HU226017B1 - Patient-specific immunoadsorbents for extracorporal apheresis and methods of producing said immuno-adsorbers - Google Patents

Patient-specific immunoadsorbents for extracorporal apheresis and methods of producing said immuno-adsorbers Download PDF

Info

Publication number
HU226017B1
HU226017B1 HU9900462A HUP9900462A HU226017B1 HU 226017 B1 HU226017 B1 HU 226017B1 HU 9900462 A HU9900462 A HU 9900462A HU P9900462 A HUP9900462 A HU P9900462A HU 226017 B1 HU226017 B1 HU 226017B1
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
patient
hsa
specific
immune
antibodies
Prior art date
Application number
HU9900462A
Other languages
English (en)
Inventor
Hans-Friedrich Boeden
Hans-Werner Heinrich
Udo Meyer
Hang-Georg Neumann
Wolfgang Ramlow
Joachim Teller
Original Assignee
Privates Inst Bioserv Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Privates Inst Bioserv Gmbh filed Critical Privates Inst Bioserv Gmbh
Publication of HUP9900462A2 publication Critical patent/HUP9900462A2/hu
Publication of HUP9900462A3 publication Critical patent/HUP9900462A3/hu
Publication of HU226017B1 publication Critical patent/HU226017B1/hu

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61MDEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
    • A61M1/00Suction or pumping devices for medical purposes; Devices for carrying-off, for treatment of, or for carrying-over, body-liquids; Drainage systems
    • A61M1/36Other treatment of blood in a by-pass of the natural circulatory system, e.g. temperature adaptation, irradiation ; Extra-corporeal blood circuits
    • A61M1/3679Other treatment of blood in a by-pass of the natural circulatory system, e.g. temperature adaptation, irradiation ; Extra-corporeal blood circuits by absorption
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61MDEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
    • A61M1/00Suction or pumping devices for medical purposes; Devices for carrying-off, for treatment of, or for carrying-over, body-liquids; Drainage systems
    • A61M1/34Filtering material out of the blood by passing it through a membrane, i.e. hemofiltration or diafiltration
    • A61M1/3472Filtering material out of the blood by passing it through a membrane, i.e. hemofiltration or diafiltration with treatment of the filtrate
    • A61M1/3486Biological, chemical treatment, e.g. chemical precipitation; treatment by absorbents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02Immunomodulators
    • A61P37/06Immunosuppressants, e.g. drugs for graft rejection
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01JCHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J20/00Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
    • B01J20/30Processes for preparing, regenerating, or reactivating
    • B01J20/32Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating
    • B01J20/3202Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating characterised by the carrier, support or substrate used for impregnation or coating
    • B01J20/3206Organic carriers, supports or substrates
    • B01J20/3208Polymeric carriers, supports or substrates
    • B01J20/3212Polymeric carriers, supports or substrates consisting of a polymer obtained by reactions otherwise than involving only carbon to carbon unsaturated bonds
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01JCHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J20/00Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
    • B01J20/30Processes for preparing, regenerating, or reactivating
    • B01J20/32Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating
    • B01J20/3231Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating characterised by the coating or impregnating layer
    • B01J20/3242Layers with a functional group, e.g. an affinity material, a ligand, a reactant or a complexing group
    • B01J20/3268Macromolecular compounds
    • B01J20/3272Polymers obtained by reactions otherwise than involving only carbon to carbon unsaturated bonds
    • B01J20/3274Proteins, nucleic acids, polysaccharides, antibodies or antigens
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K17/00Carrier-bound or immobilised peptides; Preparation thereof
    • C07K17/02Peptides being immobilised on, or in, an organic carrier
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01JCHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J2220/00Aspects relating to sorbent materials
    • B01J2220/40Aspects relating to the composition of sorbent or filter aid materials
    • B01J2220/48Sorbents characterised by the starting material used for their preparation
    • B01J2220/4812Sorbents characterised by the starting material used for their preparation the starting material being of organic character
    • B01J2220/4856Proteins, DNA
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S436/00Chemistry: analytical and immunological testing
    • Y10S436/824Immunological separation techniques
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/868Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof involving autoimmunity, allergy, immediate hypersensitivity, delayed hypersensitivity, immunosuppression, or immunotolerance

Description

A találmány tárgyát páciensre specifikus, a páciensek patológiás jelentőségű immunkomplexeiből elkülönített antigéneket és/vagy antitesteket tartalmazó, aktivált szilárd hordozóanyagra kötött immunadszorbensek képezik. A találmány tárgyát képezik továbbá eljárások az immunadszorbensek előállítására és az immunadszorbensek alkalmazásai.
A találmány szerinti immunadszorbensek specifikus antitesteken és/vagy antigéneken alapulnak, amelyek - immunpatológiás folyamatok előrehaladtával - számos betegség okozói és fenntartói. A találmány szerinti megoldás ennek megfelelően előnyösen alkalmazható a klinikai következményekért felelős immunpatológiás szabályozási ciklus irányított befolyásolására, anélkül, hogy a teljes immunrendszer károsodna. A hagyományos gyógyszeres immunszuppressziós kezelés során fellép ilyen károsodás.
A találmány szerinti eljárás ezenfelül előnyösen alkalmazható immunpatológiás szempontból jelentős endogén (testsaját) anyagok feldúsítására és tiszta állapotban való előállítására, új lehetőségeket nyitva ezzel a kóros állapot okainak vizsgálatára és terápiás eljárások kifejlesztésére.
Az immunreakciók funkcionális alapja igen összetett. Alapját a nemspecifikus védelem és a specifikus védelem helyi sejtes és immorális elemei és az egész rendszerre ható sejtes és humorális elemei közötti jól szabályozott kölcsönhatás képezi. A specifikus védelem a limfopoetikus rendszer (a nyirokszövet-képződés rendszere) aktivált sejtjeiből, valamint az általuk előállított közvetítőkből és antitestekből áll.
A stimulálás típusától függően különbözhet a fő védelmi aktivitás.
A szervezet védelmi állapotának ez a fokozódása vagy egy fertőzés során, természetes úton, vagy mesterséges úton, azaz gyógyszerek hatására következik be. Az események kifejthetik hatásukat az egész rendszerre, vagy helyileg, a légzőrendszer, emésztőrendszer és az urogenitális traktus nyálkahártyáin keresztül.
Természeténél fogva a szervezet azonnal reagál a fertőzésre. Az azonnali reakció mértéke az antigén típusától és az invázió helyétől függ. Elméletileg, azonos reakciók következnek be vakcinák vagy más endogén anyagok beadása esetén. A specifikus védelem amely például specifikus antitestek kimutatásával mérhető - csupán néhány nap elteltével válik hatásossá. A kibocsátásukat előidéző ok kiküszöbölése után a specifikus antitestek termelődése csökken, majd végül leáll. Az antitestek biológiai lebomlása után csupán a specifikus „memóriasejtek” jelenléte jelzi, milyen antitestekkel kellett a szervezetnek megküzdenie a múltban. Bizonyos körülmények között, főleg meg nem állapítható okok hatására, a szervezet endogén struktúrákkal szemben hiperaktívan reagál. A kifejlődő autoimmun reakció az endogén szövet folyamatos pusztulását okozza, amelynek bomlástermékei tovább stimulálják az immunrendszert. Amennyiben ezt a patológiás szabályozó ciklust nem szakítja meg semmi, következményei végzetesek lehetnek, minimálisan az érintett szövet számára.
Gyakran találkozhatunk olyan betegségekkel, amelyekben az immunpatológiás folyamatoknak szerepük van, vagy a betegség éppen immunpatológiás eredetű. Krónikus lefolyásuk és kezelésük nehézségei miatt jelentősen befolyásolják az ilyen betegségekben szenvedő emberek életét, a nemzetgazdaságnak is hatalmas kárt okozva. A leggyakrabban előforduló autoimmun betegségek egyike a rheumatoid arthritis, amelyben a népesség kb. 1%-a szenved. Ez a betegség legkorábban 40 éves kor táján jelentkezik. 10 év múlva a betegek kb. 50%-a keresőképtelenné válik, 10-20%-a pedig a legsúlyosabb állapotú rokkanttá. A kezelés eddigi - immunszuppresszióval és támogatóterápiával elért eredményei nem kielégítők, és a terápiát gyakran egyszerűen abbahagyják. Három év elmúltával a kezdetben alapvető terápiás szerekkel kezelt betegek legfeljebb 50%-a áll hatásos gyógyszeres kezelés alatt.
Mivel a hagyományos terápia gyakran nem kielégítő és nagymértékű mellékhatásokkal jár együtt, ezért folyamatosan kutatnak új terápiás eljárások után, amelyek alkalmasak lennének autoimmun betegségek kezelésére. [J. Sany: „Early approaches to immunotherapy of rheumatoid arthritis”, Eur. J. Rheumatol. Inflamm. 11, 139-147 (1991)].
A terápiás kezelések célja hatni a celluláris és humorális immunmechanizmusokra, valamint a közvetítőrendszerekre. A szóban forgó kísérletes próbálkozások kapcsán az állatkísérletek és klinikai vizsgálatok során elért első sikerekről már beszámoltak. Mindeddig nem volt lehetséges azonban határozott áttörést elérni a páciensek autoimmun betegségének előrejelzése terén.
Számos autoimmun betegség esetében, valamint sok olyan betegség esetében, amelyekben immunpatológiás folyamatok is szerepet játszanak, sikeresen alkalmaztak plazmacserét és plazmaszorpciót [R. T. Baldwin és munkatársai: „Guillain-Barre syndrome affér heart transplantation J. Heart Lungtransplan. 11, 817-819 (1992); J. Braun és munkatársai: „Severe lupus crisis with agranulocytosis and anuric renal failure due to a mesangial lesion” (WHO IIB) - successful treatment with cyclophosphamide pulse followed by plamapheresis (2) Br. J. Rheumatol. 30, 312-313 (1991); P. C. Dau: „Plasmapheresis in acute multiple sclerosis: Rational and results” J. Clin. Apheresis 6, 200-204 (1991); Η. H. Euler és munkatársai: „A randomized trail of plasmapheresis and subsequent pulse cyclophosphamide in severe lupus: Design of the LPSG trial” Int. J. Artif. Organs, 14, 639-646 (1991); D. C. Hess és munkatársai „Thrombotic thrombocytopenic purpura in systemic lupus erythermatosus and antiphopholipid antibodies: Effective treatment with plasma exchange and immunosuppression” J. Rheumatol. 19, 1474-1478 (1991); R. T. Korinthenberg és M. Sauer: „The Guillian-Barre syndrome in childhood. Clinical course and therapeutic measures Monatsschr. Kinderheilkd. 140, 792-798 (1992)].
A plazmacsere a legrégebbi terápiás eljárás membrán-plasmapheresissel vagy centrifugálással szeparált plazmával, amelyet eltávolítanak és egyidejűleg donorplazmával vagy emberi albuminnal helyettesí2
HU 226 017 Β1 tenek. A kezelés során a páciens plazmájának legkevesebb egyszeres és legfeljebb kétszeres mennyiségét cserélik le. Ez a módszer nem szelektív. Egy vagy néhány, patológiás szempontból fontos komponens lecserélése érdekében az egész plazmát lecserélik, és a páciens számára lényeges anyagokat távolítanak el. Ennek súlyos következményei vannak a páciensre nézve, amelyeket helyettesítési terápiával igyekeznek megelőzni. Ezenfelül felmerül a kórokozók átvitelének (például HÍV vagy hepatitis kórokozói) veszélye is.
A plazmaszorpció esetében az előzőleg szeparált plazmát adszorber anyagon vezetik keresztül. Egyes plazmakomponensekhez kötődő anyagok hozzákötődnek az adszorber anyagához, ezáltal eltávoznak a páciens plazmájából. Amikor a plazmaszorpciót immunológiai szempontból jelentős anyagok eltávolítására használjuk, immunadszorpciónak nevezzük. Az alkalmazott adszorber anyagától függően ez az eljárás változó szelektivitást és specifitást biztosít. Különböző ligandumokat és hordozókat alkalmaztak klinikailag az immunglobulinok és immunkomplexek adszorbeálására a szeparált plazmából.
1. táblázat
Példák extrakorporális apheresis-eljárásokban alkalmazott ligandumokra
Staphylococcus-eredelQ protein-A
Hidrofób aminosavak (triptofán vagy fenil-alanin)
Dextrán-szulfát
Aggregált IgG_
Emberi IgG elleni antitest
Vércsoportok antigénjei
Az alábbi táblázat olyan autoimmun betegségeket sorol fel, amelyeket sikeresen kezeltek extrakorporális immunadszorpcióval.
2. táblázat
Apheresissel/immunadszorpcióval sikeresen kezelt autoimmun betegségek
Gyors kifejlődésű veseglomerulus-gyulladás („glomerulonephritis”), fokális glomerulosclerosis Szisztémás bőrfarkas („lupus erythematosus) Antifoszfolipid szindróma
Érgyulladások, például periarteriitis nodosa, M. Wegener
Reumaszerű ízületi gyulladás („rheumatoid arthritis”)
Immunológiai trombocitopéniás purpura
Koagulációs faktorok elleni inhibitorok
Hiperimmunizált vagy ABO-inkompatibilis leendő transzplantátumrecipiensek Sokizom-gyulladás („polymyoisitis)
Idegrendszeri betegségek, például Guillain-Barrészindróma, polineuropátia, „amytrophic” laterális sclerosis, myastenia gravis, sclerosis multiplex
Az alábbiakban az autoimmun betegségek esetében alkalmazott gyógyszeres kezelések hátrányait ismertetjük. A gyógyszeres ímmunszuppresszió nem szelektív és nem specifikus. Az újabb immunológiai terápiák (monoklonális vagy poliklonális antitestek az immunsejtek és -közvetítők receptorstruktúrái vagy aktivációs markerei ellen) szintén nem szelektíven fojtják el („szuppresszálják”) az immunválaszt, és/vagy további immunválaszt indukálnak a szervezetben.
A továbbiakban a korábban autoimmun betegségek során alkalmazott apheresis-eljárások és adszorpciós eljárások hátrányait ismertetjük.
A jelen pillanatban létező összes apheresises/adszorpciós eljárás hátránya, hogy - a gyógyszeres immunszuppresszióhoz hasonlóan - nem eléggé szelektívek. Ez vonatkozik Balint és Hargreavans módszerére is (4681870-es számú amerikai egyesült államokbeli szabadalom), amelyet már eddig is alkalmaztak Staphylococcus aureus protein-A megfelelő hordozón való immobilizálására. Ezzel az eljárással IgG-t és IgGkomplexeket távolítanak el a páciensek véréből nemspecifikusan. Ez áll arra az eljárásra is, amelynek során immunkomplexek immunadszorbenseiként hordozóhoz kapcsolt nem specifikus fehérjéket alkalmaznak, előnyösen különböző fajokból származó immunglobulinokat, amint azt Davis ismerteti (WO 86/07152-es számú nemzetközi közzétételi irat). Ezzel a módszemel az immunkomplexek eltávolíthatók, az autoimmun betegségek során mindig újonnan keletkező, reaktív egyedi összetevők azonban nem.
Liberti és Pollora (4 551 435-es számú amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás) egy olyan eljárást ismertetnek, amellyel a vérből immunkomplexeket és más vegyületeket lehet eiiminálni specifikus antitesteket meghatározott koncentrációban a páciens véréhez adva, amelyek ott az eliminálandó vegyületekkel immunkomplexeket képeznek. A vérből történő elimináció olyan faktorok segítségével lehet elvégezni, mint például a C1q, reumatoid faktorok, Fc-receptorok és Fc-receptorokat hordozó sejtek, amelyek az elimináció során szilárd hordozón vannak immobilizálva. Az eljárás alkalmazása egyrészt az ok ismeretét tételezi fel (ami az esetek többségében nem teljesül), másrészt azt, hogy az okozó antigén tiszta formában hozzáférhető antitestek előállítása céljából. Magukat az immunkomplexeket nem specifikus módon távolítják el, nem protein-A révén, hanem olyan molekulák segítségével, amelyek fizikai okokból nagy affinitást mutatnak immunglobulinokhoz.
Figyelembe kell venni azt is, hogy a patofiziológiás szempontból számottevő immunstruktúrák különbözőek a különböző autoimmun betegségekben, sőt, egy és ugyanazon betegség immunitási jelenségei is többfélék. A jelenleg hozzáférhető apheresis-rendszerek nem csupán immunpatológiás szempontból számottevő, hanem fiziológiailag szükséges immunglobulinokat is eltávolítják. Ez utóbbiak pedig létfontosságúak az endogén védelem szempontjából. Az eredmény az immunrendszer általános gyengülése szeptikus komplikációk növekvő kockázata mellett.
HU 226 017 Β1
A találmány szerinti megoldás kidolgozása során célunk az volt, hogy az immunrendszer hibás működése által okozott betegségekben, vagy krónikussá vált, nehezen kezelhető immunpatológiás folyamatok eredményezte betegségekben szenvedő betegek számára elérhetővé váljék egy terápia. A találmány szerinti megoldás a páciens számára specifikus immunadszorbens kifejlesztésén alapul, amellyel lehetségessé válik a patogenitás szempontjából jelentős immunkomplexek, autoantitestek és antigének eltávolítása a beteg véréből vagy plazmájából adszorpció révén.
A találmány szerinti megoldás megvalósítja a kitűzött célt, összhangban az 1-7. igénypontokban igényeitekkel. Az aligénypontok az előnyös megvalósítási módokat fogalmazzák meg.
A cél elérése érdekében az immunkomplexeket a páciens plazmájából ismert eljárásokkal távolítjuk el, például protein-A-immunadszorbensekkel, és az eluálás után megfelelő módon biológiailag aktív komponenseikre bontjuk őket. A komponenseket ezután megfelelő hordozóanyaghoz kapcsoljuk elismert eljárásokat, például gélkromatográfiát alkalmazva, elválasztva őket, egyenként, vagy antitestek és antigének keverékeként. Ezen immunadszorbensek segítségével azután a betegség szempontjából fontos immunkomplexeket, antitesteket és antigéneket plasmapheresis segítségével specifikusan eltávolíthatjuk a páciens plazmájából. Az így elkészített oszlopokat újraaktiválhatjuk, és többszöri felhasználásra szánhatjuk őket. Az ilyen páciensre specifikus immunadszorbensek általában véve minden olyan betegségre elkészíthetők, amelyben autoimmun komplexek patogénként viselkednek.
A fenti célkitűzéseket a találmány szerinti megoldás megvalósítja, amint azt a szabadalmi igénypontok alapján is nyilvánvaló.
A találmány szerinti páciensre specifikus immunadszorbenseket páciensek patológiás jelentőségű immunfaktorainak immunkomplexeiből elkülönített antigének és/vagy antitestek alkotják, amelyek aktivált szilárd hordozóanyaghoz vannak kötve. Az antigének és/vagy az antitestek olyan betegekből vannak elkülönítve, akik hibás szabályozás által okozott vagy fenntartott betegségben szenvednek. Ilyen autoimmun betegségek vagy immunpatológiás reagálási állapotok többek között az alábbiak: reumaszerű izületi gyulladás („rheumatoid arthritis”), gyors kifejlődésű veseglomerulus-gyulladás („glomerulonephritis”), szisztémás bőrfarkas („lupus erythematosus”), antifoszfolipid szindróma, érgyulladások, szövetinkompatibilis leendő transzplantátumrecipiensek állapota, sokizomgyulladás („polymyoisitis”), idegrendszeri autoimmun betegségek, illetve fertőző betegségek eredményeképpen fellépő immunpatológiás hibás szabályozások. Minden biológiailag kompatibilis vegyület alkalmazható hordozóanyagként, amennyiben képes felületén kovalensen kötni immunkomplexek megfelelő komponenseit. Sepharose és cellulózgyöngyök előnyösen alkalmazhatók.
A páciensre specifikus immunadszorbensek előállítására szolgáló eljárás a következő lépésekből áll:
Mindenekelőtt az immunkomplexeket eltávolítjuk a páciensek plazmájából nem szelektív eljárásokkal, például protein-A-immunadszorbensek alkalmazásával, és a megfelelő eluálás után biológiailag aktív komponenseikre bontjuk őket. Ezután a komponenseket elkülönítve, egyenként vagy antitestek és antigének keverékeként - ismert eljárásokat (például gélkromatográfiát) alkalmazva - megfelelő hordozóanyaghoz kapcsolhatjuk. Az immunkomplexek komponensekre bontása történhet savas vagy lúgos közegben, előnyösen pH 2-5. terjedő vagy pH 10-12. terjedő pH-tartományban, szükség szerint frakcionálás és, ha szükséges, sók (például NaCI, MgÜ2, LiCI vagy guanidin-hidroklorid) vagy karbamid hozzáadása után. Ezek a körülmények alkalmasak arra, hogy a komponenseket egy adott koncentráció elérése után disszociált állapotban tartsák. A kapcsolás szilárd hordozókhoz elvégezhető a 2-12. terjedő pH-tartományban, elvileg ismert módon.
Az immunadszorbensek segítségével extrakorporális immunadszorpcióval specifikusan el lehet távolítani a páciens plazmájából a betegséggel összefüggő immunkomplexeit, antitestjeit és antigénjeit. Az erre alkalmas oszlopok újraaktiválhatóak, és többszöri alkalmazásra lehet őket tervezni. Általában véve lehetséges ilyen páciensre specifikus immunadszorbenseket tervezni minden olyan betegség esetében, amelyben autoimmun komplexek patogén szerepet töltenek be.
A terápiában való alkalmazáson kívül a találmány szerinti eljárás lehetővé teszi olyan anyagok izolálását a páciens véréből, amelyek legalább részben okozói az immunológiailag hibás szabályozásnak. Ez leegyszerűsíti az autoimmun betegségek vagy megzavart funkció következtében lefolyásuk közben intenzívvé váló betegségek patogenezisével kapcsolatos vizsgálatokat. A hagyományos megoldásokkal szemben a találmány szerinti megoldás előnyei a következők:
1. Nem csupán immunkomplexek, hanem azok eddig nem érintett egyedi komponensei is eltávol íthatók.
2. Az idegen immunglobulinokkal való helyettesítés nem szükséges. (Kizárható olyan kórokozók átvitele, mint például a HÍV, járulékos költségek nem lépnek fel.)
3. A betegség okának ismerete nélkül páciensre specifikus immunadszorbenseket állíthatunk elő alacsony költséggel. Így tehát ilyen autoimmun betegségek kezelésére is biztosíthatók specifikus terápiás készülékek, amelyek céltudatos kifejlesztését az ipar nem vállalta fel a magas költségek miatt.
4. Egy adott személy autoimmun betegségét okozó vagy annak fenntartásáért felelős antigének és/vagy antitestek specifikusan feldúsíthatok, izolálhatok és így további vizsgálatok céljából is előállíthatók.
A továbbiakban a találmány szerinti megoldást részletesebben is ismertetjük.
Autoimmun betegségekben, például rheumatoid arthritisben, lupus erythematosusban vagy sclerosis multiplexben szenvedő pácienseket extrakorporális aphoresisnek teszünk ki staphylococcus protein-A-immunadszorbenseket alkalmazva. Egy aphoresis-ciklus végeztével az oszlopot alaposan lemossuk detergenst
HU 226 017 Β1 tartalmazó pufferrel, vagy másik lehetőségként az adszorptív módon kötött plazmakomponenseket megnövelt sókoncentrációval mossuk le az oszlopról (például 1-3 M NaCI). Az adszorpcióval kikötődött plazmakomponensek felszabadulását a mosópuffer elektroforézisével vagy immunológiai vizsgálati eljárással ellenőrizzük. Ezután az immunglobulinokat, immunkomplexeket és a disszociált immunológiai komponenseket pH-gradiens alkalmazásával eluáljuk (például citrát- vagy acetátpufferben, pH 7 és pH 2 között), vagy koncentrált sóoldattal (4 és 7 között) változtatva a pH-t. Elektroforézissel, kromatográfiásan vagy más megfelelő elválasztási eljárással analizáljuk a frakciót fehérje-összetétele és az immunkomplexek disszociációs foka szempontjából.
Azon frakciókat használjuk fel a szilárd hordozóra való immobilizálás során, amelyek immunkomplexei reaktív komponenseikre estek szét. A kapcsolás előtt igény szerint további elválasztást hajthatunk végre megfelelő elválasztási eljárásokkal. Az immunkomplexek komponenseit egyedileg vagy keverékként hordozóanyaghoz kapcsoljuk, amely hordozót előzőleg ONB-karbonáttal vagy N-hidroxi-szukcinimid-etil-észterrel aktiváltunk ismert eljárások alkalmazásával. Az összes nem kötött komponens eltávolítása után egy páciensre specifikus és regenerálható immunadszorbenst kapunk, amelynek segítségével csupán az immunpatológiás humorális hibás szabályozásért felelős anyagokat távolíthatjuk el szelektíven a páciens véréből.
A találmány szerinti megoldást a továbbiakban kiviteli példák segítségével részletesebben is ismertetjük.
1. példa
Modellkísérletek immobilizált emberi IgG biológiai aktivitásának meghatározására kecske eredetű emberi IgG elleni antitesttel. (3. táblázat)
Az emberi IgG-t az elúciós körülmények figyelembevételével megfelelő hordozóhoz kötöttük (sepharose-6FF-hez és cellulózgyöngyökhöz). C1-CO-ONBaktivált, kb. 30 pmol ONB-karbonát-csoportot tartalmazó gélt alkalmaztunk az emberi IgG kapcsolására.
ml antiszérumot (5,3 mg emberi IgG elleni) meghígítottunk 1 ml PBS-sel és felvittük a megfelelő hordozókra (áramlási sebesség: 0,1 ml/perc). Az oszlopokat néhány oszloptérfogatnyi, 3 M NaCI-ot tartalmazó PBS-ben (pH 0,5) mostuk. Az eluálást pH 2,0-n, 0,05% Tween 20-at tartalmazó 0,1 M-os glicin-hidrokloriddal hajtottuk végre (áramlási sebesség: 1,0 ml/perc). A fehérjék koncentrációját spektrofotometriásán határoztuk meg, 280 nm-en, miután az eluátumokat 0,5 M K2HPO4-tal közömbösítettük. Az antitestek (a gél 1 ml-jére számított) relatív kötési kapacitását az IgG standard körülmények közötti kapcsolásához viszonyítottuk (0,5 M-os foszfátpuffer, 0,05% Tween 20, pH 7,2).
3. táblázat
Immobilizált (elúciós körülmények között kapcsolt) emberi IgG biológiai aktivitásának meghatározása emberi IgG elleni (kecske eredetű) antitesttel, affinitáskromatográfiát alkalmazva.
ONB-aktivált hordozó Kapcsolási körülmények A kapcsolt emberi IgG mennyisége (mg/ml gél) Ember elleni IgG-t kötő kapacitás (mg antitest/ml gél) Az immobilizált IgG kötési hatékonysága (pg antitest/mg IgG) A hordozó relatív aktivitása %
Cellulózgyöngy 0,5 M foszfát p. pH 7,2 2,3 4,1 1800 100
Cellulózgyöngy 0,5 M foszfát p. pH 7,2 6,2 4,1 660 100
Cellulózgyöngy 0,1 M citrát p. pH 3,0 6,2 2,2 360 54
Cellulózgyöngy 0,1 M citrát p. pH 3,0 3,8 4,3 1100 105
Cellulózgyöngy 4,5 M MgCI2 pH 6,0 1,4 2,5 1790 61
Sepharose 6FF 0,5 M foszfát p. pH 7,2 3,5 3,2 910 78
Sepharose 6FF 0,1 M citrát p. pH 3,0 1,2 2,5 2080 61
Sepharose 6FF 0,1 M citrát p. pH 3,0 5,0 3,3 b) 660 80
Sepharose 6FF 0,1 M citrát p. pH 3,0 5,0 3,8 c) 760 93
Sepharose 6FF 0,1 M foszfát p. pH 12,0 2,8 3,2 1140 78
Sepharose 6FF 4 M guanidin-HCr 2,0 3,7 1850 90
a) C1-CO-ONB-vel tercier aminok jelenlétébe (báziskatalízissel) aktiválva; az aktiválás mértéke: 20 pmol ONB-karbonát-csoport/ml gél; a kapcsolás hatékonysága: 57%.
b) 9,2 ml közömbösített elúciós pufferben végzett affinitáskromatográfiával tisztított 53 mg antitest; áramlási sebesség: 0,1 ml/perc; mosópuffer: 3 M-os NaCI (pH 5,0); eluálás 1 ml/perces áramlási sebességgel; a felvitt antitestek 63%-a eluálódott.
c) 9,2 ml közömbösített elúciós pufferben végzett affinitáskromatográfiával tisztított 53 mg antitest; áramlási sebesség: 0,1 ml/perc; mosópuffer: 3 M-os NaCI (pH 5,0); eluálás 0,5 ml/perces áramlási sebességgel; a felvitt antitestek 70%-a eluálódott.
HU 226 017 Β1
2. példa
Modellkísérletek bázis-aktivált ONB-karbonátsepharose-6FF-en immobilizált (emberi IgG elleni antitestet feleslegben alkalmazva, pH 3,0-n affinitáskromatográfiát végezve) emberi IgG, mint 5 antigén, kötési kapacitásának meghatározására Az emberi IgG-t (Sigma) kapcsolás céljából a kapcsolópufferben oldottuk, majd átszűrtük (0,2 pm-es pórusméret). Az oldatot hozzáadtuk az aktivált sepharose-hoz, amelyet előzőleg oldószerrel nedvesítettünk 10 meg. A kapcsolást szobahőmérsékleten végeztük el (1 órán át) óvatos mozgatással. Miután 1 órán keresztül blokkoltuk a gélt (1 M etanol-amin 0,1 M borátpufferben, pH 8,0-n), intenzíven mostuk (például fritten) mindig 10 oszloptérfogattal a következő sorrendben: kap- 15 csolópuffer - víz - 24 órán át 0,1 M borátpuffer, pH 8,3 - víz.
Az affinitáskromatográfiát 2-6 °C-on végeztük az ECONO-rendszerrel (Bio-Rad) Omn/Y/f-oszlop (5*0,3 I. D. (350 μΙ gél). Az áramlási sebességek választásunk alapján 0,25 és 1,0 ml/perc között változtak. Az eluálást UV-áramlási-fotométerrel mértük. Az antitestek kötése és PBS-sel való lemosása után az antitesteket a következő áramlási program alapján eluáltuk:
1. 30 percig PBS;
2. 60 percig 3 M-os NaCI, pH 5;
3. 30 percig PBS;
4. 60 percig 0,1 M-os glicin-hidroklorid, pH 2,0;
5. 30 percig PBS;
6. áramlási sebesség: 0,25 ml/perc.
4. táblázat
Emberi IgG, mint antigén (ag), kötési kapacitásának meghatározása, amely emberi IgG-t emberi IgG elleni antitestet (ab) feleslegben alkalmazva, pH 3,0-n affinitáskromatográfiát végezve, bázisaktivált ONB-karbonát-sep/iarase-6FFen immobilizáltunk
Kísérletek száma Immobilizált ag (mg/ml gél) Felvitt antitest (ab) (mg/futtatás) Az ab kötés körülményei Kötési kapacitás
ab koncentrációja (pg/ml) aránya kivitelezés módja áramlási sebesség ml/perc mosás PBSsel géltérfogat eluált ab mennyisége (mg/ml gél) %b (2 ab/ag)
1. 5,0 6,2 1030 2,5 BA 3h RT | 20 10—4 104
2. 5,0 - - 2,5 BAE szakaszos 3*1h 1*60h | 400 θ) 7,1 71
3. 5,0 - - 2,6 BAE szakaszos 1h1*16h | 320 a) 7,5 75
4. 5,0 3,1 210 4,2 BAL 0,02 | 22 13,7 137
5. 5,0 4,1 1050 2,3 ML 0,1 | 22 7,1 71
6. 5,0 4,1 210 2,3 ML 0,1 | 86 7,7 77
7. 5,0 5,7 300 3,3 ML 0,02 | 22 11,4 114
8. 5,0 5,6 925 3,2 MC 7h 0,5 2*1h2*16h | 200 a) 9,7 97
9. 5,0 7,2 210 4,1 MC 14h0,5 5*1h 1*16h | 300 a) 9,7 97
10. 5,0 4,2 525 c> 2,4 MCAC 6h 0-5 2*1h2*16h | 400 a) 9,7 97
RT szobahőmérséklet („room temperature”)
A szakaszos eljárás („batch process”)
AE a szakaszos eljárással felkötött (1. kísérlet) antitestek eluálása miután oszlopba töltöttük és PBS-sel mostuk a hordozót
AL a szakaszos eljárással felkötött antitesteken kívül utólag is felvittünk antitesteket; mosás és eluálás oszlopon keresztül
L „mikro”-affinitáskromatográfia a tisztított antitestek hagyományos felvitelével
C „mikro”-affinitáskromatográfia, a tisztított antitestek keringetéssel vittük fel az oszlopra
CAC „mikro”-affinitáskromatográfia antiszérummal, hígított PBS-ben, keringetéssel
a) A feleslegben felvitt antitestek és/vagy az adszorptíven felvitt fehérjék eltávolítása végett PBS-sel mostuk. A mosást egy néhány órás (vagy 16 órás) időszakra megszakítottuk, ezután indítottuk el az elúciós programot.
b) Az emberi IgG elleni antitestek mennyiségét spektrofotometriásán határoztuk meg X280-nál (E°-1%=1,38), 0,5 M-os K2HPO4-tal való közömbösítés után. Akkor feltételeztük 100%-osnak a kötés kapacitását, amikor minden immobilizált IgG-molekula két molekula IgG elleni antitestet köt.
c) Antiszérum, 1:8 arányban hígítva PBS-ben.
HU 226 017 Β1
3. példa
a) HSA elleni (nyúl eredetű) antitest eluálása HSAval antitest-antigén komplexekből; optimális affinitáskromatográfiás eluálási körülmények meghatározása HSA-val burkolt 5 mikrotitrálólemezeket alkalmazva (5. táblázat)
A 96 lyukú mikrotitrálólemezeket HSA-val burkoltuk. Mindegyik lyukban 0,1 pg HSA elleni antitestet tartottunk egy ideig. Nyúl eredetű IgG elleni alkalikus foszfatázzal konjugált IgG-t alkalmaztunk kimutatásra 10 ELISA-eljárással, a szubsztrát a 4-nitro-fenil-foszfát, a hullámhossz λ=405 nm volt. A megfelelő elúciós puffer 200 μΙ-eit pipettáztuk a lyukakba. Az eluálást szobahőmérsékleten végeztük egy órán keresztül, miközben a mikrotitrálólemezt állandóan mozgattuk. A lyukak ala- 15 pos mosása után kimutattuk a HSA elleni antitestet. Az értékelés céljából mindig 8 lyukban mért adat átlagos értékét képeztük (%CV=4,4). A PBS-sel eluált HSA elleni antitestek százalékos arányát tekintettük 0%-nak.
5. táblázat
Elúciós puffer az antitest-antigén komplexek feloldására
Eluált HSA elleni antitestek (%)
PBS, pH 7,3 0
PBS+1%SDS, pH 7,3 51
0,10 M citrátpuffer, pH 2,5* 100
0,10 M citrátpuffer, pH 3,0* 73
0,10 M citrátpuffer, pH 3,5* 27
0,10 M citrátpuffer, pH 4,0* 8
0,10 M citrátpuffer, pH 2,5* 100
0,1 M citrát-/foszfátpuffer, pH 7,3 0
0,1 M citrát-/foszfátpuffer, pH 6,0 0
0,1 M citrát-/foszfátpuffer, pH 5,0 0
0,1 M citrát-/foszfátpuffer, pH 4,0 2
3,00 M KSCN, pH 7,3 41
3,00 M NaCI, pH 5,0* 0
3,00 M guanidin*/HCI, pH 7,3 66
4,00 M guanidin*/HCI, pH 7,3 90
6,00 M karbamid, pH 7,3 7
0,10 M borátpuffer, pH 11,0 35
0,10 M foszfátpuffer, pH 11,5 49
0,10 M foszfátpuffer, pH 12 91
* 0,015% Tween 20-szal.
b) HSA elleni antitest HSA-val képzett komplexének immobilizálása báziskatalízissel aktivált OA/S-kart>onáf-sepharose-6FF-re, kapcsoláskor az immunaffinitás-kromatográfia során alkalmazott eluálóközeget alkalmazva A kapcsolóközeget, amihez fehérjét adtunk, és amit
0,45 pm-es pórusméretű szűrőn átszűrtünk, nedves, aktivált ONB-karbonát-sep/?arose-6FF-hez adtuk hozzá. A kapcsolást egy órán keresztül szobahőmérsékleten végeztük, lassú mozgatás közben. Ezután újabb egy órán keresztül etanol-aminnal, borátpufferben, pH 8,1-en blokkoltunk. Az ONB-karbonát-csoportokat spektrofotometriásán határoztuk meg (Xmax = 267 nm).
A maximális immobilizálás számára referenciaként tekintett érték meghatározásához 0,5 M-os foszfátpuffert (pH 7,3) alkalmaztunk.
A mosást a 2. példában leírtakkal azonos módon végeztük.
A HSA elleni antitesteket egy korábbi kísérlet során, affinitáskromatográfia segítségével (0,05 M-os citrátpuffer, pH 2,0) nyertük, 0,5 M-os K2HPO4-tal közömbösítettük és -20 °C-on tároltuk, majd kiolvasztás után az oldat pH-ját 3,0 és 4,0 közé állítottuk be hígított HCIdal a kapcsolás céljából.
A HSA-t PBS-ben oldottuk, a megfelelő pH-t HCIdal állítottuk be, és - antigén-antitest keverék kapcsolása végett - hozzáadtuk az antitestoldathoz.
A fehérjemennyiséget spektrofotometriásán határoztuk meg 280 nm-en OD-t mérve (Εθ·1%=1,38 az antitestekre és E°'1%=1,67 a HSA-ra) a kapcsolópufferben. Miután a géleket 1 N-os NaOH-dal kezeltük, a felülúszóban Lowry módszerével meghatároztuk az immobilizált fehérjék mennyiségét.
A kapcsolás eredményét az immobilizált fehérje mennyiségét a felvitt fehérje mennyiségéhez viszonyítva adtuk meg, százalékosan.
6. táblázat
HSA elleni antitest HSA-val képzett komplexének (a továbbiakban: anti-HSA/HSA) immobilizálása báziskatalízissel aktivált ONB-karbonát-sepharose-6FF-re, kapcsoláskor az immunaffinitás-kromatográfia során alkalmazott eluálóközeget alkalmazva
ONB-karbonát-csoportok n mennyisége (pmol/ml gél) Kapcsolóközeg Gélre felvitt minta pH (mg/ml gél) Fehérje- mennyiség (mg/ml) Immobilizált fehérje (mg/ml gél) A kapcsolás eredménye (%)
19,8 0,5 M foszfátpuffer 7,3 1,6 A 0,3 1,1 70
31,6 0,5 M foszfátpuffer 7,3 3,9 HSA 3,9 1,7 43
5,1 0,1 M foszfátpuffer 7,3 1,6A 0,3 0,6 34
22,3 eluálópuffer 3,0 3,2 A 0,6 2,3 70
20,3 eluálópuffer 3,0 5,0 D 1,6 3,4 67
HU 226 017 Β1
6. táblázat (folytatás)
ONB-karbonát-csoportok π mennyisége (pmol/ml gél) Kapcsolóközeg Gélre felvitt minta pH (mg/ml gél) Fehérje- mennyiség (mg/ml) Immobilizált fehérje (mg/ml gél) A kapcsolás eredménye (%)
10,8 eluálópuffer 3,0 3,8 B 0,5 2,3 60
19,8 eluálópuffer 4,0 3,8 B 0,7 1,2 32
22,3 eluálópuffer 3,0 5,7 C 0,9 2,9 50
19,8 4 M guadinin* HCI 7,3 11,3B 11,3 4,9 43
22,3 0,1 M foszfátpuffer 12,0 4,8 B 2,0 1,3 28
A HSA elleni antitest,
B HSA elleni antitest és HSA 1:1 arányú komplexe,
C HSA elleni antitest és HSA 1:2 arányú komplexe,
D emberi IgG elleni antiest és emberi IgG 1:1 arányú komplexe, * guanidin-hidroklorid.
4. példa 20
Antigének és antitestek biológiai aktivitásának (kötőképességének) kimutatása az anti-HSA/HSAmodell segítségével az immunkomplexek felbomlását okozó körülmények közötti immobilizálás után (7. táblázat) 25
Az 1. és a 3. példában leírt módon a báziskatalizissel aktivált PNB-karbonát-sepharose-6FF-t antiHSA/HSA-hoz kapcsoltuk a megadott elúciós körülmények között (pH 3,0, pH 4,0, 4 M-os guanidin-hidroklorid*). Miután az oszlopot mostuk, HSA-t vagy HSA elleni antitestet vittünk fel a kötésre alkalmas pufferben. Az oszlop PBS-sel való ismételt mosása után elvégeztük az eluálást (pH 2,0) és a fehérjekoncentráció fotometriás meghatározását.
Ezekkel a modellkísérletekkel azt mutattuk ki, hogy az immunkomplexekből (anti-HSA/HSA) származó antigén (HSA) és antitestek (HSA elleni antitestek, a továbbiakban: anti-HSA), amelyeket egy hordozón im30 mobilizáltunk a komplexet felbontó körülmények között, megtartják kötőképességüket. Az immunkomplexekből származó immobilizált HSA mindig megkötötte az antiHSA-t, amely, újra felszabadítva ismét nagy reaktivitással kötődött a HSA-hoz az ELISA-mérések tanúsága szerint. Feltételezve, hogy 1 mól HSA 1 mól antiHSA-t köt, 2,1 mg anti-HSA-t kötő, immunkomplexből származó 0,9 mg HSA-t immobilizáltunk 1 ml gélen (3. példa). Hasonló eredményeket sikerült reprodukálni az 5., 7., 13. és 16. kísérletben is. HSA elleni, nyúlban termeltetett IgG-t, amely hasonlóképpen immunkomplexekből származott, szintén hatékonyan immobilizáltunk a modell szerint, megadott standard kapcsolási körülményeket alkalmazva (a kapcsolás sikeréről nyúl eredetű IgG elleni IgG segítségével győződhetünk meg), mégis, a kapcsolást ebben az esetben nyilvánvalóan befolyásolja a molekula egy régiója, ami a HSA kötődése számára szférikus gátlást eredményez. Maguk az antitestek megtartják biológiai aktivitásukat.
7. táblázat
Antigének és antitestek biológiai aktivitásának (kötőképességének) kimutatása az anti-HSA/HSA-modell segítségével az immunkomplexek felbomlását okozó, megadott körülmények közötti - báziskatalízissel aktivált ONBkarbonát-sepharose-6FF membránon való - immobilizálás után
Az immobilizálás körülményei* 1 ml gélre felvitt fehérje Koncentráció (pg/ml) A kötődés körülményei Mosás PBS-sel A kötési kapacitás (pg/ml gél)
1. 10,8 pmol antiHSA/HSA 1:1, pH 3 2,3 mg/ml 3,0 mg HSA 1055 0,3 ml/perc, 43 perc keringetés 0,28 ml/perc 43 perc 100-200
2. 10,8 pmol antiHSA/HSA 1:1, pH 3 2,3 mg/ml 13,4 mg HSA 937 0,5 ml/perc, 120 perc keringetés 0,5 ml/perc 60 perc 100-200
3. 10,8 pmol antiHSA/HSA 1:1, pH 3 2,3 mg/ml 3,7 mg antiHSA 164 0,5 ml/perc, 135 perc keringetés 0,5 ml/perc 60 perc 2100 (=0,9 mg HSA)
4. 19,8 μίτιοΙ antiHSA 1:1, pH 7 1,1 mg/ml 6,1 mg HSA 531 0,5 ml/perc, 120 perc keringetés 0,5 ml/perc 60 perc 100-200
HU 226 017 Β1
7. táblázat (folytatás)
Az immobilizálás körülményei* 1 ml gélre felvitt fehérje Koncentráció (pg/ml) A kötődés körülményei Mosás PBS-sel A kötési kapacitás (pg/ml gél)
5. 19,8 pmol antiHSA/HSA 1:1, pH 4 1,2 mg/ml 4,2 mg antiHSA 368 0,5 ml/perc, 180 perc keringetés 0,5 ml/perc 60 perc 1211 (=0,5 mg HSA)
6. 19,8 μιηοΙ antiHSA/HSA 1:1,4 M guanidin-hidrokloridban 4,9 mg/ml 8,3 mg HSA 578 0,5 ml/perc, 90 perc keringetés 0,5 ml/perc 60 perc nyomokban
7. 19,8 pmol antiHSA/HSA 4 M guanidin-hidrokloridban 4,9 mg/ml 7,3 mg antiHSA 470 0,5 ml/perc, 180 perc keringetés 0,5 ml/perc 60 perc 4714 (=2,1 mg HSA)
8. 19,8 pmol antiHSA/HSA 4 M guanidin-hidrokloridban 4,9 mg/ml 5,1 mg antinyúl IgG 360 0,5 ml/perc, 120 perc keringetés 0,5 ml/perc 60 perc 1977 (36%)
9. 10,8 μσιοΙ antiHSA/HSA 1:1, pH 3 2,3 mg/ml 5.1 mg antinyúl IgG 360 0,5 ml/perc, 120 perc keringetés 0,5 ml/perc 60 perc 480 (54%)
10. 19,8 pmol antiHSA 1:1, pH 7 1,1 mg/ml 5,1 mg antinyúl IgG 360 0,5 ml/perc, 120 perc keringetés 0,5 ml/perc 60 perc 2246 (100%)
11. 22 mmol anti-HSA 1:1, pH 3 2,3 mg/ml 5,1 mg antinyúl IgG 360 0,5 ml/perc, 120 perc keringetés 0,5 ml/perc 60 perc 2246 (48%)
12. 22,3 pmol antiHSA 1:1, pH 3 2,3 mg/ml 13,8 mg HSA 926 0,5 ml/perc, 120 perc keringetés 0,5 ml/perc 60 perc 100-200
13. 22,3 pmol antiHSA/HSA 1:2, pH 3 2,9 mg/ml 6,9 mg antiHSA 477 0,5 ml/perc, 120 perc keringetés 0,5 ml/perc 60 perc 3586 (=1,6 mg HSA)
14. 22,3 pmol antiHSA/HSA 1:2, pH 3 2,9 mg/ml 11,2 mg HSA 784 0,5 ml/perc, 120 perc keringetés 0,5 ml/perc 60 perc 100-200
15. 22,3 pmol antiHSA/HSA 1:1, pH 12 1,3 mg/ml 6,8 mg HSA 600 0,5 ml/perc, 70 perc keringetés 0,5 ml/perc 60 perc 100-200
16. 22,3 pmol antiHSA/HSA 1:1, pH 12 1,3 mg/ml 4,4 mg HSA 424 0,5 ml/perc, 120 perc keringetés 0,5 ml/perc 90 perc 1579 (=0,7 mg HSA)
a) A pmolban megadott mennyiségek az aktív csoportok számát jelzik /ml gélben.
A táblázatban alkalmazott rövidítések:
anti-HSA HSA elleni antitest (IgG)
anti-HSA/HSA HSA elleni antitest (IgG) és HSA komplexe
antinyúl IgG nyúl eredetű IgG elleni antitest
5. példa
Lupus erythematosusban szenvedő beteg plazmájának affinitáskromatográfiája (standardeljárás)
Lupus erythematosusban szenvedő beteg plazmája hozzáférhető. Protein-A-oszlopot (Pharmacia) alkalmaztunk teljes mennyiségű γ-globulin kinyerésére. Az antitestek immobilizálását ONB-karbonát-aktivált sepharose-6FF-en végeztük (20 (pmol/ml).
HU 226 017B1
Pufferoldatok az immunadszorpcióhoz:
PA-puffer, pH 7,0 1000 ml A pH-t HCIdal vagy NaOH-dal állítottuk be
T rinátrium-citrát 3,30 g
Nátrium-acetátx3H2O 5,45 g
Nátrium-klorid 4,9 g
Dinátrium-hidrogén-fosz- fát 2,91 g
Kálium-dihidrogén-foszfát 0,26 g
PA-eluens, pH 2,2 1000 ml A pH-t HCIdal vagy NaOH-dal állítottuk be
CitromsavxH2O 6,12
Nátrium-citrát 9, 00 g
Mosópuffer: 3M-os NaCI, pH 7,0 1000 ml A pH-t HCIdal vagy NaOH-dal állítottuk be
Trinátrium-citrát 3,30 g
Nátrium-acetátx3H2O 5,45 g
Nátrium-klorid 175 g
Dinátrium-hidrogén-fosz- fát 2,91 g
Kálium-dihidrogén-foszfát 0,26 g
Tween 20 0,5 g
Citrátpuffer: 0,1 M, pH 2,2 250 ml A pH-t HCIdal vagy NaOH-dal állítottuk be
Citromsav 5,25 g
A következő eljárásokat alkalmaztuk:
Egy protein-A-oszlopot (5 ml gél, Pharmacia) egyensúlyba hoztunk PA-pufferrel. Nagy sebességgel lecentrifugált friss plazma 20 ml-ét elegyítettük 1:2 arányban PA-pufferrel, és felvittük az oszlopra. A kromatográfiához egy Econo-rendszert alkalmaztunk (Bio-Rad). Egy ideig az oszlopon tartottuk a plazmát, majd újra felvittük, hogy teljes adszorpciót érjünk el. 5 oszloptérfogatnyi PA-val végzett intenzív mosás volt szükséges ahhoz, hogy eltávolítsuk a nem adszorbeálódott anyagot. A nem specifikusan kötődött fehérjéket 3 M NaCI-ot tartalmazó mosópufferrel távolítottuk el. Az immunkomplexekből származó immunglobulinok és fehérjék éles csúcsként eluálódtak 0,1 M citrátpufferben, 0,05% Tween 20 jelenlétében, pH 2,2 mellett. Az eluátum térfogata 6,5 ml volt. A fehérjekoncentráció UV-spektrofotometriával 280 nm-es hullámhossznál meghatározva 17,6 mg/ml-nek adódott. Az eluálás után közvetlenül az elkülönítve kinyert IgG-t és a fehérjéket az PNB-karbonát-aktivált „sepharose”-ra kapcsoltuk fel. Ebből a célból 6 ml gélt készítettünk a forgalmazó utasításai szerint, majd légtelenítve az eluátumhoz adtuk és 1 órán át rázattuk. Az oldott fehérjék pufferhatásának köszönhetően az eluátum pH-ja 3 és 4 között volt. A szabad kötéseket 1 M-os etanol-aminnal telítenünk kellett, 0,1 M borátpufferben, pH 8,0 mellett. A kötődés hatékonyságának meghatározása érdekében összehasonlítottuk a fehérje koncentrációját az egyesített, mosás után kapott oldatokban és a protein-A-eluátumban, és eredményként 57%-ot kaptunk. Alapos mosás után a gél készen állt az affinitáskromatográfiás kísérletekhez.
Ebből a célból 40 ml, páciensből származó plazmát lecentrifugáltunk, 1:2 arányban hígítottuk PA-val, majd két alkalommal átengedtük az oszlopon. A nem kötődött, vagy nemspecifikusan kötődött anyagot többszörös mosással eltávolítottuk, mindig 10 oszloptérfogatnyi PA-t, majd mosópuffert és újra PA-t alkalmazva. A specifikusan kötődött fehérjéket 0,1 M citrátpufferrel eluáltuk, pH 2,2-n (1. ábra).
A plazmafehérjéket és a kromatográfiásan nyert frakciókat standardeljárásokkal analizáltuk SDS-poliakrilamid-gélelektroforézis (SDS-PAGE) során (Miniprotean II, Bio-Rad). A gélek gradiensgélek voltak, a monomer koncentrációja 10% és 25% között változott. A festést coomassie brilliant blue R-250-nel végeztük (2. ás 3. ábra).
A 2. ábrán látható, hogy a protein-A-eluátumban az antitesteken kívül további fehérjék is találhatók. Immobilizálásuk után helyzetük olyan, hogy specifikusan kötik a beteg plazmájából származó megfelelő komponenseket. A eluálás során kapott 2. csúcs (0,1 M citrátpuffer, pH 2,2) fehérjéi közül néhányat azonosítottunk az affinitáskromatográfia után PAGE segítségével. Immunglobulinokon és néhány nagyobb molekulatömegű fehérjén kívül 3 fehérje, amely a protein-A eluátumban csupán alig látható csíkként volt kimutatható, határozottan feldúsult (3. ábra). Relatív molekulatömegük kb. 40 kD.
6. példa
Sclerosis multiplexben szenvedő beteg plazmájának affinitáskromatográfiája A plazma kezelése, a protein-A eluálása és az eluált fehérjék kapcsolása az 5. példában leírtakkal azonos módon történt. Miután az adszorptíve kötött fehérjéket lemostuk az immunadszorbensről (1. csúcs,
4. ábra), a specifikusan kötött fehérjéket a mátrixból az elúciós puffer segítségével távolítottuk el, amely - a PAGE tanúsága szerint (5. ábra) - egy, főként immunglobulinokat tartalmazó fehérjekeverék.
7. példa
Rheumatoid arthritisben szenvedő beteg plazmájának affinitáskromatográfiája A plazma kezelése, a protein-A eluálása és az eluált fehérjék kapcsolása az 5. példában leírtakkal azonos módon történt. Miután az adszorptíve kötött fehérjéket lemostuk az immunadszorbensről (1. csúcs, 6. ábra), a specifikusan kötött fehérjéket a mátrixból az elúciós puffer segítségével távolítottuk el, amely - a
HU 226 017 Β1
PAGE tanúsága szerint (7. ábra) - egy, főként immunglobulinokat tartalmazó fehérjekeverék.
Az alábbiakban megadjuk az ábrák rövid leírását.
1. ábra:
Páciens plazmájának standardeljárással készült elúciós profilja homológ antitestek és antigének sepharose-6FF-hez kapcsolásával készült oszlopon a plazma adszorpciója után.
A jelek a puffercserét jelzik a mosás és az eluálás kezdetekor (a mintafelvitelt nem jelöltük):
=mosópuffer; 2=0,1 M citrátpuffer, pH 2,2.
2. ábra:
A proetin-A-oszlopról eluált oldat poliakrilamid-gélelektroforézise az ONB-karbonát-aktivált „sepharose”hoz való kapcsolás után.
1, 2=5 vagy 10 μΙ anyag a kapcsolás előtt; 3=10 kD „vezető” standard; 4=y-globulin standard; 5, 6, 7, 8=mint 1-4, de kapcsolás után (azaz a nem felkötött anyag).
3. ábra:
A homológ plazma immunadszorbens oszlopon pH
2,2-nél végzett kromatográfiája során kapott eluátum poliakrilamid-gélelektroforézise.
1-7 és 9-15=csúcsok frakciói; 8, 17=10 kD-os fehérjemarker, 16=öblítés.
4. ábra:
Páciens plazmájának standardeljárással készült elúciós profilja homológ antitestek és antigének sepharose-6FF-hez kapcsolásával készült oszlopon a plazma adszorpciója után.
A jelek a puffercserét jelzik a mosás és az eluálás kezdetekor (a mintafelvitelt nem jelöltük):
1=mosópuffer; 2=0,1 M citrátpuffer, pH 2,2.
5. ábra:
A homológ plazma immunadszorbens oszlopon pH
2,2-nél végzett kromatográfiája során kapott eluátum poliakrilamid-gélelektroforézise.
= 10 kD-os standard; 2=Y-globulin standard; 3=csúcsnak megfelelő frakció (2. csúcs, 4. ábra); 4=a csúcsfrakció amicon centrifree®-n keresztüli párologtatás után.
6. ábra:
Páciens plazmájának standardeljárással készült elúciós profilja homológ antitestek és antigének sepharose-6FF-bez kapcsolásával készült oszlopon a plazma adszorpciója után.
A jelek a puffercserét jelzik a mosás és az eluálás kezdetekor (a mintafelvitelt nem jelöltük):
1=mosópuffer; 2=0,1 M citrátpuffer, pH 6-0, Tween; 3=0,1 M citrátpuffer, pH 2,2.
7. ábra:
A homológ plazma immunadszorbens oszlopon pH
2,2-nél végzett kromatográfiája során kapott eluátum poliakrilamid-gélelektroforézise.
1-4=mosópufferből származó fehérjék; 5-6=csúcsnak megfelelő frakciók (3. csúcs, 6. ábra); 7=10 kD-os standard; 8=y-globulin standard.

Claims (10)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Páciensre specifikus immunadszorbens, amely páciensek patológiás jelentőségű immunfaktorainak immunkomplexeiből elkülönített antigéneket és/vagy antitesteket tartalmaz, aktivált szilárd hordozóanyagra kovalensen kötött formában.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti, páciensre specifikus immunadszorbens, amely az immunrendszer hibás szabályozása által okozott vagy fenntartott betegségekben szenvedő páciensekből elkülönített antigéneket és/vagy antitesteket tartalmaz.
  3. 3. Az 1. vagy a 2. igénypont szerinti, páciensre specifikus immunadszorbens, amely autoimmun betegségben vagy reakciók immunpatológiás állapotaiban szenvedő páciensekből elkülönített antigéneket és/vagy antitesteket tartalmaz, amely betegség vagy állapot többek között az alábbiak bármelyike lehet: rheumatoid arthritis, glomerulonephritis, lupus erythematosus, sclerosis multiplex, antifoszfolipid szindróma, érgyulladások, hisztoinkompatibilis transzplantátumrecipiensek állapota, idegrendszeri autoimmun betegségek, vagy fertőző betegségek következtében kialakult immunpatológiailag hibás szabályozással jellemezhető állapotok.
  4. 4. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti, páciensre specifikus immunadszorbens, amely rheumatoid arthritis, lupus erythematosusban vagy sclerosis multiplexben szenvedő páciensből elkülönített antigént és/vagy antitestet tartalmaz.
  5. 5. Az 1-4. igénypontok bármelyike szerinti, páciensre specifikus immunadszorbens, amely felszínén elegendő immunkomplex-komponens kovalens megkötésére képes biokompatibilis anyaghoz van kötve.
  6. 6. Az 1-5. igénypontok bármelyike szerinti, páciensre specifikus immunadszorbens, amely sepharose-hoz vagy cellulózgyöngyökhöz van kötve.
  7. 7. Eljárás 1-6. igénypontok bármelyike szerinti, páciensre specifikus immunadszorbens előállítására, azzal jellemezve, hogy egy páciens véréből vagy más testfolyadékából, célszerűen cerebrospinális folyadékából immunkomplexeket izolálunk, azt aktív komponenseire - antitestekre és antigénekre - bontjuk, és ezeket a komponenseket kovalensen szilárd hordozóanyaghoz kötjük.
  8. 8. A 7. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az immunkomplexeket egyedi komponenseikre bontjuk savas vagy lúgos közeg, előnyösen pH 2 és pH 5 közötti vagy pH 10 és pH 12 közötti pH-jú közeg alkalmazásával és/vagy a közeghez adott só - például NaCI, MgCIz, LiCI, karbamid vagy guanidin-hidroklorid
    - alkalmazásával, és, adott esetben frakcionálás és adott esetben - egy meghatározott koncentráció felett
    - a komponensek disszociált állapotának fenntartására alkalmas só - például NaCI, MgCI2, LiCI, karbamid
    HU 226 017 Β1 vagy guanidin-hidroklorid - hozzáadása után, ismert módon, kovalensen szilárd hordozóhoz kapcsoljuk őket, pH 2 és pH 12 közötti tartományban.
  9. 9. Az 1-6. igénypontok bármelyike szerinti, páciensre specifikus immunadszorbens alkalmazása extrakorporális apheresisre.
  10. 10. Az 1-6. igénypontok bármelyike szerinti, pá ciensre specifikus immunadszorbens alkalmazása im munpatológiás jelentőségű endogén anyagok kivoná sára és további feldolgozására.
HU9900462A 1995-10-05 1996-10-03 Patient-specific immunoadsorbents for extracorporal apheresis and methods of producing said immuno-adsorbers HU226017B1 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19538641A DE19538641C2 (de) 1995-10-05 1995-10-05 Patientenspezifische Immunadsorber für die extrakorporale Apherese und Verfahren für deren Herstellung
PCT/DE1996/001910 WO1997014964A2 (de) 1995-10-05 1996-10-03 Patientenspezifische immunadsorber für die extrakorporale apherese und verfahren für deren herstellung

Publications (3)

Publication Number Publication Date
HUP9900462A2 HUP9900462A2 (hu) 1999-05-28
HUP9900462A3 HUP9900462A3 (en) 2001-03-28
HU226017B1 true HU226017B1 (en) 2008-03-28

Family

ID=7775080

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9900462A HU226017B1 (en) 1995-10-05 1996-10-03 Patient-specific immunoadsorbents for extracorporal apheresis and methods of producing said immuno-adsorbers

Country Status (14)

Country Link
US (1) US6866846B1 (hu)
EP (1) EP0859957B1 (hu)
JP (1) JP3930564B2 (hu)
AT (1) ATE215697T1 (hu)
AU (1) AU727699B2 (hu)
CA (1) CA2234088A1 (hu)
DE (2) DE19538641C2 (hu)
DK (1) DK0859957T3 (hu)
HU (1) HU226017B1 (hu)
NO (1) NO321159B1 (hu)
NZ (1) NZ330102A (hu)
PL (1) PL184541B1 (hu)
RU (1) RU2167705C2 (hu)
WO (1) WO1997014964A2 (hu)

Families Citing this family (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE19538641C2 (de) * 1995-10-05 2000-09-21 Privates Inst Bioserv Gmbh Patientenspezifische Immunadsorber für die extrakorporale Apherese und Verfahren für deren Herstellung
US6620382B1 (en) * 1998-05-22 2003-09-16 Biopheresis Technologies, Llc. Method and compositions for treatment of cancers
US8197430B1 (en) * 1998-05-22 2012-06-12 Biopheresis Technologies, Inc. Method and system to remove cytokine inhibitor in patients
AU4860600A (en) * 1999-06-03 2000-12-28 Advanced Extravascular Systems One step removal of unwanted molecules from circulating blood
AU1267501A (en) * 1999-09-07 2001-04-10 Bioserv Ag Novel autogenous vaccines used to obtain an immune tolerance
US8865172B2 (en) 2000-05-08 2014-10-21 Advanced Extravascular Systems, Inc. Method for reducing the number of unwanted molecules in bodily fluids
DE10036742A1 (de) * 2000-07-27 2002-02-21 Aesku Lab Diagnostika Vorrichtung zur Behandlung von Immunerkrankungen
AT410636B (de) * 2001-03-23 2003-06-25 Igeneon Krebs Immuntherapie Verfahren zur herstellung eines impfstoffes
WO2003012396A2 (en) * 2001-08-01 2003-02-13 Chauhan Anil K Immune complexes
JP2008511340A (ja) * 2004-04-30 2008-04-17 バイオフェレシス テクノロジーズ, インコーポレイテッド 患者において可溶性tnfr1、可溶性tnfr2、および可溶性il2を除去する方法およびシステム
DE102004037475A1 (de) * 2004-07-30 2006-03-23 Heinrich, Hans-Werner, Prof. Dr. Filtersystem zur membrangetrennten, adsorptiven Behandlung partikelhaltiger Flüssigkeiten
US20060159680A1 (en) * 2005-01-14 2006-07-20 Smith Henry J Targeted apherisis for the treatment of rheumatoid arthritis
EP2021025B1 (en) * 2006-05-12 2016-08-17 ITH Immune Therapy Holdings AB Method and means for treating inflammatory bowel disease
WO2008001802A1 (fr) * 2006-06-27 2008-01-03 Asahi Kasei Kabushiki Kaisha Substrat pour traitement de fluide biologique
DE102008025965A1 (de) 2008-05-30 2009-12-03 Heinrich, Hans-Werner, Prof. Dr. Verfahren zur Isolierung von Zellen und Krankheitserregern aus Körperflüssigkeiten
WO2010029317A2 (en) 2008-09-10 2010-03-18 Ibd Column Therapies International Ab Treating inflammatory conditions
US8979787B2 (en) * 2011-01-20 2015-03-17 Henry John Smith Treatment of pre-eclampsia using targeted apheresis
US20130068691A1 (en) * 2011-08-05 2013-03-21 Henry John Smith Targeted apheresis for the treatment of rheumatoid arthritis and immune disorders
NZ700025A (en) * 2012-02-15 2018-07-27 Biocon Ltd A process for detection and optional quantification of an analyte
US9717841B2 (en) 2012-09-11 2017-08-01 Gary L. McNeil Closed-circuit device and methods for isolation, modification, and re-administration of specific constituents from a biological fluid source
EP3477300A1 (de) * 2017-10-25 2019-05-01 Euroimmun Medizinische Labordiagnostika AG Zellulose-basierter immunadsorber

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3964467A (en) * 1973-01-30 1976-06-22 Bio Response Inc. Methods and apparatus for augmentation of the production of anti-bodies in animals and humans and the collection thereof
US4551433A (en) * 1981-05-18 1985-11-05 Genentech, Inc. Microbial hybrid promoters
US4551435A (en) * 1983-08-24 1985-11-05 Immunicon, Inc. Selective removal of immunospecifically recognizable substances from solution
US4681870A (en) * 1985-01-11 1987-07-21 Imre Corporation Protein A-silica immunoadsorbent and process for its production
WO1986007152A1 (en) * 1985-05-31 1986-12-04 Biostar Medical Products, Inc. Method and article for detection of immune complexes
DE3750544D1 (de) * 1986-11-21 1994-10-20 Imre Corp Antigen-spezifisches Entfernen von zirkulierenden Immunokomplexen.
US5122112A (en) * 1986-11-21 1992-06-16 Imre Corporation Antigen-specific removal of circulating immune complexes
DE19538641C2 (de) * 1995-10-05 2000-09-21 Privates Inst Bioserv Gmbh Patientenspezifische Immunadsorber für die extrakorporale Apherese und Verfahren für deren Herstellung

Also Published As

Publication number Publication date
NO981530D0 (no) 1998-04-03
RU2167705C2 (ru) 2001-05-27
ATE215697T1 (de) 2002-04-15
PL184541B1 (pl) 2002-11-29
EP0859957A2 (de) 1998-08-26
US6866846B1 (en) 2005-03-15
NZ330102A (en) 2001-02-23
DK0859957T3 (da) 2002-07-29
PL325897A1 (en) 1998-08-17
JP3930564B2 (ja) 2007-06-13
DE19714913B4 (de) 2013-04-18
EP0859957B1 (de) 2002-04-03
NO981530L (no) 1998-06-04
JP2000501949A (ja) 2000-02-22
NO321159B1 (no) 2006-03-27
HUP9900462A2 (hu) 1999-05-28
DE19538641A1 (de) 1997-04-17
WO1997014964A2 (de) 1997-04-24
DE19538641C2 (de) 2000-09-21
AU727699B2 (en) 2000-12-21
AU1716297A (en) 1997-05-07
WO1997014964A3 (de) 1997-06-12
DE19714913A1 (de) 1998-10-08
HUP9900462A3 (en) 2001-03-28
CA2234088A1 (en) 1997-04-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU226017B1 (en) Patient-specific immunoadsorbents for extracorporal apheresis and methods of producing said immuno-adsorbers
JPS608865B2 (ja) 生体高分子、低分子物質を可逆的または不可逆的に固定し得る陽イオン性物質
JP2001525200A (ja) 血液からβ−2ミクログロブリンを除去する方法
WO1997014964A9 (de) Patientenspezifische immunadsorber für die extrakorporale apherese und verfahren für deren herstellung
CN111741783A (zh) 治疗与补体因子相关的疾病的体外装置和方法
WO2001074420A1 (fr) Adsorbants pour proteines de la famille hmg et colonne de purification de liquide organique
JPH0133446B2 (hu)
US20220088279A1 (en) Extracorporeal devices for methods for treating diseases associated with anti-neutrophil cytoplasmic antibodies
JP3897985B2 (ja) フィブリノーゲンおよび/またはフィブリンの濃度を減少させるための吸着剤を用いた吸着装置の製造
JP3926573B2 (ja) フィブリノーゲンおよび/またはフィブリンの濃度を減少させるための吸着剤の製造法、吸着剤、および吸着装置の製造のための吸着剤の使用
US20020146413A1 (en) System for treating patient with bacterial infections
JP2777604B2 (ja) 体液処理用吸着材
JPH02149341A (ja) 血清アミロイドp蛋白用吸着体
Weber et al. Extracorporeal removal of proinflammatory cytokines by specific adsorption onto microspheres
Ostlund Jr Immunosorbent Chemistry: A Study of Agarose‐Based Column Sorbents for the Removal of Low‐Density Lipoprotein (LDL) from Blood
US6309999B1 (en) Process for the preparation of an immunoadsorbent matrix
JP2000237585A (ja) 医療用吸着材料
Weber et al. Specific blood purification by means of antibody-conjugated magnetic microspheres
US20020146412A1 (en) Method of treating patients with bacterial infections
JPH09504532A (ja) クロマトグラフィー法による第8因子を含むウィルス不活性化分画の製造方法
JPH0126709B2 (hu)
Piskin Potential sorbents for medical and some related applications
CA3179750A1 (en) Compositions and methods for simplified high efficiency isolation of proteins
JPH0233265B2 (hu)
Wang Ion Exchange Resin in Hemoperfusion

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees