HUT72712A - Purification of factor vii - Google Patents

Purification of factor vii Download PDF

Info

Publication number
HUT72712A
HUT72712A HU9502846A HU9502846A HUT72712A HU T72712 A HUT72712 A HU T72712A HU 9502846 A HU9502846 A HU 9502846A HU 9502846 A HU9502846 A HU 9502846A HU T72712 A HUT72712 A HU T72712A
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
buffer
fvii
purification
nacl
activation
Prior art date
Application number
HU9502846A
Other languages
English (en)
Other versions
HU9502846D0 (en
Inventor
Tony Jorgensen
Anders H Pedersen
Original Assignee
Novo Nordisk As
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Novo Nordisk As filed Critical Novo Nordisk As
Publication of HU9502846D0 publication Critical patent/HU9502846D0/hu
Publication of HUT72712A publication Critical patent/HUT72712A/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/64Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
    • C12N9/6421Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
    • C12N9/6424Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12N9/6437Coagulation factor VIIa (3.4.21.21)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y304/00Hydrolases acting on peptide bonds, i.e. peptidases (3.4)
    • C12Y304/21Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12Y304/21021Coagulation factor VIIa (3.4.21.21)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
  • Catalysts (AREA)

Description

A találmány tárgya eljárás tisztítás során VII faktor szabályozott aktiválódására és leí bontására, ahol a VII faktor oldatát egy sor kromatográfiás tisztítási lépésnek vetjük alá.
A találmány szerinti eljárást, az jellemzi, hogy a tisztítási lépések legalább egyikét ++ Y
Zn+_l ionok jelenlétében vég/zHlk.
f
61.289/SZE
S.B.G. & K.
Nemzetközi Szabadalmi Iroda
H-1062 Budapest, Andrássy út 113. Telefon: 34-24-950, Fax: 34-24-323
KÖZZÉTÉTELI PÉLDÁNY
Λ ί(
VII. Faktor tisztítása
Novo Nordisk A/S, BAGSVAERD, DÁNIA
Feltalálók; JORGENSEN Tony, BALLERUP,
PEDERSEN Andcrs, Hjelholt, LYNGBY.
DÁNIA
A bejelentés napja: 1994. 03. 24.
Elsőbbsége: 1993.03.31.(382/93)
DÁNIA
A nemzetközi bejelentés száma: PCT/DK94/00122
A nemzetközi közzététel száma: WO 94/22905
A találmány tárgya eljárás VII. faktor szabályozott aktiválására és lebontására.
A VII. véralvadási faktor (FVII) K-\ i tűm in-függő szerin-proteáz, amely kulcsszerepet játszik a véralvadás külső útjában. Ez a májban szintetizálódik és a vérbe választódik ki, ahol • · egyláncú, mintegy 50000 molekulatömegü glikoproteinként (zimogén) kering. Aktivált, FVIIa formájában ez a proteáz katalizálja két további, szerin-proteáz családba tartozó. K-vitamminfiiggö véralvadási faktor, a IX. faktor (FIX) és a X. faktor (FX) aktiválódását.
Az aktivált FX (FXa) azután a protrombint trombinná alakítja. A trombin pedig a fibrinogént átalakítja fibrinné. a vérrög fő alkatrészévé.
A VII. faktor plazmából tisztítható és Vlla faktorrá alakítható át a Broze és Majerus által leírt [J. Bioi. Chem. 255 (4), 1242-1247 (1980)] és a Hedner és Kisiel által leírt [J. Clin. Invest. 71. 1836/1841 (1983)] eljárásokkal.
A Vlla faktor előállítható rekombináns DNS technikával is olyan módon, hogy a VII. faktort kódoló DNS szekvenciával átfertözött emlős sejteket megfelelő tápközegben tenyésztjük, a termelt fehérjét izoláljuk és az említett fehérjét Vlla faktorrá aktiváljuk (lásd a
86302855.1 számú európai szabadalmi bejelentést.
A Vlla faktor olyan betegek kezelésére alkalmazható, akik a Vili, faktorra inhibitorokat fejlesztettek ki [Hedner U. és Kisiel W.: .1. Clin. Invest. 71, 1836/1841 (1983)]. olyan betegek kezelésére, akik vérzési rendellenességben szenvednek, pl. vérlemezkerendellenességekben, ide értve a trombocitogéniát és a von Willebrand betegséget, valamint más olyan betegségek kezelésére, amelyek tipikusan társulhatnak súlyos szöveti károsodásokkal (86309197.1 számú európai szabadalmi bejelentés).
A plazma-eredetű szarvasmarha fehérje [Radcliffe és Nermersen: J. Bioi. Chem. 250, 338-395 (1975)] és a humán rekombináns fehérje [Thim és munkatársai: Biochemistrv 27, 7785-7793 (1988)] tisztítása során az FV1I az Arg]52-He153 kötés hidrolízisével aktiválódik kétláncú formába. Az FVII aktiválása nagy mértékben fokozódik anioncserélő gyantákon (dietil-amino-etil-csoportokkal vagy trimetil-amino-etil-csoportokkal módosított polimer gél mátrixok) való adszorpcióval. Az a mechanizmus, amely által az FVII aktiválódása fokozódik, nem ismeretes. Az aktiválódáson kívül az FVIIa molekulák egyik frakciója primer módon • · « · hasítódik a 290 és/vagy 315 helyeknél ön-lebomlással [Nicolaisen E.M. és munkatársai: FEBS letters 317. 245-249 (1993)]. Az ilyen lebomlási termékek inaktív molekulák, így jelenlétük a Vlla faktor készítményben a végtermék kisebb fajlagos aktiválását idézi elő. Ezen kívül a lebomlási termékek mennyisége és természete változhat egyik gyártási tételtől a másikig, ez pedig olyan készítményekhez vezet, amelyekben a biológiailag aktív Vlla faktor tartalom változó. A végső készítmény lebomlási termék tartalma beindíthatja a beteg immunrendszerét. Az újabb adagolás azután allergia-reakciókat eredményezhet, amelyek súlyosabb esetben akár halálos kimenetelűek is lehetnek. A betegek ezenkívül magas antitest titert is fejleszthetnek ki a Vlla faktor ellen, nehézzé vagy hatástalanná téve az ezután következő kezeléseket.
Abból a célból, hogy kis lebomlási termék tartalmú tisztított FVlIa terméket állítsunk elő, lényeges, hogy az aktiválást szabályozzuk és meggátoljuk a lebomlást a tsztítási munkamenet és az ezt követő feldolgozás során. Az FVIIa-val ellentétben az egyláncú forma, az FVII. ellenálló, vagy legalábbis kevésbé hajlamos a hasadásra a nehéz láncban. Ennek megfelelően előnyös lehet az FVII-et egyláncú formájában tisztítani.
A jelen találmánynak tehát az a célja, hogy FVU-re olyan tisztítási eljárást nyújtson, amely segítségével az aktiválódás és lebomlás elkerülhető vagy elfogadhatóan alacsony szinten tartható. Ezáltal olyan nagy tisztaságú, homogén terméket kívánunk előállítani, amelyet azután egy további lépésben FVIIa-vá lehet aktiválni magas kitermeléssel. így kapva egységes, homogén és nagy fajlagos aktivitású végterméket.
Ismeretes, hogy a cinkionok gátolják a rekombináns FVlIa amidolitikus és proteoltikus aktiválását [Pedersen A. H. és munkatársai: Thrombosis and Haemostasis 65 (528-534) 1991]. Meglepő módon arra jöttünk rá, hogy cinkionokat lehet alkalmazni az FVII önaktiválódásának szabályozására és az FVII/FVIIa lebomlás gátlására is a kromatográfiás oszlopanyagok segítségével végzett tisztítás során.
A legszélesebb értelmezésében a jelen találmány az FV1I tisztítás közbeni szabályozott aktiválódására és lebomlására szolgáló eljárásra vonatkozik, ahol a VII. faktort egy sor kromatográfiás lépésnek vetjük alá olyan módon, hogy legaalább az egyik tisztítási lépésben Zn++ ionok vannak jelen.
Egy valamivel szükebb értelmezésben a jelen találmány az FVII szabályozott aktiválódására és lebomlására szolgáló eljárásra vonatkozik, ahol az FVII oldatát egy sor aninoncserélö és immunaffinitásos oszlopra visszük fel.
A jelen találmány egyik előnyös kiviteli módjában az FVII oldatot a következő sorrendben visszük fel a kromatográfiás oszlopokra: 1.) anioncserélö: 2.) immunaffinitásos: 3.) anioncserélő; 4.) anioncserélő oszlopok, ahol legalább az első két lépésben Zn++ is van jelen.
Az alábbiakban röviden ismertetjük a bejelentés ábráit:
Az 1.) ábra az FVII aktiválódását mutatja be anioncserélö oszlopok jelenlétében, változtatva a Zn++ ionok koncentrációját.
A 2.) ábra az rFVII aktiválódását mutatja be rFVIIa-vá a tisztítási munkamenetek során, ahol Zn++ ionok is vannak a pufferekben egy vagy több tisztítási lépésben.
Az A>E munkamenetek körülményeit az 1. táblázatban adjuk meg, míg az eredményeket a 2. táblázat mutatja be.
A 3.) ábra az FVIIa lebomlását szemlélteti a tisztítási munkamenetek során, ahol a pufferekben Zn++ ionok is találhatók - a tisztítási munkamenetek közül egyben vagy többen.
Az A>E munkamenetek körülményeit az 1.) táblázatban adjuk meg. míg az eredményeket a 2. táblázat mutatja be.
Mielőtt a találmányt részletesebben ismertetnénk, a jobb érthetőség kedvéért megadjuk bizonyos, később használandó kifejezések meghatározását.
FVII: Az FVII magában foglalja mind a plazmából izolált, mind a rekombináns DNS technológiával készített termékeket. Ide tartoznak az alléi variánsok is. amelyek létezhetnek önmagukban. de átmehetnek egyik formájukból másik formájukba is. továbbá ide tartoznak az olyan FVII fehérjék is, amelyek aminosav-gvök kihagyásokkal és/vagy helyettesítésekkel vannak módosítva, amennyiben aktiválás után ezek a variánsok a véralvadás szempontjából azonos vagy lényegében azonos biológiai aktivitással bírnak, mint az endogén humán FVIIa.
Az FVII kifejezés a fenti definíción belül magában foglalja azokat az FVII fehérjéket is, amelyekben a glikozilezés és/vagy más. transzláció utáni módosításának mértéke és elhelyezkedése változó a kiválsztott gazdasejtektől és a tenyésztési körülményektől függően, amikor a termék rekombináns DNS technikával fejeződik ki.
FVIIa biológiai aktivitás: Az FVIIa biológiai aktivitást a véralvadásban való közreműködéssel lehet jellemezni a külső út során.
Az FVIIa az FX-et FXa-vci aktiválja, amely viszont a protrombint alakítja át trombinná. ezáltal beindítva a fibrin rög képződését.
Szabályozott aktiválódás és lebomlás: Ez a kifejezés olyan eljárást takar, amelyben az FVII aktiválódása és elbomlása a tisztítás során egy adott paraméter (ez esetben Zn++ ionok jelenléte) megtervezett, ellenőrzött változatai szerint megy végbe.
Zn++ ionok távollétében a tisztítási folyamat paramétereit az együtt lezajló aktiválódás! és lebomlási reakcióhoz kell igazítani. Zn+ ionok jelenlétében viszont úgy kell lehetővé tenni ezeknek a reakcióknak a szabályozását, hogy a tisztítás és az aktiválódás optimalizálása egymástól függetlenül legyen lehetséges.
····· ·· · · • · · · · • · · · · · · • · · · · · « · ·· · ···· ··
A továbbiakban részletesebben ismertetjük a találmányt.
A humán FVII-et előnyösen átf'ertőzött emlős hörcsögivadék-vese sejtekben [Baby Hamster Kidney (BHK)] fejezzük ki olyan módon, ahogyan ez a 86302855.1 számú európai szabadalmi bejelentésben le van írva. Az FVII-et és a sejtnövekedést stimuláló fehérjéket tartalmazó tenyészközeget a sejtektől centrifugálással és szűréssel különítjük el. mielőtt a kromatográfiás tisztítást elkezdenénk.
Tisztítás céljából az FVII-et különböző típusú kromatográfiás mátrixokra adszorbeáljuk; ilyenek lehetnek a kationcserélők. anioncserélők immunaffínitásos mátrixok, fémionkelátképzök. festékaffínitásos mátrixok, hidrolöb kölcsönhatásos mátrixok, valamint affinitásos mátrixok immobilizált biospecifikus ligandumokkal. Azok a mechanizmusok, amelyekkel az FVII adszorbeálódik a különböző mátrixokhoz, változóak, ennél fogva a Zn++ ionok hatása az FVII aktiválódására eltérő lehet, de mindenképpen jelentős a különböző típusú kromatográfiás mátrixokon történő adszorbeálódás során.
A cinksók egy vagy több olyan elváló oldathoz vagy pufferhez adhatók, amelyeket a kiegyensúlyozáshoz és elváláshoz alkalmazunk. A cinksó lehet bármely oldható cinksó, mint pl. cink-acetát, cink-citrát, cink-klorid vagy cink-szulfát.
A Zn++ ion koncentrációja változhat 10 pmól/l és 1 mmól/1 között, előnyösen mintegy 20 ptmól/l és mintegy 1 mmól/1 között, még előnyösebben mintegy 40 pimól/l és mintegy 1 mmól/1 között.
A tisztított FVII ezt követő aktiválódását FVIIa-vá FXIIa alkalmazásával érhetjük el, amint ezt Hedner és Kiesel leírták [.I. Clin. hívest. 71 1836-1841 (1983)], de elérhetjük más tripszin-szerü fajlagossággal bíró proteázokkal is [Kiesel és Fujikawa: Behring Inst. Mitt. 73 29-42 (1983)]. Egy másik eljárás szerint az FVII aktiválható polimer makromolekulák jelenlétében is, ilyenk lehetnek pl. a polilizin mátrix szerkezetek, helyettesített agaróz gél vagy membránok.
• · · ·
Az alábbiakban a kísérleti eljárásokat ismertetjük.
A tisztítási munkamenetet a tisztításhoz és az rFVIT aktiválódásához rFVIIa-vá az alábbi, egymmást követő kromatográfiás lépésekkel hajtottuk végre: 1.) lépés: anion csere; 2.) lépés: immunaffinitásos kromatográfiai 3.) lépés: anioncsere; 4.) lépés: anioncsere.
A tisztítási munkamenetek kísérletsorozatát végeztük el. amelyekben a munkamenetek egy részében cinksók hozzáadására is megtörtént a kromatográfiás lépések egyikének vagy többjének összes pufferjához. ahogyan ez az 1. táblázatban körvonalazva van.
A kísérleti körülményeket a 2-4. példákban adjuk meg.
A referencia-kísérletet (E.) a 2. példa szerint hajtottuk végre azzal a különbséggel, hogy nem adtunk hozzá Zn(CH3-COO)2*t.
1. táblázat
TISZTÍTÁSI MUNKAMENET KROMATOGRÁFIÁS LÉPÉS
1 -> 4
A - r + +
B - -r + -
C - + - -
E (referencia) - - - -
+/- jelzi a cinksók jelenlétét vagy távollétét a pufferok xtn.
Az egyes eluciós lépéseket megvizsgáltuk az FVII aktiválódásának mértéke (% FVII) és az FVIIa lebomlási termék tartalomra. Az ÉVII átalakulását a kétláncú FVIIa formává standard poliakrilamid elektroforézissel (PAGE) mértük nátrium-clodecil-szulfátban (SDS) redukáló körülmények között; a festés Coomassie Blue festékkel, a mennyiségi mérés pedig lézer denzitometriával történt.
.· ·· · ··· • ····· « · · β .........
Az FVIIa lebomlási termék tartalom mennyiségi mérése fordított fázisú, nagy teljesítményű folyadékkromatográfiával (RP-HPLC) történt butil-kötésű szilikagél oszlopon, lineáris acetonitril gradienssel.
A lényegében a kiviteli példákban leírt módon végrehajtott kísérletek eredményeit a 2. táblázatban foglaljuk össze, és a 2. és 3. ábrákban ábrázoljuk. A 2. ábránál nyilvánvaló, hogy cinkionok jelenlétében (A,B, és C vonalak) rFVII aktiválódás egyáltalán nem vagy nagyon korlátozott mértékben megy végbe az immunaffinitásos lépés során (2. lépés) és az anioncserélő lépések során (3. és 4. lépés) (A és B vonalak).
Ezzel ellentétben erőteljes aktiválódás megy végbe a 2. lépésben (E vonal) és a 3. és 4. lépésekben (B. C és E vonalak) cinkionok távollétében.
Az is nyilvánvaló, hogy a cinkionok, amelyek az FVII/FVIla átalakulásra, tehát az FVII aktiválódásra gátló hatással bírnak, kölcsönhatása reverzibilis természetű; a ciinkionokat fölös mennyiségű EDTA-val komplex kötésbe vive az FVII aktiválódik az ezután következő tisztítási lépésekben (B és C vonalak).
Az 1. lépésben láthatóan nem történik aktiválódás cinkionok távollétében sem. Ez az FVII sokkal kisebb koncentrációjának tulajdoniiható az oszlopon.
Az 1. lépésbeli eluátum, amelyet minden kísérletben alkalmazunk, kevesebb, mint 1%
FVlIa-t tartalmazott.
2. táblázat
Kísérlet Tisztítási lépések Zn++ % FVII (SDS- PAGE) %FVIIa le- bomlott (RP- HPLC)
A+B 2 + 94 0
+ 92 0
A 4 89 <2
B 4 - 18 3.6
C 2 4- 99
- 69 <2
4 - 2 5.0
E 2 - 46 3.9
- 19 4.6
4 - 4 <8.0
1. példa
Az FVII aktiválódásának gátlása an ioncserélő gyantán való kötődéskor
A Zn++ ionok hatását vizsgáljuk meg az ÉVII aktiválódására egy olyan kísérletben, amelyben tisztított FVII-et adszorbeálunk Q-Sepharose FF mátrixon ZrE^ ionok különböző koncentrációi mellett. 500 pg FVII-et inkubaiunk 1.5 ml-es kémcsövekben 50 μ! Q-Sepharose FF-el 800 pl pufferben (10 mmól/1 trisz, 50 mmól/1 NaCl. 2 mmól/1 CaC'b). és különböző koncentrációban cink-acetáttal. 1 illetve 2 múlva a mátrixot leülepítjük centrifugálással és a felülúszót eltávolítjuk. 800 pl puffért (10 mmól/1 trisz. 50 mmól/1 NaCl. 25 mmól/1 CaCb: pH 8,0) adunk hozzá, majd összekeverés és centrilügálás után a felülúszóból mintákat veszünk és elemezzük FVII/FVIIa-ra SDS-PAGE eljárással.
Az eredmények (1. ábra) azt mutatják, hogy Zn~+ ionok távollétében az FVII 55%-a FVIIa-vá aktiválódik 1 órán belül és több mint 90%-a aktiválódik 2 órán belül.
- 10 ···· · ·· ·· • · · · · • · · · · · · • · ···· . . .
·· · ···· ··
μ.πτόΙ/1 Ζη++ ion jelenlétében csak 25% aktiválódik 1 órán belül és csak 73% aktiválódik 2 órán belül.
pmól/l fölötti Zn++ ion koncentrációk jelenlétében nem történik aktiválódás 2 órán belül.
A kísérletekből nyilvánvaló, hogy a /.r%+ ionoknak mintegy 10 pimól/l koncentrációtartományban gátló hatásuk van az FVI1 aktiválódásra anioncserélök jelenlétében és elképzelhető, hogy a Zn++ ionok az FVI1 aktiválódásra a Zn++ ion összes olyan koncentrációinál hatnak, amelyek a 10 Limól/1 alatti értékektől egészen az 1 mmól/1 értékig terjednek.
Úgy tűnik, hogy a Zn++ koncentrációjának változtatásával lehetséges szabályozni az FV1I aktiválódást sebességi állandóját és nagy Zn++ koncentrációknál lényegében meg lehet védeni az FVII-et az aktiválódástól és ennek következtében a lebomlástól is.
2. példa
Az rFVII tisztítását és aktiválódását rFVIIa-vá az alábbi négy kromatográfiás lépés segítségével hajtjuk végre.
1. lépés:
Az rFVII-et tartalmazó sejttenyésztő tápközeget hígítással beállítjuk 10 mS/cm ionerősség alá és A pufferral [10 mmól/1 trihidro.xi-metil-aniino-metán (trisz); 150 mmól/1 NaCl; pH 8] elő-egvensúlyozott Q-Sepharose oszlopra visszük fel.
Egy mosási lépés után, amelyet csaknem azonos, de 175 mmól/1 NaCl-t tartalmazó pufferral végzünk, rFVII-et B pufferral (10 mmól/1 trisz; 150 mmól/1 NaCl: 25 mmól/1 CaCb; pH 8) eluáljuk.
2. lépés:
Az eluált oldatot, amely 104 mg/1 rFVII-ct tartalmaz, beállítjuk egy végső összetételre: 10 mmól/1 trisz: 1 mól/1 NaCl; 25 mmól/l CaCb: 70 pmól/l Zn(CH'’,C’OO)2- pH 7,5. majd immobilizált anti-FVII monoklonális antitestet tartalmazó Sepharose oszlopra visszük fel.
Az antitest-oszlopot elő-egyen.súlyozzuk C pufferral (10 mmól/1 trisz; 100 mmól/1 NaCl; 20 mmól/1 CaCb: 70 pmól/l Zn(CI-b,COO)2· pH 7,5). Az oszlopot először 10 mmól/1 triszt, 2 mól/1 NaCl-t, 20 mmól/1 CaCb-t és 70 pmól/l Zn/CF^COOb-t (pH 7,5) tartalmazó oldattal, majd C pufferral mossuk. Ezután az rFVII/rFVIIa-t eluáljuk egy puffer (75 mmól/1 trisz; 30 mmól/1 trinátrium-citrát; 70 pmól/l Zn(CI bCOO)2; pH 7.5) felvitelével.
3. lépés:
Az eluátumot azonnal felvisszük Q-Sepharosc oszlopra, amelyet elö-egyensúlyoztunk az alábbi pufferral: 10 mmól/1 trisz; 150 mmól/1 NaCl; 70 pmól/l Zn(CI-b,COO)2: pH 8,6.
Az oszlopot azonos pufferral mossuk és az rFVlI/rFVlla-t A puflertól D pufferig [10 mmól/l trisz: 500 mmól/1 NaCl; 70 pmól/l Zn(CFb,COO)2; pH 8,6] terjedő lineáris gradienssel eluáljuk.
4.lépés:
Az rFVII/rFVIIa-t tartalmazó frakció ionerősségét hígítással 10 mS/cm alá állítjuk be és azonnal olyan Q-Sepharose oszlopra visszük fel, amelyet elö-egyensúlyoztunk az alábbi pufferral: 10 mmól/1 glici 1-glicin; 150 mmói/i NaCl: 70 pmól/l Zn(CFb,COO)2; pH 8,6.
Az oszlopot először az alábbi pufferrel: 10 mmól/1 glicil-glicin: 175 mmól/1 NaCl; 70 pmól/l Zn(CH3COO)2; pH 8,6, majd E pufferral [10 mmól/1 glicil-glicin; 100 mmól/1 NaCl; 70 pmól/l Zn(CH3COO)2; pH 8,6] mossuk, az rFVII/rFVIIa-t lineáris gradienssel eluáljuk, ·*··· ·· ·» • · · · · • · · · · · · • ····· · · · |ο ·♦ · ···· ·· amely gradiens az E puffertöl az alábbi pufferig terjed: 10 mmól/1 glicil-glicin; 15 mmól/1
CaCb; 70 pmóí/l Zn(CHiCOO)2; pH 8.6. Az átáramlási sebesség 1 térfogat/óra.
A tisztított rFVIIa az alábbi jellemzőkkel bír:
rFVIIa tartalom: 345 mg/l. UV spektroszkópiával [optikai sűrűség (OD280) mérve];
Idegen fehérje tartalom: < 1% RP-HPLC-vel mérve:
rFVII tartalom: 89% SDS-PAGE alapján;
rFVIIa lebomlási termék tartalom: < 2% RP-HPLC-vel mérve.
3. példa
Az rFVII rFVIIa-vá való tisztítását és aktiválódását az alábbi négy kromatográfiás lépésben hajtjuk végre:
1. lépés:
Az rFVII-et tartalmazó tápközeg ismerősségét hígítással 10 mS/cm alá állítjuk be és felvisszük A pufferral [10 mmól/1 trihidroxi-metil-amino-metán (trisz); 150 mmól/1 NaCl. (pH
8)| elöegyensúlyozott Q-Sepharose oszlopra.
Közel azonos pufferral (de 175 mmól/1 NaCI-lel) végzett mosási lépés után az rFVII-et
B pufferral [10 mmól/1 trisz; 150 mmól/1 NaCl; 25 mmól/1 CaCb: pH 8| cluáljuk.
2. lépés:
104 mg/l rFVII-et tartalmazó eluált oldatot végső összetételére állítjuk be (10 mmól/1 trisz; 1 mól/1 NaCl; 25 mmól/1 CaCh: 70 umól/l Zn/CH^COOh- pH 7.5). majd immobilizált anti-FVII monoklonális antitestet tartalmazó Sepharose oszlopra visszük fel.
«·· · • * · · « • ·· · ··· • ····· · · · _ 13 _ ·· · .... «·
Az antitest-oszlopot elő-egyensúlyozzuk C pufferral (10 mmól/1 trisz; 100 mmól/1 NaCl; 20 mmól/1 CaCb; 70 pmól/l Zn/CH^COOb. pH 7,5). Az oszlopot először 10 mmól/1 triszt. 2 mól/1 NaCl-t. 20 mmól/1 CaCb-t és 70 umól/1 ZnlCH^COOb-t (pH 7,5) tartalmazó oldattal, majd C pufferral mossuk. Ezután az rf VII/rFVHa-t eluáljuk egy puffer (75 mmól/1 trisz; 30 mmól/1 trinátrium-citrát; 70 umól/1 Zn(CIb,COO)2; pH 7.5) felvitelével.
3. lépés:
Az eluátumot azonnal felvisszük Q-Sepharose oszlopra, amelyet elö-egyensúlyóztunk az alábbi pufferral: 10 mmól/1 trisz: 150 mmól/1 NaCl; 70 pmól/l Zn(Cfb,COO)2; pH 8,6.
Az oszlopot azonos pufferral mossuk és az rFVII/rFVIIa-t A puffertól D pufferig [10 mmól/1 trisz; 500 mmól/1 NaCl; 70 μιηόΐ/l ZnfClbCOOb: pH 8.6] terjedő lineáris gradienssel eluáljuk.
4. lépés:
Az rFVII/rFVIIa-t tartalmazó frakciót 2 mmól/literesre állítjuk be etilén-diamintetraecetsavra (EDTA). majd az ionerösséget hígítással 10 mS/cm aki visszük le, ezután azonnal felvisszük az alábbi pufferral elő egyensúlyozott Q-Sepharose oszlopra: 10 mmól/1 glicilglicin; 150 mmól/1 NaCl; pH 8,6.
Először 10 mmól/1 glicil-glicint; 175 mmól/1 NaCl-t tartalmazó pufferral (pH 8,6), majd E pufferral (10 mmól/1 glicil-glicin; 100 mmól/1 NaCl; pH 8.6) mosunk, az rFVII/rFVIIa-t olyan lineáris gradienssel eluáljuk. amely az E puffertól az alábbi pufferig terjed: 10 mmól/1 NaCl; 15 mmól/1 CaCb: pH 8.6. Az áramlási sebesség 1 térfogat/óra.
A tisztított rFVIIa készítmény az alábbi jellemzőkkel bír;
rFVIIa tartalom; 492 mg/1. UV spektroszkópiával [optikai sűrűség (OD280) mérve];
Idegen fehérje tartalom: < 1% RP-HPLC-vel mérve;
···♦ » >· · • · · · « • · » · ··· *·····» 4 .
-14- .........
rFVII tartalom: 18% SDS-PAGE alapján;
rFVIIa lebomlási termék tartalom: 3.6% RP-HPLC-vel mérve.
4. példa
Az rFVII tisztítása és aktiválódása rFVIIa-vá a következő négy lépésben megy végbe:
1. lépés:
Az rFVII-et tartalmazó tápközeg ismcrösségét hígítással 10 mS/cm alá állítjuk be és felvisszük A pufferral [10 mmól/1 trihidroxi-nietil-amino-metán (trisz): 150 mmól/1 NaCl, (pH 8)| elöegyensúlyozott Q-Sepharose oszlopra.
Közel azonos pufferral (de 175 mmól/1 NaCI-lel) végzett mosási lépés után az rFVII-et B pufferral [10 mmól/1 trisz; 150 mmól/1 NaCl: 25 mmól/1 CaCb: pH 8| eluáljuk.
2. lépés:
104 mg/1 rFVII-et tartalmazó eluált oldatot végső összetételére állítjuk be (10 mmól/1 trisz: 1 mól/1 NaCl; 25 mmól/1 CaCb: 70 umól/l Zn(CFb,COO)2. pH 7.5). majd immobilizált anti-FVII monoklonális antitestet tartalmazó Sepharose oszlopra visszük fel.
Az antitest-oszlopot elö-egyensúlvozzuk C pufferral (10 mmól/1 trisz; 100 mmól/1 NaCl; 20 mmól/1 CaCb: 70 μηιόΐ/ΐ ZntCHyCOOh. pH 7.5). Az oszlopot először 10 mmól/1 triszt. 2 mól/1 NaCl-t. 20 mmól/1 CaCb-t és 70 pmól/l Zn/CH^COOh-t (pH 7,5) tartalmazó oldattal, majd C pufferral mossuk.
Ezután az rFVII/rFVIIa-t eluáljuk egy puffer (75 mmól/1 trisz: 30 mmól/1 trinátrium citrát; 70 pmól/l Zn(CFl3COO)2: pH 7.5) felvitelével.
··«·· -» 4 • · · · 9
-9 »· « · fl * • ····« 4 , ♦· · »··· ·· -1 ? -
3. lépés:
Az eluátumot 2 nimól/liter EDTA koncentrációra állítjuk be. majd azonnal felvisszük olyan Q-Sepharose oszlopra, amelyet az alábbi pufferral elö-egyensúlyoztunk ki: 10 mmól/1 trisz; 150 mmól/1 NaCl; pH 8,6.
Az oszlopot azután azonos pufferral mossuk, majd az íTVII/rFVlla-t A puufertöl D pufferig [10 mmól/1 trisz: 500 mmól/1 NaCl: 70 μηιόΐ/ΐ Zn(CH^COOb: pH 8.6] terjedő lineáris gradienssel eluáljuk.
4. lépés:
Az rFVII/rFVIIa-t tartalmazó frakciót hígítással 10 mS/cm ionerősség alá állítjuk be. ezután azonnal felvisszük az alábbi pufferral elő egyensúlyozott Q-Sepharose oszlopra: 10 mmól/1 glicil-glicin; 150 mmól/1 NaCl: pH 8.6.
Mosást végzünk először az alábbi összetételű oldattal: 10 mmól/1 glicil-glicin; 175 mmól/1 NaCl. pH 8.6, majd E pufferral (10 mmól/1 glicil-glicin: 100 mmól/1 NaCl: pFI 8,6). Az rFVII/rFVIIa-t olyan lineáris gradienssel eluáljuk. amely az E puffertöl az alábbi pufferig terjed: 10 mmól/1 glicil-glicin; 100 mmól/1 NaCl; 15 mmól/'l CaCb: pH 8.6. Az átfolyási sebesség 1 térfogat/óra.
A tisztított rFVIIa készítmény az alábbi jellemzőkkel bír:
rFVIIa tartalom: 1.2 mg/ml. UV spektroszkópiával [optikai sűrűség (OD280) mérve];
Idegen fehérje tartalom: < 1% RP-HPLC-vcl mérve;
rFVII tartalom: 1% SDS-PAGE alapján:
rFVIIa lebomlási termék tartalom: 6,7% RP-HPLC-vel mérve.
···· *

Claims (7)

1. Eljárás tisztítás során VII faktor szabályozott aktiválódására és lebontására, ahol a VII faktor oldatát egy sor kromatográfiás tisztítási lépésnek vetjük alá. azzal jellemezv e. hogy a tisztítási lépések legalább egyikét /:·,' ionok jelenlétében végezzük.
2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a tisztítási lépések során a VII. faktort egy sor anioncserélö és imnumalTinitásos kromatográfiás oszlopra visszük fel.
3. Az 1. vagy 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az eljárásban a Zn++ iont valamely oldható cinksó formájában alkalmazzuk.
4. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az eljárásban a Zn++ iont mintegy 10 μηιόΙ/Ι és mintegy 1 mmól/l közti koncentrációban alkalmazzuk.
5. A 4. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az eljárásban a Zn++ iont mintegy 20 pmól/l és mintegy 1 mmól/l közti koncentrációban alkalmazzuk.
6. A 4. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az eljárásban a Zn++ iont mintegy 40 pmól/l és mintegy 1 mmól/l közti koncentrációban alkalmazzuk.
7. A 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az FVI 1-t az alábbi sorrendben visszük fel a kromatográfiás oszlopokra: I. anioncserélő oszlop: 2. immunaffmitásos oszlop; 3. anioncserélö oszlop, 4. anioncserélö oszlop és a Zn++ iont legalább két lépésben alkalmazzuk.
A meghatalmazott ifj. Szentpéteri Adam . szabadalmi ugyviváx
KÖZZÉTÉTELI
PÉLDÁNY □ 0!
> > LL. LJL xO xO θ'*
1QQ
o O o a o a CD Γ* Φ in Cl
o o o
Cd T1=1 I Ad %
1. obrQ ifj. Szentpéteri Ádám szabadalmi ügyvivő
1113.
4-323
H
Tde<ü<T 34-24550, Fax: 34KÖZZÉTÉTELI
PÉLDÁNY 3á *w
Ói ói
W
ΙΙΛΗ1 % ói + ói Ó
I J + ói + ói ra f
HU9502846A 1993-03-31 1994-03-24 Purification of factor vii HUT72712A (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DK93382A DK38293D0 (da) 1993-03-31 1993-03-31 Fremstilling af proteiner

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HU9502846D0 HU9502846D0 (en) 1995-12-28
HUT72712A true HUT72712A (en) 1996-05-28

Family

ID=8092871

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9502846A HUT72712A (en) 1993-03-31 1994-03-24 Purification of factor vii

Country Status (16)

Country Link
US (1) US5700914A (hu)
EP (1) EP0691984A1 (hu)
JP (1) JPH08508264A (hu)
CN (1) CN1039231C (hu)
AU (1) AU677309B2 (hu)
CA (1) CA2159313A1 (hu)
CZ (1) CZ253395A3 (hu)
DK (1) DK38293D0 (hu)
FI (1) FI954649A0 (hu)
HU (1) HUT72712A (hu)
IL (1) IL109164A0 (hu)
NO (1) NO953883L (hu)
PL (1) PL310887A1 (hu)
TW (1) TW278079B (hu)
WO (1) WO1994022905A1 (hu)
ZA (1) ZA941956B (hu)

Families Citing this family (27)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE19538716A1 (de) * 1995-10-18 1997-04-24 Behringwerke Ag Verfahren zur Quantifizierung von aktiviertem Gerinnungsfaktor VII (FVIIa)
DE19538715A1 (de) * 1995-10-18 1997-04-30 Behringwerke Ag Verfahren zur Reinigung von Faktor VII und aktiviertem Faktor VII
DK1308456T3 (da) 1998-05-06 2007-12-27 Genentech Inc Antistofoprensning ved ionbytterkromatografi
AT408613B (de) * 1998-06-17 2002-01-25 Immuno Ag Pharmazeutisches faktor vii-präparat
WO2001058935A2 (en) 2000-02-11 2001-08-16 Maxygen Aps FACTOR VII OR VIIa-LIKE MOLECULES
IL162239A0 (en) 2001-12-21 2005-11-20 Novo Nordisk Healthcare Ag Liquid composition of factor vii polypeptides
US20040009918A1 (en) * 2002-05-03 2004-01-15 Hanne Nedergaard Stabilised solid compositions of modified factor VII
EP2283856B1 (en) 2002-06-21 2017-09-20 Novo Nordisk Health Care AG Stabilised solid compositions of factor VIIa polypeptides
AU2004221758B2 (en) * 2003-03-18 2010-07-22 Novo Nordisk Health Care Ag Method for the production of GLA-residue containing serine proteases
US7897734B2 (en) 2003-03-26 2011-03-01 Novo Nordisk Healthcare Ag Method for the production of proteins
CA2525224A1 (en) 2003-05-23 2004-12-02 Michael Bech Jensen Protein stabilization in solution
ATE547114T1 (de) * 2003-06-25 2012-03-15 Novo Nordisk Healthcare Ag Flüssige zusammensetzungen von factor vii polypeptiden
ES2335994T3 (es) * 2003-07-01 2010-04-07 Novo Nordisk Health Care Ag Composicion farmaceutica liquida, acuosa de polipeptidos factor vii.
ES2574581T3 (es) 2003-08-14 2016-06-20 Novo Nordisk Health Care Ag Composición farmacéutica líquida acuosa de polipéptidos de tipo Factor VII
CN1890257A (zh) 2003-12-01 2007-01-03 诺和诺德医疗保健公司 液体因子ⅶ组合物的病毒过滤
EP2298287B1 (en) * 2003-12-19 2018-04-11 Novo Nordisk Health Care AG Stabilised compositions of factor VII polypeptides
EP1831242B1 (en) * 2004-12-23 2012-09-26 Novo Nordisk Health Care AG Reduction of the content of protein contaminants in compositions comprising a vitamin k-dependent protein of interest
PT1841863E (pt) * 2005-01-14 2010-10-25 Bayer Healthcare Llc Método para a purificação de factor vii
PL1907540T3 (pl) * 2005-07-22 2013-05-31 Bayer Healthcare Llc Aktywacja czynnika VII w roztworze
US8841255B2 (en) 2005-12-20 2014-09-23 Duke University Therapeutic agents comprising fusions of vasoactive intestinal peptide and elastic peptides
US20130172274A1 (en) 2005-12-20 2013-07-04 Duke University Methods and compositions for delivering active agents with enhanced pharmacological properties
EP1971355B1 (en) * 2005-12-20 2020-03-11 Duke University Methods and compositions for delivering active agents with enhanced pharmacological properties
WO2009158704A2 (en) 2008-06-27 2009-12-30 Duke University Therapeutic agents comprising elastin-like peptides
CN103539852B (zh) * 2012-07-12 2015-08-12 上海泰龙生物医药科技有限公司 一种从细胞培养液中分离纯化重组人凝血八因子的方法
EP2687595B1 (en) 2012-07-19 2018-05-30 Laboratoire Français du Fractionnement et des Biotechnologies Method for purifying transgenic factor VII
AU2013331240B8 (en) 2012-10-17 2016-11-24 The Procter & Gamble Company Strip for the delivery of an oral care active and methods for applying oral care actives
EP3560946B1 (en) 2016-12-22 2022-02-02 KM Biologics Co., Ltd. Chromatographic method for collecting blood coagulation factor vii with high yield

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4981952A (en) * 1988-10-04 1991-01-01 Eli Lilly And Company Method for the purification of vitamin K-dependent proteins

Also Published As

Publication number Publication date
CA2159313A1 (en) 1994-10-13
WO1994022905A1 (en) 1994-10-13
JPH08508264A (ja) 1996-09-03
ZA941956B (en) 1994-09-30
CN1121723A (zh) 1996-05-01
FI954649A (fi) 1995-09-29
IL109164A0 (en) 1994-06-24
US5700914A (en) 1997-12-23
DK38293D0 (da) 1993-03-31
AU677309B2 (en) 1997-04-17
NO953883L (no) 1995-11-28
PL310887A1 (en) 1996-01-08
NO953883D0 (no) 1995-09-29
FI954649A0 (fi) 1995-09-29
HU9502846D0 (en) 1995-12-28
AU6423994A (en) 1994-10-24
EP0691984A1 (en) 1996-01-17
CZ253395A3 (en) 1996-01-17
CN1039231C (zh) 1998-07-22
TW278079B (hu) 1996-06-11

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HUT72712A (en) Purification of factor vii
JP3459416B2 (ja) 修飾されたファクター▲vii▼
US5580560A (en) Modified factor VII/VIIa
AT405516B (de) Faktor x-analoge mit modifizierter proteasespaltstelle
EP2504349B1 (en) Method of purifying pegylated proteins
AU732953B2 (en) Factor X deletion mutants and analogues thereof
KR20110036071A (ko) 그의 보조인자의 부존재하에서 응고활성을 갖는 인자 ix 변이체 및 출혈 질환을 치료하기 위한 그의 용도
US8513386B2 (en) FVIII-independent FIX-mutant proteins for hemophilia a treatment
US20010007901A1 (en) Process for purifying factor VII and activated factor VII
Chavin Factor VIII: structure and function in blood clotting
CA2105282C (en) Preparation of factor ix
JP4680329B2 (ja) 血管障害の治療方法
RU2167936C2 (ru) Способ минимизации деградации активированного протеина с (варианты), стабилизированная композиция активированного протеина с
Rezaie et al. Proline at the P2 position in protein C is important for calcium-mediated regulation of protein C activation and secretion
AU703760B2 (en) Modified Factor VII pharmaceutical
CZ2000982A3 (cs) Farmaceutický preparát obsahující jednotlivé faktory, závislé na vitaminu K a jeho použití

Legal Events

Date Code Title Description
DFD9 Temporary protection cancelled due to non-payment of fee