JP2001192396A - インターフェロン−γの活性を有するタンパク質の高純度製造法、イヌインターフェロン−γの活性を有する高純度タンパク質、イヌ疾病の治療剤およびイヌ疾病の治療方法 - Google Patents

インターフェロン−γの活性を有するタンパク質の高純度製造法、イヌインターフェロン−γの活性を有する高純度タンパク質、イヌ疾病の治療剤およびイヌ疾病の治療方法

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Abstract

(57)【要約】 【課題】 インターフェロン−γの活性を有するタンパ
ク質の高純度製造法を提供する。 【解決手段】 金属キレート担体、イオン交換担体およ
び色素担体を用いて、インターフェロン−γの活性を有
するタンパク質を高純度で製造する。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は、インタ−フェロン
-γの活性を有するタンパク質を遺伝子操作技術によっ
て量産して、以って医薬品(抗腫瘍・抗ウイルス・抗ア
レルギー)とする事を目的とした、インタ−フェロン-
γの活性を有するタンパク質を高純度で製造する方法に
関する。
【0002】
【従来の技術】インターフェロンは、抗ウイルス作用を
示すところの蛋白質を主成分とする生理活性物質でIF
Nと略記される。
【0003】遺伝子操作技術の進歩によりヒトのIFN
のみならず、ウシ、ウマ、ネコなどの動物のIFNも大
量生産が可能となり、その結果、ウイルス病や腫瘍など
の治療薬としてのIFNの用途開発研究が行われている
ものもある。イヌについても、α,β,γ各タイプのI
FNが報告されている(文献1、2)。
【0004】
【発明が解決しようとする課題】イヌには、乳腺腫瘍な
ど多数の腫瘍、パルボウイルス感染症、ジステンバ−感
染症など多数のウイルス病および多数の皮膚病などが知
られている。これらの治療薬としてイヌIFN-γが特
に有効であると考えられるので、イヌIFN−γが大量
生産され、容易に入手可能となれば、これらイヌ疾病の
治療薬としての用途が開かれると期待される。
【0005】IFN-γは種々の生産系において容易に
分解または修飾されるため、ほとんどの場合、多成分で
生産されることが報告されている(文献3)。
【0006】多成分から成る有用蛋白質を医薬品とする
場合、各成分をそれぞれ単独に精製分離し、各成分ごと
に毒性試験、薬効試験等詳細な解析を行うことが必要で
あり、また製剤化の際、それぞれの成分を常に一定含量
添加することが義務づけられている。従って、IFN-
γを遺伝子組換えの医薬品とする場合、目的の成分を高
純度で精製分画することが重要な課題である。
【0007】イヌIFN-γの場合も、種々の生産系で
生産させた場合、得られたイヌIFN-γは以下の特徴
を示し、多種類のイヌIFN-γの混合物として生産さ
れる。 (1)イヌIFN-γは大部分2量体で存在する。 (2)イヌIFN-γはそのC末端構造が様々に分解を
受ける。 (3)イヌIFN-γは種々の生産系で不均一な糖鎖付
加を受ける。 (4)イヌIFN-γは種々の生産系でメチオニン残基
が酸化を受ける。 このように多種類のイヌIFN-γをカラム精製で活性
を維持したまま高純度に大量に分離精製する方法はこれ
まで知られていなかった。従って、イヌIFN-γの高
純度での製造法を確立することができれば、イヌIFN
-γの医薬品としての開発の途が開かれると期待され
る。
【0008】
【課題を解決するための手段】本発明者はかかる状況に
鑑み、各種生産系で生産されたIFN-γを高純度に精
製分離することを目的とし、創意工夫を成し、遺伝子組
換え手法を用いて種々の生産系でIFN-γの活性を有
するタンパク質を生産し、純度90%以上に精製分離す
る方法を確立し、かくして本発明を完成させるに至っ
た。
【0009】すなわち本発明は主として次の(1)〜
(4)の構成を有する。すなわち、 (1)インターフェロン−γの活性を有するタンパク質
を、金属をキレート結合させた担体、イオン交換担体お
よび色素担体から選ばれる少なくとも1種の担体と接触
させることを特徴とするインターフェロン−γの活性を
有するタンパク質の高純度製造法。 (2)インターフェロン−γの活性を有するタンパク質
の純度が90%以上であることを特徴とするイヌインタ
ーフェロン−γの活性を有する高純度タンパク質。 (3)(1)の方法で製造されたイヌインターフェロン
−γの活性を有するタンパク質または(2)のイヌイン
ターフェロン−γの活性を有する高純度タンパク質を含
んでなるイヌ疾病の治療剤。 (4)(3)のイヌ疾病の治療剤をイヌに注射投与する
ことを特徴とするイヌ疾病の治療方法。 である。
【0010】
【発明の実施の形態】以下、本発明に関し詳細に説明す
る。
【0011】本発明の製造法で製造されるIFN-γの
活性を有するタンパク質は全ての動物種を含むものとす
る。本発明では、特にイヌIFN-γの活性を有するタ
ンパク質が好ましく用いられる。イヌIFN-γの活性
を有するタンパク質とは、イヌIFN-γの活性を有す
るものであれば良く、糖鎖、酸化、アミノ酸配列などの
構造に限定されない。イヌIFN-γの活性を有するタ
ンパク質をコードするDNAは例えば次のようにして製
造することができる。すなわち、イヌの細胞からポリ
(A)RNAを抽出した後、cDNAに転換し、イヌI
FN-γをコ−ドする遺伝子配列を元にしたプライマ−
を用いてポリメラーゼ連鎖反応(以下PCRと略す)を
行うことによってイヌIFN-γをコ−ドする遺伝子を
得ることができる。イヌの細胞、例えばマイト−ジェン
などで刺激されたイヌリンパ球などよりRNAを得る方
法としては、通常の方法、例えば、ポリソ−ムの分離、
ショ糖密度勾配遠心や電気泳動を利用した方法などがあ
げられる。上記イヌ細胞よりRNAを抽出する方法とし
ては、グアニジン・チオシアネ−ト処理後CsCl密度
勾配遠心を行うグアニジン・チオシアネ−ト−塩化セシ
ウム法(文献4)バナジウム複合体を用いてリボヌクレ
ア−ゼインヒビタ−存在下に界面活性剤で処理したのち
フェノ−ル抽出を行う方法(文献5),グアニジン・チ
オシアネ−ト−ホット・フェノ−ル法、グアニジン・チ
オシアネ−ト−グアニジン塩酸法、グアニジン・チオシ
アネ−ト−フェノ−ル・クロロホルム法、グアニジン・
チオシアネ−トで処理したのち塩化リチウムで処理して
RNAを沈殿させる方法などの中から適当な方法を選ん
で行うことができる。
【0012】イヌリンパ球などより通常の方法、例え
ば、塩化リチウム/尿素法、グアニジン・イソチオシア
ネ−ト法、オリゴdTセルロ−スカラム法等によりmR
NAを単離し、得られたmRNAから通常の方法、例え
ば、Gublerらの方法(文献6),H.Okaya
maらの方法(文献7)等によりcDNAを合成する。
得られたmRNAからcDNAを合成するには、基本的
にはトリ骨芽球ウイルス(AMV)などの逆転写酵素な
どを用いるほか1部プライマ−を用いてDNAポリメラ
−ゼなどを用いる方法を組み合わせてよいが、市販の合
成あるいはクロ−ニング用キットを用いるのが便利であ
る。このcDNAを鋳型としてイヌIFN-γの塩基配
列を基にしたプライマ−を用いてPCRを行うことによ
ってイヌIFN-γの蛋白質をコ−ドするDNAを得る
ことができる。さらにこのDNAを鋳型としてイヌIF
N-γ遺伝子の数ヵ所を改変するようように設計したプ
ライマーを用いてPCRを行い、得られたPCR増幅断
片を連結することによって、イヌIFN-γの活性を有
するタンパク質をコードするDNAを得ることができ
る。
【0013】イヌIFN−γの活性を有するタンパク質
をコードするDNAの具体例としては、配列番号:1、
配列番号:2、配列番号:31、配列番号:32、配列
番号:33、配列番号:34、配列番号:35、配列番
号:36または配列番号:37から選ばれる少なくとも
1つの配列もしくはこれらの配列とハイブリダイズする
配列を有するものがあげられる。
【0014】イヌIFN-γの活性を有するタンパク質
は、カイコに感染する組換えカイコ核多角体病ウイルス
を作製することによって、カイコ発現系を用いても生産
することができる。組換えカイコ核多角体病ウイルス
は、イヌIFN-γの活性を有するタンパク質をコ−ド
するDNAをカイコのクローニングベクター(文献8)
に連結して作製した組換え体プラスミドとカイコ核多角
体病ウイルスDNAとを、カイコ樹立細胞にコトランス
フェクションして作製することができる。従って、組換
え体ウイルスは、in vivo的な方法で作製するこ
とができる。すなわち、イヌIFN-γの活性を有する
タンパク質をコードするDNA部分を、例えばpBM0
30(文献8)などのカイコのクローニングベクターの
発現調節部分の下流に連結するという一般的な遺伝子操
作に従って組換え体プラスミドを作製することができ
る。この組換え体プラスミドとカイコ核多角体病ウイル
スDNA(文献8)とを、文献のような方法でカイコ樹
立細胞、例えばBM−N株(文献8)にコトランスフェ
クションした後、培養を続け、培養液中に出現した非組
換え体(野性型)と組換え体のウイルスの中から限界希
釈法、もしくはプラーク法などの一般的な方法によって
組換えウイルスをクローニングすることができる。組換
えウイルスは多角体の形成能がないことから、野性型ウ
イルスと容易に区別できる。イヌIFN-γの活性を有
するタンパク質の生産は、前記の組換えカイコ核多角体
ウイルスをカイコ樹立細胞中、またはカイコ生体中で増
殖させることにより行なう。
【0015】カイコ樹立細胞を用いる場合は、前記組換
えウイルスを含む培養液により、BM−N細胞を感染さ
せ、平面培養または浮遊培養により培養する。BM−N
細胞を培養する培地としては、例えば牛血清を添加した
TC−10培地(文献9)やTC−100培地(日本農
産工業(株)製)を使用することができる。培養温度は
25〜28℃が適当である。培養後、培養液を遠心分離
しその上清からイヌIFN-γの活性を有するタンパク
質を回収する。
【0016】カイコ生体を用いる場合は、前記の組換え
体ウイルスを含む培養液をカイコ幼虫に注射して、人工
飼料を与えて飼育する。飼育後、体液を採取しその上清
からイヌIFN-γの活性を有するタンパク質を回収す
る。
【0017】カイコ樹立細胞やカイコ生体を用いてIF
N-γの活性を有するタンパク質を生産する場合、IF
N-γの活性を有するタンパク質が生産された溶液に塩
化ベンザルコニウム、EDTAあるいは界面活性剤など
を添加して、組換えウイルスを不活化することができ
る。
【0018】上記の製造法で製造されるIFN-γの活
性を有するタンパク質の性質としては、以下の点が挙げ
られ、本発明の高純度製造法はこのような性質を有する
タンパク質の製造に特に有用である。 (1)C末端構造が様々に分解を受けた構造で存在す
る。例えば、カイコで生産したイヌIFN-γの活性を
有するタンパク質はそのC末端構造が20アミノ酸残基
までさまざまに分解を受けたものが存在する。その内、
16アミノ酸残基および17アミノ酸残基欠損したもの
が多く存在する。 (2)2量体で存在する。これはゲルろ過などにより、
分子量を測定することによって検出することができる。
例えば、カイコで生産したイヌIFN-γの活性を有す
るタンパク質は全て2量体で存在する。 (3)メチオニン残基が酸化を受けた構造のものが存在
する。例えば、カイコで生産したイヌIFN-γの活性
を有するタンパク質を本発明の製造法で高純度に精製し
たものの中には、そのN末端側のメチオニン残基が酸化
を受けたものが存在する。
【0019】本発明のIFN−γの活性を有するタンパ
ク質の高純度製造法が特に有用であるタンパク質をまと
めると以下のようなものである。 (1)単量体、または単量体の組み合わせからなる2量
体からなるタンパク質。 (2)単量体のC末端構造が欠損したタンパク質。 (3)単量体が、配列番号:1、配列番号:2、配列番
号:31、配列番号:32、配列番号:33、配列番
号:34、配列番号:35、配列番号:36または配列
番号:37から選ばれる少なくとも1つのアミノ酸配列
もしくは、これらアミノ酸配列において1もしくは数個
のアミノ酸が欠失、付加、置換もしくは修飾されたアミ
ノ酸配列からなるタンパク質。 (4)2量体が(3)の単量体のホモ2量体、またはヘ
テロ2量体であるタンパク質。好ましくはホモ2量体の
タンパク質。 (5)インターフェロン−γの活性を有するタンパク質
をコードするDNAにより遺伝子組換えされた組換えカ
イコ核多角体病ウイルスを、カイコ生体中で増殖させて
生産させたタンパク質。 (6)メチオニン残基が酸化されたタンパク質。
【0020】本発明は、IFNの活性を有するタンパク
質を、金属をキレート結合させた担体、イオン交換担
体、および色素担体から選ばれる少なくとも1種の担体
と接触させることが重要である。これらの担体と接触さ
せることで高純度のIFN−γの活性を有するタンパク
質を製造することができる。このとき、製造方法として
は、IFN−γの活性を有するタンパク質を含む溶液を
担体に接触させ、担体への非吸着物を回収する方法が好
ましい。
【0021】本発明において高純度精製に使用される、
金属をキレート結合させた担体としては、アガロース、
セルロース、ポリアクリルアミドゲルなどに、例えばビ
スカルボキシメチルイミノ基{N(CH2COOH)2
などのキレート能を有する交換基が結合した担体を、硫
酸銅や塩化ニッケルなどの金属塩の溶液で処理した担体
が挙げられる。好ましくは、キレーティングセファロー
ス(アマシャム・ファルマシア社製)などの不溶性多糖
類系担体に銅をキレート結合させた担体(以下、銅キレ
ート担体と略記する)が用いられる。インターフェロン
−γの活性を有するタンパク質の大部分は、溶液のpH
値が4〜9の範囲では該担体に吸着せず、一方、多くの
インターフェロン−γの活性を有するタンパク質以外の
夾雑タンパク質は該担体に吸着するので、本操作にてイ
ンターフェロン−γの活性を有するタンパク質を高純度
で回収することができる。また、該担体にインターフェ
ロン−γの活性を有するタンパク質が吸着しても、極め
て弱い吸着であり、塩化アンモニウムや塩化ナトリウム
などの塩の低濃度溶液で容易に溶出させ、高純度で回収
することができる。例えば、カイコ生体中で生産させた
イヌIFN-γの活性を有するタンパク質を含む溶液を
pH値を7にし、該担体に接触させると、イヌIFN-
γの活性を有するタンパク質は非吸着画分に全て回収さ
れ、カイコ由来物の大部分は該担体に強固に吸着し、除
去することができる。また、本操作をpH値5.5下で
行うと、非吸着画分には、C末端構造が12アミノ酸残
基以上欠損したイヌIFN-γ(以下低分子イヌIFN-
γと略記する)が回収され、それ以外の高分子のイヌI
FN-γの活性を有するタンパク質は該担体に弱く吸着
する。高分子のイヌIFN-γの活性を有するタンパク
質は0.1〜0.6Mの塩化アンモニウム溶液で回収さ
れ、カイコ由来物の大部分は本画分には回収されない。
従って、本操作にて、低分子と高分子のイヌIFN-γ
の活性を有するタンパク質をそれぞれ分離して高純度で
回収することができる。
【0022】また、イオン交換担体としては、アニオン
交換担体が好ましく、アガロース、セルロース、合成ポ
リマーゲルなどに、例えばジエチルアミノエチル(Diet
hylaminoethyl)、クアテナリアミノエチル(Quaternar
y aminoethyl)、クアテナリアンモニウム(Quaternary
ammonium)、カルボキシメチル(Carboxymethyl)、ス
ルホプロピル(Sulphopropyl)、メチルスルホネート
(Methyl sulphonate)などの官能基を導入したものが
挙げられる。好ましくはクアテナリアンモニウムが導入
された、Q セファロースハイパフォーマンス(Q Seph
arose High Performance)(アマシャム・ファルマシア
社製)やQ セファロースファーストフロー(Q Sephar
ose Fast Flow)(アマシャム・ファルマシア社製)な
ど(以下、Qセファロース担体と略記する)が用いられ
る。Qセファロース担体からの溶出は、溶出剤のpH
値、イオン強度などによって決定される。多種類のIF
N-γの活性を有するタンパク質はそれぞれ異なった電
荷を有しており、それぞれの電荷の差により、本担体を
用いて、それぞれを分画することができる。例えば、カ
イコ生体中で生産させた糖鎖を欠損させたイヌIFN-
γの活性を有するタンパク質の場合、pH値9下で、C
末端構造が16アミノ酸残基欠損したイヌIFN-γ
(以下、イヌIFN-γ/16−と略記する)のホモ2
量体とC末端構造が17アミノ酸残基欠損したイヌIF
N-γ(以下、イヌIFN-γ/17−と略記する)のヘ
テロ2量体およびイヌIFN-γ/16−とイヌIFN-
γ/17−のヘテロ2量体をそれぞれ分画することがで
きる。
【0023】さらに、色素担体としては、ブルー色素を
結合させた担体(以下、ブルー担体と略記する)が好ま
しく用いられる。ブルー担体としては次のものが使用さ
れる。ブルー色素は一般名をCIリアクティブブルー2
といい、例えばCIBA−GEIGY社からジバクロン
ブルーF3GA、またはジバクロンブルー3GAという
商品名で市販されている青色色素などが挙げられる。実
際のクロマトグラフィーに使用する担体としては、ブル
ーセファロースCL−6B(アマシャム・ファルマシア
社製)、ブルーセファロース6ファーストフロー(アマ
シャム・ファルマシア社製)、ブルーセファロース6ハ
イパフォーマンス(アマシャム・ファルマシア社製)、
マトレックスゲルブルーA(アミコン社製)、アフィゲ
ルブルー(バイオラット社製)などの商品名で市販され
ているブルーアガロースゲル、またはブルートリスアク
リルーM(LKB社製)ブルーセルロファイン(チッソ
社製)などの商品名で市販されているブルーセファロー
スゲルなどが適当であり、容易に入手することができ
る。ブルー担体からの溶出は、溶出剤のpH値、イオン
強度、疎水度などによって決定される。例えば、イヌI
FN-γの活性を有するタンパク質の場合、中性付近の
pHで、イヌIFN-γ/16−のホモ2量体、イヌI
FN-γ/17−のホモ2量体あるいは高分子のイヌI
FN-γの活性を有するタンパク質をそれぞれ分離溶出
して、高純度で精製することができる。
【0024】本発明の製造法におけるカラム担体を用い
た精製操作はそれぞれ単独で行ってもIFN-γの活性
を有するタンパク質の高純度化が可能であるが、好まし
くはそれぞれを組み合わせて行った方がより効果が高
い。例えば、カイコ生体中で生産したIFN-γの活性
を有するタンパク質を含む溶液中には、非常に多くのカ
イコ由来の夾雑物と他種類のIFN-γの活性を有する
タンパク質が含まれるので、上記3つのカラム担体精製
を組み合わせることが好ましい。カイコ生体中で生産さ
せたイヌIFN-γの活性を有するタンパク質の製造に
おいては、初段精製に銅キレート担体を、2段目精製に
Qセファロース担体を、3段目精製にブルー担体を用い
ることが好ましい。
【0025】なお、各カラム担体を用いた精製操作にお
ける、溶出剤の組成、液量などは特に限定されるもので
はなく、最適な分離条件は存在する夾雑タンパク質、I
FN-γの活性を有するタンパク質の量、およびカラム
の寸法などに応じて適宜決定される。
【0026】また、本発明の製造法で製造されるIFN
-γの活性を有するタンパク質の純度は、逆相カラムを
用いたHPLCによる分析で、90%以上である。
【0027】本発明の製造法における、カラム担体を用
いた精製を行う際に、IFN-γの活性を有するタンパ
ク質を含む溶液中に界面活性剤を0.001〜1重量%
添加する方法が好ましく採用でき、これにより精製挙動
に変化なく高純度に製造することができる。界面活性剤
を添加することにより、カラム担体やカラム容器への目
的タンパク質の吸着によるロスを防止でき、高い収率で
の製造が可能になる。添加する界面活性剤としては、特
に限定はないが、アルキルアリルポリエーテルアルコー
ル、高級アルコール硫酸化物、N−ココイルーLーアル
ギニンエチルエステルDLーピロリドンカルボン酸塩、
NーココイルーNーメチルアミノエチルスルホン酸ナト
リウム、コレステロール、自己乳化型モノステアリン酸
グリセリン、ショ糖脂肪酸エステル、スクワラン、ステ
アリンアルコール、ステアリン酸ポリオキシル40、セ
スキオレイン酸ソルビタンセタノール、セトマクロゴー
ル1000、セバシン酸ジエチル、ソルビタン脂肪酸エ
ステル、ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム、ノニ
ルフェノキシポリオキシエチレンエタン硫酸エステルア
ンモニウム、ポリオキシエチレンオクチルフェニルエー
テル、ポリオキシエチレンオレインアミン、ポリオキシ
エチレン硬化ヒマシ油20、ポリオキシエチレン硬化ヒ
マシ油60、ポリオキシエチレンステアリンエーテル、
ポリオキシエチレンセチルエーテル、ポリオキシエチレ
ンソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンソル
ビットミツロウ、ポリオキシエチレンノニルフェニルエ
ーテル、ポリオキシエチレン(105)ポリオキシプロ
ピレン(5)グリコール、ポリオキシエチレン(12
0)ポリオキシプロピレン(40)グリコール、ポリオ
キシエチレン(160)ポリオキシプロピレン30)グ
リコール、ポリオキシエチレン(20)ポリオキシプロ
ピレン(20)グリコール、ポリソルベート60、ポリ
ソルベート80、マクロゴール400、モノオレイン酸
ソルビタン、モノステアリン酸グリセリン、モノステア
リン酸ソルビタン、モノラウリン酸ソルビタン、モノラ
ウリン酸ポリオキシエチレンソルビタン、ラウリル硫酸
ナトリウム、ラウリン酸ジエタノールアミド、ラウロイ
ルサルコシンナトリウム、ラウロマクロゴール、リン酸
ナトリウムポリオキシエチレンラウリルエーテル、リン
酸ポリオキシエチレンオレイルエーテルなど日本薬局方
に医薬品添加物として記載されているものが好ましく、
イヌIFN-γの活性を有するタンパク質を製造する場
合、その中でもポリオキシエチレン硬化ヒマシ油60が
特に好ましく用いられる。
【0028】本発明の製造法により得られるイヌIFN
−γは90%以上の純度を有しており、イヌ疾病の治療
剤として有効である。
【0029】本発明に係るイヌ疾病の治療剤は、皮膚病
をはじめ腫瘍、アレルギー疾患、感染症など免疫能が低
下した疾病などさまざまなイヌの疾病に対して、従来の
これらイヌの疾病に対する治療薬や治療方法に比べ、驚
くべき顕著な治療効果および予防効果を示す。
【0030】本発明における、イヌの皮膚病としては、
アレルギー性皮膚炎、免疫介在性皮膚炎、腫瘍性皮膚
炎、寄生虫性皮膚炎、細菌性皮膚炎、真菌性皮膚炎、内
分泌疾患、角化異常などが挙げられる。アレルギー性皮
膚炎としては、例えばアトピー性皮膚炎、接触性皮膚
炎、ノミによる皮膚炎、ダニによる皮膚炎などが挙げら
れ、免疫介在性皮膚炎としては、例えば狼瘡、天疱瘡、
アカントーシス、表皮壊死、皮膚血管炎、ブドウ膜炎、
悪性脱毛、強皮症、好酸球性皮膚炎などが挙げられ、寄
生虫性皮膚炎としては、ノミによる皮膚炎、ダニによる
皮膚炎、ウジによる皮膚炎、フィラリアによる皮膚炎な
どが挙げられ、細菌性皮膚炎としては、例えば膿皮症な
どが挙げられ、真菌性皮膚炎としては、例えば表皮性皮
膚炎、全身性皮膚炎などが挙げられ、内分泌疾患として
は、例えば甲状腺皮膚炎、成長ホルモン反応性皮膚炎、
エストロゲン性皮膚炎などが挙げられ、角化異常として
は、例えば本態性脂漏性皮膚炎、脂肪酸欠乏性皮膚炎、
亜鉛欠乏性皮膚炎、ビタミンA欠乏性皮膚炎などが挙げ
られる。イヌの腫瘍としては、乳腺腫瘍、好酸球性肉芽
腫、類表皮腫、皮膚腫瘍、脂肪腫、耳血腫、肺水腫、皮
膚有茎軟腫または肛門腫瘍などが挙げられ、イヌの感染
症としては、イヌパルボウイルス感染症、ジステンバー
感染症などが挙げられ、そしてアレルギー性疾病として
は、イヌの花粉症などが挙げられる。
【0031】また、本発明において用いられるイヌ疾病
の治療剤は、イヌIFN-γの活性を有するタンパク質
に加えて任意に他の成分を含むことができる。本剤に添
加される成分は、主として、本剤が投与される方式に依
存して決定される。本剤が固体として用いられる場合
は、例えばラクトース等の充填剤、カルボキシメチルセ
ルロース、ゼラチン等の結合剤、着色剤、コーティング
剤等を用いることができ、このような固体の剤は経口投
与に好適であろう。また、担体または賦形剤として例え
ば、白色ワセリン、セルロース誘導体、界面活性剤、ポ
リエチレングリコール、シリコーン、オリーブ油等を加
えてクリーム、乳液、ローション等の形態として外用剤
として患部に塗布して用いることもできる。また、本剤
が液体として投与される場合は、通常行われている生理
学的に許容される溶媒、および、乳化剤、安定剤を含む
ことができる。溶媒としては、水、PBS、等張性生理
食塩水等があげられ、乳化剤としては、ポリオキシエチ
レン系界面活性剤、脂肪酸系界面活性剤、シリコーン等
が例示でき、安定剤としては、イヌ血清アルブミン、ゼ
ラチン等の蛋白質、または、ポリエチレングリコール、
エチレングリコール等のポリオール、または、ソルビト
ール、トレハロースなどの糖類等があげられる。
【0032】本発明の治療剤の投与方法に特に限定はな
いが、注射投与することによってより治療効果が期待で
きる。注射投与方法としては、静脈内投与、筋肉内投
与、皮下投与、腹腔内投与、胸腔内投与いずれの方法で
もよいが、皮下投与が簡便で患犬の負担も軽く好適であ
る。
【0033】また、投与量は、個体の大きさ、投与方
法、症状などに依存して決定されるであろうが、一般に
は、イヌ疾病の症状を改善させるに十分な量を投与すれ
ば良い。例えば、1用量、1日当たり0.002から1.
0MU/kgのイヌIFN-γの活性を有するタンパク質の
投与で十分な効果が得られるが、好ましくは0.005
から0.5MU/kg の用量が効果および経済的な面から好
ましい。ここにおいて、kg は患畜犬の体重の単位であ
り、Uは、上記イヌIFN-γの活性を有するタンパク質
の抗ウイルス活性から決定されるユニット数を表し、ウ
イルスとしてvesicular stomatitis virus (VS
V)、感受性細胞としてイヌMDCK(ATCC CC
L−34)細胞を用いて文献10のCPE法に従って測
定した時、VSVによるイヌMDCK細胞の細胞変性率
を50%防ぐことができるイヌIFN-γの量が1ユニ
ットである。
【0034】また、本発明の治療剤の投与頻度もまた、
個体の大きさ、投与方法、症状などに依存して決定され
るであろうが、通常、週当たり1から2回の投与で、治
療開始から2週目には顕著な症状の改善が認められるで
あろう。また、治療経過を観察しながら投与頻度を増減
することも、投与回数を増減することも可能であるが、
飼い主の負担と治療効果の観点から、1日から7日の間
隔で2から10回投与することが好ましい。
【0035】また、本治療方法においては、イヌ疾病を
治療するための従来技術による治療剤を組み合わせて補
助的に用いることができる。この場合は、本発明の治療
剤は、抗ヒスタミン剤(ジフェンヒドラミン類)、消炎
剤(塩酸ジブカイン等)、殺虫・殺菌剤(マラチオン、
塩化ベンザルコニウム等)、ステロイド剤(デキサメタ
ゾン等)などから選ばれる他の薬剤と共に投与される。
【0036】
【実施例】以下、実施例を挙げて本発明をさらに具体的
に説明する。
【0037】実施例1 イヌIFN-γの活性を有する
タンパク質を生産する遺伝子組換え カイコ核多角体病ウイルスの作製 (1)イヌcDNAの調製 イヌ末梢血よりリンパ球を分離し、フィトヘムアグルチ
ニン(PHA)を50μg/mlの終濃度で48時間刺
激した。刺激後、ISOGEN(ニッポンジ−ン(株)
製)を用いて総RNAを調製した。得られたRNAを1
mM EDTAを含む10mM トリス塩酸緩衝液(p
H7.5)(以下TEと略する。)に溶解し、70℃で
5分間処理した後、1M LiClを含むTEを同量加
えた。0.5M LiClを含むTEで平衡化したオリ
ゴdTセルロ−スカラムにRNA溶液をアプライし、同
緩衝液にて洗浄した。さらに0.3M LiClを含む
TEにて洗浄後、0.01% SDSを含む2mM E
DTA(pH7.0)で吸着したポリ(A)RNAを溶
出した。こうして得られたポリ(A)RNAを用いて一
本鎖cDNAを合成した。すなわち、滅菌した0.5m
lのミクロ遠心チュ−ブに5μgのポリ(A)RNAと
0.5μgのオリゴdTプライマ−(12−18me
r)を入れ、ジエチルピロカルボネ−ト処理滅菌水を加
えて12μlにし、70℃で10分間インキュベ−トし
たのち氷中に1分間つけた。これに200mM トリス
塩酸(pH8.4),500mM KCl溶液を2μ
l,25mM MgCl2を2μl,10mM dNT
Pを1μlおよび0.1M DTTを2μlそれぞれ加
え、42℃で5分間インキュベ−トしたのち、200ユ
ニットの逆転写酵素(GibcoBRL社製、Supe
rScriptII)を1μl加え、42℃でさらに5
0分間インキュベ−トしてcDNA合成反応を行った。
さらに70℃で15分間インキュベ−トして反応を停止
し、氷上に5分間置いた。この反応液に1μlのE.c
oli RNaseH(2units/ml)を加え、
37℃で20分間インキュベ−トした。 (2)イヌIFN-γの活性を有するタンパク質をコー
ドする遺伝子の調製 イヌIFN-γの塩基配列(文献2)をもとに、 5´GCAGATCTATGAATTATACAAGC
TATATCTTAGCT3´(配列番号:3) と 5´GCGAATTCTTATTTCGATGCTCT
GCGGCCTCGAAA3´(配列番号:4) の2種類のプライマ−を日本バイオサービス(株)に依
頼し合成した。実施例1(1)で得られたcDNAを
0.5mlのミクロ遠心チュ−ブに2μlづつ取り、各
プライマ−を20pmol,20mMトリス塩酸緩衝液
(pH8.0)、1.5mM MgCl2 、25mM
KCl,100μg/ml ゼラチン、50μM各d
NTP、4単位 ExTaqDNAポリメラ−ゼ(宝酒
造(株)製)となるように各試薬を加え、全量100μ
lとする。DNAの変性条件を94℃,1分、プライマ
−のアニ−リング条件を55℃、2分、プライマ−の伸
長条件を72℃、3分の各条件でPerkin−Elm
er Cetus社のDNAサ−マルサイクラ−を用
い、30サイクル反応させた。これを1%アガロ−スゲ
ルにて電気泳動し、517bpのDNA断片(配列番
号:5)を常法(文献9)に従って調製した。このDN
A断片をInvitrogen社のT−Vectorに
宝酒造(株)に常法に従い連結した。これを用いて常法
に従い大腸菌を形質転換し、得られた形質転換体よりプ
ラスミドDNAを常法に従い調製した。次に蛍光DNA
シーケンサー(パーキンエルマー社製DNAシーケンサ
ー373S)を用い、その添付プロトコールに従って、
パーキンエルマー社のダイターミネーターサイクルシー
ケンシングキットを用いて、得られたDNA断片がイヌ
IFN-γをコードするDNAの塩基配列であることを
確認した。
【0038】次にこのDNA断片を鋳型として3種類の
プライマーの組合せ(配列番号:6〜11)で上記と同
様の条件でPCRを行い、3種類のPCR増幅断片(配
列番号:12〜14)を得た。これらを常法に従い回収
し、配列番号:12に示す断片を制限酵素BamHIお
よびEcoRV で、配列番号:13に示す断片を制限
酵素HincIIおよびSnabI で、配列番号:1
4に示す断片を制限酵素EcoRVおよびEcoRI
で、それぞれ切断後、制限酵素処理した配列番号:12
に示す断片と制限酵素処理した配列番号:14に示す断
片を混和してpUC19のEcoRI、BamHI部位
へ常法に従い挿入し、組換えベクターを得た。さらにこ
のベクターを制限酵素EcoR Vで切断後、配列番
号:13に示す断片を常法に従い挿入し組換えベクター
を得、挿入されたDNAの塩基配列(配列番号:15)
を上記と同様にして確認した。その後、制限酵素Bam
HIおよびEcoRI で挿入されたDNAを回収し、
これを制限酵素BglIIおよびEcoRIで切断した
pBM030に常法に従い挿入して、カイコ発現用組換
えベクターpBMγS2(-)を作製した。また、pBM
γS2(-)を鋳型として配列番号:16と配列番号:1
7に示すプライマーの組合せ、配列番号:16と配列番
号:21に示すプライマーの組合せ、配列番号16:と
配列番号:22に示すプライマーの組合せ、配列番号:
16と配列番号:23に示すプライマーの組合せ、配列
番号:16と配列番号:24に示すプライマーの組合
せ、配列番号:16と配列番号:25に示すプライマー
の組合せ、配列番号:16と配列番号:38に示すプラ
イマーの組合せ、配列番号:16と配列番号:39に示
すプライマーの組合せを用いてPCRを行い、それぞれ
配列番号:18、配列番号:26、配列番号:27、配
列番号:28、配列番号:29、配列番号:30、配列
番号:40、配列番号:41に示すDNA断片を得、こ
れを同様にして制限酵素処理後、pBM030のBgl
IIおよびEcoRI部位に挿入し、それぞれpBMγ
S2(-)/-20、pBMγS2(-)/-16、pBMγS
2(-)/-15、pBMγS2(-)/-17、pBMγS2
(-)/-18、pBMγS2(-)/-19、pBMγS2
(-)/-14、pBMγS2(-)/-13を作製した。ま
た、上記で得られた配列番号:5に示す、改変前のイヌ
IFN-γをコードするDNA断片を同様にして制限酵
素処理後、pBM030のBglIIおよびEcoRI
部位に挿入し、pBMγを作製した。 (3)イヌIFN-γの活性を有するタンパク質をコー
ドするDNAで組換えられた組換えカイコ核多角体病ウ
イルスの作製 文献2の方法で組換えウイルスを作製した。すなわち、
50mM HEPESバッファー(pH7.1)、0.
28M NaCl、0.7mM Na2HPO4、0.7
mM NaH2PO4からなる2.5mlの溶液に、2.
5mlのDNA混合液(0.25M CaCl2、カイ
コ核多角体病ウイルスBmNPV T3株(文献8)の
DNA10μg、カイコ発現用組換えベクター65μg
を含む)を滴下し、生じた懸濁液0.5mlを5mlの
10%FBSを添加したTC−10培地(文献8)中、
25cm2のフラスコで平面培養した約3×105個のB
mN細胞の培養基に加え、カイコ細胞にDNAを導入し
た。20時間後、新鮮な培地と交換し、さらに7日間培
養後、培養液を回収した。その培養液を遠心して清澄化
した上清を希釈して平面に培養したBM−N細胞の培養
基に添加して8日間培養後、顕微鏡観察によりウイルス
感染が見られ、かつ多角体が形成していない培養基を選
択した(限界希釈法)。
【0039】限界希釈法を7回繰り返し、組換え体ウイ
ルスをクローニングした。ここで作製したイヌIFN-
γ変異体をコードするDNA(配列番号:1、配列番
号:2、配列番号:31、配列番号:32、配列番号:
33、配列番号:34、配列番号:35、配列番号:3
6および配列番号:37)を含む組換えウイルスをそれ
ぞれrBNVγS2(-)、rBNVγS2(-)/-20、
rBNVγS2(-)/-16、rBNVγS2(-)/-1
5、rBNVγS2(-)/-17、rBNVγS2(-)/-
18およびrBNVγS2(-)/-19、rBNVγS2
(-)/-14、、rBNVγS2(-)/-13、イヌIFN
-γをコードするDNA(配列番号:5)を含む組換え
ウイルスをrBNVγとした。
【0040】(4)組換え体ウイルス液の調製 75cm2のフラスコ底面で、15mlの10%FBS
を含むTC−10培地中で平面培養した約3×106
のBmN細胞に、前記(3)でクローニングした、それ
ぞれの組換え体ウイルスを含む培養液それぞれ50μl
づつをBM−N細胞に添加して、27℃で5日間培養
後、培養液を3,000rpmで5分間遠心分離して、
遠心上清を組換え体ウイルス液として得た。それぞれの
ウイルス液を107倍希釈し、その1mlをBM−N細
胞の培養基に添加して27℃で7日間培養を続けると、
顕微鏡観察によって培養基のBM−N細胞にそれぞれウ
イルス感染が認められた。
【0041】実施例2 カイコ生体中でのイヌIFN-
γの活性を有するタンパク質の生産5令2日目のカイコ
幼虫に、実施例1で得た組換え体ウイルスrBNVγS
2(-)のウイルス液をカイコ100頭に2μl/頭づつ
注射し、25℃で4日間、市販の人工飼料(カネボウシ
ルクエレガンス社製)を与えて飼育した。飼育後、45
0mlの抽出液(20mM酢酸ナトリウム、0.01
%塩化ベンザルコニウム、pH:5.5)および450
mlの抽出液(20mM酢酸ナトリウム、2.5mM
EDTA、0.01%塩化ベンザルコニウム、pH:
5.5)にそれぞれ50頭づつのカイコを腹部を切って
添加し、1晩静置した。カイコの死骸を取り除き、3,
000rpmで10分間遠心分離した後、その上清をフ
ィルター(ウルチポア GF PLUS,PALL社製)
でろ過し、イヌIFN-γの活性を有するタンパク質が
生産されたカイコ体液抽出液およびカイコ体液抽出液
を得た。
【0042】また、実施例1(3)で得たすべての組換
えウイルスをそれぞれカイコ幼虫にに注射、上記と同様
の操作法にてそれぞれのイヌIFN-γの活性を有する
タンパク質が生産されたカイコ体液抽出液を得た。
【0043】実施例3 ウエスタンブロッティングによ
るイヌIFN-γの検出 (1)抗イヌIFN-γポリクローナル抗体の作製 実施例1(2)で得られた配列番号:5に示すDNA断
片を鋳型として、2種類のプライマー(配列番号:19
および配列番号:20)を用いて、DNAの変性条件を
94℃,1分、プライマ−のアニ−リング条件を55
℃、2分、プライマ−の伸長条件を72℃、3分の各条
件でPerkin−Elmer Cetus社のDNA
サ−マルサイクラ−を用い、30サイクルでPCRを行
い、約500bpのDNA断片を得た。これを制限酵素
NcoIおよびBamHIで切断し、同様に制限酵素N
coIおよびBamHIで処理した大腸菌発現ベクター
pET8cに連結した。これを用いて大腸菌HB101
を形質転換しプラスミドを抽出、精製後、これを用いて
さらに大腸菌BL21を形質転換した。この形質転換体
を1LのLB培地に植菌し、OD600 が約0.7に
なるまで37℃で培養し、終濃度0.5mMのイソプロ
ピルーβ−D−チオガラクトピラノシド(アマシャムフ
ァルマシアバイオテク(株)製)を加えて、さらに1.
5時間培養した。培養後、培養液を6000gで10分
間遠心後、上清を捨て、50mlの20mMリン酸緩衝
液(pH7)に懸濁し、氷上にてハンディーソニックを
用いて菌体を破砕した。10000gで30分間遠心
し、可溶性画分(上清)を得た。この画分をスルホプロ
ピル担体(アマシャムファルマシアバイオテク(株)
製)を充填したカラムにアプライした後、十分量の20
mMリン酸緩衝液(pH7)でカラムを洗浄し、0.5
〜1MのNaClで溶出して得られた吸着画分をさらに
ブルーセファロース担体(アマシャムファルマシアバイ
オテク(株)製)を充填したカラムにアプライし、同様
にして洗浄後、1〜1.5MのNaClで溶出して得ら
れた吸着画分を得た。得られた画分を透析によって脱塩
して、精製した大腸菌生産イヌIFN-γを得た。ドデ
シル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動
(SDS−PAGE)解析によると、この画分中のイヌ
IFN-γの純度は90%以上であった。この精製した
イヌIFN-γ5mgをウサギ1頭の腹腔に注入し4週
間後、イヌIFN-γに対するポリクローナル抗体が産
生された血清を得た。
【0044】(2)ウエスタンブロッティング 実施例2で得られたそれぞれのカイコ体液中のイヌIF
N-γをウエスタンブロッティング法によって検出し
た。それぞれの体液をアトー(株)製のパジェル中、S
DS−PAGEに供した。その後、アトー(株)製のク
リアブロットメンブランに常法に従ってブロッティング
後、メンブランを、上記(1)で得られた抗イヌIFN
-γポリクローナル抗体を含むウサギ血清を含むブロッ
クエース(大日本製薬(株)製)溶液に6時間反応さ
せ、0.02%Tween20を含むPBSにて3回洗
浄し、さらにペルオキシダーゼ標識ヤギ抗ウサギIgG
(バイオラット(株)製)を含むブロックエース溶液に
6時間反応させ、同様に洗浄した後、コニカ(株)製の
コニカイムノステインHRP1000にて発色を行っ
た。その結果、改変前のイヌIFN-γが生産されたカ
イコ体液は検出されたイヌIFN-γのバンドが5本で
あったのに対して、イヌIFN-γ変異体が生産された
カイコ体液は1ー2本であり、2本のものでは1本がメ
ジャーなバンドであった。
【0045】実施例4 活性測定 実施例2で得られたそれぞれのカイコ体液中のイヌIF
N-γの活性を測定した。活性は抗ウイルス活性測定法
により行った。ウイルスとしてVesicular S
tomatitis Virus,感受性細胞としてイ
ヌMDCK(ATCC CCL−34)を用い、文献1
0のCPE法に従って抗ウイルス活性を測定した結果、
改変前のイヌIFN-γが生産されたカイコ体液は約2
×107希釈単位/mlであったのに対し、イヌIFN-
γ変異体が生産されたカイコ体液はすべて約4×107
希釈単位/mlと遺伝子改変前の約2倍の抗ウイルス活
性が得られた。
【0046】実施例5 各イヌIFNγの活性を有する
タンパク質の大腸菌での生産 実施例1(2)で得られたpBMγS2(-)を鋳型とし
て配列番号:19と配列番号:20に示すプライマーの
組合せ、配列番号:19と配列番号:42に示すプライ
マーの組合せ、配列番号19:と配列番号:43に示す
プライマーの組合せ、配列番号:19と配列番号:44
に示すプライマーの組合せ、配列番号:19と配列番
号:45に示すプライマーの組合せ、配列番号:19と
配列番号:46に示すプライマーの組合せ、配列番号:
19と配列番号:47に示すプライマーの組合せ、配列
番号:19と配列番号:48に示すプライマーの組合
せ、配列番号:19と配列番号:49に示すプライマー
の組合せ、配列番号:19と配列番号:50に示すプラ
イマーの組合せを用いてPCRを行い、それぞれ配列番
号:51、配列番号:52、配列番号:53、配列番
号:54、配列番号:55、配列番号:56、配列番
号:57、配列番号:58、配列番号:59、配列番
号:60に示すDNA断片を得、これらを制限酵素Nc
oIおよびBamHIで切断し、同様に制限酵素Nco
IおよびBamHIで処理した大腸菌発現ベクターpE
T8cに連結し、それぞれpETγS2(-)、pETγ
S2(-)/-20、pETγS2(-)/-16、pETγS
2(-)/-15、pETγS2(-)/-17、pETγS2
(-)/-18、pETγS2(-)/-19、pETγS2
(-)/-14、pETγS2(-)/-13、pETγS2
(-)/-21を作製した。これらの組換えベクターはイヌ
IFNγ変異体のC末端アミノ酸の欠損数がそれぞれ
0、20、16、15、17、18、19、14、1
3、21となるようにコードされた遺伝子配列を有す
る。これらを用いて大腸菌HB101を形質転換しプラ
スミドを抽出、精製後、これを用いてさらに大腸菌BL
21を形質転換した。この形質転換体をそれぞれ10m
LのLB培地に植菌し、OD600 が約0.7になる
まで37℃で培養し、終濃度0.5mMのイソプロピル
ーβ−D−チオガラクトピラノシド(アマシャムファル
マシアバイオテク(株)製)を加えて、さらに1.5時
間培養した。培養後、培養液を6000gで10分間遠
心後、上清を捨て、ベーリンガーマンハイム(株)製の
各プロテアーゼインヒビター(E64(10μg/ml)、Leupept
in(0.5μg/ml)、PMSF(170μg/ml、Aprotinin(50/μg/m
l)、Chymostatin(60/μg/ml)、EDTA-Na2(0.5μg/ml))
を含む50mlの20mMリン酸緩衝液(pH7)に懸
濁し、氷上にてハンディーソニックを用いて菌体を破砕
した。10000gで30分間遠心し、C末端アミノ酸
の欠損数が異なる各イヌIFN-γ変異体が生産された
可溶性画分(上清)を得た。
【0047】実施例6 各イヌIFN-γの活性を有す
るタンパク質の活性比較 実施例5で作製したC末端アミノ酸の欠損数が異なる各
イヌIFN-γの活性を有するタンパク質の活性の検証
を行った。抗ウイルス活性は、C末端アミノ酸の欠損数
が21のもののみ活性が認められなかった。その他の各
イヌIFNγの活性を有するタンパク質はそれぞれ約1
7U/mlの活性が認められた。
【0048】また、免疫増強活性に関しても検証を行っ
た。クラスIIMHCを発現したイヌ乳腺腫瘍組織由来
細胞株FCBR1(文献11)を用いて、上記の各イヌ
IFNγ変異体のクラスIIMHCの発現増強活性を測
定した。6cmディッシュに、105個のFCBR1を
接着させ、これに上記の各培養液100μlを添加し、
5%CO2、37℃の各条件で1晩培養した。培養後、
トリプシンにて細胞を剥離し、1.5mlのミクロ遠心
チューブにて遠心した。これに、10μlのラット抗イ
ヌクラスIIMHCモノクローナル抗体(Strata
gene社製)を添加し、さらに50μlの10%FB
S−ERDFで懸濁し、氷上で1時間静置した。PBS
で洗浄した後、5μlのFITC標識ラビット抗ラット
モノクローナル抗体(セロテック社製)および50μl
の10%FBS−ERDFで懸濁し、氷上で1時間静置
した。PBSで洗浄後、ベクトンディッキンソン(株)
のFACScanにて解析した。その結果、C末端アミ
ノ酸の欠損数が21のもののみ活性が認められず、それ
以外のイヌIFNγの活性を有するタンパク質はすべて
FCBR1上のクラスIIMHCの発現量を約80%上
昇させた。
【0049】これらのことから、イヌIFN-γは、C
末端アミノ酸の欠損数が20まではそれぞれ同等の生物
活性を有し、C末端アミノ酸の欠損数が21以上になる
と活性が喪失することが明らかになった。従って、in
vivoにおいても、C末端アミノ酸の欠損数が20
までは各イヌIFN-γは種々のイヌ疾病に対して、同
等の薬効を示すものと考えられる。
【0050】実施例7 カイコ生体中で生産したイヌI
FN-γの活性を有するタンパク質の精製 (1)初段にCuキレート担体を用いたイヌIFN-γ
の活性を有するタンパク質の精製 実施例2で得られたイヌIFN-γの活性を有するタン
パク質が生産されたカイコ体液抽出液およびカイコ体
液抽出液を用いて、Cuキレート担体による精製を行
った。担体は、Chelating Sepharose Fast Flow(Amers
ham-Pharmacia社製)に1%硫酸銅水溶液を用いて銅イ
オンを結合させ、調製した。精製はまず、カイコ体液抽
出液を用いて検討を行った。抽出液はpH値を5.5
に調製し、Cuキレート担体にアプライした。担体の容
量は抽出液と等量とし、アプライ後の洗浄は20mM酢
酸緩衝液(pH:5.5)にてUV吸収がなくなるまで
十分に行った。カラムに吸着したタンパク質の溶出は塩
化アンモニウムの塩濃度を1Mまで段階的に上げて行
い、またそれでも溶出されないタンパク質は0.1Mの
EDTAおよび0.1NのNaOHを用いて溶出した。
各フラクションのイヌIFN-γの活性を有するタンパ
ク質および夾雑タンパクの検出はウエスタンブロッティ
ング、銀染色およびHPLCにて行った。その結果、低
分子のイヌIFN-γの活性を有するタンパク質は非吸
着画分に銀染色にてイヌIFN-γのバンドがクリアに
検出でき、夾雑タンパク質はほとんど除去されていた。
なお、その他の画分には低分子のイヌIFN-γは全く
検出されなかった。また、高分子のイヌIFN-γは非
吸着画分には検出されず、0.1〜0.6M塩化アンモ
ニウム溶出画分において検出された。なお、この画分に
も夾雑タンパク質はほとんど検出されなかった。さらに
0.1MのEDTAおよび0.1NのNaOHを用いて
溶出した画分に夾雑タンパク質が検出され、ここにはイ
ヌIFN-γの活性を有するタンパク質は全く検出され
なかった。
【0051】次にカイコ体液抽出液を用いて検討を行
った。本体液抽出液中にはEDTAが含有しており、そ
のままCuキレート担体にアプライするとCuイオンが
破荷してしまい精製不能となるため、まず限外ろ過によ
り、EDTAを除いた。限外ろ過はAmicon社のH
OLLOW FIBER CARTRIDGE(TYPE:HOP
10-20)を用い、20mMの酢酸ナトリウム緩衝液(p
H:5.5)に置換した。以降はカイコ体液抽出液と
同様の操作を行って、同様の結果が得られた。
【0052】このように、初段にCuキレート担体を用
いた精製法によって、カイコ由来夾雑タンパクの大部分
を除去し、低分子のイヌIFN-γと高分子のイヌIF
N-γも分画できた。 (2)Qセファロース担体を用いたイヌIFN-γの活
性を有するタンパク質の精製 上記(1)の2種類の初段Cuキレート精製液を用いて
2段目Qセファロース担体による低分子イヌIFN-γ
の分画を検討した。精製はpH:9で行った。初段Cu
キレート精製液をそれぞれ限外ろ過にて20mMのグリ
シンNaOH緩衝液(pH:9)に置換し、担体にアプ
ライした。限外ろ過はADVANTEC社のFILTE
R HOLDER(MODEL: UHP-43KおよびUHP-76K)(装
置)およびAmicon社のYM10(膜)をそれぞれ
用いた。窒素ボンベの圧力は1.2〜1.5kg/cm2で行った。
なお、各操作は装置を氷冷しながら行った。溶出はNa
Clの濃度を1Mまで5mM刻みで行った。その結果、
カイコ体液抽出液由来の初段Cuキレート精製液およ
びカイコ体液抽出液由来の初段Cuキレート精製液ど
ちらの精製液を用いた場合も、20〜25mM(画分
),30〜35mM(画分)および40〜50mM
(画分)の各NaCl濃度の溶出画分でイヌIFN-
γが溶出された(ウエスタンブロッティング)。なおそ
の他の溶出画分およびアルカリ洗浄画分ではイヌIFN
γは検出されなかった。
【0053】イヌIFN-γが溶出されたそれぞれの画
分をHPLCで解析した。HPLC解析は、装置はHP
LCシステム(島津LC−10AD)を、カラムはコス
モシール5C18 AR-300(ナカライテスク社製)
を用いた。移動相Aに0.05%トリフルオロ酢酸水溶
液を用い、移動相Bには0.05%トリフルオロ酢酸を
含む100%アセトニトリルを用いた。流速は1ml/min
とし、ピークの検出は210nmで行った。溶出は移動
相Bのリニアグラジェント(0分:40%移動相B、3
0分:46%移動相B)で行った。その結果、画分に
おけるメインピークはリテンションタイムが約28分、
画分におけるメインピークはリテンションタイムが約
28分と約29分、画分におけるメインピ ークはリ
テンションタイムが約29分であった。それぞれのメイ
ンピークを分取し、構造解析を行った。分子量はTOF-MA
Sによって測定し、C末端アミノ酸配列は臭化シアン分
解後、ペプチドマッピングを行い、得られたC末端ペプ
チドをエドマン分解法によって決定した。その結果、画
分におけるリテンションタイムが約28分のメインピ
ークはC末端が16アミノ酸残基欠損したイヌIFNγ
/16ーであり、画分におけるリテンションタイムが
約28分のメインピークと約29分のメインピークはそ
れぞれC末端が16アミノ酸残基欠損したイヌIFNγ
/16ーとC末端が17アミノ酸残基欠損したイヌIF
Nγ/17ーであった。また、画分におけるリテンシ
ョンタイムが約29分のメインピークはC末端が17ア
ミノ酸残基欠損したイヌIFNγ/17ーであった。な
お、ここで検出されたイヌIFNγ/16ーとイヌIF
Nγ/17ーのそれぞれの分子量は前者が約14850であ
り、後者が約14950であった。さらに、画分〜をゲ
ルろ過により分子量解析した結果、それぞれ溶出された
イヌIFNγの活性を有するタンパク質がダイマー構造
で存在することが判った。従って、Qセファロース担体
での3つの溶出画分におけるメインのイヌIFNγの活
性を有するタンパク質は、画分がイヌIFN-γ/1
6ーのホモ2量体、画分がイヌIFN-γ/16ーと
イヌIFN-γ/17ーのヘテロ2量体、画分がイヌ
IFN-γ/17ーのホモ2量体から成ることが判明し
た。画分および画分からはそれぞれイヌIFN-γ
/16ー、イヌIFN-γ/17ーのイヌIFN-γの活
性を有するタンパク質が高純度で精製できる。しかしな
がら、画分においてはヘテロ2量体からなるイヌIF
Nγの活性を有するタンパク質がメイン成分であるた
め、HPLCの検定で高純度に精製することは困難であ
る。
【0054】また、上記(1)で得られたカイコ体液抽
出液由来の初段Cuキレート精製液と、カイコ体液抽
出液由来の初段Cuキレート精製液とでは画分と画
分における、それぞれのイヌIFNγ/16ーとイヌ
IFNγ/17ーの量が異なり、カイコ体液抽出液由
来のものではイヌIFNγ/17ーの量が非常に多く、
一方、カイコ体液抽出液由来のものではイヌIFNγ
/16ーの量が非常に多い。カイコ体液抽出液中のED
TAの有無によって、イヌIFNγの活性を有するタン
パク質のC末端構造の分解の受け方が異なることが判明
した。 (3)ブルー担体を用いたイヌIFN-γの活性を有す
るタンパク質の精製 さらに、(2)で得られた各溶出画分(カイコ体液抽出
液由来のQセファロース担体による溶出画分および
カイコ体液抽出液由来のQセファロース担体による溶
出画分)をそれぞれ別々にブルー担体に供し、イヌI
FN-γの活性を有するタンパク質の単一化を検討し
た。担体へのアプライはpH:5.5で行った。各溶出
画分をそれぞれ限外ろ過にて20mMの酢酸ナトリウム
緩衝液(pH:5.5)に置換し、担体にアプライし
た。限外ろ過はADVANTEC社のFILTER H
OLDER(MODEL: UHP-43KおよびUHP-76K)(装置)
およびAmicon社のYM10(膜)をそれぞれ用い
た。窒素ボンベの圧力は1.2〜1.5kg/cm2で行った。な
お、各操作は装置を氷冷しながら行った。溶出は20m
Mのリン酸ナトリウム緩衝液(pH:7.1)中でのN
aClの濃度を0〜1Mまで段階的に上げて行った。そ
の結果、カイコ体液抽出液由来のQセファロース担体
による溶出画分では、NaClの濃度が0Mで、カイ
コ体液抽出液由来のQセファロース担体による溶出画
分では、NaClの濃度が50mM〜150mMでそ
れぞれイヌIFN-γ/17ーのホモ2量体、イヌIF
N-γ/16ーのホモ2量体がHPLC解析でそれぞれ
96%の純度で精製できた。 (4)不純物の同定 (3)で得られた、イヌIFN-γ/17ーのホモ2量
体およびイヌIFN-γ/16ーのホモ2量体それぞれ
の精製液中に含まれる不純物を解析した。解析は、HP
LCで検出される不純物のピークをそれぞれ分取し、そ
れぞれを4M尿素存在下で、Achromobacter Protease I
で37℃、16時間消化後、逆相カラム(ODS 80
Ts.、TOSOH社製)を用いてHPLC解析を行っ
た。移動相Aに0.05%トリフルオロ酢酸水溶液を用
い、移動相Bには0.05%トリフルオロ酢酸を含む6
0%アセトニトリルを用いた。流速は0.8ml/mi
nとし、ピークの検出は214nmで行った。溶出は移
動相Bのリニアグラジェント(0〜5分:0%移動相
B、5〜55分:90%移動相B)で行った。なお、温
度は50℃で行った。その結果検出されたペプチド断片
をすべて分取し、構造解析を行った。分子量はTOF-MAS
によって測定し、アミノ酸配列はエドマン分解法によっ
て決定した。解析の結果、不純物は全てイヌIFN-γ
の活性を有するタンパク質であり、C末端が15アミノ
酸残基欠損したイヌIFN-γ/15ー、イヌIFN-γ
/16ーのN末端側のメチオニンが酸化されたイヌIF
N-γ/16ー(MetSOX)、およびイヌIFN-γ/17
ーのN末端側のメチオニンが酸化されたイヌIFN-γ
/17ー(MetSOX)が含まれることが分かった。 (5)界面活性剤の添加による精製収率向上効果 イヌIFN-γの活性を有するタンパク質の精製過程に
おいて、担体を詰めるカラム、チューブ、受ける容器、
限外ろ過装置および膜などへイヌIFN-γの活性を有
するタンパク質が吸着し、そのため精製収率が低下する
可能性がある。日本薬局方に記載されている界面活性剤
であるポリオキシエチレン硬化ヒマシ油を精製工程に添
加し、精製収率の向上効果を検討した。0.01%のポ
リオキシエチレン硬化ヒマシ油を精製の全工程に添加
し、上記(1)〜(3)と同様の条件でカイコ生体中で
生産したイヌIFN-γの活性を有するタンパク質を精
製した結果、各精製ステップでの精製挙動に全く変化は
認められず、限外ろ過において、回収率が添加前の約9
0%から約100%に向上し、さらに各担体での精製収
率がそれぞれ5〜30%向上した。
【0055】実施例8 イヌIFN-γの活性を有する
タンパク質製剤の調製 実施例7で得られたイヌIFN-γ/17ーのホモ2量
体およびイヌIFN-γ/16ーのホモ2量体それぞれ
の精製溶液に、注射用生理食塩水、アラビアゴム(三栄
薬品貿易(株))、ポリエチレングリコール、グリシン
を加えて、アラビアゴム終濃度1%、ポリエチレングリ
コール終濃度0.5%、グリシン10mMに調製した。
さらに、ポジダイン(ポール(株))で処理してパイロ
ジェンを除去した後、250℃で2時間乾熱滅菌したガ
ラスバイアルに1mlずつ分注した。その後、無菌的に
凍結乾燥することによって、1バイアル中に0.1MU
から2.5MUのイヌIFN-γを含むイヌIFN-γ製
剤を得た。このイヌIFN-γ製剤は、室温暗条件下で
安定であり、また、蒸留水または生理的食塩水によって
良好に溶解した。
【0056】実施例9 イヌIFN-γの活性を有する
タンパク質によるイヌ皮膚病の治療 実施例8で得られたイヌIFN-γの活性を有するタン
パク質の製剤を用いて、イヌ皮膚病に対する治療効果を
試験した。イヌIFN-γの活性を有するタンパク質の
製剤を1mlの注射用生理的食塩水で溶解後、皮下注射
により投与し、皮膚疾患および副作用について臨床症状
を観察することによって治療効果を判定した。各投与量
の製剤溶液を3〜7回、皮下注射にて投与した臨床結果
を表1に示す。また、0.01MU/kgの投与量で連
日5回皮下注射にて投与し、2週間後の臨床結果を表2
に示す。投与の結果、脂漏性皮膚炎、膿皮症、アカント
ーシス、真菌性皮膚炎、アトピー性皮膚炎、天疱瘡、ウ
ジ寄生性皮膚炎、エストロゲン反応性皮膚炎、アレルギ
ー性皮膚炎、マラセチア皮膚炎、慢性湿疹、膿疱疹、表
皮異形成に対して驚くべき治療効果が認められた。な
お、すべての症例において臨床上問題となる副作用は認
められなかった。
【0057】
【表1】
【0058】
【表2】
【0059】
【表3】
【0060】
【発明の効果】本発明によれば、インターフェロンーγ
の活性を有するタンパク質を高純度化でき、以ってイン
ターフェロンーγを医薬品として製造することが期待で
きる。
【0061】参考文献 1.Adolfら:J.Interferon Re
s.7,173−183(1987). 2.Devosら:J.Interferon Re
s.12,95−102(1992). 3.Rinderknechtら:J.Biol.Ch
em.259,6790−6797(1984). 4.Chirgwinら:Biochemistry、
18、5294(1979). 5.Bergerら:Biochemistry,1
8,5143(1979). 6.Gublerら:Gene.25,236−269
(1983). 7.Okayamaら:Mol.Cell.Bio
l.,2,161,(1982) & 3,280,
(1983). 8.T.Horiuchiら:Agic.Biol.C
hem.,51,1573−1580,(1987). 9.Molecular Cloning.Cold
Spring Harbor Loboratory.
New York.1982. 10.日本生化学会編:続生化学実験講座第5巻、(1
986).P250−256、東京化学同人. 11.Okanoら:J.Interferon an
d CytokineRes.17,713−718
(1997).
【0062】
【配列表】 SEQUENCE LISTING <110> 東レ株式会社 <120> イヌインターフェロン−γの活性を有するタンパク質の高純度製造法、 イヌインターフェロン−γの活性を有する高純度タンパク質、イヌ疾病の治療剤 およびイヌ疾病の治療方法 <130> 51E15601 <160> 60 <210> 1 <211> 501 <212> DNA PRT <213> dog <220> <221> CDS <222> (1)...(498) <220> <221> mat#peptide <222> (70)...(498) <400> 1 atg aat tat aca agc tat atc tta gct ttt cag ctt tgc gtg att ttg 48 Met Asn Tyr Thr Ser Tyr Ile Leu Ala Phe Gln Leu Cys Val Ile Leu tgt tct tct ggc tgt aac tgt cag gcc atg ttt ttt aaa gaa ata gaa 96 Cys Ser Ser Gly Cys Asn Cys Gln Ala Met Phe Phe Lys Glu Ile Glu aac cta aag gaa tat ttt cag gca agt aat cca gat gta tcg gac ggt 144 Asn Leu Lys Glu Tyr Phe Gln Ala Ser Asn Pro Asp Val Ser Asp Gly ggg tct ctt ttc gta gat att ttg aag aaa tgg aga gag gag agt gac 192 Gly Ser Leu Phe Val Asp Ile Leu Lys Lys trp Arg Glu Glu Ser Asp aaa aca atc att cag agc caa att gtc tct ttc tac ttg aaa ctg ttt 240 Lys Thr Ile Ile Gln Ser Gln Ile Val Ser Phe Tyr Leu Lys Leu Phe gac aac ttt aaa gat aac cag atc att caa agg agc atg gat acc atc 288 Asp Asn Phe Lys Asp Asn Gln Ile Ile Gln Arg Ser Met Asp Thr Ile aag gaa gac atg ctt ggc aag ttc tta cag tca tcc acc agt aag agg 336 Lys Glu Asp Met Leu Gly Lys Phe Leu Gln Ser Ser Thr Ser Lys Arg gag gac ttc ctt aag ctg att caa att cct gtg aac gat ctg cag gtc 384 Glu Asp Phe Leu Lys Leu Ile Gln Ile Pro Val Asn Asp Leu Gln Val cag cgc aag gcg ata aat gaa ctc atc aaa gtg atg aat gat ctc tca 432 Gln Arg Lys Ala Ile Asn Glu Leu Ile Lys Val Met Asn Asp Leu Ser cca aga tcc aac cta agg aag cgg aaa agg agt cag aat ctg ttt cga 480 Pro Arg Ser Asn Leu Arg Lys Arg Lys Arg Ser Gln Asn Leu Phe Arg ggc cgc aga gca tcg aaa taa 501 Gly Arg Arg Ala Ser Lys *** <210> 2 <211> 441 <212> DNA PRT <213> dog <220> <221> CDS <222> (1)...(438) <220> <221> mat#peptide <222> (70)...(438) <400> 2 atg aat tat aca agc tat atc tta gct ttt cag ctt tgc gtg att ttg 48 Met Asn Tyr Thr Ser Tyr Ile Leu Ala Phe Gln Leu Cys Val Ile Leu tgt tct tct ggc tgt aac tgt cag gcc atg ttt ttt aaa gaa ata gaa 96 Cys Ser Ser Gly Cys Asn Cys Gln Ala Met Phe Phe Lys Glu Ile Glu aac cta aag gaa tat ttt cag gca agt aat cca gat gta tcg gac ggt 144 Asn Leu Lys Glu Tyr Phe Gln Ala Ser Asn Pro Asp Val Ser Asp Gly ggg tct ctt ttc gta gat att ttg aag aaa tgg aga gag gag agt gac 192 Gly Ser Leu Phe Val Asp Ile Leu Lys Lys Trp Arg Glu Glu Ser Asp aaa aca atc att cag agc caa att gtc tct ttc tac ttg aaa ctg ttt 240 Lys Thr Ile Ile Gln Ser Gln Ile Val Ser Phe Tyr Leu Lys Leu Phe gac aac ttt aaa gat aac cag atc att caa agg agc atg gat acc atc 288 Asp Asn Phe Lys Asp Asn Gln Ile Ile Gln Arg Ser Met Asp Thr Ile aag gaa gac atg ctt ggc aag ttc tta cag tca tcc acc agt aag agg 336 Lys Glu Asp Met Leu Gly Lys Phe Leu Gln Ser Ser Thr Ser Lys Arg gag gac ttc ctt aag ctg att caa att cct gtg aac gat ctg cag gtc 384 Glu Asp Phe Leu Lys Leu Ile Gln Ile Pro Val Asn Asp Leu Gln Val cag cgc aag gcg ata aat gaa ctc atc aaa gtg atg aat gat ctc tca 432 Gln Arg Lys Ala Ile Asn Glu Leu Ile Lys Val Met Asn Asp Leu Ser cca aga taa 441 Pro Arg *** <210> 3 <211> 35 <212> DNA <213> Artificial Sequence <400> 3 gcagatctat gaattataca agctatatct tagct 35 <210> 4 <211> 35 <212> DNA <213> Artificial Sequence <400> 4 gcgaattctt atttcgatgc tctgcggcct cgaaa 35 <210> 5 <211> 517 <212> DNA <213> dog <400> 5 gcagatctat gaattataca agctatatct tagcttttca gctttgcgtg attttgtgtt 60 cttctggctg taactgtcag gccatgtttt ttaaagaaat agaaaaccta aaggaatatt 120 ttcaggcaag taatccagat gtatcggacg gtgggtctct tttcgtagat attttgaaga 180 aatggagaga ggagagtgac aaaacaatca ttcagagcca aattgtctct ttctacttga 240 aactgtttga caactttaaa gataaccaga tcattcaaag gagcatggat accatcaagg 300 aagacatgct tggcaagttc ttacagtcat ccaccagtaa gagggaggac ttccttaagc 360 tgattcaaat tcctgtgaac gatctgcagg tccagcgcaa ggcgataaat gaactcatca 420 aagtgatgaa tgatctctca ccaagatcca acctaaggaa gcggaaaagg agtcagaatc 480 tgtttcgagg ccgcagagca tcgaaataag aattcgc 517 <210> 6 <211> 30 <212> DNA <213> Artificial Sequence <400> 6 ataggatcca tgaattatac aagctatatc 30 <210> 7 <211> 33 <212> DNA <213> Artificial Sequence <400> 7 ctggatatct ggattacttg cctgaaaata ttc 33 <210> 8 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <400> 8 ccatacgtat cggacggtgg gtctctt 27 <210> 9 <211> 36 <212> DNA <213> Artificial Sequence <400> 9 ggtggtcgac tgtaagaact tgccaagcat gtcttc 36 <210> 10 <211> 36 <212> DNA <213> Artificial Sequence <400> 10 ccgatatcca ccagtaagag ggaggacttc cttaag 36 <210> 11 <211> 33 <212> DNA <213> Artificial Sequence <400> 11 ctcgaattct tatttcgatg ctctgcggcc tcg 33 <210> 12 <211> 147 <212> DNA <213> dog <400> 12 ataggatcca tgaattatac aagctatatc ttagcttttc agctttgcgt gattttgtgt 60 tcttctggct gtaactgtca ggccatgttt tttaaagaaa tagaaaacct aaaggaatat 120 tttcaggcaa gtaatccaga tatccag 147 <210> 13 <211> 201 <212> DNA <213> dog <400> 13 ccatacgtat cggacggtgg gtctcttttc gtagatattt tgaagaaatg gagagaggag 60 agtgacaaaa caatcattca gagccaaatt gtctctttct acttgaaact gtttgacaac 120 tttaaagata accagatcat tcaaaggagc atggatacca tcaaggaaga catgcttggc 180 aagttcttac agtcgaccac c 201 <210> 14 <211> 195 <212> DNA <213> dog <400> 14 ccgatatcca ccagtaagag ggaggacttc cttaagctga ttcaaattcc tgtgaacgat 60 ctgcaggtcc agcgcaaggc gataaatgaa ctcatcaaag tgatgaatga tctctcacca 120 agatccaacc taaggaagcg gaaaaggagt cagaatctgt ttcgaggccg cagagcatcg 180 aaataagaat tcgag 195 <210> 15 <211> 517 <212> DNA <213> dog <400> 15 gcagatctat gaattataca agctatatct tagcttttca gctttgcgtg attttgtgtt 60 cttctggctg taactgtcag gccatgtttt ttaaagaaat agaaaaccta aaggaatatt 120 ttaatgcaag taatccagat gtatcggacg gtgggtctct tttcgtagat attttgaaga 180 aatggagaga ggagagtgac aaaacaatca ttcagagcca aattgtctct ttctacttga 240 aactgtttga caactttaaa gataaccaga tcattcaaag gagcatggat accatcaagg 300 aagacatgct tggcaagttc ttaaatagca gcaccagtaa gagggaggac ttccttaagc 360 tgattcaaat tcctgtgaac gatctgcagg tccagcgcaa ggcgataaat gaactcatca 420 aagtgatgaa tgatctctca ccaagatcca acctaaggaa gcggaaaagg agtcagaatc 480 tgtttcgagg ccgcagagca tcgaaataag aattcgc 517 <210> 16 <211> 42 <212> DNA <213> Artificial Sequence <400> 16 gcggaattct tatcttggtg agagatcatt 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───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) A61P 35/00 A61P 43/00 117 43/00 117 C12N 1/21 // C12N 1/21 C12P 21/02 C 5/10 (C12N 1/21 15/09 ZNA C12R 1:19) C12P 21/02 1:91) (C12N 1/21 A61K 37/66 D C12R 1:19) C12N 5/00 B (C12N 5/10 15/00 ZNAA C12R 1:91) C12R 1:91) Fターム(参考) 4B024 AA01 AA11 BA25 CA04 CA20 DA02 DA06 EA02 EA04 GA11 GA18 GA19 HA03 4B064 AG12 CA02 CA10 CA19 CC01 CC24 CD09 CE02 CE06 CE09 CE10 CE11 CE12 CE20 DA01 DA13 4B065 AA26X AA90X AA90Y AA95X AB01 AC14 BA02 BB01 BC01 BC03 BC50 BD14 BD16 BD17 BD18 BD50 CA24 CA44 CA46 4C084 AA02 BA22 BA23 DA24 MA66 NA20 ZA891 ZA892 ZB261 ZB262 ZB311 ZB312 ZB331 ZB332 ZC611 ZC612 4H045 AA20 BA10 BA53 CA40 DA18 EA20 EA50 GA01 GA10 GA21 GA23 GA26

Claims (10)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 インターフェロン−γの活性を有するタ
    ンパク質を、金属をキレート結合させた担体、イオン交
    換担体および色素担体から選ばれる少なくとも1種の担
    体と接触させることを特徴とするインターフェロン−γ
    の活性を有するタンパク質の高純度製造法。
  2. 【請求項2】 インターフェロン−γの活性を有するタ
    ンパク質を、金属をキレート結合させた担体、イオン交
    換担体および色素担体に接触させることを特徴とする請
    求項1に記載のインターフェロン−γの活性を有するタ
    ンパク質の高純度製造法。
  3. 【請求項3】 インターフェロン−γの活性を有するタ
    ンパク質を含む溶液を、金属をキレート結合させた担体
    に接触させ、担体への非吸着物を回収することを特徴と
    する請求項1または2記載のインターフェロン−γの活
    性を有するタンパク質の高純度製造法。
  4. 【請求項4】 イオン交換担体がアニオン交換担体であ
    ることを特徴とする請求項1〜3のいずれか1項記載の
    インターフェロン−γの活性を有するタンパク質の高純
    度製造法。
  5. 【請求項5】インターフェロン−γの活性を有するタン
    パク質の溶液中に界面活性剤を添加して担体に接触させ
    ることを特徴とする請求項1から4のいずれか1項記載
    のインターフェロン−γの活性を有するタンパク質の高
    純度製造法。
  6. 【請求項6】界面活性剤がポリオキシエチレン硬化ヒマ
    シ油であることを特徴とする請求項5に記載のインター
    フェロン−γの活性を有するタンパク質の高純度製造
    法。
  7. 【請求項7】インターフェロン−γの活性を有するタン
    パク質の純度が90%以上であることを特徴とするイヌ
    インターフェロン−γの活性を有する高純度タンパク
    質。
  8. 【請求項8】請求項1から6のいずれか1項記載の方法
    で製造されたイヌインターフェロン−γの活性を有する
    タンパク質または請求項7に記載のイヌインターフェロ
    ン−γの活性を有するタンパク質を含んでなるイヌ疾病
    の治療剤。
  9. 【請求項9】イヌ疾病の治療剤が抗ウイルス治療剤、腫
    瘍治療剤、感染症治療剤または皮膚病治療剤から選ばれ
    る少なくとも1つの治療剤であることを特徴とする請求
    項8に記載のイヌ疾病の治療剤。
  10. 【請求項10】請求項8または9に記載のイヌ疾病の治
    療剤をイヌに注射投与することを特徴とするイヌ疾病の
    治療方法。
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