ES2303636T3 - Metodo para la inhibicion selectiva del gen humano n-myc a traves de acidos nucleicos peptidicos (pna) en tumores que expresan n-myc a traves de proteinas pna sentido y antisentido. - Google Patents
Metodo para la inhibicion selectiva del gen humano n-myc a traves de acidos nucleicos peptidicos (pna) en tumores que expresan n-myc a traves de proteinas pna sentido y antisentido. Download PDFInfo
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Abstract
Ácido nucléico peptídico (PNA) que comprende de 12 a 24 bases nucleótidas, dicho ácido nucléico peptídico siendo complementario al filamento antisentido del gen N-myc humano.
Description
Método para la inhibición selectiva del gen
humano N-MYC a través de ácidos nucléicos peptídicos
(PNA) en tumores que expresan N-MYC a través de
proteínas PNA sentido y antisentido.
La presente invención se refiere a ácidos
nucléicos peptídicos (PNA, del inglés
Peptide-Nucleic Acid) sentido y antisentido. La
presente invención además se refiere al uso de dichos PNAs para
preparar drogas para el tratamiento de tumores.
Como se sabe, la estrategia antisentido es un
método útil para tratar enfermedades genéticas o provocadas por
virus.
De acuerdo con la estrategia antisentido, una
porción de RNA complementaria a una región de RNA transcrito de un
gen puede bloquear la expresión de RNA transcrito creando un enlace
entre el DNA complementario y el RNA trascrito, de manera de
impedir la traducción de RNA trascrito.
En otros términos, las secuencias cortas de DNA
que comprenden 15-25 bases de longitud son
sintetizadas en forma complementaria y son combinadas con porciones
de mRNAs específicos de virus o de origen nocivo que se hallan en
células tumorales.
Las porciones complementarias generadas de esta
manera pueden bloquear directamente la traducción.
Además, es conocido el empleo de la estrategia
antisentido para preparar drogas que se emplean en la terapia
genética humana.
Es conocido el empleo de estructuras antisentido
tales como, por ejemplo, oligonucleótidos.
En un estudio llevado a cabo por A. Rosolen y
otros (Cancer Research 50, 6316-6322, 1º de Octubre
de 1990), oligómeros sintéticos antisentido específicamente
inhibieron la expresión del gen N-MYC en la línea
celular de neuroepitelioma CHP100.
Sin embargo, en los últimos años se ha
desarrollado el empleo de nuevas estructuras antisentido y
antí-geno, como por ejemplo los ácidos nucléicos peptídicos
(PNAs).
Otro tipo de estructura antisentido que se usó
con buenos resultados es un oligonucleótido antisentido
total/parcial-
mente fosforotiato contra la expresión de N-MYC mRNA humano en células de neuroblastoma (ref. U Galderisi y otros, Journal of Cellular Biochemistry 74: 31-37 (1999)).
mente fosforotiato contra la expresión de N-MYC mRNA humano en células de neuroblastoma (ref. U Galderisi y otros, Journal of Cellular Biochemistry 74: 31-37 (1999)).
Los ácidos nucléicos peptídicos (PNAs)
comprenden análogos de los ácidos nucléicos con carga neutra que
contienen una cadena seudopeptídica (backbone) en lugar de una
común estructura deoxiribosa-fosfato.
Los ácidos nucléicos peptídicos (PNAs) son
enzimáticamente más estables si se los compara con las estructuras
antisentido oligonucleotídicas.
Los ácidos nucléicos peptídicos pueden enlazarse
de manera complementaria con los filamentos de DNA/RNA, creando así
una estructura híbrida PNA/DNA o PNA/RNA de doble hélice, que son
termodinámicamente más estables que los homoduplexes.
Además, los ácidos nucléicos peptídicos se
pueden sintetizar a través de técnicas de síntesis que se usan
comúnmente para la síntesis de péptidos.
A la luz de las ventajas descritas arriba, los
ácidos nucléicos peptídicos (PNAs) representan un enfoque
alternativo para la terapia genética antisentido y son el sistema
más ventajoso para la estrategia antigénica.
Asimismo, se ha demostrado que los ácidos
nucléicos peptídicos son altamente específicos para secuencias diana
y permiten inhibir la expresión de las proteínas.
Doyle y otros (ref. Biochemistry 2001, 40
53-64) experimentaron y examinaron los efectos de la
inhibición de PNA antisentido en la expresión de luciferase en
células de COS-7 a través de la región de
codificación 5'-UTR y total de luciferase. También
examinaron el efecto de bases no complementarias y el efecto de la
longitud de PNA con respecto a sus propiedades inhibitorias.
Por lo tanto, los ácidos nucléicos peptídicos
(PNAs) constituyen un enfoque terapéutico prometedor para el
tratamiento de enfermedades génicas o provocadas por virus.
Sin embargo, los ácidos nucléicos peptídicos
(PNAs) presentan una desventaja, por lo que se refiere a las
estructuras oligonucleotídicas antisentido, es decir tienen una baja
capacidad de pasar a través de las membrana celular.
Para superar dicho inconveniente, algunos
investigadores han tratado de conjugar ácidos nucléicos peptídicos
con moléculas específicas de manera de incrementar la eficacia de
penetración de los ácidos nucléicos peptídicos a través de la
membrana celular.
Los estudios han demostrado que el uso de varios
conjugados de péptidos como transportadores: pAntennapedia
(43-58) conjugado con un PNA 21-mero
complementario a mRNA receptor de galanina tipo I conocido fue
absorbido eficientemente por las células de Bowes (ref. M Pooga y
otros, Nature Biotechnology, Volumen 16, Setiembre de 1998).
En otro estudio, se crearon secuencias
conjugadas artificiales, basadas en la estructura de la tercera
hélice del homeodominio de Antennapedia, y también fueron
absorbidas por células, pero entraron sólo dentro del citoplasma y
no del núcleo (ref. C. G. Simmons y otros, Bioorganic &
medicinal Chemistry Letters, Vol. 7, N. 23, páginas
3001-3006, 1997).
Los experimentos con PNA 17-mero
sintetizados como antisentido para oncogén C-MYC,
que fue conjugado con variantes de un péptido NLS heptámero básico
que previamente había demostrado actuar como intermediario de
transferencia del T-antí-geno grande SV40 (SV40 =
Simian Virus 40) a través de la membrana nuclear, demostró captación
celular mediante las células Linfomas de Burkitt (que presentan una
expresión translocada y excesiva del oncógeno
C-MYC). Esto permitió una rápida regulación
descendente de la expresión C-MYC (ref. G. Cutrona y
otros, Nature Biotechnology, Volumen 18, Marzo de 2000).
Además, se sabe que aproximadamente el
25-30% de los neuroblastomas no tratados mostraron
una amplificación/sobreexpresión del proto-oncógeno
N-myc asociado a una etapa avanzada de la
enfermedad, rápida progresión y pronóstico adverso.
Un neuroblastoma es un sarcoma originado por el
sistema nervioso periférico y se compone de neuroblastos (células
embrionarias que se transformarán en células nerviosas).
El neuroblastoma afecta a niños de hasta 10 años
de edad y provoca metástasis craneal y hepático.
La expresión N-myc en ratones
transgénicos da como resultado el desarrollo de neuroblastomas.
La inhibición antisentido de la expresión
N-myc in vitro reduce la proliferación de
neuroblastoma y promueve la diferenciación de las células tumorales
de neuroblastoma.
Hasta hoy la inhibición ha sido acompañada tanto
por estructuras de oligonucleótidos antisentido contra
N-myc mRNA como por la expresión de portadores
adecuados para generar RNA antisentido N-myc.
De todos modos, los oligonucleótidos antisentido
tienen la desventaja que consiste en su rápida degradación debido a
las nucleasas.
Por lo tanto, la identificación de inhibidores
selectivos de N-MYC (proteína) podría tener una alta
relevancia para el desarrollo de agentes terapéuticos específicos
con una menor toxicidad y una mayor eficacia para el tratamiento de
neuroblastomas con expresión N-myc.
Como consecuencia de lo anterior, existe la
necesidad de secuencias PNA que puedan inhibir o eliminar la
síntesis de la proteína N-MYC producida en tumores
que expresan dicha proteína.
En particular, existe la necesidad de secuencias
PNA, de ser necesario conjugables, a usar en estrategia antisentido
y antigénica para inhibir o eliminar la síntesis de la proteína
N-MYC.
Lichun y otros (Peptides 23 (2002)
1557-1565) han desarrollado una serie de
construcciones que son antisentido para el oncogén
N-MYC. Las mismas presentaron una mejorada
citotoxicidad hacia células IMR32 del neuroblastoma humano, pero
fueron limitadas por su método de reparto: los PNA fueron conjugados
a análogos de somatostatina y fueron efectivos sólo con células que
expresaban simultáneamente receptores de somatostatina y
oncogén
N-MYC.
N-MYC.
En particular, existe la necesidad de secuencias
PNA antisentido y secuencias PNA antigénicas a usar para preparar
drogas altamente específicas y efectivas (drogas antisentido y
antigénicas) para el tratamiento de tumores.
En particular, existe la necesidad de ácidos
nucléicos peptídicos seleccionados que se puedan enlazar con mRNA
mensajero.
\newpage
Un objetivo de la presente invención es el de
proyectar y seleccionar secuencias de PNA que puedan pasar a través
de la membrana celular.
Otro objetivo de la presente invención es el de
proyectar y seleccionar secuencias PNA a usar en la estrategia
antisentido.
Otro objetivo de la presente invención es el de
proyectar y seleccionar secuencias de PNA a usar en la estrategia
antigénica.
Otro objetivo de la presente invención es el de
proyectar y seleccionar secuencias de PNA para la inhibición
selectiva de la proteína N-MYC, por ejemplo en
células de neuroblastoma humano.
Otro objetivo de la presente invención es el de
proyectar y seleccionar secuencias de PNA altamente específicas y
efectivas para preparar drogas antisentido y antigénicas a usar para
tratar enfermedades genéticas.
Esos y otros objetivos, como se pondrá de
manifiesto a partir de la descripción detallada que sigue, han sido
logrados por el Solicitante, quien propone una estrategia
antisentido y una estrategia antigénica basadas en el uso de ácidos
nucléicos peptídicos (PNAs) específicos para la inhibición de la
síntesis de la proteína N-MYC en tumores que
expresan dicha proteína, en particular en células de neuroblastoma
humano.
Por consiguiente, un primer objetivo de la
presente invención es el de secuencias de PNA que presenten las
características expresadas en la anexa reivindicación
independiente.
Otro objetivo de la presente invención consiste
en un método para preparar secuencias de PNA que presenten las
características de las anexas reivindicaciones independientes.
Otro objetivo de la presente invención consiste
en emplear dichas secuencias de PNA para preparar composición
farmacéutica para tratar tumores, cuyas características están
enumeradas en la anexa reivindicación independiente.
Otras realizaciones preferidas están listadas en
las anexas reivindicaciones dependientes.
En una realización preferida, el Solicitante
emplea secuencias de PNA para la inhibición selectiva de la proteína
N-MYC en células de neuroblastoma humano.
Para demostrar la eficacia de los ácidos
nucléicos peptídicos seleccionados por la parte Solicitante, esta
última ha llevado a cabo pruebas experimentales seleccionando cuatro
líneas celulares de neuroblastoma:
GI-LI-N, IMR-32
donde el gen N-myc está amplificado y
sobreexpresado; y GI-CA-N,
GI-ME-N donde el gen
N-myc no está amplificado y no está expresado.
Sorprendentemente, la parte Solicitante ha
hallado que los ácidos nucléicos peptídicos antisentido
seleccionados por la misma parte Solicitante pueden pasar a través
de la membrana celular sin usar ningún transportador.
Además, la parte Solicitante sorprendentemente
ha hallado que el efecto inhibidor, debido a los PNAs sentido y
antí-geno, en la síntesis de la proteína N-MYC es
altamente selectivo y específico y tiene un efecto
antiproliferante.
Asimismo, la detención del crecimiento de las
células GI-LI-N de neuroblastoma
humano con gen N-myc amplificado, después del uso
de PNAs antinsentido, es seguida directamente por diferenciación
celular o apoptosis (muerte celular programada).
De manera ventajosa, el ácido nucléico peptídico
(PNA) comprende de 12 a 24 bases de nucleótidos. Dicho ácido
nucléico peptídico es complementario al filamento antisentido del
gen N-myc humano.
Los PNAs preferidos según están descritos abajo
y publicados a título ejemplificador a continuación, no deben ser
vistos como una restricción de la presente invención. En efecto,
también se pueden realizar otros tipos de PNA, modificando
adecuadamente su estructura, de manera de mejorar su eficacia y
convertirlos en más específicos y adecuados para varias necesidades
terapéuticas. Por lo tanto, también esas posibles variantes caen
dentro del marco y de los objetivos de la presente invención.
En una primera realización, el ácido nucléico
peptídico es complementario al filamento antisentido del gen
N-myc humano y recibe la denominación de PNA
sentido.
En una segunda realización la parte Solicitante
ha proyectado un ácido nucléico peptídico (PNA) antisentido (bp
135-150:
5'-TCCACCCAGCGCGTCC-3', número de
acceso al banco de genes M13241) que es complementario sólo a una
única secuencia en la región 5'-UTR del gen
N-myc de manera de inhibir un ataque con el
ribosoma.
Para evaluar hasta que punto es específica la
actividad del PNA antisentido, se ha proyectado un PNA mutado que
contiene la sustitución de tres bases
(5'-CCCACTCAGCGCGCCC-3').
El PNA sentido puede ser conjugado con un
portador que puede pasar a través de la membrana nuclear de células
diana, es decir de células tumorales que expresan el gen
N-myc.
Preferentemente, dicho portador es conjugado en
la posición 3' con la secuencia de PNA.
Según una característica preferida de la
invención, dicho portador se compone de adecuadas secuencias
peptídicas que se derivan de apropiadas proteínas.
Dichas proteínas son de varios orígenes; por
ejemplo, pueden derivar de diferentes tipos de virus.
A título puramente ejemplificador y no
limitativo, dichas proteínas preferentemente pueden ser
seleccionadas entre:
- señal de localización nuclear (NLS = Nuclear
Localization Signal), proveniente del virus SV40: el portador se
compone de un secuencia peptídica PKKKRKV;
- Penetratina, proveniente de antennapedia; el
portador se compone de una secuencia peptídica RQIKIWFQNRRM
KWKK;
KWKK;
- Transportana: el portador se compone de una
secuencia peptídica GWTLNSAGYLLGKINLAALAKKIL;
- Penetratina retro-inversa: el
portador se compone de una secuencia peptídica
(D)-KKWKMRRNQFWVKVQR;
- Proteína TAT, proveniente de virus VIH: el
portador se compone de una secuencia peptídica GRKKRRQRRRPPQ;
- Proteína TAT, proveniente del virus VIH: el
portador se compone de una secuencia peptídica YGRKKRRQRRR.
A continuación se indican, a título
ejemplificador, otras secuencias peptídicas que se pueden
seleccionar para emplear preferentemente como portadores:
- MSVLTPLLLGRLTGSARRLPVPRAKIHSL;
- KFFKFFKFFK;
- KKKK.
La configuración de los aminoácidos que
constituyen dichas secuencias peptídicas puede ser L o DL.
Según otra característica preferida de la
invención, el PNA es conjugado con portadores seleccionados entre
péptidos que comprenden aminoácidos con configuración D o L, por lo
cual dichos péptidos se enlazan directamente con el PNA a través de
un enlace covalente estable o a través de un enlace lábil de
bisulfuro, que luego puede ser abierto mediante reducción.
Son muy preferidos los péptidos que comprenden
D-arginina.
Según una tercera característica preferida de la
invención, el PNA es conjugado con portadores que tienen varias
estructuras, por lo cual dichos portadores son enlazados
directamente al PNA a través de un enlace covalente estable o a
través de un enlace lábil de bisulfuro, que luego puede ser abierto
mediante reducción.
Entre esos portadores son muy preferidos los
ácidos retinoicos.
El PNA sentido conjugado con un portador
presenta una actividad de PNA antí-geno. Entre los PNAs antí-genos,
los que se enlazan con el filamento antisentido del gen
N-myc se denominan PNAs antí-geno sentido.
Los PNAs antí-geno sentido han demostrado ser
sumamente efectivos para con las células diana.
La parte Solicitante también ha proyectado una
secuencia de PNA antí-geno sentido y una secuencia PNA antí-geno
antisentido (bp antí-geno sentido: 1650-1655
5'-ATGCCGGGCATGATCT-3'; antí-geno
antisentido 5'-AGAT
CATGCCCGGCAT-3' número de acceso al banco de genes M13241), que son complementarias a una secuencia del exón 2 de gen N-myc. Dichas secuencias han sido conjugadas en 3' con una señal de localización nuclear (NLS) que se deriva del virus SV40, de manera de ayudarla a pasar a través de la membrana nuclear. El portador se compone de una secuencia peptídica PKKKRKV.
CATGCCCGGCAT-3' número de acceso al banco de genes M13241), que son complementarias a una secuencia del exón 2 de gen N-myc. Dichas secuencias han sido conjugadas en 3' con una señal de localización nuclear (NLS) que se deriva del virus SV40, de manera de ayudarla a pasar a través de la membrana nuclear. El portador se compone de una secuencia peptídica PKKKRKV.
En una realización preferida, los PNAs
antí-genos sentido o antí-genos antisentido según la presente
invención se emplean para preparar composiciones farmacéuticas.
A continuación, sólo a título ejemplificador, se
describe un método de síntesis de ácidos nucléicos peptídicos
(PNAs) según la presente invención en escala micromolar 10,
purificación y caracterización:
- 50 mg de resina de poliestireno funcionalizada
con grupos de metilbencidrilamina (MBHA-PS) son
tratados con diclorometano (DCM) por una hora de manera de hinchar
la misma resina. Luego la resina se lava con 5% de
diisopropiletilamina (DIPEA) en dimetilformamida (DFM), DCM,
nuevamente 5% de DIPEA en DFM y N-metilpirrolidona
(NMP). Se prepara por separado una solución que contiene 0,01
milimoles del primer monómero C-terminal de PNA
N-Boc protegido (disponible en el mercado) en 125
mililitros de NMP y una solución que contiene 0,0095 milimoles de
benzotriazoliluronio hexafluorofosfato (HBTU) en 125 microlitros de
NMP, para luego mezclar las dos soluciones. Se agregan 0,02
milimoles de DIPEA y se deja activar el conjunto por un período de
tiempo de 2 minutos, después de lo cual la solución que contiene el
monómero activado se la pone en contacto con la resina. Se deja que
reaccione por 1 hora, después de lo cual se lava la resina varias
veces con NMP. Los sitios donde no hubo reacción se bloquean con
una solución de anhídrido acético/piridina/DMF en una relación de
1:2:2 puesta en contacto con la resina por una hora. La ausencia de
sitios reactivos se controla con un Kaiser test. En caso de Kaiser
test no negativo, se vuelve a repetir el método de bloqueo. Después
de lo cual se lava varias veces la resina con NMP, sucesivamente
con 5% de DIPEA en DMF, luego con DMC. A tal punto, la resina quedó
enlazada con el primer monómero C-terminal en una
relación de 0,2 milimoles/gramo.
El método de alargue de la cadena consiste, para
cada monómero a introducir, en un ciclo que incluye: desprotección
de grupo Boc, preactivación y acoplamiento, de existir bloqueo de
sitios que no reaccionaron (capping). Tales ciclos normalmente se
llevan a cabo por medio de un sintetizador automático (Applied
Biosystem ABI 433A). A continuación están listadas las soluciones
utilizadas para las varias etapas. Desprotección: ácido
trifluoroacético (TFA)/m-cresol 95:5; preactivación
y acoplamiento: 0,05 milimoles de monómero de PNA
N-Boc protegido y 0,048 milimoles de HBTU disueltos
en 500 microlitros de NMP y adicionados con 0,1 milimoles de DIPEA;
capping: anhídrido acético:piridina:NMP 1:25:25. Los PNAs
rodaminados han sido sintetizados usando en el penúltimo ciclo una
molécula espaciadora (ácido
Boc-aminoetoxietoxiacético) en lugar del monómero de
PNA y en el último ciclo rodamina en lugar del monómero de PNA.
Los PNAs sintetizados de este modo han sido
separados de la resina por medio de una solución de ácido
trifluorometanosulfónico
(TFMSA):TFA:m-cresol:tioanisol 2:6:1:1 y
precipitados agregando éter etílico a la solución de la
separación.
De este modo, los PNAs burdos así obtenidos han
sido analizados a través de LC-MS (columna analítica
C18 250x4,6 mm, elución por gradiente entre agua adicionada con
0,2% de ácido fórmico y una solución de agua:acetoni-
trilo 60:40 adicionada con 0,2% de ácido fórmico, caudal 1 ml/min. Detector UV a 260 nm y detector de masa en modalidad ionización positiva, intervalo 150-1500 m/z). La purificación ha sido llevada a cabo usando un sistema que se asemeja al analítico, pero usando una columna semipreparativa (250x10 mm). La identidad del compuesto puro ha sido confirmada siempre mediante espectrometría de masa. Rendimiento típico después de la purificación: 30%. Pureza típica después de la purificación: 90-95%.
trilo 60:40 adicionada con 0,2% de ácido fórmico, caudal 1 ml/min. Detector UV a 260 nm y detector de masa en modalidad ionización positiva, intervalo 150-1500 m/z). La purificación ha sido llevada a cabo usando un sistema que se asemeja al analítico, pero usando una columna semipreparativa (250x10 mm). La identidad del compuesto puro ha sido confirmada siempre mediante espectrometría de masa. Rendimiento típico después de la purificación: 30%. Pureza típica después de la purificación: 90-95%.
Para evaluar la habilidad de los PNAs sentido y
de los PNAs antí-genos para entrar dentro de células de
neuroblastoma humano y para analizar la posterior localización
intracelular, la parte Solicitante ha usado cuatro líneas celulares
GI-LI-N e IMR-32,
GI-CA-N y
GI-ME-N y las ha tratado por un
lapso de tiempo comprendido entre 30 minutos y 24 horas con 20
\muM de PNA antisentido o sentido conjugado con rodamina en 5'.
Luego, los PNAs antí-genos fueron conjugados con NLS en 3'.
La imagen del microscopio fluorescente demuestra
que la fluorescencia intracitoplasmática para el PNA antisentido
5'-UTR (en las líneas celulares
GI-LI-N y
GI-CA-N) y la fluorescencia
intranuclear para PNAs antí-genos (en las líneas celulares
GI-LI-N y
GI-ME-N) pueden ser medidas ya 30
minutos después del tratamiento de las células con PNA. La máxima
intensidad se logra después de 6 horas, después de lo cual el nivel
permanece constante por 24 horas.
Se observaron altos valores intracitoplasmáticos
de PNA antisentido, mientras que para los PNAs antí-genos se
observaron altos valores intranucleares.
Las células no tratadas mostraron simplemente
una fluorescencia intracelular de fondo después de seis horas.
Para evaluar la eficacia y especificidad de los
ácidos nucléicos peptídicos seleccionados por la parte Solicitante,
esta última ha usado las cuatro líneas celulares descritas
arriba.
En las pruebas triples empleando placas con 24
tubitos, se han introducido 1,0 x 10^{5} células dentro de los
primeros tubitos con 0,5 ml de RPMI1640 con el 10% de FBS y 2 mM de
L-butanina.
Las células han sido encubadas por 24 horas de
manera de permitirles adherirse a la base de los tubitos.
Luego, para evaluar la óptima concentración para
la inhibición del crecimiento celular, se ha adicionado ácido
nucléico peptídico a las células
GI-LI-N con concentraciones de 10,
20, 40 y 60 \mum para PNA antisentido 5'-UTR,
mientras que para los PNAs antí-geno sentido y antisentido con
concentraciones de 1, 2, 5, 10 y 20 \muM en las células
GI-LI-N e
IMR-32.
Para evaluar la especificidad y selectividad del
efecto de los ácidos nucléicos peptídicos sobre la proteína
N-MYC, las células
GI-LI-N han sido tratadas con una
variante del ácido nucléico peptídico antisentido
5'-UTR con la incorporación de tres sitios de
mutación, con una concentración de 20 \muM (concentración óptima
seleccionada para tal PNA), mientras que las células
GI-CA-N (sin amplificación alguna
del gen N-myc) han sido tratadas con PNA
antisentido 5'-UTR con una concentración de 20
\muM.
Para evaluar la especificidad de los PNAs
antí-geno sentido y antisentido, se han tratado
GI-ME-N y
GI-CA-N (donde el gen
N-myc no está amplificado y no está expresado) con
PNA antí-geno sentido y antisentido con una concentración de 10
\muM (concentración óptima seleccionada para PNA antí-geno
sentido).
Luego, para evaluar los efectos de los
tratamientos, las células han sido recolectadas y contadas después
de 24, 48 y 72 horas del tratamiento.
El cómputo y la vitalidad de las células han
sido determinados usando el método de exclusión colorimétrico
(tryphan blue dye).
El tratamiento con 20 \muM de PNA antisentido
en células GI-LI-N con expresión de
gen N-myc amplificada, muestra una alta inhibición
del crecimiento celular. El máximo efecto inhibitorio es del 70% y
se obtiene 48 horas después del tratamiento (figura 1).
Por el contrario, las células de neuroblastoma
GI-CA-N con expresión del gen
N-myc amplificado y que no expresan
N-myc, no mostraron ningún efecto inhibitorio en las
pruebas llevadas a cabo bajo las mismas condiciones (figura 1).
Las pruebas de proliferación sobre las células
GI-LI-N usando un PNA antisentido
que contiene una secuencia alterada por la introducción de tres
sitios de mutación, no han mostrado ningún efecto inhibitorio
(figura 1). Ello demuestra la acción selectiva y específica del PNA
antisentido para la secuencia 5'-UTR del trascrito
N-myc.
Se evaluó la producción de N-MYC
(proteína) usando Western Blotting en la línea celular
GI-LI-N después de 24, 48 y 72
horas del tratamiento con 20 \muM de PNA antisentido. Se ha
encontrado una reducción evidente del nivel de proteína después de
24 horas. Dicha reducción disminuye después de 72 horas.
Un análisis de flujo citométrico sobre las
células GI-LI-N 36 horas después del
tratamiento con 20 \muM de PNA antisentido, demuestra que dicho
PNA induce una acumulación celular en G_{0}/G_{1} del 34% al 57%
y disminuye en G_{2} y en la fase S del 13% al 6% y del 53% al
37%, respectivamente.
Además, el número de células en la fase
sub-G_{1} con un contenido de DNA hipodiploico
(número menor de cromosomas que el DNA diploide, es decir 2n)
aumenta del 3 al 22%.
Para evaluar la diferenciación de las células
GI-LI-N hacia las células
neuronales, dicha línea celular ha sido tratada con 20 \muM de
PNA antisentido, y por medio del análisis microscópico se han
detectado cambios morfológicos.
La evaluación microscópica ha sido realizada 36
y 48 horas después del crecimiento de las células
GI-LI-N en presencia o ausencia de
los 20 \muM de PNA antisentido.
Después de 36 horas, las células tratadas tenían
una distribución menos uniforme que las células testigo, y después
de 48 horas tendían a formar pequeños agregados celulares.
No se ha hallado ningún efecto de inhibición de
crecimiento para las células GI-CA-N
mientras que, por el contrario, dichos efectos se han encontrado en
pruebas realizadas sobre células
GI-LI-N.
De manera ventajosa, los PNAs según la presente
invención muestran un alto grado de selectividad para el objetivo
designado en la secuencia 5'-UTR del
N-myc.
Como ulterior confirmación, no se ha observado
ningún efecto de inhibición en la vitalidad de las células, en el
ciclo de las células y en la cantidad de proteínas
N-MYC incluso después del tratamiento con 10 \muM
de PNA antisentido mutado. Esto corrobora la especificidad del
efecto del PNA antisentido.
PNA antí-geno: el tratamiento con 10 \muM de
PNA antí-geno sentido en células
GI-LI-N e IMR-32 con
expresión del gen N-myc amplificado, provoca una
alta inhibición del crecimiento celular.
De hecho, el efecto máximo de inhibición es del
90% en las células GI-LI-N y del 80%
en las células IMR-32 y se logra 48 horas después
del tratamiento (figura 2; C(a) y D(b)).
Por el contrario, las células de neuroblastoma
GI-ME-N y
GI-CA-N con gen
N-myc no amplificado y no expresado, no mostraron
ningún efecto de inhibición en las pruebas realizadas bajo las
mismas condiciones (figura 2; E(c)).
\newpage
Las pruebas de proliferación en las células
GI-LI-N e IMR-32
usando 10 \muM de PNA antí-geno antisentido no han demostrado
ningún efecto de inhibición (figura 2; C(x) y D(y)).
Esto demuestra que la acción del PNA antí-geno sentido es selectiva
y específica para el filamento antisentido del gen
N-myc, y que probablemente la acción de inhibición
de trascripción se despliega a través de la detención de la
polimerasa de RNA, que usa como matriz su propio filamento
antisentido.
La producción del trascrito
N-myc fue evaluada antes y después de 48 horas del
tratamiento con 10 \muM de PNA antí-geno sentido mediante
amplificación en PCR del cDNA obtenido a partir de 250 ng de mRNA de
las células GI-LI-N. Se utilizaron
los siguientes primers: sentido CGACCACAAGGCCCTCAGT (Exón 2, bp
2366); antisentido TGACCACGTCGATTTCTTCCT (Exón 3, bp 5095) (banco
de genes M13241). La PCR (reacción en cadena por la polimerasa) ha
sido llevada a cabo con 30 ciclos de reacción. Los resultados han
demostrado que en las células
GI-LI-N tratadas con PNA antí-geno
sentido, el producto de PCR del trascrito N-myc no
puede ser detectado, mientras que puede ser detectado fácilmente en
células no tratadas.
De manera ventajosa, los PNAs antí-genos según
la presente invención son altamente específicos para
amplificación/sobreexpresión de N-myc.
La presencia de una amplificación/sobreexpresión
del gen N-myc es la característica principal que
distingue las líneas celulares
GI-LI-N e IMR-32 con
respecto a las líneas celulares
GI-ME-N y
GI-CA-N.
Para las células
GI-ME-N y
GI-CA-N no se ha encontrado ningún
efecto de inhibición de crecimiento, mientras que dichos efectos se
han encontrado en pruebas realizadas en células
IMR-32.
De manera ventajosa, los PNAs antí-genos según
la presente invención muestran un alto grado de selectividad para
el objetivo designado en la secuencia del exón 2 de
N-myc.
De hecho, el PNA antí-geno tiene un alto efecto
inhibitorio, puesto que interfiere directamente con la polimerasa
del PNA durante la trascripción en el filamento antisentido,
mientras que el PNA antí-geno antisentido complementario posee un
efecto mucho menor, probablemente debido sólo a la interferencia
estérica con el complejo de las vitaminas de la trascripción.
En otras pruebas sobre PNA antí-geno sentido, la
producción de proteína N-MYC se ha evaluado usando
Western Blotting en la línea celular IMR-32 después
de tres horas de tratamiento con 10 \muM de PNA antí-geno sentido.
Después de tres horas del tratamiento con PNA antí-geno sentido se
ha detectado una reducción del 50% del nivel de proteína.
Un análisis citofluorimétrico en células
IMR-32 realizado 24 y 48 horas después del
tratamiento con PNA antí-geno sentido con una concentración de 10
\muM, indujo una acumulación celular en G_{0}/G_{1} (del 39%
al 53% después de 24 horas; del 31% al 53% después de 48 horas) y
una disminución en G_{2}/M (del 17% al 6% después de 24 horas;
del 25% al 9% después de 48 horas) y en la fase S (del 45 al 41%
después de 24 horas; del 44% al 39% después de 48 horas).
Para evaluar hasta que punto es específica la
actividad del PNA antí-geno sentido, se ha proyectado un PNA mutado
que contiene la sustitución de tres bases
(5'-GTGCCGAGCATGGTCT-3').
No se ha observado ningún efecto inhibitorio en
la vitalidad de las células, en el ciclo de las células y en la
cantidad de proteína N-MYC incluso después del
tratamiento con una concentración de 10 \muM de PNA antí-geno
mutado y bajo las mismas condiciones de prueba utilizadas para el
PNA antí-geno sentido. Esto demuestra la especificidad del efecto
del PNA antí-geno sentido.
El tratamiento con 10 \muM de PNA antí-geno
sentido también se ha llevado a cabo con células HT29 (derivadas de
carcinoma del colon) y con células HeLa (derivadas de carcinoma
cervical) que presentan una expresión del gen
N-myc.
El tratamiento produce una alta inhibición del
crecimiento celular. De hecho, el máximo efecto inhibitorio es del
70% en las células HT29 48 horas después del tratamiento, y del 70%
en las células HeLa 24 horas después del tratamiento.
Las pruebas de proliferación en las células HT29
y HeLa usando 10 \muM de PNA antí-geno sentido mutado no han
demostrado ningún efecto inhibitorio. Esto demuestra que también en
los carcinomas del colon y cervicales que presentan una expresión
N-myc, hay un efecto inhibitorio si se usa PNA
antí-geno sentido, y que tal acción es selectiva y específica para
el filamento antisentido del gen N-myc.
Los PNAs según la presente invención son
interesantes para el desarrollo de drogas a base de PNA para
tratamientos específicos y neuroblastomas que presentan expresión
de la proteína N-MYC.
Tales PNAs también se pueden emplear para otros
tipos de tumores que presentan expresión de la proteína
N-MYC tales como, por ejemplo, retinoblastoma,
meduloblastoma, neuroblastoma, glioblastoma, astrocitoma o tumor de
pequeñas células pulmonares, rabdomiosacroma, leucemia linfoblástica
aguda tipo B.
<110> UNIVERSIDAD DE BOLONIA Y OTROS
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> MÉTODO PARA INHIBICIÓN SELECTIVA DEL
GEN N-myc HUMANO EN TUMORES QUE EXPRESAN
N-myc A TRAVÉS DE ÁCIDOS NUCLÉICOS PEPTÍDICOS (PNA)
ANTISENTIDO Y ANTÍ-GENO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> U216412WO9
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<140> PCT/IB2004/001297
\vskip0.400000\baselineskip
<141>
2004-04-29
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<150> IT MI2003A000860
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
2003-04-29
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\vskip0.400000\baselineskip
<160> 16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn version 3.1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PNA antisentido que es
complementario sólo a una secuencia en la región
5'-UTR del gen N-myc (página 6,
renglones 17-20)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptccacccagc gcgtcc
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PNA mutado, que contiene la
sustitución de tres bases (página 6, renglones
23-25)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcccactcagc gcgccc
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia PNA antí-geno sentido que
es complementaria a una secuencia de exón 2 de gen
N-myc (página 8, renglones
14-19)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipatgccgggca tgatct
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PNA antí-geno antisentido que es
complementaria a una secuencia de exón 2 de gen
N-myc (página 8, renglones
14-19)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipagatcatgcc cggcat
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> "primer" sentido (exón 2, bp
2366) (página 14, renglones 21-22)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgaccacaag gccctcagt
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> "primer" antisentido (exón 2,
bp 5096) (página 14, renglones 22-23)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgaccacgtc gatttcttcc t
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de PNA mutado que contiene
la sustitución de tres bases (página 15, renglones
29-31)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgtgccgagca tggtct
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> virus SV40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> proteína portadora de NLS (página 7,
renglones 5-6)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Pro Lys Lys Lys Arg Lys Val}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> antennapedia
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> proteína portadora de penetratina
(página 7, renglones 7-8)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Arg Gln Ile Lys Ile Trp Phe Gln Asn Arg Arg
Met Lys Trp}
\sac{Lys Lys}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Desconocido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> proteína portadora de transportana
(página 7, renglones 9-10)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Gly Trp Thr Leu Asn Ser Ala Gly Tyr Leu Leu
Gly Lys Ile}
\sac{Asn Leu Ala Ala Leu Ala Lys Lys Ile
Leu}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Desconocido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia (D) proteína portadora de
penetratina retro-inversa (página 7, renglones
11-12)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Lys Lys Trp Lys Met Arg Arg Asn Gln Phe Trp
Val Lys Val}
\sac{Gln Arg}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> virus VIH
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> proteína portadora de TAT (página 7,
renglones 13-14)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Gly Arg Lys Lys Arg Arg Gln Arg Arg Arg Pro
Pro Gln}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus VIH
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> proteína portadora de TAT (página 7,
renglones 15-16)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Tyr Gly Arg Lys Lys Arg Arg Gln Arg Arg
Arg}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Desconocido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia peptídica portadora
(página 7, renglones 17-20)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Met Ser Val Leu Thr Pro Leu Leu Leu Arg Gly
Leu Thr Gly}
\sac{Ser Ala Arg Arg Leu Pro Val Pro Arg Ala
Lys Ile His Ser}
\sac{Leu}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Desconocido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia peptídica portadora
(página 7, renglones 17-19, 21)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Lys Phe Phe Lys Phe Phe Lys Phe Phe
Lys}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Desconocido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia peptídica portadora
(soporte 7, renglones 17-19, 22)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Lys Lys Lys Lys}
\vskip1.000000\baselineskip
Claims (13)
1. Ácido nucléico peptídico (PNA) que comprende
de 12 a 24 bases nucleótidas, dicho ácido nucléico peptídico siendo
complementario al filamento antisentido del gen
N-myc humano.
2. Ácido nucléico peptídico según la
reivindicación 1 conjugado con un portador que puede pasar a través
de la membrana nuclear de células diana que presentan una expresión
del gen N-myc.
3. Ácido nucléico peptídico conjugado según la
reivindicación 2, donde dicho portador está conjugado en la
posición 3' con la secuencia del ácido nucléico peptídico.
4. Ácido nucléico peptídico según una cualquiera
de las reivindicaciones 2 y 3, donde dicho portador es elegido del
grupo de secuencias peptídicas que se compone de:
- i)
- ID SEC N. 8 (PKKKRKV);
- ii)
- ID SEC N. 9 (RQIKIWFQNRRMKWKK);
- iii)
- ID SEC N. 10 (GWTLNSAGYZLGKINZAALAKKIL);
- iv)
- ID SEC N. 11 ((D)-KKWKMRRNQFWVKVQR);
- v)
- ID SEC N. 12 (GRKKRRQRRRPPQ);
- vi)
- ID SEC N. 13 (YGRKKRRQRRR);
- vii)
- ID SEC N. 14 (MSVLTPLLLRGLTGSARRLPVPRAKIHSL);
- viii)
- ID SEC N. 15 (KFFKFFKFFK); y
- ix)
- ID SEC N. 16 (KKKK).
5. Ácido nucléico peptídico según la
reivindicación 4, donde el portador es ID SEC N. 8.
6. Ácido nucléico peptídico según una cualquiera
de las precedentes reivindicaciones de 1 a 5, en el cual el PNA
antí-geno sentido es ID SEC N. 3
(5'-ATGCCGGGCATGATCT-3').
7. Ácido nucléico peptídico (PNA) que consta de
12 a 24 bases nucleótidas que comprende la ID SEC N. 1
(5'-TCCACCCAGCGCGTCC-3').
8. Método para sintetizar ácidos nucléicos
peptídicos (PNAs) según las reivindicaciones de 1 a 7, que comprende
las siguientes etapas:
- adición de un primer monómero PNA
C-terminal protegido N-Boc a una
resina;
- prolongación de la cadena mediante
desprotección, preactivación y acoplamiento del grupo Boc;
- separación de los PNAs así sintetizados de la
resina mediante ácido trifluorometanosulfónico y precipitación de
la solución con adición de éter etílico.
9. Composición farmacéutica que comprende un
ácido nucléico peptídico (PNA) según al menos una de las
reivindicaciones de 1 a 7.
10. Empleo de un ácido nucléico peptídico (PNA)
según las reivindicaciones de 1 a 7, para preparar una composición
farmacéutica para tratar tumores.
11. Empleo según la reivindicación 10, donde el
tumor está asociado a la expresión de la proteína
N-MYC/
n-myc.
n-myc.
12. Empleo de un ácido nucléico peptídico (PNA)
según la reivindicaciones de 1 a 6 para preparar una composición
farmacéutica para tratar tumores tales como por ejemplo
neuroblastoma, retinoblastoma, meduloblastoma, glioblastoma,
astrocitoma o tumor de pequeñas células pulmonares, rabdomiosarcoma,
leucemias agudas linfoblásticas del tipo B.
\newpage
13. Empleo de un ácido nucléico peptídico (PNA)
según la reivindicación 7, para preparar una composición
farmacéutica para tratar tumores tales como por ejemplo
neuroblastoma, retinoblatoma, meduloblastoma, glioblastoma,
astrocitoma o tumor de pequeñas células pulmonares, leucemias agudas
linfoblásticas del tipo B.
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