ES2396677T3 - Vacuna - Google Patents
Vacuna Download PDFInfo
- Publication number
- ES2396677T3 ES2396677T3 ES02760922T ES02760922T ES2396677T3 ES 2396677 T3 ES2396677 T3 ES 2396677T3 ES 02760922 T ES02760922 T ES 02760922T ES 02760922 T ES02760922 T ES 02760922T ES 2396677 T3 ES2396677 T3 ES 2396677T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- ptb
- vaccine
- paratuberculosis
- supernatant
- culture
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/02—Bacterial antigens
- A61K39/04—Mycobacterium, e.g. Mycobacterium tuberculosis
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/04—Antibacterial agents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/04—Antibacterial agents
- A61P31/06—Antibacterial agents for tuberculosis
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Communicable Diseases (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Public Health (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Pulmonology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Oncology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Una vacuna que comprende una proteína secretada derivada de una cepa de vacuna Weybridge de Mycobacerium avium subsp. paratuberculosis (M. ptb) que está sustancialmente libre de organismos enteros de esta especie vivos o muertos, en la que la proteína secretada se refiere a proteínas presentes en el sobrenadante de cultivos de organismos de M. ptb cultivados en fase semilogarítmica y después de centrifugación durante 10 minutos a 10.000 g.
Description
Vacuna.
CAMPO TÉCNICO
[0001] La presente invención se refiere a vacunas que comprenden proteínas de Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis.
TÉCNICA ANTERIOR
[0002] La enfermedad de Johne (paratuberculosis) es una infección contagiosa crónica con el bacilo de tinción acidorresistente Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (M. ptb). La enfermedad afecta a rumiantes y se caracteriza por emaciación y diarrea intermitente o reblandecimiento de las heces. La enfermedad de Johne es una enfermedad importante en vacas, ovejas, cabras, ciervos y camellos (Beeman y col., The Compendium 11, 1415 (1989)).
[0003] El tratamiento preferido en la actualidad se basa en una vacuna de microorganismos vivos (Neoparasec, Merial). Esta vacuna contiene organismos vivos de la cepa Weybridge, una cepa atenuada de M. ptb. También se conocen vacunas inactivadas.
[0004] Las vacunas existentes presentan dos desventajas. Las carcasas de animales tratados con las vacunas contienen organismos enteros que no son fácilmente distinguibles de los organismos de la tuberculosis. Además, los dos tipos de vacunas dejan lesiones en el sitio de inyección que pueden confundirse fácilmente con lesiones de tuberculosis.
[0005] Un objeto de la presente invención es preparar una vacuna contra la enfermedad de Johne en la que las desventajas anteriores no estén presentes o se hayan reducido.
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN
[0006] En un aspecto la invención proporciona una vacuna que comprende una proteína secretada derivada de una cepa de vacuna Weybridge de Mycobacerium avium subsp. paratuberculosis (M. ptb) que está sustancialmente libre de organismos enteros de esta especie vivos o muertos, en la que la proteína secretada se refiere a proteínas presentes en el sobrenadante de cultivos de organismos de M. ptb cultivados en fase semilogarítmica y después de centrifugación durante 10 minutos a 10.000 g. Preferentemente no hay organismos de
M. ptb. La vacuna de la invención puede usarse para tratar la enfermedad de Johne.
[0007] En un segundo aspecto, la presente invención proporciona una vacuna contra la enfermedad de Johne que comprende un sobrenadante de una cepa de vacuna Weybridge de cultivo de Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis M. ptb que puede obtenerse mediante cultivo en fase semilogarítmica y centrifugación durante 10 minutos a 10.000 g y el sobrenadante no contiene organismos enteros de esta especie, ni vivos ni muertos.
[0008] En un tercer aspecto, la presente invención proporciona el uso de una proteína secretada según se define anteriormente, para la preparación de un medicamento con el fin de vacunar a un animal contra Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis.
[0009] En un cuarto aspecto, la presente invención proporciona el uso de un sobrenadante de una cepa de vacuna Weybridge de cultivo de Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (M. ptb) que puede obtenerse por cultivo de M. ptb en fase semilogarítmica y centrifugación durante 10 minutos a 10.000 g de manera que el sobrenadante no contiene organismos enteros de esta especie ni vivos ni muertos, para la preparación de un medicamento con el fin de vacunar a un animal contra Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis.
[0010] En un quinto aspecto, la presente invención proporciona una vacuna que comprende proteína secretada derivada de una cepa de vacuna Weybridge de Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (M. ptb) que está sustancialmente libre de organismos enteros de esta especie, vivos o muertos, para su uso en la vacunación de un animal contra Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis, en la que la proteína secretada se refiere a proteínas presentes en un sobrenadante de un cultivo en fase semilogarítmica de los organismos de M. ptb después de centrifugación durante 10 minutos a 10.000 g.
[0011] En un sexto aspecto, la presente invención proporciona una vacuna que comprende un sobrenadante de un cultivo de Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (M. ptb) que no contiene organismos enteros de esta especie, ni vivos ni muertos, que puede obtenerse mediante cultivo en fase semilogarítmica y centrifugación del cultivo durante 10 minutos a 10.000 g para vacunar a un animal contra Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (M. ptb).
[0012] El término "sustancialmente libre" indica que el número de organismos vivos o muertos es demasiado bajo para tener importancia en el procedimiento de vacunación (por ejemplo, menor que 1.000/ml).
[0013] Preferentemente la vacuna comprende adicionalmente un adyuvante.
[0014] Preferentemente la vacuna comprende una albúmina sérica, más preferentemente una albúmina sérica heteróloga. Para las ovejas la albúmina preferida en la actualidad es albúmina sérica bovina. Para las vacas se prefiere el uso de albúmina sérica ovina.
[0015] Preferentemente cuando las proteínas secretadas se obtienen de un cultivo de microorganismos, los microorganismos se eliminan por centrifugación y posteriormente se filtran para eliminar las bacterias residuales.
[0016] Preferentemente las proteínas secretadas se concentran usando ultrafiltración.
[0017] El término "proteínas secretadas" en la presente memoria descriptiva se refiere a proteínas presentes en el sobrenadante después de la centrifugación durante 10 min a 10.000 g de un cultivo de organismos de Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis. Además de proteínas exportadas el sobrenadante incluye proteínas que se han desprendido de los microorganismos o que están presentes en el cultivo como consecuencia de otras causas. Los animales para los cuales el procedimiento de la invención resulta especialmente útil incluyen los rumiantes, en particular las ovejas.
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN
La fig. 1 es un gráfico que muestra isocitrato deshidrogenasa (ICD) en FC concentrado y en sonicados celulares representados con respecto a DO600.
La fig. 2 es una copia de un gel de SDS-PAGE de medio de cultivo (calle 2) y FC (calle 3).
La fig. 3 es un gráfico que muestra el interferón gamma producido en las muestras de sangre de seis animales vacunados y tres animales de control en respuesta a DPP de johnina y antígenos de vacuna candidatos.
La fig. 4 es un gráfico que muestra el interferón producido en muestras de sangre tomadas de animales no vacunados y animales vacunados con Neoparasec, Filtrado de Cultivo (FC) más Adyuvante de Neoparasec (ANP) y medio más ANP, en respuesta a DPP aviar y FC.
La fig. 5 es un gráfico que muestra el interferón producido en muestras de sangre tomadas de animales no vacunados y animales vacunados con Neoparasec y FC más adyuvante de Neoparasec, en respuesta a DPP aviar, DPP de johnina y antígeno de FC.
La fig. 6 es un gráfico de respuesta media de interferón gamma a DPP aviar con respecto al número de meses después de la vacunación.
La fig. 7 es un gráfico de respuesta media de interferón gamma a FC con respecto al número de meses después de la vacunación.
EJEMPLOS
[0019] Los Ejemplos siguientes ilustran adicionalmente la práctica de la invención.
[0020] Se realizaron estudios con corderos Romney macho castrados de tres meses de edad obtenidos de Massey Agricultural Services, Palmerston North, Nueva Zelanda. Los animales se mantuvieron en terrenos de explotación ganadera con pasto al aire libre y agua ad libitum. Las ovejas usadas en este estudio se seleccionaron basándose en la reactividad negativa con el antígeno micobacteriano de DPP de johnina, según la medición con el
kit de ensayo de IFN-de sangre entera BOVIGAM (CSL).
Antígeno de FC
[0021] Se preparó Filtrado de Cultivo (FC) de antígeno de vacuna de Johne candidato, que contenía proteínas secretadas de M. ptb, a partir de cultivos de medios líquidos de cepa de vacuna Weybridge de M. ptb (Neoparasec). Se desarrollaron los cultivos en fase semilogarítmica temprana y se eliminaron las células por centrifugación. Se filtraron los sobrenadantes resultantes (que contenían proteínas secretadas por M. ptb) para eliminar las bacterias residuales y se concentraron aproximadamente 200 veces usando ultrafiltración.
[0022] Se cuantificaron muestras de control de FC y sólo de medio (M) usando un ensayo de proteínas y se diluyeron apropiadamente en Solución Salina con Tampón de Fosfato (PBS). Se estima que del 5 al 10% del FC total es proteína secretada de M. ptb, siendo el resto albúmina sérica bovina (BSA).
Cultivos de M. ptb y cuantificación de ICD
[0023] La cepa de referencia Weybridge 316F de M. ptb se obtuvo de Rhone-Merieux en forma liofilizada y se rehidrató en caldo Middlebrook 7H9 (Difco), suplementado con 1 mg/l de micobactina J (Allied Monitor), bactoglicerol al 0,2% (Difco), Enriquecimiento Middlebrook ADC 1:100 (v/v) (Becton Dickenson) y dextrosa hasta una concentración final de 2 g/l. M. ptb se propagó en cuñas de agar 7H10 (Difco) suplementadas con Enriquecimiento Middlebrook OADC según las recomendaciones del fabricante (Becton Dickenson) y se añadió micobactina J como antes. Los cultivos líquidos (7H9) se cultivaron a 37°C con agitación vigorosa.
[0024] Se vigiló el crecimiento de M. ptb en medio líquido tomando lecturas de Densidad Óptica (DO) a 600 nm, en intervalos regulares durante un periodo de tres semanas. El grado de lisis en los cultivos se determinó por cuantificación de isocitrato deshidrogenasa (ICD), un marcador citoplásmico, en los sobrenadantes concentrados 200 veces (véase más adelante). Se usaron sonicados de M. ptb como controles positivos. La actividad de ICD se determinó usando el kit de diagnóstico de ICD para determinación cuantitativa (Sigma), con cambios en la absorbancia a 340 nm correspondientes a la reducción de NADP a NADPH. Los resultados se expresan en unidades internacionales, que son iguales a micromoles de NADPH formados por minuto a 25°C. Se observó una lisis muy escasa en la preparación de los filtrados celulares (véase fig. 1).
Preparación de proteína de filtrado de cultivo (FC) de M. ptb
[0025] Para la preparación de filtrado de cultivo, se cultivaron 5 ml de cultivo de inicio de M. ptb en fase logarítmica tardía, se inoculó 1:100 en medio nuevo y se cultivó en fase semilogarítmica (aproximadamente 3 semanas) a 37°C con agitación vigorosa. Se eliminaron las células por centrifugación a aproximadamente 10.000x g
y se hizo pasar el sobrenadante del cultivo a través de un filtro de 0,22 m y se concentró por ultrafiltración usando un aparato Amicon que contenía una membrana de corte a PM de 3.000. El material concentrado se sometió a intercambio con tampón mediante diluciones repetidas con tampón PBS y se reconcentró (dilución aprox. 1.000 veces). Para la etapa de concentración final, el FC se centrifugó a 3.000x g en un aparato Centriplus (Amicon) con un corte a PM de 3.000. El FC concentrado 200 veces resultante se guardó a -20°C hasta que fuera necesario. Las concentraciones de proteínas se determinaron usando reactivo de Ensayo de Proteínas de Bio-Rad con albúmina sérica bovina (BSA) como patrón. El control (muestras sólo de medio líquido) se preparó mediante filtración y concentración del medio según se describe anteriormente.
[0026] La fig. 2 es una copia de un gel de SDS-PAGE que muestra una comparación entre las proteínas de FC (calle 3) y las proteínas del medio. Las bandas de M. ptb principales tienen pesos moleculares de aproximadamente 27 y 40 kD.
Experimento
[0027] Se seleccionó un grupo de doce corderos (de tres meses de edad) para probar la inmunogenicidad de los antígenos de FC. Se vacunó a seis ovejas con la vacuna de Johne comercial Neoparasec (de acuerdo con las instrucciones del fabricante). Las ovejas restantes se mantuvieron como control sin vacuna. En intervalos mensuales se obtuvo sangre de las ovejas y se analizaron los antígenos de vacunas candidatos usando un kit de ensayo de interferón gamma BOVIGAM. La producción de interferón gamma por linfocitos en sangre entera es una medida de la respuesta inmunitaria mediada por células (protectora) a un antígeno en particular. Cada antígeno fue incubado con 1 ml de sangre durante toda la noche, y a continuación se analizó el sobrenadante mediante ELISA de BOVIGAM para determinar los niveles de interferón gamma producido.
[0028] Seis meses después de la vacunación, se incluyó FC (que contenía proteínas secretadas de Neoparasec) en las obtenciones mensuales de sangre en las cantidades siguientes (por 1 ml de sangre de oveja): A
= Alto = 150 g, M = Medio = 75 g y B = Bajo = 25 g. De las lecturas de FC se restaron las lecturas correspondientes sólo al medio (que contenían cantidades equivalentes o proteínas del medio). En la mayoría de los casos, las lecturas para los controles negativos no superaron un valor de DO 0,1.
El DPP de johnina (control positivo) fue de 12,5 g para todos los animales. El DPP de johnina es un extracto de organismos enteros de M. ptb. La PBS sirvió como control negativo para DPP y se restó de las lecturas de DPP mostradas. Las DO mostradas en la fig. 3 son medias de lecturas por triplicado (incubaciones sangre/antígeno por triplicado).
[0029] La respuesta a FC fue más elevada de forma consistente en los animales vacunados que en los animales de control no vacunados. Este efecto se observó en las muestras recogidas en el periodo de 6 a 10 meses. En los animales, la respuesta a los filtrados de cultivo mostró tener respuestas significativamente superiores a los controles del medio entre los animales vacunados en casi todos los casos. En ocasiones, los controles mostraron reacciones importantes a la johnina y los FC (p. ej., 134c, fig. 3) pero este hecho no se observó de forma consistente en diferentes ensayos.
[0030] Para proporcionar una evidencia adicional de que las respuestas observadas procedían de los antígenos de las proteínas en los FC, y no de otros FC de componentes (no proteínas), se precipitó la proteína usando sulfato de amonio (S.A.) y se incluyó en el ensayo de 7 meses. Seguía existiendo una reacción significativa a esta fracción, mientras que el sobrenadante restante de no proteínas (no mostrado) proporcionó una respuesta muy baja. Este resultado indica que la fracción de proteínas de FC es verdaderamente responsable de la estimulación observada.
Conclusiones
[0031] Al menos parte de la respuesta inmunitaria de "tipo protector" después de vacunación con Neoparasec de ovejas parece deberse a proteínas secretadas por la cepa de la vacuna.
[0032] Se asignaron los animales aleatoriamente a cuatro grupos de tratamiento diferentes. El Grupo 1 no recibió vacunación. El Grupo 2 recibió Neoparasec según las instrucciones del fabricante. El Grupo 3 recibió FC más el adyuvante de Neoparasec. El Grupo 4 recibió medio más adyuvante de Neoparasec.
[0033] Después de 1, 2, 3, 4 y 6 meses se recogió sangre de cada uno de los animales. Se sometieron a ensayo estas muestras de sangre mensuales para analizar la producción de interferón gamma por linfocitos como una medida del medio celular (respuesta inmunitaria protectora) a DPP aviar, DPP de johnina y FC M. El resultado mostró que la inmunización con Neoparasec produjo una alta respuesta en todas las pruebas in vitro para todos los animales. Los animales que no fueron vacunados o que fueron vacunados con medio más ANP produjeron muestras que revelaron una producción de interferón muy baja en respuesta a DPP o FC M. Se mostró una respuesta intermedia en los animales que habían sido vacunados con FC más ANP. En la fig. 4 se muestran los resultados para el ensayo de 1 mes. Se mostraron resultados similares en las muestras de sangre durante los siguientes cuatro meses (no mostrados). La fig. 5 muestra que incluso 6 meses después de la vacunación, existe una respuesta de producción de interferón a DPP de johnina y FC. En las fig. 6 y 7 se muestra la evolución en el tiempo de la respuesta a DPP aviar y FC, respectivamente.
[0034] Las lesiones en el sitio de inyección se valoraron en 0,5, 1, 2, 3 y 4 meses después de la inyección. En el examen de 0,5 meses el grupo de FC más ANP tuvo la valoración media más alta de los cuatro grupos (incluidos los tratados con la vacuna de microorganismos vivos Neoparasec). En todos los exámenes posteriores las valoraciones medias para el grupo de FC más ANP habían descendido por debajo de las correspondientes al grupo de Neoparasec, pero seguían siendo superiores a las del grupo que recibió medio + ANP y al grupo sin vacunar.
[0035] A los 2 meses después de la vacunación, se midieron los niveles de anticuerpos usando Paracheck (ensayo inmunoenzimático absorbido de Johne para la determinación de paratuberculosis, CSL Ltd). Los niveles de anticuerpos fueron significativamente más elevados en los grupos vacunados con Neoparasec y en los vacunados con FC que en los animales que no habían recibido tratamiento.
[0036] Los Ejemplos anteriores son ilustraciones de la práctica de la invención. Los expertos en la materia observarán que la invención puede ponerse en práctica con numerosas modificaciones y variaciones. Por ejemplo, las vacunaciones pueden usar una diversidad de adyuvantes diferentes, es posible variar la cepa de bacteria usada para preparar las proteínas secretadas y las proteínas secretadas pueden fraccionarse.
Claims (14)
- REIVINDICACIONES
- 1.
- Una vacuna que comprende una proteína secretada derivada de una cepa de vacuna Weybridge de Mycobacerium avium subsp. paratuberculosis (M. ptb) que está sustancialmente libre de organismos enteros de esta especie vivos o muertos, en la que la proteína secretada se refiere a proteínas presentes en el sobrenadante de cultivos de organismos de M. ptb cultivados en fase semilogarítmica y después de centrifugación durante 10 minutos a 10.000 g.
-
- 2.
- Una vacuna según la reivindicación 1, que comprende un adyuvante.
-
- 3.
- Una vacuna según la reivindicación 1 ó 2, que comprende una albúmina sérica.
-
- 4.
- Una vacuna según la reivindicación 2, en la que las proteínas secretadas se obtienen de un cultivo de microorganismos, siendo los microorganismos eliminados por centrifugación y posterior filtración.
-
- 5.
- Una vacuna contra la enfermedad de Johne que comprende un sobrenadante de una cepa de vacuna Weybridge de cultivo de Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (M. ptb) obtenida por cultivo en fase semilogarítmica y centrifugación durante 10 minutos a 10.000 g y el sobrenadante no contiene organismos enteros de esta especie, vivos o muertos.
-
- 6.
- El uso de una proteína secretada según se define en cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, para la preparación de un medicamento para vacunar a un animal contra Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis.
-
- 7.
- El uso de un sobrenadante de una cepa de vacuna Weybridge de cultivo de Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (M. ptb) obtenido por cultivo de M. ptb en fase semilogarítmica y centrifugación durante 10 minutos a 10.000 g de manera que el sobrenadante no contiene organismos enteros de esta especie, vivos o muertos, para la preparación de un medicamento para vacunar a un animal contra Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis.
-
- 8.
- El uso según la reivindicación 7, en el que el medicamento comprende un adyuvante.
-
- 9.
- El uso según la reivindicación 7 u 8, en el que el medicamento comprende una albúmina sérica.
-
- 10.
- El uso según la reivindicación 7, en el que el sobrenadante se obtiene de un cultivo de microorganismos, siendo los microorganismos eliminados por centrifugación y posterior filtración.
-
- 11.
- El uso según la reivindicación 6 ó 7, en el que el animal es un rumiante.
-
- 12.
- Un uso según la reivindicación 11, en el que el rumiante es una oveja.
-
- 13.
- Una vacuna que comprende proteína secretada derivada de una cepa de vacuna Weybridge de Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (M. ptb) que está sustancialmente libre de organismos enteros de esta especie, vivos o muertos, para su uso en la vacunación de un animal contra Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis, en la que la proteína secretada se refiere a proteínas presentes en el sobrenadante de un cultivo en fase semilogarítmica de los organismos de M. ptb después de centrifugación durante 10 minutos a 10.000 g.
-
- 14.
- Una vacuna que comprende un sobrenadante de un cultivo de Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (M. ptb) que no contiene organismos enteros de esta especie, ni vivos ni muertos, obtenida por el cultivo en fase semilogarítmica y la centrifugación del cultivo durante 10 minutos a 10.000 g con el fin de vacunar a un animal contra Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (M. ptb).
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
NZ513418A NZ513418A (en) | 2001-08-07 | 2001-08-07 | Vaccine comprising proteins from mycobacterium paratuberculosis |
NZ51341801 | 2001-08-07 | ||
PCT/NZ2002/000152 WO2003013596A1 (en) | 2001-08-07 | 2002-08-07 | Vaccine |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2396677T3 true ES2396677T3 (es) | 2013-02-25 |
Family
ID=19928574
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES02760922T Expired - Lifetime ES2396677T3 (es) | 2001-08-07 | 2002-08-07 | Vacuna |
Country Status (6)
Country | Link |
---|---|
US (2) | US7387773B2 (es) |
EP (1) | EP1423141B1 (es) |
AU (1) | AU2002326240B2 (es) |
ES (1) | ES2396677T3 (es) |
NZ (1) | NZ513418A (es) |
WO (1) | WO2003013596A1 (es) |
Families Citing this family (23)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20160279239A1 (en) | 2011-05-02 | 2016-09-29 | Immunomedics, Inc. | Subcutaneous administration of anti-cd74 antibody for systemic lupus erythematosus and autoimmune disease |
NZ519667A (en) * | 2002-06-19 | 2005-02-25 | Univ Massey | A putative 23kDa lipoprotein from Mycobacterium paratuberculosis and its use in Johne's disease |
WO2004093903A2 (en) * | 2003-04-18 | 2004-11-04 | The Brigham And Women's Hospital, Inc. | Methods and compositions for immunomodulation using cd1 antigens |
US20160355591A1 (en) | 2011-05-02 | 2016-12-08 | Immunomedics, Inc. | Subcutaneous anti-hla-dr monoclonal antibody for treatment of hematologic malignancies |
US7846420B2 (en) * | 2007-04-23 | 2010-12-07 | Greenstein Robert J | Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis vaccines and methods of using the same |
LT3912643T (lt) | 2009-02-13 | 2023-02-10 | Immunomedics Inc. | Imunokonjugatai su ląstelės viduje skaldoma jungtimi |
WO2011068845A1 (en) | 2009-12-02 | 2011-06-09 | Immunomedics, Inc. | Combining radioimmunotherapy and antibody-drug conjugates for improved cancer therapy |
CA2831572C (en) | 2011-05-02 | 2019-11-26 | Immunomedics, Inc. | Ultrafiltration concentration of allotype selected antibodies for small-volume administration |
CN104379169A (zh) | 2012-08-14 | 2015-02-25 | Ibc药品公司 | 用于治疗疾病的t-细胞重定向双特异性抗体 |
SI2900277T1 (sl) | 2012-12-13 | 2022-05-31 | Immunomedics, Inc. | Odmerki imunokonjugatov protiteles in SN-38 za boljšo učinkovitost in zmanjšano toksičnost |
EP2774930A1 (en) | 2013-03-07 | 2014-09-10 | Aptenia S.R.L. | Metallocene compounds and labeled molecules comprising the same for in vivo imaging. |
ES2978993T3 (es) | 2014-02-21 | 2024-09-23 | Ibc Pharmaceuticals Inc | Terapia de enfermedades mediante la inducción de la respuesta inmunitaria a las células que expresan Trop-2 |
EP3110445A4 (en) | 2014-02-25 | 2017-09-27 | Immunomedics, Inc. | Humanized rfb4 anti-cd22 antibody |
KR20230155600A (ko) | 2014-04-03 | 2023-11-10 | 아이쥐엠 바이오사이언스 인코포레이티드 | 변형된 j-사슬 |
CN107073135B (zh) | 2014-09-08 | 2023-06-06 | 鲁塔纳有限公司 | 用于将分子递送至细胞的细胞质中的构建体 |
CN107428837A (zh) | 2015-04-22 | 2017-12-01 | 免疫医疗公司 | 循环trop‑2阳性癌细胞的分离、检测、诊断和/或鉴定 |
EP3316885B1 (en) | 2015-07-01 | 2021-06-23 | Immunomedics, Inc. | Antibody-sn-38 immunoconjugates with a cl2a linker |
AU2016329197B2 (en) | 2015-09-30 | 2021-01-21 | Igm Biosciences, Inc. | Binding molecules with modified J-chain |
WO2017059387A1 (en) | 2015-09-30 | 2017-04-06 | Igm Biosciences, Inc. | Binding molecules with modified j-chain |
WO2018187074A1 (en) | 2017-04-03 | 2018-10-11 | Immunomedics, Inc. | Subcutaneous administration of antibody-drug conjugates for cancer therapy |
CN116390772A (zh) | 2020-07-07 | 2023-07-04 | 博泰康医药公司 | 新型美登素类似物作为adc有效载荷及其在癌症治疗中的用途 |
JP2023533173A (ja) | 2020-07-09 | 2023-08-02 | エフ. ホフマン-ラ ロシュ アーゲー | タンパク質の濃縮組成物、それらの調製及びそれらの使用 |
WO2022239720A1 (ja) | 2021-05-10 | 2022-11-17 | 公益財団法人川崎市産業振興財団 | 抗原への結合親和性を低減させた抗体 |
Family Cites Families (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4777130A (en) * | 1984-12-05 | 1988-10-11 | Andra Biologicals | Isolation of mycobacterial a 60 antigen for diagnostic purposes |
WO1992016628A1 (en) * | 1991-03-25 | 1992-10-01 | N.V. Innogenetics S.A. | Polypeptides from mycobacterium paratuberculosis |
DE19728834C2 (de) * | 1997-07-05 | 1999-10-21 | Gerlach Gerald F | Eisenreduktase |
US5985576A (en) * | 1998-06-30 | 1999-11-16 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture | Species-specific genetic identification of Mycobacterium paratuberculosis |
JP4627579B2 (ja) * | 2000-05-31 | 2011-02-09 | 英一 百溪 | M細胞取り込み制御によるヨーネ病感染の予防方法 |
-
2001
- 2001-08-07 NZ NZ513418A patent/NZ513418A/en not_active IP Right Cessation
-
2002
- 2002-08-07 US US10/486,270 patent/US7387773B2/en not_active Expired - Lifetime
- 2002-08-07 AU AU2002326240A patent/AU2002326240B2/en not_active Expired
- 2002-08-07 EP EP02760922A patent/EP1423141B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2002-08-07 ES ES02760922T patent/ES2396677T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2002-08-07 WO PCT/NZ2002/000152 patent/WO2003013596A1/en not_active Application Discontinuation
-
2008
- 2008-05-13 US US12/153,053 patent/US7758875B2/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP1423141A1 (en) | 2004-06-02 |
US20050025783A1 (en) | 2005-02-03 |
US20080317785A1 (en) | 2008-12-25 |
AU2002326240B2 (en) | 2008-01-03 |
NZ513418A (en) | 2004-04-30 |
US7758875B2 (en) | 2010-07-20 |
EP1423141A4 (en) | 2005-08-03 |
US7387773B2 (en) | 2008-06-17 |
WO2003013596A1 (en) | 2003-02-20 |
EP1423141B1 (en) | 2012-10-31 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2396677T3 (es) | Vacuna | |
RU2364417C2 (ru) | Вакцина, набор и способ лечения или предупреждения пародонтоза у животных-компаньонов | |
AU2002326240A1 (en) | Vaccine | |
Barnes et al. | Characterization of T cell antigens associated with the cell wall protein-peptidoglycan complex of Mycobacterium tuberculosis. | |
Munir et al. | Outer membrane proteins of Brucella abortus vaccinal and field strains and their immune response in buffaloes | |
Every et al. | Protection of sheep against experimental footrot by vaccination with pili purified from Bacteroides nodosus | |
KR20050103215A (ko) | 보르데텔라 브론키셉티카에 대한 개 백신 | |
Elberg | Rev 1 Brucella melitensis vaccine. Part III 1981-1995. | |
JP2005538923A (ja) | ミコバクテリアワクチン | |
UA121097C2 (uk) | Імуногенна композиція, що містить антигени мікоплазм | |
EP0863981B1 (en) | Detection, prevention and treatment of papillomatous digital dermatitis | |
US20210220459A1 (en) | Vaccine compositions | |
RU2478399C2 (ru) | Способ получения специфического иммуномодулятора | |
RU2778094C2 (ru) | Композиции для применения в качестве профилактического средства для пациентов с риском туберкулезной инфекции или в качестве вторичных средств для лечения пациентов с туберкулезной инфекцией | |
RU2366455C2 (ru) | Способ получения специфического иммуномодулятора | |
Hanna et al. | Comparative evaluation of antibody response in sheep vaccinated by bivalent clostridial and pasteurella combined vaccine | |
Nimisha et al. | Seroconversion studies of Brucella abortus SR51 vaccine in cattle | |
Rweyemamu et al. | The development of a vaccine for bovine herpes mammillitis | |
Turcotte et al. | Comparison between the antigenic components extracted from virulent and avirulent strains of mycobacteria | |
CN113354742A (zh) | 一种布鲁氏杆菌基因工程亚单位疫苗及其制备方法和应用 | |
Kochan | The serological response in rabbits to live, irradiated and heat-killed mycobacterial vaccines | |
Lyle | Comparison of serological and cultural detection of mycobacterial infections in bovine, caprine, ovine, and porcine species | |
Refai et al. | STUDIES ON THE IMMUNE RESPONSE OF GUINEA PIGS TO LIVING AND DEAD BRUCELLA ABORTUS SMOOTH (STRAIN 19) AND ROUGH (45/20) ANTIGENS | |
Kashem | A STUDY ON CONCOMITANT INFECTIONS AND SURVIVABILITY IN BLACK BENGAL GOATS WITH Peste des Petits Ruminants | |
Salem et al. | Experimental study of brucella vaccines in mice and guinea pigs, with special references to serological diagnosis of workers in field of vaccine production |