HUT63461A - Process for producing phky334 plasmid, its ek-bgh expression vector and host cells transformed by it - Google Patents

Process for producing phky334 plasmid, its ek-bgh expression vector and host cells transformed by it Download PDF

Info

Publication number
HUT63461A
HUT63461A HU9203686A HU9203686A HUT63461A HU T63461 A HUT63461 A HU T63461A HU 9203686 A HU9203686 A HU 9203686A HU 9203686 A HU9203686 A HU 9203686A HU T63461 A HUT63461 A HU T63461A
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
plasmid
amíg
dna
phky334
leu
Prior art date
Application number
HU9203686A
Other languages
English (en)
Inventor
Charles Lee Hershberger
Jeffrey Lynn Larson
Original Assignee
Lilly Co Eli
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Lilly Co Eli filed Critical Lilly Co Eli
Publication of HUT63461A publication Critical patent/HUT63461A/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • C12N15/73Expression systems using phage (lambda) regulatory sequences
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/61Growth hormone [GH], i.e. somatotropin

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

A pHKY334 PLAZMID, AZ EK-BGH EXPRESSZIÓS VEKTORA, ÉS AZ
EZZEL TRANSZFORMÁLT GAZDASEJTEK cCocvOjut<Ó\ ciktt
ÉLI LILLY AND COMPANY, INDIANAPOLIS, Indiana,
AMERIKAI EGYESÜLT ÁLLAMOK
Feltalálók:
HERSHBERGER Charles Lee, NEW PALESTINE,
LARSON Jeffrey Lynn, INDIANAPOLIS,
Indiana, AMERIKAI EGYESÜLT ÁLLAMOK k
A bejelentés napja: 1992. 11. 2|^.
F ©elsőbbsége: 1991. 11. 27. (07/801,164),
AMERIKAI EGYESÜLT ÁLLAMOK
2Számos prokarióta és eukarióta gén nagy mennyiségben expresszálódik a prokariótákban, például az Escherichia coliban. Általában a klónozott gén transzkripciációja és transzlációja hatásos riboszóma kötőhelyeivel és erős promoterével rendelkező sok-kópiás vektorokat alkalmaznak (Masui, Y., Coleman, J., és Inouye, M. (1983) Experimental Manipulation of Gene Expression, ed. Inouye, M. (Academic, New York), pp. 15-32; Crowl, R., Seamans, C., Lomedico, P., és McAndrew, S. (1985) Gene 38:31-38). Ugyanakkor ezekkel a vektorokkal a gén-expresszió erőteljesen változik a különböző eukarióta génekre nézve. Kismértékű expressziót tulajdonítottak az E. coli proteázok fehérje degradációjának (Emerick, A. W., Bertolani, B. L., Ben-Bassat, A., White, T. J., és Konrad, M. W. (1984) Bio/Technology 2:165-168), vagy a heterológ génszekvenciákat tartalmazó mRNS-ek hatástalan transzlációs iniciációjának (Ray, Ρ. N., és Pearson, M. L. (1974) J. Mól. Bioi. 85:163-175; Ray, Ρ. N., és Pearson, M. L. (1975) Natúré (London) 253, 647-650; Kelley, R. L., és Yanofsky, C. (1982) Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 79:31203124; Nagai, K., és Thorgesen, H. C. (1984) Natúré (London) 309, 810-812; Varadarajan, R., Szabó, A., és Boxer, S. G. (1985) Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 82:5681-5684). Számos tanulmány említette, hogy a transzláció iniciációjának hatásossága a Shine-Dalgarno (SD) szekvencia és a 16S RNS közötti komplementaritás mértékétől, az SD szekvencia és az iniciációs kodon távolságától, valamint ennek az ablakrégiónak a nukleinsav szekvenciájától függ ((Shine, J., és
-3Dalgarno, L. (1975) Natúré (London) 254, 34-38; Gold, L.,
Pribnow, D., Schneider, T., Shineding, S., Singer, B. S., és
Stormo, G. D. (1981) Annu. Rév. Microbiol. 35.:365-403,-
Stromo, G. D. , Schneider, T. D. , és Gold, L. M. (1982)
Nucleic Acids Rés. 10 :2971 -2996; Kozák, M. (1983) Microbiol.
Rév. 47 :1- 45; Hűi, A. , Hayflick, J., Dinkelspiel, K., és
deBoer, H. A. (1984) EMBO J. 3:623-629; Shepard, M. G.,
Yelverton, E. , és Goeddel, D. V. (1982) DNA 1:125-131;
deBoer, H. A. Hűi, A. , Comstock, L. J., Wong, E., és Vasser,
M. (1983) DNS 2:231-235; Whitehorn, E. A., Livak, K. J., és Petteway, S. R., Jr. (1985) Gene 36:375-379). Egyértelmű, hogy a transzláció hatékonysága az mRNS 5'-le-nem-fordított területének külső SD szekvenciájától, és a fehérje kódoló terület 5'-végének szekvenciájától is függ (Stanssens, P., Remaut, E., és Fiers, W. (1985) Gene 36:211-223; Roberts, T. M., Kacich, R., és Ptashne, M. (1979) Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 76:760-764É Gold, L., Stormo, G., és Saunders, R. (1984) Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 81:7061-7065), illetve az mRNS 3'-le-nem-fordított területétől.
Ezeknek a megfigyeléseknek az összehangolása céljából a transzláció gátlását javasolták a helyi másodlagos szerkezet SD szekvenciát tartalmazó területeivel, és/vagy az AUG start kodonnal, úgy, hogy a riboszómák ne tudják iniciálni a transzlációt (Gheysen, D., Iserentant, D., és Fiers, W. (1980) Gene 9:1-12; Schwartz, M., Roa, M. , és Debarbouille, M. (1981) Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 78:2937-2941; Hall, Μ. N., Gabay, J., Debarbouille, M. , és Schwartz, M. (1982) Natúré (London) 295, 616-618; Das, A., Urbanowsky, J.,
-4Weissbach, H., Nestor, J., és Yanofsky, C. (1983) Proc .
Natl. Acad. Sci. U.S.A. 80:2879-2883; Berkhout, B., és van Dilin, J. (1985) Nucleic Acids Rés. 13:6955-6967) . Az ilyen másodlagos szerkezetek képződésével indokolhatjuk a metionil szarvasmarha növekedési hormon (Met-bGH) expresszió gyengülését annak nagy mennyiségű natív kodonjával (George, H. J., L'Italien, J. J., Pilacinski, W. P., Glassman, D. L., és .Krzyzek, R. A. (1985) DNS 4:273-281; Seeburg, Ρ. H., Sias, S., Adelman, J., deBoer, H. A., Hayflick, J., Jhurani, P., Goeddel, D. V., és Heynecker, H. L. (1983) DNS 2:37-45). Ennek az alapvető problémának a megoldására Seeburg és társai a szarvasmarha növekedési hormon (bGH) gén 5'-végén néhány bázis kicserélését tervezték, így az expresszált humán növekedési hormon (hGH) gén 5'-végéhez hasonló szekvenciát hoztak létre. Hasonlóképpen George és társai a bGH génben 13 kodon kicserélése után nagy mértékű expresszióról számoltak be (az összes sejtfehérje 15 %-a). Ezeket a közelítéseket a fehérjék aminosav szekvenciája megvédésének igénye korlátozza. A policisztronikus expressziós rendszereket úgy hozták létre, hogy a fenti korlátok elkerülhetők legyenmek.
A policisztronikus expressziós rendszerek előnyei közé tartozik egy promoter, mely a policisztronikus mRNS expresszióját irányítja, egy, vagy több riboszóma kötőhely, az egyes cisztronok transzlációs iniciációs kodonjai, és az egyes cisztronok transzlációs terminációs kodonjai. A szőbanforgó polipeptid termékek expressziós szintje függ a promoter hosszától, a policisztronikus üzenet riboszóma
-5kötőhelyeinek hatékonyságától, és a transzlációs iniciációs helyeknek a riboszóma kötőhelyekhez képest helyes elhelyezkedésétől.
A policisztronikus expressziós rendszerek létrehozása ellenére mind a szarvasmarha növekedési hormon, és származékai, mint például az EK-BGH (Met-Phe-Pro-Leu-(Asp)4-Leu-BGH, problémás marad. Összevetve a fenti problémákat, ezek elsősorban az expressziós vektorok szerkezeti labilitásából adódnak. A rekombináns DNS expressziós vektorok szerkezeti labilitása DNS deléciókat és átrendeződéseket eredményez, ami megváltoztatja a vektor szerkezetét. Ez jelentős probléma az említett expressziós vektorok által kódolt polipeptideket termelő nagy méretű tenyészetek esetén. Ezeket a vektorokat a kódolt polipeptidek expressziéját megakadályozó utakon módosíthatjuk. így amikor a tenyészetekben a polipeptidek expresszióját indukáljuk, a polipeptid expresszió hiánya irányában jelentkező negatív szelektív nyomás gyakran eredményezi a módosított expressziós vektorok akkumulációj át.
A fentiek alapján a szabályozó kirendeltségek, például a Food and Drog Administration az orvosi, vagy mezőgazdasági alkalmazásban levő polipeptid termékek termelésében alkalmazott rekombináns DNS expressziós vektorok teljes jellemzését követelik meg. Egyértelműen igazolni kell, hogy a rekombináns expressziós vektor a fermentáció végén azonos az inokulumban levő expressziós vektorral.
-6Ezt az expressziós vektor szerkezeti, és méret szerinti analízisével, valamint a kívánt terméket, és az ezt kódoló szekvenciát körülvevő területet, különösképpen a fontos funkciókat - így például a promotert -körülvevő régiók nukleotid szekvenciájának igazolásával bizonyíthatjuk.
A működőképesen kapcsolt gén transzkripciójához Escherichia coli bakteriofágot alkalmazó rekombináns DNS vektorok a szerkezeti labilitás következtében gyakran válnak problémássá. Ezeknek a vektoroknak a szerkezete a fermentációs eljárás végére sok esetben módosul. A jelen találmány fontos szempontja egy stabil expressziós vektor létrehozása, valamint az EK-BGH transzkriptum szabályozható transzkripciójának biztosítása.
A jelen találmány egy expressziós vektort nyújt az EKBGH termeléséhez, mely stabil, jól szabályozott, és magas színtű EK-BGH termelést tesz lehetővé. így a jelen találmány jelentős előnyt nyújt az EK-BGH, és a kapcsolódó polipeptidek termelése területén.
AZ ÁBRÁK RÖVID ISMERTETÉSE
A mellékelt ábrák nem méretarányosak.
Az 1. ábra a pCZR125 plazmid restrikciós helyét, és funkciós térképét mutatja be.
A 2. ábra a pHPR91 plazmid restrikciós helyét, és funkciós térképét mutatja be.
A 3. ábra a pHPR97 plazmid restrikciós helyét, és
-7funkciós térképét mutatja be.
A 4. ábra a pHKY334 plazmid restrikciós helyét, és funkciós térképét mutatja be.
A jelen találmány szerinti rekombináns DNS expressziós vektort pHKY334-ként jelöltük. A pHKY334 plazmid restrikciós helyét, és funkciós térképét a 4. ábrán mutatjuk be. A pHKY334 plazmid két cisztronból álló expressziós rendszert mutat be, melyet egy lambda pL promoter, egy szelektálható markerként működő tetraciklin rezisztencia gén, egy a pHKY334 plazmidból származó replikációs origin, és egy rop gén vezet, mely a replikációs originból származó pBR322-t tartalmazó vektorok plazmidjainak másolását ellenőrzi.
A pBR322 plazmid, és a pLUO plazmid öszehasonlítása, melyet a 4.874.703 számú amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás - melyet 1989. október 17-én jegyeztek be - ismertet, számos általános szerkezeti vonást mutat be. a pLUO plazmid a szarvasmarha növekedési hormon analóg egyik expressziós vektora, melyet EK-BGH-nek neveztek el. A pCZR125 plazmid restrikciós helyét, és funkciós térképét az 1. ábrán mutatjuk be. A pCZR125 plazmid, és a pHKY334 plazmid közötti általános szerkezeti vonások ellenére szükséges volt a pCZR125 plazmidot egy bakteriosztatikus, vagy baktericid koncentrációjú antibiotikum jelenlétében az EK-BGH expresszió indukálásakor megakadályozni a struktúrális deléciókat tartalmazó, és így az EK-BGH expressziót megszűntető plazmidok akkumulációját. A pCZR125 plazmid szerkezeti labilitása miatt bakteriosztatikus, vagy
-8bakterícid koncentrációjú antibiotikumok hozzáadása volt szükséges akkor, amikor az EK-BGH termelést indukáltuk. Ezzel szemben a pHKY334 plazmid stabil az EK-BGH expresszió indukálása során, és így nem igényel további antitesteket a hiányzó, vagy hibás plazmidok jelenlétének kizárásához, melyek megakadályozzák az EK-BGH további termelését.
A pHKY334 plazmid fokozott stabilitása részben az EKBGH transzkripció irányítására alkalmazott lambda pL prromoter fág módosulásainak tulajdonítható. A lambda pL prromotert a 3. példa B. fejezetében bemutatásra kerülő EKBGH szintézis során az expresszió irányítására alkalmazzuk. A lambda pL promoter szintézise a lambda pL promoterrel idegen 5'DNS szekvenciák kizárásához szükséges. A lambda pL promoterrel idegen 51 DNS szekvenciák jelenléte részben hozzájárult a plazmidok, így például a pLUO plazmid, és a pCZR125 plazmid labilitásához. A pLUO plazmidban, és a pCZR125 plazmidban jelenlevő, de a pHKY334 plazmidból eltávolított idegen DNS szekvencia a pBR322 plazmidból klónozott tetraciklin rezisztencia gén restrikciós fragmentumának invert megismétlése volt. Ezt a promotert p97-ként jelöltük a mellékelt ábrán.
A pHKY334 plazmidban alkalmazott tetraciklin rezisztencia gén a pBR322 plazmidból származott, mint szelketálható marker. A tetraciklin rezisztencia gént a mellékelt ábrákon mint tét R, vagy tét jelöltük. A pHKY334 plazmidban alkalmazott replikációs origint a mellékelt ábrákon mint őri, vagy origin jelöltük. A pHKY334 plazmid két rop gént tartalmazott, melyeket a pPR12 plazmidból
-9állítottunk elő, amit a 4.436.815 számú amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás ismertet, melyet 1984. március 13-án jegyeztek be. A rop gén a replikációs originből származó pBR322-t tartalmazó plazmidokban a plazmidmásolatok számát ellenőrzi. A pHKY334 plazmidnak megközelítőleg 15-30 másolata van sejtenként. A rop gént a mellékelt ábrákon mint rop jelöltük. Az itt bemutatott vektorok mindegyikében a hőérzékeny cI857 lambda-pL represzort alkalmaztuk, melyet a mellékelt ábrákon mint CI857 jelöltük.
Számos gazdasejt alkalmazható a pHKY334 plazmid esetén. A pHKY334 plazmid legelőnyösebb gazdasejtje az E. coli K12 RV308. Az E. coli K12 RV308 NRLL B-15624 számon az alábbi helyről szerezhető be: Northern Régiónál Research Laboratory, Peoria, Illinois. Az E. coli MM294 (ATCC 31446), az E. coli C600 RM, mely C660-ként is ismert (ATCC 33525), és az E. coli JM109 (ATCC 53323) szintén megfelelő gazdasejt.
Az alábbi példákban bemutatásra kerülő restrikciós endonukleázokat, és a T4 DNS ligázt, melyeket a DNS fragmentumok manipulálása során alkalmaztunk, az alábbi helyekről szereztük be: Boehringer Mannheim Biochemicals, P. O. Box 50414, Indianapolis, Indiana 46250, vagy New England Biolabs, 32 Tozer Road, Beverly, Massachusetts 01915-5510. Amennyiben másképpen nem jelöltük, a reagensek vagy a Boehringer Mannheim-tői, vagy a New England Biolabs-tól származtak, a jelen találmány céljaira ekvivalensnek, és egymással helyettesíthetőek voltak.
-10Az alábbi példák korlátozások nélkül szemléltetik a jelen találmányt.
1. példa
A PCZR125 plazmid létrehozása
A. A pLUO 5.8 kb méretű Xbal-BamHI restrikciós fragmentumának létrehozása
A pLUO plazmidot a 4.874.703 számú amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírásban ismertették, melyet 1989. október 17-én jegyeztek be. A 4.874.703 számú amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírást itt teljes egészében referenciaként említjük meg.
A pLUO plazmidból 25 gg mennyiséget teljes mértékben feltártunk 15 μΐ (150 egység) Xbal 500 μΐ reakciótérfogatú elegyével, mely 60 mM Tris-HCl-t (pH 7.5), 10 mM MgC^-t, 100 mM NaCl-t, és 1 mM β-merkapto-etanolt tartalmazott. A Trisz Trisz-[hidroximetil]-amino-metán volt. Az elegyet 37°C-on egy órát inkubáltuk. A feltárt DNS-t kétszer extraháltuk fenol-kloroform (50:50) eleggyel, majd a vizes fázist visszanyertük. A vizes fázisból a DNS-t 2.5 térfogatnyi abszolút etanol, és 0.1 térfogatnyi 3.0 M nátrium-acetát hozzáadásával nyertük vissza. A DNS-t centrifugálással összegyűjtöttük, és 50 μΐ vízben feloldottuk.
-11A fenti DNS-t BamHI alkalmazásával, az alábbi eljárás szerint, részlegesen feltártuk. 50 μΐ Xbal-el feltárt DNS-t elegyítettünk 0.2 μΐ (2 egység) BamHI 150 μΐ reakciótérfogatú elegyével, mely 10 mM Tris-HCl-t (pH 7.8), 7 mM MgCl2-t, 150 mM NaCl-t, és 6 mM β-merkapto-etanolt tartalmazott. Az elegyet 37°C-on öt percig inkubáltuk. Az anyagot a fenti eljárás szerint megtisztítottuk, a mintát visszanyertük, és 150 μΐ TE-ben (10 mM Trisz-HCl (pH 7.4), és 1 mM etilén-diamin-tetraecetsav [EDTA]) felszuszpendáltuk. A mintához 5 μΐ futtató puffért (25 % v/v glicerol, 0.05 % w/v brómfenol-kék, és 0.5 % w/v xiléncianol) adtunk, és a feltárt DNS-t 1 %-os agaróz gélen gélelektroforézissel frakcionáltuk, Maniatis és társai eljárása szerint (Maniatis és társai, 1982, Molecular Cloning; Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N. Y., pl50-172). Az agaróz gélt hígított etidium-bromidal festettük meg, és a megközelítőleg
5.8 kb méretű Xbal-BamHI restrikciós fragmentumokat 300 nmes UV fénnyel tettük láthatóvá. A gélnek a restrikciós fragmentumot tartalmazó részét megtartottuk. A DNS-t a gél darabokra vágásával, fenol-kloroform (50:50) eleggyel történő kétszeri extrahálásával, és a DNS etanolos kicsapásával tisztítottuk, lásd fent.
B. Az Xbal-Ndel linker létrehozása
Az alábbi komplementer DNS szegmenst automata DNS • ·
-12szintetizátoron (Applied Biosystems 380B) szintetizáltuk meg, a β-cianoetil-foszforamidit kémia szerint:
' -CTAGAGGGTATTAATAATGTATATTGATTTTAATAAGGA
GGAATAATCA-3' (SEQ ID NO: 1)
5'-TATGATTATTCCTCCTTATTAAAATCAATATACATTATT
AATACCCT-3' (SEQ ID NO: 2).
Ezt az egyszálú DNS szegmenst általánosan ismert módon tisztítottuk meg, és vízben felszuszpendáltuk.
Az egyszálú DNS szegmensből 5 μΐ-t elegyítettünk, és 70°C-ra felmelegítettünk. Ezután az elegyet szobahőmérsékletűre hűtöttük, és temperálódul hagytuk a DNS szegmenseket.
A temperálódott DNS szegmenseket 1 μΐ (10 egység) T4 polinukleotid kinázzal kezeltük, 70 mM Trisz-HCl (pH 7.6), 0.1 M KC1, 10 mM MgCl2, 5 mM DTT, és 0.2 mM adenin-5'trifoszfát elegyében, 20 μΐ reakciótérfogatban. Az elegyet 37°C-on 30 percig inkubáltuk. Ezután az elegyet 70°C-on öt percig inkubáltuk, majd szobahőmérsékletre hűtöttük.
C. Szintetikus EK-BGH gén előállítása
Az EK-BGH gént kódoló DNS fragmentumot az l.B. példa eljárása szerint szintetizáltuk. Az EK-BGH-t kódoló gént az egyszálú DNS 16 kémiaialg szintetizált darabjából hoztuk • ·
-13létre, melyek hossza 71-83 nukleotid között volt, és amelyek a temperálódás után az EK-BGH gén összes komplementer szálát tartalmazták. A szintetikus EK-BGH gén szekvenciája az alábbi:
' -TATGTTCCCATTGGATGATGATGATAAGTTCCCAGCCATGTCCTT
I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I l.l I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I ACAAGGGTAACCTACTACTACTATTCAAGGGTCGGTACAGGAA
GTCCGGCCTGTTTGCCAACGCTGTGCTCCGGGCTCAGCACCTGCATCAGCTGGCTGCTGA
I II I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I CAGGCCGGACAAACGGTTGCGACACGAGGCCCGAGTCGTGGACGTAGTCGACCGACGACT
CACCTTCAAAGAGTTTGAGCGCACCTACATCCCGGAGGGACAGAGATACTCCATCCAGAA
I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I GTGGAAGTTTCTCAAACTCGCGTGGATGTAGGGCCTCCCTGTCTCTATGAGGTAGGTCTT
CACCCAGGTTGCCTTCTGCTTCTCTGAAACCATCCCGGCCCCCACGGGCAAGAATGAGGC
I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I GTGGGTCCAACGGAAGACGAAGAGACTTTGGTAGGGCCGGGGGTGCCCGTTCTTACTCCG
CCAGCAGAAATCAGACTTGGAGCTGCTTCGCATCTCACTGCTCCTCATCCAGTCGTGGCT I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I
GGTCGTCTTTAGTCTGAACCTCGACGAAGCGTAGAGTGACGAGGAGTAGGTCAGCACCGA
TGGGCCCCTGCAGTTCCTCAGCAGAGTCTTCACCAACAGCTTGGTGTTTGGCACCTCGGA
I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I ACCCGGGGACGTCAAGGAGTCGTCTCAGAAGTGGTTGTCGAACCACAAACCGTGGAGCCT
CCGTGTCTATGAGAAGCTGAAGGACCTGGAGGAAGGCATCCTGGCCCTGATGCGGGAGCT
I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I GGCACAGATACTCTTCGACTTCCTGGACCTCCTTCCGTAGGACCGGGACTACGCCCTCGA
GGAAGATGGCACCCCCCGGGCTGGGCAGATCCTCAAGCAGACCTATGACAAATTTGACAC
I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I H CCTTCTACCGTGGGGGGCCCGACCCGTCTAGGAGTTCGTCTGGATACTGTTTAAACTGTG
AAACATGCGCAGTGACGACGCGCTGCTCAAGAACTACGGTCTGCTCTCCTGCTTCCGGAA
I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I TTTGTACGCGTCACTGCTGCGCGACGAGTTCTTGATGCCAGACGAGAGGACGAAGGCCTT
GGACCTGCATAAGACGGAGACGTACCTGAGGGTCATGAAGTGCCGCCGCTTCGGGGAGGC
I I I I I I I I I l 'l I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I I l 'l I I I I I I I I I I I CCTGGACGTATTCTGCCTCTGCATGGACTCCCAGTACTTCACGGCGGCGAAGCCCCTCCG
CAGCTGTGCCTTCTAG-3'
I I I I I I I I I I I I I I I I
GTCGACACGGAAGATCCTAG-51.
-14A szintetikus EK-BGH gén kódoló szálát mint SEQ ID NO: 3 mutatjuk be.
D. DNS ligálás
Az l.A. példa eljárása szerint előállított pLUO restrikciós fragmentumból 2 μΐ-t (0.2 pg), az l.B. példa eljárása szerint előállított DNS fragmentumból 2 μΐ-t (8.75 pmol), és az l.C. példa eljárása szerint előállított DNS fragmentumból 2 μΐ-t (0.1 μg') 1 μΐ (10 egység) T4 DNS ligázzal, 50 mM Trisz-HCl-el (pH 7.6), 10 mM MgCl2-vel, 1 mM ditioeritrollal, 1 mM adenozin-5'-trifoszfáttal, és 5 % (w/v) polietilén-glikol-8000-el, összesen 10 μΐ reakciótérfogatban ligáltunk a pCZR125 plazmid létrehozása céljából. A pCZR125 plazmid restrikciós helyét, és funkciós térképét az 1. ábrán mutatjuk be. Az elegyet 16°C-on 16 órán keresztül inkubáltuk. Az így kapott elegy egy részét használtuk fel az Escherichia coli sejtek transzformálására, lásd lent.
E. A transzformálás eljárása
Az Escherichia coli K12 RV308 sejteket NRRL B-15624 számon az alábbi helyről szereztük be: Northern Régiónál Research Laboratory, Peoria, Illinois. Az E. coli K12 RV308 sejtek tenyészetéből 50 ml-t L-broth (10 g tripton, 10 g • 4
-15NaCl, és 5 g élesztő extraktum per liter víz) táptalajon O.D.j-go~en θ·5 abszorbancia egység értékig tenyésztettük. A tenyészetet jégen 10 percig hűtöttük, majd a sejteket centrifugálissal összegyűjtöttük. A sejt pelletet 25 ml hideg oldatban (50 ml CaC^^O mM Trisz-HCl; pH 8.0) szuszpendáltuk, és 15 percig jégen inkubáltuk. A sejteket centrifugálással összegyűjtöttük, a sejt pelletet 2.5 ml hideg oldatban (50 ml CaC^ílO mM Trisz-HCl; pH 8.0) szuszpendáltuk, és a mintát 4°C-on 16 órán keresztül tartottuk.
Ebből a sejtszuszpenzióból 200 μΐ-t a fenti DNS készítmény 50 μΐ-ével elegyítettünk, és jégen 60 percig inkubáltunk. Az elegyet 32°C-on 45 percig inkubáltuk, majd 2 percre jégbe helyeztük. Öt ml TY tápközeget (1 % tripton, 0.5 % élesztő extraktum, és 1 % nátrium-klorid) adtunk az elegyhez, és 32°C-on további két órán keresztül inkubáltuk. Ennek a tenyészetnek 100 μΐ mennyiségét TY agar lemezekre (1 % tripton, 0.5 % élesztő extraktum, 1 % nátrium-klorid, és
1.5 % agar, pH 7.4) oltottuk, melyek 5 μg/ml tetraciklint tartalmaztak. A lemezeket 16 órán keresztül 32°C-on inkubáltuk. A tetraciklin rezisztens tenyészeteket egyenként kiválasztottuk, és 2 ml TY tápközegre inokuláltuk. A tenyészeteket 37°C-on 16 órán keresztül inkubáltuk, levegőztetés mellett.
F· A DNS izolálási eljárás
A transzformánsok tenyészetéből a plazmid DNS-t az alábbiak szerint izoláltuk. Amennyiben másképpen nem jeleztük, az alábbi eljárás minden lépését környezeti hőmérsékleten hajtottuk végre. Az egyes tenyészetekből 1.5 ml-t mikrocentrifuga csövekbe vittünk. A sejteket centrifugálással gyűjtöttük össze. Ά felülúszót fine-tip pipettával eltávolítottuk, és a sejt pelletet 100 μΐ térfogatú, 50 mM glükózt, 10 mM EDTA-t, és 25 mM Trisz-HCl-t (pH 8.0) tartalmazó oldatban felszuszpenzáltuk. Szobahőmérsékleten 5 percig inkubáltuk, majd 200 μΐ alkalikus nátrium-dodecil-szulfát (SDS) oldatot (0.2 N NaOH, 1 % SDS) adtunk hozzá. Az elegyet enyhe rázás után öt percig jégen tartottuk. Ezután 150 μΐ kálium-acetát oldatot készítettünk (11.5 ml jégecetsav, és 28.5 ml víz 60 ml 5 M kálium-acetáthoz). A keletkező oldatot (mely a káliumra nézve 3 M-os, és az acetátra nézve 5 M-os volt) enyhe rázás mellett a mintát tartalmazó csőhöz adtuk. A mintát öt percig jégen tartottuk, majd 10 percig centrifugáltuk. A felülúszót egy másik centrifuga csőbe vittük át. Azonos térfogatú fenolt (0.1 M Trisz-szel telítve; pH 8.0) adtunk hozzá. A mintát elegyítettük, és 5 percig centrifugáltuk. A felülúszót összegyűjtöttük, és a fenolos extrakciót megismételtük. A felülúszóhoz 1 ml jéghideg abszolút etanolt adtunk. A mintát elegyítettük, és szárazjégen tartottuk,
-17ί • * ·»· • · · « · a · · amíg erősen viszkózussá vált, de meg nem fagyott. A DNS-t öt perces centrifugálással gyűjtöttük össze. A felülúszót leszívással eltávolítottuk, és a DNS pellethez 500 μΐ 70 %os etanolt adtunk. A mintát a pelletek mosása céljából enyhén ráztuk, és két percig centrfugáltuk. A felülúszót eltávolítottuk, és a DNS pelletet vákumban megszárítottuk. A DNS-t 50 μΐ TE (10 mM Trisz-HCl (pH 8.0) és 1 mM EDTA) oldatban feloldottuk, és 4°C-on tároltuk.
G. Nagy mennyiségű DNS izolálása
A nagy mennyiségű pCZR125 plazmid DNS izolálását az alábbiak szerint végeztük el. Egy liter mennyiségű, 5 Mg/ml tetraciklint tartalmazó L-broth táptalajt inokuláltunk az Escherichia coli RV308/pCZR125 tenyészettel. A tenyészet 32°C-on 16 órán keresztül növekedett. A tenyészetet GSA rotorban (Sorvall) 6000 rpm mellett, 4°C-on 5 percig centrifugáltuk. A keletkező felülúszót elöntöttük, és a sejt pelletet 40 ml TES pufferben (10 mM Trisz-HCl (pH 7.5), 10 mM HC1, és 1 mM EDTA) mostuk, majd centrifugálással összegyűjtöttük. A felülúszót elöntöttük, és a sejt pelletet szárazjég-etanol fürdőben megfagyasztottuk, majd felolvasztottuk. A felolvasztott sejt pelletet 10 ml mennyiségű, 25 % szukrózt és 50 mM EDTA-t tartalmazó oldatban felszuszpendáltuk. Az oldathoz 1 ml 5 mg/ml lizozim oldatot, 3 ml 0.25 M EDTA-t (pH 8.0), és 100 μΐ 10 mg/ml forralt RNS-áz A-t (beszerezhető az alábbi helyről: Sigma
-18: .·' • » 4 · « ♦ ·*· 4 « ··
Chemical Co., P.O. Box 14508, St. Louis, Mo.) adtunk, majd 15 percig jégen inkubáltuk. A lizozimmal kezelt sejtekhez 3 ml lizáló oldatot adtunk (3 ml 10 %-os Triton X-100, 75 ml 0.25 M EDTA (pH 8.0), 15 ml Trisz-HCl (pH 8.0), és 7 ml ^O), az oldatot elegyítettük, és az így kapott elegyet további 15 percig jégen inkubáltuk. A lizált sejteket szárazjég-etanol fürdőben megfagyasztottuk, majd felolvasztottuk.
A sejttörmeléket az elegyből 25.000 rpm melletti, 40 perces centrifugálással, SW28.1 rotor alkalmazásával (Beckman, Scientific Instrument Division, Campus Drive at Jamboree Blvd., Irvine, CA 92713), és puffereit fenolos extrakcióval eltávolítottuk. A sejt extraktumhoz körülbelül 30.44 g CsCl-t és megközelítőleg 1 ml 5 mg/ml etidiumbromidot adtunk, majd a térfogatot TES pufferrel (10 mM Trisz-HCl (pH 7.5), 10 mM HC1, és 1 mM EDTA) 40 ml-re egészítettük ki. Az elegyet VTÍ50 ultracentrifuga csőbe (Beckman) dekantáltuk, lezártuk azt, és VTÍ50 rotorban 42.000 rpm mellett 16 órát centrifugáltuk. Az így kapott, ultraviola fénnyel láthatóvá tett plazmid sávokat izoláltuk, és Ti75 csőben, és rotorban (Beckman) 50.000 rpm mellett 16 órát centrifugáltuk. A szükséges térfogat beállítást 0.761 g/ml CsCl-t tartalmazó TES pufferrel végeztük el. A plazmid sávokat ismét izoláltuk, az etidium-bromid eltávolítása céljából sóval telített 2-propanollal extraháltuk, és TES pufferrel 1:3 arányban hígítottuk. Egy térfogatnyi nátriumacetátot és két térfogatnyi abszolút etanolt adtunk az oldathoz, majd -20°C-on 16 órát inkubáltuk. A plazmid DNS-t : .·· • « *·♦ <··· · • *·
-1910.000 rpm melletti, 15 perces centrifugálással, SS34 rotor (Sorvall) alkalmazásával pelletizáltuk. Az így kapott plazmid DNS-t TE pufferben szuszpendáltuk, és -20°C-on tároltuk.
2. példa
A pHPR91 létrehozása
A. A pCZR125 1876 bázispárből álló EcoRI-Scal restrikciós fragmentumának létrehozása
A pCZR125 plazmidból 10 ^g-ot 30 egység EcoRI 100 μΐ teljes rekciótérfogatú elegyével, mely 100 ^g/ml BSA-t (szarvasmarha szérum albumin), 50 mM Trisz-HCl-t (pH 8.0), 10 mM MgCl2~t, és 100 mM NaCl-t tartalmazott, 37°C-on egy óra alatt teljesen feltártunk. Ezután a mintát 70°C-on 10 percig inkubáltuk az inaktív EcoRI eltávolítása céljából.
Az EcoRI-el feltárt plazmidot DNS polimeráz I alkalmazásával (Klenow Fragment) az alábbi eljárással tettük tompa-végűvé (blunt-ended). A fenti reakcióelegy 25 μΐ-ét 50 μΐ-re állítottuk be, úgy hogy az 250 μΐ dATP-t (dezoxiadenozin-5'-trifoszfát), 250 μΐ dCTP-t (dezoxi-citozin-5'trifoszfát), 250 μΐ dGTP-t (dezoxi-guanadin-5'-trifoszfát), 250 μΐ dTTP-t (dezoxi-timidin-5'-trifoszfát), 50 mM TriszHCl-t (pH 7.8), 10 mM MgCl2-t, 10 mM β-merkapto-etanolt, és 5 egység DNS polimeráz I-et (Klenow Fragment) tartalmazott.
• ·
-20A mintát 37°C-on 30 percig, az egyszálú restrikciós fragment kinyúlás komplementer szintézisének befejezéséig inkubáltuk. Ezután a reakcióelegyet 70°C-on 15 percig inkubáltuk a Klenow fragment inaktiválása céljából.
Az EcoRI-el feltárt, Klenow fragmenttel kezelt pCZR125 plazmid DNS-t ezután Scal alkalmazásával, 37°C-on történő egy órás inkubálással, 150 μΐ reakciótérfogatban, mely 50 mM Trisz-HCl-t (pH 7.8), 10 mM MgC^-t, 100 mM NaCl-t, 100 μg/ml BSA-t, és 18 egység Scal-t tartalmazott, teljesen feltártuk. A Scal-t ezután a minta 70°C-on történő 15 perces inkubálásával inaktiváltuk.
B. A pBR12 5051 bázispárból álló Aval restrikciós fragmentumának létrehozása
A pBR12 plazmidot a 4.436.815 számú amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírásban ismertették, melyet 1984. március 13-án jegyeztek be, és melyet itt teljes egészében referenciaként említünk meg.
A pBR12 plazmidból 10 μg mennyiséget teljes mértékben feltártunk 30 egység Aval 500 μΐ reakciótérfogatú elegyével, mely 100 gg/ml BSA-t, 50 mM Tris-HCl-t (pH 8.0), 10 mM MgCl2-t, és 50 mM NaCl-t tartalmazott. Az elegyet 37°C-on egy órát inkubáltuk. Az elegyet ezután 70°C-on 15 percig inkubáltuk a Aval inaktiválása céljából.
Az Aval-el feltárt pBR12 plazmid mintát az alábbi eljárással tettük tompa-végűvé (blunt-ended). A fenti
-21reakcióelegy 25 μΐ-ét 50 μΐ-re állítottuk be, úgy hogy az
250 μΐ dATP-t (dezoxi-adenozin-51-trifoszfát), 250 μΐ dCTP-t (dezoxi-citozin-51-trifoszfát) , 250 μΐ dGTP-t (dezoxiguanadin-5'-trifoszfát), 250 μΐ dTTP-t (dezoxi-timidin-5'trifoszfát), 50 mM Trisz-HCl-t (pH 7.8), 10 mM MgC^-t, 10 mM β-merkapto-etanolt, és 5 egység DNS polimeráz I-et (Klenow Fragment) tartalmazott. A mintát 37°C-on 30 percig, az egyszálú restrikciós fragment kinyúlás komplementer szintézisének befejezéséig inkubáltuk. Ezután a reakcióelegyet 70°C-on 15 percig inkubáltuk a Klenow fragment inaktiválása céljából.
C. A pHPR91 végső összeillesztése
A 2.A., és a 2.B. példa eljárása szerint előállított DNS mintákat az 1. példa eljárása szerint megtisztítottuk, és etanollal kicsaptuk. A DNS-t centrifugálással visszanyertük, megszárítottuk, és 10 μΐ vízben felszuszpendáltuk. A DNS fragmenteket ezután 4°C-on, egy éjszaka alatt, 40 μΐ reakciótérfogatban, mely 50 mM Tris-HCl-t (pH 7.8), 10 mM MgCl2-t, 5 mM DTT-t (ditioeritrol), 5 % glicerolt, 0.2 mM adenozin-51-trifoszfátot, és 40 egység DNS ligázt tartalmazott, ligáltuk.
A ligáló elegy egy részét alkalmaztuk az Escherichia coli K12 MM294 sejteknek az l.E. példa eljárása szerint történő transzformálására. Az E. coli K12 MM294 sejteket ATCC 31446 számon az alábbi helyről szereztük be: American
-22Type Culture Collection, Rockville, Maryland 20852. A transzformáns sejteket 10 gg/ml tetraciklint tartalmazó Lagaron szelektáltuk. Az egyes tenyészeteket kiszúrtuk, és 10 ^g/ml tetraciklint tartalmazó L-húsleves táptalajon tenyésztettük. A kívánt pHPR91 plazmidot tartalmazó tetraciklin rezisztens transzformánsokat restrikciós enzimes analízist alkalmazó plazmid tisztítási eljárás után azonosítottuk. A pHPR91 plazmid Pvul-el történő feltárása egy 1450 bázispárból álló fragmentet eredményezett. A pHPR91 plazmid restrikciós helyét és funkciós térképét a 2. ábrán mutatjuk be.
3. példa
A pHPR97 plazmid megszerkesztése
A. Az EcoRI-BqlII-el feltárt PCZR125 plazmid létrehozása
A pCZR125 plazmid DNS-ből 10 μ$ mennyiséget teljes mértékben feltártunk 5 μΐ (55 egység) EcoRI és 5 μΐ (55 egység) BgLII 60 μΐ reakciótérfogatú elegyével, mely 10 mM Tris-HCl-t (pH 7.5), 10 mM MgC^-t, 100 mM NaCl-t, és 10 mM merkapto-etanolt tartalmazott. Az elegyet 37°C-on két órát inkubáltuk. A feltárt DNS-t megtisztítottuk, és a 6.0 kb méretű fragmentet az l.A. példa eljárása szerint preparatív agaróz gélelektroforézissel izoláltuk.
-23Β. Transzkripcionális aktiváló DNS szekvencia létrehozása
A transzkripcionális aktiváló DNS szekvenciát az alábbi egyszálú DNS szekvencia szintézisével hoztuk létre:
(SEQ ID NO: 5)
5'-AATTCGATCTCTCACCTACCAAACAATGCCCCCCTGCAAA
AAATAAATTCATATAAAAAACATACAGATAACCATCTGCG gtgataaattatctctggcggtgttgacataaataccact GGCGGTGATACTGAGCACATCA-31 (SEQ ID NO: 6)
Ezeket az egyszálú DNS szegmenseket egy automata DNS.· szintetizátoron (Applied Biosystems 380B) szintetizáltuk meg, a β-cianoetil-foszforamidit kémia szerint. A szintetikus DNS szegmenseket megtisztítottuk, és TE pufferben 0°C-on tároltuk.
Az egyszálú DNS szegmensből 10 /xl-t elegyítettünk, és 70°C-on 5 percig melegítettünk. Ezután az elegyet szobahőmérsékletűre hútöttük, és 30 percig temperálódni
-24hagytuk a DNS szegmenseket.
A temperálódott DNS szegmenseket 1 μΐ (10 egység) T4 polinukleotid kinázzal kezeltük, 70 mM Trisz-HCl (pH 7.6), 0.1 M KC1, 10 mM MgCl2, 5 mM DTT, és 0.2 mM adenin-5'trifoszfát elegyében, 20 μΐ reakciótérfogatban. Az elegyet 37°C-on 30 percig inkubáltuk. Ezután az elegyet 70°C-on öt percig inkubáltuk, majd szobahőmérsékletre hűtöttük.
C. A pHPR97 végső összeillesztése
A 3.A. példa eljárása szerint előállított restrikciós fragment 2 /ig mennyiségét, és a 3.B. példa eljárása szerint előállított kinázzal kezelt DNS fragment 1 ^g mennyiségét az l.D példa eljárása szerint ligáltuk, azzal az eltéréssel, hogy az elegyet szobahőmérsékleten 1 órát inkubáltuk, 5 percre 70°C-ra melegítettük, majd szobahőmérsékletre hűtöttük. A ligáit DNS egy részét alkalmaztuk az Escherichia coli K12 MM294 sejteknek az l.E. példa eljárása szerint történő transzformálására. Az E. coli K12 MM294 sejteket ATCC 31446 számon az alábbi helyről szereztük be: American Type Culture Collection, Rockville, Maryland 20852. A tetraciklin rezisztens transzformánsokat szelektáltuk, és plazmid DNS-üket az l.F. példa szerinti alkalikus-lízises eljárással izoláltuk. Restrikciós analízist alkalmaztunk a pHPR97 plazmid szerkezetének igazolása céljából. A pHPR97 plazmid restrikciós helyét és funkciós térképét a 3. ábrán mutatjuk be.
-254. példa __
A PHKY334 plazmid megszerkesztése
A. Áttekintés
A pHKY334 plazmidot a pHPR97 plazmid transzkripcionális aktiváló szekvenciájának a pHPR97 plazmid transzkripcionális aktiváló szekvenciájával történő kicserélésével hoztuk létre. A 2. ábrára hivatkozva (pHPR91), és a 3. ábrára hivatkozva (pHPR97) az látható, hogy a pHKY334 plazmid megszerkesztése csak a pHPR91 és pHPR97 plazmidok Sáli és Xbal restrikciós endonukleázzal történő kettős feltárását igényli, majd a gélen való izolálást, és a pHPR91 nagyobb, és a pHPR97 kisebb fragmentjének ligálását.
B. A pHPR91 plazmid megközelítőleg 5.718 kb méretű Sall/Xbal fragmentiének létrehozása
A pHPR91 plazmidból 10 μg mennyiséget teljes mértékben feltártunk 50 μΐ Boehringer Mannheim-féle H pufferben (50 mM Trisz-HCl, 100 mM NaCl, 100 mM MgCl2, 1 mM ditioeritrol (DTT), pH 7.5, 37°C-on, és 100 μ$ szarvasmarha szérum albumin), megközelítőleg 20 U Xbal és megközelítőleg 20 U Sáli enzim alkalmazásával (Boehringer Mannheim). A feltárt
-26anyagot 37°C-on megközelítőleg két órán keresztül inkubáltuk. A pHPR91 plazmid megközelítőleg 5.718 kb méretű Sall/Xbal fragmentjét a feltárt anyagból agaróz gélelektroforézis alkalmazásával izoláltuk. A gélt etidiumbromid oldattal megfestettük, és a sávokat 260 nm-es UV fénnyel tettük láthatóvá. A kívánt sávok alatt és felett a gélt bemetszettük, és a hasítékokba egy darab DEAE papírt helyeztünk. A gélt visszatettük az elektroforézis kamrába, és a DNS-t elektroforézissel átvittük a papírra. A papírt új csőbe helyeztük, és 5 ml mennyiségű 1.0 M NaCl-t, és 10 mM Trisz-HCl-t (pH 8.0) tartalmazó oldattal eluáltuk. Az így kapott szuszpenziót 10 ml-es fecskendőbe helyezett szilikonozott üveggyapoton szűrtük át, melyhez 0.45 μ-os steril szűrőt kapcsoltunk (Acrodisc-Gelman Sciences, Incorporated, 600 South Wagner Road, Ann Arbor, Michigan 48106). Az elegyhez 10 ml 100 %-os etanolt adtunk, és a csövet összeráztuk. Egy éjszakára -20°C-ra helyeztük. A DNS csapadékot HB4 rotorban (DuPont Sorval) 10.000 rpm melletti 20 perces (4°C) centrifugálással nyertük vissza. A DNS pelletet levegőn megszárítottuk, és 100 μΐ TE pufferben felszuszpendáltuk.
C. A pHPR97 plazmid megközelítőleg 0.938 kb méretű Sall/XbaT fragment~i ének létrehozása
A pHPR97 plazmidból 10 ^g mennyiséget a 4.B. példa eljárása szerint Xbal és Sáli enzim alkalmazásával
-27feltártunk. A pHPR97 plazmid megközelítőleg 0.938 kb méretű
Sall/Xbal fragmentjét a 4.B. példa eljárása szerint gélelektroforézis alkalmazásával megtisztítottuk, extraháltuk, és kicsaptuk.
D. A PHPR91 plazmid megközelítőleg 5.718 kb méretű Sall/Xbal fragmentjének (4.B. példa), és a pHPR97 plazmid megközelítőleg 0.938 kb méretű Sall/Xbal frátmentjének (4.C. példa) ligálása a kívánt PHKR334 plazmid létrehozása céljából
A pHPR91 plazmádból származó fragment megközelítőleg
0.6 gg mennyiségét a pHPR97 plazmádból származó fragment megközelítőleg 0.3 /zg mennyiségével ligái tűk. A DNS-eket kicsaptuk, levegőn megszárítottuk, 10 μΐ oldatban (30 mM Trisz-HCl, pH 7.5, 0.5 mM ATP, 10 mM DTT, 6 mM MgCl2, és 1 U T4 ligáz (Boehringer Mannheim)) felszuszpendáltuk.
A pHPR91, és a pHPR97 fragmentek ligálása során keletkezett pHKY334 plazmidot fent már ismertettük.
E. Az E. coli RV308 sejtek transzformálása a PHKY334 plazmáddal
A transzformálást az l.E. példa eljárása szerint hajtottuk végre. A transzformánsok egyedi tenyészeteit kiválasztottuk, és 10 gg/ml tetraciklint tartalmazó Lk
-28húsleves táptalajon tenyésztettük. A pHPR91 plazmidot restrikciós endonukleázos térképezéssel és DNS szekvenálással azonosítottuk. A pHKY334 plazmid restrikciós helyét és funkciós térképét a 2. ábrán mutatjuk be.
-29SZEKVENCIA JEGYZÉK (1) ÁLTALÁNOS INFORMÁCIÓK:
(i) FELTALÁLÓK: Hershberger, Charles W.
Larson, Jeffrey L.
(ii) A TALÁLMÁNY CÍME: A pHKY334 PLAZMID, AZ EK-BGH
EXPRESSZIÓS VEKTORA, ÉS AZ EZZEL
TRANSZFORMÁLT GAZDASEJTEK (iii) A SZEKVENCIÁK SZÁMA: 6 (iv) PONTOS CÍM:
(A) CÍM: Éli Lilly and Company (B) UTCA: Lilly Corporate Center (C) VÁROS: Indianapolis (D) ÁLLAM: Indiana (E) ORSZÁG: Amerikai Egyesült Államok (F) IRÁNYÍTÓSZÁM: 46285 (v) A SZÁMÍTÓGÉP ÁLTAL OLVASHATÓ FORMÁTUM:
(A) ÁTVITEL TÍPUSA: Floppy disk (B) KOMPUTER: IBM PC kompatibilis (C) OPERÁCIÓS RENDSZER: PC-DOS/MS-DOS (D) SOFTWARE: PatentIn Release #1.0, 1.25 verzió (vi) A JELEN TALÁLMÁNY ADATAI:
(A) SZABADALOM SZÁM:
(B) KÖZZÉTÉTEL SZAMA
(C) OSZTÁLY:
(viii) JOGI MEGHATALMAZOTT/MEGBÍZOTT TUDATAI:
(A) NÉV: Conrad, Róbert A.
(B) REGISZTRÁCIÓS SZÁM: 32.089 (C) REFERENCIA/JEGYZÉK SZÁM: X-8677 (ix) TELEKOMMUNIKÁCIÓS INFORMÁCIÓ:
(A) TELEFON: 317-275-6013 (2) INFORMÁCIÓK A SEQ ID NO:1-ROL:
(i) A SZEKVENCIA JELLEMZÉSE:
(A) HOSSZÚSÁG: 49 bázispár (B) TÍPUS: nukleinsav (C) SZÁL TÍPUSA: egyszálú (D) TOPOLÓGIA: lineáris (ii) A MOLEKULA TÍPUSA: DNS (genomikus) (xi) SZEKVENCIA LEÍRÁS: SEQ ID NO:1:
CTAGAGGGTA TTAATAATGT ATATTGATTT TAATAAGGAG GAATAATCA (2) INFORMÁCIÓK A SEQ ID NO:2-RŐL:
(i) A SZEKVENCIA JELLEMZÉSE:
(A) HOSSZÚSÁG: 47 bázispár (B) TÍPUS: nukleinsav (C) SZÁL TÍPUSA: egyszálú (D) TOPOLÓGIA: lineáris (ii) A MOLEKULA TÍPUSA: DNS (genomikus) (xi) SZEKVENCIA LEÍRÁS: SEQ ID NO:2:
TATGATTATT CCTCCTTATT AAAATCAATA TACATTATTA ATACCCT (2) INFORMÁCIÓK A SEQ ID NO:3-RÓL:
(i) A SZEKVENCIA JELLEMZÉSE:
(A) HOSSZÚSÁG: 601 bázispár (B) TÍPUS: nukleinsav (C) SZÁL TÍPUSA: egyszálú (D) TOPOLÓGIA: lineáris (ii) A MOLEKULA TÍPUSA: DNS (genomikus) (ix) JELLEMZŐK:
(A) NÉV/KULCS: CDS (B) ELHELYEZKEDÉS : 2..601 (xi) SZEKVENCIA LEÍRÁS: SEQ ID NO:3:
-33T ATG TTC CCA TTG GAT GAT GAT GAT AAG TTC CCA GCC ATG TCC TTG 46
Met Phe Pro Leu Asp Asp Asp Asp Lys Phe Pro Alá Met Ser Leu
1 5 10 15
TCC GGC CTG TTT GCC AAC GCT GTG CTC CGG GCT CAG CAC CTG CAT CAG 94
Ser Gly Leu Phe Alá Asn Alá Val Leu Arg Alá Gin His Leu His Gin
20 25 30
CTG GCT GCT GAC ACC TTC AAA GAG ITT GAG CGC ACC TAC ATC CCG GAG 142
Leu Alá Alá Asp Thr Phe Lys Glu Phe Glu Arg Thr Tyr Ile Pro Glu
35 40 45
GGA CAG AGA TAC TCC ATC CAG AAC ACC CAG GTT GCC TTC TGC TTC TCT 190
Gly Gin Arg Tyr Ser Ile Gin Asn Thr Gin val Alá Phe Cys Phe Ser
50 55 60
GAA ACC ATC CCG GCC CCC ACG GGC AAG AAT GAG GCC CAG CAG AAA TCA 238
Glu Thr Ile , Pro Alá Pro Thr Gly Lys Asn Glu Alá Gin Gin Lys Ser
65 70 75
GAC TTG GAG CTG CTT CGC ATC TCA CTG CTC CTC ATC CAG TCG TGG CTT 286
Asp Leu Glu Leu Leu Arg Ile Ser Leu Leu Leu Ile Gin Ser Trp Leu
80 85 90 95
GGG CCC CTG CAG TTC CTC AGC AGA GTC TTC ACC AAC AGC TTG GTG TTT 334
Gly Pro Leu Gin Phe Leu Ser Arg Val Phe Thr Asn Ser Leu Val Phe
100 105 110
GGC ACC TCG GAC CGT GTC TAT GAG AAG CTG AAG GAC CTG GAG GAA GGC 382
Gly Thr Ser Asp Arg Val Tyr Glu Lys Leu Lys Asp Leu Glu Glu Gly
115 120 125
ATC CTG GCC CTG ATG CGG GAG CTG GAA GAT GGC ACC CCC CGG GCT GGG 430
Ile Leu Alá Leu Met Arg Glu Leu G1U Asp Gly Thr Pro Arg Alá Gly
130 135 140
CAG ATC CTC AAG CAG ACC TAT GAC AAA TTT GAC ACA AAC ATG CGC AGT 47 8
Gin Ile Leu Lys Gin Thr Tyr Asp Lys Phe Asp Thr Asn Met Arg Ser
145 150 155 4
GAC GAC GCG CTG CTC AAG AAC TAC GGT CTG CTC TCC TGC TTC CGG AAG 526
Asp Asp Alá Leu Leu Lys Asn Tyr Gly Leu Leu Ser Cys Phe Arg Lys
160 165 17 0 17 5
GAC CTG CAT AAG ACG GAG ACG TAC CTG AGG GTC ATG AAG TGC CGC CGC 57 4
Asp Leu His Lys Thr Glu Thr Tyr Leu Arg Val Met Lys Cys Arg Arg
180 185 190
TTC GGG GAG GCC AGC TGT GCC TTC TAG 601
Phe Gly Glu Alá Ser Cys Alá Phe
195
200
-34(2) INFORMÁCIÓK A SEQ ID NO:4-RŐL:
(i) A SZEKVENCIA JELLEMZÉSE:
(A) HOSSZÚSÁG: 199 aminosav (B) TÍPUS: aminosav (C) SZÁL TÍPUSA: egyszálú (D) TOPOLÓGIA: lineáris (ii) A MOLEKULA TÍPUSA: fehérje (xi) SZEKVENCIA LEÍRÁS: SEQ ID NO:4:
Met 1 Phe Pro Leu Asp 5 Asp Asp Asp Lys Phe 10 Pro Alá Met Ser Leu 15 Ser
Gly Leu Phe Alá 20 Asn Alá Val Leu Arg 25 Alá Gin His Leu His 30 Gin Leu
Alá Alá Asp 35 Thr Phe Lys Glu Phe 40 Glu Arg Thr Tyr Ile 45 Pro Glu Gly
Gin Arg 50 Tyr Ser Ile Gin Asn 55 Thr Gin Val Alá Phe 60 Cys Phe Ser Glu
Thr 65 Ile Pro Alá Pro Thr 70 Gly Lys Asn Glu Alá 75 Gin Gin Lys Ser Asp 80
Leu Glu Leu Leu Arg 85 Ile Ser Leu Leu Leu 90 Ile Gin Ser Trp Leu 95 Gly
Pro Leu Gin Phe 100 Leu Ser Arg Val Phe 105 Thr Asn Ser Leu Val 110 Phe Gly
Thr Ser Asp 115 Arg Val Tyr Glu Lys 120 Leu Lys Asp Leu Glu 125 Glu Gly Ile
Leu Alá 130 Leu Met Arg Glu Leu 135 Glu Asp Gly Thr Pro 140 Arg Alá Gly Gin
Ile 145 Leu Lys Gin Thr Tyr 150 Asp Lys Phe Asp Thr 155 Asn Met Arg Ser Asp 160
Asp Alá Leu Leu Lys 165 Asn Tyr Gly Leu Leu 17 0 Ser Cys Phe Arg Lys 175 Asp
Leu His Lys Thr 180 Glu Thr Tyr Leu Arg 185 Val Met Lys Cys Arg 190 Arg Phe
Gly Glu Alá 195 Ser Cys Alá Phe
(2) INFORMÁCIÓK A SEQ ID NO:5-RŐL·:
(i) A SZEKVENCIA JELLEMZÉSE:
(A) HOSSZÚSÁG: 142 bázispár (B) TÍPUS: nukleinsav (C) SZÁL TÍPUSA: egyszálú (D) TOPOLÓGIA: lineáris (ii) A MOLEKULA TÍPUSA: DNS (genomikus) (xi) SZEKVENCIA LEÍRÁS: SEQ ID NO:5:
AATTCGATCT CTCACCTACC AAACAATGCC CCCCTGCAAA AAATAAATTC ATATAAAAAA 60
CATACAGATA ACCATCTGCG GTGATAAATT ATCTCTGGCG GTGTTGACAT AAATACCACT 120
GGCGGTGATA CTGAGCACAT CA 14 2
(2) INFORMÁCIÓK A SEQ ID NO:6-RÓL:
(i) A SZEKVENCIA JELLEMZÉSE:
(A) HOSSZÚSÁG: 142 bázispár (B) TÍPUS: nukleinsav (C) SZÁL TÍPUSA: egyszálú (D) TOPOLÓGIA: lineáris «-37:
* ·«·♦ « « Ak •4 * (ii) A MOLEKULA TÍPUSA: DNS (genomikus) (xi) SZEKVENCIA LEÍRÁS: SEQ ID NO:6:
GATCTGATGT
TATCACCGCA
TTGTTTGGTA
GCTCAGTATC
GATGGTTATC
GGTGAGAGAT
ACCGCCAGTG
TGTATGTTTT
CG
GTATTTATGT
TTATATGAAT
CAACACCGCC
TTATTTTTTG
AGAGATAATT
CAGGGGGGCA

Claims (8)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. pHKY334 plazmid.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti plazmáddal transzformált gazdasejt.
  3. 3. A 2. igénypont szerint transzformált gazdasejt, azzal jellemezve, hogy az E. coli RV308/pHKY334 gazdasejt.
  4. 4. A 2. igénypont szerint transzformált gazdasejt, azzal jellemezve, hogy az E. coli MM294/pHKY334 gazdasejt.
  5. 5. A 2. igénypont szerint transzformált gazdasejt, azzal jellemezve, hogy az E. coli C600/pHKY334 gazdasejt.
  6. 6. A 2. igénypont szerint transzformált gazdasejt, azzal jellemezve, hogy az E. coli JM109/pHKY334 gazdasejt.
  7. 7. Eljárás EK-BGH létrehozására, azzal jellemezve, hogy az említett eljárás (a) a 2.-7. igénypont szerinti transzformált gazdasejteknek a megfelelő táptalajon történő tenyésztése, és EK-BGH termelés, valamint (b) az EK-BGH visszanyerése a transzformált gazdasejtekből.
  8. 8. A 7. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a transzformált gazdasejt E. coli RV308/pHKY334 gazdasejt.
HU9203686A 1991-11-27 1992-11-24 Process for producing phky334 plasmid, its ek-bgh expression vector and host cells transformed by it HUT63461A (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US07/801,164 US5395761A (en) 1991-11-27 1991-11-27 Plasmid pHKY334, an expression vector for EK-BGH and host cells transformed therewith

Publications (1)

Publication Number Publication Date
HUT63461A true HUT63461A (en) 1993-08-30

Family

ID=25180366

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9203686A HUT63461A (en) 1991-11-27 1992-11-24 Process for producing phky334 plasmid, its ek-bgh expression vector and host cells transformed by it
HU9203686A HU9203686D0 (en) 1991-11-27 1992-11-24 Phky354 plasmide expression vector applicable for ek-bgh and host cells transformed by it

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9203686A HU9203686D0 (en) 1991-11-27 1992-11-24 Phky354 plasmide expression vector applicable for ek-bgh and host cells transformed by it

Country Status (8)

Country Link
US (1) US5395761A (hu)
EP (1) EP0544467A2 (hu)
JP (1) JPH06113855A (hu)
AU (1) AU2970692A (hu)
CA (1) CA2083529A1 (hu)
HU (2) HUT63461A (hu)
IL (1) IL103848A0 (hu)
MX (1) MX9206747A (hu)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0569604A1 (en) * 1992-04-07 1993-11-18 Societe Des Produits Nestle S.A. Integrative gene-expression in Streptococcus salivarius ssp.thermophilus
FR2873411B1 (fr) * 2004-07-21 2009-08-21 Snecma Moteurs Sa Turboreacteur avec des moyens de protection pour un dispositif d'injection de carburant, dispositif d'injection et tole de protection pour le turboreacteur

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
BG49718A3 (en) * 1983-07-15 1992-01-15 Bio Technology General Corp Method for preparing of polypeptid with superoxiddismutasne activitty
US4710473A (en) * 1983-08-10 1987-12-01 Amgen, Inc. DNA plasmids
US4874703A (en) * 1985-08-26 1989-10-17 Eli Lilly And Company Expression vectors for use in E. coli
ES2076318T3 (es) * 1989-06-26 1995-11-01 Lilly Co Eli Control de la acumulacion de vectores de expresion aberrantes durante procedimientos de fermentacion.
IL99100A0 (en) * 1990-08-13 1992-07-15 Lilly Co Eli Improved bacteriophage lambda pl promoters
CA2057715A1 (en) * 1990-12-19 1992-06-20 Charles L. Hershberger Method for enhancing the structural stability of recombinant dna expression vectors

Also Published As

Publication number Publication date
AU2970692A (en) 1993-06-03
HU9203686D0 (en) 1993-03-29
JPH06113855A (ja) 1994-04-26
EP0544467A3 (hu) 1994-03-16
CA2083529A1 (en) 1993-05-28
US5395761A (en) 1995-03-07
MX9206747A (es) 1993-05-01
EP0544467A2 (en) 1993-06-02
IL103848A0 (en) 1993-04-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR900005776B1 (ko) 인터페론의 제조방법
EP0198015B2 (en) Production of streptavidin-like polypeptides
EP0095361B1 (en) Cloning vectors for expression of exogenous protein
Murotsu et al. Identification of the minimal essential region for the replication origin of miniF plasmid
EP0111389A2 (en) Substantially pure porcine growth hormone, DNA sequences therefor, and expression vehicles and transfected microorganisms for the production of porcine growth hormone
JP2544602B2 (ja) 新規プラスミドベクタ−
US4795706A (en) Novel expression control sequences
US5914395A (en) Desmin enhancer sequences, vectors comprising these sequences and their uses in compositions for the expression of nucleotide sequences in transfected cells
US5063158A (en) Recombinant DNA expression vector comprising both transcriptional and translational activating sequences
US5192669A (en) Method to produce recombinant proteins using an expression vector comprising transcriptional and translational activating sequences
HUT63461A (en) Process for producing phky334 plasmid, its ek-bgh expression vector and host cells transformed by it
KR900001014B1 (ko) 소 성장 호르몬 유도체 발현 벡터의 제조방법
EP0196223B1 (en) Dedicated ribosomes and their use in producing protein in cell culture
EP0146901A1 (en) A promotor and use thereof
US5378613A (en) Method for increased expression of low molecular weight recombinant polypeptides
KR900001015B1 (ko) 재조합체 dna 발현 벡터의 제조방법
JPH0746994A (ja) ポリペプチドの製造方法
EP0547873B1 (en) A novel translational activating sequence
EP0471514A2 (en) Improved bacteriophage lambda pL promoters
US5576190A (en) Bacteriophage Lambda pL promoters
EP0493926A1 (en) A method for enhancing the structural stability of recombinant DNA expression vectors
Churchward et al. In vitro recombinant DNA technology
EP0222869A1 (en) Expression vector

Legal Events

Date Code Title Description
DFD9 Temporary protection cancelled due to non-payment of fee