FR2573983A1 - Procede de production commerciale d'antigenes d'helminthes - Google Patents
Procede de production commerciale d'antigenes d'helminthes Download PDFInfo
- Publication number
- FR2573983A1 FR2573983A1 FR8418373A FR8418373A FR2573983A1 FR 2573983 A1 FR2573983 A1 FR 2573983A1 FR 8418373 A FR8418373 A FR 8418373A FR 8418373 A FR8418373 A FR 8418373A FR 2573983 A1 FR2573983 A1 FR 2573983A1
- Authority
- FR
- France
- Prior art keywords
- antigens
- parasitic worm
- cruel
- related organism
- worm
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 title claims abstract description 106
- 239000000427 antigen Substances 0.000 title claims abstract description 95
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 title claims abstract description 95
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 31
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title abstract description 16
- 244000000013 helminth Species 0.000 claims abstract description 33
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 claims abstract description 14
- 238000001514 detection method Methods 0.000 claims abstract description 5
- 230000001900 immune effect Effects 0.000 claims abstract description 4
- 238000003306 harvesting Methods 0.000 claims abstract 4
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 claims description 20
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 claims description 19
- 239000012502 diagnostic product Substances 0.000 claims description 9
- 241000243988 Dirofilaria immitis Species 0.000 claims description 8
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 claims description 7
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 6
- 108010034145 Helminth Proteins Proteins 0.000 claims description 5
- 241000244206 Nematoda Species 0.000 claims description 5
- 238000010367 cloning Methods 0.000 claims description 5
- 108020004511 Recombinant DNA Proteins 0.000 claims description 4
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 claims description 3
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 claims description 3
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 claims description 3
- 241000244201 Caenorhabditis briggsae Species 0.000 claims description 2
- 241000869417 Trematodes Species 0.000 claims 2
- 238000012239 gene modification Methods 0.000 claims 2
- 230000005017 genetic modification Effects 0.000 claims 2
- 235000013617 genetically modified food Nutrition 0.000 claims 2
- 241000621079 Elymus caninus Species 0.000 claims 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 claims 1
- 244000045947 parasite Species 0.000 abstract description 8
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 abstract description 4
- 230000002265 prevention Effects 0.000 abstract 1
- 241000239183 Filaria Species 0.000 description 22
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 15
- 241000282472 Canis lupus familiaris Species 0.000 description 14
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 14
- 241000894007 species Species 0.000 description 13
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 description 12
- 108091032973 (ribonucleotides)n+m Proteins 0.000 description 10
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 9
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 7
- 230000027455 binding Effects 0.000 description 7
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 7
- LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I dipotassium trisodium dihydrogen phosphate hydrogen phosphate dichloride Chemical compound P(=O)(O)(O)[O-].[K+].P(=O)(O)([O-])[O-].[Na+].[Na+].[Cl-].[K+].[Cl-].[Na+] LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I 0.000 description 6
- 229940099686 dirofilaria immitis Drugs 0.000 description 6
- 230000035772 mutation Effects 0.000 description 6
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 6
- 241000255925 Diptera Species 0.000 description 5
- 208000000474 Poliomyelitis Diseases 0.000 description 5
- 230000003071 parasitic effect Effects 0.000 description 5
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 4
- 230000001001 anti-filiarial effect Effects 0.000 description 4
- GNBHRKFJIUUOQI-UHFFFAOYSA-N fluorescein Chemical compound O1C(=O)C2=CC=CC=C2C21C1=CC=C(O)C=C1OC1=CC(O)=CC=C21 GNBHRKFJIUUOQI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 208000014837 parasitic helminthiasis infectious disease Diseases 0.000 description 4
- 241000244203 Caenorhabditis elegans Species 0.000 description 3
- 241000283707 Capra Species 0.000 description 3
- 101710154606 Hemagglutinin Proteins 0.000 description 3
- 101710093908 Outer capsid protein VP4 Proteins 0.000 description 3
- 101710135467 Outer capsid protein sigma-1 Proteins 0.000 description 3
- 101710176177 Protein A56 Proteins 0.000 description 3
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 3
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 3
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 3
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 3
- 239000000185 hemagglutinin Substances 0.000 description 3
- 230000003053 immunization Effects 0.000 description 3
- 238000002649 immunization Methods 0.000 description 3
- 230000000951 immunodiffusion Effects 0.000 description 3
- 238000010166 immunofluorescence Methods 0.000 description 3
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 3
- 230000001418 larval effect Effects 0.000 description 3
- 230000004044 response Effects 0.000 description 3
- PYWVYCXTNDRMGF-UHFFFAOYSA-N rhodamine B Chemical compound [Cl-].C=12C=CC(=[N+](CC)CC)C=C2OC2=CC(N(CC)CC)=CC=C2C=1C1=CC=CC=C1C(O)=O PYWVYCXTNDRMGF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 3
- 208000035473 Communicable disease Diseases 0.000 description 2
- 241000991587 Enterovirus C Species 0.000 description 2
- 241000282326 Felis catus Species 0.000 description 2
- ZRALSGWEFCBTJO-UHFFFAOYSA-N Guanidine Chemical compound NC(N)=N ZRALSGWEFCBTJO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000002671 adjuvant Substances 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 238000003271 compound fluorescence assay Methods 0.000 description 2
- 238000011161 development Methods 0.000 description 2
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 2
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 2
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 description 2
- 238000010353 genetic engineering Methods 0.000 description 2
- 238000000760 immunoelectrophoresis Methods 0.000 description 2
- 230000009851 immunogenic response Effects 0.000 description 2
- 230000005847 immunogenicity Effects 0.000 description 2
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 2
- 230000001524 infective effect Effects 0.000 description 2
- 230000007653 larval development Effects 0.000 description 2
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 2
- 238000002703 mutagenesis Methods 0.000 description 2
- 231100000350 mutagenesis Toxicity 0.000 description 2
- 239000003471 mutagenic agent Substances 0.000 description 2
- 231100000707 mutagenic chemical Toxicity 0.000 description 2
- 230000003505 mutagenic effect Effects 0.000 description 2
- 239000013598 vector Substances 0.000 description 2
- 241001147672 Ancylostoma caninum Species 0.000 description 1
- 241001465677 Ancylostomatoidea Species 0.000 description 1
- 241000282693 Cercopithecidae Species 0.000 description 1
- 238000002965 ELISA Methods 0.000 description 1
- PLUBXMRUUVWRLT-UHFFFAOYSA-N Ethyl methanesulfonate Chemical compound CCOS(C)(=O)=O PLUBXMRUUVWRLT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000007212 Foot-and-Mouth Disease Diseases 0.000 description 1
- 241000710198 Foot-and-mouth disease virus Species 0.000 description 1
- 208000015336 Helminthic disease Diseases 0.000 description 1
- 206010061201 Helminthic infection Diseases 0.000 description 1
- 108060003951 Immunoglobulin Proteins 0.000 description 1
- CHJJGSNFBQVOTG-UHFFFAOYSA-N N-methyl-guanidine Natural products CNC(N)=N CHJJGSNFBQVOTG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108091028043 Nucleic acid sequence Proteins 0.000 description 1
- 241001494479 Pecora Species 0.000 description 1
- 102000035195 Peptidases Human genes 0.000 description 1
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 description 1
- 241000283216 Phocidae Species 0.000 description 1
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 241000282887 Suidae Species 0.000 description 1
- 206010043376 Tetanus Diseases 0.000 description 1
- 241000700647 Variola virus Species 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- DPKHZNPWBDQZCN-UHFFFAOYSA-N acridine orange free base Chemical compound C1=CC(N(C)C)=CC2=NC3=CC(N(C)C)=CC=C3C=C21 DPKHZNPWBDQZCN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 1
- 230000005875 antibody response Effects 0.000 description 1
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 1
- 230000002238 attenuated effect Effects 0.000 description 1
- 230000010165 autogamy Effects 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- DZBUGLKDJFMEHC-UHFFFAOYSA-N benzoquinolinylidene Natural products C1=CC=CC2=CC3=CC=CC=C3N=C21 DZBUGLKDJFMEHC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000009534 blood test Methods 0.000 description 1
- 239000007975 buffered saline Substances 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 1
- 238000003759 clinical diagnosis Methods 0.000 description 1
- SWSQBOPZIKWTGO-UHFFFAOYSA-N dimethylaminoamidine Natural products CN(C)C(N)=N SWSQBOPZIKWTGO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010013023 diphtheria Diseases 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 238000002224 dissection Methods 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 description 1
- 238000001952 enzyme assay Methods 0.000 description 1
- 238000012869 ethanol precipitation Methods 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 239000004744 fabric Substances 0.000 description 1
- 102000018146 globin Human genes 0.000 description 1
- 108060003196 globin Proteins 0.000 description 1
- 230000010196 hermaphroditism Effects 0.000 description 1
- 238000009396 hybridization Methods 0.000 description 1
- 238000003018 immunoassay Methods 0.000 description 1
- 230000002163 immunogen Effects 0.000 description 1
- 102000018358 immunoglobulin Human genes 0.000 description 1
- 230000016784 immunoglobulin production Effects 0.000 description 1
- 238000011065 in-situ storage Methods 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 238000003780 insertion Methods 0.000 description 1
- 230000037431 insertion Effects 0.000 description 1
- 210000000936 intestine Anatomy 0.000 description 1
- 238000010255 intramuscular injection Methods 0.000 description 1
- 239000007927 intramuscular injection Substances 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 210000003292 kidney cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000011005 laboratory method Methods 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- MBABOKRGFJTBAE-UHFFFAOYSA-N methyl methanesulfonate Chemical compound COS(C)(=O)=O MBABOKRGFJTBAE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- -1 nitroso- Chemical class 0.000 description 1
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 description 1
- 230000003389 potentiating effect Effects 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- 235000019833 protease Nutrition 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 238000003127 radioimmunoassay Methods 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 238000012552 review Methods 0.000 description 1
- 239000002689 soil Substances 0.000 description 1
- 238000010254 subcutaneous injection Methods 0.000 description 1
- 239000007929 subcutaneous injection Substances 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 241001515965 unidentified phage Species 0.000 description 1
- 230000000007 visual effect Effects 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/43504—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from invertebrates
- C07K14/43536—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from invertebrates from worms
- C07K14/4354—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from invertebrates from worms from nematodes
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
PROCEDE DE PRODUCTION D'ANTIGENES DE VERS PARASITES, CONSISTANT A IDENTIFIER LES ANTIGENES D'UN VER PARASITE, A MODIFIER GENETIQUEMENT UN ORGANISME APPARENTE A CE VER PARASITE JUSQU'A CE QU'IL SE FORME UNE SOUCHE MUTANTE CARACTERISEE PAR DES ANTIGENES PRESENTANT UNE IDENTITE IMMUNOLOGIQUE AVEC DES ANTIGENES DU VER PARASITE, A CULTIVER LA SOUCHE MUTANTE, ET A RECOLTER LA SOUCHE MUTANTE DE SORTE QUE LES ANTIGENES PUISSENT ETRE ISOLES EN VUE DE LEUR UTILISATION COMME PRODUITS DE DIAGNOSTIC OU COMME VACCINS POUR LA DETECTION ET LA PREVENTION DE L'INFECTION DUE AU VER PARASITE.
Description
Procédé de production commerciale d'antigènes d'helminthes Cette invention
concerne la mise au point et la production commerciale d'antigènes d'helminthes (vers parasites). L'utilisation d'antigènes pour les produits de diagnostic et les vaccins afin de détecter et de prévenir des maladies infectieuses telles que la poliomyélite, la variole, la diphtérie, le tétanos, et les maladies des pieds et de la bouche, a été clairement démontrée aussi bien chez l'homme que chez l'animal. La plupart des antigènes qui sont utilisés comme produits de diagnostic et comme vaccins sont dérivés d'organismes infectieux cultivés. Ces organismes infectieux sont cultivés in vitro ou in vivo dans des animaux ou des cultures tissulaires. Un exemple est constitué par les antigènes de la poliomyélite qui sont dérivés de virus cultivés in vitro dans des cellules rénales de singe. Ces antigènes sont utilisés comme produits de diagnostic et pour
vacciner des humains.
Si une petite quantité de virus atténués est inoculée à un hôte, les virus inoculés qui portent des antigènes spécifiques induisent la formation d'anticorps chez l'hôte, lesquels à l'avenir reconnaîtront et détruiront les virus envahissants futurs de la poliomyélite. Les mêmes antigènes de virus de la poliomyélite peuvent également être
utilisés pour le diagnostic d'une infection poliomyélitique.
Si un hôte est infecté par la poliomyélite, certains anticorps spécifiques sont mis au jour dans l'organisme et
la présence de ces anticorps est révélatrice d'une infection.
On peut réaliser la détection des anticorps par leur fixation sur des antigènes de la poliomyélite par les méthodes courantes de dosage par immunofluorescence, radio-immunologie, et enzymatique, par immunoélectrophorèse, à l'hémagglutinine
et par immunodiffusion.
Mais il n'est pas possible de produire commercialement des antigènes pour toutes les maladies infectieuses. Une limite à cette production est l'impossibilité de cultiver ou de produire in vivo ou in vitro une grande quantité d'organismes infectieux dont sont dérivés les antigènes. Cela est particulièrement vrai pour les vaccins, dans lesquels les organismes infectieux ont des cycles vitaux compliqués et/ou ont plus d'un hôte. La plupart des maladies causées par des vers parasites qui infectent les chiens, les chats, les moutons, les cochons,
les chevaux et l'homme entrent dans cette catégorie.
Un exemple en est la maladie helminthiqueprovoquée par la filaire cruelle ou filaire du chien qui peut infecter une large variété d'organismes, des chiens, chats, phoques à l'homme (rarement). Cependant, le parasite réside généralement chez le chien comme hôte, le moustique servant d'hôte intermédiaire. Il serait difficile d'obtenir des antigènes nécessaires à la fabrication de vaccins ou de produits de diagnostic étant donné que le ver parasite passe par plusieurs stades de développement larvaire et qu'un seul stade larvaire contient les antigènes appropriés. Chez la filaire cruelle, ce stade particulier, représenté par les larves infectieuses, réside chez le moustique. Dans ces conditions, la capture des hôtes intermédiaires (les moustiques) et la dissection des larves infectieuses sont nécessaires pour produire les antigènes requis pour la fabrication d'un vaccin contre la filaire cruelle (Wong, M.M.; Guest, M.F. , et Laviopierre, M.J. (1974): Dirofilaria immitis; Fate and Immunogenicity of Irradiated Infective
Stage Larvae in Beagles, Experimental Parasitology 35, 65-
74). De même, les antigènes qui sont nécessaires pour diagnostiquer les anticorps de l'infection par la filaire cruelle doivent être dérivés de filaires adultes hébergées dans le coeur d'un chien infecté (Desowitz, R. S. et Una, S.R. (1976), The Detection of Antibodies in Human and Animal Filariosis by Counter-immunoelectrophoresis with Dirofilaria immitis Antigen. Journal of Helminthology, 50, 53-57; Grieve, R.B., Mika-Johnson, M., Jacobson, R.H., et Raymond, C.H., (1981) Enzyme-Linked Immunosorbent Assay for Measurement of Antibody Response to Dirofilaria immitis in Experimentally Infected Dogs. American Journal of Veterinary Research 42, 66-69). Ces sources et ces procédés de production d'antigènes de la filaire cruelle en vue de la fabrication de produits de diagnostic (à partir du coeur d'un chien) et de vaccins (à partir de moustiques) ne sont ni faisables commercialement,
ni socialement acceptables.
La présente invention fournit un procédé de production d'antigènes d'helminthes (vers parasites) dans lequel une espèce apparentée du ver infectieux qui peut être facilement cultivée est modifiée génétiquement. Le procédé consiste à identifier les antigènes de surface du ver parasite difficile à cultiver, puis à créer ces mêmes
antigènes dans l'espèce facilement cultivée.
L'espèce facilement cultivée est modifiée génétiquement par des mutations jusqu'à ce que ladite espèce présente certains des antigènes immunologiques du ver parasite difficile à cultiver. Du fait de ces manipulations génétiques, les types et les quantités d'antigènes intéressés se trouvant dans l'espèce facilement cultivée sont modifiés. Les antigènes qui sont dérivés de l'espèce génétiquement modifiée sont alors utilisés pour la production commerciale des antigènes nécessaires à la fabrication de produits de diagnostic et
de vaccins.
Le principe de l'invention est de modifier les gènes d'antigène de l'espèce facilement cultivée pour produire, de préférence in situ les antigènes de l'espèce parasite difficile à cultiver. L'expression de ces gènes modifiés pour produire ces antigènes peut également avoir lieu dans des bactéries ou des levures par clonage des gènes d'antigène, et permettre ainsi une production éventuellement
plus efficace de ces mêmes antigènes.
Dans les formes de réalisation préférées, les antigènes qui sont produits à l'aide de cette invention contre l'infection par la filaire cruelle le sont par Dirofilaria immitis, et l'espèce apparentée substituée est le nématode
hermaphrodite indépendant appelé Caenorhabditis elegans.
Production d'anticorps contre les antigènes de la filaire cruelle de Dirofilaria immitis Il faut d'abord produire des anticorps contre des antigènes parasites intéressés. Ces anticorps qui reconnaissent et se fixent spécifiquement sur les antigènes parasites difficiles à cultiver peuvent alors être utilisés comme une "sonde" pour isoler, dans l'espèce facilement cultivée, des mutants qui sont capables de produire les antigènes parasites correspondants. Dans les exemples qui seront donnés plus loin, il a été produit des anticorps contre les antigènes de la filaire cruelle adulte et isolé-des mutants dans C. elegans avec les antigènes correspondants de la filaire cruelle. Bien que l'invention soit décrite avec référence à C. elegans, d'autres espèces que l'on pense convenir sont Panagrellas redivious, Turbatric acetic et
C. briggsae.
On a isolé des filaires cruelles adultes d'un chien
infecté par la filaire cruelle. On a excisé des filaires--
adultes du coeur et on les a mises en suspension dans une solution saline tamponnée par phosphate (PBS) 0,15 M à pH
7,4. On a homogénéisé les filaires et on a ajusté l'homo-
généisat à une concentration finale de 500 microgrammes de protéines (poids à l'état humide) par ml de PBS. On a ensuite mélangé cet homogénéisat avec un volume-égal d'adjuvant complet de Freund. On a utilisé un échantillon de 2 ml de ce mélange pour immuniser un lapin contre les antigènes de la filaire cruelle. Avant l'immunisation réelle, on a prélevé du lapin un sérum pré-immun. On a inoculé au lapin,le 25ème et ème jours après la première immunisation, 2 ml d'un mélange comprenant un volume égal d'homogénéisat et d'adjuvant incomplet de Freund. Après une prise de sang positive au 45ème jour, on a recueilli le sérum et on l'a utilisé pour doser la formation des anticorps contre les antigènes
de la filaire cruelle utilisés pour l'immunisation.
Dosage du sérum contenant les anticorps anti-filaire cruelle On a dosé le sérum du lapin immunisé par les antigènes de la filaire cruelle pour déterminer l'activité des anticorps contre les antigènes de la filaire cruelle et les antigènes de C. elegans. La méthode préférée selon
l'invention consiste à utiliser un dosage par immuno-
fluorescence de l'immunoglobuline IgG de chèvre antilapin conjuguée à de la fluorescéine ou de la rhodamine. On peut également utiliser d'autres méthodes telles que le dosage enzymatique, le dosage radio-immunologique, le dosage à l'hémagglutinine et l'immunodiffusion. On a lavé trois fois avec du PBS des coupes de tissus de filaire cruelle provenant de chiens (contenant les antigènes), puis on les a fait incuber avec les anticorps anti-filaire cruelle du lapin, à la température ambiante pendant 30 minutes, puis on a lavé les tissus trois fois avec du PBS pour éliminer les anticorps anti-filaire cruelle du lapin. Après quoi, on a fait incuber les tissus avec des anticorps d'IgG de chèvre antilapin à la fluorescéine. Apres incubation, on a éliminé les anticorps libres de l'IgG de chèvre antilapin en lavant trois fois avec du PBS les tissus de la filaire cruelle. La présence d'activités anticorps de lapin se fixant sur des antigènes spécifiques de la filaire cruelle était indiquée par la
fixation des anticorps fluorescents de l'IgG de chèvre anti-
lapin, que l'on a alors observés au microscope à fluorescence, faisant apparaître une couleur rouge (rhodamine) ou verte (fluorescéine). On a également utilisé des animaux entiers et des tissus de C. elegans pour doser des anticorps anti-filaire cruelle engendrés par le sérum de lapin immunisé. Les résultats
des dosages par fluorescence obtenus pour l'activité anti-
filaire cruelle sont résumés dans le Tableau I ci-après.
Le sérum pré-immun témoin n'avait aucune activité contre les tissus de la filaire cruelle ni contre les tissus de C. elegans. Au contraire, on a mis en évidence des activités anticorps dans le sérum de lapin immunisé contre les tissus de la filaire cruelle, mais pas contre C. elegans. Ainsi, la production d'anticorps contre les antigènes de la filaire cruelle n'est spécifique que pour la filaire cruelle mais par pour C. elegans. On a utilisé ce sérum, qui paraît spécifique, comme sonde pour isoler des mutants de C. elegans qui, selon l'invention, porteront des antigènes correspondant
aux antigènes de la filaire cruelle.
TABLEAU I
Activités anticorps du sérum d'un lapin qui a été immunisé par des antigènes de la filaire cruelle Titre Sérum immun Sérum pré-immun Tissus de Tissus de Tissus de Tissus de filaire C. elegans filaire C. elegans cruelle cruelle
11:5 + -
1:20 + -
1:40 + -
1:80 + -
1:160 + -
+ = activité fluorescence = pas d'activité
TABLEAU II
Activité de fixation d'anticorps de six mutants isolés indépendamment, de C. elegans avec un sérum anti-filaire cruelle de lapin de titre 1:50 Sérum immun Sérum pré-immun
Type sauvage (C.
elegans Filaire cruelle + Souche mutante
VGI-1 +
VGI-2 +
VGI-3 +
VGI-4 +
VGI-5 +
VGI-6 +
25739&3
TABLEAU III
Activité de fixation d'anticorps d'un mutant VGI-6 avec le sérum antifilaire cruelle du lapin Titre Tissus de Tissus de Tissus de type VGI-6 filaire cruelle sauvage (C. elegans)
1:5 + +
1:20 + +
1:40 + +
1:80 + +
1:160 + +
Mutagénisation de C. elegans pour produire des mutants ayant des antigènes modifiés qui correspondent aux antigènes de la filaire cruelle La nématode de sol indépendante C. elegans a la préférence étant donné qu'elle peut être facilement cultivée en grandes quantités et que des mutations récessives homozygotes peuvent être produites (Brenner, S. (1974), The Genetics of Caenorhabditis elegans Genetics 77, 71-94). Ceia est dû à la nature hermaphrodite de l'animal, c'est-à-dire au fait que l'animal est autofertile. Une mutation introduite dans l'animal par autofécondation pendant deux générations
produira une mutation homozygote.
- On a exposé de jeunes larves de C. elegans, à leur premier et à leur second stades de développement larvaire, à un mutagène, 1'éthyl méthyl sulfonate (on peut également utiliser n'importe quels autres mutagènes, tels que le
méthane sulfonate de méthyle, l'orangé d'acridine, la nitroso-
guanidine, l'hydroxynitrosamine; (Drake, J.W. et R.H. Baltz (1976), The Biochemistry of Mutagenesis, Annual Review of Biochemistry 45, 11) et on les a laissées s'autoféconder et pondre des oeufs. On a laissé la génération F1 de cette mutagénèse se reproduire puis on a trié, dans la génération F2, les animaux qui se fixeraient sur des anticorps réalisés contre des antigènes spécifiques de la filaire cruelle. Comme C. elegans de type sauvage ne se fixe pas sur les anticorps réalisés contre les antigènes de la filaire cruelle qui sont produits dans l'antisérum de filaire cruelle du lapin selon l'invention (voir le Tableau I), on a procédé à un tri visuel des mutants qui avaient des antigènes qui se fixaient sur les anticorps de la filaire cruelle, en utilisant le dosage par fluorescence ci-dessus. Les mutants qui se fixent sur les anticorps de la filaire cruelle, à la différence du type sauvage (sans aucune fluorescence) avaient une couleur
fluorescente rouge (rhodamine) ou verte (fluorescéine).
On a séparé ces animaux mutants et on les a clones.
Les animaux qui se reproduisent de manière constante pour cette caractéristique sont considérés comme des mutants qui présentent un gène modifié susceptible de produire un ou
des antigènes correspondant à ceux de la filaire cruelle.
En utilisant les méthodes ci-dessus, il a été démontré qu'avec la présente invention (voir le Tableau II) il était possible de produire des mutants de C. elegans ayant des antigènes modifiés correspondant à ceux des antigènes de la filaire cruelle. Dans le Tableau II, les activités de fixation d'anticorps obtenues avec un sérum anti-filaire cruelle de six (6) mutants isolés indépendamment sont comparées avec celles des tissus de la filaire cruelle
et des tissus du type sauvage.
Le Tableau III représente une nouvelle caractéri-
sation de l'un des mutants représentatifs parmi les six (6) du Tableau II, chez lesquels la fixation de l'activité anticorps se manifeste de façon très similaire à celle des
tissus de filaire cruelle.
Par ailleurs, quand on a immunisé un lapin avec l'une de ces souches mutantes de C. elegans, on a pu mettre au jour une réponse immunogène selon laquelle les anticorps produits dans le sérum présentaient une activité de fixation
vis-à-vis d'une espèce d'antigènes de la filaire cruelle.
Ainsi, les mutants qui sont isolés selon l'invention présentent non seulement une réponse antigène de fixation sur des anticorps de la filaire cruelle, mais aussi une réponse immunogène dans la production d'anticorps contre
les antigènes de la filaire cruelle.
A l'aide de la méthode décrite ci-dessus, il a également été isolé une souche mutante de C. elegans qui a été modifiée, au moins en ce qui concerne certains de ses antigènes de surface, pour qu'elle soit immunologiquement identique aux antigènes d'un autre ver parasite, Ancylostoma caninum, un ankylostome qui s'introduit dans l'intestin du chien. On peut utiliser, dans le procédé selon l'invention, n'importe quelle espèce de vers qui sont facilement cultivés et dans lesquels des mutations peuvent être provoquées pour induire une modification de ses antigènes en un antigène
de ver parasite difficile à cultiver correspondant.
Du point de vue conceptuel, en utilisant C. elegans et la filaire cruelle, D. immitis à titre d'exemple, une fois que les antigènes du parasite voulu ont été produits par le procédé ci-dessus, on peut les utiliser pour mettre au point toute une gamme de produits de diagnostic permettant de détecter la présence d'anticorps induits lors d'une infection par un ver parasite. Il a été démontré qu'une telle approche, avec des antigènes de la filaire cruelle était utilisable pour le diagnostic de plusieurs types d'infections helminthiques (Desowitz and Una, supra; Hedge and Ridley (1977). Immunofluorescent Reactions with Microfilariae. 1 Diagnostic Evaluation; Transaction of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene 71, 304-307). Dans le cas des antigènes de la filaire cruelle qui ont été produits selon l'invention, il a été constaté que l'une des souches mutantes isolées dans C. elegans, VGI-2, était utilisable
pour le diagnostic de l'infection par la filaire cruelle.
Quand on a dosé avec la souche mutante VGI-2 des échantillons de sérums de chiens qui avaient été diagnostiqués comme infectés et non infectés par des filaires cruelles, les résultats étaient remarquablement précis, en ce sens que 6 chiens diagnostiqués par le dosage courant par filtre comme étant positivement infectés, sur la base de la présence de microfilaires, ont également montré une réponse positive avec cette souche mutante dans le dosage par immunofluorescence. Par contre, cinq échantillons de sérum provenant de chiens non infectés d'après le diagnostic clinique, ont également montré une réponse négative avec la souche mutante. Outre l'utilisation du dosage par immunofluorescence pour détecter une infection par des vers parasites avec des antigènes de la souche mutante, on peut également utiliser le dosage enzymatique, radio- immunologique, d'immunodiffusion ou à l'hémagglutinine (D. Stites (1976), Laboratory Methods for Detection of Antigens and Antibodies, Basic and Clinical Immunology,
Lange Medical Publications, pp. 281-315).
Les antigènes qui sont produits par la méthode décrite peuvent également être utilisés pour la fabrication de vaccins contre les vers parasites. Dans l'exemple de l'infection par la filaire cruelle, on sait que les antigènes qui sont dérivés de larves infectieuses peuvent être utilisés comme vaccin pour les chiens contre l'infection par la filaire cruelle (Wong, M.M, Guest, M.F., et Lavoipierre, M.J. (1974) Dirofilaria immitis; Fate and Immunogenicity of Irradiated Infective Stage Larvae in Beagles, Experimental Parasitology , 65-79). Dans la mesure o des anticorps peuvent être produits spécifiquement contre ces antigènes de larves infectieuses particulières, et que des souches mutantes de C. elegans avec des antigènes correspondants sont isolés, on peut utiliser ces souches mutantes pour produire les antigènes immunogènes nécessaires à la production
et à la fabricatin d'un vaccin contre la filaire cruelle.
Le vaccin produit peut ensuite être mis en suspension, par exemple dans une solution saline tamponnée, puis être utilisé pour injection souscutanée ou intramusculaire à un animal afin de l'immuniser contre l'infection par la filaire cruelle (W.J. Herbert (1978), Laboratory Animal Techniques for Immunology in "Handbook of Experimental Immunology", Vol. 1 Immuno Chemistry, 3rd Edition, Editor,
D.M. Weir, Blackwell Scientific Publishers, Oxford, London).
Le principe fondamental du procédé de l'invention est de modifier le ou les gènes d'une espèce de ver il étroitement apparentée qui est facile à cultiver pour produire des antigènes d'un ver parasite difficile à cultiver. Dans la forme de réalisation décrite, le concept de la production d'antigènes est de les produire in situ dans l'espèce du ver facilement cultivé. Ce concept peut être en outre étendu à l'expression d'antigènes dans d'autres organismes tels que les bactéries, les levures, ou autres micro-organismes qui peuvent fournir un rendement plus efficace et productif des antigènes voulus. L'isolement du ou des gènes d'antigène et leur insertion dans des bactéries avec des vecteurs génétiques peuvent être appliqués. On peut isoler les gènes, de C. elegans par exemple, en isolant initialement l'acide nucléique de l'animal avec la méthode de la protéinase K-SDS qui est décrite par Emmons, S., Klass, M.R., et Hirsh, D. (1979); Analysis of the Constancy of DNA Sequences During Development and Evolution of the Nematode Caenorhabditis elegans; Proceeding of the National Academy of Sciences
76, 1333-1337.
Le poly A (ARN) est séparé par précipitation à l'éthanol et par fixation sur de l'oligo(dT) cellulose selon Aviv et Leder (1972), Purification of Biologically Active Globin Messenger RNA by Chromatography on Oligothymidylic Acid Cellulose, Proceedings of the National Academy of Science 69, 1408-1412. Les substances qui se fixent sur l'oligo(dT) cellulose sont celles qui sont utilisées pour purifier le poly A (ARN) qui code pour le gène d'antigène produit. Etant donné que le poly A (ARN) ne s'hybride qu'avec l'ADN qui code pour le gène d'antigène, ce poly A(ARN)peut être utilisé pour sélectionner des molécules de poly A (ADN) recombinantes de C. elegans codant pour le gène d'antigène intéressé. Ces molécules d'ADN recombinantes peuvent ensuite être introduites dans des bactéries ou des levures avec divers vecteurs génétiques tels que les plasmides ou les bactériophages pour exprimer le gène d'antigène et le produit intéressé à l'aide des techniques fondamentales qui sont décrites par Davis, R.W., Botstein, D., et Roth, J.R. (1980). A manual for genetic engineering - Advanced Bacterial Genetics, Cold
Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York).
Il existe une possibilité que les antigènes qui sont produits par les parasites naturels soient plus puissants ou plus spécifiques que ceux qui dérivent de C. elegans par mutations génétiques. Aussi, le clonage des gènes parasites naturellement difficiles à cultiver pour leurs
antigènes dans unmicro-organisme peut-il être avantageux.
Si la méthode de clonage décrite ci-dessus était utilisée, ce clonage serait extrêmement difficile, sinon impossible, à réaliser. Cela est dû à la limitation de la quantité de tissus parasites disponible pour isoler le poly A (ARN) intéressé. Le poly A (ARN) n'est présent que dans des tissus qui sont en train d'exprimer l'antigène. Dans le cas du poly A (ARN) correspondant aux antigènes des larves infectieuses de la filaire cruelle, ces tissus doivent être dérivés d'animaux larvaires disséqués de moustiques capturés qui infestent les parasites. La disponibilité des tissus larvaires infectieux nécessaires pour isoler une quantité suffisante de poly A (ARN) correspondant à leurs antigènes est limitée, ce qui rend la tâche d'isolement du poly A (ARN) extrêmement difficile, sinon impossible. Cependant, si l'on utilise le poly A (ARN) isolé de la souche mutante de C. elegans qui correspond à ces antigènes intéressés, il est possible, par hybridationde l'ADN de la filaire cruelle, d'isoler les gènes d'ADN recombinant correspondant aux
antigènes des larves infectieuses de la filaire cruelle.
La disponibilité de l'ADN de la filaire cruelle n'est pas limitée étant donné que tous les tissus ont de l'ADN contenant tous les gènes, et qu'une grande quantité de tissus peuvent
être obtenus à partir de filaires cruelles adultes.
Claims (17)
1. Procédé de production d'antigènes de vers parasites, caractérisé en ce qu'il consiste: à identifier les antigènes d'un ver parasite; à modifier génétiquement un organisme apparenté à ce ver parasite jusqu'à ce qu'une souche mutante se forme, laquelle est caractérisée par des antigènes présentant une identité immunologique vis-à-vis des antigènes du ver parasite; à cultiver la souche mutante; et à récolter la souche mutante de façon que les antigènes puissent être isolés en vue de leur utilisation comme produit de diagnostic ou comme vaccin pour la détection
et la prévention de l'infection due audit ver parasite.
2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé
en ce que le ver parasite est un helminthe.
3. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que le ver parasite est choisi parmi les trématodes,
cestodes et nématodes.
4. Procédé selon la revendication 1 ou 3,
caractérisé en ce que l'organisme apparenté est un helminthe.
5. Procédé selon la revendication 4, caractérisé en ce que l'organisme apparenté est choisi parmi les trématodes,
cestodes et nématodes.
6. Procédé selon la revendication 5, caractérisé
en ce que l'organisme apparenté est un nématode.
7. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que l'organisme apparenté est choisi dans le groupe
comprenant C. elegans, P. redivious, T. acetic ou C.briggsae.
8. Procédé selon la revendication 1 ou 7,
caractérisé en ce que le ver parasite est D. immitis.
9. Procédé selon la revendication 1 ou 7,
caractérisé en ce que le ver parasite est A. caninum.
10. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend l'étape d'identification des souches mutantes qui présentent l'identité immunologique avec les antigènes du ver parasite par sélection des souches mutantes qui se fixent sur les anticorps produits par un hôte immunisé avec
des antigènes du ver parasite.
11. Procédé selon la revendication 10, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes de séparation des souches mutantes ainsi identifiées et de clonage des souches mutantes ainsi séparées.
12. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que la modification génétique de l'organisme étroitement apparenté comporte les opérations consistant à: isoler l'acide nucléique de l'organisme apparenté; séparer le poly A (ARN) ; sélectionner ensuite les molécules de poly A (ADN) recombinantesde l'organisme étroitement apparenté; coder pour le gène d'antigène intéressé; introduire les molécules d'ADN recombinantes dans une culture de support pour exprimer le gène d'antigène; et
récolter ensuite ce dernier.
13. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que la modification génétique de l'organisme étroitement apparenté comporte les opérations consistant à: isoler l'acide nucléique de l'organisme apparenté; séparer le poly A (ARN) de l'organisme apparenté; sélectionner ensuite les molécules de poly A (ADN) recombinantesdu ver parasite; coder pour le gène d'antigène intéressé; introduire les molécules d'ADN recombinantes dans une culture de support pour exprimer le gene d'antigène; et
récolter ensuite ce dernier.
14. Procédé de détermination de la présence d'anticorps induits lors d'une infection par un ver parasite, caractérisé en ce qu'il comprend l'opération consistant à doser un sérum d'un hôte infecté avec unecomposition comprenant un porteur biologiquement acceptable et des antigènes produits à partir d'une souche mutante d'un organisme apparenté d'un ver parasite, les antigènes étant
immunologiquement identiques aux antigènes du ver parasite.
15. Composition comprenant un porteur biologique-
ment actif et une quantité efficace de la souche mutante
selon la revendication 1.
16. Composition selon la revendication 15,
caractérisée en ce qu'il s'agit d'un produit de diagnostic.
17. Composition selon la revendication 15,
caractérisée en ce qu'il s'agit d'un vaccin.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB08400529A GB2152510B (en) | 1984-01-10 | 1984-01-10 | Method for the commercial production of helminths antigens |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
FR2573983A1 true FR2573983A1 (fr) | 1986-06-06 |
FR2573983B1 FR2573983B1 (fr) | 1990-03-09 |
Family
ID=10554758
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
FR848418373A Expired - Lifetime FR2573983B1 (fr) | 1984-01-10 | 1984-12-03 | Procede de production commerciale d'antigenes d'helminthes |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS60152423A (fr) |
AU (1) | AU572908B2 (fr) |
DE (1) | DE3402492A1 (fr) |
FR (1) | FR2573983B1 (fr) |
GB (1) | GB2152510B (fr) |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB2152510B (en) * | 1984-01-10 | 1988-06-15 | Kenneth K Lew | Method for the commercial production of helminths antigens |
WO1988001277A1 (fr) * | 1986-08-18 | 1988-02-25 | The Australian National University | Vaccin contre les parasites helminthes |
GB8906156D0 (en) * | 1989-03-17 | 1989-05-04 | Munn Edward A | Production and use of anthelmintic agents and protective immunogens |
EP0674659A1 (fr) * | 1992-10-28 | 1995-10-04 | McGILL UNIVERSITY | Peptides et vaccins derives de la tubuline de nematode |
US5744593A (en) * | 1996-02-15 | 1998-04-28 | Heska Corporation | Parasitic helminth larval thiol specific antioxidant proteins and nucleic acid molecules |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4345026A (en) * | 1981-01-12 | 1982-08-17 | The Children's Hospital Medical Center | Mutagenicity assay |
US4396600A (en) * | 1980-12-18 | 1983-08-02 | Gus Gallucci | Adult schistosome worm-derived antigenic substance and method of obtaining same |
GB2152510A (en) * | 1984-01-10 | 1985-08-07 | Kenneth K Lew | Method for the production of helminths vaccines |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
ES8705231A1 (es) * | 1984-11-15 | 1987-05-01 | Biotech Australia Pty Ltd | Un procedimiento para preparar una vacuna anti-helmintica que comprende una suspension, homogeneizado o extracto de una especie de nematodo y un vehiculo farmaceutico. |
-
1984
- 1984-01-10 GB GB08400529A patent/GB2152510B/en not_active Expired
- 1984-01-17 JP JP59004933A patent/JPS60152423A/ja active Pending
- 1984-01-25 DE DE19843402492 patent/DE3402492A1/de not_active Withdrawn
- 1984-11-02 AU AU34974/84A patent/AU572908B2/en not_active Ceased
- 1984-12-03 FR FR848418373A patent/FR2573983B1/fr not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4396600A (en) * | 1980-12-18 | 1983-08-02 | Gus Gallucci | Adult schistosome worm-derived antigenic substance and method of obtaining same |
US4396600B1 (fr) * | 1980-12-18 | 1986-02-11 | ||
US4345026A (en) * | 1981-01-12 | 1982-08-17 | The Children's Hospital Medical Center | Mutagenicity assay |
GB2152510A (en) * | 1984-01-10 | 1985-08-07 | Kenneth K Lew | Method for the production of helminths vaccines |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
BIOLOGICAL ABSTRACTS, vol. 72, no. 1, 1981, page 319, réf.no. 3012, Philadelphia, PA, US; R.B. GRIEVE et al.: "Enzyme-linked immunosorbent assay for measurement of antibody responses to Dirofilaria immitis in experimentally infected dogs", & AM. J. VET. RES. 42(1): 66-69, 1981 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE3402492A1 (de) | 1985-10-24 |
GB8400529D0 (en) | 1984-02-15 |
AU3497484A (en) | 1986-05-08 |
GB2152510B (en) | 1988-06-15 |
JPS60152423A (ja) | 1985-08-10 |
GB2152510A (en) | 1985-08-07 |
AU572908B2 (en) | 1988-05-19 |
FR2573983B1 (fr) | 1990-03-09 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4568639A (en) | Method for the commercial production of helminths antigens | |
Gupta et al. | Seroprevalence of Neospora, Toxoplasma gondii and Sarcocystis neurona antibodies in horses from Jeju island, South Korea | |
Williams et al. | Antigenic analysis of developmental stages of Ascaris scum I. comparison of eggs, larvae and adults | |
US4756908A (en) | Method for the commercial production of helminths antigens | |
FR2573983A1 (fr) | Procede de production commerciale d'antigenes d'helminthes | |
Miller | The hybrid-substance of the erythrocytes of the hybrids between Columba livia and Streptopelia risoria | |
CA2394149A1 (fr) | Bacterie rickettsia pulicis methode de diagnostic serologique | |
KR101462986B1 (ko) | 분변 중 요네균 신속분리를 위한 자석 나노입자를 이용한 검출방법 | |
JP2004215520A (ja) | トマト黄化葉巻ウイルスの診断法 | |
Song et al. | Immunological responses of dogs experimentally infected with Dirofilaria immitis | |
Taweethavonsawat et al. | Specific monoclonal antibodies to Strongyloides stercoralis: a potential diagnostic reagent for strongyloidiasis. | |
FR2828212A1 (fr) | Methodes de diagnostic et de pronostic de la maladie de parkinson | |
Kodama et al. | Detection of fish antibody against protein antigen of Aeromonas salmonicida by enzyme-linked immunosorbent assay using biotin-avidin system | |
M Elhaj et al. | Seroprevalence and Molecular Detection of Rift Valley Fever in Sheep, Gezira state, Sudan (2017-2019) | |
US6441139B2 (en) | Agents and method for identifying insects | |
Leung et al. | Production of specific antigens from Trichinella spiralis using a continuous elution method and isoelectric focusing | |
FR2748812A1 (fr) | Trousse de diagnostic et procede pour determiner la concentration d'un cytochrome p450 | |
JP3171391B2 (ja) | モノまたはポリクローナル抗体、およびその抗体を用いた魚卵の種の判定方法 | |
Allaie et al. | Identification of immunodominant polypeptides of infective larva of Haemonchus contortus | |
EP0564340B1 (fr) | Procédé immunochimique de détection de l'origine d'une substance produite par génie génétique et réactifs pour sa mise en oeuvre | |
D'Souza | Biotechnological applications in animal health and disease. | |
EP2880051A2 (fr) | Souches mutantes de neospora et leurs utilisations | |
KR100483908B1 (ko) | 항원 항체 반응을 이용한 삭시톡신 검출용 바이오센서 | |
Gupta et al. | Antigenic evaluation of a recombinant Baculovirus-expressed Sarcocystis neurona SAG1 antigen | |
Tuomela | Testing and selecting custom antibodies for two subunits of the Drosophila melanogaster mitochondrial respiratory chain complex I. |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
ST | Notification of lapse |