ES2277815T3 - Proteina que se une a apoptina. - Google Patents

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Abstract

REIVINDICACIONES 1. Ácido nucleico que codifica apoptina y AAP-1, en el que dicha AAP-1 comprende los aminoácidos 23 a 250 de la figura 3 o SEQ ID NO:10 o un fragmento funcional del mismo que es capaz de inducir apoptosis.

Description

Proteína que se une a apoptina.
La presente invención se refiere al sector de la apoptosis. La apoptosis es un proceso fisiológico activo y programado para eliminar células superfluas, alteradas o malignas (Earnshaw, 1995, Duke y otros, 1996). La apoptosis se caracteriza por la retracción de las células, segmentación del núcleo, condensación y fraccionamiento del DNA en fragmentos con tamaños de dominio, seguido la mayor parte de células por degradación internucleosomal. Las células apoptóticas se fragmentan en cuerpos apoptóticos encerrados por una membrana. Finalmente, las células adyacentes y/o macrófagos fagocitan rápidamente estas células que mueren (Wyllie y otros, 1980, White, 1996). Las células cultivadas bajo condiciones de cultivo de tejidos y células procedentes de material de tejidos pueden ser analizadas en cuanto a estado apoptótico con agentes de tinción de DNA, por ejemplo DAPI, que efectúa tinción de DNA normal, de manera fuerte y regular, mientras que el DNA apoptótipo es objeto de tinción débil y/o irregular (Noteborn y otros, 1994, Telford y otros, 1992).
El proceso apoptótico puede ser iniciado por una serie de estímulos reguladores (Wyllie, 1995, White 1996, Levine, 1997). Los cambios en la tasa de supervivencia de células juega un importante papel en la patogénesis humana de enfermedades, por ejemplo, desarrollo de cáncer y enfermedades autoinmunes, en la que se observa una proliferación incrementada o disminución de muerte de las células (Kerr y otros, 1994, Paulovich, 1997). Se ha demostrado que una serie de compuestos quimioterapéuticos y de radiación inducen apoptosis en células tumorales, en muchos casos, con intermedio de la proteína de tipo salvaje p53 (Thompson, 1995, Bellamy y otros, 1995, Steller, 1995, McDonell y otros, 1995).
No obstante, muchos tumores adquieren una mutación en p53 durante su desarrollo, que se correlaciona frecuentemente con una respuesta desfavorable a la terapia del cáncer. Algunos genes transformantes de virus de DNA tumorigénicos pueden inactivar p53 por unión directa al mismo (Teodoro, 1997). Un ejemplo de este agente es el antígeno T grande del virus de DNA tumoral SV40. Para varios tumores (leucémicos), un elevado nivel de expresión del proto-oncógeno Bcl-2 o Bcr-abl se asocia con una fuerte resistencia a varios agentes quimioterapéuticos inductores de apoptosis (Hockenberry 1994, Sachs y Lotem, 1997).
Para estos tumores en los que falta p53 funcional (lo que representa más de la mitad de los tumores) se están desarrollando terapias alternativas antitumorales basándose en la inducción de apoptosis independiente de p53 (Thompson 1995, Paulovich y otros, 1997). Se tienen que buscar los factores involucrados en la inducción de apoptosis, que no necesitan p53 y/o no pueden ser bloqueados por actividades antiapoptóticas, tales como Bcl-2 o similares a Bcr-abl. Esos factores pueden ser parte de una ruta de apoptosis diferente o podrían encontrarse (mucho) más abajo de los compuestos inhibidores de apoptosis.
La apoptina es una proteína pequeña derivada del virus de anemia de pollo (CAV; Noteborn y De Boer, 1995, Noteborn y otros, 1991, Noteborn y otros, 1994; 1998a), que puede inducir apoptosis en líneas celulares malignas humanas y transformadas, pero no en cultivos de células humanas no transformadas. In vitro, la apoptina deja de inducir muerte celular programada en células normales linfoides, dérmicas, epidérmicas, endoteliales y de músculos lisos. No obstante, cuando las células normales son transformadas pasan a ser susceptibles a apoptosis por la acción de la apoptina. La expresión a largo plazo de la apoptina en fibroblastos humanos normales ha revelado que la apoptina no tiene actividad tóxica o transformante en estas células (Danen-van Oorschot, 1997 y Noteborn,
1996).
En células normales, se ha descubierto que la apoptina se encontraba predominantemente en el citoplasma, mientras que, en células transformadas o malignas, es decir, caracterizadas por hiperplasia, metaplasia, displasia o aplasia, se localizó en el núcleo, sugiriendo que la localización de la apoptina está relacionada con su actividad (Danen-van Oorschot y otros, 1997). La apoptosis inducida por apoptina tiene lugar en ausencia de p53 funcional (Zhuang y otros, 1995a), y no puede ser bloqueada por Bcl-2, Bcr-abl (Zhuang y otros, 1995), o las proteínas que se asocian a Bcl-2 BAG-1 (Danen-Van Oorschot, 1997a, Noteborn, 1996).
Por lo tanto, la apoptina es un compuesto terapéutico para la destrucción selectiva de células tumorales, u otras células de hiperplasia, metaplasia, aplasia o displasia, especialmente para las células tumorales que han resultados resistentes a la inducción quimioterapéutica de la apoptosis, debido a la falta de p53 funcional y (sobre)expresión de Bcl-2 y otros agentes inhibidores de apoptosis (Noteborn y Pietersen, 1998). Parece que, incluso las células transformadas en grado mínimo, premalignas, son sensibles al efecto inductor de muerte de la apoptina. Además, Noteborn y Zhang (1998) han demostrado que la apoptosis inducida por apoptina puede ser utilizada como diagnóstico de células con tendencia cancerosa y para el tratamiento de células con tendencia cancerosa.
El hecho de que la apoptina no induce apoptosis en células humanas normales, por lo menos no in vitro, demuestra que el efecto tóxico de un tratamiento de apoptina in vivo será muy bajo. Noteborn y Pietersen (1998) y Pietersen y otros (1998) han aportado pruebas de que la apoptina expresada por adenovirus no tiene un efecto tóxico agudo in vivo. Además, en ratones se ha demostrado que la apoptina tiene una fuerte actividad antitumoral.
No obstante, para ampliar adicionalmente la cantidad de compuestos terapéuticos anticáncer o antienfermedad inmune que se disponen en este sector, son deseables compuestos terapéuticos adicionales diseñados para funcionar solos, secuencialmente, o conjuntamente con la apoptina, especialmente en los casos en los que la p53 es (parcialmente) no funcional.
La presente invención da a conocer nuevas posibilidades terapéuticas, por ejemplo, nuevas terapias de combinación o nuevos compuestos terapéuticos que pueden funcionar solos, secuencialmente, o conjuntamente con la apoptina, especialmente en los casos en los que la p53 es (parcialmente) no funcional.
En una primera realización, la invención da a conocer un ácido nucleico aislado o recombinante que codifica AAP-1 y apoptina, en el que dicho AAP-1 comprende los aminoácidos 23 a 250 de la figura 3 o SEQ ID NO:10, o un fragmento funcional de los mismos, cuyo fragmento es capaz de inducir apoptosis. La substancia proteinácea involucrada se define como substancia que comprende un péptido, polipéptido o proteína, que ha sido modificada opcionalmente, por ejemplo, por glicosilación, miristilación, fosforilación, adición de lípidos, por dimerización o multimerización homóloga o heteróloga, o cualesquiera otras modificaciones (postraducción) conocidas en el sector.
La asociación de apoptina de esta descripción se define como perteneciente a la cascada de substancias específicamente involucradas en la cascada de eventos que se encuentran en la ruta de la apoptosis inducibles por apoptina, preferentemente las substancias que están específicamente involucradas en la ruta de apoptosis independiente de p53.
En una realización precedente, la invención da a conocer un ácido nucleico aislado o recombinante, de acuerdo con la invención, en la que dicho ácido nucleico que codifica AAP1 comprende en la figura 2 (SEQ ID NO:9) los ácidos nucleicos 142 a 829, o un fragmento funcional de los mismos, cuyo fragmento es capaz de inducir apoptosis. Más preferentemente, la substancia proteinácea asociada a la apoptina, codificada, co-localiza con otras substancias inductoras de apoptosis, por ejemplo, apoptina, cuando las dos substancias inductoras de apoptosis se encuentran presentes en las misma célula. En células normales no transformadas, las dos proteínas inductoras de apoptosis se co-localizan en el citoplasma, mientras que, en células transformadas o malignas, las dos proteínas inductoras de apoptosis se co-localizan en el núcleo. En otra realización, la substancia de asociación a apoptina es capaz de unión con el factor de transcripción de ratón YY1, que se ha indicado anteriormente que se une al homólogo AAP-1 de ratón RYBP (García y otros, 1999). En una realización preferente, el ácido nucleico aislado o recombinante o equivalente funcional o fragmento del mismo, que codifica una substancia proteinácea de asociación a apoptina, capaz de proporcionar apoptosis, se deriva de una biblioteca o genoteca de cDNA, preferentemente una genoteca de cDNA de vertebrados, tal como se puede derivar de aves, pero más preferentemente una genoteca de cDNA de mamíferos, preferentemente en la que dicha genoteca de cDNA comprende cDNA humano.
En otra realización, la invención da a conocer un ácido nucleico aislado o recombinante o fragmento funcional del mismo que codifica una substancia proteinácea de asociación a apoptina, capaz de proporcionar apoptosis tal como se muestra en la figura 1 ó 2, codificando en particular una nueva proteína capaz de proporcionar apoptosis o un fragmento funcional de la misma, llamado proteína 1 de asociación a apoptina, que se abreviará en esta descripción AAP-1. Desde luego, un ácido nucleico aislado o recombinante o fragmento funcional del mismo, que codifica una substancia proteinácea de asociación a apoptina adicional, capaz de asociación con la proteína AAP-1, son objeto también de la invención, así como métodos y medios para conseguir dicha proteína adicional situada en la cascada de apoptina que se deduce entre la descripción detallada que se facilita.
Además, la presente invención proporciona un vector que comprende un ácido nucleico de acuerdo con la invención. Se indican ejemplos de dicho vector en la descripción detallada siguiente, tal como el vector pMT2SM-AAP-1-a o b, el vector pMT2SM que expresa cDNA marcados Myc AAP-1-a o APP-1-b, un plásmido que expresa un fragmento de proteína de asociación a apoptina, vectores de (sobre)expresión de E. coli, tales como pMAL y pET22b, que comprenden un ácido nucleico de acuerdo con la invención y otros. Estos y otros vectores son útiles, por ejemplo, en hallar substancias proteináceas adicionales de asociación a apoptina de la cascada, que se ha definido anteriormente, o para la (sobre)expresión de una proteína codificada por un ácido nucleico de acuerdo con la invención.
En otra realización adicional, la invención da a conocer un vector que comprende un ácido nucleico de acuerdo con la invención, comprendiendo dicho vector un vehículo de suministro de un gen, haciendo la invención muy útil en terapia de genes. Al equipar un vehículo de suministro de genes con un ácido nucleico según la invención, y al direccionar dicho vehículo a un célula o células que han sido extraproliferantes y/o que han mostrado tasas de muerte disminuidas, dicho vehículo de suministro de genes proporciona a dicha célula o células los medios necesarios para la apoptosis, proporcionando amplias posibilidades terapéuticas.
Además, la presente invención da a conocer una célula huésped que comprende un ácido nucleico o un vector de acuerdo con la invención. Entre los ejemplos se comprenden células bacterianas o de levaduras transformadas o transfectadas, tal como se describe en la presente descripción detallada. Es preferente una célula huésped de acuerdo con la invención, que es una célula eucariótica transformada tal como una célula de levadura o una célula de vertebrado, tal como una célula de mamífero o célula Cos transformada o transfectada con un ácido nucleico o un vector de acuerdo con la invención. Estas células son capaces, en general, de expresar o producir una substancia proteinácea capaz de proporcionar apoptosis con capacidad de asociación con apoptina.
La invención proporciona además un método (reivindicación 7).
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La invención describe además una substancia proteinácea de asociación a apoptina aislada o recombinante, capaz de proporcionar apoptosis. Tal como se ha demostrado, por ejemplo, en la figura 4, la expresión de dicha substancia proteinácea de asociación a apoptina en células, tales como células tumorales, u otras células extraproliferantes, induce el proceso apoptótico. Puede proceder de este modo sola, o en presencia de otras substancias inductoras de apoptosis, tales como apoptina, y especialmente independientes de p53, demostrando que también en los casos en los que la proteína p53 (funcional) se encuentra ausente, la apoptosis puede ser inducida por una substancia de acuerdo con la invención. Cuando la substancia proteinácea asociada con apoptina, capaz de proporcionar apoptosis es utilizada junto con otra substancia inductora de apoptosis, por ejemplo, apoptina, las dos substancias proteináceas se co-localizan en el citoplasma de células normales y no tienen como resultado apoptosis. No obstante, en células transformadas o malignas las dos proteínas inductoras de apoptosis se co-localizan en el núcleo e inducen apoptosis. La invención describe también una substancia proteinácea de acuerdo con la invención, que se une al factor de transcripción YY1, que se ha mostrado anteriormente que se une al homólogo RYBP de ratón AAP1. En particular, la invención describe una substancia proteinácea de acuerdo con la invención, codificada por un ácido nucleico de acuerdo con la invención, por ejemplo, comprendiendo como mínimo una parte de una secuencia de aminoácido tal como se muestra en la figura 3, o un equivalente funcional o fragmento funcional del mismo, capaz de proporcionar apoptosis solo o en combinación con otras substancias inductoras de apoptosis tales como apoptina. La invención proporciona además un compuesto de proteína (reivindicación 3).
La invención da a conocer además un método para la inducción de apoptosis en células in vitro, en las que se observa una proliferación de células incrementada o disminución de muerte de células, comprendiendo el proporcionar a dichas células una secuencia de ácido nucleico que codifica AAP-1, en la que dicho AAP-1 comprende los aminoácidos 23 a 250 de la figura 3 o SEQ ID NO:10, o un fragmento funcional de los mismos, cuyo fragmento es capaz de inducir apoptosis o un método para inducir apoptosis in vitro en células en las que se ha observado un incremento de proliferación celular o disminución de muerte celular, comprendiendo el proporcionar dichas células AAP-1, de manera que dicho AAP-1 comprende los aminoácidos 23 a 250 de la figura 3 o SEQ ID NO:10, o un fragmento funcional del mismo, cuyo fragmento es capaz de inducir apoptosis.
La invención prevé también un método que comprende adicionalmente un método según la reivindicación 8 ó 9, comprendiendo además la proteína apoptina o un ácido nucleico que codifica apoptina.
La presente invención da a conocer además un método para la inducción de apoptosis in vitro, en el que se facilita a dichas células un ácido nucleico de acuerdo con la invención o un compuesto de proteína de acuerdo con la invención.
La invención da a conocer también un método para la inducción de apoptosis in vitro, en el que un método según la reivindicación 8 ó 10, en el que dicho ácido nucleico que codifica AAP-1 comprende en la figura 2 (SEQ ID NO:9) los ácidos nucleicos 142 a 829, o un fragmento funcional de los mismos, cuyo fragmento codifica dicha AAP-1 y cuyo fragmento es capaz de inducir apoptosis.
La invención describe también la producción de un anticuerpo aislado o sintético que específicamente reconoce una sustancia proteinácea o equivalente funcional o fragmento funcional de la misma, de acuerdo con la invención. Este anticuerpo se puede obtener, por ejemplo, inmunizando un animal experimental con una sustancia proteinácea de asociación a apoptina o un fragmento inmunogénico o equivalente del mismo, y recogiendo anticuerpos policlonales de dicho animal inmunizado (tal como se muestra en la descripción detallada), o que se pueda obtener por otros métodos conocidos en la técnica, tales como por producción de anticuerpos monoclonales o anticuerpos (cadena única) o proteínas de unión expresadas a partir de ácido nucleico recombinante derivado de una biblioteca de ácido nucleico, por ejemplo, obtenible mediante técnicas de exhibición de fago.
Con un anticuerpo de este tipo, la invención describe también una sustancia proteinácea específicamente reconocible por este anticuerpo de acuerdo con la invención, obtenible, por ejemplo, a través de inmunoprecipitación, transferencia Western u otras técnicas inmunológicas conocidas en el sector.
Además, la invención da a conocer la utilización de un ácido nucleico, vector, célula huésped o sustancia proteinácea, de acuerdo con la invención, para la inducción de apoptosis, tal como se muestra, por ejemplo, en la figura 4. En particular, esta utilización es facilitada de manera que dicha apoptosis es independiente de p-53. En particular, esta utilización es facilitada asimismo comprendiendo además la utilización de una apoptina que codifica ácido nucleico o un equivalente funcional o fragmento de la misma, o utilización de apoptina o de un equivalente funcional o fragmento de la misma. Tal como se puede apreciar en la figura 4, combinando estas sustancias inductoras de apoptina se incrementa el porcentaje de apoptosis de las células tumorales tratadas.
Esta utilización conseguida por la invención es particularmente útil desde un punto de vista terapéutico. La invención proporciona un compuesto farmacéutico que comprende un ácido nucleico, un vector, una célula huésped o una sustancia proteinácea de acuerdo con la invención. Además, este compuesto farmacéutico de acuerdo con la invención puede comprender además una apoptina que codifica ácido nucleico o un equivalente funcional o fragmento del mismo, o apoptina o un equivalente funcional o fragmento de la misma.
Este compuesto farmacéutico es facilitado en particular para la inducción de apoptosis, por ejemplo, de manera que dicha apoptosis es independiente de p53, para el tratamiento de una enfermedad en la que se ha observado proliferación incrementada de células o muerte reducida de células, tal como es, en general, el caso en el que dicha enfermedad incluye cáncer o una enfermedad auto-inmune. La presente invención da a conocer un método para el tratamiento de un individuo portador de la enfermedad en la que se ha observado incremento de proliferación celular o disminución de muerte celular, comprendiendo el tratamiento de dicho individuo con un compuesto farmacéutico según la invención. En particular, estos compuestos comprenden un factor de una ruta de apoptosis, que es específico para células transformadas. Por lo tanto, estos compuestos son esenciales para nuevos tratamientos, pero también para diagnóstico de enfermedades relacionadas con aberraciones en el proceso apoptótico, tales como cáncer y enfermedades auto-inmunes.
En el campo del diagnóstico, la invención describe un método para detectar la presencia de células de cáncer o células que son propensas a cáncer en una muestra de células, que comprende el transfectado de células en dicha muestra con un ácido nucleico de acuerdo con la invención o un vector según la invención, cultivando dichas células y determinando el porcentaje de apoptosis de células en dicha muestra. Por ejemplo, se puede llegar a la conclusión de que la localización celular de AAP-1 es diferente en células tumorigénicas/transformadas en comparación con células normales no transformadas. Además, la acumulación de AAP-1 en el núcleo se correlaciona con la inducción de apoptosis, mientras que la localización citoplásmica se correlaciona con viabilidad de las células y capacidad proliferativa normal. Por lo tanto, la presente invención describe un método para detectar la presencia de células de cáncer o células que son propensas a cáncer en una muestra de células, que comprende transfectar células en dicha muestra con un ácido nucleico o un vector de acuerdo con la invención, y determinar la localización intracelular de una sustancia proteinácea derivada de dicho ácido nucleico o vector en células de dicha muestra. En particular, la invención describe un método en el que la presencia de dicha sustancia proteinácea en dichas células es detectada por inmunotinción de dichas células con un anticuerpo, tal como en un ensayo de inmunofluorescencia u otro inmunoensayo conocido en la técnica. Preferentemente, dicho anticuerpo comprende un anticuerpo de acuerdo con la invención.
Asimismo, la invención describe un método para identificar un agente putativo inductor de cáncer, tal como genes transformantes o fragmentos funcionales del mismo, que comprenden el someter una muestra de células a dicho agente, por ejemplo, por transfectado o meramente facilitando el agente al medio que rodea las células, y detectando la presencia de células de cáncer o células propensas a cáncer en un muestra de células con un método de acuerdo con la invención.
De manera adicional, la invención describe un método para detectar la tendencia a cáncer de una muestra de células, y para detectar de esta manera la tendencia a padecer cáncer de la persona de la cual dichas células han sido extraídas, comprendiendo el someter dichas células a un agente inductor de cáncer, tal como luz UV, y la detección de presencia de células cancerosas o células con tendencia a cáncer en la muestra de células con un método de acuerdo con la invención.
La invención se explicará de forma más detallada en la descripción siguiente, que no es limitativa de la invención.
Descripción detallada
Los inventores han utilizado el sistema levadura-2 híbrido ("yeast-2-hybrid") (Durfee y otros, 1993) para identificar compuestos celulares de asociación con apoptina, que son esenciales en la inducción de apoptosis. El sistema utilizado es una estrategia in vivo para identificar proteínas humanas capaces de asociarse físicamente con la apoptina. Se ha utilizado para rastrear genotecas de cDNA para clones que codifican proteínas capaces de unión a la proteína de interés (Fields y Song, 1989, Yang y otros, 1992). La invención da a conocer, por ejemplo, una nueva proteína de asociación con apoptina, que se designa proteína 1 de asociación con apoptina, abreviada AAP-1. La invención da a conocer también un método para inducir apoptosis por interferencia con la función de esta proteína nueva AAP-1 o equivalentes funcionales o fragmentos de la misma y/o la inducción de apoptosis por medio de (sobre)expresión de AAP-1 o equivalentes correspondientes de genes o equivalentes funcionales o fragmentos de los mismos.
La invención da a conocer también una terapia antitumoral basada en la interferencia con la función de proteínas similares a AAP-1 y/o su (sobre)expresión. Las proteínas similares a AAP-1 no se encuentran normalmente presentes de forma muy abundante en líneas de células inmortalizadas. Por lo tanto, un nivel aberrantemente alto de proteínas similares a AAP-1 resultará en la inducción del proceso opuesto de transformación celular, es decir, apoptosis. La invención proporciona además el mediador de apoptosis inducido por apoptina, que es específica de tumor. La invención proporciona una terapia para cáncer, enfermedades autoinmunes o enfermedades relacionadas que se basan en proteínas similares a AAP-1 solas o en combinación con apoptina y/o compuestos similares a apoptina.
Construcción de pGBT9-VP3
Para la construcción del plásmido cebo, que posibilita la identificación de proteínas de asociación con la poptina por medio de un sistema levadura-2-híbrido, se trató el plásmido pET-16b-VP3 (Noteborn, resultados no publicados) con NdeI y BamHI. El fragmento NdeI-BamHI DNA de 0,4 kb fue aislado de agarosa con bajo punto de fusión. El plásmido pGBT9 (Clontech Laboratories, Inc, Palo Alto, USA) fue tratado con encimas de restricción EcoRI y BamHI. El fragmento de DNA de unos 5,4 kb fue aislado y ligado a un enlazador EcoRI-NdeI y el fragmento de DNA de 0,4 kb conteniendo las secuencias codificadoras de apoptina, empezando por su propio codón de iniciación ATG. El constructo final conteniendo un gen de fusión de la secuencia de dominio de unión con GAL4 y apoptina bajo la regulación del promotor de levadura ADH fue designado pGBT-VP3 y se demostró que era correcto por análisis de encima de restricción y secuenciado de DNA de acuerdo con el método Sanger (1977).
Todas las etapas de clonado fueron llevadas a cabo esencialmente tal como se describe por Maniatis y otros (1992). El plásmido pGBT-VP3 fue purificado por centrifugación en un gradiente de CsCl y cromatografía de columna en Sephacril S500 (Pharmacia).
Genoteca de cDNA marcada por dominios de activación de GAL-4
El vector de expresión pACT, conteniendo los cDNAs de las células B humanas transformadas por virus de Epstein-Barr, fusionado al dominio de activación transcripcional GAL4, fue utilizado para detectar proteínas de asociación a apoptina. La genoteca de cDNA pACT se deriva de la genoteca de cDNA lambda ACT, tal como se describe por Durfee y otros, 1993.
Cepas bacterianas y de levadura
La cepa de E. coli JM109 era el recipiente de transformación para el plásmido pGBT9 y pGBT-VP3. La cepa bacteriana electromax/DH10B fue utilizada para la transformación necesaria para la recuperación de los pACT-cDNA de asociación a apoptina, y se obtuvo de la firma GIBCO-BRL, USA.
La cepa de levadura Y190 fue utilizada para rastreo de la genoteca de cDNA, así como todas las demás transformaciones, que forman parte del sistema utilizado de levadura-dos-híbrido.
Medios
Para selecciones de medicamentos se suplementaron placas Luria Broth (LB) para E. coli con ampicilina (50 microgramos por ml). Se prepararon medios de levadura YPD y SC tal como se describe por Rose y otros (1990).
Transformación de cepa competente de levadura Y190 con plásmidos pGBT-VP3 y pACT-cDNA y rastreo de actividad de beta-galactosidasa.
La cepa de levadura Y190 se hizo competente y transformada de acuerdo con los métodos descritos por Klebe y otros (1983). Las células de levadura fueron transformadas, en primer lugar con pGBT-VP3 y a continuación transformadas con pACT-cDNA, y estas células de levadura transformadas fueron cultivadas en placas carentes de histidina, a las que faltaba también leucina y triptofán.
Se colocaron sobre colonias de levadura filtros Hybond-N, que fueron positivos a histidina y se dejaron humectar por completo. Los filtros fueron sacados y sumergidos en nitrógeno líquido para permeabilizar las células de levadura. Los filtros fueron descongelados y colocados con el lado de la colonia hacia arriba sobre papel Whattman 3MM en un platillo petri con tampón Z (Por litro: 16,1 gr Na_{2}HPO_{4}.7H_{2}O, 5,5 gr NaH_{2}HPO_{4}.H_{2}O, 0,75 gr KCl y 0,246 gr MgSO_{4}.7H_{2}O, pH 7,0) conteniendo 0,27% de beta-mercapto-etanol y 1 mg/ml de X-gal. Los filtros fueron incubados durante un mínimo de 15 minutos o durante la noche.
Recuperación de los plásmidos a partir de la levadura
El DNA total a partir de células de levadura, que eran positivas a histidina y beta-galactosidasa, se preparó utilizando un método de lisis glusulasa-alcalina tal como se describe por Hoffman y Winston (1987), y se utilizó para transformar bacterias Electromax/DH10B con intermedio de electroporación utilizando un Bio-Rad GenePulser según las especificaciones del fabricante.
Los transformantes fueron aplicados en forma de capa sobre medios LB conteniendo el agente antibiótico de ampicilina.
Aislamiento de clones pACT de asociación con apoptina
Por medio de ensayo de colonia-filtro, las colonias fueron sometidas a lisis e hibridadas a un oligómero 17-mer con marcado radioactivo, que es específico para pACT (ver también sección análisis de Secuencia). El DNA plásmido fue aislado de los clones pACT, y por medio de digestión XhoI analizado en cuanto a presencia de un inserto de cDNA.
Análisis de secuencia
Los subclones conteniendo las secuencias que codifican proteínas de asociación de apoptina fueron secuenciados utilizando dideoxi NTP según el método de Sanger, que fue llevado a cabo por Eurogentec, Seraing, Bélgica. El cebador de secuenciado utilizado era un 17-mer específico de pACT, comprendiendo la secuencia de DNA 5'-TACCACTACAATGGATG-3'.
Las secuencias de los cDNA de asociación apoptina fueron comparadas con secuencias de genes conocidas a partir de EMBL/Genbank.
Construcción de pMAL-AAP1 y pET22b-AAP1
Para la construcción de los plásmidos de (sobre)expresión de proteína, que posibilitan la producción y aislamiento de proteína asociada a apoptina, se utilizaron los plásmidos pMALTB y pET22b. El plásmido pMALTB es un derivado de pMAL-C2 (New England Biolabs) en el que el factor del lugar Xa ha sido sustituido por un lugar de Trombina. El plásmido pMALTB fue tratado con BamHI y SalI y el fragmento de \pm 7,0 kb DNA fue aislado de un gel de agarosa/TBE (kit de extracción de gel QIAGEN). La secuencia AAP1 que codifica el marco completo de lectura abierta fue obtenida por reacción PCR sobre pACT-AAP-1b con el cebador:
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el fragmento de \pm 0,7 kb PCR fue digerido con BamHI y SalI y aislado de un gel de agarosa/TBE (kit de extracción de gel QIAGEN). El constructo final conteniendo una fusión entre el gen MBP y el gen AAP1 bajo la regulación del promotor tac inducible IPTG fue designado pMAL-AAP1.
El plásmido pET22b (Novagen) fue tratado con NdeI y NotI y el fragmento \pm 5,5 kb DNA fue aislado de un gel de agarosa/TBE (kit de extracción de gel QIAGEN). La secuencia AAP1 que codifica el marco de lectura abierta fue obtenido por una reacción PCR sobre pACT-AAP-1b con el cebador directo:
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el producto PCR fue tratado con NdeI y NotI y el fragmento de \pm 0,7 kb fue aislado a partir de un gel de agarosa/TBE (kit de extracción de gel QIAGEN). El constructo final conteniendo una fusión entre el gen AAP1 y la cola (His)6 bajo la regulación del promotor T7lac inducible por IPTG fue designado pET22b-AAP1.
Se comprobó que ambos constructos eran correctos por análisis de enzima de restricción y secuenciado de DNA de acuerdo con el método Sanger (1977).
Todas las etapas de clonado fueron llevadas a cabo esencialmente tal como se describe por Maniatis y otros (1992).
Cepas bacterianas para (sobre)expresión de MBP-AAP1 y AAP1-(His)6
Para la producción de proteínas con el plásmido pMAL-AAP1 se utilizó la cepa E. coli B834(\lambdaDE3) y para el plásmido pET22b-AAP1 se utilizó la cepa E. coli BL21(DE3). Ambas cepas fueron obtenidas de Novagen.
Resultados y discusión
La apoptina induce específicamente apoptosis en células transformadas, tales como líneas celulares derivadas de tumores humanos. Para identificar los compuestos esenciales en esta trayectoria de apoptosis específica de transformación celular y/o específica de tumores, se llevó a cabo un rastreo genético de levadura. Los inventores utilizaron una genoteca de cDNA humano, que está basada en el vector plásmido pACT conteniendo las copias completas de cDNA realizadas a partir de las células B humanas transformadas por virus Epstein-Barr (Durfee y otros,
1993).
Construcción de un plásmido cebo utilizando un producto de gen de fusión de dominio de unión a GAL4-DNA y apoptina
Para examinar la existencia de proteínas de asociación de apoptina en la genoteca de cDNA transformada/tumorigé-
nica humana se tuvo que construir un llamado plásmido cebo ("bait plasmid"). Con este objetivo, la región completa codificante de apoptina, flanqueada aproximadamente por 40 pares de bases más abajo del gen de apoptina, fue clonada en el lugar de clonado múltiple del plásmido pGBT9.
El constructo final, llamado pGBT-VP3, fue analizado por análisis de enzima de restricción y secuenciado del área de fusión entre la apoptina y el dominio de unión con GAL4-DNA.
Se determinó un gen (fragmento) codificando una proteína de asociación a apoptina por transactivación de un promotor sensible a GAL4 en levadura.
El gen de apoptina es fusionado al dominio de unión con GAL4-DNA del plásmido pGBT-VP3, mientras que todos los cDNA derivados de las células B humanas transformadas fueron fusionados al dominio de activación GAL4 del plásmido pACT. Si una de las sustancias proteináceas codificadas por dichos cDNA se une a apoptina, el dominio de unión GAL4-DNA se encontrará en las proximidades del dominio de activación GAL4, en la activación del promotor sensible a GAL4, que regula los genes indicadores HIS3 y LacZ.
Los clones de levadura, conteniendo plásmido expresando apoptina y un plásmido expresando un fragmento de proteína de asociación de apoptina, pueden ser cultivados en un medio carente de histidina ("histidine-minus") y darán tinción azul en el ensayo de beta-galactosidasa. A continuación, el plásmido con el inserto de cDNA que codifica la proteína de asociación a apoptina puede ser aislado y caracterizado.
Antes de que se pueda proceder de este modo, no obstante, se tiene que determinar que la transformación de células de levadura con plásmido pGBT-VP3 solo, o en combinación con un vector vacío pACT, no tiene como resultado la activación del promotor sensible a GAL4.
Identificación de proteínas de asociación a apoptina, codificadas por los cDNA derivados de una línea celular B transformada humana
Los inventores han descubierto dos colonias de levadura que, después de su transformación con pGBT-VP3 y pACT-cDNA, son incapaces de cultivo en un medio carente de histidina (al que faltaba también leucina y triptofán), y que dió tinción azul en un ensayo de beta-galactosidasa. Estos resultados indican que las colonias de levadura observadas contienen además del plásmido cebo pGBT-VP3 también un plásmido pACT que codifica una proteína potencial de asociación a apoptina.
El DNA del plásmido fue aislado de la colonia de levadura positiva, que fue transformada en bacterias. Por medio de un ensayo de filtro-hibridación utilizando una sonda de DNA marcada, específica de pACT, se pudieron determinar los clones conteniendo plásmido pACT. A continuación, se aisló el DNA de pACT y se digirió con enzima de restricción XhoI, que es indicativo de la presencia de un inserto de cDNA. Finalmente, el plásmido pACT conteniendo un inserto de cDNA fue secuenciado utilizando el método Sanger (Sanger y otros, 1977).
Descripción de proteínas de asociación a apoptina
El rastreo genético de levadura para las proteínas de asociación a apoptina resultó en la detección de dos clones de cDNA A y B, comprendiendo un tipo único de proteína, a saber, una nueva proteína llamada proteína 1 de asociación a apoptina, abreviada como AAP-1. La cDNA AAP-1-b contiene el marco de lectura abierta completo con el codón de iniciación ATG, mientras que la secuencia AAP-1-a cDNA contiene un marco de lectura abierta parcial de AAP-1, que es completamente homólogo con la secuencia de AAP-1-b DNA.
La secuencia de DNA determinada de los clones AAP-1-a y AAP-1b cDNA se muestra en las figuras 1 y 2, respectivamente. La secuencia de aminoácido es derivada de la secuencia de DNA detectada del clon AAP-1-b, que representa la secuencia completa AAP-1 a.a., se indica en la figura 3.
Construcción de un vector de expresión para la identificación de la proteína AAP-1 en células de mamíferos
Para estudiar si los cDNA AAP-1-a y AAP-1-b clonados codifican realmente (asociación con apoptina) productos de proteína, los inventores llevaron a cabo los siguientes experimentos.
El plásmido DNA pMT2SM contiene el promotor principal (MLP) de adenovirus 5 y SV40 ori, posibilitando altos niveles de expresión de genes extraños en células de mamíferos transformadas, tales como células Cos transformadas por SV-40. Además, el vector pMT2SM contiene una etiqueta Myc (aminoácidos: EQKLISEEDL) que está en línea con el producto de gen extraño. Esta etiqueta Myc posibilita el reconocimiento de, por ejemplo, proteínas de asociación a apoptina por medio del anticuerpo 9E10 específico de la etiqueta Myc.
Los vectores pMT2SM que expresan cDNA de AAP-1-a o AAP-1b etiquetados Myc fueron construidos del modo siguiente. Los clones de cDNA de pACT-AAP-1-a y pACT-AAP-1-b fueron digeridos con el enzima de restricción XhoI y los insertos de cDNA fueron aislados. El vector de expresión pMT2SM fue digerido con XhoI y tratado con fosfatasa alcalina de intestino vacuno y ligado a los insertos de cDNA de AAP-1 aislados. Por análisis de secuencia, los constructos de pMT2SM conteniendo el cDNA de AAP-1-a o AAP-1-b en la orientación correcta fueron identificados.
La síntesis de la proteína AAP-1 con etiqueta Myc fue analizada por transfección de células Cos con el plásmido pMT2SM-AAP-1-a o pMT2SM-AAP-1-b. Como control negativo, células Cos fueron transfectadas en falso. Dos días después de la transfección, las células fueron sometidas a lisis y se llevó a cabo análisis de transferencia Western utilizando el anticuerpo 9E10 específico de la etiqueta Myc.
Las células Cos transfectadas con pMT2SM-AAP-1-a y pMT2SM-AAP-1-b se demostró que sintetizaban un producto AAP-1 etiquetado Myc con el tamaño esperado de aproximadamente 33kDa (AAP-1-a) o 35 kDA (AAP-1-b). Tal como era de esperar, los lisados de las células Cos transfectadas en falso no contenían un producto de proteína reaccionando con los anticuerpos específicos de etiqueta Myc.
Estos resultados indican que se ha podido aislar cDNA que son capaces de producir un producto de proteína con la capacidad de asociarse a la proteína inductora de apoptosis apoptina.
Co-inmunoprecipitación de proteína de AAP-1 etiquetada Myc con apoptina en un sistema de células de mamíferos transformadas
A continuación, se ha analizado la asociación de apoptina y la proteína AAP-1 por medio de co-inmunoprecipitaciones utilizando el anticuerpo 9E10 específico de etiqueta Myc. Los anticuerpos 9E10 se ha demostrado que no se unen directamente a la apoptina, lo que posibilita la utilización de 9E10 para llevar a cabo co-inmunoprecipitaciones con proteínas asociadas a apoptina (con etiqueta myc) y apoptina.
Con este objetivo, se co-transfectaron células Cos con apoptina que codifica el plásmido pCMV-VP3 y con el plásmido pMT2SM-AAP-1-a. Como control negativo, se transfectaron células con apoptina expresando pCMV-VP3 y un plásmido pcDNA3.1.LacZ-myc/His LacZ que codifica la beta-galactosidasa etiquetada myc, que no se asocia con apoptina.
Dos días después de la transfección, las células fueron sometidas a lisis en un tampón que consistía en 50 mM Tris (7.5), 250 mM NaCl, 5 mM EDTA, 0,1% Triton X100, 1 mg/ml Na_{4}P_{2}O_{7} e inhibidores de proteasa recién añadidos tales como PMSF, inhibidor de Tripsina, Leupeptina y Na_{3}VO_{4}. Las proteínas específicas fueron inmunoprecipitadas tal como se describe por Noteborn y otros (1998) utilizando los anticuerpos 9E10 específicos de etiqueta Myc, y analizados por transferencia Western.
La tinción de la transferencia Western con anticuerpos 9E10 y anticuerpos 111.3, que están dirigidos específicamente contra etiqueta Myc y apoptina respectivamente, demostraron que los listados celulares "totales" contenían apoptina y la proteína AAP-1 con etiqueta Myc o el producto de beta-galactosidasa. La inmunoprecipitación de los productos AAP-1 con la etiqueta Myc fue acompañada por la inmunoprecipitación de producto de apoptina de 16kDa. En contraste, la inmunoprecipitación de beta-galactosidasa con la etiqueta myc no tuvo como resultado una co-precipitación significativa de la proteína apoptina.
En total, se llevaron a cabo tres experimentos independientes de inmunoprecipitación, todos los cuales mostraron la capacidad de asociación de apoptina a la proteína AAP-1.
Estos resultados indican que la proteína de nueva determinación AAP-1 es capaz de asociarse específicamente con apoptina no solamente con el fondo de levadura, sino también en un sistema celular transformado de mamífero.
La (sobre)expresión de la nueva proteína AAP-1 en células humanas transformadas induce el proceso apoptótico
Además, los inventores han examinado si la proteína AAP-1 lleva a cabo actividad apoptótica. En primer lugar, analizaron la localización celular de la nueva proteína AAP-1 en células humanas transformadas. Con ese objetivo, se transfectaron las células Saos-2 derivadas de osteosarcoma humano, tal como se describe por Danen-van Oorschot (1997), con plásmido pMT2SM-AAP-1-a o pMT2SM-AAP-1-b codificando las proteínas AAP-1-a o AAP-1-b con etiqueta myc, respectivamente.
Por inmunofluorescencia indirecta utilizando el anticuerpo 9E10 específico de etiqueta myc y DAPI, que efectúa tinción del DNA nuclear, se demostró que tanto la proteína parcial como AAP-1 completa, se encontraban presentes en el núcleo de la célula. En realidad, co-localiza con las estructuras de cromatina/DNA.
Finalmente, los inventores examinaron si la (sobre)expresión de ambos cDNA que codifican la proteína AAP-1 completa o parcial tiene como resultado la inducción de apoptosis. Cuatro días después de la transfección, la mayor parte de células positivas AAP-1 fueron objeto de tinción aberrante con DAPI, lo que es indicativo de la inducción de apoptosis (Telford, 1992, Danen-van Oorschot, 1997).
La co-expresión de apoptina y ambas proteínas AAP-1 en células de tumores humanos, tales como células Saos-2, tiene como resultado un proceso apoptótico más rápido como expresión de apoptina o de la proteína AAP-1 sola. Los resultados de la actividad apoptótica de la proteína AAP-1 completa se muestran en la figura 4. El hecho de que la proteína AAP-1 pueda inducir apoptosis en células Saos-2 sin p53 indica que la proteína AAP-1 puede inducir apoptosis independiente de p53. Estos resultados implican que se puede utilizar AAP-1 como agente antitumoral en casos en los que fallarán otros agentes (quimio)terapéuticos. Además, el descubrimiento de que tanto la apoptina como la proteína AAP-1 inducen una ruta independiente de p53, indica que AAP-1 se incluye en la ruta apoptótica inducida por apoptina.
Co-localización de apoptina y AAP-1 en células tumorales humanas
Para establecer la posible co-localización de Apoptina y AAP-1 en células humanas transformadas, se transfectaron en células Saos-2 plásmidos que codifican Apoptina y AAP-1. La expresión de AAP-1 y de Apoptina fue controlada por inmunofluorescencia indirecta por medio de microscopio de exploración confocal-láser con ayuda de anticuerpos específicos mAb myc 9E10 contra la etiqueta myc en AAP-1 y pAb VP3-c contra el término C de Apoptina.
Las células co-transfectadas con un plásmido que codifica AAP-1 y un plásmido que codifica Apoptina expresaron estas proteínas de modo predominante en el núcleo. Tanto la Apoptina como AAP-1 tenían estructuras granulares y las estructuras características antes descritas. Por medio de microscopio de exploración confocal-láser, se demostró de forma clara que tenía lugar co-localización parcial de AAP-1 y Apoptina en estas estructuras nucleares.
Como conclusión, los inventores han identificado una proteína de asociación a apoptina, es decir, la nueva proteína AAP-1, que se encuentra presente en el núcleo y que es capaz de inducir apoptosis (independiente de p53) en células tumorales humanas. Además, cuando se expresan AAP1 y apoptina en la misma célula, las dos proteínas inductoras de apoptosis están co-localizadas en el núcleo de células tumorales humanas.
AAP-1 se localiza en células diploides normales humanas en estructuras citoplásmicas
A continuación, los inventores han examinado si AAP-1 se comporta de manera similar en células diploides humanas normales no transformadas, tal como se ha observado para AAP-1 en células tumorales humanas.
Con este objetivo, se transfectaron fibroblastos VH10 diploides humanos (Danen-Van Oorschot, 1997) utilizando Fugene de acuerdo con el protocolo del suministrador (Roche, Almere, Holanda), con el plásmido pMT2SM-AAP-1b que codifica la proteína AAP completa, con la etiqueta myc. En paralelo, se transfectaron también células Saos-2 derivadas de tumor humano con plásmido pMT2SM-AAP-1b.
Por inmunofluorescencia indirecta utilizando el anticuerpo específico de myc-tag 9E10, se demostró que en fibroblastos diploides normales VH10 la proteína AAP-1 está localizada en el citoplasma. Tal como se esperaba, en las células Saos-2 de tumor humano AAP-1 se localiza en el núcleo.
Además, los inventores han examinado el efecto de co-expresión de AAP-1 y apoptina en fibroblastos VH10 humanos sobre la localización celular de AAP-1, tal como se ha descrito para células que expresan AAP-1 solo. Los datos de inmunofluorescencia muestran que tanto la apoptina como AAP-1, están localizados en estructuras citoplásmicas. Estos hallazgos indican que la expresión de AAP-1 y/o de apoptina no resulta en la localización nuclear de una u otra en células diploides normales (humanas).
Co-localización de Apoptina y AAP-1 en fibroblastos humanos
Para establecer la posible co-localización de Apoptina y AAP-1 en células no transformadas, se transfectaron plásmidos codificando Apoptina y AAP-1 en células VH10. Se controló la expresión de AAP-1 y Apoptina por inmunofluorescencia indirecta por medio de un microscopio de exploración confocal-láser con la utilización de anticuerpos específicos mAb myc 9E10 contra la etiqueta myc sobre AAP-1 y pAb VP3-c contra el término C de Apoptina. Las células C fueron rastreadas para co-localización de Apoptina y AAP-1 y para inducción de apoptosis por tinción nuclear con DAPI.
Células co-transfectadas con un plásmido que codifica AAP-1 y un plásmido que codifica Apoptina expresaron estas proteínas predominantemente en el citoplasma. Tanto Apoptina como AAP-1 tenían una estructura enroscada y en algunos casos granular. Por medio de microscopio de exploración confocal-láser, se demostró claramente que tenía lugar co-localización de AAP-1 y Apoptina en estas estructuras citoplásmicas. Se observaron estructuras citoplásmicas similares en AAP-1 cuando se expresaron solas o viceversa cuando la Apoptina se expresó sola.
Por lo tanto, en presencia o ausencia de Apoptina, la AAP-1 tiene una localización citoplásmica y estructuras agregadas enroscadas en fibroblastos humanos no transformados.
Como conclusión, los inventores han identificado una proteína que asocia apoptina, es decir AAP-1, que está localizada de forma diferencial en células humanas diploides no transformadas con respecto a células tumorigénicas humanas. Estos resultados muestran que AAP-1 funciona de manera diferente en células diploides normales que en células tumorigénicas. Además, cuando se expresan AAP-1 y apoptina en la misma célula normal no transformada, las dos proteínas inductoras de apoptosis se co-localizan en el citoplasma.
Efecto en la inducción de enlace covalente de una señal de localización nuclear de antígeno T grande SV40 a la proteína apoptina
En los experimentos siguientes, los inventores han examinado si la expresión de una proteína quimérica consistiendo en apoptina y la señal de localización nuclear de antígeno SV40 LT (aminoácidos N-terminal-Prolina-Prolina-Lisina-Lisina-Lisina-Arginina-Lisina-Valina-C-Terminal de antígeno T grande SV40 enlazado de forma covalente al término N de Apoptina) tiene como resultado la inducción de apoptosis en células humanas transformadas y no transformadas. La proteína quimérica se llama NLS-apoptina.
Con este objetivo, fibroblastos humanos VH10 no transformados y células Saos-2 derivadas de osteosarcoma humano transformado (Danen-van Oorschot y otros, 1997) fueron transfectadas con un plásmido que codifica la proteína quimérica NLS-apoptina. En células humanas transformadas, la expresión de NLS-apoptina resultó en la localización nuclear de apoptina e inducción de apoptosis. No obstante, la expresión de NLS-apoptina en fibroblastos humanos normales resultó en la localización nuclear de apoptina, pero no en inducción de apoptosis. Esto indica que el "forzamiento" del transporte de apoptina al núcleo no resulta en actividad apoptótica por sí mismo. La apoptina parece requerir un evento adicional relacionado con tumor.
El efecto de expresión de NLS-apoptina sobre AAP-1 en fibroblastos humanos normales.
A continuación, los inventores examinaron si la expresión de NLS-apoptina puede influir en la localización celular de AAP-1 y/o su actividad apoptótica en fibroblastos humanos normales. Con este objetivo se co-transfectaron células VH10 con plásmidos codificando NLS-apoptina o AAP-1. Por medio de inmunofluorescencia indirecta y tinción DAPI utilizando microscopio de fluorescencia se demostró claramente que tanto la NLS-apoptina como AAP-1 se localizaban en el núcleo sin inducir apoptosis. Esto indica que el "forzamiento" del transporte de AAP-1 con intermedio de NLS-apoptina en el núcleo no tiene como resultado la actividad apoptótica de AAP-1 por sí mismo. La apoptina similar a AAP-1 parece requerir un evento adicional relacionado con tumor para pasar a ser apoptótica en el núcleo de células transformadas.
AAP-1 no induce apoptosis en células diploides humanas no transformadas.
En los siguientes experimentos, los inventores han examinado si AAP-1 solo o en combinación con apoptina es también capaz de inducir apoptosis en fibroblastos diploides humanos no transformados tal como se ha observado para células humanas tumorigénicas/transformadas.
Con este objetivo se transfectaron células VH10 con plásmido pMT2SM-AAP-1-b, tal como se ha descrito en lo anterior. Las células transfectadas fueron analizadas por inmunofluorescencia indirecta utilizando anticuerpos específicos de etiqueta myc y/o apoptina y tinción DAPI. DAPI marca el DNA intacto de manera diferente que el DNA apoptótico (Telford y otros, 1992). El análisis muestra claramente que los fibroblastos VH10 que contienen proteína AAP-1 sola o AAP-1 y apoptina no experimentan apoptosis.
Los resultados obtenidos muestran que las proteínas relacionadas con apoptina, tales como AAP-1, pueden comportarse de diferentes maneras en células "sanas" en comparación con células tumorales.
Ensayo de diagnóstico para células de cáncer
Basándose en el presente informe, los inventores pueden llegar a la conclusión de que la localización celular de AAP-1 es distinta en células humanas tumorigénicas/transformadas en comparación con células humanas normales no transformadas. Además, la acumulación de AAP-1 en el núcleo se correlaciona con inducción de apoptosis, mientras que la localización citoplásmica se correlaciona con viabilidad de células y capacidad de proliferación normal. Por lo tanto, los inventores han sido capaces de desarrollar un ensayo de diagnóstico para la identificación de células de cáncer (humano) con respecto a células normales "sanas" no transformadas.
El ensayo consiste en transfectar células (humanas) "sospechosas", por ejemplo de origen humano, con un plásmido que codifica AAP-1 o infectando las células con vectores virales que expresan AAP-1. A continuación, las células serán examinadas 1) en cuanto a capacidad de experimentar apoptosis por la (sobre)expresión del gen AAP-1 y 2) por un desplazamiento en la localización de AAP-1 desde el citoplasma al núcleo.
La localización intracelular de AAP-1 puede ser determinada utilizando el ensayo de inmunofluorescencia con anticuerpos monoclonales específicos para AAP-1 y/o específicos para una etiqueta enlazada a AAP-1, tal como la etiqueta myc que se ha descrito. Si el porcentaje de apoptosis y/o la localización nuclear de AAP-1 en las células analizadas expresando AAP-1 es significativamente mayor que en células "sanas" de control positivas en AAP-1, se puede llegar a la conclusión de que las células analizadas han pasado a ser tumorigénicas/transformadas. Como control positivo se utilizarán células tumorigénicas humanas conocidas para expresión de AAP-1.
La co-expresión de antígeno T grande SV40 y AAP-1 tiene como resultado la translocación de AAP-1 y la inducción de apoptosis.
Los inventores han examinado el efecto de expresión de genes transformantes sobre apoptosis inducida por AAP-1 en células humanas normales derivadas de individuos sanos. Con este objetivo se co-transfectaron transitoriamente fibroblastos diploides VH10 humanos con plásmido pMT2SM-AAP-1b codificando la proteína AAP-1 completa y plásmido pR-s884 codificando antígeno T grande SV40 o el plásmido de control negativo pCMV-neo (Noteborn y Zhang, 1998).
Por inmunofluorescencia indirecta las células fueron analizadas en cuanto a apoptosis inducida por AAP-1. Las células VH10 normales no experimentan apoptosis cuando se transfectó AAP-1 con el plásmido de control negativo. Los resultados han mostrado, tal como se esperaba, que la expresión de AAP-1 no es capaz de inducir apoptosis en células diploides humanas normales, confirmando los datos anteriormente mencionados. No obstante, fibroblastos humanos diploides normales expresando tanto AAP-1 como antígeno T grande SV40 experimentaron apoptosis inducida por AAP-1.
La transición de células humanas normales de AAP-1-resistencia a AAP-1-susceptibilidad puede ser explicada probablemente por el hecho de que la proteína AAP-1 transloca de una localización citoplásmica a una localización nuclear. Esta transición resulta aparente 2 días después de la transfección de plásmidos que codifican la proteína transformante antígeno T grande SV40. Se puede llegar a la conclusión de que tiene lugar un evento, en este ejemplo debido a la expresión de un producto transformante derivado de un virus de tumor DNA que resulta en la translocación de AAP-1 sobre-expresada desde el citoplasma al núcleo, lo que es seguido de inducción de apoptosis.
Ensayo diagnóstico para genes inductores de cáncer, agentes y tendencia al cáncer basado en apoptosis inducida por AAP-1
Basados en el presente trabajo, los inventores han sido capaces de desarrollar un ensayo diagnóstico para la identificación de agentes o genes inductores de cáncer y/o transformantes.
Un primer tipo de ensayo consiste en transfectar células "normales", por ejemplo de origen humano, con un plásmido que codifica AAP-1 o infectando las células con vectores virales expresando AAP-1 junto con un plásmido que codifica un gen putativo tranformante/inductor de cáncer. A continuación, las células serán examinadas 1) en cuanto a capacidad de experimentar apoptosis por el gen AAP-1 sobre-expresante y 2) por un desplazamiento en la localización de AAP-1 del citoplasma al núcleo.
La localización intracelular de AAP-1 puede ser determinada utilizando un ensayo de inmunofluorescencia con anticuerpos monoclonales específicos para AAP-1 y/o específicos para una etiqueta enlazada a AAP-1, tal como la etiqueta myc que se ha descrito. Si el porcentaje de apoptosis y/o de localización nuclear de AAP-1 en células normales que co-expresan AAP-1 y el gen transformante putativo/inductor de cáncer es significativamente mayor que en células de control positivo AAP-1 expresando un plásmido de control, se puede llegar a la conclusión de que el gen analizado tiene ciertamente actividad transformante/inductora de cáncer.
Un segundo ejemplo de una prueba de diagnóstico se basa en el tratamiento de células diploides normales cultivadas con un agente carcinogénico putativo. El agente puede ser añadido, por ejemplo, al medio de cultivo durante varios períodos de tiempo. A continuación, las células son transfectadas con un plásmido que codifica AAP-1. Este enfoque puede ser llevado a cabo también transfectando/infectando en primer lugar las células diploides normales y tratando luego las células con el agente a comprobar.
Las etapas subsiguientes del ensayo son iguales que las descritas en esta sección, describiendo el primer tipo de ensayo diagnóstico. Si el porcentaje de apoptosis y/o la localización nuclear de AAP-1 en células normales expresando AAP-1 y el agente carcinogénico putativo es significativamente mayor que las células de control positivo AAP-1 expresando un agente de control, se puede llegar a la conclusión de que el agente analizado tiene ciertamente actividad transformante/inductora de cáncer.
Un tercer ejemplo de una prueba de diagnóstico se basa en el tratamiento de células diploides normales cultivadas derivadas de una biopsia de piel de un individuo potencialmente con tendencia de cáncer a comprobar y cultivado en un medio adecuado. A continuación, las células son irradiadas con UV y a continuación transfectadas con un plásmido que codifica AAP-1, o infectadas con un vector viral que expresa AAP-1, o las células son en primer lugar transfectadas/infectadas y luego irradiadas. En paralelo, se utilizaron como control células diploides de un individuo sano normal.
Las etapas subsiguientes del ensayo son iguales que las descritas en esta sección que describe el primer tipo de ensayo diagnóstico. Si después del tratamiento UV el porcentaje de apoptosis y/o la localización nuclear de AAP-1 en los diploides derivados del individuo con potencial tendencia a cáncer es significativamente más elevada que las células de control positivas en AAP-1, tratadas por UV, se puede llegar a la conclusión de que el individuo analizado tiene tendencia a cáncer.
AAP-1 y YY1 se asocian entre sí en células transformadas
El homólogo de ratón de AAP-1, RYBP (García y otros, 1999) puede interaccionar con YY1. YY1 puede activar o reducir la transcripción de proteínas celulares y virales.
Las interacciones proteína-proteína pueden influir en la actividad de YY1.AAP-1 puede interaccionar con YY1. La interacción entre AAP-1 y YY1 puede influir en la actividad de YY1, resultando en represión o activación transcripcional. La transcripción de genes podría ser importante para la actividad apoptótica de la apoptina y/o AAP-1.
Para establecer si AAP-1 forma un complejo con YY1 in vitro, se co-transfectaron en células Cos plásmidos que codifican AAP-1 y YY1 (pCMV-HAVY-1; amable regalo del Dr. Yang Shi, Harvard Medical School, Boston, USA). Como control negativo se co-expresó YY-1 con LacZ. Las células fueron sometidas a lisis y se llevó a cabo un ensayo de inmunoprecipitación con utilización de anticuerpos específicos contra la etiqueta myc de AAP-1 (o LacZ), anti-myc 9E10 y contra YY1, anti-YY1. Los complejos resultantes fueron analizados por técnicas de transferencia Western. En los lisados de células se detectaron, tal como se esperaba, AAP-1 y/o YY1 y/o LacZ.
En células transfectadas con AAP-1 y YY1 era claramente visible que cuando los inventores llevaron a cabo una inmunoprecipitación con anticuerpos específicos para AAP-1 con etiqueta myc se podían detectar ambos AAP-1 y YY1. La transferencia demostró una banda a 32 kD (AAP-1) y una banda en 67 kD (YY1). Adicionalmente, los inventores llevaron a cabo una inmunoprecipitación utilizando anticuerpos específicos para YY1. Nuevamente, fueron detectables ambos YY1 y AAP-1 en la transferencia Western.
En células transfectadas con un plásmido expresando solamente AAP-1, solamente se pudo detectar AAP-1. Las células transfectadas con un plásmido que codifica YY1 mostraron expresión de YY1, no detectándose AAP-1. Para excluir una unión específica de AAP-1 con YY1 se transfectaron células con AAP-1 y LacZ y se llevaron a cabo inmunoprecipitaciones con anticuerpos específicos para LacZ. Si bien la proteína LacZ era claramente visible en la transferencia Western, no era visible la proteína AAP-1.
Por lo tanto, los resultados obtenidos muestran que AAP-1 se une específicamente al factor YY1 relacionado con la transcripción.
Producción y aislamiento de MBP-AAP1 y AAP1-(His)6
Para examinar la posibilidad de producción de la proteína de fusión MBP-AAP1 y AAP1-(His)6 se clonó el ácido nucleico de AAP1 que codifica para el marco de lectura abierta en los cassettes de (sobre)expresión de proteína pMALTB y pET22b. La inducción de células E. coli de acuerdo con las instrucciones del fabricante (Novagen) conduce a la producción de la proteína de fusión soluble.
El aislamiento de la proteína de fusión MBP-AAP1 por cromatografía de afinidad (resina de amilosa, New England Biolabs) y cromatografía de intercambio iónico (High-S, Biorad) conducen a una proteína de longitud completa con una pureza de 90 a 95%. La aplicación de cromatografía de exclusión de tamaño (Pharmacia Superose 6 HR 10/30) de esta proteína muestra que una parte sustancial del preparado MBP-AAP1 parece comportarse como una especie separada, un homotrímero o tetrámero. Este descubrimiento podría sugerir que la APP1 recombinante (en forma de la proteína de fusión MBP) es capaz de asumir un plegado correcto y es probable que sea biológicamente activa.
El aislamiento de la proteína AAP1-(His)6 por cromatografía de afinidad con metal (Ni^{2+}-NTA, QIAGEN) conduce a un lote de proteína con una pureza de \pm 80%.
Como conclusión, la fusión de AAP1 con MBP tiene como resultado una proteína AAP1 soluble apropiadamente plegada que es probable que sea biológicamente activa.
Producción de anticuerpos policlonales dirigidos contra proteínas AAP1
Para la producción de anticuerpos policlonales contra proteínas AAP-1 se sintetizó un péptido inmunogénico putativo (péptido AAP1 que consiste en los aminoácidos N/término-CTKTSETNHTSRPRLK-C/término; EuroGentec SA, Bélgica). A continuación, se inyectaron conejos con los péptidos específicos de acuerdo con procedimientos estándar del fabricante.
El derivado de suero de los conejos inyectados con péptido AAP-1 se demostró que era específico para los productos AAP-1 anteriormente descritos por medio de ensayos ELISA y transferencia Western. Estos resultados implican que se han generado anticuerpos específicos que pueden ser utilizados para detectar la proteína de asociación a apoptina AAP-1.
Como conclusión, los inventores han proporcionado pruebas de que la interferencia de factores específicos con la función de proteínas AAP-1 tiene como resultado la inducción de apoptosis. Son posibles terapias basadas en la inducción de apoptosis (independiente de p53) utilizando la interferencia con la función de proteínas AAP-1. Un ejemplo de dicho factor de interferencia es la apoptina. Otra proteína derivada de CAV que se sabe que induce apoptosis y que es también conocida por el incremento de la actividad de la apoptina es VP2 (Noteborn y otros, 1997).
Descripción de las figuras
La figura 1 muestra la secuencia parcial del vector pMT2SM-AAP-1-a. La secuencia de DNA del cDNA de AAP-1-a se indica en negritas.
La figura 2 muestra la secuencia parcial del vector pMT2SM-AAP-1-b. La secuencia de DNA del cDNA de AAP-1-b se indica en negritas.
La figura 3 muestra la secuencia de aminoácido de la zona analizada del clon de asociación de apoptina AAP-1-b (negritas). Además, los tres aminoácidos H-E-G del terminal C del lugar de clonado múltiple de pACT se han indicado para ilustrar que la secuencia de aminoácido AAP-1 se encuentra en línea con el dominio de activación de GAL4. Esta característica demuestra que la región AAP-1 está realmente sintetizada en células de levadura. Se debe observar que en la figura 3 la posición de aminoácido 23 corresponde al primer aminoácido de una proteína similar a AAP-1. Los dominios funcionales o fragmentos pueden ser identificados en este caso como dominio de unión de factor de transcripción que va desde la posición de aminoácido 1 (= 23 en figura 3) hasta 54 aproximadamente; un motivo prolongación de zinc, interacción proteína-proteína y/o interacción proteína-ácido nucleico en dominio que va aproximadamente desde las posiciones de aminoácido 25 (= 47 en figura 3) hasta 42 aproximadamente; una zona asociada a apoptosis que va desde las posiciones de aminoácidos aproximadas 32 a 226; una señal de localización nuclear que va desde la posición de aminoácido aproximada 74 a 81; y una señal de localización nuclear que va desde aproximadamente la posición de aminoácido 102 a 108 o a posiciones equivalentes en otra proteína similar a AAP-1.
La figura 4 muestra la activida apoptótica de la proteína AAP-1-b en células Saos-2 cuando se expresa sola (cuadrado lleno) o en combinación con apoptina (cuadrado en blanco). El porcentaje de apoptosis inducido por apoptina se indica también (triángulo lleno).
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<130> P50664EP10
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<160> 10
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<170> PatentIn Ver. 2.1
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: cebador
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<213> Secuencia Artificial
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Myc-tag
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<223> /nota= "secuencia parcial de Aminoácido de MP-1-b en la que X significa residuo de aminoácido desconocido"
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
3
4
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\vskip1.000000\baselineskip
Listado de secuencias
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\vskip0.400000\baselineskip
<110> Leadd B.V.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Proteína de asociación a apoptina
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\vskip0.400000\baselineskip
<130> P50664EP10
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<140> 00203042.7
\vskip0.400000\baselineskip
<141> 2000-09-01
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> 99202858.9
\vskip0.400000\baselineskip
<151> 1999-09-02
\vskip1.000000\baselineskip
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<150> 99203465.2
\vskip0.400000\baselineskip
<151> 1999-10-21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn Ver. 2.1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211>17
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<212> DNA
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<213> Secuencia Artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: cebador
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<221> característica_misc
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<222> (1)..(17)
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\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota= "Cebador pACT-especifico 17-mer"
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<400> 1
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
taccactaca atggatg
\hfill
17
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
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<211> 40
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<212> DNA
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<213> Secuencia Artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: cebador directo
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<220>
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<221> característica_misc
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<222> (1)..(40)
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
aacgggatcc ggcggcatgg gcgacaagaa gagcccgacc
\hfill
40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
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<211> 40
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<212> DNA
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<213> Secuencia Artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: cebador inverso
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<220>
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<221> característica_misc
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\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(40)
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
aaaagtcgac tcagaaagat tcatcattga ctgctgacat
\hfill
40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
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<211> 35
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<212> DNA
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<213> Secuencia Artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: cebador directo
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<220>
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<221> característica_misc
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<222> (1)..(35)
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gggaattcca tatgggcgac aagaagagcc cgacc
\hfill
35
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 47
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
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<213> Secuencia Artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: cebador inverso
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<220>
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<221> característica_misc
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<222> (1)..(47)
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<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
aaggaagtac gcggccgcga aagattcatc attgactgct gacatgt
\hfill
47
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de Secuencia Artificial: Myc-tag
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> UNIÓN
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<222> (1)..(10)
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<223> /nota= "Myc-tag"
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Glu Gln Lys Leu Ile Ser Glu Glu Asp Leu}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CHAIN
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(16)
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<223> /nota= "Inmunógeno"
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Cys Thr Lys Thr Ser Glu Thr Asn His Thr Ser Arg Pro Arg Leu Lys}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 947
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
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<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica_misc
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<222> (1)..(947)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota= "AAP-1-a ácido nucléico en el que N puede ser A, C, G o T"
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
5
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1131
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica_misc
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(1131)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota= "AAP-1-b ácido nucléico"
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
6
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 352
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CHAIN
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(352)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota= "secuencia parcial Aminoácido de AAP-1-b en la que X significa un residuo de aminoácido desconocido"
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
7
8

Claims (18)

1. Ácido nucleico que codifica apoptina y AAP-1, en el que dicha AAP-1 comprende los aminoácidos 23 a 250 de la figura 3 o SEQ ID NO:10 o un fragmento funcional del mismo que es capaz de inducir apoptosis.
2. Ácido nucleico según la reivindicación 1, en el que dicho ácido nucleico que codifica AAP-1 comprende en la figura 2 (SEQ ID NO:9) los ácidos nucleicos 142 a 829 o un fragmento funcional de los mismos que es capaz de inducir apoptosis.
3. Compuesto de proteína que comprende apoptina recombinante y AAP-1, en el que dicha AAP-1 comprende los aminoácidos 23 a 250 de la figura 3 o SEQ ID NO:10 o un fragmento funcional de los mismos que es capaz de inducir apoptosis.
4. Vector que comprende un ácido nucleico según la reivindicación 1 ó 2.
5. Vehículo para suministro de un gen que comprende un ácido nucleico según la reivindicación 1 ó 2 o un vector según la reivindicación 4.
6. Célula huésped transfectada con un ácido nucleico que codifica AAP-1 en la que dicha AAP-1 comprende los aminoácidos 23 a 250 de la figura 3 o SEQ ID NO:10 o un fragmento funcional de los mismos, que es capaz de inducir apoptosis y cuya célula huésped es transfectada posteriormente con un ácido nucleico que codifica apoptina.
7. Método de producción de un compuesto de proteína según la reivindicación 3 que comprende el facilitar una célula huésped un ácido nucleico que codifica AAP-1 en el que dicha AAP-1 comprende los aminoácidos 23 a 250 de la figura 3 o SEQ ID NO:10 o un fragmento funcional de los mismos que es capaz de inducir apoptosis y proporcionando además a dicha célula huésped un ácido nucleico que codifica apoptina, cultivando dicha célula huésped y recuperando dicho compuesto de proteína.
8. Método para la inducción de apoptosis in vitro en células en el que se observa proliferación celular incrementada o muerte celular reducida, comprendiendo proporcionar a dichas células una secuencia de ácido nucleico que codifica AAP-1, en el que dicha AAP-1 comprende los aminoácidos 23 a 250 de la figura 3 o SEQ ID NO:10 o un fragmento funcional de los mismos que es capaz de inducir apoptosis.
9. Método para inducir apoptosis in vitro en células en el que se observa proliferación celular incrementada o muerte celular reducida comprendiendo proporcionar a dichas células AAP-1 en el que dicha AAP-1 comprende los aminoácidos 23 a 250 de la figura 3 o SEQ ID NO:10 o un fragmento funcional de los mismos que es capaz de inducir apoptosis.
10. Método según la reivindicación 8 ó 9 que comprende además el proporcionar a la proteína apoptina o un ácido nucleico que codifica apoptina.
11. Método según la reivindicación 10 en el que dichas células están dotadas de un ácido nucleico según la reivindicación 1 ó 2 o un compuesto de proteína según la reivindicación 3.
12. Método según la reivindicación 8 ó 10 en el que dicho ácido nucleico que codifica a AAP-1 comprende en la figura 2 (SEQ ID NO:9) los ácidos nucleicos 142 a 829 o un fragmento funcional de los mismos que codifica dicha AAP-1 y que es capaz de inducir apoptosis.
13. Método según cualquiera de las reivindicaciones 8 a 12 en el que dichas células son células de cáncer o células involucradas en una enfermedad autoinmune.
14. Utilización de ácido nucleico según la reivindicación 1 ó 2 o un compuesto de proteína según la reivindicación 3 como agente farmacéutico.
15. Utilización de una secuencia de ácido nucleico que codifica AAP-1 en la que dicha AAP-1 comprende los aminoácidos 23 a 250 de la figura 3 o SEQ ID NO:10 o un fragmento funcional de los mismos que es capaz de inducir apoptosis, en la preparación de un medicamento para el tratamiento de cáncer o enfermedades autoinmunes en el que dicho tratamiento comprende además el proporcionar la proteína apoptina o un ácido nucleico que codifica apoptina.
16. Utilización de AAP-1 en la que dicha AAP-1 comprende los aminoácidos 23 a 250 de la figura 3 o SEQ ID NO:10 o un fragmento funcional de los mismos que es capaz de inducir apoptosis en la preparación de un medicamento para el tratamiento de cáncer o una enfermedad autoinmune, en el que dicho tratamiento comprende además proporcionar la proteína apoptina o un ácido nucleico que codifica apoptina.
17. Utilización según la reivindicación 15 ó 16 que comprende un ácido nucleico según la reivindicación 1 ó 2 o un compuesto de proteína de acuerdo con la reivindicación 3 o un vector de acuerdo con la reivindicación 4.
18. Utilización según la reivindicación 15 ó 16 en la que dicho ácido nucleico que codifica AAP-1 comprende en la figura 2 (SEQ ID NO: 9) los ácidos nucleicos 142 a 829 o un fragmento funcional de los mismos que es capaz de inducir apoptosis.
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