ES2494190T3 - Anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para reducir el riesgo de mortalidad en un paciente que padece una enfermedad crónica o aguda o un estado agudo - Google Patents

Anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para reducir el riesgo de mortalidad en un paciente que padece una enfermedad crónica o aguda o un estado agudo Download PDF

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Abstract

Anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho paciente en el que dicho anticuerpo o fragmento se une a la parte del terminal N, aminoácidos 1-21, de adrenomedulina: YRQSMNNFQGLRSFGCRFGTC; SEC. ID. nº 23.

Description

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DESCRIPCIÓN
Anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para reducir el riesgo de mortalidad en un paciente que padece una enfermedad crónica o aguda o un estado agudo.
Campo de la invención
El objeto de la presente exposición es un anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo antiadrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para su utilización en el tratamiento o prevención de una enfermedad crónica o aguda grave o de un estado agudo de un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho paciente.
Antecedentes
El péptido adrenomedulina (ADM) se describió por primera vez en 1993 (Kitamura, K., et al., "Adrenomedullin: A Novel Hypotensive Peptide Isolated From Human Pheochromocytoma", Biochemical and Biophysical Research Communications, vol. 192 (2), págs. 553-560 (1993)) como nuevo péptido hipotensor que comprende 52 aminoácidos, que había sido aislado a partir de un feocromocitoma humano; SEC. ID. nº 21. En el mismo año, se describieron también el ADNc que codifica un péptido precursor que comprende 185 aminoácidos y la secuencia de aminoácidos completa de este péptido precursor. El péptido precursor, que comprende, entre otras cosas, una secuencia señal de 21 aminoácidos en el extremo del terminal en N, es conocido como "preproadrenomedulina" (pre-proADM). En la presente descripción, todas las posiciones de los aminoácidos especificados por lo general se refieren a la pre-proADM que comprende los 185 aminoácidos. El péptido adrenomedulina (ADM) es un péptido que comprende 52 aminoácidos (SEC. ID. nº 21) y que comprende los aminoácidos 95 a 146 de la pre-proADM, de la que se forma por escisión proteolítica. Hasta la fecha, sustancialmente sólo unos pocos fragmentos de los fragmentos peptídicos formados en la escisión de la pre-proADM se han investigado más exactamente, en particular, la péptidos fisiológicamente activos adrenomedulina (ADM) y "PAMP", un péptido que comprende 20 aminoácidos (22-41) que sigue a los 21 aminoácidos del péptido señal en la pre-proADM. El descubrimiento y caracterización de ADM en 1993 desencadenó intensa actividad de investigación, cuyos resultados se han resumido en diversos artículos de revistas, en el contexto de la presente descripción, haciendo referencia en particular a los artículos que se encuentran en un número de "Peptides "dedicado a ADM en particular (Editorial, Takahashi, K., "Adrenomedullin: from a pheochromocytoma to the eyes", Peptides, vol. 22, pág. 1691 (2001)) y (Eto, T., "A review of the biological properties and clinical implications of adrenomedullin and proadrenomedullin N-terminal 20 peptide (PAMP), hypotensive and vasodilating peptides", Peptides, vol. 22, págs. 1693-1711 (2001)). Una nueva reseña es (Hinson, et al., "Adrenomedullin, a Multifunctional Regulatory Peptide", Endocrine Reviews, vol. 21(2), págs. 138-167 (2000)). En las investigaciones científicas hasta la fecha, se ha descubierto, entre otras cosas, que ADM puede considerarse como un péptido regulador polifuncional. Se libera en la circulación en una forma inactiva extendida por la glicina (Kitamura, K., et al., "The intermediate form of glycine-extended adrenomedullin is the major circulating molecular form in human plasma", Biochem. Biophys. Res. Commun., vol. 244 (2), págs. 551-555 (1998). Sólo resumen). Existe también una proteína de unión (Pio, R., et al., "Complement Factor H is a Serum-binding Protein for adrenomedullin, and the Resulting Complex Modulates the Bioactivities of Both Partners", The Journal of Biological Chemistry, vol. 276(15), págs. 12292-12300 (2001)) que es específico para ADM y probablemente del mismo modo modula el efecto de ADM. Esos efectos fisiológicos de ADM, así como de PAMP, que son de vital importancia en las investigaciones hasta la fecha eran los efectos que influyen en la presión arterial.
Por consiguiente, ADM es un vasodilatador eficaz, y por lo tanto es posible asociar el efecto hipotensor con los segmentos peptídicos específicos en la parte del terminal C de ADM. Además, se ha constatado que el péptido PAMP más fisiológicamente activo mencionado anteriormente formado a partir de pre-proADM presenta asimismo un efecto hipotensor, incluso si parece que tiene un mecanismo de acción diferente del de ADM (véase además de los artículos de la reseña antes citados (Eto, T., "A review of the biological properties and clinical implications of adrenomedullin and proadrenomedullin N-terminal 20 peptide (PAMP), hypotensive and vasodilating peptides", Peptides, vol. 22, págs. 1693-1711 (2001)) y (Hinson, et al., "Adrenomedullin, a Multifunctional Regulatory Peptide", Endocrine Reviews, vol. 21(2), págs. 138-167 (2000)) también (Kuwasako, K., et al., "Purification and characterization of PAMP-12 (PAMP-20) in porcine adrenal medulla as a major endogenous biologically active peptide ", FEBS Lett, vol. 414(1), págs. 105-110 (1997). Resumen solamente), (Kuwasaki, K., et al., "Increased plasma proadrenomedullin N-terminal 20 peptide in patients with essential hypertension", Ann. Clin. Biochem., vol. 36 (Pt. 5), págs. 622-628 (1999). Resumen solamente) o (Tsuruda, T., et al., "Secretion of proadrenomedullin N-terminal 20 peptide from cultured neonatal rat cardiac cells", Life Sci., vol. 69 (2), págs. 239-245 (2001). Resumen solamente) y el documento EP-A2 0 622 458). Además, se ha constatado que las concentraciones de ADM que se pueden medir en la circulación y otros líquidos biológicos son, en numerosos estados patológicos, significativamente superiores a las concentraciones que se encuentran en las personas de referencia sanas. Por lo tanto, la concentración de ADM en pacientes con insuficiencia cardíaca congestiva, infarto de miocardio, enfermedades renales, trastornos de hipertensión, diabetes mellitus, en la fase aguda de choque y en la septicemia y el choque septicémico aumentan significativamente, aunque en diferentes grados. Las concentraciones PAMP también aumentan en algunos de dichos estados patológicos, pero las concentraciones en el plasma son inferiores en relación con ADM ((Eto, T., "A review of the biological properties and clinical implications of adrenomedullin and
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proadrenomedullin N-terminal 20 peptide (PAMP), hypotensive and vasodilating peptides", Peptides, vol. 22, págs. 1693-1711 (2001)); página 1702). Se sabe además que raras veces se observan altas concentraciones de ADM en septicemia, y las mayores concentraciones en el choque septicémico (véase (Eto, T., "A review of the biological properties and clinical implications of adrenomedullin and proadrenomedullin N-terminal 20 peptide (PAMP), hypotensive and vasodilating peptides", Peptides, vol. 22, págs. 1693-1711 (2001)) e (Hirata, et al., "Increased Circulating Adrenomedullin, a Novel Vasodilatory Peptide, in Sepsis", Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, vol. 81(4), págs. 1449-1453 (1996.)), (Ehlenz, K., et al., "High levels of circulating adrenomedullin in severe illness: Correlation with C-reactive protein and evidence against the adrenal medulla as site of origin", Exp. Clin. Endocrinol. Diabetes, vol. 105, págs. 156-162 (1997)), (Tomoda, Y., et al., "Regulation of adrenomedullin secretion from cultured cells", Peptides, vol. 22, págs. 1783-1794 (2001)), (Ueda, S., et al., "Increased Plasma Levels of Adrenomedullin in Patients with Systemic Inflammatory Response Syndrome", Am. J. Respir. Crit. Care Med., Vol. 160, págs. 132-136 (1999)) y (Wang, P., "Adrenomedullin and cardiovascular responses in sepsis", Peptides, vol. 22, págs. 1835-1840 (2001))).
Es conocido en la técnica además un método para identificar inmunorreactividad de adrenomedulina en líquidos biológicos para diagnóstico y, en particular en el ámbito del diagnóstico de septicemia, diagnóstico cardíaco y diagnóstico de cáncer. Según la invención, el péptido parcial mediorregional de la proadrenomedulina, que contiene los aminoácidos (45-92) de la preproadrenomedulina, se mide, en particular, con un inmunoanálisis que funciona con por lo menos un anticuerpo marcado que reconoce específicamente una secuencia de la mid-proADM (documento WO 2004/090546).
El documento WO-A1 2004/097423 describe el empleo de un anticuerpo contra la adrenomedulina para el diagnóstico, el pronóstico y el tratamiento de trastornos cardiovasculares. Los tratamientos de enfermedades por bloqueo del receptor de ADM también se describen en la técnica, (por ejemplo, los documentos WO-A1 2006/027147, WO 2007/062676) dichas enfermedades pueden ser la septicemia, choque septicémico, enfermedades cardiovasculares, infecciones, enfermedades dermatológicas, enfermedades endocrinas, enfermedades metabólicas, enfermedades gastrointestinales, cáncer, inflamación, enfermedades hematológicas, enfermedades respiratorias, enfermedades del esqueleto muscular, enfermedades neurológicas o enfermedades urológicas.
Se ha expuesto el tratamiento de la septicemia en un modelo animal basado en la ligadura y punción cecal (CLP) mediante un anticuerpo neutralizante policlonal anti-adrenomedulina (ADM). Dicho anticuerpo invirtió alteraciones en el gasto cardíaco, el volumen sistólico, la circulación sanguínea microvascular (por ejemplo en los riñones) y por lo tanto impidió la respuesta hiperdinámica durante la septicemia (Wang P. et al., "The Pivotal role of adrenomedullin in producing hyperdynamic circulation during early stage of sepsis" ARCHIVES OF SURGERY, American Medical Association, Chicago, IL, USA., vol. 33, 1 de diciembre 1998 (01/12/1998), páginas 1298-1304, XP002599345)
Se ha publicado para la fase inicial de la septicemia que ADM mejora la función cardíaca y el suministro de sangre en el hígado, el bazo, los riñones y el intestino delgado. Los anticuerpos anti-ADM-neutralizantes neutralizan los efectos anteriormente mencionados durante la fase inicial de la septicemia (Wang, P., "Adrenomedullin and cardiovascular responses in sepsis", Peptides, vol. 22, págs. 1835-1840 (2001).
En la última fase de la septicemia, la fase hipodinámica de la septicemia, ADM constituye un factor de riesgo que está fuertemente asociado a la mortalidad de los pacientes en choque septicémico. (Schütz et al., "Circulating Precursor levels of endothelin-1 and adrenomedullin, two endothelium-derived, counteracting substances, in sepsis", Endothelium, 14:345-351, (2007)). Los procedimientos para el diagnóstico y tratamiento de pacientes en estado crítico, por ejemplo en las fases muy tardías de la septicemia, y el empleo de endotelina y de agonistas de endotelina con actividad vasoconstrictora para la preparación de medicamentos para el tratamiento de pacientes en estado crítico se han descrito en el documento WO-A1 2007/062676. Se describe además en el documento WO-A1 2007/062676 la utilización, en lugar de endotelina y/o agonistas de endotelina, o en combinación con los mismos, antagonistas de adrenomedulina, es decir, moléculas que impiden o atenúan la acción vasodilatadora de la adrenomedulina, por ejemplo, bloqueando sus receptores relevantes, o sustancias que impiden la unión de adrenomedulina a su receptor (por ejemplo aglutinantes específicos como por ejemplo, anticuerpos que se unen a la adrenomedulina y que bloquean sus puntos de uniones al receptor; "neutralización inmunológica"). Dicha utilización,
o utilización combinada, con la inclusión de una utilización por separado posterior o anterior, se ha descrito en determinados casos que es deseable por ejemplo para mejorar el éxito terapéutico, o para evitar el estrés fisiológico indeseable o efectos secundarios. Por lo tanto, se ha publicado que los anticuerpos neutralizantes anti-ADM se pueden emplear para el tratamiento de la septicemia en la etapa tardía de la septicemia.
La administración de ADM en combinación con proteína-1 de unión a ADM se describe para el tratamiento de la septicemia y el choque septicémico en la técnica. Se supone que el tratamiento de animales septicémicos con ADM y proteína-1 de unión a ADM impide la transición a la fase tardía de la septicemia. Se ha de señalar que, en un organismo vivo la proteína de unión a ADM (factor H del complemento) está presente en la circulación de dicho organismo en altas concentraciones (Pio et al.: Identification, characterization, and physiological actions of factor H as an Adrenomedullin binding Protein present in Human Plasma; Microscopy Res. and Technique, 55:23-27 (2002) y Martínez et al.; Mapping of the Adrenomedullin-Binding domains in Human Complement factor H; Hypertens Res.
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vol. 26, Supl. (2003), S56-59).
Según la invención la proteína-1 de unión a ADM puede denominarse también proteína-1 de unión a ADM (factor H del complemento).
Descripción de la invención
Según la presente invención, se ha constatado que la administración de un anticuerpo anti-ADM o de un fragmento de anticuerpo anti-ADM de unión a ADM o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM de unión a ADM puede reducir considerablemente el riesgo de mortalidad en un paciente que padece una enfermedad aguda grave o estado agudo, en el que dicho anticuerpo o fragmento se une a la parte del terminal N, aa 1-21, de adrenomedulina: YRQSMNNFQGLRSFGCRFGTC (SEC. ID. nº 23) y en el que dicha enfermedad aguda grave o estado agudo es SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo, choque septicémico.
En toda la memoria descriptiva, los "anticuerpos", o "fragmentos de anticuerpo" o "andamiaje proteico sin Ig" según la invención son capaces de unirse a ADM, y por lo tanto dirigirse contra ADM, y por lo tanto pueden denominarse "anticuerpos anti-ADM", "fragmentos de anticuerpos anti-ADM" o "andamiaje proteico sin Ig anti-ADM".
Según la invención, la administración de un anticuerpo anti-ADM o de un fragmento de anticuerpo anti-ADM de unión a ADM o de un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM de unión a ADM es preferentemente una aplicación general.
El paciente que padece una enfermedad o estado agudo puede tener una morbilidad asociada similar a una enfermedad crónica. El tratamiento según la presente invención tiene por objeto especialmente el tratamiento de la enfermedad o estado agudo. Puede ser el tratamiento de una enfermedad o estado agudo en un paciente que padece cáncer, lo que no significa necesariamente que se trate el propio cáncer.
El anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) es un anticuerpo que se une específicamente a ADM, el fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina es un fragmento de un anticuerpo anti-ADM en el que dicho fragmento se une específicamente a ADM. Un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM es un andamiaje proteico sin Ig que se une específicamente a ADM. Específicamente la unión a ADM permite también la unión a otros antígenos. Esto quiere decir que esta especificidad no excluye que el anticuerpo pueda reaccionar en cruz con otros polipéptidos que aquellos contra los que se ha producido. Dichos anticuerpo anti-adrenomedulina o un fragmento de anticuerpo antiadrenomedulina de unión a ADM o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM de unión a ADM pueden no ser proteína-1 de unión a administración (factor H del complemento). La proteína-1 de unión a ADM no se refiere a ninguno de los anticuerpos anti-adrenomedulina antes mencionados o a un fragmento de anticuerpo contra adrenomedulina que se une a un ADM o un andamiaje proteico sin Ig de ADM de unión a ADM.
Una persona experta en la técnica entiende que el anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM es sinónimo de anticuerpo contra adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig de ADM y significa anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM de unión a ADM, respectivamente.
Enfermedades graves son las enfermedades no contagiosas cuyos síntomas físicos y sociales pueden tener un impacto grave en las capacidades de quienes la padecen para vivir la vida cotidiana normal. En una forma de realización la enfermedad grave es una enfermedad potencialmente mortal que lleva un alto riesgo de mortalidad producida por dicha enfermedad grave.
Dicha enfermedad o afección se pueden seleccionar del grupo que comprende la meningitis, el síndrome de respuesta Inflamatoria general (SIRS), septicemia, choque, como por ejemplo el choque septicémico.
En otra forma de realización dicha enfermedad grave es una enfermedad o estado agudo como por ejemplo la meningitis, el síndrome de respuesta Inflamatoria general (SIRS), septicemia, choque como por ejemplo el choque septicémico. El choque puede ser un choque septicémico o choque debido a por ejemplo, quemaduras, intervención quirúrgica o traumatismos.
Especialmente útil es el anticuerpo o fragmento o andamiaje según la presente invención para reducir el riesgo de mortalidad durante el SIRS, la meningitis, la septicemia y el choque septicémico, es decir, las fases finales de la septicemia. Esto significa que dicho anticuerpo anti-ADM o fragmento de anticuerpo anti-ADM de unión a ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM de unión a ADM se utiliza en el tratamiento o la prevención de la meningitis, SIRS, septicemia, septicemia grave, choque como por ejemplo el choque septicémico. La persona experta en la técnica entiende que dicho anticuerpo anti-ADM o fragmento de anticuerpo anti-ADM de unión a ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM de unión a ADM se pueden administrar de forma generalizada, en pacientes que padecen meningitis, SIRS, septicemia, septicemia grave, choque como por ejemplo, choque septicémico o puede administrarse de forma generalizada en pacientes que padecen el riesgo de padecer meningitis, SIRS, septicemia,
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septicemia grave, choque como por ejemplo, el choque septicémico.
En lo que sigue a continuación se definirán criterios clínicos para SIRS, septicemia, septicemia grave y choque septicémico.
1) Respuesta inflamatoria generalizada (SIRS) del hospedador caracterizada por al menos dos de los siguientes síntomas
•
pacientes que presentan hipotensión (la presión arterial media es < 65 mm de Hg)
•
siendo la concentración de lactato sérico elevada > 4 mmol/l
•
la glucosa en sangre > 7,7 mmol/l (en ausencia de diabetes)
•
la presión venosa central no está comprendida en el intervalo entre 8 y 12 mm de Hg
•
la diuresis es < 0,5 ml x kg-1 x h-1
•
la saturación de oxígeno venosa central (vena cava superior) es <70% o venosa mixta < 65%
•
la frecuencia cardíaca es > 90 latidos/min
•
la temperatura < 36°C o > 38°C
•
la frecuencia respiratoria > 20/min
•
recuento de leucocitos < 4 o > 12x109/l (leucocitos); > 10% de neutrófilos inmaduros
2) Septicemia
Después de al menos dos de los síntomas mencionados en 1), y además una sospecha clínica de nueva infección, que es:
•
tos/esputo/dolor de pecho
•
dolor abdominal/distensión/diarrea
•
infección por catéter
•
endocarditis
•
disuria
•
dolor de cabeza con rigidez en el cuello
•
celulitis/herida/infección en las articulaciones
•
microbiología positiva para alguna infección
3) Septicemia grave
A condición de que la septicemia se manifieste en el paciente, y, además, una sospecha clínica de cualquier disfunción de órganos, que es:
•
presión arterial sistólica < 90/media; <65 mm Hg
•
lactato > 2 mmol/l
•
Bilirrubina > 34 µmol/l
•
diuresis < 0,5 ml/kg/h durante 2 h
•
creatinina > 177 µmol/l
•
plaquetas < 100x109/l
•
SpO2 > 90% salvo O2 dado
4) Choque septicémico
Se manifiesta por lo menos un signo de disfunción de órganos final como se ha mencionado en el punto 3). El choque septicémico está indicado, si hay hipotensión resistente al tratamiento que no responde al tratamiento y la administración de líquidos por vía intravenosa por sí sola es insuficiente para mantener la presión arterial de un paciente volviéndose hipotensor también proporciona una administración de un anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-ADM o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM según la presente invención.
Según la invención la enfermedad aguda o las afecciones agudas puede ser seleccionado de entre el grupo pero no se limitan al grupo que comprende la meningitis, el síndrome de respuesta Inflamatoria generalizada (SIRS), o septicemia; choque como por ejemplo, el choque septicémico. Especialmente útil es el anticuerpo o fragmento o andamiaje según la presente invención para reducir el riesgo de mortalidad durante la septicemia y el choque septicémico, es decir, las fases finales de la septicemia.
Además, en una forma de realización de la invención un anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM es monoespecífico.
El anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) monoespecífico o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina
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monoespecífico o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM monoespecífico significa que dicho anticuerpo o fragmento de anticuerpo o el andamiaje proteico sin Ig se une a una región específica que comprende por lo menos 5 aminoácidos dentro del ADM objetivo. El anticuerpo monoespecífico anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina monoespecífico o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM monoespecífico son anticuerpos anti-adrenomedulina (ADM) o fragmentos de anticuerpos anti-adrenomedulina o andamiajes proteicos sin Ig anti-ADM que tienen todos afinidad por el mismo antígeno.
En otra forma de realización específica y preferida el anticuerpo anti-ADM o el fragmento de anticuerpo anti-ADM o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM que se une a ADM es un anticuerpo, fragmento de anticuerpo o andamiaje proteico sin Ig monoespecífico, respectivamente, según lo cual monoespecífico significa que dicho anticuerpo o fragmento de anticuerpo o andamiaje proteico sin Ig se une a una región específica que abarca por lo menos 4 aminoácidos dentro de la ADM objetivo. Los anticuerpos o fragmentos o los andamiajes proteicos sin Ig monoespecíficos según la invención son anticuerpos o fragmentos o andamiajes proteicos sin Ig que tienen todos afinidad por el mismo antígeno. Los anticuerpos monoclonales son monoespecíficos, pero los anticuerpos monoespecíficos pueden producir se también por otros medios que les producen a partir de una célula germinal común.
Dicho anticuerpo anti-ADM anticuerpo o fragmento de anticuerpo de unión a ADM o andamiaje proteico sin Ig que se unen a ADM puede ser un anticuerpo anti-ADM no neutralizante o fragmento de anticuerpo que se une a ADM o andamiaje proteico sin Ig que se unen a ADM en el que dicho anticuerpo o fragmento se une a la parte del terminal N, aa 1-21, de adrenomedulina: YRQSMNNFQGLRSFGCRFGTC (SEC ID nº 23).
Para otras enfermedades el bloqueo de ADM puede ser beneficioso en cierta medida. Sin embargo, también podría ser perjudicial si la ADM está totalmente neutralizada ya que una determinada cantidad de ADM puede ser necesario para varias funciones fisiológicas. En muchos informes se subrayó que la administración de ADM puede ser beneficiosa en determinadas enfermedades. A diferencia de esto en otros informes ADM se informó como potencialmente mortal cuando se administra en determinadas condiciones. Por lo tanto, en una forma de realización específica de la invención, el anticuerpo anti-ADM o fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM pueden ser un anticuerpo no neutralizante/fragmento de anticuerpo/andamiaje proteico sin Ig en el que dicho anticuerpo o fragmento se une a la parte del terminal N, aa 1-21, de adrenomedulina: YRQSMNNFQGLRSFGCRFGTC (SEC. ID. nº 23).
En una forma de realización específica dicho anticuerpo anti-ADM, fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM es un anticuerpo no neutralizante, fragmento o andamiaje proteico sin Ig en el que dicho anticuerpo o fragmento se une a la parte del terminal N, aa 1-21, de adrenomedulina: YRQSMNNFQGLRSFGCRFGTC (SEC. ID. nº 23). Un anticuerpo anti-ADM neutralizante, fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM bloquearían la bioactividad de ADM hasta casi el 100%, hasta por lo menos más del 90%, preferentemente hasta por lo menos más del 95%.
Por el contrario, un anticuerpo anti-ADM no neutralizante, o fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM bloquea la bioactividad de ADM menos del 100%, preferentemente a menos del 95%, preferentemente a menos del 90%, más preferido a menos del 80% e incluso más preferido a menos del 50%. Esto significa que la bioactividad de ADM se reduce a menos del 100%, a 95% o menos, pero no más, a 90% o menos, pero no más, a 80% o menos, pero no más, a 50% o menos, pero no más. Esta significa que la bioactividad residual de ADM unido al anticuerpo anti-ADM no neutralizante, o al fragmento de anticuerpo anti-ADM o a el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM sería más del 0%, preferentemente más del 5%, preferentemente más del 10 %, más preferido más del 20%, más preferido más del 50%.
En este contexto (a) la(s) molécula(s), que es un anticuerpo, o un fragmento de anticuerpo o un andamiaje proteico sin Ig con "actividad anti-ADM no neutralizante", denominadas en conjunto en la presente memoria por simplicidad anticuerpo anti-ADM "no neutralizante", fragmento de anticuerpo, o andamiaje proteico sin Ig, que por ejemplo, bloquea la bioactividad de ADM a menos del 80%, se define como
-una molécula o moléculas de unión a ADM, que tras la adición de un cultivo de una estirpe celular eucariota, que expresa el receptor de ADM recombinante humano funcional compuesto por CRLR (receptor semejante al receptor de calcitonina) y RAMP3 (proteína 3 que modifica la actividad del receptor), reduce la cantidad de AMPc producido por la estirpe celular mediante la acción del péptido sintético humano ADM añadido en paralelo, en la que dicho ADM sintético humano añadido se añade en una cantidad que, en ausencia del anticuerpo no neutralizante que debe analizarse, conduce a la estimulación media-máxima de la síntesis de AMPc, en la que la reducción de AMPc por dicha(s) molécula(s) que se une(n) a ADM tiene lugar en una medida, que no es más del 80%, aun cuando la(s) molécula(s) no neutralizante(s) que se une(n) a ADM para ser analizada(s) se añade(n) en una cantidad, que es 10 veces más que la cantidad, que es necesaria para obtener la reducción máxima de la síntesis de AMPc que puede obtenerse con el anticuerpo no neutralizante que debe analizarse.
La misma definición se aplica a los otros intervalos; 95%, 90%, 50%, etc.
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Como se muestra en el Ejemplo 4 dicho anticuerpo anti-ADM o fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM puede reducir la mortalidad de un paciente con una enfermedad grave crónica o aguda o un estado agudo cuando se utiliza como medicamento principal. Por ejemplo, en pacientes con septicemia, la medicación principal puede ser el tratamiento con antibióticos. Ejemplo 4 demuestra que la administración de dicho anticuerpo anti-ADM o fragmento de anticuerpo o andamiaje proteico sin Ig pueden reducir la mortalidad incluso si no se toman medidas adicionales. Esto puede ser de especial importancia por ejemplo en el caso de la resistencia a antibióticos o incompatibilidad contra antibióticos. En otros casos dicho anticuerpo anti-ADM anticuerpo o fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM puede administrarse en combinación con antibióticos.
En una forma de realización específica dicho anticuerpo anti-ADM anticuerpo o fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM se puede administrar para el tratamiento de dicho paciente incluso si el paciente no presenta signos aún de problemas de circulación, por ejemplo, tensión arterial baja, y/o si el paciente no presenta signos todavía de desbalance hídrico o/si el paciente no presenta signos aún de disfunción de órganos. La administración de un anticuerpo anti-ADM o de un fragmento de anticuerpo anti-ADM o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM da como resultado una normalización de la circulación sanguínea capilar al ajustar el ADM a un nivel fisiológico y está influyendo de este modo en la respuesta de dicho paciente directamente y reduce la mortalidad en dichos pacientes. Según la invención, la expresión "administración de dicho anticuerpo anti-ADM o del fragmento de anticuerpo anti-ADM o del andamiaje proteico sin Ig anti-ADM" se refiere a la administración generalizada.
En una forma de realización de la invención un anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-ADM o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM debe utilizarse en combinación con vasopresores por ejemplo, catecolaminas en la que dicha combinación debe utilizarse en el tratamiento de una enfermedad crónica o aguda o de un estado agudo de un paciente para reducir el riesgo de mortalidad en dicho paciente.
En una forma de realización de la invención, dicho paciente que padece una enfermedad o afección crónica o aguda se caracteriza por la necesidad de dicho paciente para conseguir la administración de vasopresores por ejemplo, la administración de catecolaminas.
Además, en una forma de realización de la invención, un anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM debe utilizarse en combinación con líquidos administrados por vía intravenosa, en la que dicha combinación debe utilizarse en el tratamiento de un paciente que padece una enfermedad crónica o aguda o un estado agudo para reducir el riesgo de mortalidad en dicho paciente, en la que dichas enfermedades o afección es SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico. Debe hacerse hincapié en que dicha administración intravenosa de líquidos significa una administración generalizada de líquidos.
En una forma de realización de la invención, dicho paciente que padece una enfermedad o afección crónica o aguda se caracteriza por la necesidad de dicho paciente de obtener líquidos intravenosos.
El objeto de la invención en una forma de realización específica es, por lo tanto, un anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para su utilización en el tratamiento de un paciente que necesita líquidos intravenosos.
En este sentido, el balance hídrico es el balance de la entrada y la salida de líquidos en el cuerpo para permitir que los procesos metabólicos funcionen. La deshidratación se define como un 1% o más de pérdida de la masa corporal como resultado de la pérdida de líquido. Los tres elementos para evaluar el balance hídrico y el estado de hidratación son: la evaluación clínica, el peso corporal y la diuresis; examen de las cartas de balance hídrico y examen del análisis de sangre. Todo esto es muy bien conocido para un experto en la técnica (Alison Shepherd, Nursing Tomes 19.07.11/vol. 107 nº 28, páginas 12 a 16).
Por lo tanto, en una forma de realización, una persona que necesita regular el balance hídrico, y por lo tanto que necesita líquidos por vía intravenosa es una persona que tiene un 1% o más de pérdida de la masa corporal como resultado de la pérdida de líquido. El balance hídrico puede evaluarse según Scales y Pilsworth (2008) Nursing Standard 22:47, 50-57. Por ejemplo, la diuresis normal está comprendida en el intervalo de 0,5 a 2 ml/kg de peso corporal por hora. La diuresis mínima aceptable para un paciente con función renal normal es de 0,5 ml/kg por hora. TodOs estos patrones se pueden usar para evaluar si un paciente necesita líquidos por vía intravenosa, o como análogamente necesita regular y/o mejorar el balance hídrico.
Un anticuerpo o fragmento según la presente invención es una proteína que comprende uno o más polipéptidos sustancialmente codificados por genes de inmunoglobulina que se une específicamente a un antígeno. Los genes de inmunoglobulina reconocidos comprenden los genes de la región constante kappa, lambda, alfa (IgA), gamma (IgG1, IgG2, IgG3, IgG4), delta (IgD), épsilon (IgE) y mu (IgM), así como los innumerables genes de la región variable de inmunoglobulina. Las cadenas ligeras de inmunoglobulina completa son generalmente de aproximadamente 25 Kd o 214 aminoácidos de longitud. Las cadenas pesadas de inmunoglobulina completa son generalmente de aproximadamente 50 Kd o de 446 aminoácidos de longitud. Las cadenas ligeras están codificadas por un gen de la
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región variable en el terminal NH2 (aproximadamente de 110 aminoácidos de longitud) y un gen de la región constante kappa o lambda en el terminal COOH. Las cadenas pesadas están codificadas de manera similar por un gen de la región variable (aproximadamente 116 aminoácidos de longitud) y uno de los demás genes de región constante.
La unidad estructural básica de un anticuerpo es generalmente un tetrámero que consiste en dos pares idénticos de cadenas de inmunoglobulina, teniendo cada par una cadena ligera y una cadena pesada. En cada par, las regiones variables de cadena ligera y pesada se unen a un antígeno, y las regiones constantes intervienen como mediadoras de funciones efectoras. Las inmunoglobulinas también existen en diversas otras formas incluyendo, por ejemplo, Fv, Fab y (Fab')2, así como anticuerpos híbridos bifuncionales y cadenas individuales (por ejemplo, Lanzavecchia et al., Eur. J. Immunol. 17:105,1987; Huston et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 85:5879-5883, 1988; Bird et al., Science 242:423-426, 1988; Hood et al., Immunology, Benjamin, NY, 2ª ed., 1984; Hunkapiller y Hood, Nature 323:1516,1986). Una región variable de cadena ligera o pesada de inmunoglobulina incluye una región marco interrumpida por tres regiones hipervariables, también denominadas regiones determinantes de complementariedad (CDR) (véase, Sequences of Proteins of Immunological Interest, E. Kabat et al., U.S. Department of Health and Human Services, 1983). Como se señaló anteriormente, las CDR son principalmente responsables de la unión a un epítopo de un antígeno. Un inmunocomplejo es un anticuerpo, tal como un anticuerpo monoclonal, un anticuerpo híbrido, un anticuerpo humanizado, un anticuerpo humano o fragmento de anticuerpo funcional, unido específicamente al antígeno.
Los anticuerpos híbridos son anticuerpos cuyos genes de la cadena ligera y pesada se han construido, por lo general por ingeniería genética, a partir de genes de la región variable y constante de inmunoglobulina que pertenecen a diferentes especies. Por ejemplo, los segmentos variables de los genes de un anticuerpo monoclonal de ratón pueden unirse a segmentos constantes humanos, tales como kappa y gamma 1 o gamma 3. En un ejemplo, un anticuerpo híbrido terapéutico es por tanto una proteína híbrida compuesta de la variable o dominio de unión al antígeno de un anticuerpo de ratón y la constante o dominio efector de un anticuerpo humano, aunque pueden utilizarse otras especies de mamíferos o la región variable se pueden producir por técnicas moleculares. Los procedimientos de preparación de anticuerpos híbridos son bien conocidos en la técnica, por ejemplo, véase la patente US nº 5.807.715. Una inmunoglobulina "humanizada" es una inmunoglobulina que incluye una región marco humana y una o más CDR de una inmunoglobulina no humana (tal como un ratón, rata o sintética). La inmunoglobulina no humana que proporciona las CDR se denomina "donante" y la inmunoglobulina humana que proporciona el marco que se denomina "receptor". En una forma de realización, todas las CDR son de la inmunoglobulina donante en una inmunoglobulina humanizada. Las regiones constantes no necesitan estar presentes, pero si lo están, deben ser sustancialmente idénticas a las regiones constantes de inmunoglobulina humana, es decir, por lo menos aproximadamente 85-90%, tal como aproximadamente 95% o más de identidad. Por lo tanto, todas las partes de una inmunoglobulina humanizada, excepto posiblemente las CDR, son sustancialmente idénticas a las partes correspondientes de secuencias naturales de inmunoglobulina humana. Un "anticuerpo humanizado" es un anticuerpo que comprende una inmunoglobulina con cadena ligera humanizada y una cadena pesada humanizada. Un anticuerpo humanizado se une al mismo antígeno como anticuerpo donante que proporciona las CDR. El marco receptor de una inmunoglobulina humanizada o anticuerpo puede tener un número limitado de sustituciones por aminoácidos tomados del marco donante. Los anticuerpos humanizados u otros monoclonales pueden tener sustituciones conservadoras adicionales de aminoácidos que no tienen sustancialmente ningún efecto sobre la unión de antígeno u otras funciones de la inmunoglobulina. Las sustituciones conservadoras a modo de ejemplo son aquellas tales como gly, ala; val, ile, leu; asp, glu; asn, gln; ser, thr; lys, arg; y phe, tyr. Las inmunoglobulinas humanizadas se pueden construir por ingeniería genética (por ejemplo, véase la patente US nº 5.585.089). Un anticuerpo humano es un anticuerpo en el que los genes de las cadenas ligera y pesada son de origen humano. Los anticuerpos humanos pueden generarse utilizando procedimientos conocidos en la técnica. Los anticuerpos humanos pueden producirse por inmortalización de un linfocito B humano que segrega el anticuerpo de interés. La inmortalización puede llevarse a cabo, por ejemplo, por infección por EBV o por fusión de un linfocito B humano con una célula de mieloma o hibridoma para producir una célula de trioma. Los anticuerpos humanos también pueden producirse por métodos de presentación en fagos (véase, por ejemplo, Dower et al., publicación PCT WO 91/17271; McCafferty et al., publicación PCT nº WO 92/001047; y Winter, publicación PCT WO 92/20791),
o se selecciona de una biblioteca combinatoria de anticuerpos monoclonales humanos (véase la página web Morphosys). Los anticuerpos humanos también se pueden preparar mediante el empleo de animales transgénicos portadores de un gen de inmunoglobulina humana (por ejemplo, véase Lonberg et al., publicación PCT WO 93/12227; y Kucherlapati, publicación PCT WO 91/10741).
Por lo tanto, el anticuerpo anti-ADM puede tener los formatos conocidos en la técnica. Son ejemplos los anticuerpos humanos, anticuerpos monoclonales, anticuerpos humanizados, anticuerpos híbridos, anticuerpos injertados a CDR. En una forma de realización preferida, los anticuerpos según la presente invención son anticuerpos producidos de forma recombinante como por ejemplo, IgG, un inmunoglobulina completa típica o fragmentos de anticuerpos que contienen por lo menos el dominio F variable de la cadena pesada y/o ligera como por ejemplo anticuerpos acoplados químicamente (fragmento de unión a antígeno) entre otros pero sin limitarse a fragmentos Fab, incluyendo minicuerpos Fab, anticuerpo Fab de una sola cadena, anticuerpo Fab monovalente con etiquetas de epítopo, por ejemplo, Fab-V5Sx2; Fab bivalente (mini-anticuerpo) dimerizado con el dominio CH3; Fab bivalente o Fab polivalente, por ejemplo, formados por polimerización con la ayuda de un dominio heterólogo, por ejemplo, por
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dimerización de dominios dHLX, por ejemplo Fab-dHLX-FSx2; fragmentos F(ab')2, fragmentos scFv polivalentes polimerizados y/o multiespecíficos, diacuerpos bivalentes y/o biespecíficos, BITE® (acoplador biespecífico de linfocitos T), anticuerpos trifuncionales, anticuerpos polivalentes, por ejemplo, de una clase diferente de G; anticuerpos de un solo dominio, por ejemplo, derivados de inmunoglobulinas de camélidos o peces y muchos otros.
Además de los anticuerpos anti-ADM otros andamiajes de biopolímero son bien conocidas en la técnica para acomplejar una molécula diana y se han utilizado para la generación de biopolímeros diana muy específicos. Son ejemplos aptámeros, espiegélmeros, anticalins y conotoxinas. Para ilustración de formatos de anticuerpos véanse las figuras 1a, 1b y 1c.
En una forma de realización preferida, el formato de anticuerpo anti-ADM se selecciona de entre el grupo que comprende el fragmento Fv, el fragmento scFv, el fragmento Fab, el fragmento scFab, el fragmento F(ab)2 y la proteína de fusión scFv-Fc. En otra forma de realización preferida, el formato de anticuerpo se selecciona de entre el grupo que comprende el fragmento scFab, el fragmento Fab, el fragmento scFv y conjugados optimizados en biodisponibilidad de los mismos, tales como los fragmentos PEGilados. Uno de los formatos más preferidos es el formato scFab.
Andamiajes sin Ig pueden ser andamiajes proteicos y pueden utilizarse como miméticos de anticuerpos ya que son capaces de unirse a ligandos o antígenos. Los andamiajes sin Ig pueden seleccionarse de entre el grupo que comprende andamiajes sin Ig a base de tetranectina (por ejemplo, descritos en el documento US 2010/0028995), andamiajes de fibronectina por ejemplo descritos en la patente EP 1 266 025; andamiajes de lipocalina ((por ejemplo, descritos en el documento WO 2011/154420); andamiajes de ubiquitina (por ejemplo, descritos en el documento WO 2011/073214), andamiajes de transferrina (por ejemplo, descritos en el documento US 2004/0023334), andamiajes de proteína A (por ejemplo, descritos en la patente EP 2 231 860), andamiajes a base de repeticiones de anquirina (por ejemplo, descritos en el documento WO 2010/060748), andamiajes de microproteínas preferentemente microproteínas que forman un nudo de cisteína) (por ejemplo, descritos en la patente EP 2 314 308), andamiajes del dominio Fyn SH3 (por ejemplo descritos en el documento WO 2011/023685), andamiajes del dominio EGFR-A (por ejemplo, descritos en el documento WO 2005/040229) y andamiajes del dominio Kunitz (por ejemplo descritos en la patente EP 1 941 867).
En una forma de realización de la invención se pueden producir anticuerpos anti-ADM según la presente invención como se describe en el ejemplo 1 sintetizando fragmentos de ADM como antígenos. A partir de entonces, se identifican aglutinantes para dichos fragmentos utilizando los métodos descritos a continuación u otros métodos conocidos en la técnica.
Un ratón Balb/c se inmunizó con 100 µg de conjugado péptido ADM-BSA los días 0 y 14 (emulsionado en 100 µl de adyuvante completo de Freund) y 50 µg los días 21 y 28 (en 100 µl de adyuvante incompleto de Freund). Tres días antes de realizar el experimento de fusión, el animal recibió 50 µg de conjugado disuelto en 100 µl de solución salina, administrada en forma de una inyección intraperitoneal y una intravenosa.
Los esplenocitos de ratón inmunizado y células de la estirpe celular de mieloma SP2/0 se fusionaron con 1 ml de polietilenglicol al 50% durante 30 s a 37ºC. Después del lavado, las células se sembraron en placas de cultivo celular de 96 pocillos. Se seleccionaron clones híbridos por cultivo en medio HAT [medio de cultivo RPMI 1640 enriquecido con 20% de suero de ternera fetal y complemento HAT]. Después de dos semanas se reemplazó el medio HAT con medio HT durante tres pasajes seguido de vuelta al medio de cultivo celular normal.
En los sobrenadantes del cultivo celular se detectaron en primer lugar anticuerpos de IgG específicos tres semanas después de la fusión. Los microcultivos que dieron positivos se transfirieron a placas de 24 pocillos para la propagación. Después de volver a analizar, los cultivos seleccionados se clonaron y se volvieron a clonar utilizando la técnica de dilución limitante y se determinaron los isotipos. (Véase también Lane, R.D. (1985). A short-duration polyethylene glycol fusion technique for increasing production of monoclonal antibody-secreting hybridomas. J. Immunol. Meth. 81: 223-228; Ziegler, B. et al. (1996) glutamato descarboxilasa (GAD) no es detectable en la superficie de células de los islotes de rata examinados por citofluorometría y citotoxicidad mediada por anticuerpos dependiente de complemento de anticuerpos monoclonal GAD, Horm. Metab. Res. 28: 11-15).
Pueden producirse anticuerpos mediante la presentación en fagos según el siguiente procedimiento:
Se utilizaron las bibliotecas HAL7/8 de genes de anticuerpos humanos sin tratamiento previo para el aislamiento de dominios F variables (scFv) monocatenarios recombinantes contra el péptido adrenomedulina. Las bibliotecas de genes de anticuerpos se cribaron con una estrategia adhesión celular sobre plástico que comprende el empleo de péptidos que contienen una etiqueta de biotina unida mediante dos espaciadores diferentes a la secuencia del péptido adrenomedulina. Una mezcla de rondas de adhesión celular sobre plástico utilizando antígeno unido de manera no específica y antígeno unido a estreptavidina se utiliza para minimizar el fondo de aglutinantes no específicos. Los fagos eluidos de la tercera ronda de adhesión celular sobre plástico se han utilizado para la generación de cepas de E. coli que expresan scFv monoclonal. El sobrenadante de cultivo de estas cepas clonales se ha utilizado directamente para un ensayo de ELISA para antígenos (véase también Hust, M., Meyer, T., Voedisch,
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B., Rülker, T., Thie, H., El-Ghezal, A., Kirsch, M.I., Schütte, M., Helmsing, S., Meier, D., Schirrmann, T., Dübel, S., 2011. A human scFv antibody generation pipeline for proteome research. Journal of Biotechnology 152, 159-170; Schütte, M., Thullier, P., Pelat, T., Wezler, X., Rosenstock, P., Hinz, D., Kirsch, M.I., Hasenberg, M., Frank, R., Schirrmann, T., Gunzer, M., Hust, M., Dübel, S., 2009. Identification of a putative Crf splice variant and generation of recombinant antibodies for the specific detection of Aspergillus fumigatus. PLoS One 4, e6625).
La humanización de anticuerpos murinos puede llevarse a cabo según el siguiente procedimiento:
Para la humanización de un anticuerpo de origen murino en la secuencia del anticuerpo se analiza la interacción estructural de las regiones marco (FR) con las regiones determinantes de complementariedad (CDR) y el antígeno. Basándose en el modelado estructural se selecciona una FR apropiada de origen humano y las secuencias de CDR murinas se trasplantan en la FR humana. Las variaciones en la secuencia de aminoácidos de las CDR o FR se pueden introducir para recuperar las interacciones estructurales, que fueron suprimidas por el cambio de especie para las secuencias de FR. Esta recuperación de las interacciones estructurales se puede conseguir mediante un método al azar utilizando bibliotecas de presentación en fagos o mediante un método dirigido guiado por modelado molecular. (Almagro J.C., Fransson J., 2008. Humanization of antibodies. Front Biosci. 1 de enero 2008; 13:161933).
En una forma de realización preferida, el formato de anticuerpo contra ADM se selecciona de entre el grupo que comprende el fragmento Fv, el fragmento scFv, el fragmento Fab, el fragmento scFab, el fragmento F(ab)2 y la proteína de fusión scFv-Fc. En otra forma de realización preferida, el formato de anticuerpo se selecciona de entre el grupo que comprende el fragmento scFab, el fragmento Fab, el fragmento scFv y conjugados optimizados en biodisponibilidad de los mismos, tales como fragmentos PEGilados. Uno de los formatos más preferidos es el formato scFab.
En otra forma de realización preferida, el anticuerpo anti-ADM, el fragmento de anticuerpo anti-ADM o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM es un anticuerpo completo, un fragmento de anticuerpo o un andamiaje proteico sin Ig.
En una forma de realización preferida, el anticuerpo anti-adrenomedulina o un fragmento de anticuerpo antiadrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM se dirige a un epítopo de por lo menos 5 aminoácidos de longitud contenidos en ADM y puede unirse al mismo.
En una forma de realización más preferida, el anticuerpo anti-adrenomedulina o un fragmento de anticuerpo antiadrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM se dirige a un epítopo de por lo menos 4 aminoácidos de longitud contenidos en ADM y puede unirse al mismo.
En una forma de realización específica de la invención se proporciona el anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-ADM que se une a adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM que se une a adrenomedulina para su utilización en el tratamiento o prevención de dicha enfermedad aguda o estado agudo de un paciente en el que dicho anticuerpo, fragmento o andamiaje no es la proteína-1 de unión a ADM (factor H del complemento).
En una forma de realización específica de la invención, se proporciona el anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-ADM que se una a adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM que se une a adrenomedulina para su utilización en el tratamiento o prevención de dicha enfermedad aguda o estado agudo de un paciente en el que dicho anticuerpo o fragmento, andamiaje se une a una región preferentemente de por lo menos 4, o por lo menos 5 aminoácidos dentro de la secuencia de aa 1-21 de ADM humano maduro:
SEC. ID. nº 23 YRQSMNNFQGLRSFGCRFGTC.
En la forma de realización de la presente invención dicho anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo antiadrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM se une a una región o epítopo de ADM que se encuentra en la parte del terminal en N (aa 1-21) de adrenomedulina, (véase la figura 2).
En una forma de realización preferida, dicho anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina
o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM reconoce y se une a una región o epítopo dentro de los aminoácidos 1-14 (SEC. ID. nº 26) de adrenomedulina; lo que significa la parte del terminal N (aa 1-14) de adrenomedulina. En otra realización preferida dicho anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o andamiaje sin Ig anti-ADM reconoce y se une a una región o epítopo dentro de los aminoácidos 1-10 de la adrenomedulina (SEC. ID. nº 27); lo que significa la parte del terminal N (aa 1-10) de adrenomedulina.
aa 1-14 de ADM YRQSMNNFQGLRSF (SEC. ID. nº 26)
aa 1-10 de ADM
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YRQSMNNFQG (SEC. ID. nº 27)
En otra forma de realización preferida, dicho anti-ADM anticuerpo o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina
o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM reconoce y se une a una región o epítopo dentro de los aminoácidos 1-6 de la adrenomedulina (SEC. ID. nº 28); eso significa la parte del terminal N (aa 1-6) de adrenomedulina. Dicha región o epítopo como se indicó anteriormente comprende preferentemente por lo menos 4 o 5 aminoácidos de longitud.
aa 1-6 de ADM YRQSMN (SEC. ID. nº 28)
En otra realización preferida, dicho anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM reconoce y se une al extremo del terminal N (aa1) de adrenomedulina. Extremo del terminal N significa que el aminoácido 1, es decir "Y" de la SEC. ID. nº 21 o nº 23; es obligatorio para la unión de anticuerpos. El anticuerpo, fragmento o andamiaje no se unirían a la adrenomedulina con el terminal N ampliado ni con el terminal N modificado ni a la adrenomedulina con el terminal N degradado. Esto significa en otra forma de realización preferida, dicho anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o andamiaje sin Ig anti-ADM se une sólo a una región dentro de la secuencia de ADM madura si el extremo del terminal N de ADM está libre. En dicha forma de realización el anticuerpo anti-ADM o fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o andamiaje proteico sin Ig no se unen a una región dentro de la secuencia de ADM madura si dicha secuencia está comprendida por ejemplo dentro de Pro-ADM.
En aras de la claridad, los números entre paréntesis para regiones específicas del ADM como "parte terminal N (aa 1-21)" se entiende por una persona experta en la técnica que la parte terminal N de ADM consiste en los aminoácidos 1 -21 de la secuencia de ADM madura.
En otra forma de realización específica según la invención, el anticuerpo anti-ADM o fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM proporcionado en la presente memoria no se une a la porción del terminal C de ADM, es decir, los aa 43-52 de ADM (SEC. ID. nº 25)
PRSKISPQGY-NH2 (SEC. ID. nº 25)
En una forma de realización específica se prefiere utilizar un anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo antiadrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM según la presente invención, en la que dicho anticuerpo anti-adrenomedulina o dicho fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o andamiaje proteico sin Ig es un anticuerpo estabilizante de ADM o un fragmento de anticuerpo estabilizante de adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig estabilizante de adrenomedulina que aumenta la vida media (t1/2; tiempo medio de retención) de adrenomedulina en el suero, sangre, plasma, por lo menos 10%, preferentemente por lo menos 50%, más preferentemente > 50%, aún más preferentemente > 100%.
La vida media (tiempo medio de retención) de ADM puede determinarse en el plasma humano en ausencia y en presencia de un anticuerpo estabilizante de ADM o un fragmento de anticuerpo estabilizante de adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig estabilizante de adrenomedulina, respectivamente, utilizando un inmunoanálisis para la cuantificación de ADM.
Las siguientes etapas pueden llevarse a cabo:
-ADM se puede diluir en plasma humano en citrato en ausencia y presencia de un anticuerpo estabilizante de ADM o un fragmento de anticuerpo estabilizante de adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig estabilizante de adrenomedulina, respectivamente, y puede incubarse a 24°C
-Se toman alícuotas en puntos de tiempo seleccionados (por ejemplo, en 24 horas) y la degradación de ADM puede detenerse en dichas alícuotas por congelación a -20°C
-La cantidad de ADM puede determinarse por un inmunoanálisis de ADMh directamente, si el ensayo seleccionado no está influenciada por el anticuerpo estabilizante. Alternativamente, la alícuota puede tratarse con agentes desnaturalizantes (como HCl) y, después de limpiar la muestra (por ejemplo, por centrifugación) el pH puede neutralizarse y la ADM cuantificarse por un inmunoanálisis de ADM. Alternativamente, se pueden utilizar tecnologías distintas del inmunoanálisis (por ejemplo, rpHPLC) para administración cuantificación de la ADM.
-La vida media de ADM se calcula para ADM incubada en ausencia y presencia de un anticuerpo contra ADM estabilizante o un fragmento de anticuerpo estabilizante de adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig estabilizante de adrenomedulina, respectivamente,
-La mejora de la vida media se calcula para la ADM estabilizada en comparación con la ADM que se ha
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incubado en ausencia de un anticuerpo estabilizante de ADM o un fragmento de anticuerpo estabilizante de adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig estabilizante de adrenomedulina.
Un aumento al doble de la media vida de ADM es una mejora de la vida media del 100%.
La vida media (tiempo medio de retención) se define como el período durante el cual la concentración de un producto químico o fármaco especificado tarda en disminuirse a la mitad de su concentración de referencia en el líquido o sangre especificado.
Un análisis que puede utilizarse para la determinación de la vida media (tiempo medio de retención) de adrenomedulina en el suero, sangre, plasma se describe en el ejemplo 3.
En una forma de realización preferida dicho anticuerpo anti-ADM, fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM es un anticuerpo, fragmento o andamiaje no neutralizante. Un anticuerpo anti-ADM, fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM neutralizantes bloquearían la bioactividad de ADM hasta casi el 100%, por lo menos hasta más del 90%, preferentemente hasta al menos más de 95%. En otras palabras esto significa que dicho anticuerpo anti-ADM no neutralizante, fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM bloquea la bioactividad de ADM hasta menos del 100%, preferentemente menos del 95%, preferentemente menos del 90%. En una forma de realización en la que dicho anticuerpo anti-ADM no neutralizante, fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM bloquea la bioactividad de ADM hasta menos del 95% un anticuerpo anti-ADM, fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM que bloquearía la bioactividad de ADM hasta más del 95% estaría fuera del alcance de dicha forma de realización. Esto significa en una forma de realización que la bioactividad se reduce hasta 95% o menos, pero no más, preferentemente hasta el 90% o menos, más preferentemente hasta el 80% o menos, más preferentemente hasta el 50% o menos, pero no más.
Los fragmentos se muestran a título de ilustración solamente.
aa 1-32 de ADM humana madura YRQSMNNFQGLRSFGCRFGTCTVQKLAHQIYQ (SEC. ID. nº 29)
aa 1-40 de ADM murina madura YRQSMNQGSRSNGCRFGTCTFQKLAHQIYQLTDKDKDGMA (SEC. ID. nº 30)
aa 1-31 de ADM murina madura YRQSMNQGSRSNGCRFGTCTFQKLAHQIYQL (SEC. ID. nº 31)
En una forma de realización específica según la presente invención se utiliza un anticuerpo anti-ADM no neutralizante o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig de ADM, en la que dicho anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina bloquea la bioactividad de ADM hasta menos de 80%, preferentemente menos del 50% (de los valores de referencia). Se ha entendido que dicho bloqueo limitado de la bioactividad (es decir, reducción de la bioactividad) de ADM se produce incluso en exceso de concentración del anticuerpo, fragmento o andamiaje, lo que significa un exceso del anticuerpo, fragmento o andamiaje con relación a la ADM. Dicho bloqueo limitado es una propiedad intrínseca del propio aglutinante ADM en dicha forma de realización específica. Esto significa que dicho anticuerpo, fragmento o andamiaje presenta una inhibición máxima del 80% o 50%, respectivamente. En una forma de realización preferida dicho anticuerpo anti-ADM, fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM bloquearía o reduciría la bioactividad de anti-ADM hasta por lo menos el 5%. La indicado anteriormente significa que aproximadamente el 20% o el 50% o incluso el 95% de bioactividad residual de ADM continúa estando presente, respectivamente.
Por lo tanto, según la presente invención, los anticuerpos anti-ADM, fragmentos de anticuerpos anti-ADM y andamiajes proteicos sin Ig anti-ADM proporcionados no neutralizan la bioactividad respectiva de ADM.
La bioactividad se define como el efecto de que una sustancia toma en un organismo vivo, tejido, órgano o unidad funcional in vivo o in vitro (por ejemplo, en un ensayo) después de su interacción. En caso de bioactividad de ADM esto puede ser el efecto de ADM en un análisis funcional de AMPc receptor de adrenomedulina recombinante humana. Por lo tanto, según la presente invención bioactividad se define mediante un análisis funcional de AMPc receptor de adrenomedulina. Las siguientes etapas pueden realizarse con el fin de determinar la bioactividad de ADM en dicho ensayo:
-Las curvas de respuesta a la dosis se realizan con ADM en dicho análisis funcional de AMPc receptor de adrenomedulina recombinante humano.
-La concentración de ADM de estimulación de AMPc media-máxima se puede calcular.
-A concentraciones de ADM medias-máximas constantes que estimulan a AMPc se realizan las curvas de
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respuesta a la dosis (hasta la concentración final de 100 µg/ml) por un anticuerpo estabilizante de ADM o un fragmento de anticuerpo estabilizante de adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig estabilizante de adrenomedulina, respectivamente.
Una inhibición máxima en dicho bioanálisis de ADM de 50% significa que dicho anticuerpo anti-ADM o dicho fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o dicha andamiaje proteico sin Ig anti-adrenomedulina, respectivamente, bloquea la bioactividad de ADM al 50% de los valores de referencia. Una inhibición máxima en dicho bioanálisis de ADM del 80% significa que dicho anticuerpo anti-ADM o dicho fragmento de anticuerpo antiadrenomedulina o dicha andamiaje proteico sin Ig anti-adrenomedulina, respectivamente, bloquea la bioactividad de ADM al 80%. Esto es en el sentido de bloqueo de la bioactividad de ADM a no más del 80%. Esto significa que aproximadamente el 20% bioactividad residual de ADM continúa estando presente.
Sin embargo, por la presente memoria descriptiva y en el contexto anterior la expresión "bloquea la bioactividad de ADM" en relación a los anticuerpos anti-ADM, fragmentos de anticuerpos anti-ADM y andamiajes proteicos sin Ig anti-ADM dados a conocer en este documento debe entenderse como mera disminución de la bioactividad de ADM del 100% al 20% restante de bioactividad ADM en el máximo, disminuyendo preferentemente la bioactividad de ADM del 100% al 50% restante de bioactividad de ADM; pero en cualquier caso hay bioactividad de ADM restante que puede determinarse como se detalló anteriormente.
La bioactividad de ADM se puede determinar en un análisis funcional de AMPc receptor de adrenomedulina recombinante humana (bioanálisis de adrenomedulina) según el ejemplo 2.
En una forma de realización preferida, un anticuerpo modulador o un fragmento de anticuerpo modulador antiadrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig moduladora anti-adrenomedulina se utiliza en el tratamiento o prevención de una enfermedad aguda o crónica o estado agudo de un paciente para estabilizar la circulación, en particular estabilizar la circulación general.
Dicho anticuerpo anti-ADM modulador o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina modulador o un andamiaje proteico sin Ig moduladora anti-adrenomedulina puede ser especialmente útil en el tratamiento de la septicemia. Un anticuerpo modulador o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina modulador o un andamiaje proteico sin Ig moduladora anti-adrenomedulina mejora la bioactividad de ADM en la fase temprana de la septicemia y reduce los efectos dañinos de ADM en la fase tardía de la septicemia.
Un anticuerpo anti-ADM "modulador" o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina modulador o un andamiaje proteico sin Ig moduladora anti-adrenomedulina es un anticuerpo o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina
o un andamiaje proteico sin Ig que aumenta la vida media (t1/2 tiempo medio de retención) de adrenomedulina en el suero, sangre, plasma, por lo menos el 10%, preferentemente por lo menos, 50%, más preferentemente > 50%, aún más preferentemente > 100% y bloquea la bioactividad de ADM a menos del 80%, preferentemente menos de 50% y dicho anticuerpo anti-ADM, fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM bloquearía la bioactividad de ADM a por lo menos 5%. Estos valores relacionados con la vida media y el bloqueo de la bioactividad han de entenderse en relación con los análisis anteriormente mencionados a fin de determinar estos valores. Esto es en el sentido de bloqueo de la bioactividad de ADM de no más del 80% o no más del 50%, respectivamente.
Dicho anticuerpo anti-ADM modulador o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina modulador o un andamiaje proteico sin Ig anti-adrenomedulina moduladora ofrece la ventaja de que se facilita la dosificación de la administración. La combinación de bloquear parcialmente o reducir parcialmente la bioactividad de adrenomedulina y aumentar la vida media in vivo (aumentando la bioactividad de adrenomedulina) conduce a la simplicidad beneficiosa de la dosificación del anticuerpo anti-adrenomedulina o de un fragmento de anticuerpo antiadrenomedulina o del andamiaje proteico sin Ig anti-adrenomedulina. En una situación de exceso de adrenomedulina endógena (estimulación máxima, fase de la septicemia tardía, choque, fase hipodinámica) el efecto de disminución de la actividad es el mayor impacto del anticuerpo, fragmento o andamiaje, lo que limita el efecto (negativo) de la adrenomedulina. En caso de concentraciones bajas o normales de adrenomedulina endógena, el efecto biológico de un anticuerpo anti-adrenomedulina o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM es una combinación de reducción (por bloqueo parcial) y aumento al aumentar la vida media de la adrenomedulina. Si el efecto de la vida media es más fuerte que el efecto de bloqueo, la actividad biológica neta de la adrenomedulina endógena se aumenta favorablemente en las fases iniciales de la septicemia (adrenomedulina baja, fase hiperdinámica). Por lo tanto, el anticuerpo anti-adrenomedulina o el fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o el andamiaje proteico sin Ig anti-adrenomedulina no neutralizantes y moduladores actúa como un tampón de bioactividad de ADM para mantener la bioactividad de ADM dentro de un determinado intervalo fisiológico.
Por lo tanto, la dosificación del anticuerpo/fragmento/andamiaje en por ejemplo la septicemia puede seleccionarse de entre una concentración excesiva, debido a que ambas fases de la septicemia (temprana y tardía) se benefician de tratamiento excesivo con un anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM en el caso de un efecto modulador. Medios excesivos: La concentración de
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anticuerpo anti-adrenomedulina o de un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o del andamiaje proteico sin Ig anti-ADM es superior a la adrenomedulina endógena durante la fase tardía (choque) de, por ejemplo septicemia. Esto significa, en el caso de la dosificación de un anticuerpo anti-ADM modulador o de un fragmento de anticuerpo anti-ADM modulador o de un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM moduladora en la septicemia puede ser la
5 siguiente:
La concentración de adrenomedulina en el choque septicémico es de 226±66 fmol/ml (Nishio et al., "Increased plasma concentrations of adrenomedullin correlate with relaxation of vascular tone in patients with septic shock.", Crit. Care Med. 1997, 25(6):953-7), una concentración equimolar de anticuerpo o fragmento o andamiaje es 42,5 µg/l 10 de sangre, (referido a un volumen de 6 l de sangre/80 kg de peso corporal) 3,2 µg/kg peso corporal. El exceso quiere decir por lo menos el doble (media) de la concentración de adrenomedulina del choque septicémico, por lo menos > 3 µg de anticuerpo anti-adrenomedulina o de un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o de andamiaje proteico sin Ig anti-ADM/kg de peso corporal, se prefiere por lo menos 6,4 µg de anticuerpo anti-adrenomedulina o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o de un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM/kg de peso corporal. Se
15 prefiere > 10 µg/kg, más preferentemente > 20 µg/kg, aún más preferentemente > 100 µg de anticuerpo antiadrenomedulina o de un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o de un andamiaje proteico sin Ig antiADM/kg de peso corporal.
Esto puede aplicarse a otras enfermedades graves y agudas además del choque septicémico.
20 En una forma de realización específica de la invención, el anticuerpo es un anticuerpo monoclonal o un fragmento del mismo. En una forma de realización de la invención, el anticuerpo anti-ADM o el fragmento de anticuerpo anti-ADM es un anticuerpo humano o humanizado o derivados de los mismos. En una forma de realización específica una o más CDR (murinas) se injertan en un anticuerpo o fragmento de anticuerpo humano.
25 El objeto de la presente invención en un aspecto es un anticuerpo injertado con CDR humana o fragmento de anticuerpo del mismo que se une a ADM, en el que el anticuerpo injertado con CDR humana o fragmento de anticuerpo del mismo comprende una cadena pesada de anticuerpo (cadena H) que comprende
30 SEC. ID. nº 1 GYTFSRYW
SEC. ID. nº 2 ILPGSGST 35 y/o
SEC. ID. nº 3 TEGYEYDGFDY 40 y/o comprende además una cadena ligera de anticuerpo (cadena L) que comprende:
SEC. ID. nº 4 QSIVYSNGNTY
45 SEC. ID. nº 5 RVS
y/o
50 SEC. ID. nº 6 FQGSHIPYT.
En una forma de realización específica de la invención el objeto de la presente invención es un anticuerpo 55 monoclonal humano que se une a ADM o un fragmento de anticuerpo del mismo que se une a ADM en el que la cadena pesada comprende por lo menos una CDR seleccionada de entre el grupo que comprende:
SEC. ID. nº 1 GYTFSRYW
60 SEC. ID. nº 2 ILPGSGST
SEC. ID. nº 3 65 TEGYEYDGFDY
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y en el que la cadena ligera comprende por lo menos una CDR seleccionada de entre el grupo que comprende:
SEC. ID. nº 4 QSIVYSNGNTY
5 SEC. ID. nº 5 RVS
SEC. ID. nº 6 10 FQGSHIPYT.
En una forma de realización más específica de la invención el objeto de la presente invención es un anticuerpo monoclonal humano que se une a ADM o un fragmento de anticuerpo del mismo que se une a ADM en el que la cadena pesada comprende las secuencias
15 SEC. ID. nº 1 GYTFSRYW
SEC. ID. nº 2 20 ILPGSGST
SEC. ID. nº 3 TEGYEYDGFDY
25 y en el que la cadena ligera comprende las secuencias
SEC. ID. nº 4 QSIVYSNGNTY
30 SEC. ID. nº 5 RVS
SEC. ID. nº 6 FQGSHIPYT.
35 En una forma de realización muy específica el anticuerpo anti-ADM tiene una secuencia seleccionada de entre el grupo que comprende: las SEC. ID. nº 7, nº 8, nº 9, nº 10, nº 11, nº 12, nº 13 y nº 14:
SEC. ID. nº 7; AM-VH-C 40
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SEC ID nº: 8; AM-VH1
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SEC ID nº: 9; AM-VH2-E40 E12193118
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SEC ID nº: 10; AM-VH3-T26-E55
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SEC ID nº: 11; AM-VH4-T26-E40-E55
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SEC ID nº: 12; AM-VL-C
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SEC ID nº: 13; AM-VL1
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SEC ID nº: 14; AM-VL2-E40
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Dicho anticuerpo modulador o un fragmento de anticuerpo contra adrenomedulina ofrece la ventaja de que se facilita la dosificación de la administración. La combinación del bloqueo parcial o la reducción parcial de la bioactividad de 25 adrenomedulina y el aumento de la vida media in vivo (aumentando la bioactividad de la adrenomedulina) conducen a una simplificación beneficiosa de la dosificación del anticuerpo contra adrenomedulina o del fragmento de anticuerpo contra adrenomedulina. En una situación de exceso de adrenomedulina endógena (estimulación máxima, fase de la septicemia tardía, choque, fase hipodinámica) el efecto de disminución de la actividad es el mayor impacto del anticuerpo o fragmento, lo que limita el efecto (negativo) de la adrenomedulina. En caso de concentraciones de 30 adrenomedulina endógena bajas o normales, el efecto biológico del anticuerpo contra adrenomedulina o un fragmento de anticuerpo contra adrenomedulina es una combinación de la reducción (por bloqueo parcial) y aumento al aumentar la vida media de la adrenomedulina. Si el efecto de la vida media es más fuerte que el efecto de bloqueo, la actividad biológica de la adrenomedulina endógena se incrementa favorablemente en las fases tempranas de la septicemia (baja adrenomedulina, fase hiperdinámica). La dosificación de anticuerpos se puede 35 seleccionar de una concentración excesiva, debido a que ambas fases de la septicemia (temprana y tardía) se benefician del tratamiento con anticuerpo en exceso o con fragmento de anticuerpo contra adrenomedulina en caso de un efecto modulador. Medios excesivos: La concentración de anticuerpo contra adrenomedulina o un fragmento de anticuerpo contra adrenomedulina es mayor que la de la adrenomedulina endógena durante la fase tardía (choque) de septicemia. Esto significa, en el caso de un anticuerpo modulador o fragmento modulador la dosificación
40 puede ser de la siguiente manera:
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La concentración de adrenomedulina en el choque septicémico es de 226±66 fmol/ml (Nishio et al., 1997), una concentración equimolar de anticuerpo o fragmento es 42,5 µg/l de sangre, (bei 61/80 kg) 3,2 µg/kg peso corporal. Exceso significa por lo menos el doble (media) de la concentración de adrenomedulina del choque septicémico, por lo menos > 3µg de anticuerpo contra adrenomedulina o de un fragmento de anticuerpo contra adrenomedulina/kg de peso corporal, se prefieren por lo menos 6,4 µg de anticuerpo contra adrenomedulina o de un fragmento de anticuerpo contra adrenomedulina/kg de peso corporal. Se prefiere > 10 µg/kg, más preferentemente > 20 µg/kg, aún más preferentemente > 100 µg de anticuerpo contra adrenomedulina o de un fragmento de anticuerpo contra adrenomedulina/kg de peso corporal.
El anticuerpo anti-ADM o el fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM según la presente invención presenta una afinidad hacia la ADM humana de tal manera que la constante de afinidad que es superior a 10-7 M, mejor 10-8 M, la afinidad preferida es superior a 10-9 M, aún mejor superior a 10-10 M. Un experto en la técnica sabe que se puede considerarse el compensar la afinidad menor aplicando una dosis mayor de compuestos y esta medida no conduciría fuera del alcance de la invención. Las constantes de afinidad pueden determinarse según el procedimiento descrito en el ejemplo 1.
Los anticuerpos o fragmentos según la presente invención se pueden utilizar en combinaciones con otros agentes, como por ejemplo con la denominada proteína de unión a ADM, para las utilizaciones descritas en las mismas.
Especialmente útil es el anticuerpo o fragmento según la presente invención para reducir el riesgo de mortalidad durante la septicemia y el choque septicémico, es decir las fases tardías de la septicemia.
En una forma de realización preferida, el anticuerpo anti-ADM o el fragmento de anticuerpo anti-ADM o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM se utiliza para reducir el riesgo de mortalidad durante dicha enfermedad crónica o aguda o estado agudo de un paciente.
En una forma de realización, el anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM se utiliza en el tratamiento de una enfermedad aguda o crónica o estado agudo de un paciente según la presente invención, en la que dicho paciente es un paciente en la UCI. En otra forma de realización, el anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM se utiliza en el tratamiento de una enfermedad aguda o crónica de un paciente según la presente invención en la que dicho paciente está críticamente enfermo. Críticamente enfermo significa que un paciente está padeciendo una enfermedad o está en una situación en la que la muerte es posible o inminente.
El objeto de la presente invención es además un anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-ADM o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para su utilización en el tratamiento de una enfermedad aguda o crónica o de un estado agudo de un paciente según la presente invención en el que dicho anticuerpo o fragmento o andamiaje debe utilizarse en combinación de proteínas de unión a ADM. La proteína de unión a ADM también está presente de forma natural en la circulación de dicho paciente.
Debe hacerse hincapié en que la proteína de unión a ADM término también denominada proteína-1 de unión a ADM (factor H del complemento), que sin embargo no es un anticuerpo anti-ADM no neutralizante y modulador, el fragmento de anticuerpo anti-ADM o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM según la invención.
El objeto de la presente invención es además un anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo antiadrenomedulina o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para su utilización en el tratamiento de una enfermedad aguda o crónica o estado agudo de un paciente según la presente invención en la que dicho anticuerpo o fragmento
o andamiaje debe utilizarse en combinación con otros principios activos.
Es también objeto de la invención un anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo antiadrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para su utilizarse en combinación con otro medicamento principal en el que dicha combinación para su utilización en el tratamiento de una enfermedad aguda o crónica o de un estado agudo de un paciente para estabilizar la circulación de dicho paciente, en especial para la estabilización de la circulación general de dicho paciente.
Medicamento principal significa un medicamento que actúa contra la causa principal de dicha enfermedad o afección. Dicho medicamento principal pueden ser antibióticos en caso de infecciones.
Sorprendentemente, se ha demostrado por la presente invención que un anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM puede actuar como un medicamento principal para reducir el riesgo de mortalidad en dichas enfermedades y afecciones graves. El ejemplo 4, en particular la Tabla 4, demuestra que, sin ningún otro tratamiento más que el tratamiento con anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM el riesgo de mortalidad puede reducirse considerablemente por ejemplo, en la septicemia. Esto significa que en el caso de la septicemia o de otras infecciones graves que el anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o el
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andamiaje proteico sin Ig anti-ADM puede administrarse sin ninguna otra medicación con el fin de reducir la mortalidad en dichos pacientes. Esto puede ser de especial importancia si hay una resistencia contra la otra medicación principal como la resistencia a antibióticos o en caso de que exista una intolerancia contra la otra medicación principal como por ejemplo una intolerancia a antibióticos. En tales casos el tratamiento con anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM puede considerarse como única medicación principal.
La medicación secundaria es un medicamento que mejora la afección del paciente de manera complementaria como por ejemplo estabilizando la circulación en un paciente que padece una enfermedad o estado agudo. En particular, esto es en el sentido de estabilizar la circulación general en un paciente que padece una enfermedad o estado agudo.
Dichas medidas complementarias pueden ser la administración de vasopresores por ejemplo, de administración de catecolaminas y/o administración de líquidos.
Sorprendentemente, se ha constatado que el tratamiento con un anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM se puede aplicar como medicación principal con el fin de reducir la mortalidad en dichas enfermedades y afecciones.
Por lo tanto, en una forma de realización específica de las combinaciones mencionadas anteriormente dichas combinaciones deben utilizarse en combinación con vasopresores por ejemplo, catecolaminas en la que dicha combinación adicional debe utilizarse en el tratamiento de una enfermedad o afección crónica o aguda de un paciente para reducir el riesgo de mortalidad.
En una forma de realización de la invención, dicho paciente que padece una enfermedad crónica o aguda o afección crónica se caracteriza por la necesidad del paciente de conseguir la administración de vasopresores por ejemplo administración de catecolaminas.
En otra forma de realización de la invención dicho anticuerpo anti-ADM anticuerpo o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM puede aplicarse en combinación con antibióticos.
En toda la memoria, debe hacerse hincapié en que la aplicación o administración del anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM según la invención es preferentemente una aplicación/administración general.
Es objeto de la invención en una forma de realización específica, por lo tanto, un anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para su utilizarse en combinación con proteínas de unión de ADM y/o principios activos adicionales para la utilización en el tratamiento de un paciente que necesita un tratamiento de vasopresores por ejemplo, tratamiento con catecolaminas.
En una forma de realización específica de las combinaciones mencionadas anteriormente dichas combinaciones deben utilizarse en combinación con líquidos administrados por vía intravenosa, en la que dicha combinación debe utilizarse en el tratamiento de una enfermedad o afección crónica o aguda de un paciente para reducir el riesgo de mortalidad. Debe hacerse hincapié en que la aplicación o administración del anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM según la invención es preferentemente una aplicación/administración generalizada.
En una forma de realización de la invención, dicho paciente que padece una enfermedad crónica o aguda o estado agudo se caracteriza por la necesidad del paciente para obtener líquidos intravenosos.
Es objeto de la invención en una forma de realización específica, por lo tanto, un anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM en combinación con la proteína de unión de ADM y/o principios activos adicionales para su utilización en el tratamiento de un paciente que necesita líquidos intravenosos.
Dicho anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM o combinaciones de los mismos con la proteína de unión a ADM y/o principios activos adicionales pueden utilizarse en combinación con vasopresores por ejemplo catecolaminas y/o con líquidos administrados por vía intravenosa para su utilización en una enfermedad crónica o aguda o estado agudo. Debe hacerse hincapié en que la aplicación o administración del anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM según la invención es preferentemente una aplicación/administración generalizada.
Pero como se esbozó anteriormente en otra forma de realización específica dicho anticuerpo anti-ADM o fragmento de anticuerpo anti-ADM o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM puede administrarse para el tratamiento de dicho paciente incluso si el paciente no presenta signos de problemas de circulación, por ejemplo tensión arterial baja, y/o
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si el paciente no presenta signos de desbalance hídrico o/si el paciente no presenta signos de disfunción de órganos. La administración de anticuerpos anti-ADM o fragmentos de anticuerpo anti-ADM o andamiajes proteicos sin Ig anti-ADM da como resultado una normalización de la circulación sanguínea capilar al ajustar el anti-ADM a un nivel fisiológico y está influyendo de este modo en la respuesta de dicho paciente directamente y reduce la mortalidad en dichos pacientes. Por lo tanto, en esta otra forma de realización específica, el paciente puede no estar en necesidad de un tratamiento de vasopresores por ejemplo, tratamiento con catecolaminas y/o puede no estar necesitado de líquidos intravenosos y/o puede no tener signos de disfunción de órganos, como por ejemplo, disfunción renal o hepática.
Es también objeto de la invención un anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM según la presente invención para su utilizarse en combinación con anticuerpos contra TNF-alfa. Los anticuerpos contra TNF-alfa están disponibles en el mercado para el tratamiento de los pacientes.
Es objeto de la presente invención además una formulación farmacéutica que comprende un anticuerpo o fragmento
o un andamiaje según la presente invención.
Es objeto de la presente invención además una formulación farmacéutica según la presente invención en la que dicha formulación farmacéutica es una solución, preferentemente una solución lista para su uso.
Dicha formulación farmacéutica puede administrarse por vía intramuscular. Dicha formulación farmacéutica puede administrarse por vía intravascular. Dicha formulación farmacéutica se puede administrar por infusión.
En otra forma de realización objeto de la presente invención existe además una formulación farmacéutica según la presente invención en la que dicha formulación farmacéutica está en estado seco para redisolverse antes de su uso.
En otra forma de realización objeto de la presente invención es además una formulación farmacéutica según la presente invención en la que dicha formulación farmacéutica está en estado liofilizado.
Debe hacerse hincapié en que la formulación farmacéutica según la invención, tal como puede administrarse por vía intramuscular, intravascular, o por infusión se administra preferentemente por vía generalizada a un paciente para reducir el riesgo de mortalidad en un paciente que padece una enfermedad crónica o aguda o un estado agudo.
Por lo tanto, en otra realización de la presente invención la formulación farmacéutica según la presente invención debe administrarse por vía generalizada a un paciente para reducir el riesgo de mortalidad en un paciente que padece una enfermedad crónica o aguda o un estado agudo.
En una forma de realización específica las formulaciones farmacéuticas según la invención se proponen para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad en dicho paciente, en el que dicha formulación farmacéutica debe administrarse de forma generalizada.
Ejemplos
Debe hacerse hincapié en que los anticuerpos, fragmentos de anticuerpos y andamiajes proteicos sin Ig de la porción de ejemplos según la invención se unen a ADM, y por lo tanto deben considerarse como anticuerpos antiADM/fragmentos de anticuerpos/andamiajes proteicos sin Ig.
Los ejemplos y figuras son a título de ilustración solamente y no amplían el alcance de las reivindicaciones.
Ejemplo 1
Generación de anticuerpos y determinación de sus constantes de afinidad
Se produjeron varios anticuerpos humanos y murinos y se determinaron sus constantes de afinidad (véanse las Tablas 1 y 2).
Péptidos/conjugados para inmunización:
Se sintetizaron péptidos para inmunización, véase la Tabla 1, (JPT Technologies, Berlín, Alemania) con un resto de cisteína con terminal N adicional (si no hay cisteína presente dentro de la secuencia-ADM seleccionada) para la conjugación de los péptidos a albúmina de suero bovino (BSA). Los péptidos se unen por enlace covalente a BSA mediante utilizando gel de acoplamiento Sulfolink (Perbio-science, Bonn, Alemania). El procedimiento de acoplamiento se llevó a cabo según el manual de Perbio.
Los anticuerpos murinos se generaron según el siguiente método:
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Un ratón Balb/c se inmunizó con 100 µg de conjugado péptido-ASB los días 0 y 14 (emulsionado en 100 µl de adyuvante completo de Freund) y 50 µg los días 21 y 28 (en 100 µl de adyuvante incompleto de Freund). Tres días antes de realizar el experimento de fusión, el animal recibió 50 µg de conjugado disuelto en 100 µl de solución salina, administrada en una inyección intraperitoneal y otra intravenosa.
Los esplenocitos del ratón inmunizado y células de la estirpe celular de mieloma SP2/0 se fusionaron con 1 ml de polietilenglicol al 50% durante 30 s a 37ºC. Después del lavado, las células se sembraron en placas de cultivo celular de 96 pocillos. Se seleccionaron clones híbridos por cultivo en medio HAT [medio de cultivo RPMI 1640 enriquecido con 20% de suero de ternera fetal y complemento HAT]. Después de dos semanas se reemplazó el medio HAT con medio HT durante tres pases seguido de retorno al medio de cultivo celular normal.
En los sobrenadantes de cultivo celular se detectaron en primer lugar anticuerpos de IgG específicos para el antígeno tres semanas después de la fusión. Los microcultivos positivos se transfirieron a placas de 24 pocillos para su propagación. Después de una nueva prueba, los cultivos seleccionados se clonaron y se volvieron a clonar utilizando la técnica de dilución restrictiva y se determinaron los isotipos. (Véase también Lane, R.D. "A shortduration polyethylene glycol fusion technique for increasing production of monoclonal antibody-secreting hybridomas", J. Immunol. Meth. 81: 223-228; (1985), Ziegler, B. et al. "Glutamate decarboxylase (GAD) is not detectable on the surface of rat islet cells examined by cytofluorometry and complement-dependent antibodymediated cytotoxicity of monoclonal GAD antibodies", Horm. Metab. Res. 28:11-15, (1996)).
Producción de anticuerpos monoclonales de ratón:
Se produjeron anticuerpos por procedimientos convencionales de producción de anticuerpos (Marx et al., Monoclonal Antibody Production, ATLA 25, 121, 1997) y se purificaron con Proteína A. Las purezas de los anticuerpos fueron > 95% en base al análisis de electroforesis en gel de SDS.
Anticuerpos Humanos
Se produjeron anticuerpos humanos por medio de la presentación en fagos según el siguiente procedimiento:
Se utilizaron bibliotecas de genes HAL7/8 de anticuerpos humanos sin tratamiento previo para el aislamiento de dominios variables F (scFv) monocatenarios recombinantes contra el péptido adrenomedulina. Las bibliotecas de genes de anticuerpos se cribaron con una estrategia panorámica que comprende el empleo de péptidos que contienen una etiqueta de biotina unida por dos espaciadores diferentes a la secuencia peptídica de adrenomedulina. Una mezcla de rondas panorámicas utilizando antígeno unido de manera no específica y antígeno unido a estreptavidina se utilizó para minimizar el fondo de aglutinantes no específicos. Los fagos eluidos de la tercera ronda panorámica se han utilizado para la generación de cepas de E. coli que expresan scFv monoclonal. El sobrenadante de cultivo de estas cepas clonales se ha utilizado directamente para un ensayo de ELISA con antígeno (véase también Hust, M., Meyer, T., Voedisch, B., Rülker, T., Thie, H., El-Ghezal, A., Kirsch, M.I., Schütte, M., Helmsing, S., Meier, D., Schirrmann, T., Dübel, S., 2011. A human scFv antibody generation pipeline for proteome research. Journal of Biotechnology 152, 159-170; Schütte, M., Thullier, P., Pelat, T., Wezler, X., Rosenstock, P., Hinz, D.,Kirsch, M.I., Hasenberg, M., Frank, R., Schirrmann, T., Gunzer, M., Hust, M., Dübel, S., 2009. Identification of a putative Crf splice variant and generation of recombinant antibodies for the specific detection of Aspergillus fumigatus. PloS One 4, e6625).
Se han seleccionado clones positivos basándose de la señal positiva de ELISA para antígenos y negativa para placas de microvaloración recubiertas con estreptavidina. Para más caracterizaciones el marco de lectura abierto de scFv se ha clonado en el plásmido de expresión pOPE107 (Hust et al., J. Biotechn. 2011), capturado del sobrenadante de cultivo por cromatografía de afinidad por iones metálicos inmovilizados y purificado una cromatografía de exclusión por tamaño.
Constantes de afinidad
Para determinar la afinidad de los anticuerpos a adrenomedulina, la cinética de unión de adrenomedulina al anticuerpo inmovilizado se determinó por medio de resonancia de plasmón en superficie sin etiqueta libre de utilizando un sistema Biacore 2000 (GE Healthcare Europe GmbH, Freiburg, Alemania). Se realizó inmovilización reversible de los anticuerpos con un anticuerpo Fc anti-ratón acoplado por enlace covalente en alta densidad a una superficie del detector CM5 según las instrucciones del fabricante (kit de captura de anticuerpo de ratón; GE Healthcare). (Lorenz et al., "Functional Antibodies Targeting IsaA of Staphylococcus aureus Augment Host Immune Response and Open New Perspectives for Antibacterial Therapy"; Antimicrob. Agents Chemother. enero 2011; 55(1):165-173).
Los anticuerpos monoclonales se produjeron contra las regiones de ADM representadas a continuación de ADM humana y murina, respectivamente. La tabla siguiente representa una selección de anticuerpos obtenidos utilizados en experimentos adicionales. La selección se basó en la región de destino:
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Tabla 1:
Número de secuencia
Antígeno/Inmunógeno Región de ADM Denominación Constantes de afinidad Kd (M)
SEC. ID. nº 15
YRQSMNNFQGLRSFGCRFGTC 1-21 NT-H 5,9x10 -9
SEC. ID. nº 16
CTVQKLAHQIYQ 21-32 MR-H 2x10 -9
SEC. ID. nº 17
CAPRSKISPQGY-NH2 C-42-52 CT-H 1,1x10 -9
SEC. ID. nº 18
YRQSMNQGSRSNGCRFGTC 1-19 NT-M 3,9x10 -9
SEC. ID. nº 19
CTFQKLAHQIYQ 19-31 MR-M 4,5x10 -10
SEC. ID. nº 20
CAPRNKISPQGY-NH2 C-40-50 CT-M 9x10 -9
La siguiente es una lista de más anticuerpos monoclonales obtenidos: Lista de anticuerpos anti-ADM Tabla 2:
Objetivo
Fuente Número de clon Afinidad (M) Bioanálisis de máx. inhibición (%) (véase el ejemplo 2)
NT-M
Ratón ADM/63 5,8x10 -9 45
Ratón
ADM/364 2,2x10 -8 48
Ratón
ADM/365 3,0x10 -8
Ratón
ADM/366 1,7x10 -8
Ratón
ADM/367 1,3x10 -8
Ratón
ADM/368 1,9x10 -8
Ratón
ADM/369 2,0x10 -8
Ratón
ADM/370 1,6x10 -8
Ratón
ADM/371 2,0x10 -8
Ratón
ADM/372 2,5x10 -8
Ratón
ADM/373 1,8x10 -8
Ratón
ADM/377 1,5x10 -8
Ratón
ADM/378 2,2x10 -8
Ratón
ADM/379 1,6x10 -8
Ratón
ADM/380 1,8x10 -8
Ratón
ADM/381 2,4x10 -8
Ratón
ADM/382 1,6x10 -8
Ratón
ADM/383 1,8x10 -8
Ratón
ADM/384 1,7x10 -8
Ratón
ADM/385 1,7x10 -8
Ratón
ADM/403 1,2x10 -8
Ratón
ADM/395 1,2x10 -8
Ratón
ADM/396 3,0x10 -8
Ratón
ADM/397 1,5x10 -8
MR-M
Ratón ADM/38 4,5x10 -10 68
MR-M
Ratón ADM/39 5,9x10 -9 72
CT-M
Ratón ADM/65 9,0x10 -9 100
CT-M
Ratón ADM/66 1,6x10 -8 100
NT-H
Ratón ADM/33 5,9x10 -8 38
NT-H
Ratón ADM/34 1,6x10 -8 22
MR-H
Ratón ADM/41 1,2x10 -8 67
MR-H
Ratón ADM/42 <1x10 -8
MR-H
Ratón ADM/43 2,0x10 -9 73
MR-H
Ratón ADM/44 <1x10 -8
CT-H
Ratón ADM/15 <1x10 -8
CT-H
Ratón ADM/16 1,1x10 -9 100
CT-H
Ratón ADM/17 3,7x10 -9 100
CT-H
Ratón ADM/18 <1x10 -8
ADMh
Exposición en fagos ADM/A7 <1x10 -8
Exposición en fagos
ADM/B7 <1x10 -8
Exposición en fagos
ADM/C7 <1x10 -8
Exposición en fagos
ADM/G3 <1x10 -8
Exposición en fagos
ADM/B6 <1x10 -8
Exposición en fagos
ADM/B11 <1x10 -8
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Objetivo
Fuente Número de clon Afinidad (M) Bioanálisis de máx. inhibición (%) (véase el ejemplo 2)
Exposición en fagos
ADM/D8 <1x10 -8
Exposición en fagos
ADM/D11 <1x10 -8
Exposición en fagos
ADM/G12 <1x10 -8
Generación de fragmentos de anticuerpo por digestión enzimática:
La generación de fragmentos Fab y F(ab)2 se hizo por digestión enzimática del anticuerpo NT-M murino completo. El anticuerpo NT-M se digirió utilizando a) el kit de preparación de F(ab)2 a base de pepsina (Pierce 44988) y b) el kit de preparación de Fab a base de papaína (Pierce 44985). Los procedimientos de fragmentación se realizaron según las instrucciones proporcionadas por el proveedor. La digestión se llevó a cabo en el caso de la fragmentación de F(ab)2 durante 8 h a 37ºC. La digestión con fragmentación de Fab se llevó a cabo durante 16 h, respectivamente.
Procedimiento para generación y purificación de Fab:
La papaína inmovilizada se equilibró lavando la resina con 0,5 ml de tampón de digestión y centrifugando la columna a 5000 x g durante 1 minuto. El tampón se desechó después. La columna de desalado se preparó eliminando la solución de almacenamiento y lavándola con tampón de digestión, centrifugando cada vez posteriormente a 1000 x g durante 2 minutos. Se añadieron 0,5 ml de la muestra de IgG preparada al tubo de la columna de centrifugación que contenía la papaína inmovilizada equilibrada. El tiempo de incubación de la reacción de digestión se realizó durante 16 h en un balancín de sobremesa a 37ºC. La columna se centrifugó a 5000 x g durante 1 minuto para separar el producto de la digestión de la papaína inmovilizada. Después se lavó la resina con 0,5 ml de PBS y se centrifugó a 5000 x g durante 1 minuto. La fracción de lavado se añadió al anticuerpo digerido que el volumen total de la muestra era 1,0 ml. La columna con NAb Proteína A se equilibró con PBS y tampón de elución de IgG a temperatura ambiente. La columna se centrifugó durante 1 minuto para eliminar la solución de almacenamiento (contiene azida de sodio al 0,02%) y se equilibró añadiendo 2 ml de PBS, se volvió a centrifugar durante 1 minuto y se desechó flujo a través. La muestra se aplicó a la columna y se volvió a poner en suspensión por inversión. La incubación se realizó a temperatura ambiente con mezclado en tambor vertical durante 10 minutos. La columna se centrifugó durante 1 minuto, ahorrando el flujo a través con los fragmentos Fab.
(Referencias: Coulter, A. y Harris, R. (1983) J. Immunol Meth. 59, 199-203; Lindner I. et al. (2010) {alpha}2-Macroglobulin inhibits the malignant properties of astrocytoma cells by impeding {beta}-catenin signaling. Cancer Res. 70, 277-87; Kaufmann B. et al. (2010) Neutralization of West Nile virus by cross-linking of its surface proteins with Fab fragments of the human monoclonal antibody CR4354. PNAS. 107, 18950-5.; Chen X. et al. (2010) Requirement of open headpiece conformation for activation of leukocyte integrin αxβ2. PNAS. 107, 14727-32.; Uysal
H. et al. (2009) Structure and pathogenicity of antibodies specific for citrullinated collagen type II in experimental arthitis. J. Exp. Med. 206, 449-62.; Thomas G. M. et al. (2009) Cancer cell-derived microparticles bearing P-selectin glycoprotein ligand 1 accelerate thrombus formation in vivo. J. Exp. Med. 206, 1913-27.; Kong F. et al. (2009) Demonstration of catch bonds between an integrin and its ligand. J. Cell Biol. 185, 1275-84).
Procedimiento para la generación y purificación de fragmentos de F(ab')2:
La pepsina inmovilizada se equilibró lavando la resina con 0,5 ml de tampón de digestión y centrifugando la columna a 5.000 x g durante 1 minuto. El tampón se desechó después. La columna de desalado se preparó eliminando la solución de almacenamiento y lavándola con tampón de digestión, centrifugándola cada vez luego a 1000 x g durante 2 minutos. Se añadieron 0,5 ml de la muestra preparada de IgG al tubo de columna de centrifugación que contenía la pepsina inmovilizada equilibrada. El tiempo de incubación de la reacción de digestión se realizó durante 16 h en un balancín de sobremesa a 37ºC. La columna se centrifugó a 5000 x g durante 1 minuto para separar digerir de la papaína inmovilizada. Después la resina se lavó con 0,5 ml de PBS y se centrifugó a 5000 x g durante 1 minuto. La fracción de lavado se añadió al anticuerpo digerido que el volumen total de la muestra era de 1,0 ml. La columna con Nab Proteína A se equilibró con PBS y tampón de elución de IgG a temperatura ambiente. La columna se centrifugó durante 1 minuto para eliminar la solución de almacenamiento (contiene azida de sodio al 0,02%) y se equilibró añadiendo 2 ml de PBS, se volvió a centrifugar durante 1 minuto y el flujo a través se desechó. La muestra se aplicó a la columna y se volvió a poner en suspensión por inversión. La incubación se realizó a temperatura ambiente con mezclado en tambor vertical durante 10 minutos. La columna se centrifugó durante 1 minuto, ahorrando el flujo a través con los fragmentos Fab.
(Referencias: Mariani, M., et al. (1991). A new enzymatic method to obtain high-yield F(ab')2 suitable for clinical use from mouse IgG1. Mol. Immunol. 28: 69-77; Beale, D. (1987). Molecular fragmentation: Some applications in immunology. Exp. Comp. Immunol. 11:287-96.; Ellerson, J.R., et al. (1972). A fragment corresponding to the CH2 region of immunoglobulin G (IgG) with complement fixing activity. FEBS Letters 24(3):318-22.; Kerbel, R.S. y Elliot,
B.E. (1983). Detection of Fc receptors. Meth. Enzymol. 93:113-147; Kulkarni, P.N., et al. (1985). Conjugation of methotrexate to IgG antibodies and their F(ab')2 fragments and the effect of conjugated methotrexate on tumor growth in vivo. Cancer Immunol. Immunotherapy 19:211-4.; Lamoyi, E. (1986). Preparation of F(ab')2 Fragments from mouse IgG of various subclasses. Meth. Enzymol. 121:652-663.; Parham, P., et al. (1982). Monoclonal antibodies:
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
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purification, fragmentation and application to structural and functional studies of class I MHC antigens. J. Immunol. Meth. 53:133-73.; Raychaudhuri, G., et al. (1985). Human IgG1 and its Fc fragment bind with different affinities to the Fc receptors on the human U937, HL-60 and ML-1 cell lines. Mol Immunol 22(9):1009-19.; Rousseaux, J., et al. (1980). The differential enzyme sensitivity of rat immunoglobulin G subclasses to papain and pepsin. Mol. Immunol. 17:469-82.; Rousseaux, J., et al. (1983). Optimal condition for the preparation of Fab and F(ab')2 fragments from monoclonal IgG of different rat IgG subclasses. J. Immunol. Meth. 64:141-6.; Wilson, K.M., et al. (1991). Rapid whole blood assay for HIV-1 seropositivity using an Fab-peptide conjugate. J. Immunol. Meth. 138:111-9.)
Humanización del fragmento de anticuerpo NT-H
El fragmento de anticuerpo se humanizó por el método de injerto de CDR (Jones, P.T., Dear, P.H., Foote, J., Neuberger, M.S., y Winter, G. (1986) Replacing the complementarity-determining regions in a human antibody with those from a mouse. Nature 321, 522-525).
Para conseguir la secuencia humanizada se llevaron a cabo las etapas siguientes:
Extracción de ARN completo: El ARN completo se extrajo de hibridomas de NT-H utilizando el kit de Qiagen.
Primera ronda de RT-PCR: Se utilizó el kit OneStep RT-PCR de QIAGEN® (Cat. nº 210210). Se realizó RT-PCR con conjuntos de cebadores específicos para las cadenas pesada y ligera. Para cada muestra de ARN, se montaron las reacciones de RT-PCR de cada una de las 12 cadenas pesadas y de 11 cadenas ligeras utilizando mezclas de cebadores directos degenerados que cubren las secuencias principales de las regiones variables. Los cebadores inversos se encuentran en las regiones constantes de las cadenas pesadas y ligeras. No se diseñaron secuencias de restricción en los cebadores.
Plan de la reacción: 5 veces 5,0 µl de tampón OneStep RT-PCR de QIAGEN®, 0,8 µl de mezcla de dNTP (que contiene 10 mM de cada dNTP), 0,5 µl de conjunto de cebadores, 0,8 µl de OneStep RT-PCR Enzyme Mix de QIAGEN®, 2,0 µl de plantilla de ARN, agua sin RNasa hasta 20,0 µl, volumen total 20,0 µl
Condiciones de PCRPCR: Transcripción inversa: 50°C, 3 0 min; Activación de PCR inicial: 95°C, 15 min
Ciclación: 20 ciclos de 94°C, 25 seg; 54°C, 30 seg; 72°C, 30 seg; prolongación final: 72°C, 10 min
Segunda ronda de PCR semianidada: Los productos de RT-PCR de las reacciones de la primera ronda se ampliaron aún más en la PCR de la segunda ronda. Se montaron las reacciones de RT-PCR de cada una de las 12 cadenas pesadas y 11 cadenas ligeras utilizando conjuntos de cebadores semianidados específicos para las regiones variables de anticuerpos.
Plan de la reacción: 2 veces 10 µl de mezcla de PCR; 2 µl de conjunto de cebadores; 8 µl del producto de PCR de la primera ronda; 20 µl de volumen total; Informe de clonación de anticuerpos de hibridomas
Condición de la PCR: Desnaturalización inicial de 5 min. a 95°C; 25 ciclos de 95°C durante 25 s., 57°C durante 30 s., 68°C durante 30 s.; la prolongación final es de 10 min. a 68°C.
Una vez terminada la PCR, las muestras de la reacción de PCR se introdujeron en gel de agarosa para visualizar los fragmentos ampliados de ADN. Tras la secuenciación de más de 15 fragmentos clonados de ADN ampliados por RT-PCR anidada, varias cadenas pesadas y ligeras de anticuerpos de ratón se han clonado y parecen correctas. La alineación de secuencias de proteínas y el análisis de CDR identifica una cadena pesada y una cadena ligera. Después de la alineación con secuencias con marco humano homólogo la secuencia humanizada resultante para la cadena pesada variable es la siguiente: véase la figura 6 (como los aminoácidos en las posiciones 26, 40 y 55 de la cadena pesada variable y el aminoácido en la posición 40 en la ligera variable son críticos para las propiedades de unión, pueden revertirse al original murino. Los candidatos resultantes se muestran a continuación) (Padlan, E. A. (1991) A possible procedure for reducing the immunogenicity of antibody variable domains while preserving their ligand-binding properties. Mol. Immunol. 28, 489-498.; Harris, L. y Bajorath, J. (1995) Profiles for the analysis of immunoglobulin sequences: Comparison of V gene subgroups. Protein Sci. 4, 306-310.).
Anotación para las secuencias de fragmentos de anticuerpos (SEC. ID. nº 7 a nº 14): en negrita y subrayadas están las CDR 1, 2, 3 en orden cronológico; en cursiva están las regiones constantes; las regiones bisagra se destacan con letras en negrita y la etiqueta de histidina con letras en negrita y cursiva; la mutación puntual del marco tiene un fondo de letra gris.
SEC. ID. nº 7; AM-VH-C
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SEC ID nº: 8; AM-VH1
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SEC ID nº: 9; AM-VH2-E40
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SEC ID nº: 10; AM-VH3-T26-E55
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SEC ID nº: 11; AM-VH4-T26-E40-E55
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SEC ID nº: 12; AM-VL-C
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SEC ID nº: 13; AM-VL1
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SEC ID nº: 14; AM-VL2-E40 E12193118
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Ejemplo 2
5 Efecto de los anticuerpos anti-ADM seleccionados sobre la bioactividad anti-ADM
El efecto de los anticuerpos contra ADM seleccionados sobre la bioactividad de ADM se probó en un análisis funcional de AMPc receptor de adrenomedulina recombinante humana (bioanálisis de adrenomedulina).
10 Pruebas de anticuerpos objetivo humanos o de adrenomedulina de ratón en el análisis funcional de AMPc receptor de adrenomedulina recombinante humana (bioanálisis de adrenomedulina)
Materiales: Estirpe celular: CHO-K1 15 Receptor: Adrenomedulina (CRLR + RAMP3) Número de registro del receptor; estirpe celular: CRLR: U17473; RAMP3: AJ001016
Células CHO-K1 que expresan el receptor recombinante humano adrenomedulina (FAST-027C) cultivadas antes de la prueba en medios sin antibiótico se desprendieron por lavado suave con PBS-EDTA (EDTA 5 mM), se 20 recuperaron por centrifugación y se volvieron a poner en suspensión en tampón de análisis (KRH: KCl 5 mM, MgSO4 1,25 mM, NaCl 124 mM, HEPES 25 mM, glucosa 13,3 mM, KH2PO4 1,25 mM, CaCl2 1,45 mM, 0,5 g/l de ASB).
Se realizaron en paralelo curvas de respuesta a la dosis con los agonistas de referencia (ADMh o ADMm). Prueba de antagonistas (96 pocillos):
25 Para la prueba de antagonistas, se mezclaron 6 µl del agonista de referencia (adrenomedulina humana (5,63 nM) o de ratón (0,67 nM)) con 6 µl de las muestras de ensayo en diferentes diluciones de antagonistas; o con 6 µl de tampón. Tras la incubación durante 60 min. a temperatura ambiente, se añadieron 12 µl de células (2.500 células/pocillo). Las placas se incubaron durante 30 min. a temperatura ambiente. Después de la adición del tampón
30 de lisis, se estimará el porcentaje de DeltaF, según las especificaciones del fabricante, con el kit HTRF de Cis-Bio International (Cat. n°62AM2 PEB). ADMh 22-52 se utilizó como antagonista de referencia.
Análisis AMPc-HTRF de pruebas en anticuerpos
35 En los anticuerpos anti-ADMh (NT-H, MR-H, CT-H) se determinó la actividad antagonista en el análisis funcional de AMPc receptor de adrenomedulina recombinante humana (FAST-027C) en presencia de ADM 1-52 humana 5,63 nM, en las siguientes concentraciones finales de anticuerpos: 100 µg/ml, 20 µg/ml, 4 µg/ml, 0,8 µg/ml y 0,16 µg/ml.
En los anticuerpos anti-ADMm (NT-M, MR-M, CT-M) se determinó la actividad antagonista en el análisis funcional de
40 AMPc receptor de adrenomedulina recombinante humana (FAST-027C) en presencia de ADM 1-50 de ratón 0,67nM, en las siguientes concentraciones finales de anticuerpos: 100 µg/ml, 20 µg/ml, 4 µg/ml, 0,8 µg/ml y 0,16 µg/ml. Los datos representaban gráficamente la inhibición relativa frente a la concentración de antagonista (véanse las figura 3a a 31). La inhibición máxima por cada anticuerpo se da en la tabla 3.
45 Tabla 3:
Anticuerpo
Inhibición máxima de bioactividad de ADM (Bioanálisis de ADM) (%)
NT-H
38
MR-H
73
CT-H
100
NT-M FAB
26
NT-M FAB2
28
NT-M
45
MR-M
66
CT-M
100
IgG no específica de ratón
0
Ejemplo 3
50 Datos para la estabilización de ADMh por el anticuerpo anti-ADM 25
15
25
35
45
55
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Se probó el efecto estabilizante de ADM humana por los anticuerpos contra ADM humana utilizando un inmunoanálisis de ADMh.
Inmunoanálisis para la determinación cuantitativa de adrenomedulina humana
La tecnología utilizada fue un inmunoanálisis de luminiscencia con tubo revestido en sándwich, basada en el marcaje con éster de acridinio.
Compuesto marcado (trazador): Se mezclaron 100 µg (100 µl) CT-H (1mg/ml en PBS, pH 7,4, AdrenoMed AG Alemania) con 10 µl de NHS-éster de acridinio (1mg/ml en acetonitrilo, InVent GmbH, Alemania) (patente EP 0353971) y se incubaron durante 20 min. a temperatura ambiente. CT-H marcado se purificó por HPLC de filtración en gel en Bio-Sil® SEC 400-5 (Bio-Rad Laboratories, Inc., USA.) El CT-H purificado se diluyó en (300 mmol/l de fosfato potásico, 100 mmol/l de NaCl, 10 mmol/l de Na-EDTA, 5 g/l de albúmina de suero bovino, pH 7,0). La concentración final fue de aprox. 800.000 unidades relativas de luz (RLU) de compuesto marcado (20 ng aprox. de anticuerpo marcado) por cada 200 µl. Se midió la quimioluminiscencia del éster de acridinio con un AutoLumat LB 953 (Berthold Technologies GmbH & Co. KG).
Fase sólida: Tubos de poliestireno (Greiner Bio-One International AG, Austria) se recubrieron (18 h a temperatura ambiente) con MR-H (AdrenoMed AG, Alemania) (1,5 µg de MR-H/0,3 ml 100 mmol/l de NaCl, 50 mmol/l de Tris/HCl, pH 7,8). Tras el bloqueo con 5% de albúmina de suero bovino, los tubos se lavaron con PBS, pH 7,4 y se secaron al vacío.
Calibración:
Se calibró el análisis, utilizando diluciones de ADMh (BACHEM AG, Suiza) en 250 mmol/l de NaCl, 2 g/l de Triton X100, 50 g/l de albúmina de suero bovino, 20 lengüetas/l de mezcla de inhibidor de proteasa (Roche Diagnostics AG, Suiza))
Inmunoanálisis de ADMh:
Se pipetearon 50 µl de muestra (o calibrador) en tubos recubiertos, después de añadir CT-H marcado (200µl), se incubaron los tubos durante 4 horas a 4°C. El trazad or no unido se eliminó lavando 5 veces (1 ml cada vez) con solución de lavado (PBS 20 mM, pH 7,4, Triton X-100 al 0,1%).
La quimioluminiscencia unida al tubo se midió utilizando la LB 953
La figura 4 muestra una curva dosis/señal típica de ADMh. Y una curva de dosis/señal de ADMh en presencia de 100 µg/ml de anticuerpo NT-H.
NT-H no afectó al inmunoanálisis de ADMh descrito.
Estabilidad de adrenomedulina humana:
ADM humana se diluyó en plasma humano con citrato (10 nM de concentración final) y se incubó a 24°C. En los puntos de tiempo seleccionados, la degradación de ADMh se detuvo por congelación a -20°C. La incubación se llevó a cabo en ausencia y presencia de NT-H (100µg/ml). La ADMh restante se analizó cuantitativamente utilizando el inmunoanálisis de ADMh descrito anteriormente.
La figura 5 muestra la estabilidad de ADMh en el plasma humano (citrato) en ausencia y en presencia del anticuerpo NT-H. La vida media de ADMh solo fue de 7,8 h y en presencia de NT-H, la vida media fue 18,3 h. (2,3 veces mayor estabilidad).
Ejemplo 4
Mortalidad por septicemia (tratamiento inicial)
Modelo animal
Para el estudio se utilizaron ratones C57B1/6 macho de 12-15 semanas (Charles River Laboratories, Alemania). Se había provocado quirúrgicamente peritonitis bajo ligera anestesia de isoflurano. Las incisiones se realizaron en el cuadrante superior izquierdo de la cavidad peritoneal (posición normal del intestino ciego). Se expuso el intestino ciego y se colocó una ligadura apretada alrededor del ciego con suturas distales a la inserción del intestino delgado. Se hizo una herida por punción con una aguja de calibre 24 en el ciego y pequeñas cantidades de contenido cecal se expresaron a través de la herida. El intestino ciego fue sustituido en la cavidad peritoneal y se cerró el punto de laparotomía. Por último, los animales fueron devueltos a sus jaulas con libre acceso a la comida y al agua. Se les
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administró por vía sc. 500 µl de solución salina como reposición de líquidos.
Aplicación y dosificación del compuesto (NT-M, MR-M, CT-M)
5 Los ratones se trataron inmediatamente después de la CLP (tratamiento inicial). CLP es la abreviatura de la ligadura y punción cecal (CLP).
Grupos en estudio
10 Se ensayaron tres compuestos frente al vehículo y frente al tratamiento del compuesto de referencia. Cada grupo contenía 5 ratones para la extracción de sangre después de 1 día para determinación BUN (análisis de nitrógeno ureico en suero sanguíneo). Se siguieron diez ratones más por cada grupo durante un período de 4 días.
Dosis de tratamiento del grupo (10 µl/g de peso corporal)/seguimiento:
15 1 NT-M, 0,2 mg/ml más de 4 días de supervivencia 2 MR-M, 0,2 mg/ml más de 4 días de supervivencia 3 CT-M, 0,2 mg/ml más de 4 días de supervivencia 4 IgG de ratón no específica, 0,2 mg/ml más de 4 días de supervivencia
20 5 referencia -PBS 10µl/g de peso corporal más de 4 días de supervivencia
Química clínica
Para la función renal se midieron concentraciones de nitrógeno ureico en sangre (BUN) de referencia y el día 1
25 después de CLP. Se extrajeron muestras de sangre del seno cavernoso con un capilar bajo anestesia ligera con éter. Se realizaron mediciones utilizando un Multianalyser AU 400 Olympus. La mortalidad a los 4 días se da en la tabla 4. Las concentraciones medias de BUN se dan en la tabla 5.
Tabla 4: 30
Mortalidad a los 4 días
supervivencia (%)
PBS
0
IgG no específica de ratón
0
CT-M
10
MR-M
30
NT-M
70
Tabla 5:
Media de 5 animales
BUN pre-CLP (mM) BUN día 1 (mM)
PBS
8,0 23,2
IgG de ratón no específica
7,9 15,5
CT-M
7,8 13,5
MR-M
8,1 24,9
NT-M
8,8 8,2
35 Se puede observar en la Tabla 4 que el anticuerpo de NT-M redujo la mortalidad considerablemente. Después de 4 días el 70% de los ratones sobrevivieron cuando se trataron con anticuerpo NT-M. Cuando se trató con anticuerpo MR-M el 30% de los animales sobrevivió y cuando se trataban con anticuerpo CT-M el 10% de los animales sobrevivió después de 4 días. A diferencia de esto todos los ratones habían muerto después de 4 días cuando se trataban con IgG no específica de ratón. El mismo resultado se obtuvo en el grupo de referencia donde se administró
40 PBS (solución salina tamponada con fosfato) a ratones.
El análisis de nitrógeno de urea en sangre o BUN se utiliza para evaluar la función renal, para ayudar a diagnosticar la enfermedad renal, y para controlar a los pacientes con disfunción o insuficiencia renal aguda o crónica. Los resultados del análisis S-BUN pusieron de manifiesto que el anticuerpo NT-M fue el más eficaz para proteger el
45 riñón.
Mortalidad por septicemia (tratamiento tardío)
Modelo animal
50 Para el estudio se utilizaron ratones C57B1/6 macho de 12-15 semanas (Charles River Laboratories, Alemania). Se había provocado quirúrgicamente peritonitis bajo ligera anestesia de isoflurano. Las incisiones se realizaron en el cuadrante superior izquierdo de la cavidad peritoneal (posición normal del intestino ciego). Se expuso el intestino
15
25
35
45
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ciego y se colocó alrededor del ciego una ligadura apretada con suturas distales a la inserción del intestino delgado. Se hizo una herida por punción con una aguja de calibre 24 en el ciego y pequeñas cantidades de contenido cecal se expresaron a través de la herida. El intestino ciego se remplazó en la cavidad peritoneal y se cerró el punto de laparotomía. Por último, los animales fueron devueltos a sus jaulas con libre acceso a la comida y al agua. Se les administró por vía sc. 500 µl de solución salina como reposición de líquidos.
Aplicación y dosificación del compuesto (NT-M FAB2)
Se ensayó NT-M Fab2 frente al vehículo y frente al tratamiento del compuesto de referencia. El tratamiento se llevó a cabo después del desarrollo completo de la septicemia, 6 horas después de CLP (tratamiento tardío). Cada grupo contenía 4 ratones y se siguieron durante un período de 4 días.
Dosis de tratamiento del grupo (10 µl/g de peso corporal)/seguimiento:
Grupos en estudio
1 NT-M, 0,2 mg/ml de FAB2 más de 4 días de supervivencia
2 referencia: IgG no específica de ratón, 0,2 mg/ml más de 4 días de supervivencia
3 vehículo: -PBS 10µl/g de peso corporal más de 4 días de supervivencia
Tabla 6:
Mortalidad de 4 días
supervivencia (%)
PBS
0
IgG no específica de ratón
0
NT-M FAB2
75
En la Tabla 6 se puede observar que el anticuerpo de NT-M FAB 2 redujo la mortalidad considerablemente. Después de 4 días el 75% de los ratones sobrevivieron cuando se trataron con anticuerpos NT-M FAB 2. A diferencia de estos todos los ratones habían muerto después de 4 días cuando se trataron con IgG no específica de ratón. El mismo resultado se obtuvo en el grupo de referencia donde PBS (solución salina tamponada con fosfato) se administró a los ratones.
Ejemplo 5
Efecto de incremento de anticuerpos anti-ADM en animales con CLP en la parte superior del tratamiento con antibióticos y estabilización de la circulación con catecolaminas, así como regulación del balance hídrico.
Modelo animal
En este estudio se utilizaron ratones C57B1/6 macho (8-12 semanas, 22-30 g). Una septicemia polimicrobiana provocada por la ligadura y punción cecal (CLP) se utilizó como modelo para el estudio de choque septicémico ((Albuszies G., et al.: Effect of increased cardiac output on hepatic and intestinal microcirculatory blood flow, oxygenation, and metabolism in hyperdynamic murine septic shock. Crit. Care Med. 2005;33:2332-8), (Albuszies G., et al.: The effect of iNOS deletion on hepatic gluconeogenesis in hyperdynamic murine septic shock. Intensive Care Med. 2007; 33:1094-101), (Barth E., et al.: Role of iNOS in the reduced responsiveness of the myocardium to catecholamines in a hyperdynamic, murine model of septic shock. Crit. Care Med. 2006; 34:307-13), (Baumgart K., et al.: Effect of SOD-1 over-expression on myocardial function during resuscitated murine septic shock. Intensive Care Med. 2009; 35:344-9), (Baumgart K., et al.: Cardiac and metabolic effects of hypothermia and inhaled H2S in anesthetized and ventilated mice. Crit. Care Med. 2010;38:588-95), (Simkova V, et al.: The effect of SOD-1 overexpression on hepatic gluconeogenesis and whole-body glucose oxidation during resuscitated, normotensive murine septic shock. Shock 2008; 30:578-84), (Wagner F., et al.: Inflammatory effects of hypothermia and inhaled H2S during resuscitated,), (Wagner F., et al.: Effects of intravenous H2S after murine blunt chest trauma: a prospective, randomized controlled trial. Crit. Care 2011, presentado para su publicación)).
Después de la pesada, los ratones se anestesiaron por inyección intraperitoneal de 120 µg/g de cetamina, 1,25 µg/g de Midazolam y 0,25 µg/g de Fentanilo. Durante el procedimiento quirúrgico, la temperatura corporal se mantuvo entre 37 y 38°C. Una sección abdominal en la línea media de 1 cm se practicó para acceder al ciego. A continuación se ligó el ciego con sutura de seda 3-0 cerca de la base y se aplicó un solo pinchazo con una aguja de calibre 18. El ciego se devolvió y la incisión se cerró de nuevo (sutura 4-0). Para la compensación de la pérdida perioperatoria de líquidos, se inyectaron por vía subcutánea en la dermis dorsal 0,5 ml de solución de lactato de Ringer con 1µg/g de buprenorfina como analgésico. Para antibiosis se administró a los ratones 30µg/g de Ceftriaxona y 30µg/g de Clindamicina por vía subcutánea en las extremidades inferiores.
Después de la intervención quirúrgica CLP los animales se mantuvieron en un entorno adecuadamente climatizado con agua y comida a discreción.
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La provisión de las necesidades de líquidos se aseguró mediante inyecciones subcutáneas dorsales con 0,5 ml de solución de lactato de Ringer con 4 µg/g de glucosa y 1µg/g de buprenorfina, que se aplicaron en un ciclo de 8 horas, después de la anestesia con isoflurano de corta duración. Además, se mantuvo la antibiosis mediante
5 inyecciones subcutáneas de 30 µg/g de Ceftriaxona y 30µg/g de Clindamicina en las extremidades inferiores.
Dosificación de las sustancias de ensayo
Tratamiento inicial
10 Inmediatamente después de la intervención quirúrgica CLP y del cierre de la incisión, se aplicó el anticuerpo NT-M sustancia de ensayo en una concentración de 500 µg/ml en solución salina tamponada con fosfato (PBS) mediante inyección en la vena del pene para una dosis de 2 mg por kg de peso corporal (volumen de dosis 88-120 µl) (5 animales).
15 Tratamiento tardío
Después del desarrollo completo de la septicemia, 15,5 h después de la intervención quirúrgica CLP, los animales se anestesiaron como se describió anteriormente y se aplicó NT-M a una concentración de 500 µg/ml en solución salina
20 tamponada con fosfato (PBS) por inyección en la vena del pene para una dosis de 2 mg por kg de peso corporal (volumen de dosis 88-120 µl) (3 animales).
El grupo de referencia (6 animales) recibió una cantidad correspondiente de la solución PBS vehículo sin anticuerpos (4 µl/g, 88-120 µl) inmediatamente después de la intervención quirúrgica CLP.
25 Grupos en estudio y marco experimental
Modelo murino de choque septicémico con seguimiento de cuidados intensivos:
30 Se hizo seguimiento a tres grupos con 3, 5 y 6 animales. El grupo 1 (5 animales) recibió el anticuerpo de NT-M 15,5 h después de CLP, el grupo 2 recibió el anticuerpo NT-M inmediatamente después de la intervención quirúrgica CLP y el grupo 3 recibió una cantidad comparable de PBS (4 µl/g). 16 horas de incubación después de CLP (para permitir que evolucione la septicemia polimicrobiana), el experimento se continuó con seguimiento e intervenciones comparables a un régimen de atención médica intensiva. Por lo tanto, después de pesar los animales se
35 anestesiaron como se describe en la parte de la intervención quirúrgica CLP (excepto los animales tratados tarde, que fueron anestesiados antes del tratamiento). La temperatura corporal se mantuvo entre 37 y 38°C dur ante el resto del experimento. Después de una traqueotomía e intubación, se controló la respiración y asistida por el ventilación pulmonar Flexivent® para animales de laboratorio, (Emka Technologies, FiO2 0,5, PEEP 10 H2O, VT 8 µl/g, I:E 1:1,5, AF 70-140 dependiendo de la temperatura).
40 La anestesia se mantuvo durante todo el experimento a través de la vena yugular externa derecha canulada con una infusión continua de 30 µg/gxh de cetamina y 0,3 µg/gxh de Fentanilo. Además, la aorta carótida derecha común se canuló para el seguimiento continuo de la frecuencia cardíaca y la presión arterial media (MAP). La presión arterial media se mantuvo en MAP > 65 mm Hg por infusión (V. yugular) de coloides (80 µl/gxh, Hextend®) y, si es
45 necesario, Noradrenalina disuelta en coloides como vasopresor. Se extrajeron muestras de sangre (120 µl) a través de la A. carótida canulada a las 0 y 4 horas para la determinación de creatinina. Se pinchó la vejiga y se recogió la orina a través de un catéter en la vejiga. El experimento se terminó después de 6 horas o antes de este periodo, si la MAP > 65 mm Hg (V.yugular) no pudo mantenerse con la dosis de vasopresor.
50 Parámetros medidos
Se midieron y analizaron los siguientes parámetros: Consumo total de la noradrenalina (µg NA/g), tasa de consumo de noradrenalina (µg NA/g/h), volumen total de orina recogida durante el experimento, concentración de creatinina (µg/ml) a la final del experimento y el depuración media de creatinina (µl/min).
55 Tabla 7:
Consumo total de noradrenalina (µg NA/g) (promedio)
Tasa de consumo de noradrenalina (µg NA/g/h) (Promedio)
Referencia (IgG de ratón) (N = 6)
0,17 µg/g 0,032 µg/h/g
NT-M (N = 5) tratamiento inicial
0,07 mµg/g 0,012 µg/h/g
Cambio relativo (tratamiento precoz, mejora)
59% (59%) 62,5% (62,5%)
NT-M (N = 3) tratamiento tardío
0,04 µg/g 0,0075 µg/h/g
Cambio relativo (tratamiento tardío, mejora)
76,5% (76,5%) 76,5% (76,5%)
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Se midieron los requisitos de catecolaminas después de la administración de cualquiera de IgG de ratón no específica a un total de 6 ratones como grupo de referencia, anticuerpo NT murino a un grupo de 5 ratones inmediatamente después de CLP (tratamiento inicial) o anticuerpo NT murino a un grupo de 3 ratones 15,5 h
5 después de CLP (tratamiento tardío).
La reducción de los requisitos de catecolaminas es una medida para la estabilización de la circulación. Por lo tanto, los datos demuestran que el anticuerpo contra ADM, especialmente el anticuerpo NT-M, conduce a una estabilización considerable de la circulación y a una reducción considerable de los requisitos de catecolaminas. El
10 efecto estabilizante de la circulación se dio en el tratamiento precoz (inmediatamente después de la CLP) y el tratamiento después del desarrollo completo septicemia (tratamiento tardío) (véase la figura 7).
Regulación del balance hídrico
15 El balance hídrico más positivo tanto precoz en reanimación como acumuladamente durante 4 días se asoció con un mayor riesgo de mortalidad en el choque septicémico. El control del balance hídrico es de suma importancia para el curso de la enfermedad de los pacientes con septicemia. (S. Boyd et al., 2011). Controlar el balance hídrico de los pacientes enfermos críticos se mantiene como un reto importante en la medicina de cuidados intensivos. Como se puede ver en la tabla 8 el tratamiento de ratones después de CLP (procedimientos experimentales véase "Modelo
20 animal") con anticuerpo NT-M conducen a una mejora del volumen total de orina excretada. La orina segregada era aprox. tres veces mayor en los animales tratados con NT-M en comparación con los ratones no tratados. El efecto positivo del tratamiento se dio tanto en el tratamiento inicial como en el tardío. El balance hídrico se mejoró en aproximadamente un 20-30%, también en ambos, tratamiento inicial y tardío. Por lo tanto, los datos demuestran que la utilización de anticuerpos contra ADM, especialmente la utilización de anticuerpos NT ADM, es favorable para la
25 regulación del balance hídrico en pacientes. (Véase la tabla 8 y las figuras 8 y 9).
Tabla 8
Volumen medio de orina/g de peso corporal
Volumen medio de balance hídrico/g de peso corporal
Referencia (IgG de ratón) (N = 6)
0,042 ml/g 0,23 ml/g
NT-M temprana (N = 5)
0,12 ml 0,18 ml/g
Cambio relativo tratamiento inicial
+ 186% -21,7%%
NT-M tardío (N = 3)
0,125 ml 0,16 ml/g
Cambio relativo tratamiento tardío
+ 198% -30,5%
30 Mejora de la función renal
La combinación de la insuficiencia renal aguda y la septicemia está asociada a una mortalidad del 70 por ciento, en comparación con una mortalidad del 45 por ciento entre los pacientes con insuficiencia renal aguda sola. (Schrier y Wang, "Mechanisms of Disease Acute Renal Failure and Sepsis", The New England Journal of Medicine; 351:159
35 69, 2004). Creatinine concentration and creatinine clearance are standard laboratory parameters for monitoring kidney (dys)function (Jacob, "Acute Renal Failure", Indian J. Anaesth.; 47 (5): 367-372; 2003). La creatinina y los datos de depuración de creatinina de los experimentos con animales descritos anteriormente (tratamiento inicial) se dan en la tabla 9.
40 Tabla 9
Función renal:
concentración de creatinina (µg/ml)
depuración media de creatinina (µl/min)
IgG de ratón de referencia (PM)
2,6 µg/ml 174 µl/min
NT-M (PM)
1,5 µg/ml 373 µl/min
Cambio relativo (mejora)
-42% (42%) 114% (114%)
45 En comparación con los animales septicémicos de referencia, la concentración de creatinina se redujo en un 42% y la depuración de creatinina mejoró más de un 100% como resultado del tratamiento con NT-M (Tabla 9). Los datos demuestran que la administración de anticuerpos contra ADM, especialmente de NT-M, conduce a una mejora de la función renal.
50 Mejora del estado inflamatorio del hígado
El tejido hepático para el control de los animales tratados precozmente se homogeneizó y se lisó en tampón de lisis. Para la preparación del extracto celular, las células se volvieron a poner en suspensión, se lisaron en hielo y se
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centrifugaron. El sobrenadante (extracto proteico) se almacenó a -80°C. La activación del potenciador g énico de la cadena ligera kappa del factor nuclear en linfocitos B (NF-κB) se determinó como se ha descrito anteriormente utilizando un ensayo de cambio de movilidad electroforética (EMSA)1,2. Los extractos celulares (10 µg) se incubaron en hielo con ácido poli-desoxi-inosínico-desoxi-citidílico (poli-dI-dC) y oligonucleótido bicatenario marcado con 32P 5 (Biomers, Ulm, Alemania) que contiene el NF-κB (VIH κBsite) (5'-GGATCCTCAACAGAGGGGACTTTCCGAGGCCA3'). Los complejos se separaron en geles de poliacrilamida naturales, se secaron y se expusieron a películas de rayos X. Se utilizó una placa de fósforo fotoestimulable y un programa informático analizador de imágenes (Raytest AIDA Image Analyzer) para cuantificar por densitometría el NF-kB marcado con radiactividad. Para la comparación entre cada uno de los geles, la intensidad de cada banda se relacionó con la de los animales de referencia cargados 10 simultáneamente que no se habían sometido a la instrumentación quirúrgica y CLP. Por consiguiente, los datos EMSA se expresan como aumento de varias veces sobre los valores de referencia. Estadística: Todos los datos se presentan como mediana (intervalo) a menos que de lo contrario se expongan diferencias entre los dos grupos que se analizaron con la prueba del orden sumatorio de Mann-Whitney para muestras independientes. Resultados: Los animales tratados con NT-M presentaban activación por NF-κB del tejido hepático significativamente atenuada (2,27
15 (1,97 a 2,53)) en comparación con los animales con vehículo (2,92 (2,50 a 3,81)) (p<0,001) (véase la figura 10).
Referencias:
1. Wagner F., Wagner K., Weber S., Stahl B., Knöferl M.W., Huber-Lang M., Seitz D.H., Asfar P., Calzia E.,
20 Senftleben U., Gebhard F., Georgieff M., Radermacher.P, Hysa V.: Inflammatory effects of hypothermia and inhaled H2S during resuscitated, hyperdynamic murine septic shock. Shock 2011; 35(4):396-402
2. Wagner F., Scheuerle A., Weber S., Stahl B., McCook O., Knöferl M.W., Huber-Lang M., Seitz D.H., Thomas J., Asfar P., Szabó C., Möller P., Gebhard F., Georgieff M., Calzia E., Radermacher P., Wagner K.: Cardiopulmonary,
25 histologic, and inflammatory effects of intravenous Na2S after blunt chest trauma-induced lung contusion in mice. J. Trauma 2011; 71(6):1659-67
Ejemplo 6
30 Determinación de efectos secundarios in vivo de anticuerpos NT-M
Para el estudio se utilizaron ratones C57B1/6 macho de 12 a 15 semanas (Charles River Laboratories, Alemania). Se trataron 6 ratones con dosis (10 µl/g de peso corporal) de NT-M, 0,2 mg/ml. Como referencia, se trataron 6 ratones con (10 µl/g de peso corporal) de PBS. La supervivencia y el estado físico se siguió durante 14 días. La
35 mortalidad fue 0 en ambos grupos, no hubo diferencias en el estado físico entre NT-M y el grupo de referencia.
Ejemplo 7
Nefrotoxicidad provocada por gentamicina
40 Se ha creado un modelo de lesión renal aguda no septicémica, que hace uso de la nefrotoxicidad provocada por gentamicina (Chiu P.J.S. Models used to assess renal functions. Drug. Develop. Res. 32; 247-255, 1994). Este modelo se utilizó para evaluar si el tratamiento con anticuerpo anti-adrenomedulina puede mejorar la función renal.
45 El experimento se realizó de la manera siguiente:
Efecto de un NT-M sobre la nefrotoxicidad provocada por gentamicina en ratas Diseño del estudio:
Prueba
Conc. Dosis Ratasd
Grupo
Artículo Vía mg/ml ml/kg mg/kg (macho)
1
Gentamicinaa + vehículob IV NA x 4c 8
2
Gentamicina una + NT-M IV X 4c 8
aGentamicina a 120 mg/kg por vía intramuscular durante 7 días (días 0-6).
bVehículo; inyectado por vía intravenosa (IV) 5 min. antes de la gentamicina el día 0, seguido de inyecciones los días 2, 4, y 6.
cNT-M a 4 mg/kg se inyectó por vía intravenosa (IV) 5 min. antes de la gentamicina el día 0, seguido de 2 mg/kg iv. los días 2, 4, y 6.
dLas muestras de plasma se recogieron en tubos con EDTA (días 1 y 3 antes del artículo de prueba y de referencia: 100 µl; Día 7:120 µl 24 h de recolección de orina en hielo se inicia después de la gentamicina el día 0, seguido de los días 2 y 6; extracción de sangre los días 1, 3, y 7.
Se emplearon grupos de 8 ratas macho Sprague-Dawley con un peso de 250 ± 20 g. Los animales se sometieron a la prueba de provocación con gentamicina a 120 mg/kg por vía intramuscular durante siete días consecutivos 50 (grupos 1 y 2). El compuesto de ensayo (anticuerpo anti-adrenomedulina NT-M) y vehículo (solución salina tamponada con fosfato) se inyectaron por vía intravenosa 5 min. antes de la gentamicina el día 0, seguido de
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inyecciones los días 2, 4, y 6. Los pesos corporales y los signos clínicos se controlaron diariamente. Se obtuvieron muestras de orina en hielo de 24 horas los días 0, 2 y 6. En las muestras de orina se analizaron las concentraciones de Na+ y K+ y de creatinina. Se extrajeron muestras de sangre para análisis clínico los días 1 (antes de la gentamicina), 3 (antes de la gentamicina) y 7. Electrolitos séricos (Na+ y K+), creatinina y BUN fueron los analitos
5 principales que se controlaron para evaluar la función renal. Se recogieron muestras de plasma en tubos con EDTA (días 1 y 3:100 µl; Día 7: 120 µl). Se calculó la depuración de creatinina. El volumen de orina, los electrolitos urinarios y la creatinina se expresan en cantidad excretada por 100 g de peso corporal del animal. Todos los animales se sacrificaron el día 7. Se pesaron los riñones.
10 Obtención de muestras de orina. Los animales se colocaron en jaulas individuales en las que se recogió la orina durante 24 horas el día 0, el día 2, y el día 6. Se midió el volumen de orina, Na+, K+ y creatinina urinarios.
La depuración de la creatinina endógena se calculó de la manera siguiente:
15 CCr (ml/24 h) = [UCr (mg/ml) x V (ml/24 h)/SCr (mg/ml)
La excreción urinaria de sodio (Na +) en 24 h se calculó de la manera siguiente:
UNaV (µEq/24 h) = UNa (µEq/ml) x V (ml/24 h) 20 La excreción urinaria de NAG y NGAL en 24 h se calculó de manera similar.
La excreción fraccionaria de Na+ (FENa), o el porcentaje de sodio filtrado que se excreta en la orina final, es una medida de la función de reabsorción de Na+ tubular. Se calculó de la manera siguiente: 25 FENa (%) = 100 x [UNa (µEq/ml) x V (ml/24 h)] / PNa (µEq/ml) x CCr (ml/24 h)
El tratamiento con anticuerpos anti-adrenomedulina mejoró varias medidas de la función renal el día 7 en comparación con el vehículo: 1,01 mg/dl de creatinina sérica (NT-M) frente a 1,55 mg/dl (vehículo) (figura 11),
30 32,08 mg/dl de BUN (NT-M) frente a 52,41 mg/dl (vehículo) (figura 12), 934,43 ml/24 h de depuración de creatinina endógena (NT-M) frente a 613,34 ml/24 h (vehículo) (figura 13), 0,98% de secreción fraccionaria de Na+ (NT-M) frente a 1,75% (vehículo) (figura14).
Ejemplo 8
35 En el modelo CLP de ratones descrito anteriormente, se investigó el efecto del tratamiento con anticuerpo NT-M antiadrenomedulina sobre varios parámetros de la función renal.
NT-M causó una diuresis mayor de tres y dos veces y el depuración de creatinina, respectivamente, en última
40 instancia produciendo menores concentraciones en sangre de creatinina, urea y NGAL al final del experimento (véase la Tabla 10). Además, las concentraciones de quimiocinas (KC) procedentes de queratinocitos en el riñón se redujeron significativamente por tratamiento con NT-M (figura 15).
Tabla 10: Parámetros de la función renal en el vehículo (n = 11) y en animales tratados con NT-M (n = 9). Las
45 concentraciones en sangre se midieron en muestras tomadas al final del experimento. NGAL = lipocalina asociada a neutrofil gelatinasa. Todos los datos son medianas (cuartiles).
Vehículo
NT-M Valor P
Diuresis [µl·g -1·h -1]
4,4 (3,5; 16,5) 15,2 (13,9; 22,5) 0,033
Depuración de creatinina [µl·min -1]
197 (110; 301) 400 (316; 509) 0,006
Creatinina [µg·ml -1]
1,83 (1,52; 3,04) 1,28 (1,20; 1,52) 0,010
Urea [µg·ml -1]
378 (268; 513) 175 (101; 184) 0,004
NGAL [µg·ml -1]
16 (15, 20) 11 (10, 13) 0,008
Los experimentos se realizaron de la manera siguiente: 50 Creatinina, urea y lipocalina asociada a neutrofil gelatinasa (NGAL)
Se midieron concentraciones de NGAL en sangre utilizando un ELISA comercial (NGAL de ratón, RUO 042, BioPorto Diagnostics A/S, Dinamarca, Gentofte). Se midieron las concentraciones de urea y creatinina con un 55 sistema de cromatografía de gases en columna capilar/espectrometría de masas (Optima-5MS, Macherey-Nagel, Düren, Alemania)(Agilent 5890/5970, Böblingen, Alemania), utilizando 2H3-creatinina (isótopos CDN, Point -Claire, QU, Canadá) y metil-urea (FlukaChemikalien, Buchs, Suiza) como patrones internos. Después de la desproteinización con acetonitrilo, centrifugación y evaporación a sequedad, el sobrenadante se redisolvió en ácido fórmico, y se extrajo a través de una columna de intercambio aniónico débil (WCX, Phenomenex, Aschaffenburg,
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Alemania). Acetonitrilo más N,O-bis (trimetilsilil)trifluoroacetamida y N-(terc-butildimetilsilil)-N-metiltrifluoroacetamida permitió la formación de los derivados terc-butildimetilsilil-y creatinintrimetilsilil-de urea, respectivamente. En los iones m/z 231 y 245 y m/z 329 y 332 se controlaron los analitos urea y creatinina y patrones internos, respectivamente. A partir de la uremia y de las concentraciones de creatinina en el plasma y en la orina se calculó la depuración creatinina utilizando la fórmula estándar.
Preparación de la muestra
El riñón que se almacenó a -80°C se disgregó con un homogeneizador en PBS y se lisó con un tampón concentrado 2 veces para un lisado de células enteras (Tris 100 mM pH 7,6; NaCl 500 mM; EDTA 6 mM; EGTA 6 mM; Triton-X100 al 1%; NP 40 al 0,5%; glicerol al 10%; inhibidores de proteasa (β-glicerofosfato 2 mM; DTT 4 mM; leupeptina 20 mM; ortovanadato sódico 0,2 mM)) y posteriormente se centrifugó. El lisado de células enteras se separó del sobrenadante; se descartó el sedimento consistente en restos de células. La cantidad de proteína se determinó por fotometría con un análisis de proteínas disponible en el mercado (Bio-Rad, Hercules, CA) y las muestras se ajustaron de manera que la concentración final de proteínas fue de 4 µg/l. Las muestras para el análisis Multiplex-y EMSA se diluyeron 1:1 con tampón EMSA (Hepes 10 mM; KCl 50 mM; glicerol al 10%; EDTA 0,1 mM; DTT 1 mM), las muestras para las inmunotransferencias 1:1 con el doble de tampón de muestra (SDS al 2%; Tris-HCl 125 mM (pH 6,8 a 25°C); glicerol al 10%; DTT 50 mM; azul d e bromofenol al 0,01%).
Las concentraciones de quimiocinas (KC) en queratinocitos se determinaron utilizando un kit de citocinas múltiplex de ratón (Bio-Plex Pro Cytokine Assay, Bio-Rad, Hercules, CA), el ensayo se realizó utilizando el sistema de chips en suspensión Bio-Plex con la las instrucciones del fabricante (véase también Wagner F., Wagner K., Weber S., Stahl B., Knöferl M.W., Huber-Lang M.., Seitz D.H., Asfar P., Calzia E., Senftleben U., Gebhard F., Georgieff M., Radermacher P., Hysa V. Inflammatory effects of hypothermia and inhaled H2S during resuscitated, hyperdynamic murine septic shock. Shock 2011; 35:396-402; y Wagner F., Scheuerle A., Weber S., Stahl B., McCook O., Knöferl M.W., Huber-Lang M., Seitz D.H., Thomas J. Asfar, P., Szabó C., Möller P., Gebhard F., Georgieff M., Calzia E., Radermacher P., Wagner K. Cardiopulmonary, histologic, and inflammatory effects of intravenous Na2S after blunt chest trauma-induced lung contusion in mice. J. Trauma 2011, 71:1659-1667). En resumen, se añadieron los patrones y las muestras de citocinas adecuadas a una placa filtrante. Las muestras se incubaron con anticuerpos químicamente unidos a microperlas marcadas con fluorescencia. A continuación, se añadieron a cada pocillo anticuerpos de detección premezclados, y posteriormente, se añadió estreptavidina-ficoeritrina. Las perlas se volvieron a poner en suspensión, y la mezcla de reacción de las citocinas se analizó cuantitativamente utilizando el lector de chips de proteínas Bio-Plex. Los datos fueron procesados y analizados automáticamente por el programa informático Manager 4.1 de Bio-Plex utilizando la curva patrón generada a partir de patrones de citocinas recombinantes. Las concentraciones por debajo del límite de detección de los ensayos se ajustaron a cero para fines estadísticos.
Ejemplo 9
En el modelo CLP de ratones descrito anteriormente, se investigó el efecto del tratamiento con anticuerpo NT-M antiadrenomedulina en el hígado.
NT-M produjo una disminución significativa de las concentraciones de quimiocinas (KC) de queratinocitos en el hígado (figura 16).
Medición de quimiocinas de queratinocitos (KC) se hizo de manera análoga a la del ejemplo 8 (riñón).
Ejemplo 10
En el modelo CLP en ratones descrito anteriormente, se investigó el efecto del tratamiento con anticuerpo NT-M antiadrenomedulina en varias citocinas y quimiocinesinas en la circulación sanguínea (plasma).
Concentraciones de citocinas y de quimiocinas
Se determinaron las concentraciones en el plasma del factor de necrosis tumoral (TNF)-α, interleucina (IL)-6, proteína quimiotaxina de monocitos (MCP)-1 y quimiocinas (KC) de queratinocitos utilizando un kit de citocinas múltiplex de ratón (Bio-Plex Pro Cytokine Assay, Bio-Rad, Hercules, CA), el ensayo se realizó utilizando el sistema de chips en suspensión Bio-Plex con las instrucciones del fabricante (véase también Wagner F., Wagner K., Weber S., Stahl B., Knöferl M.W., Huber-Lang M., Seitz D.H., Asfar P., Calzia E., Senftleben U., Gebhard F., Georgieff M., Radermacher P., Hysa V. Inflammatory effects of hypothermia and inhaled H2S during resuscitated, hyperdynamic murine septic shock. Shock 2011;35:396-402; y Wagner F, Scheuerle A., Weber S., Stahl B., McCook O., Knöferl M.W., Huber-Lang M., Seitz D.H., Thomas J., Asfar P., Szabó C., Möller P., Gebhard F., Georgieff M., Calzia E., Radermacher P., Wagner K. Cardiopulmonary, histologic, and inflammatory effects of intravenous Na2S after blunt chest trauma-induced lung contusion in mice. J. Trauma 2011;71:1659-1667). En resumen, se añadieron los patrones y las muestras de citocinas adecuadas a una placa filtrante. Las muestras se incubaron con anticuerpos químicamente unidos a microperlas marcadas con fluorescencia. A continuación, se añadieron a cada pocillo
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anticuerpos de detección premezclados, y posteriormente, se añadió estreptavidina-ficoeritrina. Las perlas se volvieron a poner en suspensión, y la mezcla de reacción de citocinas se analizó cuantitativamente utilizando el lector de chips de proteínas Bio-Plex. Los datos fueron procesados y analizados automáticamente con el programa informático Manager 4.1 de Bio-Plex utilizando la curva patrón generada a partir de patrones de citocinas recombinantes. Los niveles por debajo del límite de detección de los análisis se ajustaron a cero con fines estadísticos.
Se determinaron las concentraciones en el plasma y las concentraciones en el tejido renal de factor de necrosis tumoral (TNF)-α, interleucina (IL)-6 e IL-10, proteína quimiotaxina de monocitos (MCP)-1 y quimiocinas (KC) de queratinocitos utilizando un “Multiplex Cytokine Kit” disponible en el mercado (Bio-Plex Pro Precision Pro Cytokine Assay, Bio-Rad, Hercules, CA), que permite recoger varios parámetros de una sola muestra. Las etapas de trabajo individuales del ensayo se realizaron según las instrucciones del fabricante (véase también Wagner F., Wagner K., Weber S., Stahl B., Knöferl M.W., Huber-Lang M., Seitz D.H., Asfar P., Calzia E., Senftleben U., Gebhard F., Georgieff M., Radermacher P., Hysa V. Inflammatory effects of hypothermia and inhaled H2S during resuscitated, hyperdynamic murine septic shock. Shock 2011;35:396-402; y Wagner F., Scheuerle A., Weber S., Stahl B., McCook O., Knöferl M.W., Huber-Lang M., Seitz D.H., Thomas J., Asfar P., Szabó C., Möller P., Gebhard F., Georgieff M., Calzia E., Radermacher P., Wagner K. Cardiopulmonary, histologic, and inflammatory effects of intravenous Na2S after blunt chest trauma-induced lung contusion in mice. J. Trauma 2011;71:1659-1667).
En resumen, se añadieron microesferas marcadas con fluorescencia ("perlas") a una placa de 96 pocillos, seguido de dos etapas de lavado, la adición de patrones internos y la adición de muestras de homogeneizado de plasma y riñón. Durante la posterior incubación las citocinas aisladas se unen a los anticuerpos unidos a perlas de poliestireno. Después de la adición de los anticuerpos específicos de citocinas marcados con biotina, que son para la detección de las citocinas aisladas, y un tiempo adicional de incubación, posteriormente se añadió estreptavidina marcada con ficoeritrina. Después de un tiempo de incubación adicional, se volvieron a poner en suspensión las perlas, y las placas se pudieron medir con un citómetro de flujo específico (sistema de chips en suspensión Bio-Plex, Bio-Rad, Hercules, CA). Los datos fueron procesados y analizados automáticamente por el programa informático Manager 4.1 de Bio-Plex utilizando la curva patrón generada a partir de los patrones de citocinas recombinantes. Para las concentraciones en el plasma la concentración se proporcionó en pg*ml-1 , la concentración de los homogeneizados de riñón se convirtió en la concentración de proteína apropiada y se proporcionó en p*mg-1 de proteína.
NT-M produjo una disminución significativa de las concentraciones plasmáticas de IL-6 (figura 17), IL-10 (figura18), quimiocina (KC) de queratinocitos (figura 19), proteína 1 quimiotaxina de monocitos (MCP-1) (figura 20), TNF-alfa (figura 21).
Ejemplo 11
Lesión renal aguda provocada por isquemia/reperfusión
Se ha creado otro modelo de lesión renal aguda no septicémica, donde la lesión renal aguda está provocada por isquemia/reperfusión (Nakamoto M., Shapiro J.I., Shanley P.F., Chan L. y Schrier R.W. In vitro and in vivo protective effect of atriopeptin III on ischemic acute renal failure. J. Clin. Invest. 80:698-705, 1987., Chintala M.S., Bernardino V., y Chiu P.J.S. Cyclic GMP but not cyclic AMP prevents renal platelet accumulation following ischemiare perfusion in anesthetized rats. J. Pharmacol. Exp. Ther. 271:1203-1208, 1994). Este modelo se utilizó para evaluar si el tratamiento con anticuerpo anti-adrenomedulina puede mejorar la función renal.
El experimento se realizó de la manera siguiente:
Efecto de un NT-M en la lesión renal aguda provocada por isquemia/reperfusión en ratas
Diseño del estudio:
Grupo
Artículo de prueba Vía Conc. mg/ml Dosis ml/kg mg/kg Ratas (macho)
1
IR + vehículoa IV 5 NA x 3 8
2
IR + NT-M IV 5 x 3b 8
avehículo; inyectado por vía intravenosa (IV) 5 min. antes de la reperfusión el día 0, seguido de inyecciones los días 1 y 2.bNT-M a 4 mg/kg se inyectó por vía intravenosa (IV) 5 min. antes de la reperfusión el día 0, seguido de 2 mg/kg IV cada uno los días 1 y 2. c Obtención de muestras de orina los días -1, 0, 1 y 2, con análisis de sangre y análisis de orina los días 0, 1, 2 y 3, respectivamente. Las muestras de plasma se recogieron en tubos con EDTA (Días 0 (inmediatos antes de la intervención quirúrgica), 1, 2: 100 µl, antes del vehículo o TA; Día 3: 120 µl.
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durante el tratamiento.
Se utilizaron grupos de 8 ratas macho Sprague-Dawley que pesaban 250 a 280 g. Los animales se mantuvieron en un ciclo de luz/oscuridad de 12 horas y recibieron una dieta normal con agua destilada a discreción. Los animales reciben complementos líquidos (NaCl al 0,9% y dextrosa al 5%/01:01, 10 ml/kg p.o.) 30 min. antes de la intervención quirúrgica (día 0). Las ratas se anestesiaron con pentobarbital (50 mg/kg, ip.). La cavidad abdominal se expuso a través de una incisión en la línea media, seguido de la administración intravenosa de heparina (100 U/kg, iv.) y ambas arterias renales se ocluyeron durante 45 minutos utilizando pinzas vasculares. Inmediatamente después de la retirada de los clips renales, se observaron los riñones durante 1 min. más para asegurar el cambio de color que indica la reperfusión de la sangre. El compuesto de ensayo (NT-M) y el vehículo (solución salina tamponada con fosfato) se inyectaron por vía intravenosa 5 min. antes de la reperfusión, seguido de inyecciones diarias los días 1 y
2. Obtención de muestras de orina. La obtención de muestras de orina en hielo de 24 h se inició 24 horas antes de la
isquemia/reperfusión el día -1 (-24 h a 0h), y el día 0 (0 a 24 h), el día 1 (24 a 48 h) y el día 2 (48 a 72 h) después de la reperfusión. Extracción sanguínea: Se extrajeron 0,4 ml de sangre de la vena de la cola en tubos con EDTA a las 0 h (antes de la
intervención quirúrgica I RI), 24 h (antes del vehículo o TA), 48 h (antes de vehículo o TA) y 72 h para la
determinación de creatinina/Na+/K+ y BUN en el plasma; se extrajeron 2 ml de sangre de la vena cava finalmente. Los animales se colocaron en jaulas individuales en las que se recogió orina durante 24 h el día -1 (-24 h a 0 h), día 0 (0 a 24 h), día 1 (24 a 48 h) y día 2 (48 a 72 h) después de la reperfusión el día 0. Se midieron el volumen de orina, Na+, K+ y la creatinina.
La depuración de creatinina (CCr) se calculó de la manera siguiente:
CCr (ml/24 h) = [UCr (mg/ml) x V (ml/24 h)] / PCr (mg/ml) La excreción urinaria de sodio (Na+) en 24 h se calculó de la manera siguiente:
UNaV (µEq/24 h) = UNa (µEq/ml) x V (ml/24 h) La excreción fraccionaria de Na+ (FENa), o el porcentaje de sodio filtrado que se excreta en la orina final, es una medida de la función de reabsorción de Na+ tubular. Se calculó de la manera siguiente:
FENa (%) = 100 x [UNa (µEq/ml) x V (ml/24 h)] / PNa (µEq/ml) x CCr (ml/24 h) El tratamiento con anticuerpos anti-Adrenomedulina mejoró varias medidas de la función renal: Nitrógeno ureico en sangre (BUN) presentó un fuerte incremento en el grupo del vehículo (0 h: 17,49 mg/dl, 24 h:
98,85 mg/dl, 48 h: 109,84 mg/dl, 72 h: 91,88 mg/dl), que era menos pronunciado con el tratamiento de NT-M (0 h: 16,33 mg/dl, 24 h: 84,2 mg/dl, 48 h: 82,61 mg/dl, 72 h: 64,54 mg/dl) (figura 22). La creatinina sérica desarrolló igualmente: Grupo de vehículo (0 h: 0,61 mg/dl, 24 h: 3,3 mg/dl, 48 h: 3,16 mg/dl, 72
h: 2,31 mg/dl), grupo de NT-M: (0 h: 0,59 mg/dl, 24 h: 2,96 mg/dL, 48 h: 2,31 mg/dL, 72 h: 1,8 mg/dL) (figura 23).
La depuración de creatinina endógena disminuyó masivamente el día uno y a partir de entonces mejoró más en el grupo NT-M que en el grupo del vehículo. Grupo del vehículo: (0 h: 65,17 ml/h, 24 h: 3,5 ml/h, 48 h: 12,61ml/h, 72 h: 20,88ml/h), grupo NT-M: (0 h: 70,11 ml/h, 24 h: 5,84 ml/h, 48 h: 21,23 ml/h, 72 h: 26,61 ml/h) (figura 24).
Descripción de las figuras
Figura 1a:
Ilustración de formatos de anticuerpos – Variantes Fv y scFv Figura 1b:
Ilustración de formatos de anticuerpos -fusiones heterólogas y anticuerpos bifuncionales Figura 1c:
Ilustración de formatos de anticuerpos -anticuerpos bivalentes y anticuerpos biespecíficos Figura 2:
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ADMh 1-52 (SEC. ID. nº 21) ADMm 1-50 (SEC. ID. nº 22) aa 1-21 de ADM humana (SEC. ID. nº 23) aa 1-42 de ADM humana (SEC. ID. nº 24) aa 43-52 de ADM humana (SEC. ID. nº 25) aa 1-14 de ADM humana (SEC. ID. nº 26) aa 1-10 de ADM humana (SEC. ID. nº 27) aa 1-6 de ADM humana (SEC. ID. nº 28) aa 1-32 de ADM humana madura (SEC. ID. nº 29) aa 1-40 de ADM murina madura (SEC. ID. nº 30) aa 1-31 de ADM murina madura (SEC. ID. nº 31)
Figura 3:
a: curva de respuesta a la dosis de ADM humana. La estimulación máxima de AMPc se ajustó a la activación del 100%
b: Curva de dosis/inhibición de ADM humana 22-52 (antagonista del receptor de ADM) en presencia de ADMh 5,63nM.
c: Curva de dosis/inhibición de CT-H en presencia de ADMh 5,63 nM.
d: Curva de dosis/inhibición de MR-H en presencia de ADMh 5,63 nM.
e: Curva de dosis/inhibición de NT-H en presencia de ADMh 5,63 nM.
f: Curva de dosis/respuesta de ADM de ratón. La estimulación máxima de AMPc se ajustó a la activación del 100%
g: Curva de dosis/inhibición de ADM humana 22-52 (antagonista del receptor de ADM) en presencia de ADMm 0,67 nM.
h: Curva de dosis/inhibición de CT-M en presencia de ADMm 0,67 nM.
i: Curva de dosis/inhibición de MR-M en presencia de ADMm 0,67 nM.
j: Curva de dosis/inhibición de NT-M en presencia de ADMm 0,67 nM.
k: muestra la inhibición de ADM por F(ab)2 de NT-M y por Fab de NT-M
l: muestra la inhibición de ADM por F(ab)2 de NT-M y por Fab de NT-M Figura 4: Esta Figura muestra una curva de dosis de ADMh/señal típica. Y una curva de dosis ADMh/señal en presencia de 100 µg/ml de anticuerpo NT-H. Figura 5: Esta Figura muestra la estabilidad de ADMh en el plasma humano (citrato) en ausencia y en presencia de anticuerpo NT-H. Figura 6: Alineación de los Fab con secuencias marco humano homólogas Figura 7: Esta Figura muestra los requisitos de noradrenalina para el tratamiento precoz y tardío con NT-M Figura 8:
Esta Figura muestra la diuresis después del tratamiento precoz y tardío con NT-M Figura 9:
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Esta Figura muestra el balance hídrico después del tratamiento precoz y tardío con NT-M
Figura10:
5 Activación de tejido hepático del potenciador génico de la cadena ligera kappa del factor nuclear en linfocitos B (NF-κB) analizada por el ensayo de cambio de movilidad electroforético (EMSA). # representa p <0,001 frente al vehículo.
10 Figura11:
Evolución de la creatinina sérica con el tiempo. Se muestran media ± SEM.
Figura 12: 15 Evolución de nitrógeno ureico en sangre (BUN) con el tiempo. Se muestran media ± SEM.
Figura13:
20 Evolución de la depuración de creatinina endógena con el tiempo. Se muestran media ± SEM.
Figura 14:
Evolución de la secreción fraccionada de Na+ con el tiempo. Se muestran media ± SEM. 25 Figura 15:
Concentraciones de quimiocinas de queratinocitos (KC) determinadas con respecto a la proteína renal total extraída. El diagrama de caja blanca muestra los resultados obtenidos con el vehículo, el diagrama de caja gris 30 muestra los resultados obtenidos tras el tratamiento con NT-M.
Figura 16:
Concentraciones de queratinocitos de quimiocinas (KC) determinadas con respecto a la proteína total del hígado 35 extraída. El diagrama de caja blanca muestra los resultados obtenidos con el vehículo, el diagrama de caja gris muestra los resultados obtenidos tras el tratamiento con NT-M.
Figura 17:
40 Concentraciones de IL-6 en el plasma. El diagrama de caja blanca muestra los resultados obtenidos con el vehículo, el diagrama de caja gris muestra los resultados obtenidos tras el tratamiento con NT-M.
Figura 18:
45 Concentraciones de IL-10 en el plasma. El diagrama de caja blanca muestra los resultados obtenidos con el vehículo, el diagrama de caja gris muestra los resultados obtenidos tras el tratamiento con NT-M.
Figura 19:
50 Concentraciones en el plasma de quimiocinas de queratinocitos (KC). El diagrama de caja blanca muestra los resultados obtenidos con el vehículo, el diagrama de caja gris muestra los resultados obtenidos tras el tratamiento con NT-M.
Figura 20:
55 Concentraciones en el plasma de proteína-1 (MCP-1) quimiotáctica de monocitos. El diagrama de caja blanca muestra los resultados obtenidos con el vehículo, el diagrama de caja gris muestra los resultados obtenidos tras el tratamiento con NT-M.
60 Figura 21:
Concentraciones plasmáticas de TNF-alfa. El diagrama de caja blanca muestra los resultados obtenidos con el vehículo, el diagrama de caja gris muestra los resultados obtenidos tras el tratamiento con NT-M.
65 Figura 22:
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Evolución de nitrógeno ureico en sangre (BUN) con el tiempo. Se muestran media ± SEM. Figura 23: 5 Evolución de la creatinina sérica con el tiempo. Se muestran media ± SEM. Figura 24: Evolución de la depuración de creatinina endógena con el tiempo. Se muestran media ± SEM.
10

Claims (20)

  1. 5
    15
    25
    35
    45
    55
    65 E12193118
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    REIVINDICACIONES
    1.
    Anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho paciente en el que dicho anticuerpo o fragmento se une a la parte del terminal N, aminoácidos 1-21, de adrenomedulina:
    YRQSMNNFQGLRSFGCRFGTC; SEC. ID. nº 23.
  2. 2.
    Anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-ADM que se une a adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM que se une a adrenomedulina para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente según la reivindicación 1, en el que dicho anticuerpo, fragmento de anticuerpo o andamiaje sin Ig es monoespecífico.
  3. 3.
    Anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-ADM que se une a adrenomedulina o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM que se une a adrenomedulina para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente según cualquiera de las reivindicaciones 1 o 2, en el que dicho anticuerpo, fragmento o andamiaje presenta una afinidad de unión a ADM de por lo menos 10 -7 M.
  4. 4.
    Anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-ADM que se une a adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM que se une a adrenomedulina para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, en el que dicho anticuerpo, fragmento o andamiaje no es la proteína-1 de unión a ADM, factor H del complemento.
  5. 5.
    Anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho paciente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, en el que dicho anticuerpo, fragmento o andamiaje reconoce y se une al extremo terminal N, aminoácido 1, de adrenomedulina.
  6. 6.
    Anticuerpo anti-adrenomedulina (ADM) o un fragmento de anticuerpo anti-ADM que se une a adrenomedulina o el andamiaje proteico sin Ig anti-ADM que se une a adrenomedulina para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho paciente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, caracterizado por que dicho anticuerpo, fragmento de anticuerpo o andamiaje sin Ig no se une a la parte del terminal C de ADM, que son los aminoácidos 43-52 de ADM
    PRSKISPQGY-NH2; SEC. ID. nº 25.
  7. 7.
    Anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho paciente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, en el que dicho anticuerpo, fragmento o andamiaje es un anticuerpo, fragmento o andamiaje estabilizante de ADM que aumenta la vida media, tiempo medio de retención t1/2, de adrenomedulina en el suero, la sangre, el plasma, por lo menos el 10%, preferentemente al menos, 50%, más preferentemente > 50%, aún más preferentemente > 100%.
  8. 8.
    Anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho paciente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7, en el que dicho anticuerpo, fragmento o andamiaje bloquea la bioactividad de ADM no más del 50%, en el que la bioactividad de ADM se determina en un análisis funcional de AMPc receptor de adrenomedulina recombinante humana.
  9. 9.
    Anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 8, en el que dicho paciente es un paciente en la UCI.
  10. 10.
    Anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho paciente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 9, en el que dicho anticuerpo o fragmento es un anticuerpo monoclonal humano o fragmento que se une a ADM o un fragmento de anticuerpo del mismo en el que la cadena pesada comprende las secuencias
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    SEC. ID. nº 1 GYTFSRYW
    5 SEC. ID. nº 2 ILPGSGST
    SEC. ID. nº 3 TEGYEYDGFDY 10 y en las que la cadena ligera comprende las secuencias
    SEC. ID. nº 4 QSIVYSNGNTY
    15 SEC. ID. nº 5 RVS
    SEC. ID. nº 6 20 FQGSHIPYT.
  11. 11. Anticuerpo monoclonal humano o fragmento que se une a ADM o un fragmento de anticuerpo del mismo para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho paciente según la reivindicación 10, en el que
    25 dicho anticuerpo o fragmento comprende una secuencia seleccionada de entre el grupo que comprende:
    SEC ID nº: 7 AM-VH-C
    imagen1
    SEC ID nº: 8 AM-VH1
    imagen2
    SEC ID nº: 9 AM-VH2-E40
    imagen3
    SEC ID nº: 10 AM-VH3-T26-E55
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    imagen4
    SEC ID nº: 11 AM-VH4-T26-E40-E55
    imagen5
    SEC ID nº: 12 AM-VL-C
    imagen6
    SEC ID nº: 13 AM-VL1
    imagen7
    SEC ID nº: 14 AM-VL2-E40
    imagen8
  12. 12. Anticuerpo anti-ADM o un fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o un andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque
    25 septicémico en un paciente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 11 para su utilización en combinación con vasopresores, por ejemplo catecolaminas y/o líquidos administrados por vía intravenosa.
  13. 13. Anticuerpo o fragmento de anticuerpo anti-adrenomedulina o andamiaje proteico sin Ig anti-ADM para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico
    30 en un paciente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 11 o una combinación según la reivindicación 12 para su utilización en combinación con proteína-1 de unión a ADM, factor H del complemento, y/u otros principios activos.
  14. 14. Formulación farmacéutica para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia,
    choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho 35 paciente que comprende un anticuerpo, fragmento o andamiaje según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 12.
  15. 15. Formulación farmacéutica para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho
    E12193118
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    paciente según la reivindicación 14 en la que dicha formulación farmacéutica es una solución, preferentemente una solución lista para su uso.
  16. 16. Formulación farmacéutica para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia,
    5 choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho paciente según la reivindicación 14, en la que dicha formulación farmacéutica está en estado liofilizado.
  17. 17. Formulación farmacéutica para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho
    10 paciente según cualquiera de las reivindicaciones 14 a 15, en la que dicha formulación farmacéutica se administra por vía intramuscular.
  18. 18. Formulación farmacéutica para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque, por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho
    15 paciente según cualquiera de las reivindicaciones 14 a 15, en la que dicha formulación farmacéutica se administra por vía intravascular.
  19. 19. Formulación farmacéutica para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia,
    choque por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho 20 paciente según la reivindicación 18, en la que dicha formulación farmacéutica se administra por infusión.
  20. 20. Formulación farmacéutica para su utilización en el tratamiento o prevención de SIRS, meningitis, septicemia, choque por ejemplo choque septicémico en un paciente para la reducción del riesgo de mortalidad para dicho paciente según cualquiera de las reivindicaciones 14 a 19, en la que dicha formulación farmacéutica debe
    25 administrarse de forma generalizada.
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