JP2001029074A - 膜結合型c1インアクチベーター - Google Patents
膜結合型c1インアクチベーターInfo
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Abstract
起こす補体活性化経路を効果的に抑制することができ、
且つ移植組織を損傷する補体活性化経路の中間体の発生
を完全に阻害し得る膜結合型補体制御因子を提供するこ
とを目的とする。 【解決手段】この目的を達成するために、本発明は、水
溶性C1インアクチベーターの機能的ドメインを含有する
タンパク質と、該タンパク質の末端及び/又は内部に付
加されたアンカー分子とを具備する膜結合型C1インアク
チベーターを提供する。
Description
細胞移植時に、ドナーに対して超急性拒絶反応を引き起
こす補体活性化経路の初発反応を抑制する膜結合型補体
制御因子、該膜結合型補体制御因子をコードする核酸分
子、及び該核酸分子を担持するベクターに関する。本発
明は、このようなベクターが導入された細胞、組織、及
び臓器にも関する。さらに、本発明は、前記膜結合型補
体制御因子が遺伝子導入されたトランスジェニック動
物、とりわけトランスジェニックブタに関する。
なる極めて有用な根治的療法であり、近年、臓器の機能
不全又は機能低下を回復するために、腎移植、角膜移
植、肝移植、及び心臓移植等の臓器移植が盛んに実施さ
れるようになっている。
題は拒絶反応であり、現在最も多く実施されている臓器
移植の一つであるヒトからヒトへの腎移植においても、
例えば血液型が一致しない場合には、移植後数分以内に
超急性拒絶反応が起き、移植臓器周辺に重篤なびまん性
の血栓症が生じるという問題を有している。同種移植
(すなわちドナーとレシピエントが同一の種に属する場
合)における超急性拒絶反応は、移植片の血液型糖鎖抗
原と、レシピエント中に予め自然抗体として存在する抗
血液型抗体とからなる免疫複合体が、C1(補体第一成分)
と結合して補体活性化経路を活性化することによって引
き起こされることが明らかとなっている。また、異種移
植(すなわちドナーとレシピエントが異なる種に属する
場合)では、レシピエントには存在しない全ての物質が
異種移植抗原となり得るので、拒絶反応の問題はさらに
深刻なものとなり、多数の臓器を提供することができる
異種移植を臨床に応用する上で著しい妨げとなってい
る。
決されなければならない課題は、移植後即時に起こる超
急性拒絶反応を抑えることであるが、前述のように超急
性拒絶反応は、補体活性化経路の活性化から生じるの
で、該経路の抑制物質を移植臓器に予め導入しておけ
ば、超急性拒絶反応は抑制されることになる。
ト膜結合型補体制御因子であるCD46(メンブランコファ
クタープロテイン;MCP)、CD55(崩壊促進因子;DA
F)、及びCD59(HRF20)等を遺伝子導入したトランスジ
ェニックブタが数社で生産され、異種移植に供されてい
る。ここで「補体制御因子」とは、生体内で補体系活性
化経路を制御しているタンパク質であり、上述した3つ
の補体制御因子を含む殆ど全ての補体制御因子は、補体
活性を減弱させる作用を示すので、これらの因子を導入
したトランスジェニック動物の臓器を移植すれば、レシ
ピエントの補体活性化経路が抑制される。
におけるCD46、CD55、及びCD59の作用点を説明する。ま
ず、CD46の作用点は、図1で(3)が付されている反応で
あり、CD46はI因子のコファクターとしてC3b及びC4bを
不活性型に変換する作用を示す。このうち、C3bは、
第二経路のC3転換酵素(図中のYC3bBbP)の活性化、C
3転換酵素(図中YC4b2a及びYC3bBbP)のC5転換酵素(図
中YC4b2a3b)への転換、血液細胞の補体レセプターCR
1への結合など補体活性化経路で中心的役割を果たす分
子である。一方、CD55の作用点は、図1で(2)が付され
ている反応であり、CD55は古典経路中のC3転換酵素C4b2
aからのC2a*の解離を促進するとともに、第二経路のC3
転換酵素YC3bBbPのBbの解離をも促進する。CD59の作用
点は、図1で(4)が付されている反応であり、CD59は前
二者とは異なりC3転換酵素には作用せず、補体活性化経
路の最後のステップであるC9からZC5b-9への転換を阻害
する。
上のような作用機序で補体活性化経路の各段階を阻害す
ることができ、且つ膜結合型であるために拒絶反応部位
での密度が高く保たれるので補体活性化経路の抑制に一
定の効果を示し得る。
因子には、それぞれ以下のような問題点が存在する。
で高発現のものが得にくく、また他の2分子に比べて、
膜上での補体抑制能力が劣るという欠点を有する。
るため、途中のC4、C3、及びC5が活性化されC4a、C3a、
及びC5a等のアナフィラトキシンによって移植片の損傷
をもたらすことが判明している。
も、C4までの反応は起こるため、C4aが発生したり、移
植片にC4bが沈着するという問題を有している。
鑑みてなされたものであり、補体活性化経路を効果的に
抑制することができ、且つ移植組織を損傷せしめる補体
活性化経路の中間体の発生を完全に阻害し得る膜結合型
補体制御因子を提供することを目的とする。
に、本発明は、水溶性C1インアクチベーターの機能的ド
メインを含有するタンパク質と、該タンパク質の末端及
び/又は内部に付加されたアンカー分子とを具備する膜
結合型C1インアクチベーターを提供する。
C1インアクチベーターに、アンカー分子を付加すること
によって人為的に作出した膜結合型C1インアクチベータ
ーを提供する。
ー(以下C1-INHと略記する)」とは、免疫複合体中の免
疫グロブリンと結合することによって活性化されたC1の
セリンプロテアーゼ活性を阻害するタンパク質を意味す
る。「水溶性C1-INH」とは、血清中に内在するC1-INHを
意味し、「血清型C1-INH」と同義である。
は、該経路の初発反応なので、C1-INHを用いれば、該経
路の活性化を効果的に抑制することができ、且つ該経路
の途上で発生し得る有害な中間体も一切発生しない。
は厳格でないので、本発明の膜結合型C1-INHを作出する
ために使用する水溶性C1-INHは、臓器又は組織を移植す
べきレシピエントと同一種のものである必要はないが、
同一種又は近縁種であることが好ましい。従って、レシ
ピエントがヒトであるときには、マウスの水溶性C1-INH
を用いることもできるが、ヒトの水溶性C1-INHを使用す
ることが好ましい。ヒトの水溶性C1-INHのアミノ酸配列
(配列番号1)と塩基配列(配列番号2)及びマウスの
C1-INHのアミノ酸配列(配列番号3)及び塩基配列(配
列番号4)は、下記の配列表に記載されている。
以上のアミノ酸がペプチド結合によって連結されたもの
及びを意味し、単純タンパク質のみならず、例えば糖、
脂質、核酸等のアミノ酸以外の構成成分を含有する複合
タンパク質も含む。
パク質の機能に直接的且つ不可欠な役割を担うタンパク
質中の領域を意味する。それ故、C1-INHの機能的ドメイ
ンを含有するタンパク質を作出し、ドナーの臓器又は組
織に発現させれば、補体活性化経路の抑制が達成され
る。図2に示されているように、ヒトC1-INHの活性中心
はC末端部に存在するアミノ酸配列(444位のアルギニン
と445位のトレオニン(図2に示されているCI-INHは、2
2のアミノ酸からなるシグナルペプチドが切断されたも
のなので、図2における1位は、配列番号2のC1-INHの2
3位に相当する))であり、該活性中心は、C1のサブユ
ニットであるC1s等との結合で開裂することが明らかと
なっている。該開裂によって、前記444位のアルギニン
は、C1s等のC末端側のB鎖上の活性化されたセリンと結
合する。また、101位と406位のシステイン、108位と183
位のシステインは、ジスルフィド結合を形成して、C1-I
NHの立体構造の保持に関与している。以上の構造から、
ヒトC1-INHがその機能を発揮するためには、少なくとも
101〜445位のアミノ酸配列が不可欠であり、該部分が機
能的ドメインであると推定される。同様の構造は、マウ
スのC1-INHでも保存されており、マウスのC1-INHの活性
中心のアミノ酸配列は448位のアルギニンと449位のセリ
ンであり、ヒトC1-INHの101位と406位のシステインはマ
ウスのC1-INHの106位と410位に対応し、ヒトのC1-INHの
108位と183位のシステインは113位と188位に対応してい
る。従って、ヒトのC1-INHから、ヒト以外の哺乳類のC1
-INHの機能的ドメインを推定することができる。
該機能的ドメインの1若しくは数個のアミノ酸を欠失、
置換若しくは付加させ、且つ補体活性化経路の抑制機能
を保持したアミノ酸配列を使用してもよい。なお、補体
活性化経路の抑制機能を「保持した」とは、臓器移植に
実用し得る程度の補体活性化経路の抑制機能を有してい
ることを意味するものとする。
関与しているシステインに修飾を加えず、活性中心の
アミノ酸は、塩基性アミノ酸と、非荷電極性アミノ酸又
は非極性アミノ酸(好ましい非荷電極性アミノ酸は、天
然のヒト及びマウスのC1-INHの活性中心を構成するトレ
オニンとセリン、並びに同じく水酸基を有するチロシン
であり、好ましい非極性アミノ酸は、トレオニン及びセ
リンと同様の大きさを有するアラニンとグリシンであ
る)であることを要する。
ン、アルギニン、及びヒスチジン、「非荷電性極性アミ
ノ酸」には、セリン、トレオニン、チロシン、アスパラ
ギン、及びグルタミン、「非極性アミノ酸」には、アラ
ニン、グリシン、バリン、イソロイシン、プロリン、フ
ェニルアラニン、メチオニン、トリプトファン、及びシ
ステインが含まれる。
組み込まれた状態、すなわち膜結合型にするための分子
を意味し、主に疎水性アミノ酸残基の配列からなる膜
貫通部分、ミリスチン酸、パルミチン酸等の脂肪酸、
グリコシルホスファチジルイノシトール(以下GPIと称
する)等のリン脂質、プレニル基、ファルネシル基等
のテルペン類、直鎖及び分枝炭化水素鎖等の天然の膜
結合型タンパク質中に存在する周知の分子又はそれらの
組み合わせであり得るが、これらに限定されない。アン
カー分子として膜貫通タンパク質の膜貫通部分を用いる
場合には、補体制御因子以外の膜貫通部分、すなわちI
型〜IV型の膜貫通タンパク質に含有される膜貫通部分も
使用し得る。膜貫通タンパク質の膜貫通部分は、C1-INH
のcDNAに連結してトランスジェニックすることが可能な
ので、特に好ましいアンカー分子である。
又はその機能的ドメインに、アンカー分子を付加するこ
とによって作成される。水溶性C1-INHには、合成的にア
ンカー分子を付加してもよいが、操作の容易性及び膜上
への発現効率の見地から、水溶性C1-INHの遺伝子と、ア
ンカー分子をコードするヌクレオチド配列とを具備する
遺伝子構築物を作成し、該構築物を生体内で発現させる
ことによって付加せしめることが極めて好ましい。非タ
ンパク質アンカー分子を付加する場合には、小胞体又は
細胞質においてアンカー分子を付加するシグナルとして
作用するアミノ酸配列をコードするヌクレオチドを水溶
性C1-INH遺伝子に連結すればよい。脂肪酸、テルペン
類、GPI等を付加するシグナルとして作用するアミノ酸
配列は公知である。例えば、GPIを付加するシグナルと
して作用するアミノ酸配列は公知であり、該アミノ酸配
列は小胞体において切断されて除去される。CD55のGPI
付加シグナルの核酸配列(配列番号5)及びアミノ酸配
列(配列番号6)を配列表に示す。なお、アンカー分子
は、ドナーの種と同一の種から由来したものでなくても
よい。
させるためには、水溶性C1-INHのN末端には、シグナル
ペプチドを結合させねばならない。
水溶性C1-INH遺伝子に連結して、移植臓器又は組織に導
入すれば、移植臓器又は組織中の細胞膜上に、アンカー
分子としてGPIを有する膜結合型C1-INHを発現させるこ
とが可能となる。
るためには、本発明の膜結合型C1-INHは、少なくともそ
の機能的ドメインが細胞外に露出するように作出すべき
であり、水溶性C1-INHのC末端又はその近傍にGPIを付加
する態様が好ましい。
インアクチベーターと同等の補体活性化経路抑制機能を
有する膜結合型C1インアクチベーターが得られる。な
お、「同等の」補体活性化経路抑制機能とは、水溶性C1
インアクチベーターのC1阻害活性の少なくとも50%以上
の活性を有し、臓器移植に実用し得る程度の補体活性化
経路の抑制機能を有していることを意味するものとす
る。
分子を提供することも本発明の目的である。本明細書に
おいて、「核酸分子」には、DNA分子とRNA分子の両者が
含まれる。前述のように、アンカー分子がタンパク質で
ある場合には、膜結合型C1-INHをコードする核酸分子
は、水溶性C1-INH遺伝子と、アンカー分子をコードする
ヌクレオチドから構成される。アンカー分子が非タンパ
ク質である場合には、水溶性C1-INH遺伝子と、ドナーの
細胞中でアンカー分子を付加するシグナルとして作用す
るアミノ酸配列をコードするヌクレオチドとから構成さ
れる。
植臓器又は組織中で発現させるためのベクターを提供す
ることも本発明の目的である。これらのベクターに膜結
合型C1-INHをコードする核酸分子を挿入し、マイクロイ
ンジェクション、エレクトロポレーション、及びリポフ
ェクション等の周知の方法を用いてこれを移植臓器又は
組織に導入すれば、膜結合型C1-INHをコードする核酸分
子を遺伝子導入することができる。
ルスベクター及び非ウイルスベクターの両者が含まれ
る。ウイルスベクターは、レトロウイルスやアデノウイ
ルス等の感染力を有する遺伝子配列に、移植臓器又は組
織中でC1-INHをコードする核酸分子を発現させるための
配列(プロモーター配列、ポリA部分等)が連結された
ものであり得る。好ましいウイルスベクターは、レトロ
ウイルスベクターであり、該ベクターを用いた遺伝子導
入は当業者に周知である。非ウイルスベクターは、大腸
菌等の細菌中で自己複製するために必要な遺伝子配列
に、移植臓器又は組織中でC1-INHをコードする核酸分子
を発現させるための配列(プロモーター配列、ポリA部
分等)が連結されたものであり得る。
ーを用いる方法に限定されず、移植臓器の種類に応じ
て、膜結合型C1-INHをコードする核酸分子及び該核酸分
子を発現させるための配列を具備する遺伝子配列をマイ
クロインジェクションしてもよい。
たトランスジェニック動物、臓器、組織、及び細胞も本
発明の範囲に属する。膜結合型C1-INHを導入すべき動物
は任意の哺乳動物であり得るが、ヒトに移植したときに
拒絶反応が起こり難いブタ及びサルが特に好ましい。膜
結合型C1-INHを導入すべき臓器には、肺、腎臓、心臓、
肝臓、膵臓、小腸等の消化管が含まれるがこれらに限定
されない。膜結合型C1-INHを導入すべき組織には、角
膜、半月板、脳組織、皮膚、皮下組織、上皮組織、骨、
筋等の組織が含まれるがこれらに限定されない。膜結合
型C1-INHを導入すべき細胞には、上記の臓器又は組織を
構成する全ての細胞、特に膵細胞及び脳細胞に加えて、
受精卵及び胚性幹細胞が含まれるがこれらに限定されな
い。
に記載するが、本実施例が、いかなる意味においても、
特許請求の範囲に記載した本発明の範囲を限定すること
を意図するものではないことは、当業者であれば自明で
あろう。
ている膜結合型C1-INHの動物細胞膜上への発現について
説明する。
端及びC末端に、それぞれシグナルペプチドとCD55のGPI
部分が結合されたものである(以下C1-INH-GPIと称す
る)。また、本実施例では、C1-INH-GPI中のシグナルペ
プチドのC末端部に、さらに検出用のエピトープタグ(F
LAGタグ)を付加した形態のもの(以下FLAG-C1-INH-GPI
と称する)も作成した(図3下段参照)。
-C1-INH-GPIを発現させるために、本実施例では、これ
らのcDNAを作成し、チャイニーズハムスター卵巣細胞
(CHO)にはエレクトロポレーションによって、ブタ血
管内皮細胞(SEC)にはリポフェクションによって遺伝
子導入した。
ル抗体を用いて、両細胞に蛍光ラベルを付与し、フロー
サイトメーターによってC1-INH-GPIの発現を調べた結果
である。図4のパネルA及びBに示されているように、C1
-INH-GPIは、複数のCHO株の細胞膜上に安定に発現され
た(斜線部)。同様に、C1-INH-GPIは、複数のSEC株の
細胞上でも安定に発現された(図4のパネルC及びD、斜
線部)。
付加したC1-INHが、種々の動物細胞の細胞膜上で安定に
発現されることを示している。
ローナル抗体で、CHO細胞を蛍光ラベルして、フローサ
イトメーターでFLAG-C1-INH-GPIの発現を調べた結果が
示してある。FLAGに対するモノクローナル抗体でも蛍光
が検出されているので、FLAG-C1-INH-GPIがCHO細胞の細
胞膜上に発現していることが確証された。また、FLAGに
対するモノクローナル抗体(M2)を用いて、Scatchard pl
ot法を実施し、CHO-CE21では51.3±3.7×104/細胞、SE
C-CE9では13.3±2.3×104/細胞のFLAG-C1-INH-GPI分子
が発現していることを確認した。
出し、前記ポリクローナル抗体及びモノクローナル抗体
を用いてウェスタンブロットを行った結果を示してい
る。
6及び8はSEC細胞のウェスタンブロットである。レー
ン1〜6はポリクローナル抗体、レーン7及び8はモノ
クローナル抗体を用いたウェスタンブロットの結果であ
る。
4)以外は、予想された位置にバンドが検出された。
ーターにアンカー分子を付加することによって、膜結合
型C1インアクチベーターを人為的に作出して、種々の細
胞の膜上に発現させ得ることが明らかとなった。
補体に対する抑制効果を調べた。
HO-C6及びCHO-CE21)に、これらの細胞に対する抗体を
反応させた後に、補体成分を含有する40%ヒト血清(NHS)
を加え、ヒト補体に対する抑制効果を調べた。結果を図
6及び図7に示す。
操作を行っていないナイーブCHO、及びC1-INH-GPIを加
えずに導入操作のみを行ったCHO-mock(両端の白抜きカ
ラム)では、約80%がヒト補体の攻撃で傷害されている
のに対して、C1-INH-GPIを発現させた細胞(斜線が付さ
れたカラム)では、約20%の細胞が傷害されるに留まっ
た。本実験により、C1-INH-GPIは、ヒトの補体によるCH
O細胞の傷害の発生率を約75%も抑制することが分かっ
た。
する効果についても調べた。
及びSEC-CE9)に、自然抗体と補体を含有する20%及び40
%ヒト血清を反応させて、ヒト補体による細胞傷害を抑
制する効果を観察した。
ヒト血清の添加により、20%弱のナイーブCHOとCHO-mock
(カラム1及び4)が溶解したのに比べ、C1-INH-GPIを
発現させたSEC細胞の溶解は数%に留まった(カラム2及
び3)。このように、SEC細胞の膜上にC1-INH-GPIを発現
させると補体による傷害率が65〜72%減少した。
ーブSECとSEC-mock(カラム1及び4)は約55%が溶解し
たが、C1-INH-GPIを発現させたSEC細胞の溶解率は20%
程度であった(カラム2及び3)。このように、SEC細胞
の膜上にC1-INH-GPIを発現させると補体による傷害率が
59〜65%減少することになる。
上にC1-INH-GPIが発現された細胞では、補体による傷害
率が60〜75%も抑制されることが実証された。
結合型であるために、水溶性C1インヒビターに比べて、
細胞膜付近での濃度が極めて高く保たれる。臓器移植に
おいて超急性拒絶反応を引き起こす補体反応は、細胞膜
上で起きるので、かかる特性は、臓器移植時の超急性拒
絶反応を抑制する上で非常に有効である。より具体的に
は、水溶性C1インヒビターを用いて、本発明の膜結合型
C1インヒビターと同等の効果を得るためには、膜結合型
C1インヒビターの50〜1000倍の量が必要になると推測さ
れる。
活性化経路の初発反応を阻害するので、補体活性化経路
がきわめて効果的に抑制され、補体活性化経路中の有害
な中間体が一切生じないという顕著な効果を有してい
る。
C1インヒビターを発現させた臓器、組織、細胞を用いれ
ば、移植時の超急性拒絶反応が抑制されるので、本発明
の膜結合型C1インヒビターを発現させた臓器、組織、細
胞は、移植、とりわけ異種移植に適している。
遺伝子を導入したトランスジェニック動物は、このよう
な臓器、組織、細胞を取得するのに有用である。
を説明するための図。
造を示す模式図。
皮細胞に、膜結合型C1インヒビターが発現されているこ
とを示す図。
イニーズハムスター卵巣細胞とブタ血管内皮細胞から抽
出したタンパク質に対して、抗膜結合型C1インヒビター
抗体を用いたウェスタンブロットを行った結果を示す
図。
ニーズハムスター卵巣細胞の傷害を抑制する効果を示す
図。
管内皮細胞の傷害を抑制する効果を示す図。
7)
Claims (14)
- 【請求項1】 水溶性C1インアクチベーターと同等の補
体活性化経路の抑制機能を有する膜結合型C1インアクチ
ベーター。 - 【請求項2】 水溶性C1インアクチベーターの機能的ド
メイン、又は該機能的ドメインの1若しくは数個のアミ
ノ酸が欠失、置換若しくは付加され且つ水溶性C1インア
クチベーターの補体活性化経路の抑制機能を保持したア
ミノ酸配列を含有するタンパク質と、 該タンパク質の末端及び/又は内部に付加されたアンカ
ー分子とを具備する膜結合型C1インアクチベーター。 - 【請求項3】 前記水溶性C1インアクチベーターが、ヒ
トの水溶性C1インアクチベーターである請求項1又は2
に記載の膜結合型C1インアクチベーター。 - 【請求項4】 前記水溶性C1インアクチベーターが、マ
ウスの水溶性C1インアクチベーターである請求項1又は
2に記載の膜結合型C1インアクチベーター。 - 【請求項5】 前記アンカー分子が、グリコシルホスフ
ァチジルイノシトール又は膜貫通タンパク質の膜貫通部
分の何れかである請求項1〜4の何れか1項に記載の膜
結合型C1インアクチベーター。 - 【請求項6】 請求項1〜5の何れか1項に記載の膜結
合型C1インアクチベーターをコードする核酸分子。 - 【請求項7】 請求項6に記載の膜結合型C1インアクチ
ベーターをコードする核酸分子を移植臓器、組織、又は
細胞に遺伝子導入するためのベクター。 - 【請求項8】 請求項1〜5の何れか1項に記載の膜結
合型C1インアクチベーターを発現させた細胞。 - 【請求項9】 請求項1〜5の何れか1項に記載の膜結
合型C1インアクチベーターを発現させた組織。 - 【請求項10】 前記組織が角膜、半月板、脳組織、皮
膚、皮下組織、上皮組織、骨組織、及び筋組織からなる
群から選択されることを特徴とする請求項9に記載の組
織。 - 【請求項11】 請求項1〜5の何れか1項に記載の膜
結合型C1インアクチベーターを発現させた臓器。 - 【請求項12】 前記臓器が肺、腎臓、心臓、肝臓、膵
臓、及び小腸を含む消化管からなる群から選択されるこ
とを特徴とする請求項11に記載の臓器。 - 【請求項13】 請求項6に記載の核酸分子が導入され
たトランスジェニック動物。 - 【請求項14】 請求項6に記載の核酸分子が導入され
たトランスジェニックブタ。
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