCGGAGAC CGTGGTGAGC CTGGTCCCCC CGGCCCTGCT GGCTTTGCTG GCCCCCCTGG 1980
TGCTGACGGC CAACCTGGTG CTAAAGGCGA ACCTGGTGAT GCTGGTGCCA AAGGCGATGC 2040
TGGTCCCCCT GGGCCTGCCG GACCCGCTGG ACCCCCTGGC CCCATTGGTA ATGTTGGTGC 2100
TCCTGGAGCC AAAGGTGCTC GCGGCAGCGC TGGTCCCCCT GGTGCTACTG GTTTCCCTGG 2160
TGCTGCTGGC CGAGTCGGTC CTCCTGGCCC CTCTGGAAAT GCTGGACCCC CTGGCCCTCC 2220
TGGTCCTGCT GGCAAAGAAG GCGGCAAAGG TCCCCGTGGT GAGACTGGCC CTGCTGGACG 2280
TCCTGGTGAA GTTGGTCCCC CTGGTCCCCC TGGCCCTGCT GGCGAGAAAG GATCCCCTGG 2340
TGCTGATGGT CCTGCTGGTG CTCCTGGTAC TCCCGGGCCT CAAGGTATTG CTGGACAGCG 2400
TGGTGTGGTC GGCCTGCCTG GTCAGAGAGG AGAGAGAGGC TTCCCTGGTC TTCCTGGCCC 2460
CTCTGGTGAA CCTGGCAAAC AAGGTCCCTC TGGAGCAAGT GGTGAACGTG GTCCCCCCGG 2520
TCCCATGGGC CCCCCTGGAT TGGCTGGACC CCCTGGTGAA TCTGGACGTG AGGGGGCTCC 2580
TGCTGCCGAA GGTTCCCCTG GACGAGACGG TTCTCCTGGC GCCAAGGGTG ACCGTGGTGA 2640
GACCGGCCCC GCTGGACCCC CTGGTGCTCC TGGTGCTCCT GGTGCCCCTG GCCCCGTTGG 2700
CCCTGCTGGC AAGAGTGGTG ATCGTGGTGA GACTGGTCCT GCTGGTCCCG CCGGTCCCGT 2760
CGGCCCCGCT GGCGCCCGTG GCCCCGCCGG ACCCCAAGGC CCCCGTGGTG ACAAGGGTGA 2820
GACAGGCGAA CAGGGCGACA GAGGCATAAA GGGTCACCGT GGCTTCTCTG GCCTCCAGGG 2880
TCCCCCTGGC CCTCCTGGCT CTCCTGGTGA ACAAGGTCCC TCTGGAGCCT CTGGTCCTGC 2940
TGGTCCCCGA GGTCCCCCTG GCTCTGCTGG TGCTCCTGGC AAAGATGGAC TCAACGGTCT 3000
CCCTGGCCCC ATTGGGCCCC CTGGTCCTCG CGGTCGCACT GGTGATGCTG GTCCTGTTGG 3060
TCCCCCCGGC CCTCCTGGAC CTCCTGGTCC CCCTGGTCCT CCCAGCGCTG GTTTCGACTT 3120
CAGCTTCCTC CCCCAGCCAC CTCAAGAGAA CGCTCACGAT GGTGGCCGCT ACTACCGGGC 3180
T 3181 （２）配列番号２の情報 （ｉ）配列の特徴 （Ａ）配列の長さ：240塩基対 （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数：一本鎖 （Ｄ）トポロジー：未知 （ii）配列の種類：cDNA （xi）配列の記載：配列番号２ CAGCTGTCTT ATGGCTATGA TGAGAAATCA ACCGGAGGAA TTTCCGTGCC TGGCCCCATG 60 GGTCCCTCTG GTCCTCGTGG TCTCCCTGGC CCCCCTGGTG CACCTGGTCC CCAAGGCTTC 120 CAAGGTCCCC CTGGTGAGCC TGGCGAGCCT GGAGCTTCAG GTCCCATGGG TCCCCGAGGT 180 CCCCCAGGTC CCCCTGGAAA GAATGGAGAT GATGGGGAAG CTGGAAAACC TGGTCGTCCT 240 （２）配列番号３の情報 （ｉ）配列の特徴 （Ａ）配列の長さ：100塩基対 （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数：一本鎖 （Ｄ）トポロジー：未知 （ii）配列の種類：cDNA （xi）配列の記載：配列番号３ GGATCCATGG GGCTCGCTGG CCCACCGGGC GAACCGGGTC CGCCAGGCCC GAAAGGTCCG 60 CGTGGCGATA GCGGGCTCCC GGGCGATTCC TAATGGATCC 100 （２）配列番号４の情報 （ｉ）配列の特徴 （Ａ）配列の長さ：２１アミノ酸 （Ｂ）配列の型：アミノ酸 （Ｃ）鎖の数：一本鎖 （Ｄ）トポロジー：未知 （ii）配列の種類：ペプチド （xi）配列の記載：配列番号４ Gly Leu Ala Gly Pro Pro Gly Glu Pro Gly Pro Pro Gly Pro Lys Gly l 5 10 15 Pro Arg Gly Asp Ser 20 （２）配列番号５の情報 （ｉ）配列の特徴 （Ａ）配列の長さ：３３０塩基対 （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数：一本鎖 （Ｄ）トポロジー：未知 （ii）配列の種類：cDNA （xi）配列の記載：配列番号５ CAGCGGGCCA GGAAGAAGAA TAAGAACTGC CGGCGCCACT CGCTCTATGT GGACTTCAGC 60 GATGTGGGCT GGAATGACTG GATTGTGGCC CCACCAGGCT ACCAGGCCTT CTACTGCCAT 120 GGGGACTGCC CCTTTCCACT GGCTGACCAC CTCAACTCAA CCAACCATGC CATTGTGCAG 180 ACCCTGGTCA ATTCTGTCAA TTCCAGTATC CCCAAAGCCT GTTGTGTGCC CACTGAACTG 240 AGTGCCATCT CCATGCTGTA CCTGGATGAG TATGATAAGG TGGTACTGAA AAATTATCAG 300 GAGATGGTAG TAGAGGGATG TGGGTGCCGC 330
【図１】 図１は、pMAL-c2を示すプラスミド地図である。
【図２】 増殖培地におけるtrans-4-ヒドロキシプロリンを基にした細胞内ヒドロキシプ
ロリンの濃度の経時図である。
ロリンの濃度の経時図である。
【図３】 図３及び図3Aは、ヒト１(α1)型コラーゲンをコードしているDNA配列を示す。
【図４】 図４は、pHuColを示すプラスミド図である。
【図５】 図５は、ヒト１(α1)型コラーゲン断片をコードしているDNA配列を示す。
【図６】 図６は、pHuCol-F1を示すプラスミド図である。
【図７】 図７は、コラーゲン様ペプチドをコードしているDNA配列を示す。
【図８】 図８は、コラーゲン様ペプチドのアミノ酸配列を示す。
【図９】 図９は、pCLPを示すプラスミド図である。
【図１０】 図10は、成熟した骨形成因子タンパク質をコードしているDNA配列を示す。
【図１１】 図11は、pCBCを示すプラスミド地図である。
【図１２】 図12は、プロリン及びtrans-4-ヒドロキシプロリンのマルトース結合タンパク
質への様々な条件下での取込み％を示すグラフである。
質への様々な条件下での取込み％を示すグラフである。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ｃ１２Ｎ 5/10 Ｃ１２Ｎ 5/00 Ｂ 15/09 15/00 Ａ (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ， ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，ＫＥ，Ｌ Ｓ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ， ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，Ｅ Ｅ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＧＷ，ＨＵ ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ， ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，Ｍ Ｄ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ， ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，Ｖ Ｎ，ＹＵ，ＺＷ (72)発明者 ビュークター ダグラス ディー アメリカ合衆国 コネチカット州 06492 ウォリングフォード ピアソン ドライ ヴ 51 (72)発明者 ツァン グアングイー アメリカ合衆国 コネチカット州 06473 ギルフォード リトル メドー ロード 975 (72)発明者 コーノリー ケヴィン アメリカ合衆国 カリフォルニア州 90232 カルヴァー シティー ラ サー ル アベニュー 4024 Ｆターム(参考） 4B024 AA01 AA03 BA80 DA02 DA06 DA12 4B065 AA26X AA80X AA90X AB01 AC07 AC20 BA02 BB02 BB03 BB12 BB15 BB16 BB18 CA24 4H045 AA20 BA10 CA11 CA15 CA51 EA34 FA74
Claims (22)
- 【請求項１】 下記工程を含む、原核細胞及び真核細胞からなる群より選択
される細胞により産生されるポリペプチドへアミノ酸アナログを取込ませる方法
： 原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される細胞を提供する工程； trans-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プ
ロリン及びそれらの組合せからなる群より選択される少なくとも1種のアミノ酸
アナログを含有する増殖培地を提供する工程；及び 前記細胞を前記増殖培地と接触させ、そこで前記少なくとも1種のアミノ酸ア
ナログが前記細胞に同化され、かつ少なくとも1種のポリペプチドに取込まれる
工程。 - 【請求項２】 細胞がプロリン栄養要求株である、請求項１記載の方法。
- 【請求項３】 細胞が、細菌細胞、酵母細胞及び昆虫細胞からなる群より選
択される、請求項２記載の方法。 - 【請求項４】 少なくとも1種のポリペプチドが、少なくともコラーゲン分
子の一部である、請求項１記載の方法。 - 【請求項５】 ポリペプチドが、図３に示された核酸配列によってコードさ
れている、請求項４記載の方法。 - 【請求項６】 ポリペプチドが、図５に示された核酸配列によってコードさ
れた断片である、請求項４記載の方法。 - 【請求項７】 ポリペプチドが、図７に示された核酸配列によってコードさ
れている、請求項４記載の方法。 - 【請求項８】 少なくともコラーゲンの一部が、生理活性物質と融合してい
る、請求項４記載の方法。 - 【請求項９】 生理活性物質がBMPである、請求項８記載の方法。
- 【請求項１０】 少なくとも1種のポリペプチドをコードしている核酸が、
複製可能な発現ベクター上に保持されている、請求項１記載の方法。 - 【請求項１１】 複製可能な発現ベクターがプラスミドである、請求項10記
載の方法。 - 【請求項１２】 プロリン栄養要求株が、大腸菌及びサッカロミセス・セレ
ビシアエからなる群より選択される、請求項３記載の方法。 - 【請求項１３】 少なくとも1種のポリペプチドが、マルトース結合タンパ
ク質分子の少なくとも一部である、請求項１記載の方法。 - 【請求項１４】 増殖培地が高張性である、請求項１記載の方法。
- 【請求項１５】 NaCl、KCl、MgCl2、スクロース、グルコース、マルトース
、PEG、デキストラン、セルロース及びグリシンからなる群より選択される浸透
圧上昇剤が増殖培地に添加される、請求項14記載の方法。 - 【請求項１６】 NaCl範囲が、約0.5M〜約1Mである、請求項14記載の方法。
- 【請求項１７】 増殖培地が、細胞のプロリン飢餓を引き起こすプロリン量
を含有する、請求項１記載の方法。 - 【請求項１８】 下記工程を含む、原核細胞及び真核細胞からなる群より選
択される細胞により産生されるポリペプチド中のアミノ酸アナログを置換する方
法： 原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される細胞を提供する工程； trans-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プ
ロリン及びそれらの組合せからなる群より選択される少なくとも1種のアミノ酸
アナログを含有する増殖培地を提供する工程；及び 前記細胞を前記増殖培地と接触させ、そこで前記少なくとも1種のアミノ酸ア
ナログが前記細胞に同化され、かつ少なくとも1種のポリペプチドにおいて少な
くとも1個の天然のアミノ酸との置換として取込まれる工程。 - 【請求項１９】 下記工程を含む、ポリペプチドへ取込まれるアミノ酸アナ
ログ量を制御する方法： 原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される第一の細胞を提供する工程； trans-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プ
ロリン及びそれらの組合せからなる群より選択される少なくとも1種のアミノ酸
アナログの第一の所定量を含有する増殖培地を提供する工程； 前記細胞を前記第一の増殖培地と接触させ、そこでアミノ酸アナログの第一の
量が前記第一の細胞に同化され、かつ少なくとも1種のポリペプチドに取込まれ
る工程； 原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される第二の細胞を提供する工程； trans-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プ
ロリン及びそれらの組合せからなる群より選択されるアミノ酸アナログの第二の
所定量を含有する第二の増殖培地を提供する工程；及び 少なくとも前記第二の細胞を前記第二の増殖培地と接触させ、そこで第二のア
ミノ酸アナログ量が第二の細胞に同化され、かつ少なくとも1種のポリペプチド
に取込まれる工程。 - 【請求項２０】 下記工程を含む、細胞により産生された組換えポリペプチ
ドの安定性を増大させる方法： 原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される細胞を提供する工程； trans-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プ
ロリン及びそれらの組合せからなる群より選択されるアミノ酸アナログを含有す
る増殖培地を提供する工程；及び 前記細胞を前記増殖培地と接触させ、そこで前記アミノ酸アナログが前記細胞
に同化され、かつ組換えポリペプチドに取込まれ、これにより前記ポリペプチド
が安定化する工程。 - 【請求項２１】 下記工程を含む、細胞へのアミノ酸アナログの取込みを増
大させ、及びアミノ酸アナログ／tRNA複合体の形成を生じさせる方法： 原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される原核細胞を提供する工程； trans-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプロリン、cis-4-フルオロ-L-プ
ロリン及びそれらの組合せからなる群より選択されるアミノ酸アナログを含有す
る高張の増殖培地を提供する工程；及び 前記細胞を前記高張の増殖培地と接触させ、そこで前記アミノ酸アナログが前
記細胞に同化され、かつアミノ酸アナログ／tRNA複合体へ取込まれる工程。 - 【請求項２２】 原核細胞及び真核細胞からなる群より選択される細胞、並
びにtrans-4-ヒドロキシプロリン、cic-4-ヒドロキシプロリン、3-ヒドロキシプ
ロリン、cis-4-フルオロ-L-プロリン及びそれらの組合せからなる群より選択さ
れる少なくとも1種のアミノ酸アナログを含有する高張増殖培地を含む組成物で
あって、前記高張増殖培地が前記少なくとも1種のアミノ酸アナログの細胞への
取込を増大させるものである、前記組成物。
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