ES2843254T3 - Productos de leche humana rica en grasas - Google Patents
Productos de leche humana rica en grasas Download PDFInfo
- Publication number
- ES2843254T3 ES2843254T3 ES14774486T ES14774486T ES2843254T3 ES 2843254 T3 ES2843254 T3 ES 2843254T3 ES 14774486 T ES14774486 T ES 14774486T ES 14774486 T ES14774486 T ES 14774486T ES 2843254 T3 ES2843254 T3 ES 2843254T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- milk
- cream
- human milk
- human
- kcal
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23C—DAIRY PRODUCTS, e.g. MILK, BUTTER OR CHEESE; MILK OR CHEESE SUBSTITUTES; MAKING THEREOF
- A23C9/00—Milk preparations; Milk powder or milk powder preparations
- A23C9/20—Dietetic milk products not covered by groups A23C9/12 - A23C9/18
- A23C9/206—Colostrum; Human milk
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23C—DAIRY PRODUCTS, e.g. MILK, BUTTER OR CHEESE; MILK OR CHEESE SUBSTITUTES; MAKING THEREOF
- A23C13/00—Cream; Cream preparations; Making thereof
- A23C13/12—Cream preparations
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23C—DAIRY PRODUCTS, e.g. MILK, BUTTER OR CHEESE; MILK OR CHEESE SUBSTITUTES; MAKING THEREOF
- A23C9/00—Milk preparations; Milk powder or milk powder preparations
- A23C9/20—Dietetic milk products not covered by groups A23C9/12 - A23C9/18
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Polymers & Plastics (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Nutrition Science (AREA)
- Dairy Products (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
- General Preparation And Processing Of Foods (AREA)
- Medical Treatment And Welfare Office Work (AREA)
Abstract
Una composición de nata de leche humana para la administración enteral a un lactante que comprende nata pasteurizada que se deriva de leche humana, en donde la composición comprende 2,5 kcal/mL y 25 % de grasa.
Description
DESCRIPCIÓN
Productos de leche humana rica en grasas
Campo de la invención
La presente descripción se refiere generalmente a productos de leche humana rica en grasas, tales como composiciones de nata materna que se estandarizan, métodos para producir las composiciones, y métodos para usar las composiciones.
Antecedentes de la invención
La leche materna humana se considera la nutrición preferida para los lactantes, que incluye aquellos de la unidad de cuidados intensivos neonatales (UCIN) (Academia Estadounidense de Pediatría, Sección sobre Lactancia Materna. Breastfeeding and the Use of Human Milk. Pediatrics, 115:496-506, 2005). Típicamente, la leche humana que se usa en la UCIN es de la propia madre del bebé, pero también puede provenir de una donante. En el caso de los lactantes de muy bajo peso al nacer (MBPN), la leche se suplementa a menudo con un fortificante de leche humana con el fin de proporcionar la nutrición adicional que estos bebés necesitan.
Si bien rara vez se analiza el contenido nutricional de leche humana, generalmente se ha asumido que la leche humana contiene aproximadamente 67,6 kcal/100 mL (20 kcal/oz). Sin embargo, Wojcik y otros (JAm Diet Assoc, 109:137-140, 2009) mostró que a menudo este no es el caso con el 25 % de las muestras de una encuesta de 415 muestras de donación de leche materna humana que tienen por debajo de 58,5 kcal/100 mL (17,3 kcal/oz) y el 65 % de las muestras que tienen por debajo de 67,6 kcal/100 mL (20 kcal/oz). Como resultado, el contenido de energía y nutrientes que se espera no se alcanza en un porcentaje significativo del tiempo. El resultado neto es que el lactante no obtiene el patrón de crecimiento que se desea, particularmente con respecto al peso. Las soluciones actuales a este problema incluyen la alimentación intravenosa de los lactantes a través del proceso de nutrición parenteral total (NPT). Si bien la NPT es efectiva al suministrar el nivel de nutrición que se requiere a los lactantes de MBPN, también se asocia con muchos efectos secundarios negativos que incluyen, por ejemplo, daño hepático.
Por tanto, se necesita una solución para resolver el problema de la producción de leche humana baja en calorías que evite los efectos secundarios perjudiciales que no se desean de la TPN. La invención actual resuelve el problema mediante la proporción de un producto de leche humana pasteurizada, rica en grasas que se puede administrar por vía enteral y aumentar el contenido calórico de leche humana mientras que no aumenta sustancialmente el volumen general con que se alimenta al lactante.
Resumen de la invención
La invención en la presente descripción es como se define en las reivindicaciones.
Esta descripción presenta productos de leche humana rica en grasas, por ejemplo, composiciones de nata humana, así como también métodos de elaboración y métodos de uso de productos de leche humana rica en grasa.
En un aspecto de la invención, se proporciona una composición de nata de leche humana de acuerdo con la reivindicación 1.
La composición de nata de leche humana comprende nata pasteurizada que se deriva de leche humana, en donde la composición comprende 2,5 kcal/mL y 25 % de grasa. En otra modalidad, la composición de nata humana comprende adicionalmente un permeado de leche humana desnatada. En otra modalidad adicional, la composición de nata humana comprende adicionalmente agua desionizada.
La composición es para nutrición enteral. En una modalidad particular, la nutrición enteral es para un lactante de bajo peso al nacer.
En otro aspecto de la invención, se proporciona un método de elaboración de una composición de nata de leche humana de acuerdo con la reivindicación 3.
El método de elaboración de una composición de nata de leche humana comprende las etapas de: separar una mezcla de leche humana en una porción de nata y una porción de leche desnatada, formular la porción de nata para obtener una composición de nata que comprende 2,5 kcal/mL y 25 % de grasa, y pasteurizar la composición de nata. La etapa de formulación comprende medir el contenido calórico de la porción de nata y, si la porción de nata está por encima de 2,5 kcal/mL, añadir un volumen de permeado que se obtiene de la ultrafiltración de la porción de leche desnatada o agua desionizada a la porción de nata. En una modalidad, la etapa de separación es mediante ultracentrifugación.
En una modalidad, el método de elaboración de una composición de nata de leche humana comprende adicionalmente ultrafiltrar el agua de la porción de leche desnatada, para obtener de esta manera un permeado de leche humana desnatada. En una modalidad que se relaciona, la etapa de formulación comprende añadir un volumen del permeado de leche humana desnatada a la porción de nata. En otra modalidad, la etapa de formulación comprende añadir un volumen de agua desionizada a la porción de nata.
En otra modalidad adicional, el método de elaboración de una composición de nata de leche humana comprende adicionalmente una etapa para probar la mezcla de leche humana en busca de adulterantes, contaminantes, drogas y/o patógenos. En una modalidad, la etapa de prueba comprende la prueba mediante el uso de un panel de microorganismos. En otra modalidad, la etapa de prueba comprende un análisis de PCR para VIH, VHB y VHC. En una modalidad, la etapa de prueba detecta la proteína bovina. En otra modalidad adicional, la etapa de prueba comprende la prueba de uno o más drogas. En una modalidad que se relaciona, uno o más drogas se seleccionan de anfetaminas, benzodiazepinas, cocaína, metanfetaminas, opiáceos, opioides sintéticos (por ejemplo, oxicodona/oximorfona), THC, y los principales metabolitos de los mismos.
En una modalidad del método, la mezcla de leche humana es de una o más donantes.
También se describe en la presente descripción un método para aumentar el contenido calórico de leche humana a un nivel de contenido calórico que se desea, que comprende las etapas de: obtener una muestra de leche humana, medir el contenido calórico de leche humana, determinar el volumen de una composición de nata de leche humana necesaria para elevar el contenido calórico de leche humana al nivel de contenido calórico que se desea, y añadir el volumen de la composición de nata de leche humana al recipiente de leche humana. En un ejemplo, el contenido calórico que se desea es 67,6 kcal/100 mL (20 kcal/oz).
En algunas descripciones del método para aumentar el contenido calórico de leche humana, la composición de nata de leche humana comprende aproximadamente 2,5 kcal/mL. En una descripción que se relaciona, la composición de nata de leche humana comprende aproximadamente un 25 % de grasa.
En algunas descripciones del método, la leche humana es para nutrición enteral. En un ejemplo que se relaciona, la nutrición enteral es para un lactante de bajo peso al nacer.
Descripción detallada de la invención
Las composiciones y métodos que se presentan en la presente descripción se refieren a productos de nata de leche humana. El fundamento detrás de la suplementación con leche humana (por ejemplo, de la madre o de la donante) se deriva del hallazgo de que la leche de madres que tienen un parto significativamente prematuro no tiene el contenido nutricional adecuado para alcanzar por completo el aumento de las necesidades metabólicas y de crecimiento de sus lactantes con relación a un lactante a término (Hawthorne y otros, Minerva Pediatr, 56:359-372, 2004; Lawrence y Lawrence, Breastfeeding: A Guide for the Medical Profession, 6ta edición. Filadelfia: Elsevier Mosby, 2005; y Ziegler, Human Milk for the Preterm Infant, Congreso Internacional de la Asociación de Bancos de Leche Humana de América del Norte. Alexandria, VA, 2005).
Curiosamente, lo que se llama "leche pretérmino" puede contener niveles más altos de proteína que la leche de una madre que tiene un parto a término (Hawthorne y otros, Minerva Pediatr, 56:359-372, 2004; Lawrence y Lawrence, Breastfeeding: A Guide for the Medical Profession, 6a edición. Filadelfia: Elsevier Mosby, 2005; y Ziegler, Human Milk for the Preterm Infant, Congreso Internacional de la Asociación de Bancos de Leche Humana de América del Norte. Alexandria, VA, 2005). Sin embargo, estos niveles siguen siendo inadecuados para asegurar niveles iniciales apropiados de crecimiento y desarrollo y además, particularmente en lactantes de un tamaño destinado a no sobrevivir en los días anteriores a los cuidados intensivos neonatales. También se da el caso de que estos niveles de nutrición elevados tienen una vida relativamente corta, y la "leche pretérmino" se vuelve rápidamente indistinguible de la leche a término. Por tanto, es fundamental que el contenido nutricional de la alimentación diaria de estos lactantes alcance niveles aceptables de componentes clave tales como calorías y proteínas.
Sin embargo, el contenido calórico de leche humana que se suministra a los lactantes rara vez se mide. Como se demuestra por el estudio realizado por Wocjik y otros (J Am Diet Assoc, 109:137-140, 2009), es probable que la leche humana que se suministra a los lactantes de b Pn y MBPN a menudo no proporcione una cantidad suficiente de calorías para alcanzar las necesidades nutricionales de un lactante pretérmino. Las composiciones de leche humana rica en grasas que se describen en la presente descripción proporcionan una solución a este problema y se pueden usar, por ejemplo, para suplementar la leche humana con el fin de aumentar el contenido calórico al nivel que se desea sin aumentar el volumen con que se debe alimentar el lactante, por ejemplo, un lactante de BPN. Esto es particularmente útil cuando todo lo que se necesita es aumentar la ingesta calórica y no aumentar el contenido de proteínas. Las composiciones de la invención actual resuelven este problema mediante el aumento de las calorías sin aumentar las proteínas y, por lo tanto, proporcionan una solución de costo más efectivo al problema.
La nutrición parenteral total (NPT), un proceso para proporcionar nutrición por vía intravenosa y evitar el tracto gastrointestinal, a menudo se usa para alimentar a los lactantes de BPN. Sin embargo, la NPT se asocia con varias complicaciones potenciales que incluyen, por ejemplo, hiperglucemia, hipoglucemia, lipogénesis, complicaciones hepáticas (por ejemplo, hígado graso y colestasis), sepsis, y coágulos de sangre. En particular, los altos requisitos de grasas y proteínas del lactante de BPN tienden a resultar en una disfunción hepática cuando la nutrición se recibe por vía parenteral. En consecuencia, es conveniente proporcionar a un lactante nutrición enteral tan pronto como sea posible en lugar de NPT, con el fin de evitar los efectos negativos que se asocian con la NPT. Las composiciones de leche humana
rica en grasas que se describen en la presente descripción se pueden usar para aumentar el contenido calórico y el contenido de grasa de leche humana, que proporciona de esta manera medios para el suministro enteral de grasa de leche humana. Mantener una dieta que se basa completamente en la leche humana reduce la incidencia de complicaciones tales como la enterocolitis necrotizante y, por lo tanto, se contempla que se puedan usar alimentos enterales de leche humana que se suplementan con productos de leche humana rica en grasas en lugar de NTP.
Los términos lactantes "prematuros", "pretérmino" y "de bajo peso al nacer (BPN)" se usan indistintamente y se refieren a lactantes que nacen con menos de 37 semanas de edad gestacional y/o con un peso al nacer menor de 2500 g. En particular, el término lactante de "muy bajo peso al nacer (MBPN)" se refiere a un lactante con un peso al nacer de 1250 g o menos. En consecuencia, el término "lactantes de BPN" incluye lactantes de MBPN.
El término "leche entera" se refiere a la leche humana de la que no se ha eliminado la grasa.
Por "carga biológica" se entiende contaminantes microbiológicos y patógenos (generalmente vivos) que se pueden presentar en la leche, por ejemplo, virus, bacterias, moho, hongos y similares.
A menos que se defina de cualquier otra manera, los términos técnicos y científicos que se usan en la presente descripción tienen el mismo significado que el que entiende comúnmente un experto en la técnica.
Composiciones de nata humana
Las composiciones de leche humana rica en grasas, o las composiciones de nata humana, que se describen en la presente descripción se producen de leche humana entera. La composición de nata humana comprende 2,5 kcal/mL y 25 % de grasa.
Se contempla que las composiciones de nata humana que se describen en la presente descripción pueden comprender uno o más componentes adicionales con el fin de tener el contenido calórico que se desea y/o el porcentaje que se desea de grasa. En consecuencia, en una modalidad, la composición de nata humana comprende un permeado de leche humana desnatada que se añade. El permeado de leche desnatada ("permeado") es el líquido que se produce por la ultrafiltración de leche humana desnatada que tradicionalmente se consideraba un producto de desecho en la fabricación de fortificantes de leche humana. En otra modalidad, la composición de nata humana comprende agua desionizada (DI) además de leche humana rica en grasas.
Generalmente, la composición de nata humana se congela para su almacenamiento y/o envío y se descongela antes de su uso.
Métodos para elaborar composiciones de nata humana
Las composiciones de nata humana que se describen en la presente descripción se producen de leche humana entera. La leche humana puede ser de la propia madre de un lactante o de una o más donantes. La leche humana se mezcla para proporcionar una mezcla de leche humana. Por ejemplo, una mezcla de leche humana comprende leche de dos o más (por ejemplo, diez o más) donantes. Como otro ejemplo, una mezcla de leche humana comprende dos o más donaciones de una donante.
Obtener leche de la donante
Generalmente, la leche humana se proporciona por donantes, y las donantes se criban previamente y se aprueban antes de procesar cualquier leche. Se usan varias técnicas para identificar y calificar las donantes adecuadas. Una donante potencial debe obtener una autorización de su médico y del pediatra de su niño como parte del proceso de aprobación. Esto ayuda a asegurar, entre otras cosas, que la donante no tiene una enfermedad crónica y que su hijo no sufrirá como resultado de la donación(es). Los métodos y sistemas para calificar y monitorear la recolección y distribución de leche se describen, por ejemplo, en la Solicitud de Patente de Estados Unidos Número 12/728,811 (documento U.S.
2010/0268658). Las donantes se pueden o no compensar por su donación.
Usualmente, el cribado de donantes incluye un cuestionario integral de estilo de vida e historial médico que incluye una evaluación de medicamentos que se recetan y que no se recetan, pruebas de drogas de abuso, y pruebas de determinados patógenos. La donante se puede cribar, por ejemplo, para el virus de inmunodeficiencia humana tipo 1 (VIH-1), VIH-2, virus linfotrópico T humano tipo 1 (HTLV-I), Ht LV-II, virus de la hepatitis B (VHB), virus de la hepatitis C (VHC), y sífilis.
Las donantes se pueden recalificar periódicamente. Por ejemplo, se requiere que una donante se someta a un cribado por el protocolo que se usa en su calificación inicial cada cuatro meses, si la donante desea continuar donando. Una donante que no recalifica o falla en la calificación se aplaza hasta el momento en que lo haga, o se aplaza permanentemente si lo justifican los resultados del cribado de recalificación. En el caso de esta última situación, toda la leche restante que se proporciona por esa donante se elimina del inventario y se destruye o se usa solo con fines de investigación.
Una donante puede donar en una instalación que se designa (por ejemplo, una oficina de un banco de leche) o, en una modalidad preferida, se extrae leche en casa. Si la donante va a extraer leche en casa, ella medirá la temperatura en su refrigerador, por ejemplo, con un termómetro que se suministra para confirmar que es lo suficientemente frío para almacenar leche humana con el fin de que se apruebe.
Prueba de identidad de la donante
Una vez que la donante se ha aprobado, la identificación de la donante se puede realizar en la leche humana que se dona debido a que la leche se puede extraer por una donante en su casa y no se recolecta en una instalación de un banco de leche. En una modalidad particular, se pueden tomar muestras de leche de cada donante en busca de marcadores genéticos, por ejemplo, marcadores de ADN, para garantizar que la leche sea verdaderamente de la donante que se aprueba. Tales técnicas de identificación de sujetos son conocidas en la técnica (ver, por ejemplo, la Solicitud Internacional con Número de serie PCT/US2006/36827). La leche se puede almacenar (por ejemplo, a - 20 °C o más frío) y se pone en cuarentena hasta que se reciban los resultados de la prueba.
Por ejemplo, se puede obtener una muestra biológica de referencia de una donante potencial de leche materna humana. Tal muestra se puede obtener mediante métodos conocidos en la técnica tales como, pero que no se limitan a, una muestra de células con frotis de mejilla, o una muestra de sangre que se extrae, leche, saliva, raíces de cabello, u otro tejido conveniente. Las muestras de ácidos nucleicos de la donante de referencia (por ejemplo, ADN genómico) se pueden aislar de cualquier muestra biológica conveniente que incluye, pero no se limita a, leche, saliva, células bucales, raíces de cabello, sangre, y cualquier otra muestra de célula o tejido adecuada con núcleos de interfase intacta o células en metafase. La muestra se etiqueta con un número de referencia único. La muestra se puede analizar en el momento o alrededor del momento de obtener la muestra en busca de uno o más marcadores que puedan identificar a la donante potencial. Los resultados del análisis se pueden almacenar, por ejemplo, en un medio legible por computadora. Alternativamente, o además, la muestra se puede almacenar y analizar para identificar marcadores en un momento posterior.
Se contempla que la muestra biológica de referencia puede ser ADN tipificado mediante métodos conocidos en la técnica tales como el análisis de STR de loci STR, el análisis de HLA de loci HLA o el análisis de genes múltiples de genes/alelos individuales. El perfil del ADN que se tipifica de la muestra de referencia se registra y se almacena, por ejemplo, en un medio legible por computadora.
Se contempla adicionalmente que la muestra biológica de referencia se puede probar en busca de autoantígenos mediante el uso de anticuerpos conocidos en la técnica u otros métodos para determinar un perfil de autoantígeno. El perfil de antígeno (u otro péptido) se puede registrar y almacenar, por ejemplo, en un medio legible por computadora.
Se toma una muestra de prueba de leche humana para identificar uno o más marcadores de identidad. La muestra de leche humana que se dona se analiza para el mismo marcador o marcadores que la muestra de referencia de la donante. Se comparan los perfiles de marcadores de la muestra biológica de referencia y de leche que se dona. La coincidencia entre los marcadores (y la falta de cualquier marcador adicional no coincidente) indicaría que la leche que se dona proviene del mismo individuo que donó la muestra de referencia. La falta de una coincidencia (o la presencia de marcadores adicionales no coincidentes) indicaría que la leche que se dona proviene de una donante que no se prueba o se ha contaminado con fluido de una donante que no se prueba.
La muestra de leche humana que se dona y la muestra biológica de referencia que se dona se pueden probar en busca de más de un marcador. Por ejemplo, cada muestra se puede probar en busca de múltiples marcadores de ADN y/o marcadores de péptidos. Ambas muestras, sin embargo, se necesitan probar para detectar al menos algunos de los mismos marcadores con el fin de comparar los marcadores de cada muestra.
Por tanto, la muestra de referencia y la muestra de leche humana que se dona se puede probar en busca de la presencia de diferentes perfiles de marcadores de identidad. Si no existen perfiles de marcadores de identidad distintos del perfil de marcadores de identidad del sujeto que se espera, generalmente indica que no existió fluido (por ejemplo, leche) de otros humanos o animales que contaminen la leche humana que se dona. Si existen señales distintas de la señal que se espera para ese sujeto, los resultados son indicativos de contaminación. Tal contaminación resultará en que la leche falle la prueba.
El prueba de la muestra de referencia y de la leche humana que se dona se puede llevar a cabo en la instalación de donación y/o en la instalación de procesamiento de leche. Los resultados de las pruebas de las muestras de referencia se pueden almacenar y comparar frente a cualquier donación futura de la misma donante.
Cribado de contaminantes
Después, la leche se prueba en busca de patógenos. La leche se puede cribar genéticamente, por ejemplo, mediante reacción en cadena de la polimerasa (PCR), para identificar, por ejemplo, virus, tales como VIH-1, VHB y VHC. También se puede usar un panel de microorganismos que criba varias especies bacterianas, hongos y mohos mediante el cultivo
para detectar contaminantes. Por ejemplo, un panel de microorganismos se puede probar en busca del recuento aeróbico, Bacillius cereus, Escherichia coli, Salmonella, Pseudomonas, coliformes, Staphylococcus aureus, levadura y moho. En particular, B. cereus es una bacteria patógena que no se puede eliminar a través de pasteurización. El cribado de patógenos se puede realizar tanto antes como después de la pasteurización.
Además de que se criba en busca de patógenos, la leche de la donante también se puede probar en busca de drogas de abuso (por ejemplo, cocaína, opiáceos, opioides sintéticos (por ejemplo, oxicodona/oximorfona) metanfetaminas, benzodiazepinas, anfetaminas, y THC) y/o adulterantes tales como proteínas no humanas. Por ejemplo, un ELISA se puede usar para probar la leche en busca de una proteína no humana, tal como proteínas bovinas, para asegurar, por ejemplo, que leche de vaca o la fórmula infantil de leche de vaca no se ha añadido a la leche humana, por ejemplo para aumentar volumen de donaciones cuando las donantes se compensan por las donaciones.
Procesamiento de la leche humana
Una vez que se ha cribado la leche humana, se procesa para producir un producto rico en grasas, por ejemplo, una composición de nata humana. La instalación de donación y la instalación de procesamiento de leche pueden ser la misma instalación o una diferente. El procesamiento de leche se puede llevar a cabo con grandes volúmenes de leche humana, por ejemplo, de aproximadamente 75 litros/lote a aproximadamente 2000 litros/lote de material de partida.
Los métodos para obtener composiciones que incluyen lípidos de leche humana para proporcionar nutrición a los pacientes se describen en la solicitud PCT PCT/US07/86973 que se presentó el 10 de diciembre de 2007 (documento WO 2008/073888).
Después de analizar cuidadosamente la leche humana tanto con propósitos de identificación como para evitar la contaminación como se describe anteriormente, después la leche se somete a filtración, por ejemplo, a través de un filtro de aproximadamente 200 micrones, y tratamiento térmico. Por ejemplo, la composición se puede tratar a aproximadamente 63 °C o superior por aproximadamente 30 minutos o más. A continuación, la leche se transfiere a un separador, por ejemplo, una centrífuga, para separar la nata (es decir, la porción de grasa) de la desnatada. El desnatado se puede transferir a un segundo tanque de procesamiento donde permanece de aproximadamente 2 a 8 °C hasta una etapa de filtración. Opcionalmente, la nata que se separa del desnatado, se puede volver a someter a la separación para eliminar más desnatado.
Seguido de la separación de la nata y el desnatado, la porción desnatada se somete a una filtración adicional, por ejemplo, ultrafiltración. Este proceso concentra los nutrientes en la leche desnatada mediante la filtración del agua. El agua que se obtiene durante la concentración se denomina como permeada. La porción desnatada resultante se puede procesar adicionalmente para producir fortificantes de leche humana y/o formulaciones de leche humana que se estandarizan.
Procesamiento de leche humana para obtener fortificantes de leche humana (por ejemplo, Fortificantes de leche humana PROLACTPLUS™, por ejemplo, PROLACT+4™, PROLACT+6™, PROLACT+8™ y/o PROLACT+10™, que se producen de leche humana y contienen varias concentraciones de componentes nutricionales) y las composiciones de los fortificantes se describen en la Solicitud de Patente de los Estados Unidos con Número de serie 11/947,580, presentó el 29 de noviembre de 2007, (documento U.S. 2008/0124430). Estos fortificantes se pueden añadir a la leche de una madre lactante para potenciar el contenido nutricional de la leche, por ejemplo, para un lactante pretérmino.
Los métodos para obtener formulaciones de leche humana que se estandarizan (que se ejemplifican por PROLACT20™, NEO20™ y/o PROLACT24) y las formulaciones en sí mismas también se discuten en la Solicitud de Patente de los Estados Unidos con Número de serie 11/947,580, presentó el 29 de noviembre de 2007, (documento U.S. 2008/0124430). Estas formulaciones de leche humana que se estandarizan se pueden usar para alimentar, por ejemplo, lactantes pretérmino. Proporcionan una formulación nutricional que se deriva de humanos y pueden sustituir a la leche de la madre.
Formulación de composiciones de nata humana
Una vez que la porción de nata se ha separado de la porción desnatada, se mide el contenido calórico de la porción de nata. En una modalidad preferida, si el contenido calórico o el porcentaje de grasa de la porción de nata está por encima del nivel que se desea, se puede añadir un volumen del permeado de la ultrafiltración de la porción desnatada a la porción de nata, que proporciona de esta manera una composición de nata humana que se formula que tiene el contenido calórico que se desea. Alternativamente, en otra modalidad preferida, se puede añadir agua desionizada a la porción de nata con el fin de proporcionar la composición de nata humana que se formula. El contenido calórico que se desea es de 2,5 kcal/mL, y el porcentaje de grasa que se desea es de aproximadamente un 25 % de lípidos.
Envase y pasteurización
Después de añadir opcionalmente agua permeada o desionizada a la nata, la composición de nata se somete a pasteurización. Por ejemplo, la composición se puede colocar en un tanque de proceso que se conecta al pasteurizador de alta temperatura, de corto tiempo (HTST) mediante un tubo Silastic curado con platino. Después de la pasteurización, la composición de nata se puede recolectar en un segundo tanque de proceso y enfriar. Se pueden usar otros métodos
de pasteurización conocidos en la técnica. Por ejemplo, en la pasteurización en cubeta, la composición de nata en el tanque se calienta a un mínimo de 63 °C y se mantiene a esa temperatura por un mínimo de treinta minutos. El aire por encima de la composición de nata se calienta con vapor a al menos tres grados Celsius por encima de la temperatura de la composición de nata. En una modalidad, la temperatura del producto es aproximadamente 66 °C o superior, la temperatura del aire por encima del producto es aproximadamente 69 °C o superior, y el producto se pasteuriza por aproximadamente 30 minutos o más. En otra modalidad, se realizan tanto la pasteurización HTST como en cubeta.
La composición de nata pasteurizada generalmente se procesa asépticamente. Después de enfriar de a aproximadamente 2 a 8 °C, el producto se carga en recipientes de los volúmenes que se desean y se toman varias muestras de la composición de nata para análisis nutricional y de carga biológica. El análisis nutricional asegura el contenido apropiado de calorías y grasas de la composición de nata. Para cada recipiente se genera una etiqueta que refleja el análisis nutricional. Las pruebas de análisis de carga biológica en busca de la presencia de contaminantes, por ejemplo, el conteo aeróbico total, B. cereus, E. coli, Coliforme, Pseudomonas, Salmonella, Staphylococcus, levadura y/o moho. Las pruebas de carga biológica pueden ser pruebas genéticas. El producto se empaqueta y se envía una vez que se completa el análisis y se obtienen los resultados que se desean.
La composición de nata humana resultante comprende 2,5 kcal/mL y 25 % de grasa.
Uso de composiciones de nata humana
Las composiciones de nata humana que se describen en la presente descripción se pueden usar como nutrición suplementaria. En consecuencia, las composiciones de nata humana que se describen en la presente descripción se pueden administrar por vía enteral u oral (por ejemplo, alimentación con biberón). El uso de lípidos humanos para la nutrición parenteral, una práctica de alimentación intravenosa (por ejemplo, nutrición parenteral total), para un paciente que necesita el mismo se describe en la solicitud PCT PCT/US07/86973 que se presentó el 10 de diciembre de 2007 (documento WO 2008/073888).
Las composiciones de nata humana que se describen son particularmente útiles para suplementar la leche humana para lactantes, especialmente lactantes de BPN, con el fin de elevar el contenido calórico de leche humana a un nivel que se desea. La leche humana a menudo se administra por vía enteral a los lactantes pretérmino en la UCIN. La nutrición enteral es una práctica de alimentación por sonda, por ejemplo, nasogástrica, transpilórica, y percutánea. La leche humana (por ejemplo, de la madre o de la donante) a menudo no alcanza los requisitos calóricos de un lactante de BPN (Wocjik y otros JAm Diet Assoc, 109:137-140, 2009). Por lo tanto, la composición de nata humana de la invención actual se puede añadir a la leche humana, que aumenta de esta manera el contenido calórico mientras que también mantiene la dieta de leche enteramente humana del lactante y evita las complicaciones que se asocian con la NPT. En una modalidad, la nutrición enteral que comprende la composición de nata humana es para un lactante pretérmino o de BPN.
También se describe en la presente descripción un método para aumentar el contenido calórico de leche humana a un nivel de contenido calórico que se desea. El método comprende las etapas de obtener una muestra de leche humana (por ejemplo, de la propia madre o de la donante o de la mezcla de leche que se deriva de la madre y/o de las donantes), medir el contenido calórico de leche humana, determinar el volumen de la composición de una nata de leche humana necesaria para elevar el contenido calórico de leche humana al nivel de contenido calórico que se desea, y añadir el volumen de la composición de nata de leche humana al recipiente de leche humana. Por ejemplo, el contenido calórico que se desea es 67,6 kcal/100 mL (20 kcal/oz) o más. En otro ejemplo, el objetivo de calorías que se desea es 81,2 kcal/100 mL (24 kcal/oz) o más. En otro ejemplo, el objetivo de calorías que se desea es 87,9 kcal/100 mL (26 kcal/oz) o más. La composición de nata de leche humana que se usa para aumentar el contenido calórico de leche humana comprende 2,5 kcal/mL y 25 % de grasa.
En algunos casos, puede ser conveniente reducir la cantidad de leche humana a la que se añade la composición de nata humana con el fin de mantener el mismo volumen total que se administra o se alimenta al lactante. Por ejemplo, se puede eliminar un volumen igual de leche humana antes de la adición de la composición de nata.
EJEMPLOS
Los siguientes ejemplos pretenden ilustrar pero no limitar la descripción.
Ejemplo 1
Producto de nata de leche humana que se estandariza
Con el fin de proporcionar un suplemento nutricional que pueda añadir las cantidades que se desean de calorías a la leche de la propia madre o de la donante sin añadir una cantidad significativa de volumen, se produjo una composición de nata humana que se puede suministrar por vía enteral, que evita de esta manera los efectos negativos que se asocian con la NPT. La leche humana de donantes que se cribaron previamente y se aprobaron se mezcló para generar una mezcla de leche de donantes. En un ambiente de sala limpia, la mezcla de leche de las donantes se probó adicionalmente en busca de patógenos específicos y proteínas bovinas. Específicamente, se usó la prueba de PCR para cribar la
presencia de VIH-1, VHB, y VHC en la leche. También se realizó un panel microbiológico que prueba, por ejemplo, el recuento aeróbico, Bacillius cereus, Escherichia coli, Salmonella, Pseudomonas, coliformes, Staphylococcus aureus, levadura y moho.
La mezcla de leche de donantes se ultracentrifugó para generar una porción de nata y una porción de leche desnatada. La porción de nata se formuló después para alcanzar las especificaciones específicas de grasas y calorías mediante la adición de una cantidad de agua ultrafiltrada de la porción desnatada, el permeado de ultrafiltración de leche humana desnatada. Específicamente, la porción de nata se estandarizó al 25 % de lípidos y contenía aproximadamente 2,5 kcal/mL.
La composición de nata que se estandariza se pasteurizó después siguiendo las pautas que se establecen por la Ordenanza de Leche Pasteurizada de la FDA. Seguido de la pasteurización, la composición de nata que se estandariza se carga después en biberones de polietileno de alta densidad y se congela. Los biberones se pesaron para asegurar que el volumen que se desea se cargó en el biberón. La composición de nata en el biberón se puso después en cuarentena hasta que se revisaron todos los datos del panel microbiológico y se realizó un análisis nutricional completo.
La composición de nata en el biberón se etiquetó con una fecha de caducidad específica del lote y un número de lote del producto. El producto de nata se envió después congelado al destino, por ejemplo, un hospital, en una nevera aislada que se empaqueta con hielo seco.
Ejemplo 2
Administración enteral de productos de nata de leche humana a lactantes de MBPN
Con el fin de evaluar el efecto a corto plazo del uso de una composición de nata humana, Prolact CR™, para suplementar la leche humana de bajo contenido calórico para neonatos de muy bajo peso al nacer (MBPN), la leche humana que comprende menos de 67,6 kcal/100 mL (20 kcal/oz) se suplementó con la nata humana además de un fortificante de leche humana (Prolact H2MF®) (es decir, el grupo de leche que se ajusta a la nata o el grupo de tratamiento) o con el fortificante de leche humana sin un suplemento de nata humana (es decir, el grupo de leche que no se ajusta o el grupo control).
Se asignaron al azar a setenta y ocho lactantes pretérmino ya sea en el grupo de suplemento de nata o en el grupo control que no recibió el suplemento de nata humana. Cada grupo de estudio usó el fortificante a base de leche humana Prolact H2MF® de acuerdo con el estándar de práctica. Típicamente, la fortificación comienza cuando el lactante recibe hasta aproximadamente 100 mL/kg/día de nutrición enteral. La leche para el grupo de prueba de nata se suplementó con la composición de nata humana después de que comenzara la fortificación y se determinó que se toleraba, usualmente un día después.
No se controlaron las cantidades reales de alimentación diaria durante el estudio, con la excepción de la composición de nata humana que se administró en una cantidad para alcanzar un nivel calórico de leche de la madre/leche de la donante de 67,6 kcal/100 mL (20 kcal/oz) donde fue necesario. El uso del fortificante, tanto en el momento de inicio como en el protocolo de etapas, se determinaron de acuerdo con el estándar local de atención.
Este estudio se diseñó para evaluar una hipótesis nula de resultados inferiores con respecto a la tasa de ganancia de peso entre los dos grupos de estudio mediante el uso de las siguientes fórmulas donde p es la tasa media de ganancia de peso en el grupo de estudio respectivo:
H0: pnata - pno nata < -3 g/kg/día y Ha: pnata - pno nata > -3 g/kg/día.
También se recolectaron datos sobre la tasa de cambio de la circunferencia de la cabeza y la longitud del cuerpo. Sin embargo, estos se probaron en base al paradigma de superioridad habitual. La tasa de ganancia de peso de cualquier lactante que no completó el período completo del estudio se calculó durante el período por el cual el lactante permaneció en el estudio.
Se siguió a los sujetos de estudio hasta el primero de los siguientes períodos: 36 semanas de edad gestacional corregida o que se retira de la fortificación, lo que ocurra primero; destitución; traslado de la institución médica; o muerte. La edad gestacional corregida se calculó como edad gestacional al nacer edad cronológica.
Los sujetos de estudio se seleccionaron en base a una serie de criterios de inclusión y exclusión. Todos los sujetos de estudio alcanzaron todos los criterios de inclusión y ninguno de los criterios de exclusión que se enumeran más abajo. Los cinco criterios de inclusión fueron los siguientes:
1. Peso al nacer entre 750 y 1250 g
2. Tener una expectativa razonable de supervivencia por la duración máxima del estudio (a través de 36 semanas de edad gestacional corregida o de que se retira de la fortificación, lo que ocurra primero)
3. Debe ser capaz de adherirse a un protocolo de alimentación que involucra leche de la propia madre/leche de la donante que incluirá la fortificación mediante el uso de Prolact H2MF® y, potencialmente, nata humana
4. La alimentación enteral debe comenzar antes del día 21 de vida
5. Consentimiento informado que se obtiene del padre o tutor legal.
Los ocho criterios de exclusión fueron los siguientes:
1. Menos de una expectativa razonable de supervivencia para la edad gestacional particular del lactante a través del período de estudio
2. Inscripción en cualquier otro estudio clínico que afecta el manejo nutricional durante el período de estudio
3. Decisión de no iniciar la alimentación enteral mínima antes del día 21 de vida
4. Incapaz de obtener el consentimiento informado del padre o tutor legal antes del inicio de la alimentación enteral 5. Presencia de enfermedades del corazón congénitas clínicamente significativas
6. Presencia de cualquier malformación congénita importante.
7. Potencial razonable para el traslado temprano a una institución que no es de estudio
8. Incapaz de participar por cualquier motivo en base a la decisión del investigador del estudio.
Después que se determinó la elegibilidad del lactante y se obtuvo el consentimiento informado del padre o tutor legal, los lactantes se asignaron al azar mediante el uso de un esquema en bloque estratificado (por sitio de estudio) ya sea en el grupo de prueba que recibió el suplemento de nata humana o en el grupo control que no lo recibió el suplemento de nata humana. El resto de la nutrición (por ejemplo, leche humana y Prolact H2MF®) se proporcionó de la misma manera y de acuerdo con la práctica estándar institucional para ambos grupos de estudio.
La asignación al azar se realizó en bloques de 4 sin el uso de variables de estratificación excepto para el sitio de estudio debido al pequeño tamaño del estudio. El tamaño del bloque se mantuvo ciego. Si bien cegar los grupos de estudio siempre es conveniente en los estudios que se asignan al azar, debido a la naturaleza de las intervenciones, por ejemplo, la necesidad de probar la leche humana en un solo grupo y los métodos por los cuales se preparó y suministró la nutrición, no fue posible para este estudio.
El número de lactantes que se incluye en este estudio se basó primero en el criterio de valoración principal de la tasa de ganancia de peso durante el período de inicio de la alimentación enteral a través de 36 semanas de edad gestacional corregida o cuando el lactante se retiró de la fortificación, lo que ocurriera primero. Un estudio de leche humana y Prolact H2MF® por Sullivan y otros (J Pediatrics, 156:562-567, 2010) demostró una desviación estándar de la ganancia de peso de 4 g/kg/día. El objetivo del ensayo fue mostrar una falta de inferioridad en la media de la ganancia de peso para el grupo de prueba de nata en comparación con el grupo control. La falta de inferioridad se ha definido como una diferencia de ganancia de peso de menos de 3 g/kg/día. Con un nivel de significación unilateral del 5 % y una potencia del 90 %, el estudio requirió 31 sujetos por grupo (62 en total) con el fin de demostrar la hipótesis de falta de inferioridad. Sin embargo, se anticipó que para algunos lactantes en el grupo de nata, su leche humana (por ejemplo, de la madre o de la donante) podría nunca caer más abajo de 67,6 kcal/100 mL (20 kcal/oz) en base a los datos de Wojcik y otros (J Am Diet Assoc, 109:137-140, 2009) que demostró que esto puede ocurrir hasta en un 25 % de las veces. Como resultado, el tamaño de la muestra para el grupo de prueba de nata aumentó en aproximadamente un 25 % en 39 sujetos, y el grupo control también aumentó para mantener el estudio en equilibrio. El tamaño total de la muestra resultante fue de 78 sujetos. El grupo de prueba de nata fue un grupo de intención de tratar (ITT) a pesar del hecho de que algunos de los infantes pueden no recibir el suplemento de nata.
Una vez que se inició la fortificación de leche humana y se estableció la tolerancia en base a la observación clínica, la leche humana se probó cada vez que se usó un nuevo recipiente de leche humana para preparar la alimentación. El contenido calórico de leche humana se midió mediante el uso de un dispositivo disponible comercialmente (el espectrómetro de infrarrojo cercano Unity SpectraStar) que se proporciona para este propósito. Cada vez que el contenido calórico de leche humana para un lactante en el grupo de prueba de nata cayó más abajo de 67,6 kcal/100 mL (20 kcal/oz), se determinó el volumen de la composición de nata humana necesario para acercar lo más posible el contenido calórico a 67,6 kcal/100 mL (20 kcal/oz). La cantidad a añadir se calculó al mL más cercano al redondear hacia abajo de 0,1-0,4 mL y redondear hacia arriba de 0,5-0,9 mL con el fin de evitar imprecisiones debido al dispositivo de medición de calorías que se usa en el área de preparación de nutrientes. Antes de añadir el volumen que se calculó de la composición de nata, se eliminó un volumen igual de leche humana del recipiente, que mantiene de esta manera el mismo volumen total. La leche humana que se ajusta en calorías, si se requiere, y el Prolact H2MF® posterior se proporcionaron después de acuerdo con la atención estándar institucional. A los lactantes que se asignaron al azar en el grupo control se les proporcionó leche humana y Prolact H2MF® de acuerdo con el estándar institucional de atención sin ningún uso del análisis de leche, como es típico para la gran mayoría de las unidades de cuidados intensivos neonatales.
El algoritmo nutricional se continuó hasta que el lactante alcanzó las 36 semanas de edad gestacional corregida o se le retiró el fortificante, lo que ocurriera primero, o se eliminó del estudio de cualquier otra manera (por ejemplo, debido al traslado a una institución que no es de estudio, eliminación del estudio, o muerte). Los resultados se enumeran más abajo en la tabla 1.
Se proporcionaron formularios de recolección de datos con el fin de capturar la información relevante que se indica más abajo. Como se indicó anteriormente, la medida principal de eficacia para este estudio fue la tasa de cambio de peso desde el inicio de la alimentación enteral a través las 36 semanas de edad gestacional corregida o del retiro del fortificante, lo que ocurriera primero. En base al paradigma ITT que se define anteriormente, se determinó la tasa de cambio de peso del período de tiempo en el estudio para cualquier sujeto que falló al completar el período de estudio por cualquier motivo. Con el fin de proporcionar una comparación válida entre los sujetos de estudio, la tasa de ganancia de peso se reportó
como g/kg/día. Cualquier sujeto que falló al completar el período de estudio se eliminó de cualquier cálculo con respecto a este criterio de valoración principal.
Al entrar al estudio, se registraron las siguientes variables: peso al nacer, edad gestacional, sexo, puntaje de Apgar a los 5 minutos, uso de ventilación mecánica, uso de esteroides prenatales o posnatales, y la edad en días a la que se inició la alimentación enteral. Además, se observó la presencia de cualquiera de las siguientes afecciones clínicas ya sea en el momento de entrar al estudio o que ocurrieron durante el curso del estudio: taquipnea transitoria del recién nacido (TTN), hemorragia intraventricular (HIV), y conducto arterioso persistente (CAP).
Se determinó el incremento de la circunferencia de la cabeza para el período de estudio y el incremento de longitud para el período de estudio. La longitud y la circunferencia de la cabeza se midieron semanalmente durante el período de estudio y se registraron como cm/semana. También se registró el uso de medicamentos que influyen en el crecimiento y el desarrollo, que incluyen los esteroides posnatales (por ejemplo, hidrocortisona y dexametasona), cafeína y otras preparaciones de metilxantina.
La cantidad diaria de toda la nutrición enteral se registró en unidades de mL. Esta cantidad se subdividió en los varios tipos de nutrición que se usaron, es decir, leche de la madre, leche de la donante, suplemento de nata, Prolact H2MF®, y cualquier otro soporte nutricional. En el caso de intolerancia a la alimentación o descontinuar la alimentación enteral y el lactante regresa a la nutrición parenteral total (NPT), se identificó la causa supuesta. Además, se registró el número total de días de NPT durante el período de estudio.
Aunque no es un enfoque de este estudio, se registraron ocurrencias de sepsis, enterocolitis necrotizante (ECN) y otros resultados de infecciones que se relacionan. Además, se recolectó y registró información demográfica y médica básica sobre cada sujeto. Estas variables incluyeron edad gestacional, peso al nacer (que incluye si el peso al nacer era apropiado para la edad gestacional (AGA) o pequeño para la edad gestacional (PEG) en base a los criterios estándar), sexo, y grupo racial.
Los resultados del estudio indicaron que los lactantes en el grupo de prueba de nata crecieron a un ritmo más rápido con respecto al peso, y la longitud cuando se compararon con el grupo control, lo que demuestra claramente la eficacia superior de los productos que se reivindican en comparación con los protocolos de alimentación actuales.
La Tabla 1 es un resumen de las velocidades de los parámetros de crecimiento que se definen durante el período de estudio para los 78 pacientes en el estudio. No hubo diferencias en las referencias demográficas excepto la raza (p=0,02). No hubo casos de ECN y no hubo diferencias en las tasas de sepsis entre los grupos de estudio. El límite inferior unilateral del 95 % del intervalo de confianza para la diferencia en la velocidad media (control de nata) en términos de g/kg/día fue 0,38. Esto estuvo muy por encima del valor de -3 que se indica como definición de falta de inferioridad.
Tabla 1
La Tabla 2 muestra las velocidades de crecimiento que se definen desde el nacimiento y desde el momento en que recupera el peso al nacer.
Claims (10)
1. Una composición de nata de leche humana para la administración enteral a un lactante que comprende nata pasteurizada que se deriva de leche humana, en donde la composición comprende 2,5 kcal/mL y 25 % de grasa.
2. La composición de nata de leche humana de la reivindicación 1, que comprende adicionalmente permeado de leche desnatada humana o agua desionizada.
3. Un método para elaborar una composición de nata de leche humana para la administración enteral a un lactante que comprende las etapas de:
(a) separar una mezcla de leche humana en una porción de nata y una porción de leche desnatada,
(b) formular la porción de nata para obtener una composición de nata que comprenda 2,5 kcal/mL y 25 % de grasa, y
(c) pasteurizar la composición de nata;
en donde la etapa (b) comprende medir el contenido calórico de la porción de nata, y si la porción de nata está por encima de 2,5 kcal/mL, añadir un volumen de permeado que se obtiene de la ultrafiltración de la porción de leche desnatada o agua desionizada a la porción de nata.
4. El método de la reivindicación 3, en donde la etapa de separación es mediante ultracentrifugación.
5. El método de la reivindicación 3, que comprende adicionalmente ultrafiltrar el agua de la porción de leche desnatada, para obtener de esta manera un permeado de leche humana desnatada.
6. El método de la reivindicación 3, que comprende adicionalmente una etapa de prueba de la mezcla de leche humana en busca de adulterantes, contaminantes, drogas y/o patógenos.
7. El método de la reivindicación 6, en donde la etapa de prueba comprende un análisis de PCR en busca de VIH, VHB y VHC.
8. El método de la reivindicación 6, en donde la etapa de prueba detecta proteína bovina.
9. El método de la reivindicación 6, en donde la etapa de prueba comprende probar una o más drogas seleccionadas de anfetaminas, benzodiazepinas, cocaína, metanfetaminas, opiáceos, THC y los principales metabolitos de los mismos.
10. El método de la reivindicación 3, en donde la mezcla de leche materna es de una o más donantes.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US201361779781P | 2013-03-13 | 2013-03-13 | |
PCT/US2014/020837 WO2014158911A1 (en) | 2013-03-13 | 2014-03-05 | High fat human milk products |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2843254T3 true ES2843254T3 (es) | 2021-07-16 |
Family
ID=51528165
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES14774486T Active ES2843254T3 (es) | 2013-03-13 | 2014-03-05 | Productos de leche humana rica en grasas |
Country Status (15)
Country | Link |
---|---|
US (3) | US11122813B2 (es) |
EP (2) | EP3821713A1 (es) |
JP (2) | JP6853665B2 (es) |
CN (2) | CN105246342A (es) |
AU (2) | AU2014241754B2 (es) |
BR (1) | BR112015022059B1 (es) |
CA (1) | CA2902990C (es) |
DK (1) | DK2967094T3 (es) |
ES (1) | ES2843254T3 (es) |
HK (1) | HK1220328A1 (es) |
IL (1) | IL240601B (es) |
MX (1) | MX2015012205A (es) |
PL (1) | PL2967094T3 (es) |
PT (1) | PT2967094T (es) |
WO (1) | WO2014158911A1 (es) |
Families Citing this family (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DK2967094T3 (da) | 2013-03-13 | 2021-01-18 | Prolacta Bioscience Inc | Humanmælkeprodukter med højt fedtindhold |
EP3240429A4 (en) * | 2014-12-30 | 2018-12-05 | Prolacta Bioscience, Inc. | Methods of preventing and treating bronchopulmonary dysplasia using high fat human milk products |
JP7356221B2 (ja) | 2015-12-30 | 2023-10-04 | プロラクタ バイオサイエンス,インコーポレイテッド | 術前及び術後のケアに有用なヒト乳製品 |
WO2021146561A1 (en) * | 2020-01-17 | 2021-07-22 | Prolacta Bioscience, Inc. | Feeding protocol for optimal growth of preterm infants |
AU2022211396A1 (en) * | 2021-01-22 | 2023-06-29 | Prolacta Bioscience, Inc. | Topical human milk formulations |
US20240180970A1 (en) | 2021-03-26 | 2024-06-06 | Prolacta Bioscience, Inc. | Methods of treatment for failure to thrive |
Family Cites Families (106)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US2567898A (en) | 1945-03-19 | 1951-09-11 | Separator Ab | Method of standardizing cream |
US3946113A (en) | 1972-08-21 | 1976-03-23 | Economics Laboratory, Inc. | Continuous separating and standardizing of milk |
SE380422B (sv) | 1974-03-07 | 1975-11-10 | Alfa Laval Ab | Foerfaringssaett foer separering av flytande mjoelkprodukter |
DE3040171C2 (de) | 1980-10-24 | 1986-05-22 | Max-Josef Dr.-Ing. Zürich Schönhuber | Datenregistriersystem zur Erfassung der Daten von bestimmten Gutmengen, insbesondere von Milchlieferungen |
US4362697A (en) | 1981-04-20 | 1982-12-07 | Miles Laboratories, Inc. | Homogeneous specific binding assay test device having copolymer enhancing substance |
JPS6133895U (ja) | 1984-07-31 | 1986-03-01 | 東レ株式会社 | 加熱ロ−ラ装置 |
SE451791B (sv) | 1984-09-11 | 1987-11-02 | Alfa Laval Food & Dairy Eng | Sett och anleggning for framstellning av mjolk med lag bakteriehalt |
US4772262A (en) | 1985-04-16 | 1988-09-20 | Natural Technologies, Inc. | Portable electric breast pump |
US4762822A (en) | 1985-08-08 | 1988-08-09 | Ettinger Anna C | Reduction of gastrointestinal disease-producing organisms with sialic acid and gangliosides |
US5310893A (en) | 1986-03-31 | 1994-05-10 | Hoffmann-La Roche Inc. | Method for HLA DP typing |
JPS6467141A (en) | 1987-09-08 | 1989-03-13 | Kougakushiya Kk | Method for removing various germs and somatic cell from cow's milk and apparatus therefor |
NZ228690A (en) | 1988-04-13 | 1991-10-25 | Snow Brand Milk Products Co Ltd | Continuous production of cheese curds from ultrafiltrated milk |
US6020015A (en) | 1988-09-22 | 2000-02-01 | Gaull; Gerald E. | Infant formula compositions and nutrition containing genetically engineered human milk proteins |
US5064674A (en) | 1989-01-13 | 1991-11-12 | Immunopath Profile, Inc. | Hypoallergenic milk products and process of making |
US5407957A (en) | 1990-02-13 | 1995-04-18 | Martek Corporation | Production of docosahexaenoic acid by dinoflagellates |
US5334822A (en) | 1990-05-21 | 1994-08-02 | Universal Computer Technologies Inc. | Method and system for inventoring a distributed plurality of items on a supply |
DE4018468A1 (de) | 1990-06-08 | 1991-12-12 | Ultrakust Electronic Gmbh | Verfahren und vorrichtung zur entnahme einer repraesentativen milchprobe |
US5972337A (en) | 1990-11-01 | 1999-10-26 | Cancer Research Fund Of Contra Costa | 46 kilodalton human milk fat globule (HMFG) antigen, fragments and fusion protein |
AU651228B2 (en) | 1991-05-31 | 1994-07-14 | Genentech Inc. | Treatment of HIV-associated immune thrombocytopenic purpura |
US5169766A (en) | 1991-06-14 | 1992-12-08 | Life Technologies, Inc. | Amplification of nucleic acid molecules |
FR2681312A1 (fr) | 1991-09-16 | 1993-03-19 | Francais Prod Ind Cfpi | Solution lubrifiante et desinfectante pour chaine transporteuse de recipients dans l'industrie agro-alimentaire et procede pour sa mise en óoeuvre. |
US5616483A (en) | 1992-06-11 | 1997-04-01 | Aktiebolaget Astra | Genomic DNA sequences encoding human BSSL/CEL |
US6056978A (en) | 1992-06-16 | 2000-05-02 | Stolle Milk Biologics, Inc. | Use of hyperimmune milk to prevent suppression of T-lymphocyte production |
US5256437A (en) | 1992-06-19 | 1993-10-26 | Pall Corporation | Product and process of making sterile milk through dynamic microfiltration |
WO1994009651A1 (en) | 1992-10-30 | 1994-05-11 | Cancer Research Fund Of Contra Costa | Anti-diarrheic product and method of treating rotavirus-associated infection |
JP3150504B2 (ja) | 1993-02-26 | 2001-03-26 | 雪印乳業株式会社 | 低乳糖乳製品およびその製造方法 |
DK169510B1 (da) | 1993-05-13 | 1994-11-14 | Apv Pasilac As | Anlæg og fremgangsmåde til behandling af mælk |
DE4326665C2 (de) | 1993-08-09 | 1995-07-13 | Biotest Pharma Gmbh | Verfahren zur Sterilfiltration von Milch |
US5340603A (en) | 1993-08-30 | 1994-08-23 | Abbott Laboratories | Nutritional product for human infants having chronic lung disease |
US5670196A (en) | 1995-04-12 | 1997-09-23 | Galagen Inc. | Method for microfiltration of milk or colostral whey |
US5707678A (en) | 1995-04-12 | 1998-01-13 | Galagen Inc. | Method for microfiltration of milk or colostral whey |
US5983198A (en) | 1996-04-23 | 1999-11-09 | Novus International, Inc. | Integrated system monitoring use of materials, controlling and monitoring delivery of materials and providing automated billing of delivered materials |
US5798266A (en) | 1996-08-27 | 1998-08-25 | K-Quay Enterprises, Llc | Methods and kits for obtaining and assaying mammary fluid samples for breast diseases, including cancer |
US6194009B1 (en) | 1996-11-22 | 2001-02-27 | Princeton Nutrition, Llc | Refrigeration-shelf-stable ultra-pasteurized or pasteurized infant formula |
SE519853E (sv) | 1997-06-19 | 2005-03-29 | Tetra Laval Holdings & Finance | Metod för framställning av steril skummjölk |
US6652900B2 (en) | 1997-03-14 | 2003-11-25 | Tetra Laval Holdings & Finance S.A. | Method and plant for producing a sterile milk product |
US6017511A (en) | 1997-05-30 | 2000-01-25 | Resolution Pharmaceuticals Inc. | Glycopeptide-chelator conjugates |
GB9713597D0 (en) | 1997-06-28 | 1997-09-03 | Sec Dep Of The Home Department | Improvements in and relating to forensic identification |
US6846298B1 (en) | 1997-07-25 | 2005-01-25 | Bristol-Myers Squibb Company | Blood product delivery system |
US6004288A (en) | 1998-11-24 | 1999-12-21 | Hochstedler; Judy R. | Breast pump |
NL1010829C2 (nl) | 1998-12-16 | 2000-06-19 | Prolion Bv | Inrichting en werkwijze voor het melken van dieren en een vervuilingsmeter. |
PT951842E (pt) | 1999-01-20 | 2003-04-30 | Nutricia Nv | Formula de alimento adaptada para bebe |
US6517513B1 (en) | 1999-01-21 | 2003-02-11 | Neomatrix, Llc | Intraductal breast fluid aspiration device |
US20010049096A1 (en) | 1999-03-23 | 2001-12-06 | Stephen J. Brown | Sample identification with analyte determination |
US6294206B1 (en) | 1999-04-09 | 2001-09-25 | Abbott Laboratories | Powdered human milk fortifier |
FI110752B (fi) | 1999-05-25 | 2003-03-31 | Novatreat Oy | Menetelmä ternimaidon käsittelemiseksi |
DK174656B1 (da) | 1999-06-04 | 2003-08-11 | Apv Pasilac As | Fremgangsmåde og anlæg til behandling af mælk |
US6183803B1 (en) | 1999-06-11 | 2001-02-06 | Biosante Pharmaceuticals, Inc. | Method for processing milk |
US6780987B1 (en) | 1999-12-10 | 2004-08-24 | Trustees Of The Tufts College | β-cap73 control of normal and abnormal cell migration |
US20020155445A1 (en) | 1999-12-16 | 2002-10-24 | Jarvik Jonathan W. | Methods and products for peptide based DNA sequence identification and analysis |
US6670124B1 (en) | 1999-12-20 | 2003-12-30 | Stemcyte, Inc. | High throughput methods of HLA typing |
US7072769B2 (en) | 2000-03-01 | 2006-07-04 | Gambro, Inc. | Extracorporeal blood processing information management system |
US6737096B2 (en) | 2000-03-29 | 2004-05-18 | Tetra Laval Holdings & Finance S.A. | Method and apparatus for producing a sterile milk product |
JP2002068998A (ja) | 2000-08-29 | 2002-03-08 | Meiji Milk Prod Co Ltd | 経腸栄養および静脈栄養に伴う脂肪肝発生予防組成物 |
US20040047856A1 (en) | 2000-11-15 | 2004-03-11 | Williams Charles Edward | Colorstrum-based composition |
US20030152942A1 (en) | 2001-05-09 | 2003-08-14 | Lance Fors | Nucleic acid detection in pooled samples |
US20070098863A1 (en) | 2005-09-23 | 2007-05-03 | Prolacta Bioscience, Inc. | Method for collecting, testing and distributing milk |
US20020182243A1 (en) | 2001-05-14 | 2002-12-05 | Medo Elena Maria | Method of producing nutritional products from human milk tissue and compositions thereof |
US20070203802A1 (en) | 2005-09-23 | 2007-08-30 | Prolacta Bioscience, Inc. | Method for collecting, testing and distributing milk |
US20100268658A1 (en) | 2001-05-14 | 2010-10-21 | Prolacta Bioscience | Method for collecting, testing and distributing milk |
US6866994B2 (en) | 2001-05-30 | 2005-03-15 | Neomatrix, Llc | Noninvasive intraductal fluid diagnostic screen |
US20030093171A1 (en) | 2001-07-19 | 2003-05-15 | Creative Edge Design Group, Ltd. | Flexible label printing assembly |
US6875459B2 (en) | 2001-09-10 | 2005-04-05 | Henry B. Kopf | Method and apparatus for separation of milk, colostrum, and whey |
FI115752B (fi) | 2002-05-14 | 2005-07-15 | Valio Oy | Menetelmä käytettäväksi vähälaktoosisen tai laktoosittoman maitotuotteen valmistamiseksi |
US6910594B2 (en) | 2002-11-19 | 2005-06-28 | The First Years Inc. | Method and apparatus for storing milk |
US7867541B2 (en) | 2003-04-14 | 2011-01-11 | Mead Johnson Nutrition Company | Compositions and methods of formulation for enteral formulas containing sialic acid |
US7951410B2 (en) | 2003-04-14 | 2011-05-31 | Mead Johnson Nutrition Company | Enteral compositions containing caseinoglycomacropeptide having an enhanced concentration of sialic acid |
CN1863463B (zh) | 2003-06-23 | 2011-05-04 | 雀巢技术公司 | 用于促进肠道屏障成熟的营养组合物 |
CA2530170A1 (en) | 2003-06-24 | 2005-01-06 | University Of Kansas Medical Center | Infant formula |
NZ527434A (en) | 2003-08-07 | 2006-03-31 | Fonterra Co Operative Group | Production of protein composition from a dairy stream and its use as an ingredient in the manufacture of a cheese |
JP2008500271A (ja) | 2003-10-14 | 2008-01-10 | ザ・プロウボウスト・フェロウズ・アンド・スカラーズ・オブ・ザ・カレッジ・オブ・ザ・ホリー・アンド・アンデバイデッド・トリニティ・オブ・クイーン・エリザベス・ニア・ダブリン | 免疫介在性疾患の治療および/または予防におけるアデニル酸シクラーゼ |
WO2005051088A2 (en) | 2003-11-12 | 2005-06-09 | Abbott Laboratories | Iron-containing human milk fortifier with improved antimicrobial properties |
CA2557927A1 (en) | 2004-03-04 | 2005-09-15 | Htl High-Tech Lipids Ltd. | Structured triglycerides and emulsions comprising same |
US20050214358A1 (en) | 2004-03-23 | 2005-09-29 | Riken | Composition for promoting development of nervous system |
JP2008512398A (ja) | 2004-09-10 | 2008-04-24 | メデラ ホールディング アーゲー | 人乳強化剤とその製法 |
EP1637043A1 (en) | 2004-09-17 | 2006-03-22 | Medela Holding AG | Human milk fortifiers and methods for their production |
WO2006026879A1 (en) | 2004-09-10 | 2006-03-16 | Medela Holding Ag | Method for analysing and treating human milk and system therefore |
US20060115558A1 (en) | 2004-11-30 | 2006-06-01 | Jean-Claude Lamothe | Method of production and control of animal derived food products and derivatives thereof |
CA2537452C (en) | 2005-03-09 | 2013-12-24 | Abbott Laboratories | Concentrated human milk fortifier liquid |
US20060233915A1 (en) | 2005-04-15 | 2006-10-19 | Bristol-Myers Squibb Company | Liquid nutritional product to supplement human milk |
CN101212911B (zh) | 2005-07-01 | 2012-12-05 | 努特里希亚公司 | 含水解的蛋白质的婴儿营养品 |
WO2007035870A2 (en) | 2005-09-20 | 2007-03-29 | Prolacta Bioscience, Inc. | A method for testing milk |
WO2008027572A1 (en) | 2006-08-30 | 2008-03-06 | Prolacta Bioscience | Methods of obtaining sterile milk and compositions thereof |
CA2706722C (en) | 2006-11-29 | 2016-01-12 | Prolacta Bioscience, Inc. | Human milk compositions and methods of making and using same |
ES2588527T3 (es) * | 2006-12-08 | 2016-11-03 | Prolacta Bioscience, Inc. | Composiciones de lípidos humanos y procedimientos de preparación y utilización de los mismos |
WO2008119163A1 (en) | 2007-03-29 | 2008-10-09 | The Hospital For Sick Children | Multi-nutrient milk fortifier |
US20080254165A1 (en) | 2007-04-12 | 2008-10-16 | Rashid Patel | Novel manufacturing process for milk acid |
US20090181848A1 (en) | 2007-07-06 | 2009-07-16 | Ep Minerals, Llc | Crystalline silica-free diatomaceous earth blended filter aids and methods of manufacturing the same |
AU2008309140B9 (en) * | 2007-10-09 | 2013-07-04 | Frutarom Limited | Lipid compositions for the treatment of gastro-intestinal disorders and the promotion of intestinal development and maturation |
CA2706636A1 (en) | 2007-11-26 | 2009-06-04 | Nestec S.A. | Age-tailored nutrition system for infants |
US20100069716A1 (en) | 2008-09-12 | 2010-03-18 | Yem Chin | Flexible guide conduit |
JP2010126495A (ja) | 2008-11-28 | 2010-06-10 | Morinaga Milk Ind Co Ltd | 母乳添加用粉末 |
CA2745099C (en) | 2008-12-02 | 2017-11-07 | Prolacta Bioscience, Inc. | Human milk permeate compositions and methods of making and using same |
WO2010134800A1 (en) * | 2009-05-19 | 2010-11-25 | N.V. Nutricia | Human milk fortifier with high protein and long chain poly unsaturated fatty acids for improving body adipose tissue distribution |
WO2011144221A1 (en) | 2010-05-18 | 2011-11-24 | N.V. Nutricia | Preterm milk formula |
WO2012030764A2 (en) | 2010-08-30 | 2012-03-08 | Neolac, Inc. | Human milk preparation |
EP3335576A1 (en) | 2010-12-31 | 2018-06-20 | Abbott Laboratories | Human milk oligosaccharides to promote growth of beneficial bacteria |
US8563611B2 (en) | 2011-03-17 | 2013-10-22 | Women's & Children's Health Research Institute | Methods and compositions for promoting the respiratory development of an infant |
EP2739157B1 (en) | 2011-08-03 | 2017-10-04 | Prolacta Bioscience, Inc. | Microfiltration of human milk to reduce bacterial contamination |
CN102511557B (zh) | 2011-12-29 | 2015-06-17 | 内蒙古伊利实业集团股份有限公司 | 一种适用于初生到6个月的液态婴儿奶及其生产方法 |
WO2014158907A1 (en) | 2013-03-13 | 2014-10-02 | Prolacta Bioscience | Adulteration testing of human milk |
DK2967094T3 (da) | 2013-03-13 | 2021-01-18 | Prolacta Bioscience Inc | Humanmælkeprodukter med højt fedtindhold |
EP3240429A4 (en) | 2014-12-30 | 2018-12-05 | Prolacta Bioscience, Inc. | Methods of preventing and treating bronchopulmonary dysplasia using high fat human milk products |
CA2981965A1 (en) | 2015-04-15 | 2016-10-20 | Prolacta Bioscience, Inc. | Human milk compositions and methods of making and using same |
JP7356221B2 (ja) | 2015-12-30 | 2023-10-04 | プロラクタ バイオサイエンス,インコーポレイテッド | 術前及び術後のケアに有用なヒト乳製品 |
US20210106626A1 (en) | 2018-09-13 | 2021-04-15 | Original Biological Technology Co., Ltd. | Nutrition formula milk powder for infants after congenital heart disease surgery or non-cardiac surgery and other critically illinfants in intensive care, and method of using the same |
-
2014
- 2014-03-05 DK DK14774486.6T patent/DK2967094T3/da active
- 2014-03-05 EP EP20216091.7A patent/EP3821713A1/en active Pending
- 2014-03-05 WO PCT/US2014/020837 patent/WO2014158911A1/en active Application Filing
- 2014-03-05 US US14/198,432 patent/US11122813B2/en active Active
- 2014-03-05 JP JP2016500678A patent/JP6853665B2/ja active Active
- 2014-03-05 AU AU2014241754A patent/AU2014241754B2/en active Active
- 2014-03-05 PT PT147744866T patent/PT2967094T/pt unknown
- 2014-03-05 CN CN201480025425.6A patent/CN105246342A/zh active Pending
- 2014-03-05 BR BR112015022059-2A patent/BR112015022059B1/pt active IP Right Grant
- 2014-03-05 PL PL14774486T patent/PL2967094T3/pl unknown
- 2014-03-05 CA CA2902990A patent/CA2902990C/en active Active
- 2014-03-05 CN CN202210553069.1A patent/CN114794241A/zh active Pending
- 2014-03-05 ES ES14774486T patent/ES2843254T3/es active Active
- 2014-03-05 MX MX2015012205A patent/MX2015012205A/es unknown
- 2014-03-05 EP EP14774486.6A patent/EP2967094B1/en active Active
-
2015
- 2015-08-17 IL IL240601A patent/IL240601B/en active IP Right Grant
-
2016
- 2016-07-19 HK HK16108581.0A patent/HK1220328A1/zh unknown
-
2018
- 2018-02-28 AU AU2018201444A patent/AU2018201444B2/en active Active
-
2019
- 2019-05-15 US US16/412,699 patent/US11419342B2/en active Active
- 2019-09-25 JP JP2019174723A patent/JP2020043854A/ja active Pending
-
2022
- 2022-07-13 US US17/863,999 patent/US20220346398A1/en active Pending
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP2016512027A (ja) | 2016-04-25 |
EP2967094B1 (en) | 2020-12-30 |
US20220346398A1 (en) | 2022-11-03 |
US20140272027A1 (en) | 2014-09-18 |
US11419342B2 (en) | 2022-08-23 |
DK2967094T3 (da) | 2021-01-18 |
CA2902990C (en) | 2021-11-16 |
WO2014158911A1 (en) | 2014-10-02 |
MX2015012205A (es) | 2016-05-26 |
PL2967094T3 (pl) | 2021-04-19 |
BR112015022059B1 (pt) | 2021-06-08 |
AU2018201444B2 (en) | 2019-12-05 |
IL240601B (en) | 2018-02-28 |
AU2014241754A1 (en) | 2015-09-03 |
CN105246342A (zh) | 2016-01-13 |
AU2014241754B2 (en) | 2017-11-30 |
CA2902990A1 (en) | 2014-10-02 |
US20190327993A1 (en) | 2019-10-31 |
EP2967094A4 (en) | 2017-01-11 |
EP3821713A1 (en) | 2021-05-19 |
AU2018201444A1 (en) | 2018-03-22 |
PT2967094T (pt) | 2021-01-14 |
HK1220328A1 (zh) | 2017-05-05 |
CN114794241A (zh) | 2022-07-29 |
IL240601A0 (en) | 2015-09-24 |
EP2967094A1 (en) | 2016-01-20 |
BR112015022059A2 (pt) | 2020-02-27 |
JP6853665B2 (ja) | 2021-03-31 |
JP2020043854A (ja) | 2020-03-26 |
US11122813B2 (en) | 2021-09-21 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2843254T3 (es) | Productos de leche humana rica en grasas | |
US20210161164A1 (en) | Human milk compositions and methods of making and using same | |
US20190327994A1 (en) | Methods for obtaining sterile milk and compositions thereof | |
AU2015374053B2 (en) | Methods of preventing and treating bronchopulmonary dysplasia using high fat human milk products | |
ES2655019T3 (es) | Microfiltración de leche humana para reducir la contaminación bacteriana | |
AU2016249380B2 (en) | Human milk compositions and methods of making and using same | |
WO2012030764A2 (en) | Human milk preparation | |
AU2022245327A1 (en) | Methods of treatment for failure to thrive |