JP2001509680A

JP2001509680A - 微生物代謝産物の検出

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Publication number: JP2001509680A
Application number: JP53731498A
Authority: JP
Inventors: シャーベルト、ギュンター; ペーシュピッツ、ウルス; フム、ローラント
Original assignee: ビオシントアクチェンゲゼルシャフト
Priority date: 1997-02-28
Filing date: 1998-02-26
Publication date: 2001-07-24
Anticipated expiration: 2018-02-26
Also published as: DE69828035D1; EP0970239B1; AU730518B2; AU6824198A; US6051391A; ATE284450T1; JP3558348B2; CA2281709A1; WO1998038332A1; DE69828035T2; EP0970239A1; US6068988A; CA2281709C

Abstract

(57)【要約】基質によりホスファチジルイノシトール−特異的ホスホリパーゼＣ酵素を検出する方法であって、前記基質が前記酵素により切断され、そして前記基質の発色団部分が二量体化され、かつ酸化されると色を生じる。本発明は、式(I)：（式中、Ｒは水素およびＣ_1-4アルキル基からなる群から選択され、一方、Ｒ₁、Ｒ₂、Ｒ₃、およびＲ₄は水素および色素産生置換基から選択されたラジカルである）または前記式(I)化合物の塩である３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩化合物を、新規基質として、そのような方法において用いることを教えている。本発明は、生理学的サンプルまたは食品および飲料などの消費商品を含む潜在的に感染した検体におけるバチルスセレウス、バチルスツリンゲンシス、スタフィロコッカスオウレアスおよび種々のリステリア菌のような微生物の潜在的に病原となる細菌活性の、安全で、高感度、そして商業的に実施可能な検出法を提供する。

Description

【発明の詳細な説明】微生物代謝産物の検出発明の技術分野本発明は、一般に微生物代謝産物、たとえば病原性微生物によって分泌された物質あるいは生産された物質の検出処理方法に関し、とくに、ホスファチジルイノシトール−特異的ホスホリパーゼＣの検出に関する。ここで「検出」という用語は、新規の組成物および物質だけでなく、検出法および検定技術、そのような方法において用いられる物質または基質を含むことを意味している。発明の背景ある酵素、すなわち、ホスファチジルイノシトール−特異的ホスホリパーゼＣ（また、ここではこれをＰＩ−ＰＬＣと称する）が数種の細菌の培養液上清に発見されていること、また、そのような酵素を検出することが診断上の用途だけでなく、予防薬においても価値のある分析手段であることが知られている。実際、たとえばＰＩ−ＰＬＣの存在によって明らかなように、人によって消費される、あるいは人と接触する製品中に細菌の汚染が発見されるような場合、いくつかの種類の感染を防止することができる。また、患者から得られた生理学的物質にそのような酵素が発見される場合、実際の感染を診断することができる。ここでとくに重要であるのは、ある種の微生物、とくに、病原性のリステリア属、スタフィロコッカス属およびクロストリジウム属の培養培地中に発見されたＰＩ−ＰＬＣ活性である。この関心は、これら細菌の病理学的影響の重要度ならびにそれらを確実で容易に検出するという課題の双方によるものである。細菌性のＰＩ−ＰＬＣは、ホスファチジルイノシトール（ＰＩ）およびグリカン−ホスファチジルイノシト−ル（ＧＰＩ）を加水分解するが、ＰＩリン酸塩は加水分解しない可溶性酵素であるが、真核生物のＰＩ−ＰＬＣは、ＰＩならびにＰＩリン酸塩の両方を加水分解する膜結合のＣａ²⁺依存性酵素である。近年、イノシトールリン酸塩に依存する信号伝達の経路を研究するために、大規模な生化学の研究がＰＩおよびそのリン酸化誘導体を用いて真核細胞で行なわれた。しかし、ＰＩ−ＰＬＣに対する適切な基質が利用できなかったという事実によって、これらの研究は中止された。酵素生成物、すなわち、ジアシルグリセロールおよびミオイノシトールリン酸塩が出現したり、基質の消失が都合よく起こらないという理由により、天然の基質、すなわちホスホイノシチドは、この目的に利用することができない。結果として、連続的検出法を妨げる放射性標識されたＰＩあるいは放射性標識された表面糖たんぱく質を、ＰＩ−ＰＬＣ活性を検出する多数の方法において使用した。さらに最近、新しい合成基質が開発された。ＰＩ−ＰＬＣの最初の連続的検定法では、ＰＩ−ＰＬＣ活性の蛍光定量的測定に対する基質として２−ナフチルミオイノシトール−１−リン酸塩(２−ＮＩＰ)を使用した(エムエスシャシダール(M．S．Shashidhar)、ジェイジェイボルワーク(J．J．Volwerk)、ジェイエフダブリュキーナ(J．F．W ．Keana)、オウエイチグリフィス(O．H．Griffith)；Anal．Biochem．198(1 991),10参照)。しかしながら、この基質は２つの大きな欠点を有している。すなわち、２−ナフトールがpＨ10.4でその最大蛍光強度を持つ一方で、ＰＩ−ＰＬＣはｐＨ7.4が至適ｐＨであるため、ｐＨ9.0をこえると活性を持たないのである。したがって、２−ナフトールの充分な蛍光強度とその酵素の活性特質の両方を保有する間で、妥協して分析法の目的に対しｐＨ８．５が選択された。また、比活性もいくつかの実例においてかなり低かった。同様の問題が、ＰＩのチオリン酸塩を含んでいる類似化合物、ラセミ体のキヘサデシルチオホスホリル−１−ミオイノシトールで生じた（イーケイヘンドリクソン(E．K．Hendrickson)、ジェイエルジョンソン(J．L．Johnson)、エイチエスヘンドリクソン(H．S．Hendrickson);Bioorg．Med．Chem．Lett.1( 1991),615-618参照）。基質の切断後に遊離されたチオールを比色定量のチオール試薬を用いた反応によって検出した。最大活性は、ＰＩに対しそのわずか約１％であった。４−ニトロフェニルミオイノシトール−１−リン酸塩（ＮＰＩＰ；エムエスシャシダール(M．S．Shashidhar)、ジェイジェイボルワーク(J．J．Vol werk)、オウエイチグリフィス(O.H．Griffith)、ジェイエフダブリュキーナ(J．F．W．Keana);Chem．Phys．Lipids 60(1991),101;およびエイジェイライフ(A．J．Leｉgh)、ジェイジェイボルワーク(J．J．Volwerk)、オウエイチグリフィス(O．H．Griffith)、ジェイエフダブリュキーナ(J．F．W．Keana)；Biochemistry 1992，31参照）は、ＰＩ−ＰＬＣが最大活性（２mMの基質濃度で150mmol min^-1mg^-1およびｐＨ7.0）を示した最初の色素産生基質であった。その基質は、分光光度測定法に使用した。ここでは、室温において、水溶性緩衝溶液中での安定性が低いという大きな欠点がある。そのうえ、遊離した４−ニトロフェノラートが水に溶解し、培地中へ移動するため、平板培養培地でそれを使用することができない。ＮＰＩＰのさらなる欠点は、体液を含む生物学的サンプルだけでなく培地において背景を干渉すると思われる４−ニトロフェノラートの黄色色彩である。ＰＩ−ＰＬＣに関する化学発光基質の別の先行技術は、ラセミ体の３−（４− メトキシスピロ［１，２−ジオキセタン−３，２’−トリ−シクロ−［３．３．１．１．］デカン−４−イル）−フェニルミオイノシトール−１−Ｏ−水素リン酸塩（ＬＵＭＩ−ＰＩ；エムライアン(M．Ryan)、ジェイシイファン(J ．-C．Huang)、オウエイチグリフィス(O．H．Griffith)、ジェイエフダブリュキーナ(J．F．W．Keana)、ジェイジェイボルワーク(J．J．Volwerk );Anal.Biochem.214(1993),548参照）が、発光定量測定によるナノグラム量の酵素の検出に非常に適しており、わずか１６ピコグラムのような酵素でさえも数日後にマイクロタイタープレートおよびオートラジオグラフィーフィルムを使用して検出可能であった。しかしながら、この基質は高価な設備を要求し、平板培養培地か組織化学的な用途に適していない。そのうえに、この基質の合成は商業生産に対して適しておらず、そのため一般的な実用の用途に対しては興味が持たれていない。発明の目的と要約したがって、本発明の主要な目的は、たとえば、平板培養培地中の使用を含む従来の分光光度測定法および組織化学的検定法によるＰＩ−ＰＬＣ検出に適した新規の色素産生基質を提供することであり、その基質は、前記に列挙した先行技術の基質の欠点が実質的にないものである。本発明によれば、前記基質として、あるリン酸塩ジエステル、さらに詳しくは、３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩化合物を使用した場合、前記目的およびさらなる目的を達成できることがわかった。「３−インドキシル −ミオイノシトール−１−リン酸塩化合物」という用語は、ここでは、下記に定義された式(I)の化合物、および当該化合物と有機または無機塩基との塩を表す。塩基とは、たとえばアンモニア（この用語は、水の存在または非存在によって水酸化アンモニウムと共に互換的に使用される）、および式Ｉの化合物の安定性に不利益な影響がない、下記種類の他の塩基を表す。式中、Ｒは水素およびメチル基、エチル基、プロピル基またはブチル基のようなＣ_1-4アルキル基からなる群から選択され、そしてＲ₁、Ｒ₂、Ｒ₃およびＲ₄は、水素およびハロゲン（たとえば、Ｆ、Ｃｌ、Ｂｒ、Ｉ）、シアノ基、ニトロ基、カルボキシ基、たとえば１つまたは２つのＣ_1-4アルキル基により置換されていてよいアミノ基、アミノメチル基およびスルホニル基のような色素産生置換基からなる群から選択される。式Ｉ化合物、および有機あるいは無機塩基との塩の好ましい態様では、高い色素産生性に関し、Ｒ₁、Ｒ₂、Ｒ₃ およびＲ₄の少なくとも１つの基は、高い色素産生性を提供するために水素ではない。式Ｉの化合物またはその塩のさらに好ましい置換基は、Ｒが水素およびメチル基から選択され、Ｒ₁が水素およびハロゲン（好ましくは塩素）からなる群から選択され、Ｒ₂が水素、ハロゲン（好ましくは臭素）およびシアノ基からなる群から選択され、Ｒ₃が水素およびハロゲン（好ましくは塩素）からなる群から選択され、Ｒ₄が水素である。式Ｉの化合物の好ましい塩は、水酸化リチウム、水酸化ナトリウム、水酸化カルシウム、アンモニア、水酸化アンモニウム、ジエチルアミン、トリエチルアミン、シクロヘキシルアミン、ピリジン、ピペリジン、ピペラジン、ピロリジン、モルホリン、Ｎ−メチルモルホリン、ｐ−トルイジン、テトラメチルアンモニウムおよびテトラエチルアンモニウムで形成されるものである。当業者において明白なように、前記式Ｉおよびその塩の範囲内で最も好ましい化合物は、ＰＩＰＬＣ検出、すなわち、ＰＩ−ＰＬＣによる切断、二量体化および引き続いての酸化に基質として使用した場合に、深く着色された（好ましくは青色）インジゴ染料を生じるものである。いくつかの簡易検査によって、特定の基質使用に最も適している式Ｉの化合物またはその塩が明らかになるであろう。好ましい式Ｉの化合物の具体例を下記に示す。さらに、式Ｉの化合物はラセミ体の形態で得ることができ、そのような混合物は分割して鏡像異性体を得ることができることは、当業者においては明白である。しかしながら、通常、鏡像異性体では実質的な利点は得られないと推測される。従って、式Ｉの化合物のラセミ体混合物の使用が本発明の好ましい形態であろう。式Ｉの化合物の以下の群が本発明の目的にとくに適切な群であることを示した。すなわち、好ましい群は、５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩、５−ブロモ−６−クロロ−３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩、６−クロロ−３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩、および６−フルオロ−３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩である。たとえば、代表的にはアンモニウム塩などの有機または無機塩基と前記化合物との塩が、本発明による式Ｉの化合物の好ましい群を示す。本発明の好ましい態様により、前記定義したような式Ｉの化合物およびその塩は、ホスファチジルイノシトール−特異的ホスホリパーゼＣ（１−ホスファチジル−Ｄ−ミオイノシオールイノシトールホスホヒドラーゼまたは「ＰＩ−ＰＬＣ」）を検出するための色素産生基質として使用される。従って、本発明によるＰＩ−ＰＬＣ検出方法は、式Ｉの化合物またはその塩を少なくとも１つ含む色素産生基質の使用からなる。どのような理論的制限も意図しないが、ＰＩ−ＰＬＣ検出用基質としての式Ｉの化合物およびその塩の効力は、細菌性ＰＩ−ＰＬＣによる本発明の基質の切断が、主として、イノシトール１、２−環状リン酸塩および５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシルの形成を生じるという事実に属すると思われる。それは、二量体化の後に、引き続いて大気酸素または他の酸化剤によって酸化され、従来の方法および装置による高感度の色素測定検出に適する紺青のインジゴ染料になる。数種のヒト病原体、とりわけ、リステリア菌(Listeria monocytogenes)がＰＩ −ＰＬＣを分泌することが判明したので、本発明は、とくに、新規の基質によってそのような病原体を検出する方法、たとえば、臨床的サンプルまたは食物から分離した培養物の平板培養培地上で直接、細菌性酵素生産をスクリーニングすることによる検出方法を提供する。発明の好ましい態様本発明による使用に対して好ましい特定の化合物は、下記の式IVの化合物のアンモニウム塩、すなわち、５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシル-ミオイノシトール−１−リン酸塩である。式IV化合物のアンモニウム塩は、これより以降、「Ｘ−ホス−イノシトール(X-phos-Inositol)」と称する。式Ｉの化合物またはその塩は、一般につぎの処理によって得ることができる。第１の生産ステップにおいて、以下のように式（II）に対応するインドキシル−３ −ジクロロリン酸塩を反応性のイノシトール化合物、たとえば、１位に遊離水酸基を有するＯＨ保護イノシトール(以下、「Ｇ−Ｉｎｓ−ＯＨ」と称する)と反応させ、数時間(たとえば、１〜10時間)の間、周囲温度において反応培地として、たとえばピリジン、Ｎ−メチルモルホリンまたはトリエチルアミンなどの有機塩基中でその反応物を撹拌することによって、中間体IIIを得る。好ましくは、第２の反応ステップに移る前に、中間体IIIを水酸化アンモニウムなどの有機あるいは無機塩基との塩に変換する。式中、Ａは水素または従来のＮ保護基、たとえばＣ_1-4アルキル基（好ましくはメチル基）、アシル基（好ましくはアセチル基）、または一般にＢｏｃ、Ｆｍｏｃ等として知られているＮ保護基であり、また、Ｇは１−ヒドロキシ基以外のイノシトールの各水酸基のＯＨ保護基であり、Ｇに対する代表的な具体例は、任意に置換したベンジル基、任意に置換したＣ_3-6アルキリデン基（たとえば、イソプロピリデン基、シクロペンチリデン基、またはシクロヘキシリデン基）、および、任意に置換したテトラヒドロピラニル基を含む。続く第２の反応ステップでは、Ａが、たとえば、アルカリ加水分解のようなペプチド化学の常法によって除去できるＮ保護基である場合、式III中間体のすべての保護基Ｇおよび任意のＮ保護基を、ＯＨ保護基の性質によって水素化分解または酸性切断によって除去する。標準のスクリーニング手順に適用できるように、好ましいＸ−ホス−イノシトールを含む基質として使用される式Ｉの化合物を充分大量に、効率的に製造することができることは、前記から明白である。式IVの好ましい新規な基質化合物、すなわち式IVのアンモニウム塩の形をしている５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩、またはＸ−ホス−イノシトールは、5000lmol^-1cm^-1の吸光係数で290nmにおいて最大ＵＶ（ｐＨ７のトリス／塩酸緩衝液）を有する無色の水溶性物質である。本発明によるＰＩ−ＰＬＣ検出法（すなわち、ＰＩ−ＰＬＣによる基質の切断、二量体化およびその後の酸化）によって生成された５，５’−ジブロモ−４，４’−ジクロロ−インジゴはそれ自身公知の染料であり、615および650nm付近に２つのピークを持つ約500nmから700nmまでの広い極大吸収範囲を持っている。 6000lmol^-1cm^-1近くの吸光係数でインジゴ染料は強く着色される。染料は少なくとも約24時間緩衝液に溶解されるが、長い期間置くと部分的に沈殿する傾向がある。Ｘ−ホス−イノシトールを用いた検出によれば、長期間、約−15℃より低い温度で、光線を遮断した状態で保管した場合、本発明による新規な基質は安定していると期待される。さらに、Ｘ−ホス−イノシトールは、ｐＨ７、室温において、数日間、従来の緩衝液（Ｈｅｐｅｓ／ＮａＯＨ；トリス／ＨＣｌ）中で安定していることが分かった。従って、いくつかの従来技術の基質が緩衝液媒体で基質がゆっくり加水分解することによって引き起こされているケースのバックグラウンド信号に関する問題を回避することができ、また、さらに、他の式Ｉの化合物に同様の特性を期待することができる。本発明の重要な態様によれば、式Ｉの新規な基質、好ましくは、アンモニアまたは水酸化アンモニウムのような有機あるいは無機塩基と式ＩＶの化合物との塩は、バチルスセレウス（Bacillus cereus）からのＰＩ−ＰＬＣの高感度分光光度検定法に使用する。この態様では、たとえば、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）のような血清アルブミン、あるいは、界面活性剤と結合させて基質を使用する。そのような添加物がない状態では、弱いシグナルが数時間後にさらなる増加もなく検出されるのみである。おそらく、酵素に対して親油性の環境を築くような分子集合体またはミセルの形成を促進することにより、界面活性剤がＰＩ−ＰＬＣの活性を増強することができるであろうということ自体は知られていることを本明細書中で強調しなければならない。従って、適切な洗浄剤を選択することは、当業者における応用範囲内であり、さらなる詳細な一般的説明は要しない。ＢＳＡの疎水性が酵素反応を増強するというのは合理的な仮定である。発色団として５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシルを使用する基質は、たとえば、β−ガラクトシダーゼに対するＸ−Ｇａｌ、またはβ−グルクロニダーゼに対するＸ−グルクロン酸ナトリウム塩のような培養培地上の様々な酵素の検出に適している。そのような検定手順において、紺青の５、５’−ジブロモ− ４、４’−ジクロロ−インジゴ染料（特定の酵素による基質の切断、二量体化およびそれに続く酸化によって得られた）は、平板培地上に、固有の、強い有色の析出物を生じる。それは、頻繁に現れる黄色の背景からも明確に区別される。さらに、その不溶性は、平板の全体にわたる染料の移動を防ぐ。従って、好ましいＸ−ホス−イノシトールを含む式に示される新規な培地が、細菌のコロニーが産生するＰＩ−ＰＬＣの検出を一般に改良し促進することを間違いなく期待することができる。ここで、実施例によって、添付した図面を参照しながら、本発明をより詳細に説明する。図１は、様々な基質濃度における、時間（横座標）に対する吸光度（縦座標）の依存性を示すグラフである。図２は、様々な酵素濃度に対して示された曲線を除いては、図１と同じグラフである。図３は、別の酵素濃度の群についての図２と同様のグラフである。図４は、酵素（横座標、ナノグラム）の量を関数として基質切断速度（縦座標、ｎＭｏｌ／ｍｉｎ）を示すグラフである。また、図５は、ＢＳＡおよび様々な界面活性剤を添加した結果を示す図１に同様のグラフである。しかしながら、この特定の実施例が本発明を制限することを意図しないことに注意すべきである。実施例新しい基質の調製実施例１：Ｘ−ホス−イノシトールの調製１−アセチル−５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシル−ジクロロリン酸塩（ジエイピイホルウィッツ(J．P．Horwitz)ら；J．Med．Chem．13(1970)1 024参照）および２，３：５，６−ジ−イソプロピリデン−４−(４−メトキシ− テトラ−ヒドロピラン−４−イル−)−ミオイノシトール（エムエスシャシダール(M．S．Shashidar)ら、Chem．Phys．Lipids 60(1991)101参照）を引用した文献に記述されているように調製した。ステップ１：１−アセチル−５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシル［２，３：５，６−ジ−イソプロピリデン−４−（４−メトキシ−テトラ−ヒドロピラン−４−イル）−ミオイノシトール］−１−リン酸塩のアンモニウム塩の調製１−アセチル−５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシル−ジクロロリン酸塩（2.18ｇ、5.38mmol）を乾燥ピリジン（20ml）にチッ素下で懸濁し、10分の後に、２，３：５，６−ジ-イソプロピリデン−４−（４−メトキシ−テトラ−ヒドロピラン−４−イル−）−ミオイノシトール（1.12ｇ、3.0mmol）を加えた。その混合物を一晩、充分撹拌した。固形物を含んでいる褐色の溶液を氷浴中で冷却し、水（５ml）を加えることにより、温度が18℃まで上昇させ、その固形物をすばやく溶解した。氷浴から取り出した後に、クロロホルム（30ml）を加えた。その後、さらに10 分間、溶液を撹拌した。有機相を分離し、クロロホルム（10ml）で水相を抽出した。まとめた有機相を一回水で抽出し、最終的に無水硫酸ナトリウムで乾燥させた。得られた透明な黄色溶液をシリカゲル（60〜230μm、メルク＃７７３４、17 ｇ）のカラムを通し、その溶出液を廃棄した。ピリジンを除去するために、クロロホルム（50ml）でカラムを溶出した。その後、クロロホルム／メタノール／25 ％アンモニア水溶液 70：30：1（180ml）を用いた溶出と真空における溶出液の濃縮によって、そのアンモニウム塩としての生成物を分離した。クロロホルム（10ml）にその黄褐色の透明な油状物を溶解し、真空で再蒸発させて褐色を帯びた非晶質固体（1.91ｇ、85％収量）を得た。融点 89〜91℃。ステップ２：１−アセチル−５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシルミオイノシトール−１−リン酸塩のアンモニウム塩の調製アンモニウム塩の状態の１−アセチル−５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシル［２，３：５，６−ジ−イソプロピリデン−４−（４−メトキシ−テトラ −ヒドロピラン−４−イル）−ミオイノシトール］−１−リン酸塩（1.12ｇ、1. 5mmol）を、酢酸／水１：４（50ml）に懸濁し、室温で一晩撹拌した。得られた混濁した溶液をエーテル（20ml）で３回抽出し、淡黄色の水溶液を濾過し、エタノール（10ml）で同時蒸発させた。透明な緑がかった黄色の油状物にエタノール（10ml）を加えた。得られた溶液を再度、蒸発させ、淡黄色レジンとして粗生成物を得た（0.80ｇ、97％収率）。水／エタノールから結晶化することによって、分析的に純粋なサンプルを得た。融点 123〜125℃。ステップ３：５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシルミオイノシトール− １−リン酸塩Ｘ−ホス−イノシトールのアンモニウム塩の調製前のステップで得た１−アセチル−５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシルミオイノシトール−１−リン酸塩（0.55ｇ、１mMol）の粗アンモニウム塩をメタノール（５ml、アルドリッチ＃３４，１４２−８）にガス状アンモニアの２Ｎ溶液に加え、室温で３時間、チッ素下において撹拌した。溶液が徐々に緑色に変化すると同時に、その油状物はゆっくりと溶解した。その溶液を真空で蒸発させ（40℃）、メタノール（５ml）を加え、その緑色の溶液を再度蒸発させた。非晶質の緑色の固形物を水（10ml）に溶解し、活性炭で処理し、次に、酢酸エチルで抽出した（５ml、３回）。水相を再び蒸発させ、黄色の油状物を得た。ゆっくりメタノール（10ml）を加えながら、その粗油状物を撹拌した。その溶液から微細な固形物が沈殿した。撹拌しながら、エタノール（20ml）をその懸濁液に滴下して加えた。その後、ガラス濾過漏斗による濾過で、その生成物を集めた。その結果、わずかにオフホワイトの粉末、0.22ｇ（44％収率）を得た。分析計算値Ｃ₁₄Ｈ₁₉ＢｒＣｌＮ₂Ｏ₉Ｐ（分子量＝505.64）：Ｃ 33.26，Ｈ 3.79，Ｎ 5.54，Ｃｌ 7.01；実測値（乾燥物質）：Ｃ 33.44，Ｈ 3.92，Ｎ 5.42，Ｃｌ 7.13．実施例２〜４：Ｘ−ホス−イノシトールを使用したＰＩ−ＰＬＣの分光光度検定法以下の実施例２〜４において、実験には、パーキン・エルマー製ラムダ15分光光度計を使用した。実験は室温（約25℃）で行なった。ＰＩ−ＰＬＣ検出のための手順は以下のとおりである。0.1％のウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含有するｐＨ7.0の0.1ＭＨｅｐｅｓ／ＮａＯＨ緩衝液またはトリス／ＨＣｌ緩衝液にＸ−ホス−イノシトールを溶解した。ＢＳＡの代わりに、デオキシコール酸ナトリウム塩、トリトン（Triton）Ｘ− １００またはオクチルグルコシドのような界面活性剤を使用した。これらの場合、切断の割合は多少低かった（図５参照）。 3.5mlの溶液をキュベットに入れ、分光計を650nmにセットした。ＰＩ−ＰＬＣの原液（ベーリンガーマンハイム＃１１４３ 0６９；比活性600Ｕ／mg、５Ｕ／100μｌ溶液、8.33μg／ 100μlに相当）からの一定分量を添加した後、異なる基質および酵素濃度に対して定めた時間の経過後に光度計読み取り値をそれぞれ記録した。あるいは、数時間、分光計によって、吸光度を直接測定した。実施例２：基質濃度に対する依存性図１は、様々な基質濃度に対する650nmにおける吸光度の時間依存性を示す。各場合において、添加した酵素の量は0.167μg（２ml原液）であり、0.1％ＢＳＡを添加剤として使用した。インジゴの色彩の出現が遅れた。Ｓ字形ラインは、多少の複雑な反応速度論的状態であることを示している。これは、ＢＳＡ、酵素および基質の複合体を形成する必要性から生じるものかもしれない。また、遅延は、基質の酵素的切断に続く二量体化および酸化に起因しているかもしれない。従って、ＰＩ−ＰＬＣによるＸ−ホス−イノシトールの切断の初速度は、時間に対して直線的（linear）ではなかったが、各場合において線形の領域が存在し、それが各濃度（表１参照）の特異的酵素活性を検出するために使用された。５mMolの基質濃度における比活性は60μMol min^-1（mg^-1タンパク質）に近づき、ＮＰＩＰについても類似の結果が得られた。表１：基質濃度に対する切断割合および比活性の依存性基質濃度割合比活性［mMol］［nMol/min］［μMol min^-1mg^-1］１２．８１７２４．８２９５１０．２６１１０１４．０８４実施例３：酵素濃度に対する依存性図２および図３は、５mMの基質濃度およびＢＳＡの添加時における異なる酵素濃度に対する時間の関数としての吸光度変化を示す。直線領域を酵素濃度を検出するために使用することが可能であった。切断速度［nMol／min］および比酵素活性を表２に示す。酵素添加量に対する切断速度割合のプロット（図４参照）は、高い値域に対して満足のいく線形性を示し（２、５、および10μl原液の添加、およびそれぞれに対する167、416および833ngの酵素の添加）、また、より低い値域に対しては減少を示した（0.5および１μl、またはそれぞれに対する42および83ngの酵素）。表２：酵素濃度に対する切断割合および比活性の依存性酵素量割合比活性［μｌ原液］［ng］［nMol/min］［μMol min^-1mg^-1］０．５４２１．３３１１８３２．８３３２１６７９．４５６５４１６２１．０５０１０８３３４１．０４９５mMの基質濃度における検出または感度の限界は、10ngの酵素よりもはるかに少量である。実施例４；増強剤（enhancers）としてのＢＳＡおよび界面活性剤の使用図５は、異なる増強剤添加物を用いたＸ−ホス−イノシトールの酵素的切断の比較を示す。各試験使用の条件は以下のとおりである。基質濃度５mMol；416μgの酵素（５μl原液）；増強剤0.1％。試験された全ての界面活性剤は、なお、次の異なる方法において一層反応速度を著しく増加させた：ナトリウム塩の状態のデオキシコール酸（Ｎａ−ＤＣＡ）およびトリトン（Triton）Ｘ−１００には、最も強力な効果があった。一方、オクチル−チオグルコシド（Ｏｃｔ−Ｓｇｌｃ）、とくに、オクチルゴルコシド（Ｏｃｔ−ｇｌｃ）を使用した場合には、吸光度が早期に平らになり、比較的低い平坦域に達したのみであった。さらに、Ｎａ−ＤＣＡ、Ｏｃｔ−ｇｌｃおよびＯｃｔ−Ｓｇｌｃを使用すると、染料は一晩静置した後に沈殿する。従って、ＰＩ −ＰＬＣ分析法の感度の点において、増強剤添加物としてはＢＳＡが最適であった。前記実施例は、式IVの好ましい基質であるＸ−ホス−イノシトールに関係していると同時に、式Ｉの化合物のベンゼン核の置換基Ｒ₁、Ｒ₂、Ｒ₃、Ｒ₄として、本質的にインジゴ染料化学において公知のものを選択した場合、類似の結果が式の他の基質とともに得られることが前記一般的文献から明白であることに注意するべきである。概して、本発明は、生理学的サンプルまたは食品や飲料のような消費商品を含む潜在的に感染した検体中のバチルスセレウス（Bacillus cereus）、バチルスツリンゲンシス（B．Thur ingiensis）、スタフィロコッカスオウレアス（Staphylococcus aureus）および種々のリステリア株（Listeria strains）のような微生物を、安全で、高感度、商業的に実施可能に検出する方法を提供するものである。従って、前記実施例を多様に変更することは明らかである。以下の特許請求の範囲に基づいて本発明の範囲を解釈する。

Claims

【特許請求の範囲】 1. 基質によりホスファチジルイノシトール−特異的ホスホリパーゼＣ酵素を検出する方法であって、前記基質が前記酵素により切断され、前記基質の発色団部分が二量体化され、かつ酸化されると色を生じ、式(I)：（式中、Ｒは水素およびＣ_1-4アルキル基からなる群から選択され、一方、Ｒ₁、Ｒ₂、Ｒ₃、およびＲ₄は水素および色素産生置換基からなる群から選択されたラジカルである）の３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩化合物または化合物(I)の塩を前記基質として用いることからなる方法。 2. 式(I)において、Ｒ₁、Ｒ₂、Ｒ₃、およびＲ₄が水素、ハロゲン、シアノ基、ニトロ基、カルボキシ基、任意に置換したアミノ基、アミノメチル基、およびスルホニル基からなる群から選択される、請求の範囲第１項記載の方法。 3. Ｒが水素またはメチル基から選択され、Ｒ₁が水素およびハロゲンからなる群から選択され、Ｒ₂が水素、ハロゲン、およびシアノ基からなる群から選択され、Ｒ₃が水素およびハロゲンからなる群から選択され、かつＲ₄が水素である請求の範囲第２項記載の方法。 4. 前記塩が、前記化合物(I)と、水酸化リチウム、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、アンモニア、ジエチルアミン、トリエチルアミン、シクロヘキシルアミン、ピリジン、ピペリジン、ピペラジン、ピロリジン、モルホリン、Ｎ−メチルモルホリン、ｐ−トルイジン、テトラメチルアンモニウム、およびテトラエチルアンモニウムからなる群から選択された１種とで形成された塩から選択される、請求の範囲第１項記載の方法。 5. 前記基質が、式(IV)：またはその塩により表わされる５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシルミオイノシトール−１−リン酸塩のアンモニウム塩である請求の範囲第１項記載の方法。 6. 式(I)または前記その塩である前記基質が、血清アルブミンおよび界面活性剤からなる群から選択された少なくとも１つの増強添加物と組み合わせて用いられる請求の範囲第１項記載の方法。 7. 前記塩が、前記式(I)化合物および水酸化リチウム、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、アンモニア、ジエチルアミン、トリエチルアミン、シクロヘキシルアミン、ピリジン、ピペリジン、ピペラジン、ピロリジン、モルホリン、Ｎ− メチルモルホリン、ｐ−トルイジン、テトラメチルアンモニウム、およびテトラエチルアンモニウムからなる群から選択された１種とで形成された塩である、請求の範囲第６項記載の方法。 8. バチルスセレウス、バチルスツリンゲンシス、リステリア菌、リステリアイバノビおよびスタフィロコッカスオウレアスから分泌されたＰＩ−ＰＬＣの検出のための検定法であって、色素産生３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩化合物によりホスファチジルイノシトール−特異的ホスホリパーゼCを検出する段階からなる検定法。 9. 色素産生３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩化合物による病原性のリステリア属により分泌されるＰＩ−ＰＬＣの検出のための検定法。 10．色素産生３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩化合物による病原性のリステリア属を含んでいることが疑われる検体における病原性のリステリア属の存在の検出のための検定法。 11．微生物のホスファチジルイノシトール−特異的ホスホリパーゼCを検出するための基質であって、式(I)：（式中、Ｒは水素およびＣ_1-4アルキル基からなる群から選択され、一方、Ｒ₁、Ｒ₂、Ｒ₃、およびＲ₄は水素および色素産生置換基からなる群から選択されたラジカルである）の少なくとも１つの色素産生３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩化合物または前記式(I)化合物の塩からなる基質。 12．前記色素産生化合物として、５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシル− ミオイノシトール−１−リン酸塩、５−ブロモ−６−クロロ−３−インドキシル −ミオイノシトール−１−リン酸塩、６−クロロ−３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩、６−フルオロ−３−インドキシル−ミオイノシトール −１−リン酸塩およびその色素産生塩からなる群から選択された少なくとも１つの化合物からなる、請求の範囲第11項記載の基質。 13．付加的に、血清アルブミンおよび界面活性剤からなる群から選択された少なくとも１つの増強アジュバントからなる請求の範囲第11項記載の基質。 14．式：（式中、Ｒは水素およびＣ_1-4アルキル基からなる群から選択され、そしてＲ₁、Ｒ₂、Ｒ₃、およびＲ₄は水素および色素産生置換基からなる群から選択される）の色素産生３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩化合物、または前記式(I)化合物と有機または無機塩基との塩。 15．Ｒ₁、Ｒ₂、Ｒ₃、およびＲ₄が、ハロゲン、シアノ基、ニトロ基、カルボキシ基、任意に置換したアミノ基、アミノメチル基、およびスルホニル基からなる群から選択された請求の範囲第14項記載の色素産生３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩化合物。 16．Ｒが水素またはメチル基からなる群から選択され、Ｒ₁が水素およびハロゲンからなる群から選択され、Ｒ₂が水素、ハロゲンおよびシアノ基からなる群から選択され、Ｒ₃が水素およびハロゲンからなる群から選択され、かつＲ₄が水素である請求の範囲第１４項記載の色素産生３−インドキシル−ミオイノシトール −１−リン酸塩化合物。 17．式(IV)：により表わされる５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシルミオイノシトール−１−リン酸塩およびそのアンモニウム塩。 18．式(I)：（式中、Ｒは水素およびＣ_1-4アルキル基からなる群から選択され、そしてＲ₁、Ｒ₂、Ｒ₃、およびＲ₄は水素および色素産生置換基からなる群から選択される）の色素産生３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩化合物の製造法であって、反応：（式中、Ａは水素またはＮ保護基であり、そしてＧは１−ヒドロキシル基を除くイノシトールの各ヒドロキシル基におけるＯＨ保護基である）にしたがって中間体IIIを得るための、式IIの対応するインドキシル−３−ジクロロリン酸塩と１位に遊離のヒドロキシル基を有するＯＨが保護されたイノシトールとの反応、保護基の除去、および結果得られる化合物または式IIIの中間体の有機または無機塩基との反応による塩への任意の変換の段階からなる製造法。 19．前記有機または無機塩基が、水酸化リチウム、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、アンモニア、ジエチルアミン、トリエチルアミン、シクロヘキシルアミン、ピリジン、ピペリジン、ピペラジン、ピロリジン、モルホリン、Ｎ−メチルモルホリン、ｐ−トルイジン、テトラメチルアンモニウム、およびテトラエチルアンモニウムからなる群から選択される、請求の範囲第19項記載の方法。 20．細菌性のホスファチジルイノシトール−特異的ホスホリパーゼＣ酵素を検出することができる基質の製造法であって、式(I)： (式中、Ｒは水素およびＣ_1-4アルキル基からなる群から選択され、一方、Ｒ₁、Ｒ₂、Ｒ₃、およびＲ₄は水素および色素産生置換基からなる群から選択されたラジカルである)または前記式(I)化合物と有機または無機塩基との塩である３−インドキシル−ミオイノシトール−１−リン酸塩化合物をそれに取り込むことにより前記基質を製造することからなる方法。