JP2002332298A - 肺胞界面活性タンパク質 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 【課題】本発明は、特定の形態のヒトＳＰ−１８および
ＳＰ−５由来のタンパク質。コードされた配列の類似体
であるこれらのタンパク質のいくつかは、天然タンパク
質に比べて凝集性が著しく減少、すなわち、分子内およ
び分子間の相互作用、主に共有結合のジスルフィドに起
因する凝集が減少している。本発明のＳＰ−５由来ペプ
チドは、天然ポリペプチドの生物学的活性のみならず化
学的および物理的安定性もまた保持している。 【解決手段】ＡＳＰ活性を有し、かつ以下の配列を持つ
精製ポリペプチドまたは薬学的に許容され得るその塩あ
るいはアミド： X-AA₂₈-AA₂₉-AA₃₀-AA₃₁-AA₃₂-AA₃₃-AA₃₄-AA₃₅-Leu-Leu-
Ile-Z-Z-Z-Z-Z-Z-Leu-Ile-Z-Z-Z-Ile-Z-Gly-Ala-Leu-Le
u-Met-Y。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【発明の属する技術分野】本発明は、特定の呼吸疾患の
治療に有用な肺胞界面活性タンパク質（ＡＳＰ）一般に
関する。

【０００２】

【従来の技術】ヒトの肺は多数の小さな嚢すなわち肺胞
よりなり、この肺胞中で血液と肺の気室との間でガスが
交換される。健康な個体では、この交換は、ＩＩ型の肺
胞細胞のミクロソーム膜中で合成されるタンパク質含有
界面活性複合体の存在により媒介される。この複合体が
適正なレベルで存在しない場合には、肺は適切に機能し
得ない。すなわち、肺胞が排気中に崩壊し、そして引き
続く吸気により再膨張し得ない。従って、この複合体の
合成不全を治療せずに放置すると、死または重度の身体
的損傷を引き起こし得る。界面活性複合体のレベルが不
十分な例として最も多く報告された症例は、未熟児また
は複合妊娠（ｃｏｍｐｌｉｃａｔｅｄ ｐｒｅｇｎａｎ
ｃｉｅｓ）後に生まれた乳児に起こり、呼吸窮迫症候群
（ＲＤＳ）として広く知られている。この症候群の広く
公表されている形態はヒアリン膜症、または特発性ＲＤ
Ｓと呼ばれている。ＲＤＳは現在米国および他の先進国
の幼児の死亡および罹患の最大の原因であり、診断およ
び治療に向けて多大な努力がなされている。現在の治療
は、機械的な（加圧）換気に集中しており、この方法は
良くても侵襲性の一時しのぎの方法に過ぎず、肺の損傷
および例えば気管支肺形状異常症、間質性気腫、および
気胸症などの合併症を含む他の有害な副作用をもたらす
ことが多い。この治療を用いると、精神遅滞が起こる場
合もある。（Ｈａｌｌｍａｎ，Ｍ．ら、Ｐｅｄｉａｔｒ
ｉｃ Ｃｌｉｎｉｃｓ ｏｆ Ｎｏｒｔｈ Ａｍｅｒｉ
ｃａ（１９８２）２９：１０５７−１０７５。） 界面活性物質の置換によりこの症候群を治療する試みが
限定されたものであるがなされている。この方法は一般
に、投与は１回だけでよいため優良な方法であり、損傷
の可能性は低減する。例えば、Ｆｕｊｉｗａｒａら、Ｌ
ａｎｃｅｔ（１９８０）１：５５は、ウシの肺由来のタ
ンパク質欠損の界面活性物質調製物を使用し、一方、Ｈ
ａｌｌｍａｎ，Ｍら、Ｐｅｄｉａｔｒｉｃｓ（１９８
３）７１：４７３−４８２はヒトの羊水から単離した界
面活性物質を使用して、限られた数の乳児の治療を行
い、ある程度の成功を治めている。Ｃｌｅｍｅｎｔｓの
米国特許第４，３１２，８６０号は、タンパク質を含有
しない合成界面活性物質を開示し、データは示していな
いがこの方法に有用であるとしている。要約すると、界
面活性物質置換は臨床的に広く使用されてはいない。

【０００３】好適な界面活性置換物質は、肺の界面活性
複合体自体である。この複合体、はアポタンパク質、大
量に存在する２つのりん脂質（ジパルミトイルホスホコ
リン（ＤＰＰＣ）およびホスファチジルーグリセロール
（ＰＧ））、極めて僅かな量で存在するいくつかの脂質
成分、およびカルシウムイオンからなる。アポタンパク
質は、分子量３２，０００ダルトンのタンパク質、およ
び約１０，０００ダルトンの疎水性の強いタンパク質を
含有する（Ｋｉｎｇ，Ｒ．Ｊ．ら、Ａｍ ＪＰｈｙｓｉ
ｏ１（１９７３）２２４：７８８−７９５）。この３
２，０００ダルトンのタンパク質はグリコシル化され、
ヒドロキシプロリンを含有する。

【０００４】界面活性物質置換療法の進歩が制限されて
いる主な理由は、複合体のタンパク質部分が入手し得な
いためであった。置換療法は、脂質成分単独を使用する
試みに集中しており、このような治療の成績は、アポタ
ンパク質の添加により著しく向上し得るようである（Ｈ
ａｌｌｍａｎ，Ｍら、Ｐｅｄｉａｔｒｉｃ Ｃｌｉｎｉ
ｃｓ ｏｆ Ｎｏｒｔｈ Ａｍｅｒｉｃａ（１９８２）
（前出））。しかし、現在のところ、これらのタンパク
質は正常なヒト成人の肺から、および羊水からしか入手
し得ない。効率的な単離方法によっても、十分な供給を
提供し得ない。従って、単独でまたは複合体の飽和りん
脂質部分との結合で使用するための、実用的な量のアポ
タンパク質を製造する方法の実現が望まれている。

【０００５】関連するＰＣＴ特許出願第ＷＯ８６／０３
４０８号は、約３２ｋｄのヒトＡＳＰタンパク質の組み
換えによる製造、種々のイヌＡＳＰタンパク質をコード
するＤＮＡ配列の回収、および約１０ｋｄの分子量のヒ
トＡＳＰタンパク質グループの１つの代表例の回収を開
示している。十分な治療に使用するために「１０Ｋ」グ
ループの効率的な製造が必要であることが現在では明白
である。

【０００６】１９８７年１１月５日に公表された別の関
連するＰＣＴ特許出願第ＷＯ８７／０６５８８号は、こ
れら１０Ｋタンパク質およびこれらをコードするＤＮＡ
に関するさらなる記載を与えている。該出願の表１およ
び２は、イヌおよびヒトのＳＰ−１８由来タンパク質の
前駆体をコードする全長ｃＤＮＡを示している。成熟ヒ
トタンパク質は、この全長配列のコドン２０１でコード
されるフェニルアラニン残基から開始されることが記載
されている。哺乳類および細菌の細胞の両方の中での、
ＳＰ−１８前駆体の発現のためのベクターの構築が詳細
に記載されている。哺乳類の細胞中での全長前駆体の発
現は、４３ｋｄおよび２５ｋｄの前駆体タンパク質を与
えることが、ＳＤＳ−ＰＡＧＥで判明した。この２５ｋ
ｄの生成物は、この配列内にコードされたＰｈｅ−２０
１からＧｌｕ−３８１にわたる、１８１アミノ酸配列の
グリコシル化した形態であると記載されている。

【０００７】前駆体の成熟形態のより均一な製造に有用
となり得る開裂部位を提供するためのヒトタンパク質の
特定の改変した形態もまた記載されている。ＳＰ−１８
ｃＤＮＡの細菌による発現もまた記載されている。

【０００８】ＰＣＴ特許出願第ＷＯ８７／０６５８８の
図５および６は、ＳＰ−５と命名された５ｋｄ−８ｋｄ
の分子量が小さい方のタンパク質の前駆体をコードする
２つのｃＤＮＡクローンのＤＮＡおよび推定アミノ酸配
列を示している。ＳＰ−１８ｃＤＮＡと同様に、これら
のクローンは、単離された５ｋｄ−８ｋｄの分子量が小
さい方のタンパク質の前駆体をコードすることが開示さ
れている。推定のＮ−末端は、この配列のコドン２４お
よび２５のＰｈｅまたはＧｌｙであると述べられてい
る。これらのタンパク質の成熟Ｃ−末端は、８ｋｄタン
パク質ではＧｌｎ−１０８であり、そして５ｋｄタンパ
ク質ではＧｌｕ−８０またはＴｈｒ−６５であると推定
されている。哺乳類および細菌の細胞中でのこのｃＤＮ
Ａの発現もまた記載されている。

【０００９】上記の２つのＰＣＴ出願、ＷＯ８６／０３
４０８およびＷＯ８７／０６５８８を本明細書では参考
文献として援用する。

【００１０】本出願は、肺胞界面活性タンパク質として
有効な種々のＳＰ−５関連ペプチドを記載する。これら
のＳＰ−５類似体および断片は、化学合成により、また
は組換法により調製し得、呼吸器疾患および徴候（ｓｙ
ｍｐｔｏｍｏｌｏｇｉｅｓ）の治療に有用な肺胞界面活
性タンパク質に属する特定の構成物を提供する。

【００１１】本出願の親出願である米国特許出願第０７
／１１７，００９号もまた、１０Ｋグループのタンパク
質を幾分詳細に記載している。その出願の開示の全体を
本明細書ではに参考文献として援用し、本明細書では明
確に記載または説明していない物質は該出願を参考とさ
れたい。本出願は、ヒトＳＰ−５タンパク質のさらなる
研究に基づき、特に、ＡＳＰ活性を有することが判明し
たタンパク質の類似体に関する。本出願で記載し、特許
請求した類似体は、天然ポリペプチドの安定性および生
物学的活性を保持しているのに加え、天然の５ｋｄタン
パク質よりも凝集しにくい。

【００１２】

【発明が解決しようとする課題】本発明は、特定の形態
のヒトＳＰ−１８およびＳＰ−５由来のタンパク質を提
供する。コードされた配列の類似体であるこれらのタン
パク質のいくつかは、天然タンパク質に比べて、凝集性
が著しく減少している。すなわち、分子内および分子間
の相互作用、主として共有結合のジスルフィドに起因す
る凝集が減少している。そのため、これらの類似体の抽
出および精製は、天然ポリペプチドと比べて非常に容易
である。

【００１３】本発明のＳＰ−５由来のペプチドは、ヒト
ＳＰ−５の長さおよびアミノ酸配列の両方を改変し得た
ものであるが、天然ポリペプチドの生物学的活性のみな
らず化学的および物理的安定性を保持している。

【００１４】本発明の別の局面では、呼吸窮迫症候群の
治療用の、ＳＰ−１８および／またはＳＰ−５関連ペプ
チドを含有するように処方された、薬学的組成物が提供
される。本発明は、ＳＰ−１８および／またはＳＰ−５
関連ペプチドの投与により呼吸窮迫症候群の治療方法を
も包含する。

【００１５】

【発明を解決するための手段】本発明は、ＡＳＰ活性を
有し、かつ以下の配列を持つ精製ポリペプチドまたは薬
学的に許容され得るその塩あるいはアミド：

【００１６】

【化１】 ここで、ＡＡ₂₈はＣｙｓあるいはＳｅｒ、ＡＡ₂₉はＣｙ
ｓあるいはＳｅｒ、ＡＡ₃₀はＰｒｏあるいはＡｌａ、Ａ
Ａ₃₁はＶａ１あるいはＧｌｎ、ＡＡ₃₂はＨｉｓあるいは
Ｌｙｓ、ＡＡ₃₃はＬｅｕあるいはＡｌａ、ＡＡ₃₄はＬｙ
ｓあるいはＧｌｎ、ＡＡ₃₅はＡｒｇあるいはＧｌｎ、Ｚ
は、ＶａｌあるいはＩｌｅのいずれか、ＹはＯＨ、Ｇｌ
ｙ−ＯＨ、Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−ＯＨ、Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ｈ
ｉｓ−ＯＨ、あるいはＧｌｙ−Ｌｅｕ−Ｈｉｓ−Ｙ₁、
ここで、Ｙ₁は、図３の６０〜７４位のアミノ酸に相当
する１〜１５個のアミノ酸のＣ末端伸長配列、そしてＸ
は、ＨあるいはＨ−ＡＡ₂₇−、Ｈ−ＡＡ₂₆−ＡＡ₂₇−、
あるいはＸ’−ＡＡ₂₆−ＡＡ₂₇−、ここで、ＡＡ₂₇は、
ＰｒｏあるいはＡｌａ、ＡＡ₂₆は、ＩｌｅあるいはＳｅ
ｒ、そしてＸ’は、Ｈあるいは図３の１〜２５位のアミ
ノ酸に相当する１〜２５個のアミノ酸のＮ末端伸長配
列；ここで、条件として、ＸがＰｈｅ−Ｇｌｙ−Ｉｌｅ
−Ｐｒｏのとき、ＹはＨｉｓ−Ｙ₁であり、ここでＹ₁は
６０〜６６位のアミノ酸のＣ末端伸長配列であり、そし
てすべてのＺはＶａｌであり、ＡＡ₂₈−ＡＡ₃₅は−Ｃｙ
ｓ−Ｃｙｓ−Ｐｒｏ−Ｖａｌ−Ｈｉｓ−Ｌｅｕ−Ｌｙｓ
−Ａｒｇ−（配列番号５）および（配列番号６）となり
得ない、ポリペプチドまたはその塩あるいはアミドを提
供する。

【００１７】１つの実施形態において、上記ポリペプチ
ドは、上記ＹがＧｌｙ−Ｌｅｕ−ＯＨあるいはＧｌｙ−
Ｌｅｕ−Ｈｉｓ−Ｙ₁であり得る。

【００１８】別の実施形態において、上記Ｘは、Ｈ、Ａ
Ａ₂₇−、ＡＡ₂₆−ＡＡ₂₇−、Ｇｌｙ−ＡＡ₂₆−ＡＡ
₂₇−、あるいはＰｈｅ−Ｇｌｙ−ＡＡ₂₆−ＡＡ₂₇−であ
り得る。

【００１９】さらに別の実施形態において、上記Ｘは、
Ｈ、ＡＡ₂₇−、ＡＡ₂₆−ＡＡ₂₇−、Ｇｌｙ−ＡＡ₂₆−Ａ
Ａ₂₇−、あるいはＰｈｅ−Ｇｌｙ−ＡＡ₂₆−ＡＡ₂₇−で
あり得る。

【００２０】なお別の実施形態において、上記ＡＡ₂₈お
よびＡＡ₂₉の両方は、Ｓｅｒであり得る。

【００２１】なおさらに別の実施形態において、上記Ａ
Ａ₂₇およびＡＡ₃₀の両方は、Ａｌａであり得る。

【００２２】さらなる実施形態において、上記ＡＡ₃₁は
Ｇｌｎ、ＡＡ₃₂はＬｙｓ、そしてＡＡ₃₃はＡｌａであり
得る。

【００２３】本発明はまた、以下から選択されるアミノ
酸配列を有するポリペプチドを提供する：

【００２４】

【化２】 。

【００２５】１つの局面において、本発明は、以下のア
ミノ酸配列を有するポリペプチドを提供する： Ｇｌｙ−Ｉｌｅ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｐｒｏ−Ｖ
ａｌ−Ｈｉｓ−Ｌｅｕ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅ
ｕ−Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ
−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−
Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｍｅｔ−Ｇ
ｌｙ−Ｌｅｕ−Ｈｉｓ（配列番号：３９）。

【００２６】別の局面において、本発明は、以下のアミ
ノ酸配列を有するポリペプチドを提供する： Ｇｌｙ−Ｉｌｅ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｐｒｏ−Ｖ
ａｌ−Ｈｉｓ−Ｌｅｕ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅ
ｕ−Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ
−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−
Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｍ
ｅｔ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ（配列番号４０）。

【００２７】本発明はまた、哺乳類の呼吸逼迫症（ＲＤ
Ｓ）を治療するのに有効な製薬組成物であって、上記ポ
リペプチドを薬学的に許容され得る賦形剤との混合で含
有する製薬組成物を提供する。

【００２８】本発明はさらに、哺乳類の呼吸逼迫症（Ｒ
ＤＳ）を治療する方法を提供し、この方法は、そのよう
な治療を必要とする哺乳類に上記ポリペプチドを有効量
与えることを包含する。

【００２９】本発明はまた、上記ペプチドをコードする
ＤＮＡから実質的になる、単離された形態の組換えＤＮ
Ａを提供する。

【００３０】本発明は、組換え宿主中に形質転換された
場合に、上記ＤＮＡを発現し得る発現系を含むＤＮＡも
また提供する。

【００３１】１つの実施形態において、本発明は、上記
の発現系で形質転換された組換え宿主を提供する。

【００３２】本発明は、以下の配列のペプチドまたはそ
の塩あるいはアミドを産生する方法を提供し、この方法
は、

【００３３】

【化３】 ここで、ＡＡ₂₈はＣｙｓあるいはＳｅｒ、ＡＡ₂₉はＣｙ
ｓあるいはＳｅｒ、ＡＡ₃₀はＰｒｏあるいはＡｌａ、Ａ
Ａ₃₁はＶａ１あるいはＧｌｎ、ＡＡ₃₂はＨｉｓあるいは
Ｌｙｓ、ＡＡ₃₃はＬｅｕあるいはＡｌａ、ＡＡ₃₄はＬｙ
ｓあるいはＧｌｎ、ＡＡ₃₅はＡｒｇあるいはＧｌｎ、Ｚ
は、Ｖａ１あるいは１１ｅのいずれか、ＹはＯＨ、Ｇｌ
ｙ−ＯＨ、Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−ＯＨ、Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ｈ
ｉｓ−ＯＨ、あるいはＧｌｙ−Ｌｅｕ−Ｈｉｓ−Ｙ₁、
ここで、Ｙ₁は、図３の６０〜７４位のアミノ酸に相当
する１〜１５個のアミノ酸のＣ末端伸長配列、そしてＸ
は、ＨあるいはＨ−ＡＡ₂₇−、Ｈ−ＡＡ₂₆−ＡＡ₂₇−、
あるいはＸ’−ＡＡ₂₆−ＡＡ₂₇−からなる群から選択さ
れるアミノ酸配列、ここで、ＡＡ₂₇は、Ｐｒｏあるいは
Ａｌａ、ＡＡ₂₆は、ＩｌｅあるいはＳｅｒ、そしてＸ’
は、Ｈあるいは図３の１〜２５位のアミノ酸に相当する
１〜２５個のアミノ酸のＮ末端伸長配列；ここで、条件
として、ＸがＰｈｅ−Ｇｌｙ−Ｉｌｅ−Ｐｒｏのとき、
ＹはＨｉｓ−Ｙ₁であり、ここでＹ₁は６０〜６６のアミ
ノ酸のＣ末端配列であり、すべてのＺはＶａｌであり、
ＡＡ₂₈−ＡＡ₃₅は−Ｃｙｓ−Ｃｙｓ−Ｐｒｏ−Ｖａｌ−
Ｈｉｓ−Ｌｅｕ−ＬＹｓ−Ａｒｇ−となり得ず、上記細
胞を培養する工程、およびペプチドを回収する工程を含
む。

【００３４】本発明はまた、ＡＳＰ活性を有し、そして
図３の２０１位から、２７５−２８１位のアミノ酸とし
て示された配列を持つ、精製されたポリペプチドを提供
する。

【００３５】

【発明の実施の形態】（定義）本明細書で用いる用語、
「肺胞界面活性タンパク質（ＡＳＰ）」は、肺胞界面活
性複合体に関連し、以下に定義するＡＳＰ活性を有する
アポタンパク質を意味する。試験したすべての種のＡＳ
Ｐは、本明細書で「３２Ｋ ＡＳＰ」と呼ばれる、比較
的高分子量（ほぼ３２ｋｄ）の１またはそれ以上の構成
成分、および、本明細書で「１０Ｋ ＡＳＰ」と呼ばれ
る、比較的低分子量（約５−２０ｋｄ）の疎水性の強い
構成成分を１またはそれ以上包含するようである。（Ｋ
ｉｎｇ，Ｒ．Ｊ．ら，Ｊ Ａｐｐｌ Ｐｈｙｓｉｏ１
（１９７７）４２：４８３−４９１；Ｐｈｉｚａｃｋｅ
ｒｌｅｙ，Ｐ．Ｊ．Ｒ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｊ（１９７
９）１８３：７３１−７３６）。

【００３６】哺乳類に存在することが知られている界面
活性タンパク質の性質に関する、さらなる議論が、第Ｗ
Ｏ８７／０６５８８号に見られる。それに記載されてい
ることを要約すると、「１０Ｋ」グループのタンパク質
は、２つの異なるＤＮＡによってコードされた前駆体に
由来する。ＳＰ−１８と呼ばれるこれらのＤＮＡの一方
のセットは、ゲル上の約１８ｋｄに現れる、タンパク質
の前駆体をコードするが、還元条件下では、１０ｋｄの
分子量を示す。ＳＰ−５と呼ばれるもう一方のＤＮＡ
は、ゲル上で８ｋｄまたは５ｋｄの分子量を示すタンパ
ク質の前駆体をコードする。本出願の発明は、ＳＰ−１
８およびＳＰ−５の前駆体タンパク質によって生成する
ペプチドに関連した特定のペプチドに関する。

【００３７】あるタンパク質の「ＡＳＰ活性」は、脂質
のみ、または、脂質および他のタンパク質と共に組み合
わされた場合に、Ｒｏｂｅｒｔｓｏｎ，Ｂ．，Ｌｕｎｇ
（１９８０）１５８：５７−６８のインビボアッセイで
活性を示す能力と定義される。このアッセイでは、評価
すべき試料を、帝王切開術によって未熟児の状態で出産
させたウサギの胎児または子羊の胎児に、気管内チュー
ブを通して投与する。（これらの「未熟児」は自身のＡ
ＳＰを欠き、人工呼吸器で維持されている。）肺の伸縮
性、血液ガスおよび人工呼吸器の圧力の測定により、活
性の指数を得る。例えば、Ｋｉｎｇ，Ｒ．Ｊ．ら，Ａｍ
Ｊ Ｐｈｙｓｉｏ１（１９７２）２２３：７１５−７
２６に記載の、または、ＨａｗｇｏｏｄらのＰＣＴ出願
第ＷＯ８７／０６５８８号に記載され、説明されている
インビトロアッセイにより、活性の予備評価を行い得
る。後者は、タンパク質をリン脂質小胞調製物と混合し
た時の、空気−水の界面の表面張力の直接測定を利用し
ている。本明細書に記載し、特許請求した、ＳＰ−１８
およびＳＰ−５由来ペプチドは、すべてＡＳＰ活性を示
す。

【００３８】本発明の「ｈＳＰ−５由来ペプチド」は、
図１および２に示すヒトＳＰ−５ＤＮＡによってコード
されたアミノ酸配列に基づくペプチド、特に、図３に示
す前駆体アミノ酸配列の部分をコードし、且つ、上記で
定義したＡＳＰ活性を有する部分を含む。これらのＳＰ
−５ペプチドあるいは薬学的に許容され得るその塩ある
いはアミドは以下のアミノ酸配列で定義される：

【００３９】

【化４】 ここで、ＡＡ₂₈はＣｙｓあるいはＳｅｒ、ＡＡ₂₉はＣｙ
ｓあるいはＳｅｒ、ＡＡ₃₀はＰｒｏあるいはＡｌａ、Ａ
Ａ₃₁はＶａｌあるいはＧｌｎ、ＡＡ₃₂はＨｉｓあるいは
Ｌｙｓ、ＡＡ₃₃はＬｅｕあるいはＡｌａ、ＡＡ₃₄はＬｙ
ｓあるいはＧｌｎ、ＡＡ₃₅はＡｒｇあるいはＧｌｎ、Ｚ
は、ＶａｌあるいはＩｌｅのいずれか・ＹはＯＨ、Ｇｌ
ｙ−ＯＨ、Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−ＯＨ、Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ｈ
ｉｓ−ＯＨ、あるいはＧｌｙ−Ｌｅｕ−Ｈｉｓ−Ｙ₁、
ここで、Ｙ₁は、図３の６０〜７４位のアミノ酸に相当
する１〜１５個のアミノ酸のＣ末端伸長配列、そしてＸ
は、ＨあるいはＨ−ＡＡ₂₇−、Ｈ−ＡＡ₂₆−ＡＡ₂₇−、
あるいはＸ’−ＡＡ₂₆−ＡＡ₂₇−、ここで、ＡＡ₂₇は、
ＰｒｏあるいはＡｌａ、ＡＡ₂₆は、ＩｌｅあるいはＳｅ
ｒ、そしてＸ’は、Ｈあるいは図３の１〜２５位のアミ
ノ酸に相当する１〜２５個のアミノ酸のＮ末端伸長配
列；ここで、条件として、ＸがＰｈｅ−Ｇｌｙ−Ｉｌｅ
−Ｐｒｏのとき、ＹはＨｉｓ−Ｙ₁であり、ここでＹ₁は
６０〜６６位のアミノ酸のＣ末端伸長配列であり、そし
てすべてのＺはＶａｌであり、ＡＡ₂₈−ＡＡ₃₅は−Ｃｙ
ｓ−Ｃｙｓ−Ｐｒｏ−Ｖａｌ−Ｈｉｓ−Ｌｅｕ−Ｌｙｓ
−Ａｒｇ−。

【００４０】上記のグループ中ｈＳＰ−５由来ペプチド
のＹの、好適な実施態様は、Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−ＯＨ、ま
たはＧｌｙ−Ｌｅｕ−Ｈｉｓ−Ｙ₁である。但しＹ₁は、
図３で６０−７４の番号を付した１５個のアミノ酸に対
応するＣ末端伸張部である。Ｘの好適な実施態様は、
Ｈ、Ｈ−ＡＡ₂₇−、Ｈ−ＡＡ₂₆−ＡＡ₂₇−、Ｇｌｙ−Ａ
Ａ₂₆−ＡＡ₂₇−または、Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−ＡＡ₂₆−ＡＡ
₂₇−である。

【００４１】以下に述べるように、上記のグループ内の
特に好適なＳＰ−５類似体は、ＡＡ ₂₈およびＡＡ₂₉が両
方Ｓｅｒのものである。いかなる理論にも束縛されるこ
とを望まないが、これらの部位の、２つの天然Ｃｙｓ残
基をＳｅｒで置換すると、分子内および分子間ジスルフ
ィド結合が減少し、従って、タンパク質の凝集が減少す
ることを本発明の発明者は実証した。

【００４２】本発明の「ｈＳＰ−１８由来ペプチド」
は、図４に示すアミノ酸配列を有するペプチドを含む。
図４は、２０１位から２７５−２８１位のカルボキシ末
端までにわたるヒトクローン＃３を示す。特に好適なも
のは、２０１−２７９位にわたるＳＰ−１８タンパク質
である。

【００４３】（タンパク質の生産）本発明のｈＳＰ−１
８およびｈＳＰ−５由来ペプチドの、より短い形態のも
のは、固相ペプチド合成、または、他の標準的ペプチド
合成手段によって、調製し得る。これらのペプチドはま
た、組換えベクターおよび宿主を用いて簡便に製造し得
る。

【００４４】ベクターの構築、細胞の形質転換、形質転
換細胞中での発現、等に用いられる技術のほとんどは、
当該分野で広く実施されており、ほとんどの当業者は、
特定の条件および方法を記載した標準的な手引書を熟知
している。本発明のペプチドに用いられる方法の例は、
特に、第ＷＯ８６／０３４０８号および第ＷＯ８７／０
６５８８号に実際的に記載されている。

【００４５】特に哺乳類系および細菌系および酵母系を
含む様々な宿主体系で、発現を行ない得る。加えて、他
の細胞系も当該分野で使用可能になり、例えば、バキュ
ロウィルスベクターが、昆虫の細胞内でタンパク質をコ
ードする遺伝子を発現するために用いられている。以下
に述べる発現系は、本発明の例示を目的とするものであ
り、当業者は、様々な発現系が使用され得ることを理解
している。

【００４６】ｃＤＮＡまたはゲノムＤＮＡの回収、およ
び／または合成方法の使用によって、様々なｈＳＰ−５
およびｈＳＰ−１８由来ペプチドをコードするヌクレオ
チド配列が得られ、様々な系中で、これらのヌクレオチ
ド配列を発現し得る。原核系が用いられる場合は、適切
な対照配列と共にイントロンを含有しないコード配列を
用いるべきである。上記のＡＳＰタンパク質のいづれに
対応するｃＤＮＡクローンは、適切な制限酵素で切り出
し、このような発現のための原核ベクターに連結され得
るか、または、合成のコード配列が使用され得る。ＡＳ
ＰゲノムＤＮＡを原核系で発現させるためには、部位特
異変異誘発により、または、ｃＤＮＡの対応部分を回収
し、それらをイントロン含有ゲノム配列で置換すること
により、ＤＮＡからイントロンを除去する修飾をすべき
である。イントロンを含有しないコードＤＮＡを次に、
原核発現用の発現ベクターに連結する。

【００４７】例示するように、ゲノム配列、ｃＤＮＡ配
列、または合成（または一部合成）ＡＳＰコード配列
は、イントロンをプロセッシング可能な発現系、通常、
哺乳類の宿主細胞培養系に、直接使用し得る。このよう
な発現を実施するために、ゲノム配列または他の配列
を、適合性のある細胞内でこれらの配列の発現を調節す
る制御可能な哺乳類プロモーターの下流に連結され得
る。

【００４８】組換え体産生に加えて、ＳＰ−５コードタ
ンパク質に関連するタンパク質のような、長さの十分短
い、本発明のタンパク質は、標準タンパク質合成方法に
よって調製し得る。

【００４９】（タンパク質の回収）ＡＳＰタンパク質
は、成熟タンパク質もしくは融合タンパク質として産生
され得、または分泌するためにシグナル配列をプロセシ
ングし得る細胞中で、シグナル配列と共に産生され得
る。タンパク質が分泌されると、精製の困難性が最小限
になるため、時として有利な場合がある。従って、適切
なプロセッシングをし得る細胞中で、天然のシグナル配
列のコドンを含むヒトＡＳＰ遺伝子を発現させることが
好ましい。培養された哺乳類細胞は、シグナル配列を有
する異種の哺乳類タンパク質を開裂し、プロセシング
し、それらを培地中に分泌することが示されている（Ｍ
ｃＣｏｍｉｃｋ，Ｆ．ら、Ｍｏｌ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏ１
（１９８４）４：１６６）。

【００５０】培地に分泌されると、ＡＳＰタンパク質
は、標準タンパク質精製技術により回収される。比較的
少数のタンパク質が、培地に分泌され、そこで分泌され
たタンパク質の大部分は、すでにＡＳＰであるため、精
製工程は簡略化される。方法はより困難であるが、融合
または成熟の形態で細胞内に生産される細胞の音波処理
物または溶解産物からこのタンパク質を精製すること
は、当該技術分野で公知の手段である。このような方法
の１つを以下に例示する。

【００５１】（ＡＳＰ活性のアッセイ）表面張力を減少
させる（表面圧力を増加させることと同義）ことによ
り、ＡＳＰタンパク質が水／空気の界面に膜を形成する
能力を評価するインビトロの試験法が考案された。これ
らの方法を用いた研究が、単離された天然の１０Ｋのイ
ヌＡＳＰに関して行われた（Ｂｅｎｓｏｎ， Ｂ．Ｊ．
ら、Ｐｒｏｇ ＲｅｓｐＲｅｓ（１９８４）１８：８３
−９２；Ｈａｗｇｏｏｄ、Ｓ．らＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔ
ｒｙ（１９８５）２４：１８４−１９０）。これらの方
法はまた、個々の合成ペプチドおよび組み換えペプチド
にも適用される。インビボでの界面活性物質複合体の機
能は、表面張力を減少させるために、空気／水の界面に
膜を形成することであるため、インビトロのモデルの表
面で脂質またはリポタンパク質の拡がりにより生成する
膜の形成を促進するＡＳＰタンパク質の能力は、明かに
その有用性と関連している。

【００５２】ＷＯ８７／０６５８８号のセクションＤ．
１０に詳述されている、インビボのモデルもまた使用さ
れる。

【００５３】（投与及び使用）精製されたタンパク質お
よび類似体は、小児または成人の呼吸窮迫症候群の治療
のために投与されるのに適切な薬学組成物に、単独でお
よび組み合わせて使用され得る。本発明の組成物はま
た、肺炎および気管支炎のような関連の呼吸疾患を治療
するのに有用である。この複合体は、約５０％からほぼ
１００％（ｗｔ／ｗｔ）の脂質および５０％から１％未
満のＡＳＰを含み、好ましくはＡＳＰが、複合体の５％
から２０％である。脂質部分の７０％から９０％（ｗｔ
／ｗｔ）がＤＰＰＣであり、その残りの部分が、不飽和
ホスファチジルコリン、ホスファチジルグリセロール、
トリアシルグリセロール類、パルミチン酸、パルミトイ
ルオレイルホスホグリセリド（ＰＯＰＧ）、またはその
混合物であるのが好ましい。複合体は、ＡＳＰ溶液と脂
質リポソームの懸濁液とを混合させるか、または洗浄剤
または有機溶媒の存在下に直接脂質タンパク質溶液を混
合することにより形成される。次いで、洗浄剤または溶
剤は、透析または蒸発により除去され得る。

【００５４】複合体を構築するために肺洗浄物からの天
然の脂質成分を用い、それに適切な量のＡＳＰタンパク
質を補給することが可能であるが、合成脂質を使用する
ことが明らかに好ましい。第１に、自明なことである
が、十分な供給が問題なためである。第２に、調製物の
純度および、天然の脂質が単離される肺に存在し得る感
染性のタンパク質を含む、外来タンパク質による汚染が
ないことは、合成調製物でのみ保証される。もちろん、
有効な複合体の再構成は、合成成分を使用する方がより
困難である。

【００５５】好ましいＡＳＰ組成物は、単離された１０
Ｋ混合物との複合体、ＳＰ−５−もしくはＳＰ−１８−
がコードするタンパク質単独、単独または組合せた活性
ＳＰ−５類似体、１０Ｋおよび３２Ｋ混合物の複合体、
またはＳＰ−１８もしくはＳＰ−５−関連タンパク質と
３２Ｋ混合物との複合体を含む。後者の場合、好ましい
タンパク質比、すなわち３２Ｋ：１０Ｋもしくは３２
Ｋ：ＳＰ−１８もしくは３２Ｋ：ＳＰ−５−は、通常、
３：１から２００：１の範囲、好ましくは約１０：１か
ら５：１の範囲である。３２Ｋタンパク質は、リン脂質
小胞の水性懸濁液に水溶液で直接加え得る。１０Ｋタン
パク質は疎水性が強いため、クロロホルムのような有機
溶媒の溶液中の脂質に加えられ、溶媒を蒸発させ、次い
で、水和により水小疱を再形成させる。

【００５６】界面活性複合体を投与するために、１０Ｋ
タイプに３２Ｋタンパク質を添加すると、相乗効果があ
るように思われる。すなわち、３２Ｋおよび１０Ｋタイ
プのタンパク質を組み合わせると、１０Ｋタンパク質単
独の場合に必要なタンパク質濃度よりも低い濃度で所望
の活性を示す。従って、本発明の好ましい方法では、投
与される界面活性複合体は、有効な量の１０Ｋ混合物ま
たは個々のＳＰ−５またはＳＰ−１８タンパク質、また
は本発明のｈＳＰ−５またはｈＳＰ−１８由来のペプチ
ドと、３２ＫのＡＳＰとの混合物を含む。もちろん、個
体のｈＳＰ−５またはｈＳＰ−１８由来のペプチド混合
物が使用され得る。特に好ましい組成物は、全組成物の
通常５０％からほぼ１００％の範囲の適切な量の脂質成
分と共に、上記のような３２Ｋ：１０Ｋ比のタイプのタ
ンパク質を含む。

【００５７】複合体を含む組成物は、気管内投与に適切
な、すなわち、一般に脂質懸濁液、乾燥粉末「ダス
ト」、またはエアロゾルが好ましい。直接気管内投与す
るためには、複合体は、例えば水、生理食塩水、デキス
トロースまたはグリセロール等の適切な賦形剤を含む液
体中に懸濁される。組成物はまた、例えば酢酸ナトリウ
ムまたはリン酸ナトリウム等のｐＨ緩衝剤のような無毒
性補助物質を少量含み得る。「ダスト」を調製するため
に、上記のように任意に混合された複合体を、凍結乾燥
し、次いで乾燥粉末として回収する。

【００５８】エアロゾル投与に用いる場合には、複合体
は、付加的な界面活性剤および噴射剤と共に、微細に分
割された形態で供給される。投与され得る典型的な界面
活性剤は、脂肪酸およびエステルであるが、本発明の場
合、界面活性剤複合体の他の成分のＤＰＰＣおよびＰＧ
を用いるのが好ましい。有用な噴射剤は、通常、通常条
件で気体であり、加圧下で凝縮される。低級アルカンお
よびフレオン（Ｆｒｅｏｎ）のようなフッ素化アルカン
が使用され得る。エアロゾルは、適切なバルブを備えた
コンテナー中に充填し放出されるまで、加圧下に成分を
維持する。

【００５９】界面活性複合体は、気管内挿入管、エアロ
ゾル投与、または吸気中への懸濁液またはダストの噴霧
による、等の投与形態に応じて適切に投与される。体重
１ｋｇ当り約０．１ｍｇと２００ｍｇとの間、好ましく
は５０−６０ｍｇの量の複合体が一回の投与で投与され
る。新生児に使用する場合は、一回の投与で一般に十分
である。成人では、再構成された複合体が、示された欠
損レベルを補うのに十分な量、投与される（Ｈａｌｌｍ
ａｎ、Ｍ．ら、Ｊ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｉｎｖｅｓｔｉ
ｇａｔｉｏｎ（１９８２）７０：６７３−６８２）。

【００６０】さらに、本願に記載のｈＳＰ−１８−およ
びｈＳＰ−５−由来のぺプチドを含む１つまたはそれ以
上のＡＳＰタンパク質が、他の生物学的に活性で重要な
分子を、肺および／または肺を通じて血管系に運搬する
ためのキャリヤーまたはビヒクルとして使用され得る。
後者の場合、身体の他の器官にとって重要な物質の運搬
がなされ得る。

【００６１】本発明は、好ましい特定の実施態様に関連
させて記載しているが、上記の説明および以下の実施例
は、本発明を例示することを目的とし、本発明の範囲を
限定するものではない。本発明の範囲内にある他の局
面、利点および改変は、本発明が関連する当業者に自明
である。

【００６２】

【実施例】（調製Ａ） （哺乳類ＡＳＰタンパク質の単離）ＷＯ８６／０３４０
８およびＷＯ８７／０６５８８に記載されているよう
に、イヌ、ヒトおよびウシＡＳＰタンパク質を精製した
形態で得たが、これらの出願願書には、ヒトおよびイヌ
の３２Ｋのタンパク質をコードするＤＮＡ、並びにヒト
およびイヌのＳＰ−１８タンパク質をコードするＤＮＡ
が回収され開示された。ヒトＡＳＰのＳＰ−５前駆体タ
ンパク質をコードする、完全なｃＤＮＡ配列の２つの改
変型が、ＷＯ８７／０６５８８に記載されているように
回収されており、本願の図１および２に示すように再生
される。

【００６３】（実施例１：単離された１０Ｋタンパク質
のＮ末端およびＣ末端の同定） ５ｋｄタンパク質：１０Ｋ混合物中の５ｋｄタンパク質
のカルボキシ末端は、このタンパク質が分子量約２０，
５００ダルトンの大きな前駆体に由来しているため、確
認が難しい。単離された、天然のイヌタンパク質の質量
スペクトル分析では、図５のイヌタンパク質のアミノ酸
配列において示したように、明らかにカルボキシ末端が
Ｈｉｓ−５９であることが示された。ヒトの肺洗浄液か
ら単離された天然ＳＰ−５タンパク質の、酵素開裂フラ
グメントのアミノ酸配列分析では、カルボキシ末端がＬ
ｅｕ−５８にあることが示された（Ｊｏｈａｎｓｓｏ
ｎ，Ｊ．ら、ＦＥＢＳＬｅｔｔｅｒｓ， ２３２， Ｎ
ｏ． １（１９８８）， ６１−６４参照）。イヌの天
然型ＳＰ−５およびヒトの天然型ＳＰ−５を質量スペク
トルによって再分析すると、観察される分子量は、Ｌｅ
ｕ−５８にカルボキシ末端を有する種類と一致する。こ
の種類は、（イヌではＡＡ−２８の、ヒトではＡＡ−２
８，２９の）システイン残基がチオエステル結合を介し
てパルミチル化されている。パルミチル基を除去するた
めに、還元剤によってこの天然型を処理し、次に質量ス
ペクトル分析およびＨＰＬＣ分析を行って、これらの種
類が存在することが確認された。従って、本発明の好ま
しいアナログは、図１、２および３に示すように、Ｌｅ
ｕ−５８またはＨｉｓ−５９にカルボキシル末端を有し
得る。組換え産生技術を用いて、本願の発明者らは、Ｌ
ｅｕ−５８とＨｉｓ−５９の双方にカルボキシル末端を
有するＳＰ−５アナログを生成し、本明細書に説明す
る、インビトロおよびインビボ両方のアッセイで、それ
らが本質的に同等であるということを示した。特に、比
較して同等であるということが示されたアナログは、ア
ミノ酸末端をＧｌｙ−２５に、Ｓｅｒ残基をＡＡ−２８
およびＡＡ−２９に、そしてカルボキシル末端をＬｅｕ
−５８またはＨｉｓ−５９に有するヒトＳＰ−５アナロ
グタンパク質である。

【００６４】ヒト５ｋｄタンパク質のＮ−末端は、アミ
ノ酸の直接配列決定によってフェニルアラニン（図３に
示すように、２４位において）であることがわかるが、
２５位のグリシンおよび２６位のイソロイシンを代わり
にＮ末端として有する先端切断型もまた見いだされた。

【００６５】１８ｋｄタンパク質：１０Ｋ混合物中の１
８ｋｄタンパク質のカルボキシ末端を、アミノ酸組成定
量と、Ｎ末端から始まるタンパク質のアミノ酸配列決定
と、カルボキシペプチダーゼＹ消化（タンパク質のＣ末
端からアミノ酸を開裂させる酵素）と、質量スペクトル
とを用いて分析した。図６に、ヒトおよびイヌのタンパ
ク質のアミノ酸配列を示す。

【００６６】臭化シアンによるメチオニンでの開裂の
後、イヌおよびウシ１８ｋｄタンパク質の配列分析を行
うと、イヌタンパク質のＣ末端はＨｉｓ−２７９に、ウ
シタンパク質のＣ末端はＳｅｒ−２７８にあることが示
された。カルボキシペプチダーゼＹを用いた酵素分析で
は、Ｌｅｕ−２７５が、イヌおよびウシタンパク質両方
のＣ末端であった。イヌタンパク質の質量スペクトル分
析では、Ｃ末端はＡｒｇ−２７６であり、臭化シアン開
裂の後のアミノ酸配列決定によって予測されるところに
よると、小さな配列がＨｉｓ−２７９に伸びている。要
するに、カルボキシ末端はイヌタンパク質においてはＨ
ｉｓ−２７９に近く、類推すると、ヒト１８ｋｄタンパ
ク質においてはＭｅｔ−２７９に近い。上記の結果に基
づくと、特定の調製物および種類に応じて、タンパク質
の先端切断型のＣ末端、および先端切断型またはゆらぎ
型Ｎ末端が存在すると思われる。従って、本願の発明者
らは、特定の種類について、おそらく多数のＣ末端が存
在すると仮定する。図６に示すように、ヒトタンパク質
の推定Ｎ−末端は、ＷＯ８７／０６５８８に記載されて
いるように２０１位のフェニルアラニンである。カルボ
キシ末端は、同様に図６に示すように、２７９位のメチ
オニンコドンに近い。

【００６７】（調製Ｂ） （哺乳類発現のためのベクター構築）本明細書に開示さ
れるｈＳＰ−１８由来タンパク質およびｈＳＰ−５由来
タンパク質は、組換え技術を用いて調製され得る。イン
トロンを含むＤＮＡをプロセシングすることもできる、
哺乳類細胞中で様々なＡＳＰをコードする配列を発現さ
せるのに適したベクターが構築された。これらのベクタ
ーにおいては、ＷＯ８７／０６５８８に記載されている
ように、メタロチオネインＩＩ（ｈＭＴＩＩ）コントロ
ール配列によって発現が調節される。この公開出願で
は、宿主ベクターｐＭＴ、ｐＭＴ−Ａｐｏ、ｐＭＴ−Ｓ
Ｖ（９）、ｐＭＴ−ＳＶ（１０）、およびｐＭＴ−Ａｐ
ｏ１０の調製を詳細に記載している。これらのベクター
はすべて挿入部位を有しており、メタロチオネインプロ
モーターの制御下にコードする配列を置くことができ
る。名称に”Ａｐｏ”のつくベクターは、挿入領域の下
流のＡｐｏＡＩ遺伝子に伴う、３’末端調節シグナルを
も含んでいる。名称に”９”または”１０”がつくベク
ターは、作動可能なＳＶ−４０ウイルスエンハンサーを
も含んでいる。

【００６８】上記公開出願に記載されているように、ｐ
ＭＴＡｐｏ１０をＢａｍＨＩで消化し、平滑化し、ＳＰ
−１８前駆体をコードする１２７５ｂｐのクローン＃３
から得たｃＤＮＡ配列（平滑末端フラグメント）に連結
した。このことは、ヌクレオチド６６３位のＢａｍＨＩ
部位を避けつつ、ＥｃｏＲＩ／ＢａｍＨＩ（パーシャ
ル）フラグメントをｃＤＮＡ＃３から単離し、これをＥ
ｃｏＲＩ／ＢａｍＨＩ消化ｐＵＣ９にサブクローニング
することによって行われた。所望のフラグメントをＥｃ
ｏＲＩおよびＨｉｎｄＩＩＩで取り出し、クレノウで平
滑化し、そしてｐＭＴＡｐｏ１０に挿入した。得られた
ベクターであるｐＭＴ（Ｅ）：ＳＰ−１８−４０ｋを、
ＣＨＯ細胞に形質転換した。これらの形質転換細胞の培
養物中でプロモーターを誘導することにより、２５ｋｄ
および４３ｋｄタンパク質が産生された。これらのタン
パク質はヒト１８ｋｄ ＡＳＰに対する抗血清で免疫沈
降される。前駆体の残基３３６−３５３に伸びるペプチ
ドに対する抗血清を用いたウエスタンブロットにかける
と、２５ｋｄおよび４３ｋｄタンパク質が検出された。
２５ｋｄ生成物は、Ｎ結合グリコシル化部位を有する、
Ｐｈｅ−２０１：Ｌｅｕ−３８１に伸びる、１８１個の
アミノ酸配列を示すと考えられている。さらにＷＯ８７
／０６５８７に記載されているように、ＳＰ−１８をコ
ードするＤＮＡを含有するアナログベクターを構築し、
このベクターは、明らかにＣＨＯ細胞中で全長配列から
産生された前駆体タンパク質の、インビトロでの開裂の
ための部位を提供する、標準部位特異的突然変異導入の
技術を用いて作られた。このような構築物の１つにおい
て、３８１個のアミノ酸前駆体を改変して、Ｇｌｎ−１
９９：Ｇｌｎ−２００およびＡｒｇ−２８６：Ｓｅｒ−
１８７のそれぞれを、Ａｓｎ：Ｇｌｙに置き換えて、
（ＡｓｎとＧｌｙとの間を開裂する）ヒドロキシルアミ
ンによって開裂可能な部位を得た。このようにして生成
したヒドロキシルアミンによる前駆体の開裂部によっ
て、推定される成熟形態が生じる。この成熟型は、アミ
ノ末端に付加的ｇｌｙ残基を有し、Ａｓｎ残基に変換さ
れた推定カルボキシ末端Ａｒｇ−２８６を有する。別の
構築物では、Ｐｈｅ−２０１およびＳｅｒ−８７がＡｓ
ｐ残基に変換されている。酸を用いた（ＡｓｐとＰｒｏ
との間の）開裂によって、Ｎ末端Ｐｈｅ−２０１がな
く、カルボキシ末端に付加的Ａｓｐ残基を有する、ＳＰ
−１８タンパク質の成熟形態が生じる。別の構築物で
は、Ｇｌｕ残基の後を開裂するＳｔａｐｈ Ｖ８ペプチ
ダーゼを用いて、インビトロで、前駆体をより緩やかな
酵素工程によって処理することができる。Ｇｌｕ−２５
１をＡｓｐに変換することによって、Ｇｌｕ−１９８お
よびＧｌｕ−２９１の天然Ｇｌｕ残基が利用される。４
３ｋｄ前駆体は、Ｓｔａｐｈ Ｖ８で開裂され、アミノ
末端に付加Ｇｌｎ−Ｇｌｎを持ち、カルボキシ末端にＰ
ｒｏ−Ｔｈｒ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕを有する推定の成熟ＳＰ
−１８タンパク質が生ずる。さらに別の構築物では、Ｇ
ｌｕ残基が２００位および／または２８７位に位置させ
られ得る。

【００６９】同様の方法で、図１および図２に示す、Ｓ
Ｐ−５クローンの平滑化ＥｃｏＲＩ挿入物をＢａｍＨＩ
消化ｐＭＴ−Ａｐｏ１０内に入れ、ｐＭＴ（Ｅ）：ＳＰ
−５ベクターを得、ＣＨＯ細胞に形質転換した。

【００７０】（実施例２：ｈＳＰ−１８由来ペプチドお
よびｈＳＰ−５由来ペプチドをコードするＤＮＡの哺乳
類発現）本明細書に説明する、本発明のｈＳＰ−５由来
タンパク質およびｈＳＰ−１８由来タンパク質をコード
するＤＮＡ配列を、ＢａｍＨＩ消化ｐＭＴ−Ａｐｏ１０
に入れ、適切な発現ベクターが得られる。好ましくは、
所望のタンパク質をコードするＤＮＡを、ＣＨＯ細胞に
おいて有効なシグナル配列へ、作動可能に連結する。挿
入された配列のＣＨＯ細胞への形質転換および発現は、
下記のように行われる。

【００７１】チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）−
Ｋ１細胞を、１０％の胎児仔牛血清を添加した、クーン
のＦ１２培地とＤＭＥ２１培地との１：１混合物からな
る培地で増殖させる。成分細胞は、目的のベクターおよ
びｐＳＶ２：ＮＥＯ（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ， Ｐ．ら、Ｊ
Ｍｏｌ Ａｐｐｌ Ｇｅｎｅｔ（１９８２）１：３２
７−３４１）によって同時形質転換される。ｐＳＶ２：
ＮＥＯは、ネオマイシンアナログＧ４１８に対する耐性
を与える機能的遺伝子を含有している。一般的な形質転
換においては、０．５μｇのｐＳＶ２：ＮＥＯおよび５
μｇ以上の発現ベクターＤＮＡが、１００ｍｍディッシ
ュの細胞に付与される。Ｗｉｇｌｅｒ，Ｍ．ら、Ｃｅｌ
ｌ（１９７９）１６：７７７−７８５のプロトコルによ
る、リン酸カルシウムとＤＮＡの同時沈澱法では、ＤＮ
Ａに４時間曝した後、１５％グリセロールを含むＰＢＳ
での２分間の「ショック」が用いられる。

【００７２】簡単に言うと、細胞を１／１０集密で接種
し、１晩増殖させ、ＰＢＳで２回洗浄し、ＣａＰＯ₄・
ＤＮＡ同時沈澱を含有する０．５ｍｌのへペス緩衝生理
食塩水内に１５分間置き、そして１０ｍｌの培地を加え
る。培地を吸引によって除去し、１．５〜３分間、１５
％グリセロールを含むＰＢＳに置き換える。ショックを
受けた細胞を洗浄し、培養培地を加える。ＭＴ−ＩＩ制
御発現が誘導されるまで、培地は１０％のＦＢＳを有す
る１：１のＦ１２／ＤＭＥＭ２１を含有する。１日後、
細胞を１ｍｇ／ｍｌのＧ４１８に曝し、Ｇ４１８耐性の
コロニーのプールを得る。所望のプラスミドの安定した
遺伝形質も有する、うまく形質転換した細胞を、クロー
ン単離の精製のために、低濃度で培養する。

【００７３】所望のタンパク質の産生について、まずプ
ールとして、その後多重ウェルプレートで単離されたク
ローンとして、形質転換細胞をアッセイする。培養アッ
セイレベルは、ある程度ウェルの大きさによる。例え
ば、２４ウェルプレートの結果を、９６ウェルプレート
の結果とは直接には比較しない。プレートアッセイによ
って、満足のいくレベルでタンパク質を産生しているこ
とがわかったクローンを、次にローターボトルでの製造
作業で成長させることができる。一般に、スケールアッ
プを行うと、産生のレベルは上がる。このため、一般に
１００〜２００以上の個々のクローンが、プレート上で
の様々なスクリーニング法によってアッセイされ、最も
高い生成を示したもののうち５〜１０個が、製造条件下
（ローターボトル）でアッセイされる。

【００７４】形質転換された細胞のプールを多重ウェル
プレートで成長させ、５ｘ１０^-5から１ｘ１０^-4の亜鉛
イオン濃度に曝し、所望のＡＳＰタンパク質の産生を誘
導する。

【００７５】１０％ＦＢＳを含有する、マッコイの５Ａ
培地で成長する個々の細胞株の半集密単層を、リン酸緩
衝生理食塩水（ＰＢＳ）で洗浄し、１０％ＦＢＳと、１
ｘ１０^-4塩化亜鉛と、０．２５ｍＭのアスコルビン酸ナ
トリウムとを含有するマッコイの培地でならす（ｒｅｆ
ｅｄ）。（アスコルビン酸塩は、プロリン残基のヒドロ
キシル化に役立つ。）誘導後２４時間で、細胞をＰＢＳ
で洗浄し、塩化亜鉛およびアスコルビン酸塩を含有す
る、血清フリーのマッコイ培地でならす（ｒｅｆｅ
ｄ）。１２時間後、馴化培地を回収する。

【００７６】（調製Ｃ） （細菌発現ベクター）ＷＯ８７／０６５８８号に記載さ
れたように、ＡＳＰタンパク質のグリコシル化されてい
ない形態は、バクテリア中で生成され得る。ＳＰ−１８
タンパク質では、遺伝子は、発現して例えばｍｅｔ−に
続く２０１−３８１残基で表される１８１アミノ酸前駆
体を生成するか、または１５個残基のβ−ガラクトシダ
ーゼリーダーを有する、ヒドロキシルアミンで開裂し得
る融合タンパク質前駆体として生成され得る。ＡＴＧに
先立つ、ｃＤＮＡのアミノ酸２０１−３８１をコードす
る改変ｃＤＮＡ ＃３は、Ｔｒｐ−調節ベクターｐＴｒ
ｐ−２３３のＥｃｏＲＩ部位とＨｉｎｄＩＩＩ部位との
間に挿入し、ｐＴｒｐ−２０を得る。これはＷＯ８７／
０６５８８号に記載されている。この構築物は分子量２
０ｋｄのタンパク質を生成する。ｐＢＧａｌ宿主ベクタ
ーに類似した構築物であるｐＢＧａｌ−２０は、ヒドロ
キシルアミン感受性のＡｓｎ−Ｇｌｙのダブレットを通
して１５個残基のβ−ガラクトシダーゼリーダーと融合
した、ＳＰ−１８ ｃＤＮＡ ＃３とおなじ配列を含有
し、ＭＷ＝２２ｋｄの融合タンパク質を生成する。

【００７７】ｐＴｒｐ−２０およびｐＢＧａｌ−２０プ
ラスミドを用いて、Ｅ．ｃｏｌｉＷ３１１０をアンピシ
リン耐性に形質転換する。Ｍ９培地（１ｘＭ９塩、０．
４％グルコース、２ｍｇ／ｍｌチアミン、２００μｇ／
ｍｌのＭｇＳＯ₄・７Ｈ₂０、０．５％カザミノ酸）で速
やかに増殖する、ｐＴｒｐ−２０／Ｗ３１１０またはｐ
ＢＧａｌ−２０／Ｗ３１１０の培養物を、１００μｇ／
ｍ１のＩＡＡ（３−β−インドールアクリレート、シグ
マＩ−１６２５）で処理してｔｒｐプロモーターを誘発
する。ＷＯ８７／０６５８８号はまた、バクテリアに発
現させる開裂部位を提供する、改変されたＳＰ−１８タ
ンパク質配列をコードするベクターを開示する。ｐＴｒ
ｐ−２０において、Ａｒｇ−２８６：Ｓｅｒ−２８７を
コードするコドンは、Ａｓｎ−Ｇｌｙをコードするよう
に変化されて；ヒドロキシルアミン感受性の開裂部位を
導入するか、またはＳｅｒ−２８７のコドンをＡｓｐの
コドンに置き換えて、その結果、酸感受性のＡｓｐ−Ｐ
ｒｏ開裂部位を生じるか、またはＧｌｕ−２５１のコド
ンがＡｓｐのコドンに置き換えられ、所定のタンパク質
を開裂することなくＧｌｕ−２９１においてＳｔａｐｈ
Ｖ８で開裂されるようにした。これらの構築物は、２
８７−３８１または２９１−３８１のアミノ酸配列を有
するＳＰ−１８を生成することが予想された。また、ｐ
Ｔｒｐ−２０およびｐＢＧａｌ−２０の両方において、
３’末端配列から推定されるカルボキシ末端Ａｒｇ−２
８６までの配列を削除して停止コドンに置換されてお
り、ＳＰ−１８コドンの２０１−２８６位を表すペプチ
ドを生成すると推定された。しかしながら、どちらの構
築物も、誘発後に適当なサイズの標識されたタンパク質
を生成しなかった。

【００７８】ＳＰ−５由来のタンパク質に関連して、Ｗ
Ｏ８７／０６５８８号は、ｐＴｒｐ−２０と同様にＡＴ
Ｇに続くＧｌｙ−２５から、Ｓｐ−５「前駆体」のＩｌ
ｅ−１９７まで伸びるｃＤＮＡ ＃１８のフラグメント
を、ＥｃｏＲＩ／ＨｉｎｄＩＩＩ消化したｐＴｒｐ−２
３３に挿入してｐＴｒｐ−５を作製すること、およびｐ
ＢＧａｌ宿主ベクターに挿入してｐＢＧａｌ−５を作製
することを記載している。ここでＳＰ−５配列は、ヒド
ロキシルアミン感受性のＡｓｎ−Ｇｌｙを通してβ−ガ
ラクトシダーゼリーダーと融合している。これらのベク
ターは推定では、２５−１９７に及ぶＳＰ−５由来のタ
ンパク質を生成する。同様に、この構築物から予想され
るタンパク質のＳｔａｐｈ Ｖ８による、Ｐｈｅ−２４
に続くＧｌｕおよびＧｌｕ−６６での開裂は、２４−６
６位置にわたるＳＰ−５由来のペプチドを生じるであろ
う。

【００７９】これらの構築物はすべてＥ．ｃｏｌｉ Ｗ
３１１０に変換され、上述のように発現される。

【００８０】（実施例３：細菌におけるｈＳＰ−１８お
よびｈＳＰ−５誘導のタンパク質の生成）ｈＳＰ−１８
およびｈＳＰ−５由来のペプチドを、上流に安定化配列
を有する開裂可能な融合タンパク質として発現すること
は有益である。１９８８年８月１１日に出願された、同
一譲受人による米国特許出願番号２３１，２２４号に
は、引例としてここに包含されるが、ｈＳＰ−１８また
はｈＳＰ−５ペプチドの特定部分をコードするＤＮＡと
結合した、クロラムフェニコールアセチルトランスフェ
ラーゼ（ＣＡＴ）をコードする遺伝子の一部を含有する
数種のベクターの構築物が記載されている。ＳＰ−５由
来のペプチドの３５個のアミノ酸をコードするベクタ
ー、すなわち、６個のアミノ酸リンカー、Ｓｅｒ−Ａｓ
ｐ−Ｐｒｏ−Ｇｌｕ−Ｐｈｅ−Ａｓｎを通してＣＡＴと
結合したｈＳＰ−５（２４−５９）を例示している。上
記に引用された出願に記載されているように、これらの
ベクターは以下のように調製される。

【００８１】ＳＰ−１８由来のタンパク質およびＳＰ−
５由来のタンパク質を有するベクターは、ヒト心房のナ
トリウム排せつ増加性ペプチド（ｈＡＮＰ）をコードす
る挿入部を用いて構築した宿主ベクターから得られる。
この中間ベクター、ｐＣｈＮＦ１０９は以下のように構
築される。

【００８２】発現ベクターｐＣｈＮＦ１０９は、エンド
プロテイナーゼのＧｌｕ−Ｃのタンパク質分解性開裂部
位を含有する、２４１個のアミノ酸のＣＡＴ−ｈＡＮＰ
ハイブリッドタンパク質をコードする。ＣＡＴおよびｈ
ＡＮＰのＤＮＡおよびコードされたアミノ酸配列は、第
７図に示されている。ＣＡＴ遺伝子の大部分（アミノ酸
１−２１０）は、リンカー遺伝子（５個のアミノ酸）を
通して、上述のようにｈＡＮＰ（１０２−１２６）遺伝
子および開裂部位（２６個のアミノ酸）インフレームで
結合している。このベクターは、プラスミドｐＴｒｐ２
３３、ｐＣＡＴ２１、およびｐｈＮＦ７５から構築され
た。これらは、それぞれプラスミドバックボーンおよび
ｔｒｐプロモーター−オペレー夕ー、ＣＡＴ遺伝子、そ
してｈＡＮＰ（１０２−１２６）遺伝子および開裂部位
を提供した。

【００８３】プラスミドｐＴｒｐ２３３は、ＷＯ８７／
０６５８８号に記載された。プラスミドｐＣＡＴ２１
は、ＣＡＴ遺伝子（トランスポゾンＴｎ９から、Ａｌｔ
ｏｎおよびＶａｐｎｅｋ，Ｎａｔｕｒｅ（１９７９）２
８２：８６４−８６９）を、ｔｒｐプロモ一夕ー−オペ
レー夕ーのコントロール下になるように、ｐＴｒｐ２３
３に挿入することによって構築された。プラスミドｐＡ
Ｌ１３ＡＴＣＡＴ（Ｔｎ９を含有するプラスミドであ
り、１９８７年９月１１日に出願された、同時係属中の
米国出願番号０９５，７４２に開示され、引例としてこ
こに包含されている）を、ＮｄｅＩおよびＨｉｎｄＩＩ
Ｉで消化し、ＣＡＴ遺伝子を（ＮｄｅＩ部位でコードさ
れた開始Ｍｅｔ残基とともに）含む、およそ７５０ｂｐ
のＮｄｅＩ−ＨｉｎｄＩＩＩフラグメントを、アガロー
スゲル電気泳動を用いて精製した。ＣＡＴ遺伝子は、Ｔ
４ ＤＮＡリガーゼを用いて、ＮｄｅＩ／ＨｉｎｄＩＩ
Ｉ消化したｐＴｒｐ２３３と結合し、その結果生じるプ
ラスミドｐＣＡＴ２１を、Ｅ．ｃｏｌｉ ＭＣ１０６１
から単離した。

【００８４】タンパク質分解性開裂部位に後続する合成
ｈＡＮＰ遺伝子を、プラスミドｐＢｇａｌ（Ｓｈｉｎｅ
ら，Ｎａｔｕｒｅ（１９８０）２８５：４５６）に挿入
することによってプラスミドｐｈＮＦ７５を構築した。
８個のオリゴデオキシリボヌクレオチドを、エンドプロ
テイナーゼのＧｌｕ−Ｃ開裂部位に続く合成ｈＡＮＰ
（１０２−１２６）遺伝子に組み込んだ。この合成遺伝
子は、ＢａｍＨＩ消化したｐＴｒｐ２３３と結合した。
ｈＡＮＰ遺伝子の３’末端において、隣接するＨｉｎｄ
ＩＩＩ、ＢａｍＨＩおよびＥｃｏＲＩ部位を与える方向
に挿入部を有するプラスミドｐｈＮＦ７３は、Ｈｉｎｄ
ＩＩＩおよびＰｖｕＩＩとの消化によって生成したフラ
グメントのサイズによって同定した。プラスミドｐｈＮ
Ｆ７３をＥｃｏＲＩで消化し、ポリアクリルアミドゲル
電気泳動を用いて、ｈＡＮＰ遺伝子を精製し、さらにそ
の遺伝子を、ＥｃｏＲＩ消化したｐＢｇａｌと結合し
て、ｐｈＮＦ７５を得た。

【００８５】発現ベクターｐＣｈＮＦ１０９は、ＣＡ
Ｔ、ｈＡＮＰおよびタンパク質分解性開裂部位を含有す
るＤＮＡフラグメント、およびリンカー配列を、プラス
ミドｐＴｒｐ２３３へ挿入することによって構築した。
プラスミドｐｈＮＦ７５を、ＥｃｏＲＩおよびＨｉｎｄ
ＩＩＩで消化し、ｈＡＮＰを含む、約８０ｂｐのＥｃｏ
ＲＩ−ＨｉｎｄＩＩＩフラグメントを、ポリアクリルア
ミドゲル電気泳動によって精製し、ＥｃｏＲＩ／Ｈｉｎ
ｄＩＩＩ消化したｐＴｒｐ２３３と連結してｐｈＮＦ８
７を得た。ｐＣＡＴ２１はＳｃａＩで消化し、ＢａｍＨ
Ｉ合成リンカー（５’−ＣＧＧＡＴＣＣＧ−３’）は平
滑末端に結合した。その結合物をＢａｍＨＩで消化し、
約７４０ｂｐのＢａｍＨＩフラグメントをアガロースゲ
ル電気泳動によって精製した。ＢａｍＨＩカセットとＢ
ａｍＨＩ消化したプラスミドｐｈＮＦ８７とを結合して
ｐＣｈＮＦ１０９を得た。このｐＣｈＮＦ１０９は、ｈ
ＡＮＰ遺伝子に先行するエンドプロテイナーゼのＧｌｕ
−Ｃ開裂部位にインフレームで融合したＣＡＴ遺伝子を
有する。

【００８６】ｐＣｈＮＦ１０９内のｈＡＮＰをコードす
る配列を、ＳＰ−５およびＳＰ−１８配列に置き換える
ことによって、ヒトＳＰ−５由来ペプチドおよびヒトＳ
Ｐ−１８由来ペプチドは、細菌のＣＡＴの一部との融合
物として発現する。その界面活性ペプチドは、ヒドロキ
シルアミン感受性のアスパラギン−グリシン結合を通し
て、ＣＡＴ配列のカルボキシル末端と結合している。Ｃ
ＡＴ−界面活性物質融合物は、細菌のベクターｐＴｒｐ
２３３のトリプトファンプロモー夕ーから発現される。

【００８７】（発現ベクターｐＣ２１０ＳＰ−Ｂ）ＳＰ
−１８発現ベクターｐＣ２１０ＳＰ−Ｂは、ヒドロキシ
ルアミン感受性開裂部位を含む７個のアミノ酸のリンカ
ーを通してＣＡＴの２１０個のアミノ酸がＳＰ−１８の
７６個のアミノ酸に結合している、２９３残基の融合タ
ンパク質をコードする。ヒドロキシルアミンによる融合
物の開裂によって、ＳＰ−１８の７６残基を含む７７個
のアミノ酸のＳＰ−１８生成物、およびアミノ末端のグ
リシン残基が放出される。

【００８８】ｐＣ２１０ＳＰ−Ｂを構築するために、ｈ
ＡＮＰ配列を含む短いＥｃｏＲＩ−ＨｉｎｄＩＩＩセグ
メントをｐＣｈＮＦ１０９から除去し、ヌクレオチド
（ｎｔ）６４３のＰｓｔＩ部位からｎｔ８０４のＳｐｈ
Ｉ部位まで伸長するヒトＳＰ−１８ ｃＤＮＡ ＃３
（表３）の一部分によって置換した。ＥｃｏＲＩ部位
を、ヒドロキシルアミン感受性開裂部位および成熟ＳＰ
−１８のアミノ末端残基をコードする２つの相補的オリ
ゴヌクレオチド ｏｌｉｇｏ ＃２３０７：５’−ＡＡＴ ＴＣＡ ＡＣ
Ｇ ＧＴＴ ＴＣＣ ＣＣＡ ＴＴＣ ＣＴＣ ＴＣＣ
ＣＣＴ ＡＴＴ ＧＣＴ ＧＧＣ ＴＣＴ ＧＣＡ−
３’（配列番号：１８） および ｏｌｉｇｏ ＃２３０８： ５’−ＧＡＣ ＣＣＡ Ｇ
ＣＡ ＡＴＡＧＧＧ ＧＡＧ ＡＧＧ ＡＡＴ ＧＧＧ
ＧＡＡ ＡＣＣ ＧＴＴ Ｇ−３’（配列番号：１
９） を通してＰｓｔＩ部位に結合させた。ＳｐｈＩ部位を、
ＳＰ−１８ペプチドのカルボキシ末端残基をコードする
２組目のの相補的ヌクレオチド ｏｌｉｇｏ ＃３３１３： ５’−ＡＧＣ ＴＴＡ Ｃ
ＣＧ ＧＡＧＧＡＣ ＧＡＧ ＧＣＧ ＧＣＡ ＧＡＣ
ＣＡＧ ＣＴＧ ＧＧＧ ＣＡＧＣＡＴ Ｇ−３’
（配列番号：２０） および ｏｌｉｇｏ ＃３３１４： ５’−ＣＴＧ ＣＣＣ Ｃ
ＡＧ ＣＴＧＧＴＣ ＴＧＣ ＣＧＣ ＣＴＣ ＧＴＣ
ＣＴＣ ＣＧＧ ＴＡ−３’（配列番号：２１） を通して、ｐＴｒｐ２３３のＨｉｎｄＩＩＩ部位に結合
させた。

【００８９】この発現プラスミドを使用してＥ．ｃｏｌ
ｉ株Ｗ３１１０をアンピシリン耐性に形質転換した。Ｍ
９培地中で速やかに増殖するｐＣ２１０ＳＰ−Ｂ／Ｗ３
１１０の培養物を、２５μｇ／ｍｌのＩＡＡ（３−βイ
ンドールアタリレート、シグマＩ−１６２５）とし、ｔ
ｒｐプロモーターを誘導した。誘導から１時間後まで
に、まだ増殖し続けている細胞内部の位相差顕微鏡検査
により、屈折性の細胞質封入体が認められた。誘導の５
時間後、１ Ｏ．Ｄ．₅₅₀に相当する細胞を遠心分離に
よってペレット化し、１２％ＳＤＳ−ポリアクリルアミ
ドゲル中での電気泳動に用いるために、ＳＤＳサンプル
緩衝液中で５分間沸騰して、次にクマシーブルーで染色
した。ＣＡＴ：ＳＰ−１８融合タンパク質の推定分子量
は、４５，０００ダルトンである。ハイブリッドＣＡ
Ｔ：ＳＰ−１８タンパク質は、誘導した培養物中の１５
−２０％の総細胞タンパク質のを含有すると推定され
た。

【００９０】（ｐＣ２１０ＳＰ−Ｃ）２５１残基の融合
タンパク質のアミノ酸配列がプラスミドｐＣ２１０ＳＰ
−Ｃ内にコードされている。ＣＡＴの２１０個のアミノ
酸は、６個のアミノ酸のリンカーを通して成熟ＳＰ−５
の３５個のアミノ酸に結合している。ＳＰ−５は総融合
物の１４％を含む。

【００９１】第８図に、ｐＣ２１０ＳＰ−Ｃの挿入部の
ヌクレオチド配列が示されている。このヌクレオチド配
列では、ＳＰ−１８配列を含むｐＣ２１０ＳＰ−ＢのＥ
ｃｏＲＩ−ＨｉｎｄＩＩＩフラグメントが、ヌクレオチ
ド１２３のＡｐａＬＩ部位からヌクレオチド１６１のＡ
ｖａＩＩ部位まで伸長した、ヒトＳＰ−５ ｃＤＮＡ＃
１８のセグメントによって置換されている。ＣＡＴベク
ターのＥｃｏＲＩ部位を、ヒドロキシルアミン感受性開
裂部位、および成熟ＳＰ−５のアミノ末端残基をコード
する２つの相補的オリゴヌクレオチド ｏｌｉｇｏ ＃２４６２：５’−ＡＡＴ ＴＣＡ ＡＣ
Ｇ ＧＣＡＴＴＣ ＣＣＴ ＧＣＴ ＧＣＣ ＣＡＧ−
３’（配列番号：２２） および ｏｌｉｇｏ ＃２４６３：５’−ＴＧＣ ＡＣＴ ＧＧ
Ｇ ＣＡＧＣＡＧ ＧＧＡ ＡＴＧ ＣＣＧ ＴＴＧ−
３’（配列番号：２３） を通して、ＳＰ−５のＡｐａＬＩ部位に結合させた。Ｓ
Ｐ−５のＡｖａＩＩ部位を、成熟ＳＰ−５のカルボキシ
末端残基および停止コドンをコードする２組目の相補的
ヌクレオチド ｏｌｉｇｏ ＃２８７１：５’−ＡＧＣ ＴＴＡ ＧＴ
Ｇ ＧＡＧＡＣＣ ＣＡＴ ＧＡＧ ＣＡＧ ＧＧＣ
ＴＣＣ ＣＡＣ ＡＡＴ ＣＡＣＣＡＣ ＧＡＣ ＧＡ
Ｔ ＧＡＧ−３’（配列番号：２４） および ｏｌｉｇｏ ＃２８７２：５’−ＧＴＣ ＣＴＣ ＡＴ
Ｃ ＧＴＣＧＴＧ ＧＴＧ ＡＴＴ ＧＴＧ ＧＧＡ
ＧＣＣ ＣＴＧ ＣＴＣ ＡＴＧＧＧＴ ＣＴＣ ＣＡ
Ｃ ＴＡ−３’（配列番号：２５） を通して、ｐＣ２１０ＳＰ−ＢのＨｉｎｄＩＩＩ部位に
結合させた。

【００９２】（ｐＣ１７９ＳＰ−Ｃ）ｐＣ１７９ＳＰ−
Ｃによってコードされる２１７残基の融合タンパク質の
アミノ酸配列は、第８図に示す配列をわずかに改変した
ものである。ｐＣ１７９ＳＰ−Ｃにおいて、ＣＡＴの１
７９個のアミノ酸を、３個のアミノ酸（Ｇｌｕ、Ｐｈ
ｅ、Ａｓｎ）のリンカーを通して成熟ＳＰ−５の３５個
のアミノ酸に結合させる。ＳＰ−５は、総融合物の１６
％を含む。

【００９３】ｐＣ１７９ＳＰ−Ｃを構築するために、Ｃ
ＡＴ配列の一部をｐＣ２１０ＳＰ−Ｃから除去した。ｐ
Ｃ２１０ＳＰ−Ｃから始めて、ｎｔ６０３のＮｃｏＩ部
位（第８図）からｎｔ７２８のＥｃｏＲＩ部位まで伸長
するＤＮＡフラグメントを除去し、ＮｃｏＩおよびＥｃ
ｏＲＩの粘着末端を、２つの相補的オリゴヌクレオチド ｏｌｉｇｏ ＃３０８３：５’−ＣＡＴ ＧＧＧ ＣＡ
Ａ ＡＴＡＴＴＡ ＴＡＣ ＧＣＡ ＡＧ−３’（配列
番号：２６） および ｏｌｉｇｏ ＃３０８４：５’−ＡＡＴ ＴＣＴ ＴＧ
Ｃ ＧＴＡＴＡＡ ＴＡＴ ＴＴＧ ＣＣ−３’（配列
番号：２７） によって再結合させた。要するに、ベクターｐＣ１７９
ＳＰ−Ｃによってコードされる新しい融合タンパク質に
おいてはＣＡＴの３１残基、およびリンカーポリペプチ
ドの３残基が欠失している。

【００９４】（ｐＣ１４９ＳＰ−Ｃ）ｐＣ１４９ＳＰ−
Ｃによってコードされる１８７残基の融合タンパク質の
アミノ酸配列は、図８に示される配列が僅かに改変され
たものである。プラスミドｐＣ１４９ＳＰ−Ｃにおい
て、ＣＡＴの１４９個のアミノ酸は３個のアミノ酸（Ｇ
ｌｕ、Ｐｈｅ、Ａｓｎ）からなるリンカーによってＳＰ
−５の３５個のアミノ酸に結合させる。ＳＰ−５は総融
合タンパク質の１８．７％を含む。

【００９５】ｐＣ１４９ＳＰ−Ｃを構築するために、ｎ
ｔ５２３のＤｄｅＩ部位（図８）からｎｔ７２８のＥｃ
ｏＲＩ部位へ伸長されたｐＣ２１０ＳＰ−ＣのＣＡＴセ
グメントの一部分を取り除き、２本の相補的オリゴヌク
レオチド（ｏｌｉｇｏ＃３０８２：５’−ＴＣＡ ＧＣ
Ｃ ＡＡＴ ＣＣＣ Ｇ−３’（配列番号：２８）ｏｌ
ｉｇｏ＃３０８１：５’−ＡＡＴ ＴＣＧ ＧＧＡ Ｔ
ＴＧ ＧＣ−３’（配列番号：２９））の１組で置換し
た。得られた配列を図９に示す。

【００９６】（ｐＣ１０６ＳＰ−Ｃ）ｐＣ１０６ＳＰ−
Ｃによってコードされる１４４残基の融合タンパク質の
アミノ酸配列は、図８に示される配列が僅かに改変され
たものである。プラスミドｐＣ１０６ＳＰ−Ｃにおい
て、ＣＡＴの１０６個のアミノ酸は３個のアミノ酸（Ｇ
ｌｕ、Ｐｈｅ、Ａｓｎ）からなるリンカーによってＳＰ
−５の３５個のアミノ酸に結合させる。ＳＰ−５は総融
合タンパク質の２４％を含む。

【００９７】アニーリングしたあと相同性領域を介して
連結した２組の相補的オリゴヌクレオチド（ｏｌｉｇｏ
＃３０７９：５’−ＡＡＴ ＴＣＣ ＧＴＡ ＴＧＧ
ＣＡＡ ＴＧＡ ＡＡＧ ＡＣＧ ＧＴＧ ＡＧＣ Ｔ
ＧＧ ＴＧＡ ＴＡＴ ＧＧＧ ＡＴＡ ＧＴＧ ＴＴ
Ｃ ＡＣＣ ＣＴＴ ＧＴ−３’（配列番号：３０）を
０ｌｉｇｏ＃３０８５：５’−ＡＣＡ ＣＴＡ ＴＣＣ
ＣＡＴ ＡＴＣ ＡＣＣ ＡＧＣ ＴＣＡ ＣＣＧ
ＴＣＴ ＴＴＣ ＡＴＴ ＧＣＣ ＡＴＡ ＣＧＧ−
３’（配列番号：３１）とアニーリングし；ｏｌｉｇｏ
＃３０８０：５’−ＴＡＣ ＡＣＣ ＧＴＴ ＴＴＣ
ＣＡＴ ＧＡＧ ＣＡＡ ＡＣＴ ＧＡＡＡＣＧ ＴＴ
Ｔ ＴＣＡ ＴＣＧ ＣＴＣ ＴＧＧ Ｇ−３’（配列
番号：３２）をｏｌｉｇｏ＃３０７８：５’−ＡＡＴ
ＴＣＣ ＣＡＧ ＡＧＣ ＧＡＴＧＡＡ ＡＡＣ ＧＴ
Ｔ ＴＣＡ ＧＴＴ ＴＧＣ ＴＣＡ ＴＧＧ ＡＡＡ
ＡＣＧ ＧＴＧ ＴＡＡ ＣＡＡ ＧＧＧ ＴＧＡ−
３’（配列番号：３３）とアニーリングした）でｐＣ２
１０ＳＰ−ＣのＥ．ｃｏＲＩフラグメントを置換するこ
とにより、ｐＣ１０６ＳＰ−Ｃを構築した。各ＳＰ−５
発現ベクターを使用してＥ．ｃｏｌｉのＷ３１１０株を
アンピシリン耐性に形質転換した。発現株の急速な増殖
培養物を上述のように誘導した。誘導より１時間後まで
に、さらに増殖を続ける細胞内で屈折性の細胞質封入体
が位相差顕微鏡によって観察された。誘導の５時間後、
１ Ｏ．Ｄ．₅₅₀に相当する細胞を遠心によりペレット
化し、次に１２％ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気
泳動用にＳＤＳサンプルバッファー中で５分間煮沸し、
続いてクマシーブルーで染色した。これらのベクターか
ら適切な分子量のタンパク質が得られた。各ベクターに
よって生産されたハイブリッドＣＡＴ：ＳＰ−５タンパ
ク質は、誘導された培養物中の総細胞タンパク質の１５
−２０％を含むと推定される。

【００９８】（ＳＰ−５ＤＮＡの改変）ｈＳＰ−５アナ
ログをコードする改変された配列を得るために、部位特
異的変異誘発を使用し得る。例えば、ｐＣ１４９ＳＰ−
Ｃを出発物質として、図９に示すＢａｍＨＩ／Ｈｉｎｄ
ＩＩＩフラグメントを切り出し、ｍｐ８にクローニング
した。この挿入断片について次に、図に示すようにプラ
イマー５’−ＧＴＧ−ＣＡＣ−ＴＧＧ−ＧＧＡ−ＧＧＡ
−ＧＧＧ−ＡＡＴ−ＧＣＣ−３’（配列番号：３４）を
用いて部位特異的変異誘発を行う。この結果、成熟タン
パク質の２８位および２９位のシステインのコドンがこ
れらの位置でそれぞれセリンのコドンに改変される。次
に、変異したＢａｍＨＩ／ＨｉｎｄＩＩＩフラグメント
を単離し、その後発現ベクターｐＴｒｐ２３３に連結し
もどす。

【００９９】次に例えばＣ１４９ＳＰ−Ｃあるいは対応
する変異ベクターのような構築物でＥ．ｃｏｌｉを形質
転換し、この形質転換細胞を標準的な技法を用いて培養
する。培養物をＩＡＡで処理することによってｔｒｐプ
ロモーターを誘導し、所望のＳＰ−５由来のペプチドを
コードする遺伝子の発現が得られる。

【０１００】次に細菌細胞をホモジナイザーに通して溶
解する。この処置によって放出される不溶性封入体を５
０００ｒｐｍで３０分間遠心することによって、あるい
は０．１ミクロンのＭｉｌｌｉｐｏｒｅ Ｄｕｒａｐｏ
ｒｅメンブレンで濾過することによって回収する。得ら
れる封入体を１％トリトンＸ−１００で、あるいは１．
０Ｍ塩酸グアニジン、１０ｍＭ ＥＤＴＡ、２０ｍＭト
リス−塩酸、ｐＨ８．０中で３回洗浄し、上述の遠心あ
るいは濾過によって１００ｍＭを回収する。封入体をｐ
Ｈ８．０の２０ｍＭトリス−塩酸、６Ｍの塩酸グアニジ
ン、５０ｍＭのＤＴＴに１５−２５ｎｇ／ｍｌの濃度で
溶解する。

【０１０１】遠心によって不溶性物質を取り除いた後、
ＳＰ−５−由来のペプチドを含む融合タンパク質を等量
の６Ｍ塩酸グアニジン中等容量のヒドロキシルアミン
（２Ｍ）、０．２Ｍ Ｋ₂ＣＯ₃を含有する５０ｍＭ Ｄ
ＴＴを加えることにより開裂する。開裂は４８時間行
う。溶液を塩酸グアニジンの濃度が１．２Ｍになるよう
に（５倍）、ｐＨ８．０の１０ｍＭトリス、２０ｍＭ
ＤＴＴで希釈する。このことにより開裂反応中のタンパ
ク質が沈澱し、この沈澱物を遠心により集める。

【０１０２】次にＳＰ−由来のペプチドを、多量の残り
のタンパク質から１００ｍＭ ＤＴＴを含むクロロホル
ム：メタノール（１：１ ｖ：ｖ）溶液を用いて抽出す
る。ＳＰ−５由来のペプチドが１ｍｇ／ｍｌになるよう
にこの溶液の十分量を沈澱物に加え、室温で６時間この
物質を抽出する。次に不溶性物質を取り除くために抽出
物を遠心する。

【０１０３】次にこの遠心の上清を、抽出物中のＳＰ−
５ペプチド１ｍｇあたりスルホ−プロピルセルロース
（０．０４ｍｌのスルホ−プロピルセルロース）と混合
する。塩酸を用いて抽出物を酸性にし、５ｍＭの濃度に
する。一晩ＳＰ−５と結合させた後、スルホ−プロピル
セルロースを１９部のクロロホルム、１９部のメタノー
ル、および２部の０．１Ｎ塩酸を含むバッファー（洗浄
バッファー）で徹底的に洗浄する。固体ＤＴＴで５０ｍ
ＭのＤＴＴ濃度に調整し、２Ｍの酢酸ナトリウムバッフ
ァーのストック溶液を加えてｐＨ４の２０ｍＭの酢酸ナ
トリウムとした洗浄バッファー溶液でさらに洗浄する。
次にＳＰ−５ペプチドを、５０ｍＭのＤＴＴを含みｐＨ
６の２Ｍの酢酸ナトリウムのストック溶液を加えること
により５０ｍＭ酢酸ナトリウムｐＨ６に調整した洗浄バ
ッファーで溶出する。ＳＰ−セルロースを濾過によって
取り除く。精製の最終工程は、溶出液として上述の洗浄
バッファーを使用した、セファデックスＬＭ−６０での
ゲル浸透クロマトグラフィーである。

【０１０４】（実施例４：合成ペプチド）ヒトＳＰ−５
によりコードされた混合物に基づく種々の合成ペプチド
が標準的な技法を用いて合成されている。図３に関して
は、以下のペプチドが固相ペプチド合成を用いて合成さ
れている： （１）ｈＳＰ−５（２４−７４）、すなわち、２４位の
Ｐｈｅで始まり７４位のＧｌｙで終わる； （２）ｈＳＰ−５（３４−７４）、すなわち、３４位の
Ｌｙｓで始まり７４位のＧｌｙで終わる；および （３）ｈＳＰ−５（２４−６１）、すなわち、２４位の
Ｐｈｅで始まり６１位のＳｅｒで終わる。

【０１０５】ｈＳＰ−５（２４−７４）： Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｉｌｅ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ−Ｃｙｓ−Ｐ
ｒｏ−Ｖａｌ−Ｈｉｓ−Ｌｅｕ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｌｅ
ｕ−Ｌｅｕ−Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ
−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−
Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｍ
ｅｔ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ｈｉｓ−Ｍｅｔ−Ｓｅｒ−Ｇｌ
ｎ−Ｌｙｓ−Ｈｉｓ−Ｔｈｒ−Ｇｌｕ−Ｍｅｔ−Ｖａｌ
−Ｌｅｕ−Ｇｌｕ−Ｍｅｔ−Ｓｅｒ−Ｉｌｅ−Ｇｌｙ
（配列番号：５）および（配列番号：６） ｈＳＰ−５（３４−７４）： Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｖ
ａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｉｌｅ−Ｖａ
ｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｇｌｙ−Ａｌａ
−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｍｅｔ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ｈｉｓ−
Ｍｅｔ−Ｓｅｒ−Ｇｌｎ−Ｌｙｓ−Ｈｉｓ−Ｔｈｒ−Ｇ
ｌｕ−Ｍｅｔ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｕ−Ｍｅｔ−Ｓｅ
ｒ−Ｉｌｅ−Ｇｌｙ ｈＳＰ−５（２４−６１）： Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｉｌｅ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ−Ｃｙｓ−Ｐ
ｒｏ−Ｖａｌ−Ｈｉｓ−Ｌｅｕ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｌｅ
ｕ−Ｌｅｕ−Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ
−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−Ｖａｌ−
Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｍ
ｅｔ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ｈｉｓ−Ｍｅｔ−Ｓｅｒ。

【０１０６】合成ペプチドは、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏ
ｓｙｓｔｅｍｓ ４３０Ａペプチド合成機を用いて、標
準ｔ−ＢＯＣ固相ペプチド合成法により調製する。使用
する保護基は：Ｃｙｓ−４−メチルベンジル、Ｈｉｓ−
−Ｂｏｃ、Ｌｙｓ−−２−クロロＣＢＺ、Ａｒｇ−−ト
シルである。樹脂をＢｏｃ−Ｓｅｒ（ＯＢｚｌ）−Ｏ−
ＰＡＭ樹脂上に構築した（０．５ｍｍｏｌ、０．７２ｍ
当量／負荷ｇ）。Ｂｏｃ−Ｈｉｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨを、
左右対称形の無水物として用いて、すべての残基を二重
に結合したＨＯＢＴエステルおよびＨｉｓ残基と単独で
結合した。残基１２にＡｒｇを添加する前に樹脂を取り
除いた。この樹脂は、ほとんどの側鎖が保護されておら
ず、真性ＰＴＨアミノ酸として働くので、この時点で気
相シークエンサー中で配列決定し得る。配列がほぼ均一
であることを確認した後、合成を終了した。樹脂を開裂
し、すべての保護基を標準的なＨＦ開裂条件を用いて取
り除く。１ｇのペプチド樹脂に、１．５ｍｌのアニソー
ル、０．２５ｍｌの硫化メチルエチルおよび１５ｍｌの
蒸留したＨＦを加え、標準的なＫｅｌ−Ｆ ＨＦ開裂装
置で開裂を行う。開裂は３０分間１０３Ｃで行われ、次
いで、０３Ｃでさらに３０分行った。凝集を最小限にす
るためＨｆを即座にすばやく除去した。しかしながら、
開裂混合物から再溶解し得る選択されたペプチドはほん
の少量であるので、ある程度の凝集はなお起こる。ＨＦ
除去の後、樹脂−ペプチド混合物はエーテルおよびクロ
ロホルムで交互に洗浄され乾燥された。ペプチドは標準
水抽出を用いては可溶化され得ず、メタノール／クロロ
ホルム／ＨＣｌで可溶化することにより樹脂から分離し
なければならない。

【０１０７】７５％トリフルオロ酢酸に溶解した後、各
ペプチドを精製した。精製の好適な方法は、０．５％
ＨＣｌを含むクロロホルムおよびメタノール（１：１
ｖ／ｖ溶液でＬＨ−６０カラムを用いたゲル濾過であ
る。各合成ペプチドは実施例５のようにインビトロおよ
びインビボ活性を試験した。

【０１０８】（実施例５：合成ペプチドの活性）ＰＣＴ
公開ＷＯ８７／０６５８８のセクションＤ．９および
Ｄ．１０でそれぞれ述べられている手順で、インビトロ
およびインビボ活性が評価された。

【０１０９】ペプチド３４〜７４は、インビトロでのリ
ン脂質フィルム拡散で効果がなく、この結果から予想さ
れるように、また未成熟ウサギ肺で効果がなかった。従
って、活性を最大にするにはＮ末端アミノ酸が必要なよ
うである。

【０１１０】ペプチド２４〜７４は、Ｃ末端伸長ペプチ
ドで、インビトロで空気−水界面の表面張力の低下およ
び動物における適度な肺機能作用のいずれにおいても極
めて有効でった。表１において、Ｐ_insは、肺で表面張
力を低下させることにおいて界面活性剤調合物がどの程
度有効であるかの指標である。この張力低下は、吸気酸
素圧の低下により示される。ペプチド２４〜７４は、対
照生理食塩水溶液に比較して極めて効果的であり、ポジ
ィティブ対照のウサギ界面活性剤とほぼ同じ効果であ
る。天然５ｋｄタンパク質が、対照界面活性剤と同程度
に効果的であることは注目すべきである。

【０１１１】

【表１】 １０、２０および３０分でのＰ_ins値は、６−７ｍｌｓ
／ｋｇ体重の肺の一回換気容量を維持するのに必要な吸
気圧（ｃｍ Ｈ₂Ｏ）である。（換気装置への圧力が低
い程良い）ペプチド２４〜６１は、インビボで天然界面
活性剤と同程度に効果的であることが見い出された。事
実、ある動物の実験で、Ｐ_insは、２４〜６１で処理さ
れた動物では界面活性剤対照におけるより低かった。す
べての場合で、リン脂質混合物は、ＤＰＰＣ：卵ＰＧ
（７：３，ｗ／ｗ）であり、ＰＬ対タンパク質の比率は
１０：１であった。ペプチドは、以下に述べるように別
の脂質と共に投与されるのが好ましく、それ故、表２に
まとめられた実験では、１０ｗｔ．％パルミチン酸が調
合物中に取り込まれている。このように、調合物はＤＰ
ＰＣ：ＰＧ：ペプチド：脂肪酸は重量比で約１０：１：
１：１であった。

【０１１２】

【表２】 すべての場合において、２４〜６１合成ペプチドは、重
量比ＰＬ：パルミチン酸：合成ペプチド（１０：１：
１）で混合した。リン脂質（ＰＬ）は、重量比でＤＰＰ
Ｃ：ＰＧ（７：３）である。

【０１１３】（実施例６：追加のｈＳＰ−５由来のペプ
チド）次のような本発明のＳＰ−５由来のペプチドが実
施例３のＣＡＴ融合法または、固相合成により合成さ
れ、そしてＡＳＰ活性を試験した： （１）ｈＳＰ−５（２８〜５９）、即ち、Ｃｙｓ−２８
で始まりそしてＨｉｓ−５９で終わる； （２）ｈＳＰ−５（３０〜５９）、即ち、Ｐｒｏ−３０
で始まりそしてＨｉｓ−５９で終わる。

【０１１４】（３）Ｄ５Ｋ＃１：（Ｓ²⁸Ｓ²⁹−ｈＳＰ−
５（２４〜５９））、即ち、ｈＳＰ−Ｃ（２４〜５９）
に相当するが、２８位および２９位のシステインがセリ
ンで置換されている（配列番号：３５）； （４）Ｄ５Ｋ＃２：（Ａ²⁷Ｓ²⁸Ｓ²⁹Ａ³⁰−ｈＳＰ−５
（２４〜５９））、即ち、Ｐｈｅ−２４で始まり、Ｈｉ
ｓ−５９で終わり、２８位および２９位のシステインが
セリンで、そして２７位および３０位のプロリンがアラ
ニンで置換されている（配列番号：３６）；そして （５）Ｄ５Ｋ＃３：（Ｓ²⁶Ａ²⁷Ｓ²⁸Ｓ²⁹Ａ³⁰Ｑ³¹Ｋ³²，
Ａ³³−ｈＳＰ−５（２５〜５９））、Ｇｌｙ−２５で始
まり、Ｈｉｓ−５９でおわり、２６から３３のアミノ酸
が置換されている（配列番号：３７）。

【０１１５】可溶化の後、各ペプチドは上記で述べたよ
うに精製した。各合成ペプチドは上記の手順でインビト
ロおよびインビボ活性を試験した。

【０１１６】図１０は対照を表し、ＤＰＰＣ：ＰＧおよ
びパルミチン酸塩と共にで処方された（ＤＰＰＣ：Ｐ
Ｇ：パルミチン酸：タンパク質の比は約７：３：１：
０．５）完全な長さのヒト５ｋｄタンパク質に関して得
られた、時間に対する表面圧のグラフ表示である。図１
１は同様に同じ成分（７：３：１：１）で処方された完
全な長さのヒト５ｋｄタンパク質でｐＨ７．５および３
７℃で試験して得られた結果を表す。

【０１１７】合成ペプチドｈＳＰ−５（２８〜５９）
は、図１２に表された対照実験におけるようにＤＰＰ
Ｃ：ＰＧおよびパルミチン酸塩と共にで処方され、天然
ペプチドで観察されたのと同じ初期拡散速度を示した。

【０１１８】ＳＰ−５由来の合成ペプチドｈＳＰ−５
（３０〜５９）は活性が減り（図１３）、この活性の喪
失は特異的に２８位および２９位のシステイン残基の欠
失よるものでないことは、これらシステイン残基がセリ
ンで置換されたＤ５Ｋ＃１合成ペプチド（Ｓ²⁸，Ｓ²⁹−
ｈＳＰ−５（２４−５９））が、完全な活性を示す（図
１５）ことにより示唆される。この結果は特定残基の喪
失よりむしろポリペプチド長さの減少が、ＡＳＰ活性の
喪失になることを示している。

【０１１９】Ｄ５Ｋ＃１ペプチド（Ｓ²⁸，Ｓ²⁹−ｈＳＰ
−５（２４〜５９））は、実施例２で述べたように組み
換え法により生産され、精製された。組み換えＳＰ−５
ペプチド（Ｓ²⁸，Ｓ²⁹−ｈＳＰ−５（２４〜５９））
は、インビトロアッセイの標準プロトコールに次のよう
な修正を加えて試験した：リン脂質調合物を７部のＤＰ
ＰＣ：３部ＰＯＰＧとした。ここでＰＯＰＧは（パルミ
トイル−オレオイルＰＧ）である。最終調合物は、２０
重量部リン脂質混合物：１重量部タンパク質である。Ｓ
ｅｒ−Ｓｅｒアナログは、インビトロで活性が高く、少
なくともインビボで精製ウサギ界面活性剤と同定度に有
効であった。

【０１２０】Ｄ５Ｋ＃１合成ペプチド（Ｓ²⁸，Ｓ²⁹−ｈ
ＳＰ−５（２４〜５９））ペプチドアナログもまた、以
下に示されるように、ＷＯ８７／０６５８８で提示され
た手法に従って試験した時にインビボで活性であった。 Ｄ５Ｋ＃１ Ｓ²⁸Ｓ²⁹−ｈＳＰ−５（２４〜５９）（ｃ
ｙｓ−−＞ｓｅｒ変換） ３０分でのＰ_ins：

【０１２１】

【表３】 組み換えＳ²⁸，Ｓ²⁹−ｈＳＰ−５（２４〜５９）はま
た、インビボで試験され、そして少なくとも精製ウサギ
界面活性剤と同程度に効果的である。

【０１２２】ペプチドＳ²⁸，Ｓ²⁹−ｈＳＰ−５（２５〜
５９）は、実施例３で述べたようにバクテリアを用いて
組み換え法により生産され、そして精製された。部位特
異的突然変異導入の標準手法を用いて、このペプチドの
ためのベクターがＨｉｓ（５９）のコドンを欠失するよ
うに改変された。ベクターはペプチドＳ²⁸，Ｓ²⁹−ｈＳ
Ｐ−５（２４〜５８）を組み換え法により生産するのに
使用された。組み換えペプチドＳ²⁸，Ｓ²⁹−ｈＳＰ−５
（２４〜５９）、およびｈＳＰ−５（２４〜５９）、即
ち、Ｓｅｒ−Ｓｅｒ変異のないペプチドは、インビトロ
アッセイの標準プロトコールを次のように修正して用い
て一緒に試験した：リン脂質調合物は、７部ＤＰＰＣ：
３部ＰＯＰＧである。最終調合物は、２０重量部リン脂
質混合物：１重量部タンパク質である。図１７に示され
た表面圧の重ねられたプロットは、Ｓｅｒ−Ｓｅｒアナ
ログは、インビトロで、少なくとも天然配列を持つ対応
組み換えタンパク質と同程度に有効であることを示す。

【０１２３】Ｓ²⁸，Ｓ²⁹−ｈＳＰ−５（２４〜５９）は
また、同じ修正をしたインビトロアッセイで試験した。
表面圧のプロットは、図１８に示すように、Ｈｉｓ（５
９）の除去によってタンパク質の効力が変化しないこと
を示している。

【０１２４】組み換え法により生産されたペプチド
Ｓ²⁸，Ｓ²⁹−ｈＳＰ−５（２４〜５９）、Ｓ²⁸，Ｓ²⁹−
ｈＳＰ−５（２５〜５８）および、ｈＳＰ（２５〜５
９）は、インビボで試験され、そして単離されたウザキ
界面活性剤と比較した。結果を以下に示す： ３０分でのＰ_ins： ウザキ界面活性剤 １７．５ ｃｍ Ｈ₂Ｏ Ｓ²⁸，Ｓ²⁹−ｈＳＰ−５（２４〜５９） １６．０ ｃｍ Ｈ₂Ｏ Ｓ²⁸，Ｓ²⁹−ｈＳＰ−５（２５〜５８） １６．０ ｃｍ Ｈ₂Ｏ ｈＳＰ（２５〜５９） １６．０ ｃｍ Ｈ₂Ｏ 特定のアミノ末端配列が完全な活性のための必要条件で
はないことがさらに、Ｄ５Ｋ＃２およびＤ５Ｋ＃３の分
析により示唆された。これらのペプチドは、アミノ末端
領域でより範囲の広い置換が行われており、インビトロ
で完全な活性を保持している（図１５および１６）。

【０１２５】本発明者らが本発明の方法に有用であると
信じる他のペプチドは、図３に示されるヒトＳＰ−５が
コードするタンパク質の３１−６１、３０−６１、２８
−６１および２６−６１ペプチドである。

【０１２６】ヒトＳＰ−１８およびヒトＳＰ−５由来の
様々な特定のペプチドが、肺胞界面タンパク質（ＡＳ
Ｐ）活性を有している。これらのペプチドは、合成法あ
るいは組換え技術によって調製される。

【図面の簡単な説明】

【図１】図１は、ヒトＳＰ−５由来のタンパク質（配列
番号：１）および（配列番号：２）をコードするｃＤＮ
ＡのＤＮＡ配列および推定されるアミノ酸配列を示す。

【図２】図２は、ヒトＳＰ−５由来タンパク質（配列番
号：３）および（配列番号：４）をコードする類似のｃ
ＤＮＡ変異体を示す。

【図３】図３は、印で示したＮ末端およびＣ末端を有す
る、ＳＰ−５ＤＮＡのコドン１−７４でコードされるア
ミノ酸配列（配列番号：５）および（配列番号：６）で
ある。

【図４−１】図４は、ＳＰ−１８前駆タンパク質（配列
番号：７）および（配列番号：８）をコードするヒトｃ
ＤＮＡ＃３である。

【図４−２】図４は、ＳＰ−１８前駆タンパク質（配列
番号：７）および（配列番号：８）をコードするヒトｃ
ＤＮＡ＃３である。

【図５】図５は、印で示したＮ末端およびＣ末端を有す
る、イヌの５ｋｄタンパク質のアミノ酸配列（配列番
号：９）である。

【図６】図６は、１０Ｋ ＡＳＰ混合物（配列番号：１
０）および（配列番号：１１）中のヒトおよびイヌの１
８ｋｄタンパク質の相関を示す。

【図７】図７は、クロラムフェニコールアミノトランス
フェラーゼ（ＣＡＴ）およびヒト心房性ナトリウム利尿
タンパク質（ｈＡＮＰ）（配列番号：１２）および（配
列番号：１３）のＤＮＡおよびアミノ酸配列を示す。

【図８】図８は、ｐＣ２１０ＳＰ−Ｃ（配列番号：１
４）および（配列番号：１５）中への挿入物をコードす
るタンパク質を示す。

【図９】図９は、ＣＡＴ−ＳＰ−５融合タンパク質（配
列番号：１６）および（配列番号：１７）をコードする
ｐＣ１４９ＳＰ−ＣのＢａｍＨＩ／ＨｉｎｄＩＩＩ挿入
物である。

【図１０】図１０から１８は、ＡＳＰ活性を調べる標準
テストで種々のポリペプチドに関して得られたインビト
ロの試験結果をグラフで示したものである。図１０およ
び１１は全長ヒト５ｋｄタンパク質を用いて行った対照
試験の結果を示し、一方、図１２から１８は、タンパク
質の種々の類似体により得られた結果を示す。

【図１１】図１０から１８は、ＡＳＰ活性を調べる標準
テストで種々のポリペプチドに関して得られたインビト
ロの試験結果をグラフで示したものである。図１０およ
び１１は全長ヒト５ｋｄタンパク質を用いて行った対照
試験の結果を示し、一方、図１２から１８は、タンパク
質の種々の類似体により得られた結果を示す。

【図１２】図１０から１８は、ＡＳＰ活性を調べる標準
テストで種々のポリペプチドに関して得られたインビト
ロの試験結果をグラフで示したものである。図１０およ
び１１は全長ヒト５ｋｄタンパク質を用いて行った対照
試験の結果を示し、一方、図１２から１８は、タンパク
質の種々の類似体により得られた結果を示す。

【図１３】図１０から１８は、ＡＳＰ活性を調べる標準
テストで種々のポリペプチドに関して得られたインビト
ロの試験結果をグラフで示したものである。図１０およ
び１１は全長ヒト５ｋｄタンパク質を用いて行った対照
試験の結果を示し、一方、図１２から１８は、タンパク
質の種々の類似体により得られた結果を示す。

【図１４】図１０から１８は、ＡＳＰ活性を調べる標準
テストで種々のポリペプチドに関して得られたインビト
ロの試験結果をグラフで示したものである。図１０およ
び１１は全長ヒト５ｋｄタンパク質を用いて行った対照
試験の結果を示し、一方、図１２から１８は、タンパク
質の種々の類似体により得られた結果を示す。

【図１５】図１０から１８は、ＡＳＰ活性を調べる標準
テストで種々のポリペプチドに関して得られたインビト
ロの試験結果をグラフで示したものである。図１０およ
び１１は全長ヒト５ｋｄタンパク質を用いて行った対照
試験の結果を示し、一方、図１２から１８は、タンパク
質の種々の類似体により得られた結果を示す。

【図１６】図１０から１８は、ＡＳＰ活性を調べる標準
テストで種々のポリペプチドに関して得られたインビト
ロの試験結果をグラフで示したものである。図１０およ
び１１は全長ヒト５ｋｄタンパク質を用いて行った対照
試験の結果を示し、一方、図１２から１８は、タンパク
質の種々の類似体により得られた結果を示す。

【図１７】図１０から１８は、ＡＳＰ活性を調べる標準
テストで種々のポリペプチドに関して得られたインビト
ロの試験結果をグラフで示したものである。図１０およ
び１１は全長ヒト５ｋｄタンパク質を用いて行った対照
試験の結果を示し、一方、図１２から１８は、タンパク
質の種々の類似体により得られた結果を示す。

【図１８】図１０から１８は、ＡＳＰ活性を調べる標準
テストで種々のポリペプチドに関して得られたインビト
ロの試験結果をグラフで示したものである。図１０およ
び１１は全長ヒト５ｋｄタンパク質を用いて行った対照
試験の結果を示し、一方、図１２から１８は、タンパク
質の種々の類似体により得られた結果を示す。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 ブラッドリー ジェイ． ベンソン アメリカ合衆国 カリフォルニア 94127 サンフランシスコ，クレスタ ビスタ 170 (72)発明者 ロバート ティー． ホワイト アメリカ合衆国 カリフォルニア 94538 フレモント，マリゴールド ドライブ 41600 (72)発明者 ジェイムズ ダブリュー． シリング ジ ュニア アメリカ合衆国 カリフォルニア 94301 パロ アルト，バイロン ストリート 247 (72)発明者 ダグラス アイ． バックリー アメリカ合衆国 カリフォルニア 94062 ウッドサイド，ブルックウッド ロード 215 (72)発明者 ロバート エム． スカーボロー アメリカ合衆国 カリフォルニア 94002 ベルモント，ベルモント キャニオン ロード 2544 Ｆターム(参考） 4B024 AA01 BA80 CA04 DA02 DA06 EA04 GA11 HA01 4C084 AA07 BA01 BA19 BA23 NA14 ZA59 4H045 AA10 BA18 BA19 BA20 CA40 DA50 EA20 FA74 GA01 GA22 GA23

Claims (1)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 ＡＳＰ活性を有し、かつ以下の配列を持
   つ精製ポリペプチドまたは薬学的に許容され得るその塩
   あるいはアミド： X-AA₂₈-AA₂₉-AA₃₀-AA₃₁-AA₃₂-AA₃₃-AA₃₄-AA₃₅-Leu-Leu-
   Ile-Z-Z-Z-Z-Z-Z-Leu-Ile-Z-Z-Z-Ile-Z-Gly-Ala-Leu-Le
   u-Met-Y, ここで、ＡＡ₂₈はCys、 ＡＡ₂₉はCys、 ＡＡ₃₀はProあるいはAla、 ＡＡ₃₁はValあるいはGln、 ＡＡ₃₂はHisあるいはLys、 ＡＡ₃₃はLeuあるいはAla、 ＡＡ₃₄はLysあるいはGln、 ＡＡ₃₅はArgあるいはGln、 ＺはValあるいはIleのいずれか、 ＹはOH、Gly-OH、あるいはGly-Leu-OH、そしてＸはＨ、
   あるいはＨ−ＡＡ₂₇−、Ｈ−ＡＡ₂₆−ＡＡ₂₇−、および
   Ｘ’−ＡＡ₂₆−ＡＡ₂₇−からなる群から選択されるアミ
   ノ酸配列であり、 ここで、ＡＡ₂₇はProあるいはAla、 ＡＡ₂₆はIleあるいはSer、そしてＸ’は、ＨあるいはMe
   t-Asp-Val-Gly-Ser-Lys-Glu-Val-Leu-Met-Glu-Ser-Pro-
   Pro-Asp-Tyr-Ser-Ala-Ala-Pro-Arg-Gly-Arg-Phe-Glyの
   アミノ酸に相当する１〜２５個のアミノ酸のＮ末端伸長
   配列；ここで、条件として、ＸがPhe-Gly/Arg-Ile-Pro
   であり、ＹはGly-Leu-OHであり、そして全てのＺはVal
   であるならば、ＡＡ₂₈−ＡＡ₃₅は、-Cys-Cys-Pro-Val-H
   is-Leu-Lys-Arg-（配列番号５）および（配列番号６）
   となり得ない、ポリペプチドまたは薬学的に許容され得
   るその塩あるいはアミド。