FR2794473A1 - Procede de multiplication de cellules souches - Google Patents

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Abstract

L'invention concerne l'utilisation d'un inhibiteur du développement cellulaire de façon contrôlée pour maintenir l'état indifférencié de cellules souches, notamment de cellules souches humaines, tout en permettant leur division cellulaire.

Description

PROCEDE <B>DE</B> MULTIPLICATION<B>DE CELLULES</B> SOUCRES La présente invention a pour objet un procédé de multiplication de cellules souches. L'invention a notamment pour objet un procédé permettant<B>à</B> la fois de multiplier rapidement lesdites cellules souches et de les maintenir dans un état indifférencié.
Les cultures actuelles qui permettent le maintien des cellules souches dans un état indifférencié, et notamment des cellules souches hématopoïétiques, et/ou les multipliant, sont des cultures<B>à</B> long terme dans lesquelles les cellules se divisent très lentement. Plus particulièrement, les cultures permettant par exemple un autorenouvellement (une multiplication<B>à</B> l'identique) de cellules souches, notamment de cellules souches hématopoïétiques, sont uniquement des cultures sur stroma médullaire, ou des cultures<B>à</B> multiplication lente, en l'absence de stroma médullaire.
S'agissant plus particulièrement des cultures<B>à</B> long terme sur stroma médullaire, on peut citer les cultures de type Dexter, dans lesquelles les cellules souches, notamment les cellules souches hématopoïétiques, se développent sur un stroma médullaire, ce qui permet de n'utiliser que peu de cytokines mais entraîne une division lente des cellules (et donc une multiplication lente des cellules) en présence d'un mélange de progéniteurs avec des cellules matures hématopoïétiques et stromales.
De plus, contrairement<B>à</B> ce qui se passe chez la souris, il n'y a pas de maintien<B>à</B> long terme chez l'homme de cellules souches sur stroma.
S'agissant des cultures<B>à</B> long terme, en l'absence de stroma médullaire, on peut mentionner le système de culture de Piacibello. Dans ce système de culture (Piacibello et al.<B>1997</B> Blood), les cellules CD34+ contenant des cellules souches hématopoiétiques sont ensemencées<B>à</B> 20000 cellules par ml, et chaque semaine la moitié de la culture est prélevée et remplacée par du milieu frais. Après deux semaines, le nombre de cellules dou- ble <B>à</B> un rythme de une fois par semaine, sur plusieurs mois. Pendant les deux premières semaines de la culture de Piacibello, il<B>y</B> a une forte perte des cellules CD34+ qui se stabilisent<B>à</B> moins de 2%.
Ainsi, les cultures actuelles sont peu compatibles avec une production<B>à</B> des fins cliniques ou bi otechno logiques de cellules souches maintenant leur caractère indifférencié et multipotent.
Par ailleurs,<B>à</B> ce jour on ne connaît pas d'inhibiteur de la différenciation de cellules souches permettant un autorenouvellement continu satisfaisant. L'un des principaux buts de l'invention est de proposer un procédé de culture de cellules souches permettant d'obtenir, rapidement et en quantité importante, des cellules souches humaines dans un état indifférencié.
L'un des buts de l'invention est de proposer un procédé rapide de culture de cellules souches, sans stroma médullaire, et permettant de réduire les volumes de culture.
L'un des autres buts de l'invention est d'utiliser les cellules souches ainsi obtenues pour reconstituer des tissus et des organes<B>à</B> transplanter.
L'invention a pour objet l'utilisation d'un inhibiteur du développement cellulaire de façon contrôlée pour maintenir l'état indifférencié de cellules souches, notamment de cellules souches humaines, tout en permettant leur division cellulaire.
La présente invention découle de la découverte faite par les Inventeurs que, dans certaines conditions, un inhibiteur du développement cellulaire peut être également un inhibiteur de la différenciation cellulaire de cellules souches.<B>A</B> ce titre, le TGF-P ( transforming growth factor<B> </B> (facteur de croissance transformant , préalablement connu comme un inhibiteur du développement cellulaire de cellules souches, et notamment de cellules souches hématopoiétiques ou progéniteurs primitifs hérnatopoiétiques se révèle être, selon l'invention, un inhibiteur de la différenciation cellulaire.
L'expression<B> </B> inhibiteur du développement cellulaire<B> </B> englobe<B>à</B> la fois toute substance inhibant la prolifération cellulaire et/ou la croissance cellulaire, et/ou la différenciation cellulaire.
L'expression<B> </B> inhibiteur de la prolifération cellulaire<B> </B> signifie également inhibiteur de la division cellulaire, ou inhibiteur du cycle cellulaire.
L'expression<B> </B> utilisation d'un inhibiteur du développement cellulaire de façon contrôlée<B> </B> signifie que l'inhibiteur du développement cellulaire est utilisé de façon modulable afin de permettre<B>:</B> (a) la division cellulaire des cellules souches lorsque celle-ci est souhaitée, tout en maintenant l'état indifférencié desdites cellules souches au cours ou<B>à</B> la fin de la division cellulaire, ou, <B>(b)</B> l'inhibition du développement cellulaire des cellules souches lorsque celui-ci est nécessaire pour inhiber la différenciation cellulaire desdites cellules souches. L'expression utilisation d'un inhibiteur du développement cellulaire de façon contrôlée signifie, en d'autres termes, que l'inhibiteur du développement cellulaire peut être utilisé dans des conditions telles que les cellules souches sont sorties de leur état de repos afin de se diviser, dans des conditions contrôlées empêchant la différenciation.
L'expression<B> </B> cellules souches<B> </B> signifie cellules immatures, ou bien cellules non différenciées (ou indifférenciées), ou bien cellules primitives, ou bien cellules pluripotentes ou cellules multipotentes.
Les cellules souches avantageusement utilisées selon l'invention sont des cellules souches humaines choisies dans le groupe constitué par les cellules souches embryonnaires<B>à</B> l'origine des cellules souches somatiques, et/ou les cellules souches/progéniteurs somatiques elles/eux mêmes<B>à</B> l'origine du sang et/ou de différents tissus solides tels que la peau, le foie, le pancréas, le c#ur, le rein, l'os, ou du tissu nerveux.
L'expression<B> </B> cellules souches embryonnaires<B>à</B> l'origine des cellules souches somatiques<B> </B> est définie par exemple comme une cellule pouvant donner naissance<B>à</B> l'une quelconque des cellules souches somatiques.
L'expression<B> </B> cellules souches somatiques<B> </B> est définie par exemple comme une cellule pouvant donner naissance<B>à</B> un tissu spécifique.
Les cellules souches selon l'invention sont notamment les cellules souches somatiques humaines hématopoïétiques, encore appelées progéniteurs primitifs hématopoïétiques.
Selon un mode de réalisation avantageux, l'inhibiteur du développement cellulaire utilisé avantageusement selon l'invention est choisi dans le groupe constitué par les produits de gènes contrôlant le développement cellulaire vis-à-vis de la différenciation cellulaire et/ou de la division cellulaire, les inhibiteurs des kinases cyclines dépendantes, les facteurs contrôlant l'apoptose ou le vieillissement, et les cytokines (tels que les interférons, le TGF-P). Par le terme "cytokines", on désigne tous les facteurs de croissance, même si ces facteurs peuvent agir également comme des inhibiteurs de la croissance dans certaines conditions.
Comme produits de gènes contrôlant le développement cellulaire vis-à-vis de la différenciation cellulaire et/ou de la division cellulaire, on peut notamment citer les facteurs de croissance, les cytokines, le produit de gènes contrôlant la différenciation, le vieillissement ou l'apoptose.
Comme inhibiteurs des kinases cyclines dépendantes on peut notamment citer<B>le</B> gène du rétinoblastome, les gènes P<B>15,</B> P<B>16,</B> P2<B>1, P27.</B> Le gène du rétinoblastome est un gène suppresseur de tumeur (anti-oncogène). Les gènes P<B>15,</B> P<B>16,</B> P2<B>1, P27</B> inhibent le cycle cellulaire.
Comme facteur contrôlant l'apoptose, on peut notamment citer les gènes bcl-2, bax, fas.
Comme facteur contrôlant le vieillissement, on peut notamment citer la télomerase.
Comme cytokines pouvant être des inhibiteurs du développement cellulaire, on peut notamment citer les interférons et en particulier le TGF-P.
Selon un mode de réalisation avantageux, l'invention a pour objet l'utilisation d'un inhibiteur du développement cellulaire tel que défini ci-dessus, en association séquentielle avec un anti-inhibiteur de la prolifération cellulaire, pour déclencher un nombre de divisions cellulaires allant de<B>1 à</B> environ<B>100,</B> notamment de<B>1 à</B> environ<B>10,</B> et notamment pour déclencher une seule division cellulaire, tout en maintenant l'état indifférencié des cellules souches, notamment des cellules souches humaines.
L'expression<B> </B> association séquentielle<B> </B> signifie que. l'anti-inhibiteur de la prolifération cellulaire n'est pas utilisé de façon simultanée avec l'inhibiteur du développement cellulaire.
Selon un mode de réalisation avantageux, l'invention a pour objet un procédé de multiplication de cellules souches dans un milieu de culture, notamment de cellules souches humaines, caracténi sé en ce qu'il comprend<B>:</B> <B>-</B> une étape dans laquelle les cellules souches, notamment les cellules souches humaines,<B>à</B> l'état de repos sont sorties de leur état de repos par la neutralisation de l'effet d'un inhibiteur du développement cellulaire, et notamment d'un inhibiteur de la prolifération cellulaire, produit par les cellules et/ou présent dans le milieu de culture, de telle sorte qu'il<B>y</B> ait déclenchement d'un nombre de divisions cellulaires allant de<B>1 à</B> environ<B>100,</B> notamment de<B>1 à</B> environ<B>10,</B> et notamment d'une seule division cellulaire, <B>-</B> et, une étape dans laquelle les cellules souches, notamment les cellules souches humaines, obtenues<B>à</B> l'étape précédente sont inhibées dans leur différenciation,<B>à</B> l'aide d'un inhibiteur du développement cellulaire.
L'invention a également pour objet un procédé de multiplication de cellules souches dans un milieu de culture, notamment de cellules souches humaines, caractérisé en ce qu'il comprend<B>:</B> <B>-</B> une étape selon laquelle les cellules souches, notamment les cellules souches humaines,<B>à</B> l'état de division sont empêchées d'entrer dans un état de différenciation,<B>à</B> l'aide d'un inhibiteur du développement cellulaire, <B>-</B> et, une étape selon laquelle les cellules souches, notamment les cellules souches humaines, obtenues<B>à</B> l'étape précédente sont remises dans leur état de division, par la neutralisation de l'effet d'un inhibiteur du développement cellulaire, et notamment d'un inhibiteur de la prolifération cellulaire, de telle sorte qu'il<B>y</B> ait déclenchement d'un nombre de divisions cellulaires allant de<B>1 à</B> environ<B>100,</B> notamment de<B>1 à</B> environ<B>10,</B> et notamment d'une seule division cellulaire.
Le procédé de multiplication selon l'invention est caractérisé en ce que, au cours et<B>à</B> l'issue dudit procédé, les cellules souches ainsi multipliées sont maintenues dans un état indifférencié.
Selon l'invention, l'expression<B> </B> cellules souches multipliées<B> </B> a la même signification que l'expression<B> </B> cellules souches amplifiées<B> .</B> De même l'expression <B> </B> procédé de multiplication<B> </B> a la même signification que l'expression<B> </B> procédé d'amplification<B> .</B>
L'état de repos des cellules signifie que les cellules ne se différencient pas et ne se divisent pas.
Selon un mode de réalisation avantageux, les cellules souches multipliées selon le procédé de multiplication de l'invention, sont des cellules souches humaines choisies dans le groupe constitué par les cellules souches embryonnaires<B>à</B> l'origine des cellules souches somatiques, et les cellules somatiques elles-mêmes<B>à</B> l'origine du sang et/ou des différents tissus solides tels que la peau, le foie, le pancréas, le c#ur, le rein, l'os, ou du tissu nerveux.
Le procédé de multiplication selon l'invention est caractérisé en ce que les cellules souches, notamment les cellules humaines, sont présentes<B>à</B> une concentration cellulaire d'environ<B>1 à</B> environ<B>1010</B> cellules par ml, et notamment<B>à</B> une concentration allant d'environ<B>103 à</B> environ 1010 cellules par ml, et plus particulièrement d'environ 104<B>à</B> environ<B>109</B> cellules par ml.
<B>Il</B> faut noter que la présente invention s'applique aussi bien aux cellules humaines qu'aux cellules animales.
Dans le procédé de multiplication de l'invention, l'inhibiteur du développement cellulaire est synthétisé par les cellules souches, notamment les cellules souches humaines, et/ou est ajouté dans le milieu de culture contenant les cellules souches, notamment les cellules souches humaines.
Ledit inhibiteur du développement cellulaire est synthétisé par les cellules souches et/ou est ajouté dans le milieu de culture<B>:</B> (a) avant la première division cellulaire, et <B>(b)</B> au cours ou<B>à</B> la fin d'un cycle de division (lorsque lesdites cellules se trouvent préalablement en état de division).
Lorsque l'inhibiteur du développement cellulaire est synthétisé par les cellules souches, il peut être sécrété ou non.
La quantité d'inhibiteur du développement cellulaire synthétisée par les cellules souches, ou ajoutée dans le milieu de culture, doit être suffisante de façon<B>à</B> ce que lesdites cellules (a) soient maintenues dans leur état de repos avant la première division cellulaire, et<B>(b)</B> soient placées<B>à</B> l'état de repos lorsqu'elles se trouvaient préalablement en état de division.
La quantité d'inhibiteur du développement cellulaire synthétisée par les cellules souches peut varier de<B>0,01</B> pg <B>à 1</B> mg/ml dans le milieu de culture, et notamment de<B>0J</B> pg <B>à 10</B> ng/mI.
La quantité d'inhibiteur du développement cellulaire ajoutée dans le milieu de culture peut varier de<B>0J</B> pg <B>à 1</B> mg/ml dans le milieu de culture, et notamment de<B>1</B> pg <B>à 10</B> ng/ml. <B>-</B> Selon un mode de réalisation avantageux, le procédé de multiplication selon l'invention est caractérisé en ce que<B>l' -</B> inhibiteur du développement cellulaire est choisi dans le groupe constitué par les produits de gènes contrôlant le développement cellulaire vis-à-vis de la différenciation cellulaire et/ou de la division cellulaire, les inhibiteurs des kinases cyclines dépendantes, les facteurs contrôlant l'apoptose ou le vieillissement, et les cytokines (tels que les interférons, le TGFP).
Les produits de gènes coiitrôlant le développement cellulaire vis-à-vis de la différenciation cellulaire et/ou de la division cellulaire, les inhibiteurs des kinases cyclines dépendantes, les facteurs contrôlant l'apoptose ou le vieillissement, ainsi que les cytokines sont notamment ceux décrits ci-dessus.
Selon un mode de réalisation avantageux, l'inhibiteur du développement cellulaire est présent<B>à</B> une faible concentration dans le milieu de culture contenant les cellules souches, et notamment<B>à</B> une concentration allant d'environ 10-1() mg/ml <B>à 1</B> mg/mI. Le procédé de multiplication selon l'invention est caractérisé en ce que la neutralisation de l'effet de l'inhibiteur du développement cellulaire, et notamment de l'inhibiteur de la prolifération cellulaire, présent dans le milieu de culture, est effectuée par: _ l'addition dans le milieu de culture d'un anti-inhibiteur de la prolifération cellulaire, et/ou <B>-</B> le retrait du milieu de culture de l'inhibiteur du développement cellulaire, et notamment de l'inhibiteur de la prolifération cellulaire.
La neutralisation de l'effet de l'inhibiteur du développement cellulaire permet aux cellules souches de sortir de leur état de repos et de déclencher au moins une division. De préférence, lorsque l'inhibiteur du développement cellulaire est synthétisé sans être secrété par les cellules souches, l'effet dudit inhibiteur est neutralisé par addition dans le milieu de culture d'un anti-inhibiteur de la prolifération cellulaire, qui peut pénétrer dans la cellule, tel qu'un oligonucléotide antisens.
Cependant, lorsque l'inhibiteur du développement cellulaire est secrété par les cellules souches, ou lorsque ledit inhibiteur est ajouté dans le milieu de culture, l'effet dudit inhibiteur est neutralisé soit par addition dans le milieu de culture d'un anti- inhibiteur de la prolifération cellulaire, soit par retrait du milieu de culture de l'inhibiteur du développement cellulaire.
Le retrait de l'inhibiteur du développement cellulaire du mi lieu de culture peut notamment être effectué<B>à</B> l'aide d'anticorps bloquants ou par lavage afin de neutraliser ledit inhibiteur.
La quantité d'inhibiteur du développement cellulaire retirée du milieu de culture contenant les cellules souches doit être suffisante de telle sorte qu'il<B>y</B> ait déclenchement d'un nombre de divisions cellulaires allant de<B>1 à</B> environ<B>100,</B> notamment de<B>1 à</B> environ<B>10,</B> et notamment d'une seule division cellulaire.
La quantité d'inhibiteur du développement cellulaire retirée du milieu de culture varie de<B>0,01</B> pg <B>à 1</B> ng/ml, et notamment de<B>0J</B> pg <B>à 10</B> ng/ml.
L'inhibiteur du développement cellulaire retiré du milieu de culture appartient notamment au groupe des cytokines, des oligonucléotides antisens bloquant l'expression de gènes du développement.
La quantité d'anti-inhibiteur de la prolifération cellulaire ajoutée dans le milieu de culture contenant les cellules souches doit être suffisante de telle sorte qu'il<B>y</B> ait déclenchement d'un nombre de divisions cellulaires allant<B>de 1 à</B> environ<B>100,</B> notamment de<B>1 à</B> environ<B>10,</B> et notamment d'une seule division cellulaire.
La quantité d'anti-inhibiteur de la prolifération cellulaire ajoutée dans le milieu de culture varie de<B>0J</B> #tg <B>à 10</B> mg/ml pour les anticorps bloquants ou de<B>0,01</B> #LM <B>à 1</B> mM d'oligonucléotide antisens dans le milieu de culture, et notamment de<B>1</B> #Lg <B>à 100</B> #tg/ml pour les anticorps bloquants ou de<B>0,1</B> FiM <B>à 100</B> #tM d'oligonucléotides antisens.
L'anti-inhibiteur de la prolifération cellulaire est choisi dans le groupe constitué par des oligonucléotides antisens ou des anticorps bloquants et notamment par Fanti- TGF-P.
Selon un mode de réalisation avantageux, le procédé de multiplication selon l'invention est caractérisé en ce que l'anti-inhibiteur de la prolifération cellulaire est présent en une concentration allant d'environ<B>10- 18 à</B> environ<B>10-3</B> giml, notamment<B>0, 1 à</B> 20 #t g/mI, et notamment 4. 10-" g/rnl (4 #ig/ml).
Le procédé de multiplication selon l'invention des cellules souches, notamment des cellules souches humaines, est caractérisé en ce qu'il comporte, afin d'obtenir un nombre suffisant de cellules souches maintenues<B>à</B> l'état indifférencié, un nombre total de cycles de divisions (ou d'états de division) compris entre<B>1 à 100</B> cycles, notamment entre<B>5 à</B> 20 cycles, et notamment<B>10</B> cycles.
Selon un mode de réalisation avantageux, la durée totale de l'ensemble des états de repos du procédé de multiplication selon l'invention varie de<B>1</B> heure<B>à 3</B> ans, notamment de 20 heures<B>à</B> 200 heures, et la durée totale de l'ensemble des cycles<B>de</B> division du procédé de multiplication selon l'invention varie de<B>10</B> heures<B>à 3</B> ans et notamment de 20 heures<B>à</B> 200 heures.
Selon un mode de réalisation avantageux, le procédé de multiplication selon l'invention est caractérisé en ce que la durée d'un seul état de repos s'échelonne d'environ<B>1</B> heure<B>à 3</B> ans, et est notamment d'environ<B>6</B> heures<B>à 72</B> heures, et en ce que la durée d'un seul cycle de division s'échelonne d'environ<B>6</B> heures<B>à 3</B> ans, et est notamment d'environ<B>6</B> heures<B>à</B> 24 heures.
La durée totale du procédé de multiplication selon l'invention comprenant l'ensemble des états<B>de</B> repos et de division s'échelonne de<B>1</B> jour<B>à 3</B> ans, et est notamment de<B>1</B> jour<B>à 15</B> jours. Selon un mode de réalisation avantageux, l'ensemble des cycles de repos et de division d'un procédé de multiplication dure de<B>1 à 15</B> jours, et les applications envisagées sont la thérapie cellulaire.
Selon un autre mode de réalisation, l'ensemble des cycles de repos et de division d'un procédé de multiplication dure de<B>1</B> jour<B>à 3</B> ans, et les applications envisagées sont d'ordre expérimental.
Un procédé qui dure<B>3</B> ans permet par exemple des expériences de longue durée pour étudier la sénescence.
Selon un mode de réalisation avantageux, le procédé de multiplication des cellules souches selon l'invention, et notamment des cellules souches somatiques humaines, permet d'obtenir une amplification des cellules souches d'un facteur compris d'environ 2<B>à</B> environ 1012<B>,</B> et notamment d'environ 2<B>à</B> environ 104.
Ainsi, le procédé de multiplication selon l'invention permet d'obtenir un nombre de cellules souches amplifiées et maintenues<B>à</B> l'état indifférencié, de 2<B>à 10 1</B> 2 fois<B>Plus</B> important que le nombre initial de cellules souches non différenciées.
Selon un mode de réalisation avantageux, le milieu de culture du procédé de multiplication selon l'invention, contient des cellules souches hématopoiétiques et comprend une ou plusieurs cytokines (ajoutées dans le milieu de culture) choisies dans le groupe constitué par les interleukines et les CSF, lesdites cytokines étant présentes<B>à</B> une concentration allant d'environ<B>10-8</B> #tg/ml <B>à</B> environ<B>1</B> mg/ml, et notamment d'environ<B>10-5</B> #tg/ml <B>à 0J</B> #ig/ml, et éventuellement d'autres facteurs de croissance.
Comme cytokines pouvant être ajoutées dans le milieu de culture, on citera notamment les interleukines telles que PIL <B>1 à</B> PIL <B>16,</B> les CSF <B>( </B> colony-stimulating factor<B> </B> (facteurs stimulant les colonies tels que le GM-CSF (facteur stimulant les colonies granulocytaires et monocytaires), GCSF (facteur stimulant les colonies granulocytaires), MCSF (facteur stimulant les colonies monocytaires), SF (Steel factor), la TPO (thrombopoïétine) ou le FL (Flt-3 ligand).
Des facteurs de croissance autres que les interleukines et les CSF peuvent être utilisés.
Le procédé de multiplication selon l'invention des cellules souches, et notamment des cellules souches somatiques humaines, est plus particulièrement caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes<B>:</B> a) l'initiation d'un premier cycle de division de cellules souches embryonnaires ou somatiques non différenciées dans un milieu de culture, et notamment de cellules souches somatiques hématopoïétiques, par ensemencement desdites cellules souches non différenciées<B>à</B> l'état de repos,<B>à</B> une forte concentration cellulaire initiale, notamment<B>à</B> une concentration allant de<B>103 à</B> 101() cellules par ml, en présence d'une ou de plusieurs cytokines, et par la neutralisation de l'effet de l'inhibiteur du développement cellulaire, et notamment de l'inhibiteur de la prolifération cellulaire, présent dans le milieu de culture, de telle sorte que les susdites cellules sortent de leur état de repos par le déclenchement d'une première division cellulaire, <B>b)</B> le retour au repos des cellules souches embryonnaires ou somatiques non différenciées obtenues<B>à</B> l'étape précédente,<B>à</B> l'aide d'un inhibiteur du développement cellulaire, ledit inhibiteur étant synthétisé par lesdites cellules souches, ou étant ajouté dans le milieu de culture, c) le lavage éventuel des cellules souches embryonnaires ou somatiques non différenciées obtenues<B>à</B> l'étape précédente, afin d'éliminer les catabolites et l'inhibiteur du développement cellulaire, et notamment l'inhibiteur de la prolifération cellulaire éventuellement présents dans le milieu de culture, <B>d)</B> la dilution éventuelle des cellules souches embryonnaires ou somatiques non différenciées obtenues<B>à</B> l'étape précédente afin de maintenir une concentration cellulaire optimale allant d'environ<B>100 à 10 10</B> cellules par ml, e) la répétition successive des cycles de division et de repos décrits ci-dessus jusqu'à ce que le facteur d'amplification des cellules soit suffisant pour obtenir le nombre de cellules souches souhaitées, et notamment soit de 2 fois<B>à</B> environ<B>10</B> 12 fois le nombre de cellules souches embryonnaires ou somatiques non différenciées initiales, ce qui correspond<B>à</B> une durée totale du procédé de multiplication d'environ<B>1</B> jour<B>à 3</B> ans, et notamment de<B>1</B> jour<B>à 15</B> jours, f) l'arrêt de la multiplication des cellules souches embryonnaires ou somatiques non différenciées pour les stocker, les utiliser ou les faire se différencier<I>in vitro.</I>
Les modalités des différentes étapes du procédé de multiplication des cellules souches selon l'invention sont celles<B>déjà</B> décrites ci-dessus.
Ainsi, la quantité d'anti-inhibiteur de la prolifération cellulaire ajoutée dans le milieu de culture, ou la quantité d'inhibiteur du développement cellulaire retirée du milieu de culture contenant les cellules souches, doit être suffisante afin qu'il<B>y</B> ait déclenchement d'une première division cellulaire. Selon un mode de réalisation préféré, l'inhibiteur du développement cellulaire est le TGF-P <B>;</B> le TGF-P est synthétisé par les cellules souches somatiques hématopoiétiques elles-mêmes en une quantité allant de<B>0,01</B> pg <B>à 1</B> ng/ml.
Le TGF-P est ensuite neutralisé par l'ajout dans le milieu de culture d'un anti- inhibiteur de la prolifération cellulaire<B>:</B> l'anti-TGF-P. L'anti-TGF-P est ajouté en une quantité allant de<B>0, 1</B> #ig <B>à 100</B> #tg/ml d'anticorps ou<B>0, 1</B> #tM <B>à 10</B> #LM d'oligonucléotides.
Le retour au repos des cellules souches somatiques hématopoi étiques, notamment décrit dans l'étape<B>b)</B> ci-dessus, est obtenu par le TGF-P synthétisé par lesdites cellules souches elles-mêmes (ou d'autres inhibiteurs ajoutés).
L'étape de lavage<B>C</B> décrite ci-dessus permet notamment de neutraliser l'inhibiteur TGF-P formé au cours ou<B>à</B> la fin d'un cycle de division précédent afin de permettre la division suivante.
L'étape de dilution<B>(d)</B> décrite ci-dessus, maintenant une concentration cellulaire optimale permet<B>à</B> la fois<B>:</B> <B>-</B> le retour rapide<B>à</B> l'état de repos des cellules souches,<B>dû à</B> une synthèse rapide desdites cellules de l'inhibiteur du développement cellulaire, notamment du TGF-P, <B>-</B> une division non moins rapide des cellules souches après chaque état de repos, en présence d'anti-inhibiteur de la prolifération cellulaire, notamment d'anti-TGF-#.
Le TGF-P ralentit le processus de différenciation des cellules souches tout au long du procédé de multiplication,<B>à</B> savoir au cours et<B>à</B> la fin des différents cycles de repos et de division.
L'étape d'arrêt<B>f)</B> décrite ci-dessus peut être effectuée en lavant lesdites cellules souches ainsi multipliées, en les congelant, ou en les mettant dans un milieu de différenciation.
Le milieu de différenciation dans lequel sont mises les cellules souches ainsi multipliées et maintenues dans un état indifférencié selon le procédé de la présente invention, est choisi en fonction du tissu ou de l'organe que l'on cherche<B>à</B> reconstituer.
Par exemple, si l'on veut obtenir des cellules érythroïdes, on utilisera un milieu de culture contenant<B>de</B> l'érythropoiétine (EPO).
Le procédé de multiplication selon l'invention permet d'obtenir des productions importantes de cellules souches, lesdites cellules souches étant maintenues dans un état indifférencié au cours des différents cycles de repos et de division dudit procédé. On obtient ainsi des productions importantes de cellules immatures sous un volume réduit. La présente invention a pour objet l'utilisation des cellules souches humaines non différenciées et amplifiées telles qu'obtenues selon le procédé de l'invention décrit ci- dessus, pour reconstituer du sang humain et/ou des tissus solides ou organes humains.
Ainsi, les cellules souches humaines non différenciées et amplifiées telles qu'obtenues selon le procédé de l'invention, peuvent notamment être utilisées pour amplifier des prélèvements insuffisanits de sang de cordon ombilical, de moëlle osseuse ou de sang périphérique, ou pour la transplantation de cellules souches hématopoïétiques.
Les cellules souches humaines non différenciées et amplifiées telles qu'obtenues selon le procédé de l'invention, peuvent également servir pour des études sur le génome humain (expression et fonction des gènes du développement humain). Légende des figures Les figures<B>IA</B> et IB représentent l'effet du TGF-P sur le maintien de l'état indifférencié des cellules CD34+.
Le colorant PKH26 qui se fixe<B>à</B> la membrane des cellules permet de détenniner le nombre de divisions que la cellule a effectué<B>:</B> après un doublement de la cellule, l'intensité du colorant est divisée par 2, après 2 doublements par 4 etc... On obtient ainsi différentes populations se déplaçant vers la droite.
En conditions de culture sans TGF-P (20<B>000</B> cellules par ml) (Fig. <B>1A),</B> les cellules se divisent et après<B>3</B> jours, les cellules qui se sont divisées plus d'une fois ne contiennent que<B>1. 1</B> %de cellules CD34+f"'.
En conditions de culture selon l'invention, la concentration de TGF-P étant plus élevée<B>(30</B> pg/ml de TGF-P) (Fig. 113), on observe un pourcentage plus élevé de cellules +fort CD34 EXEMPLE: PROCEDE <B>DE</B> MULTIPLICATION<B>DE CELLULES SOUCHES</B> HEMATOPOIETIQUES Matériels et méthodes Les cellules souches utilisées dans l'exemple ci-dessous sont plus particulièrement des cellules souches somatiques humaines hématopoïétiques provenant de sang de cordon ombilical et caractérisées par le marqueur de membrane CD34+. Dans ce qui suit, lesdites cellules seront dénommées<B> </B> cellules CD34+ <B> .</B>
<B>1)</B> Marquage des cellules CD34+ Les cellules CD34+ sont diluées dans PBS (phosphate buffer saline)<B>/</B> BSA (bovine sérum albumine) (0,2%) et incubées avec des anticorps anti-CD34+ conjugués<B>à</B> du FITC (fluoroisothiocyanate)(clone 8G12; Becton Dickinson, San José, CA) pendant <B>-30</B> minutes<B>à</B> 4'C puis lavées 2 fois en PBS/BSA. Le contrôle est constitué par des cellules incubées avec des IgGl non spécifiques conjuguées au FITC.
Pour détecter le colorant permettant de suivre la prolifération des cellules, les CD34+ sont marquées avec le colorant PKH26 (Sigma, France) selon les instructions du fabricant.
Les cellules avec une intensité moyenne de PKH26 sont triées dans une fenêtre représentant environ<B>10%</B> de la largeur complète. Ceci correspond environ<B>à</B> 20% des cellules CD34+. Quatre aliquots de 400 cellules sont utilisées en test HPP-Q. Le reste des cellules au repos et des cellules qui prolifèrent sont triées et cultivées en milieu semi-solide. Des billes calibrées (Coulter-Beckman) sont utilisées pour standardiser les analyses entre le<B>j</B>our<B>0</B> et le jour<B>3.</B>
<U>Description du test</U> HPP--Q (High Proliferative Potential-Quiescent Cell) Le test HPP-Q permet de vérifier que l'inhibiteur du développement cellulaire, notamment le TGF-P, maintient les cellules souches, notamment hématopoïétiques, au repos.
Plus particulièrement, le test HPP-Q consiste<B>à</B> déterminer le degré de maturité de cellules souches, notamment hématopoïétiques, et est caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes<B>:</B> <B>-</B> on effectue la culture d'un premier ensemble de cellules souches, notamment hématopoïétiques, dans un milieu approprié<B>à</B> leur culture, ledit milieu ne contenant pas de moyens de blocage d'au moins un inhibiteur du développement cellulaire tel le TGF-#, pendant environ 14<B>à</B> environ<B>28</B> jours, de préférence<B>18</B> jours, <B>-</B> on effectue la culture d'un deuxième ensemble de cellules souches, notamment hématopoïétiques, de même nature et de même degré de maturité que celles mentionnées ci-dessus, dans un milieu approprié contenant des moyens de blocage d'au moins un inhibiteur du développement cellulaire, ces moyens de blocage étant présents, dans le milieu de culture<B>à</B> une concentration efficace <B>-</B> on compare,<B>18</B> jours après la mise en culture de chacun des deux ensembles de cellules souches, le nombre et la nature des colonies, la différence des sommes des colonies<B>à</B> haut potentiel prolifératif (HPP-CFC <B≥</B> progéniteur formant une colonie<B>à</B> haut potentiel prolifératif, HPP-MEG <B≥</B> progéniteur mégacaryocytaire <B>à</B> haut potentiel prolifératif, HPP-GEI#M <B≥</B> progéniteur granulocytaire érythrocytaire monocytaire mégacaryocytaire <B>à</B> haut potentiel prolifératif) respectivement dans celle du deuxième ensemble et celle du premier ensemble.
L'évaluation de la maturité ou de l'immaturité de cellules souches correspond<B>à</B> l'observation suivante.
Après<B>18</B> jours, on observe au microscope le nombre et la nature des colonies<B>:</B> on compte le nombre de colonies mixtes constituées de cellules de la lignée rouge et d'un ou de plusieurs types de la lignée blanche. Le nombre de colonies mixtes est plus élevé lorsque la population cellulaire mise en culture est immature, c'est-à-dire constituée de cellules plus jeunes dont certaines sont au repos. D'autre part, plus la cellule qui a donné naissance<B>à</B> la colonie est immature, voire au repos, plus son potentiel de prolifération est grand, donc la colonie provenant de cette cellule une fois activée sera plus importante en taille.
2) Culture des cellules CD34+ Les cellules CD34+ ont été ensemencées<B>à</B> une concentration cellulaire de<B>106</B> cellules par ml dans des plaques de culture de 24 puits<B>à</B> raison de<B>1</B> ml par puits au jour JO. Lesdites cellules ont été ensemencées dans un milieu sans sérum, contenant des cytokines et un inhibiteur du TGF-P (anti TGF-P). <B><U> </U></B><U> Milieu</U> :
Figure img00150001
<B>SBA</B> <SEP> (milieu <SEP> sans <SEP> sérum <SEP> avec <SEP> albumine) <SEP> <B>+</B>
<tb> <B>SF( </B> <SEP> Steel <SEP> Factor <SEP> <B> ) <SEP> 10</B> <SEP> ng/ml
<tb> TPO <SEP> (Thrombopoiétine) <SEP> <B>10</B> <SEP> ng/ml
<tb> FL <SEP> (Ligand <SEP> FLt3) <SEP> <B>50</B> <SEP> ng/ml
<tb> IL6 <SEP> (Interleukine <SEP> <B>6) <SEP> 10</B> <SEP> ng/ml
<tb> Anti-TGFP <SEP> 4 <SEP> lig/nil Les cellules CD34+ sont incubées<B>à</B> 37'C dans une atmosphère avec<B>5%</B> de<B>C02</B> et une saturation d'humidité<B>à 97%.</B>
Tous les 2 jours, le volume de la culture est mesuré, le nombre de cellules CD34+ est compté, et la viabilité desdites cellules est déterminée.
Après avoir compté le nombre de cellules CD34+ contenues dans la culture, on enlève le volume nécessaire pour ne laisser que<B>10"</B> cellules par puits.
On réajuste le milieu en volume, en cytokines ou facteurs de croissance et en inhibiteur du TGF-P.
Tous les<B>8</B> jours, un tri est effectué pour évaluer les cellules CD34+ et CD38- et la capacité proliférative des cellules CD34+ est évaluée en test HPP-Q.
Régulièrement, les résultats du test HPP-Q sont confirmés par un test en souris immunodéficientes (SCID-NOD).
Le protocole du procédé selon l'invention permet de cultiver les cellules dans un microbioréacteur qui maintient les conditions de milieux constantes pour ce qui est des catabolites et anabolites (cytokines et inhibiteurs exclus).
L'ensemencement des cellules CD34+ <B>à</B> une forte concentration cellulaire permet de créer un bioréacteur <B>à</B> forte concentration cellulaire, et ainsi de réduire les volumes de culture.
<U>Principe du</U> bioréacteur <U>ou</U> microbioréacteur Le microbioréacteur est constitué d'une chambre de culture, de taille adaptée au nombre de cellules et<B>à</B> leur densité cellulaire<B>(1 à 100</B> ml), séparée d'une chambre<B>de</B> dialyse par une membrane, et éventuellement d'une chambre gazeuse par une autre membrane, pour maintenir constants les constituants du milieu.
Des micro détecteurs permettent de contrôler différents paramètres dans la chambre de culture<B>: pH, C02,</B> 02, glucose, lactate, etc. Des entrées et des sorties perrnettent de renouveler ou de modifier les milieux de cultures, ou d'ajouter ou de retirer des cellules.
L'ensemble du microbioréacteur peut être automatisé par des pompes et des programmateurs informatisés.

Claims (1)

  1. RE VENDICA TIONS <B>1.</B> Utilisation d'un inhibiteur du développement cellulaire de façon contrôlée pour maintenir l'état indifférencié de cellules souches, notamment de cellules souches humaines, tout en permettant leur division cellulaire. 2. Utilisation d'un inhibiteur selon la revendication<B>1,</B> dans laquelle les cellules souches sont des cellules humaines choisies dans le groupe constitué par les cellules souches embryonnaires<B>à</B> l'origine des cellules souches somatiques, et/ou les cellules souches/progéniteurs somatiques elles/eux mêmes<B>à</B> l'origine du sang et/ou de différents tissus solides tels que la peau, le foie, le pancréas, le c#ur, le rein, l'os, ou du tissu nerveux. <B>3.</B> Utilisation d'un inhibiteur selon la revendication<B>1</B> ou la revendication 2, dans laquelle l'inhibiteur du développement cellulaire est choisi dans le groupe constitué par les produits de gènes contrôlant le développement cellulaire vis-à-vis de la différenciation cellulaire et/ou de la division cellulaire, les inhibiteurs des kinases cyclines dépendantes, les facteurs contrôlant l'apoptose ou le vieillissement, et les cytokines (tels que les interférons, le TGFP). 4. Utilisation d'un inhibiteur selon l'une quelconque des revendications<B>1 à 3,</B> en association séquentielle avec un anti-inhibiteur de la prolifération cellulaire, pour déclencher un nombre de divisions cellulaires allant de<B>1 à</B> environ<B>100,</B> notamment de<B>1</B> <B>à</B> environ<B>10,</B> et notamment pour déclencher une seule division cellulaire, tout en maintenant l'état indifférencié des cellules souches, notamment des cellules souches humaines. <B>5.</B> Procédé de multiplication de cellules souches dans un milieu de culture, notamment de cellules souches humaines, caractérisé en ce qu'il comprend: <B>-</B> une étape dans laquelle les cellules souches, notamment les cellules souches humaines,<B>à</B> l'état de repos sont sorties de leur état de repos par la neutralisation de l'effet d'un inhibiteur du développement cellulaire, et notamment d'un inhibiteur de la prolifération cellulaire produit par les cellules et/ou présent dans le milieu de culture, de telle sorte qu'il<B>y</B> ait déclenchement d'un nombre de divisions cellulaires allant de<B>1 à</B> environ<B>100,</B> notamment de<B>1 à</B> environ<B>10,</B> et notamment d'une seule division cellulaire, <B>-</B> et, une étape dans laquelle les cellules souches, notamment les cellules humaines, obtenues<B>à</B> l'étape précédente sont inhibées dans leur différenciation<B>à</B> l'aide d'un inhibiteur du développement cellulaire. <B>6.</B> Procédé de multiplication selon la revendication<B>5,</B> caractérisé en ce que<B>à</B> l'issue du procédé de multiplication, les cellules souches ainsi multipliées sont maintenues dans un état indifférencié. <B>7.</B> Procédé de multiplication selon la revendication<B>5,</B> caractérisé en ce que les cellules souches sont des cellules humaines choisies dans le groupe constitué par les cellules souches embryonnaires<B>à</B> l'origine des cellules souches somatiques, et les cellules somatiques elles mêmes<B>à</B> l'origine du sang et/ou des différents tissus solides tels que la peau, le foie, le pancréas, le c#ur, le rein, l'os, ou du tissu nerveux. <B>8.</B> Procédé de multiplication selon l'une des revendications<B>5 à 7,</B> caractérisé en ce que les cellules souches, notamment les cellules humaines, sont présentes<B>à</B> une concentration cellulaire d'environ<B>1 à</B> environ<B>1010</B> cellules par ml, et notamment<B>à</B> une concentration allant d'environ<B>103 à</B> environ<B>1010</B> cellules par ml, et plus particulièrement d'environ 104<B>à</B> environ<B>1C</B> cellules par ml. <B>9.</B> Procédé de multiplication selon l'une quelconque des revendications<B>5 à 8,</B> caractérisé en ce que l'inhibiteur du développement cellulaire est synthétisé par les cellules souches, notamment les cellules souches humaines, et/ou est ajouté dans le milieu de culture contenant les cellules souches, notamment les cellules souches humaines. <B>10.</B> Procédé de multiplication selon l'une quelconque des revendications<B>5 à</B> <B>9,</B> caractérisé en ce que l'inhibiteur du développement cellulaire est choisi dans le groupe constitué par les produits de gènes contrôlant le développement cellulaire vis-à- vis de la différenciation cellulaire et/ou de la division cellulaire, les inhibiteurs des kinases cyclines dépendantes, les facteurs contrôlant l'apoptose ou le vieillissement, et les cytokines (tels que les interférons, le TGFP) <B>il.</B> Procédé de multiplication selon l'une quelconque des revendications<B>5 à</B> <B>10,</B> caractérisé en ce que l'inhibiteur du développement cellulaire est présent<B>à</B> une faible concentration dans le milieu de culture contenant les cellules souches, et notamment<B>à</B> une concentration allant d'environ<B>10-10</B> mg/ml <B>à 1</B> mg/ml. 12. Procédé de multiplication selon l'une quelconque des revendications<B>5 à</B> <B>11,</B> caractérisé en ce que la neutralisation de l'effet de l'inhibiteur du développement cellulaire, et notamment de l'inhibiteur de la prolifération cellulaire, présent dans le milieu de culture, est effectuée par <B>-</B> l'addition dans le milieu de culture, en quantité appropriée, d'un anti-inhibiteur de la prolifération cellulaire tel qu'un anti-TGF-P, et/ou <B>-</B> le retrait du milieu de culture de l'inhibiteur du développement cellulaire, et notamment de l'inhibiteur de la prolifération cellulaire, appartenant notamment au groupe des cytokines. <B>13.</B> Procédé de multiplication selon l'une quelconque des revendications<B>5<I>à</I></B> 12, caractérisé en ce que l'anti-inhibiteur de la prolifération cellulaire est présent en une concentration allant d'environ<B>10-18 à</B> environ<B>10-3</B> g/Ml. 14. Procédé de multiplication selon l'une quelconque des revendications<B>5 à</B> <B>13,</B> dans lequel le milieu de culture contient des cellules souches hématopoiétiques et comprend une ou plusieurs cytokines (ajoutées dans le milieu de culture) choisies dans le groupe constitué par les interleukines et les CSF, lesdites cytokines étant présentes<B>à</B> une concentration allant d'environ<B>10-8</B> gg/mI <B>à</B> environ<B>1</B> mg/ml, et notamment d'environ<B>10-5</B> #tg/m1 <B>à</B> 0, <B>1</B> lig/mI. <B>15.</B> Procédé de multiplication selon l'une quelconque des revendications<B>5<I>à</I></B> 14, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes<B>:</B> a) l'initiation d'un premier cycle de division de cellules souches embryonnaires ou somatiques non différenciées dans un milieu de culture, et notamment de cellules souches somatiques hématopoïétiques, par ensemencement de cellules souches embryonnaires ou somatiques non différenciées<B>à</B> l'état de repos,<B>à</B> une forte concentration cellulaire initiale, notamment<B>à</B> une concentration allant de Io' <B>à</B> Io'(, cellules par ml, en présence d'une ou de plusieurs cytokines, et par la neutralisation de l'effet de l'inhibiteur du développement cellulaire, et notamment de l'inhibiteur de la prolifération cellulaire, présent dans le milieu de culture, de telle sorte que les susdites cellules sortent de leur état de repos par le déclenchement d'une première division cellulaire, <B>b)</B> le retour au repos des cellules souches embryonnaires ou somatiques non différenciées obtenues<B>à</B> l'étape précédente,<B>à</B> l'aide d'un inhibiteur du développement cellulaire, ledit inhibiteur étant synthétisé par lesdites cellules souches, ou étant ajouté dans le milieu de culture, c) le lavage éventuel des cellules souches embryonnaires ou somatiques non différenciées obtenues<B>à</B> l'étape précédente, afin d'éliminer les catabolites et l'inhibiteur du développement cellulaire, et notamment l'inhibiteur de la prolifération cellulaire éventuellement présents dans le milieu de culture, <B>d)</B> la dilution éventuelle des cellules souches embryonnaires ou somatiques non différenciées obtenues<B>à</B> l'étape précédente afin de maintenir une concentration cellulaire optimale allant d'environ<B>100 à 1010</B> cellules par ml, e) la répétition successive des cycles de division et de repos décrits ci-dessus jusqu'à ce que le facteur d'amplification des cellules soit suffisant pour obtenir le nombre de cellules souches souhaitées, et notamment soit de 2 fois<B>à</B> environ 1012 fois le nombre de cellules souches embryonnaires ou somatiques non différenciées initiales, ce qui correspond<B>à</B> une durée totale du procédé de multiplication d'environ<B>1</B> jour<B>à 3</B> ans, et notamment de<B>1</B> jour<B>à 15</B> jours, <B>f)</B> l'arrêt de la multiplication des cellules souches embryonnaires ou somatiques non différenciées pour les stocker, les utiliser ou les faire se différencier<I>in vitro.</I> <B>16.</B> Procédé de multiplication selon l'une quelconque des revendications<B>5 à</B> <B>15,</B> caractérisé en ce que la durée d'un seul état de repos s'échelonne d'environ<B>1</B> heure <B>à 3</B> ans, et est notamment d'environ<B>6</B> heures<B>à 72</B> heures, et en ce que la durée d'un seul cycle de division s'échelonne d'environ<B>6</B> heures<B>à 3</B> ans, et est notamment d'environ<B>6</B> heures<B>à</B> 24 heures. <B>17.</B> Utilisation des cellules souches humaines non différenciées et amplifiées telles qu'obtenues selon le procédé de l'une quelconque des revendications<B>5</B> <B>à 16,</B> pour reconstituer du sang humain etiou des tissus solides ou organes humains.
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Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4990634B2 (ja) 2004-02-13 2012-08-01 ステム セル セラピューティクス コーポレイション 神経幹細胞の増殖および神経発生のための黄体化ホルモン（ＬＨ）、および絨毛性ゴナドトロピン（ｈＣＧ）の使用
JP2008515818A (ja) * 2004-10-07 2008-05-15 ステム セル セラピューティクス コーポレイション 妊娠に関連する化合物の投与による多能性幹細胞の増殖の刺激
CA2643502A1 (fr) * 2006-03-17 2007-09-27 Stem Cell Therapeutics Corp. Regimes de dosage de lh ou hcg et epo pour le traitement de troubles neurologiques
WO2010090513A2 (fr) 2009-02-03 2010-08-12 Koninklijke Nederlandse Akademie Van Wetenschappen Milieu de culture pour cellules souches épithéliales et organoïdes comprenant lesdites cellules souches
GB201111244D0 (en) * 2011-06-30 2011-08-17 Konink Nl Akademie Van Wetenschappen Knaw Culture media for stem cells
EP2412800A1 (fr) 2010-07-29 2012-02-01 Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen Organoïde du foie, ses utilisations et son procédé de culture pour l'obtenir
US8759098B2 (en) 2009-12-04 2014-06-24 Boston Biomedical Research Institute, Inc. Method for cloning pluripotent stem cells
US9164079B2 (en) * 2011-03-17 2015-10-20 Greyledge Technologies Llc Systems for autologous biological therapeutics
JP6095272B2 (ja) 2011-03-25 2017-03-15 国立大学法人京都大学 上皮系体性幹細胞の製造方法

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0834556A1 (fr) * 1996-09-25 1998-04-08 Academisch Ziekenhuis Leiden Procédés de culture de cellules

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH08205860A (ja) * 1994-01-21 1996-08-13 Usa Government 造血細胞の膨大化および移植方法
DE4422667A1 (de) * 1994-06-30 1996-01-04 Boehringer Ingelheim Int Verfahren zur Herstellung und Züchtung hämatopoetischer Vorläuferzellen
JP2000507812A (ja) * 1996-03-12 2000-06-27 ライフ テクノロジーズ，インコーポレイテッド 造血細胞培養栄養補充成分
JPH10136978A (ja) * 1996-11-08 1998-05-26 Otsuka Pharmaceut Co Ltd 造血幹細胞の培養方法
US6084060A (en) * 1996-12-09 2000-07-04 Imclone Systems Incorporated Composition and method for preserving progenitor cells
JPH10295369A (ja) * 1997-02-26 1998-11-10 Japan Tobacco Inc 造血幹細胞の製造方法

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0834556A1 (fr) * 1996-09-25 1998-04-08 Academisch Ziekenhuis Leiden Procédés de culture de cellules

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MUMMERY C L ET AL: "Expression of transforming growth factor beta 2 during the differentiation of murine embryonal carcinoma and embryonic stem cells.", DEVELOPMENTAL BIOLOGY, (1990 JAN) 137 (1) 161-70., XP000891381 *
WAEGELL W ET AL: "Growth acceleration and stem cell expansion in Dexter-type cultures by neutralization of TGF-beta.", EXPERIMENTAL HEMATOLOGY, vol. 22, 1994, pages 1051 - 7, XP000572237 *
WIANNY F ET AL: "Proliferation and differentiation of porcine inner cell mass and epiblast in vitro.", BIOLOGY OF REPRODUCTION, (1997 OCT) 57 (4) 756-64., XP000891390 *

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