ES2231831T3 - Aparato y procedimiento para la determinacion del color de la orina. - Google Patents

Aparato y procedimiento para la determinacion del color de la orina.

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ES2231831T3 ES97107008T ES97107008T ES2231831T3 ES 2231831 T3 ES2231831 T3 ES 2231831T3 ES 97107008 T ES97107008 T ES 97107008T ES 97107008 T ES97107008 T ES 97107008T ES 2231831 T3 ES2231831 T3 ES 2231831T3
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Willis Howard
Gary Rehm
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Abstract

SE PRESENTA UN APARATO PARA ANALIZAR UNA MUESTRA DE LIQUIDO CORPORAL, COMO UNA MUESTRA DE ORINA, DEPOSITADA EN EL PAPEL REACTIVO CON UN SISTEMA DE ILUMINACION DEL PAPEL REACTIVO SOBRE EL QUE SE DEPOSITA LA MUESTRA DE LIQUIDO CORPORAL, UN SISTEMA PARA DETECTAR LA LUZ PROCEDENTE DEL PAPEL REACTIVO Y PARA GENERAR UNA PRIMERA SEÑAL DE REFLEXION EN UN PRIMER MOMENTO Y UNA SEGUNDA SEÑAL DE REFLEXION EN UN SEGUNDO MOMENTO, ASI COMO UN SISTEMA PARA ASIGNAR UN COLOR A LA MUESTRA DE LIQUIDO CORPORAL BASADO EN LAS MAGNITUDES DE LAS SEÑALES DE REFLEXION PRIMERA Y SEGUNDA. EL SISTEMA DE ASIGNACION DE COLOR A LA MUESTRA DE LIQUIDO CORPORAL PUEDE INCLUIR UN SISTEMA PARA DETERMINAR UNA PAREJA DE COEFICIENTE DE COLOR CADA UNO DE LOS CUALES TIENE UNA MAGNITUD BASADA EN LAS MAGNITUDES DE LAS SEÑALES DE REFLEXION Y UN SISTEMA PARA ASIGNAR EL COLOR A LA MUESTRA DE LIQUIDO CORPORAL BASADO EN LAS MAGNITUDES DE LOS COEFICIENTES DE COLOR.

Description

Aparato y procedimiento para la determinación del color de la orina.
Antecedentes de la invención
La invención presente se refiere a un aparato y procedimiento para realizar análisis en una muestra de fluido corporal a analizar, y más en particular a un espectroscopio de reflectancia y un procedimiento para la determinación del color de la orina.
Para varios fines de diagnóstico médico es útil utilizar un espectroscopio de reflectancia para analizar muestras de fluido corporal para, por ejemplo, se determina el color de la orina de una persona. Con un espectroscopio convencional de reflectancia se determina el color de una muestra de orina dispuesta en una almohadilla blanca no reactiva iluminando la almohadilla y tomado un número de lecturas de la reflectancia procedente de la almohadilla, teniendo cada una de ellas una magnitud que se relaciona con una longitud de onda diferente de luz visible. Entonces se determina el color de la orina basándose en las magnitudes relativas las señales de la reflectancia, roja, verde y azul.
Los espectroscopios convencionales se pueden usar para realizar un número de análisis de urinálisis utilizando una tira reactiva sobre la cual se ha dispuesto un número de diferentes almohadillas reactivas. Cada almohadilla reactiva está equipada con un reactivo diferente lo que produce un cambio de color en respuesta a la presencia de un cierto tipo de constituyente en la orina, tales como los leucocitos (células blancas de la sangre) o las células rojas de la sangre. Tal tira reactiva puede tener diez tipos diferentes de almohadillas reactivas.
En la patente de los EE.UU. 4.989.982 se da a conocer un dispositivo para corregir la sensibilidad espectral dentro de un colorímetro fotoeléctrico tricromático, que comprende tres sistemas fotorreceptores para la medición de valores tricromáticos. Las señales indicadoras de las respectivas salidas procedentes de dos de los sistemas fotorreceptores, multiplicadas por el coeficiente de corrección predeterminada se añaden a, o se substraen de, una salida procedente de los restantes sistemas fotorreceptores, de forma que las características de sensibilidad espectral del restante sistema fotorreceptor se puedan aproximar a predeterminadas características de sensibilidad espectral. Las mediciones correspondientes se llevan a cabo en un estado en el cual la muestra está iluminada y, también, en un estado en el que la muestra no está iluminada.
En la patente europea EP 479.394A se da a conocer un procedimiento y un aparato para la determinación colorimétrica de analitos químicos y bioquímicos en fluidos acuosos.
Sumario de la invención
El problema se resuelve por medio de un aparato y un procedimiento que comprenden las características técnicas de las reivindicaciones 1 y 12, respectivamente.
Esta invención está dirigida a un procedimiento y aparato para analizar una muestra de fluido corporal, tal como una muestra de sangre, colocada en una almohadilla reactiva. El aparato está equipado con medios para iluminar la almohadilla reactiva en la cual se ha colocado la muestra de fluido corporal, medios para detectar la luz que se reciba de la almohadilla reactiva y para generar una primera señal de reflectancia en un primer tiempo y una segunda señal de reflectancia en un segundo tiempo, y medios para asignar un color a la muestra de fluido corporal basados en las magnitudes de la primera y segunda señales de reflectancia.
Los medios detectores pueden estar compuestos por medios para generar una señal de reflectancia en respuesta a la luz roja recibida de la almohadilla reactiva, medios para generar una señal de reflectancia en respuesta a la luz verde recibida de la almohadilla reactiva, y medios para generar una señal de reflectancia en respuesta a la luz azul recibida de la almohadilla reactiva.
Los medios para asignar el color a la muestra de fluido corporal pueden incluir medios para determinar un par de coeficientes de color, cada uno de los cuales tenga una magnitud basada en las magnitudes de las señales de reflectancia, y medios para asignar el color a la muestra de fluido corporal basados en las magnitudes de los coeficientes de color.
Los medios para determinar los coeficientes de color pueden estar compuestos por medios para determinar un factor de corrección del color basado en las magnitudes de las señales de reflectancia, medios para asignar un factor de ponderación al factor de corrección del color, y medios para determinar el coeficiente de color basado en el factor de corrección y el factor de ponderación del color. Los medios para determinar el factor de corrección del color pueden incluir medios para determinar un par de valores de corrección del color basados en las magnitudes de las señales de reflectancia y medios para determinar la diferencia entre los dos valores de corrección del color.
Esta invención también está dirigida a un procedimiento para analizar una muestra de fluido corporal colocada en una almohadilla reactiva. Este procedimiento incluye las etapas de iluminación de la almohadilla reactiva, la detección de luz recibida de la almohadilla reactiva en un primer tiempo y la generación de una primera señal de reflectancia basada en la luz detectada, la detección de luz recibida de la almohadilla reactiva en uno segundo tiempo y la generación de una segunda señal de reflectancia basada en la luz detectada, y la asignación de color a una muestra de fluido corporal basada en las magnitudes de la primera y la segunda señales de reflectancia.
Este procedimiento puede incluir las etapas de determinación de un par de coeficientes de color, teniendo cada uno una magnitud basada en las magnitudes de las señales de reflectancia, y la asignación de color a la muestra de fluido corporal basada en las magnitudes de los coeficientes de color. Este procedimiento puede incluir también las etapas de determinación de un factor de corrección del color basado en las magnitudes de las señales de reflectancia, la asignación de un factor de ponderación al factor de corrección del color, y la determinación del primer coeficiente del color basado en el factor de corrección del color y el factor de ponderación.
Estas y otras características y ventajas de la invención presente serán evidentes para los que tengan una experiencia normal en la técnica en vista de la descripción detallada de la realización preferida, la cual se hace con referencia a los dibujos, una breve descripción de los cuales se proporciona a continuación.
Breve descripción de los dibujos
La figura 1 es una vista en perspectiva de un espectroscopio de reflectancia que se puede usar para realizar diversos análisis de una muestra de fluido corporal colocada en una tira reactiva:
La figura 2 es una vista en perspectiva de una tira reactiva y una bandeja reactiva usadas con el espectroscopio de la figura 1,
La figura 3 es una vista en corte de una cabeza de lectura usada en el espectroscopio,
La figura 3A es una vista ampliada de una porción de la cabeza de lectura que se muestra en la figura 3,
La figura 4 es una vista esquemática de un elemento detector usado en el espectroscopio,
La figura 5 es una gráfica de codificación de colores utilizada en conexión con el espectroscopio,
La figura 6 es un esquema funcional de la electrónica del espectroscopio de la figura 1, y
Las figuras 7A a 7C son organigramas de una rutina de análisis que se puede usar para determinar el color de una muestra de orina en una almohadilla reactiva.
Descripción detallada de la realización preferida
La figura 1 ilustra un espectroscopio de reflectancia 10 para llevar a cabo diversos análisis, tales como análisis de urinálisis, en un tira reactiva. El espectroscopio 10 tiene un teclado integral 12 con un número de teclas de entrada 14 que el usuario puede apretar. Por encima del teclado 12 está colocada una pantalla de visualización 16 para representar los diversos mensajes relacionados con el funcionamiento del espectroscopio 10. Con referencia a las figuras 1 y 2, el espectroscopio 10 tiene una cara frontal 17 con una abertura18, formada en la misma, en la cual se coloca una bandeja 20, de forma retractable, para llevar la tira reactiva 22. La bandeja 20 tiene un canal central 24 y dos canales laterales 26, formados en la misma, y el canal central 24 está dimensionado para adaptarse a la forma de la tira reactiva 22.
La tira reactiva 22 tiene un substrato fino, no reactivo 28, sobre el que se fija un número de almohadillas reactivas 30. Cada almohadilla reactiva 30 está compuesta de un material relativamente absorbente, impregnado con un respectivo reactivo, estando cada reactivo y almohadilla reactiva 30 asociados con un análisis particular que se va a llevar a cabo. Cuando se realicen los análisis de urinálisis, pueden incluir, por ejemplo un análisis para determinar los leucocitos en la orina, un análisis del pH del la orina, un análisis para determinar el contenido de sangre en la orina, etc. Cuando cada almohadilla reactiva 30 entra en contacto con la muestra de orina, la almohadilla cambia de color durante un tiempo, dependiendo del reactivo usado y de las características de la muestra de orina. La tira reactiva 22 puede ser, por ejemplo, una tira reactiva Multistix® disponible en el comercio, de la Bayer Corporation.
Para realizar los análisis de urinálisis, la tira reactiva 22 se impregna dentro de una muestra de orina que se va a analizar para que todas las almohadillas reactivas 30 se sumerjan en la muestra. Después de que se ha secado el lado de la tira reactiva 22, para eliminar el exceso de orina, esta tira reactiva 22 se coloca en el canal central 24 de la bandeja 20, y, después de que el usuario aprieta una de las teclas de inicio 14 para iniciar los análisis, la bandeja 20 se retrae automáticamente dentro del espectroscopio 10.
Un análisis respectivo se realiza en cada una de las almohadillas reactivas 30 iluminando una porción de la almohadilla reactiva 30 con luz blanca procedente de una fuente luminosa y entonces se determina el color de la almohadilla reactiva 30 basándose en la detección de la luz recibida de la porción iluminada de la almohadilla reactiva 30 en un ángulo (por ejemplo, de 45º) desde la superficie superior de la almohadilla 30. Después de que se ha realizado cada análisis la bandeja se vuelve a posicionar en relación con la fuente luminosa para que se ilumine la siguiente almohadilla reactiva 30 que se vaya a probar. Cuando se hayan completado los análisis, el espectroscopio 20 genera un registro de los resultados, los cuales se visualizan en la pantalla 16 y/o se imprimen en una tira de papel 32, por medio de una impresora, y/o se envían a un ordenador.
Cabeza de lectura
La figura 3 es una vista en corte de un sistema óptico en forma de una cabeza de lectura 34, para iluminar las porciones de las almohadillas reactivas 30 y para detectar la luz procedente de las almohadillas reactivas 30, y una porción de la bandeja 20 en la cual se ha dispuesto la tira reactiva 22. Con referencia a la figura 3, la cabeza de lectura 34 tiene una envuelta con un pared superior 36, una pared inferior 38, una pared lateral 40 y una pared en ángulo 42, una pared posterior plana 44, y una pared frontal plana (que no se ilustra) paralela a la pared posterior 44. Una fuente luminosa en forma de un bulbo luminoso 46 está sostenida directamente encima de una almohadilla reactiva 30, que se va a probar, por medio de una porción de envuelta cilíndrica 48 formada integral con la pared superior 36.
La porción esférica inferior del bulbo luminoso 46 tiene una lente concentradora formada integral en la misma, y la superficie esférica inferior está atacada con ácido para proporcionarle una superficie desigual difusa para que la forma del filamento del bulbo no contribuya a la falta de uniformidad de la luz emitida. Cuando se le fabrica, el bulbo está dinámicamente montado en una base cerámica 49, para que cuando se ilumine el bulbo 46 se garantice que la dirección axial, en la cual el bulbo 46 emite luz, sea casi paralela al eje longitudinal de la base cerámica 49. El bulbo 46 emite luz a través de una abertura circular 50 formada en la pared superior 36 para formar un cono de luz definido por un primer rayo marginal 52 y un segundo rayo marginal 54.
La pared lateral en ángulo 42 tiene una abertura rectangular 55 formada en la misma en la cual se dispone una red detectora rectangular 56. La red detectora 56 tiene cuatro detectores de reflectancia 57, 58, 59 y 60, dispuestos dentro de la misma (véase la figura 4), cada uno de los cuales se compone de un filtro coloreado convencional o de rayos infrarrojos y un detector convencional de silicio. Cada filtro permite que la luz, con una longitud de onda distinta, pase para que cada uno de los detectores 57 a 60 responda para iluminar una zona diferente de longitudes de onda. Las cuatro bandas de longitudes de onda de los filtros son: 400 a 510 nm (nanometros) (azul), 511 a 586 nm (verde); 587 a 660 nm (roja) y 825 a 855 nm (infrarroja). Se puede usar uno o más de los detectores 57 a 60, en función del tipo de análisis que se vaya a llevar a cabo.
La luz pasa por una primera trayectoria óptica procedente del bulbo luminoso 46, por una apertura 62, rectangular, relativamente pequeña, formada en la pared inferior 38, para iluminar un área rectangular relativamente pequeña de la almohadilla reactiva 30 que se éste analizando. La almohadilla reactiva 30 se puede mover en relación con la abertura 62 para que se iluminen diferentes áreas rectangulares de la almohadilla reactiva 30.
La luz pasa por una segunda trayectoria óptica procedente del área iluminada en la almohadilla reactiva 30, por una primera abertura rectangular de detección 38 con bordes en ángulo 69 formados en la pared inferior 38, por una segunda abertura rectangular de detección 70 con bordes en ángulo 71, y a través de una abertura rectangular 72 en la pared en ángulo 42 hasta un área de detección 73 (figura 4) en la que están colocados los cuatro detectores 57 a 60.
El interior de la cabeza de lectura 34 está equipado con un deflector de forma irregular 74 compuesto por un primer segmento de pared plana 76, un segundo segmento de pared plana 78 y un segmento de pared en forma zigzagueante 80. La forma del deflector 74 está diseñada para evitar que los rayos luminosos reflectados una sola vez alcancen la almohadilla reactiva 30 desde el bulbo luminoso 46 y para evitar que los rayos luminosos reflectados una sola vez alcancen el área detectora 73 desde la almohadilla reactiva 30.
Todas las superficies del deflector 74 y todas las superficies internas de la paredes de la envuelta 36, 38, 40, 42, 44 son superficies brillantes, especulares para que cualquier luz incidente sobre cualquier superficie en un ángulo de incidencia se refleje desde esa superficie en un ángulo de reflexión igual al ángulo de incidencia. Esto se puede conseguir mediante el moldeo por inyección de la cabeza de lectura 34 partiendo de un molde metálico que tenga superficies de moldeo muy pulidas. Es preferible que la cabeza de lectura 34 esté formada por plástico negro para que solo un porcentaje pequeño, por ejemplo, el 5%, de luz incidente sobre cualquiera de sus superficies internas se refleje. Por consiguiente, cualquier luz que sufra, al menos, dos reflexiones desde cualesquiera superficies internas de la cabeza de lectura 34 se atenúa, al menos el 99,75%.
Con referencia a la figura 3, el segmento de pared 76 tiene una superficie especular 82, que está en ángulo en la dirección indicada por la línea de puntos 84, y que intersecciona la pared inferior 38 en un punto justo a la izquierda de la abertura 62. Por consiguiente, cualesquiera rayos luminosos que emita el bulbo 46 y que incidan sobre la superficie 82 se reflejan hacia un área a la izquierda de la abertura 62. Hay que observar que cualquiera de los rayos se refleja, al menos, dos veces (en realidad, al menos, tres veces) antes de que pueda pasar por la abertura 62. También se tiene que observar que no se puede reflejar luz alguna desde la superficie 82, y que pase directamente a través de la abertura 62, sin reflexión adicional, ya que a superficie 82 no está visible cuando el interior de la cabeza de lectura 34 se vea desde la abertura 62.
El segmento de pared 78 tiene una superficie especular 86, que está en ángulo en la dirección indicada por la línea de puntos 88, y que intersecciona la pared superior 36 en un punto a la izquierda de la abertura circular 50, a través de la cual pasa la luz. Por consiguiente, no hay trayectoria directa alguna desde el bulbo luminoso 46 hacia la superficie 86; por lo tanto, cualquier luz que se refleje desde la superficie 86 hacia la abertura 62 tendrá que sufrir, al menos, dos reflexiones (en realidad más de dos) desde las superficies internas de la cabeza de lectura 34.
La figura 3A es una vista ampliada de una porción de la cabeza de lectura que se muestra en el figura 3. Con referencia a las figuras 3 y 3A, el segmento de pared zigzagueante 80 tiene superficies en ángulo 90 a 93, cada una de las cuales está en ángulo en una dirección indicada por su respectiva línea de puntos. Dado que todas las líneas de puntos interseccionan la pared inferior 38 o la pared lateral 40, a la izquierda de la abertura 62, no hay luz, procedente del bulbo luminoso 46 que incida directamente sobre estas superficies 90 a 93, que se puede reflejar directamente hacia la abertura 62. El segmento de pared zigzagueante 80 tiene dos superficies más 94, 95 (figura 3) que están en ángulo para que cualquier luz que incida directamente en estas superficies procedente del bulbo luminoso 46 se refleje exclusivamente en el área de la pared inferior 38 hacia el lado derecho de la abertura 62.
Las únicas superficies desde las que los rayos luminosos emitidos por el bulbo 46 pueden reflejarse una sola vez y pasar también por la abertura 62 son las paredes verticales de la misma abertura 62. Sin embargo, tales rayos luminosos reflejados una sola vez constituyen una cantidad insignificante de la luz total que pasa directamente desde el bulbo luminoso 46 hasta la almohadilla reactiva 30 sin reflexión. También hay una trayectoria de luz reflejada una sola vez desde el bulbo 46 hacia las paredes 40 o 44 hacia la abertura 62, pero como el bulbo 46 concentra la luz en una dirección de avance dentro del cono definido por los rayos 52 y 54, la cantidad de luz que pasa por la abertura 62, procedente de esta trayectoria, es insignificante.
La segunda trayectoria óptica, desde la almohadilla reactiva 30 hasta el área detectora 73 (figura 4), está, en general, indicada por un par de líneas de puntos 96, 98. El lado del segmento de pared zigzagueante 80, el cual está colocado adyacente a la segunda trayectoria óptica tiene una pluralidad de superficies especulares planas 100, 101, 102 que están en ángulo en una dirección indicada por un número correspondiente de líneas de puntos (ilustradas en la figura 3), que intersecciona la pared lateral en ángulo 42 en un punto hacia la derecha inferior del área detectora 73. Por consiguiente, cualesquiera rayos luminosos que incidan directamente sobre estas superficies 100 a 102 desde la almohadilla reactiva 30, sin reflexión, no puede alcanzar el área detectora 73 sin, al menos, una o más reflexiones, y así cualquiera de tales rayos luminosos estará atenuado al menos el 99,75%.
El lado del segmento de pared zigzagueante 80, que está colocado adyacente a la segunda trayectoria óptica, tiene una pluralidad de superficies especulares planas 103, 104 (figura 3) que están en ángulo para que ningún rayo luminoso, procedente de la almohadilla reactiva 30, pueda alcanzar directamente las superficies 103, 104, sin, al menos, una reflexión. Por consiguiente, cualquiera de los rayos luminosos que incidan sobre estas superficies 103, 104 tendrá que haber sufrido ya una reflexión al menos, y, por lo tanto, cualquier rayo luminoso que, con el tiempo, alcance el área detectora 73 estará reflejado dos veces, al menos, y así estará atenuado, al menos, el 99,75%.
Las superficies de pared 100 y 103 se unen en un borde 105, y las superficies de pared 101 y 104 se unen en un borde 106, estando los bordes 105 y 106 casi alineados con un respectivo borde del área detectora 73, y los bordes 69, 71 de las aberturas de detección 68, 70 están alineados con los bordes del área detectora 73.
Electrónica
La figura 6 es un esquema funcional de la electrónica y otros componentes del espectroscopio 10. Con referencia a la figura 6, el funcionamiento del espectroscopio 10 está regulado por un microcontrolador 200, que tiene un microprocesador 202, una memoria de acceso aleatorio (RAM) 204, una memoria de solo lectura (ROM) 206, y un circuito de entrada/salida (E/I) 208, todos los cuales están interconectados por medio de un canal de dirección/datos 210. El microcontrolador 200, el cual puede ser un microcontrolador convencional, tal como un microcontrolador DS2253DT, de Vallas Semiconductor, disponible en el comercio, puede incorporar un circuito excitador 212 conectado al circuito de E/S 208 para accionar una impresora 214.
El microcontrolador 200 controla el movimiento de la bandeja de tiras reactivas 20 por medio de un posicionador convencional 220, acoplado, por medios mecánicos, a la bandeja 20 y a un motor 222, tal como un motor de velocidad graduable, que está accionado por señales de excitación generadas por un circuito excitador 224 conectado al circuito de E/S 208 vía una línea eléctrica 226.
El microcontrolador 200 enciende, de manera selectiva, el bulbo luminoso 46 por medio de un interruptor 227 conectado al circuito de E/S 208 vía una línea eléctrica 229. El bulbo luminoso 46 se enciende un segundo antes de la realización de un análisis para que se caliente lo suficiente. Si no se necesita que el bulbo luminoso 46 aporte iluminación, dentro del siguiente plazo de un segundo después de un análisis, se apaga para conservar su duración.
Cada uno de los detectores 57 a 60 de la red detectora 56 puede generar una señal eléctrica de reflectancia en una de un número de líneas eléctricas 228. Cada señal de reflectancia tiene una magnitud que depende de la cantidad de luz detectada por el detector asociado. El microcontrolador 200 puede, de manera selectiva, leer cualquiera de las señales de reflectancia transmitiendo una señal de selección a un multiplexor 230 vía una línea 232. Entonces el multiplexor 230 transmite la señal de reflectancia elegida a un amplificador 234 y a un convertidor de analógico a digital (A/D) 236, el cual transmite la señal binaria correspondiente a la salida analógica de la señal de reflectancia por medio del amplificador 234 al microcontrolador 200 vía una línea 238 conectada al circuito de E/S 208.
Funcionamiento
El funcionamiento del espectroscopio 10 está regulado por medio de un programa de ordenador, almacenado en la ROM 206, que ejecuta el microprocesador 202. En las figuras 7A a 7C se muestra un organigrama de la rutina de análisis 300 para realizar la determinación del color de una muestra de orina. Cuando se ha realizado el análisis, la almohadilla reactiva 30, que tiene el reactivo que cambia de color en respuesta a la presencia de leucocitos, se posiciona directamente debajo del bulbo luminoso 46. Usando la almohadilla reactiva 30 para llevar a cabo tanto el análisis de los leucocitos como la determinación del color de la orina, se elimina la necesidad de una almohadilla blanca no reactiva adicional que se tendría que disponer en la tira reactiva 22 para la determinación del color de la orina.
Con referencia a la figura 7A, en la etapa 302, mientras que la almohadilla reactiva 30, utilizada para el análisis de los leucocitos, se ilumina, cada uno de los cuatro detectores se "lee" una primera vez por medio de la transmisión de cada una de las señales de reflectancia generadas por los detectores 57 a 60, a través del multiplexor 230, al amplificador 234, el convertidor A/D 236, el circuito de E/S 208 y la RAM 204 donde se almacenan sus valores.
Por ejemplo, la primera vez que los detectores 57 a 60 se leen puede ser quince segundos después de que el operario haya impregnado la tira reactiva 22 en la orina. Tan pronto como la tira reactiva 22 se sumerge en la muestra de orina, el operario aprieta una de las teclas 14 (figura 1), que hace arrancar a un temporizador interno (no ilustrado) en el espectroscopio 10. Cuando el temporizador alcance el primer tiempo predeterminado, los detectores 57 a 60 se leen en la etapa 302. En la etapa 304, cada uno de los detectores se lee en un segundo tiempo subsiguiente, tal como 60 segundos después de que la tira reactiva 22 se haya sumergido en la muestra de orina.
En la etapa 306 el espectroscopio 10 determina, basándose en las lecturas de reflectancia realizadas durante las etapas 302, 304, un número de coeficientes, incluyendo un coeficiente de color A, un coeficiente de color B y un coeficiente de intensidad L. Según se usa en este documento, el término "intensidad" se refiere a lo clara o oscura que está la muestra de orina, tal como un amarillo claro o un amarillo oscuro. Los coeficientes determinados en la etapa 306 se exponen a continuación:
[1]A = C_{a}(R_{1} + W_{a}F) - (G_{1} + W_{b}F)
[2]B = C_{b}(G_{1} + W_{b}F) - (B_{1} + W_{c}F)
[3]L = B_{1} + W_{c}F
en los que C_{a} y C_{b} son constantes; R_{1}, B_{1}, G_{1} son los valores (en porcentaje de reflectancia, por ejemplo, para el R_{1} del 50% de reflectancia, el valor de R_{1} debe ser 50) de las señales de reflectancia generadas en el primer tiempo por los detectores del rojo, azul y verde, respectivamente, W_{a}, W_{b} y W_{c} son los factores de ponderación; y F es el factor de corrección del color que se usa para proporcionar una corrección del color para eliminar los efectos del cambio de color de la almohadilla reactiva 30 debido a la reacción de la almohadilla ante los leucocitos en la muestra de orina. El factor F de corrección del color puede ser según la siguiente ecuación:
[4]F = G_{1}/ I_{1} \sim G_{2}/ I_{2}
en la que G_{1} y G_{2} son los valores (en porcentaje de reflectancia) de las señales de reflectancia generadas por el detector del verde en el primero y el segundo tiempos, respectivamente, y en la que I_{1} e I_{2} son los valores de las señales de reflectancia (en porcentaje de reflectancia) generadas por el detector de infrarrojos en el primero y el segundo tiempos, respectivamente.
El factor de corrección del color F se basa en el reconocimiento de que el cambio de color de la almohadilla reactiva 30, debido a la presencia de leucocitos (cuyo cambio de color no está relacionado con el color original de la muestra de orina) afecta con muchísima fuerza a la luz verde recibida de la almohadilla reactiva 30 (cuando la tira reactiva Bayer, indicada arriba, se usa, la presencia de leucocitos hace que la tira reactiva 30 cambie de forma continua de color, durante un plazo de tiempo desde la inmersión hasta aproximadamente dos minutos después de la inmersión, desde el blanco hasta un matiz tostado, que depende de la concentración de leucocitos presentes). Así, una diferencia relativamente grande entre G_{1} y G_{2} significa un cambio de color relativamente grande debido a la presencia de leucocitos, y una diferencia relativamente pequeña entre G_{1} y G_{2} significa un cambio de color relativamente pequeño debido a la presencia de leucocitos. Cuando se tenga que determinar el color de la orina (o el color de otra muestra de fluido corporal) para almohadillas reactivas que normalmente se usan para análisis que no sean los análisis de los leucocitos, el cambio de color debido a la reacción entre el reactivo y los constituyentes de la sangre que se está analizando pueden afectar con muchísima fuerza a una la banda de colores que no sea el verde.
Se usan diferentes factores de ponderación W_{a}, W_{b}, W_{c} porque los efectos cromáticos debidos a la presencia de leucocitos pueden afectar de forma desigual a las tres bandas de color detectadas por los detectores del rojo, azul y verde, es decir, la presencia de leucocitos puede afectar a la señal de reflectancia generada por el detector del rojo con muchísima más fuerza con la que lo hace con la señal generada por el detector del azul. Los valores de los infrarrojos I_{1}e I_{2} en el factor F de corrección del color, los cuales casi no cambian en respuesta al cambio de color debido a la presencia de leucocitos, actúan como valores de corrección de error para compensar las ligeras variaciones de color debidas a ligeras desuniformidades de una almohadilla reactiva a otra y de un lote (fabricación) de reactivo a otro lote de reactivo.
La magnitud del coeficiente de intensidad L, definido arriba, se basa principalmente en la cantidad de luz azul recibida por el detector del azul. Esto se basa en el reconocimiento de que la magnitud de la luz azul emitida por la almohadilla reactiva 30 está con muchísima fuerza correlacionada con la claridad u oscuridad de la muestra de orina según se perciba de manera visual.
Un ejemplo de un juego de coeficientes que se pueden usar se expone a continuación:
[5]A = 5[R_{1} + 40(G_{1}/I_{1} - G_{2}/I_{2}) - [G_{1} + 64(G_{1}/I_{1} - G_{2}/I_{2})]
[6]B = 2[G_{1} + 64(G_{1}/I_{1} - G_{2}/I_{2}) - [B_{1} + 24(G_{1}/I_{1} - G_{2}/I_{2})]
[7]L = B_{1} + 24(G_{1}/I_{1} - G_{2}/I_{2})
Se pueden usar otras formulaciones para los coeficientes, en función del tipo de análisis, por ejemplo, el análisis de los leucocitos, durante el cual se tiene que determinar el color de la muestra del fluido corporal, y el tipo de almohadilla reactiva y tira reactiva que se usen.
Después de que los coeficientes de color A, B se han determinado en la etapa 306, se usan para asignar un color a la muestra de color en las etapas 308 a 356 de las figuras 7A a 7C. El color se asigna comparando los coeficientes de color A y B con varias gamas y umbrales predeterminados, los cuales se determinan de forma empírica durante la fase del diseño del espectroscopio 10, según se describe abajo.
Las gamas y los umbrales utilizados en las etapas 308 a 356 se determinan mediante inspección visual de un número relativamente grande de muestras de orina, por ejemplo, en exceso de 100, de muchos colores e intensidades diferentes tales como rojo, naranja, amarillo claro, amarillo oscuro, verde y azul, cuando las muestras se disponen dentro de probetas claras incoloras. Cuando se ha realizado la inspección visual de cada muestra y se le ha asignado un color a mano, basándose en la inspección visual, se llevan a cabo las etapas 302 a 306, descritas arriba, en la muestra de orina para calcular los dos coeficientes de color A y B.
Entonces, cada muestra de orina se representa, en una gráfica de codificación de colores, como la que se muestra en la figura 5, con el eje de las Y, representando la gama del coeficiente de color A, y el eje de las X, representando la gama del coeficiente de color B, por medio de un punto en la gráfica (el punto estando posicionado basándose en los coeficientes de color A y B de la muestra) y una designación de la determinación visual del color de la muestra de orina representada por el punto. Después de que todos los puntos para las muestras de orina se han ubicado, resultará evidente que los colores similares de las muestras de orina se agruparán juntos en diversas áreas, cuyos límites se pueden determinar visualmente. Por ejemplo, según se muestra en la figura 5, un área rectangular 400 representa el área en la que casi todas las muestras de orina verdes están ubicadas (basándose en sus coeficientes de color A y B).
Cuando se han determinado los límites, entonces se determinan las gamas y los umbrales de las etapas 308 a 356 para que a todas las muestras de orina, analizadas a continuación por medio del espectroscopio 10, se les asigne el color del área en la que la muestra esté ubicada en la gráfica de codificación de colores, basada en los coeficientes de color A, B de la muestra.
Con referencia a la figura 7A, en la etapa 308, si el coeficiente de color A es mayor de 35 y el coeficiente de color B es mayor de 30, el programa se ramifica a la etapa 310 donde el color naranja se asigna a la muestra de orina, estando la asignación de color almacenada en la RAM 204. Hay que hacer la observación de que la asignación del color es una asignación inicial que se podrá (o no se podrá) cambiar por medio de una etapa subsiguiente dentro del programa. Con referencia también a la figura 5, el análisis en la etapa 308 (A>35 y B>30) corresponde a un área rectangular en la gráfica de codificación de colores. Hay que hacer la observación de que esta área rectangular está, en parte, solapada por áreas designadas marrón y amarillo. Así, a una muestra de orina con coeficientes A y B que correspondan a una de estas áreas solapadas se le asignaría al principio el color naranja y luego esa asignación inicial se cambiaría subsiguientemente a marrón o amarillo.
Con referencia a la figura 7A, en la etapa 312, si el coeficiente B es mayor de 30 y la suma de los coeficientes A y B es menos de 87, el programa se ramifica a la etapa 314, donde a la muestra se le asigna el color marrón. En la etapa 316, si el coeficiente A es mayor de 56 y el coeficiente B se encuentra entre 20 y 30, el programa se ramifica a la etapa 318, donde a la muestra se le asigna el color naranja. En la etapa 320, si el coeficiente A se encuentra entre 45 y 56 y el coeficiente B está entre 20 y 30, el programa se ramifica a la etapa 322, donde a la muestra se les asigna el color marrón.
Con referencia a la figura 7B, en la etapa 324, si el coeficiente B es menos de 20 y el coeficiente A es mayor de 44,5 el programa se ramifica a la etapa 326 donde a la muestra se le asigna el color rojo. Si el coeficiente A, en la etapa 328, está entre 40 y 54 y el coeficiente B se encuentra entre 40 y 60, el programa se ramifica a la etapa 330, donde a la muestra se le asigna el color marrón. En la etapa 332, si el coeficiente B es menos de 20 y el coeficiente A se encuentra entre 17 y 44,5, el programa se ramifica a la etapa 334, donde a la muestra se le asigna el color amarillo. Si el coeficiente A, en la etapa 336, se encuentra entre 17 y 25 y el coeficiente B está entre 20 y 30, el programa se ramifica a la etapa 338 donde a la muestra se le asigna el color amarillo. Si el coeficiente A, en la etapa 340, está entre 17 y 35, el programa se ramifica a la etapa 342, donde a la muestra se le asigna el color amarillo. En la etapa 344, si el coeficiente A es menos de 52 y el coeficiente B es menos de 15, el programa se ramifica a la etapa 346, donde a la muestra se le asigna el color amarillo.
Con referencia a la figura 7C, en la etapa 348, si el coeficiente A es mayor de 44 y el coeficiente B es menos de 8, el programa se ramifica a la etapa 350, donde a la muestra se le asigna el color amarillo. En la etapa 352, si el coeficiente A está entre -22 y 17, el programa se ramifica a la etapa 354, donde a la muestra se le asigna el color verde. En la etapa 356, si el coeficiente A es menos de -22, el programa se ramifica a la etapa 357, donde a la muestra se le asigna el color azul.
Las etapas 358 a 364 se realizan para asignar una intensidad a la muestra de orina, basada en la magnitud del coeficiente de intensidad L determinado en la etapa 306 (figura 7A). En la etapa 358, si el coeficiente de la intensidad L es menos de 42, el programa se ramifica a la etapa 360 donde a la muestra se le asigna una intensidad oscura. En la etapa 362, si el coeficiente de la intensidad L es mayor de 49, el programa se ramifica a la etapa 360 donde a la muestra se el asigna una intensidad clara (si el coeficiente de intensidad L se encuentra entre 42 y 49, no se asigna intensidad alguna a la muestra ya que es de una intensidad media).
En la etapa 366, el color y la intensidad (si hubiere alguna) asignados a la muestra de orina, por ejemplo, amarillo claro o amarillo oscuro, se hacen salir, por ejemplo, generando un registro impreso del color y de la intensidad y/o visualizando el color y la intensidad en la pantalla de representación visual 16. Se debe comprender que la manera particular para asignar el color y la intensidad a las muestras de orina, que se han descrito arriba, no es crítica para esta invención, y que se pueden utilizar otras numerosas maneras.
Para los expertos en la técnica serán evidentes modificaciones y realizaciones alternativas de esta invención en vista de la descripción anterior. Esta descripción no se debe interpretar solo como ilustrativa, ya que es, para la finalidad de enseñar a los expertos en la técnica, el mejor modo para llevar a cabo esta invención. Los detalles de la estructura y del procedimiento se pueden variar de una forma substancial en la que el uso exclusivo de todas las modificaciones, que entran dentro del ámbito de las reivindicaciones adjuntas, queda reservado.

Claims (19)

1. Un aparato para analizar una muestra de fluido corporal dispuesta en una almohadilla reactiva, comprendiendo dicho aparato:
-
medios para iluminar dicha almohadilla reactiva en la que se ha dispuesto dicha muestra de fluido corporal;
-
medios para detectar luz recibida de dicha almohadilla reactiva mientras que dicha almohadilla reactiva se está iluminando, comprendiendo dichos medios para detectar la luz:
-
un primer medio para generar una primera señal de reflectancia (G_{1}) de un primer color, basada en dicha luz procedente de dicha almohadilla reactiva en un primer tiempo, teniendo una magnitud dicha señal de reflectancia (G_{1}),
-
un segundo medio para generar una segunda señal de reflectancia (R_{1}) en respuesta a la detección de luz de un segundo color de dicha almohadilla reactiva,
-
un tercer medio para generar una tercera señal de reflectancia (B_{1}) en respuesta a la detección de luz de un tercer color de dicha almohadilla reactiva,
caracterizado en que dicho aparato comprende además:
-
unos medios para generar una cuarta señal de reflectancia (G_{2}) de dicho primer color basada en dicha luz detectada de dicha almohadilla reactiva en un segundo tiempo mientras que dicha almohadilla reactiva se está iluminando, siendo dicho segundo tiempo subsiguiente a dicho primer tiempo, dicha cuarta señal de reflectancia (G_{2}) teniendo una magnitud, y
-
unos medios para asignar un color a dicha muestra de fluido corporal basado en dichas magnitudes de dichas primera, segunda, tercera y cuarta señales de reflectancia (G_{1}, R_{1}, B_{1}, G_{2}).
2. Un aparato según se define en la reivindicación 1, en el que dichos medios para detectar luz comprenden además medios para detectar luz en la banda de los infrarrojos para generar una primera señal de reflectancia infrarroja (I_{1}) en dicho primer tiempo, teniendo dicha señal de reflectancia infrarroja (I_{1}) una magnitud, y una segunda señal de reflectancia infrarroja (I_{2}), en dicho segundo tiempo, teniendo dicha segunda señal de reflectancia infrarroja (I_{2}) una magnitud.
3. Un aparato según se define en la reivindicación 2, en el que dicho medio para asignar color a dicha muestra de fluido corporal comprende:
-
unos medios para determinar primero y segundo coeficientes de color (A, B) con magnitudes basadas en magnitudes de dichas primera, segunda, tercera y cuarta señales de reflectancia (G_{1}, R_{1}, B_{1}, G_{2}) y dichas primera y segunda señales de reflectancia infrarrojas (I_{1}, I_{2}), y
-
unos medios para comparar dichas magnitudes de dichos primero y segundo coeficientes de color (A, B) con gamas y umbrales predeterminados.
4. Un aparato según se define en la reivindicación 3, en el que dichos medios para determinar primero y segundo coeficientes de color (A, B) comprenden:
-
unos medios para determinar un factor de corrección del color (F) con una magnitud basada en dichas magnitudes de dichas primera y cuarta señales de reflectancia (G_{1}, G_{2}) y dichas primera y segunda señales de reflectancia infrarrojas (I_{1}, I_{2}),
-
unos medios para asignar factores de ponderación (W_{A}, W_{B}, W_{C}) a dicho factor de corrección del color (F), y
-
unos medios para determinar dichos primero y segundo coeficientes de color (A, B) basados en dichas primera, segunda y tercera señales de reflectancia (G_{1}, R_{1}, B_{1}), dicho factor de corrección del color (F) y dichos factores de ponderación (W_{A}, W_{B}, W_{C}).
5. Un aparato según redefine en una de las reivindicaciones 1 a 4, en el que el aparato comprende además:
-
unos medios para determinar un coeficiente de intensidad (L) con una magnitud basada en dicha magnitud de dicha tercera señal de reflectancia (B_{1}).
6. Un aparato según se define en una de las reivindicaciones 1 a 5 en el que dichos medios para detectar luz procedente de dicha almohadilla reactiva comprenden un medio para generar dichas primera y cuarta señales de reflectancia (G_{1}, G_{2}) en respuesta a la luz verde procedente de dicha almohadilla reactiva.
7. Un aparato según se define en una de las reivindicaciones 1 a 6, en el que dichos medios para detectar luz procedente de dicha almohadilla reactiva comprenden medios para generar dicha segunda señal de reflectancia (R_{1}) en respuesta a la luz roja recibida de dicha almohadilla reactiva.
8. Un aparato según se define en una de las reivindicaciones 1 a 7, en el que dichos medios para detectar luz procedente de dicha almohadilla reactiva comprenden medios para generar dicha tercera señal de reflectancia (B_{1}) en respuesta a la luz azul procedente de dicha almohadilla reactiva.
9. Un aparato según se define en una de las reivindicaciones 4 a 8 en el que:
dichos medios para determinar dicho factor de corrección del color (F) comprenden:
-
unos medios para determinar un primer valor de corrección del color (G_{1}/I_{1}) basado en dicha magnitud de dicha primera señal de reflectancia (G_{1}),
-
unos medios para determinar un segundo valor de corrección del color (G_{2}/I_{2}) basado en dicha magnitud de dicha cuarta señal de reflectancia (G_{2}), y
-
unos medios para determinar la diferencia (G_{1}/I_{1}- G_{2}/I_{2}) entre dicho primer valor de corrección del color (G_{1}/I_{1}) y dicho segundo valor de corrección del color (G_{2}/I_{2}).
10. Un aparato según se define en la reivindicación 9, en el que dichos medios para determinar dicho primer valor de corrección del color (G_{1}/I_{1}) comprenden:
-
unos medios para dividir dicha magnitud de dicha primera señal de reflectancia (G_{1}) por dicha primera señal de reflectancia infrarroja (I_{1})
en el que dichos medios para determinar dicho segundo valor de corrección del color (G_{2}/I_{2}) comprenden medios para dividir dicha magnitud de dicha cuarta señal de reflectancia (G_{2}) por dicha segunda señal de reflectancia infrarroja (I_{2}).
11. Un aparato según se define en una de la reivindicaciones 1 a 10 en el que dicho fluido corporal es una muestra de orina.
12. Un procedimiento para analizar una muestra de fluido corporal dispuesta en una almohadilla reactiva, comprendiendo dicho procedimiento las etapas de:
(a)
iluminación de dicha almohadilla reactiva;
(b)
detección de luz recibida de dicha almohadilla reactiva en un primer tiempo;
(c1)
generación de una primera señal de reflectancia (G_{1}), de un primer color, basada en dicha luz detectada durante dicha etapa (b), teniendo dicha primera señal de reflectancia (G_{1}) una magnitud;
(c2)
generación de una segunda señal de reflectancia (R_{1}), de un segundo color, basada en dicha luz detectada durante dicha etapa (b), teniendo dicha segunda señal de reflectancia (R_{1}) una magnitud;
(c3)
generación de una tercera señal de reflectancia (B_{1}), de un tercer color, basada en dicha luz detectada durante dicha etapa (b), teniendo dicha tercera señal de reflectancia (B_{1}) una magnitud;
(d)
detección de luz recibida de dicha almohadilla reactiva en un segundo tiempo subsiguiente a dicho primer tiempo;
(e)
generación de una cuarta señal de reflectancia (G_{2}) basada en dicha luz detectada durante dicha etapa (d), teniendo dicha cuarta señal de reflectancia (G_{2}) una magnitud, y
(f)
asignación de un color a dicha muestra de fluido corporal basado en dichas magnitudes de dichas primera, segunda, tercera y cuarta señales de reflectancia (G_{1}, R_{1}, B_{1}, G_{2}).
13. Un procedimiento según se define en la reivindicación 12, en el que dicho procedimiento comprende además las etapas de:
(c4)
generación de una primera señal de reflectancia infrarroja (I_{1}) basada en dicha luz detectada durante dicha etapa (b), teniendo dicha primera señal de reflectancia infrarroja (I_{1}) una magnitud;
\newpage
(e1)
generación de una segunda señal de reflectancia infrarroja (I_{2}) basada en dicha luz detectada durante dicha etapa (d), teniendo dicha segunda señal de reflectancia infrarroja (I_{2}) una magnitud;
14. Un procedimiento según se define en la reivindicación 13, en el que dicha etapa (f) comprende las etapas de:
(f1)
determinación de un primero y un segundo coeficientes del color (A, B) con magnitudes basadas en dichas magnitudes de dichas primera, segunda, tercera y cuarta señales de reflectancia (G_{1}, R_{1}, B_{1}, G_{2}) y dichas primera y segunda señales de reflectancia infrarrojas (I_{1}, I_{2}), y
(f2)
comparación de dichas magnitudes del primero y segundo coeficientes del color (A, B) con gamas y umbrales predeterminados.
15. Un procedimiento según se define en las reivindicaciones 13 y 14, en el que dicha etapa (f1) comprende las etapas de:
(f11)
determinación del factor de corrección del color (F) con una magnitud basada en dichas magnitudes de dichas primera y cuarta señales de reflectancia (G_{1}, G_{2}) y dichas primera y segunda señales de reflectancia infrarrojas (I_{1}, I_{2});
(f12)
asignación de factores de ponderación (W_{A}, W_{B}, W_{C}) a dicho factor de corrección del color (F); y
(f13)
determinación de dichos primero y segundo coeficientes del color (A, B) basados en dichas primera, segunda y tercera señales de reflectancia (G_{1}, R_{1}, B_{1}), dicho factor de corrección del color (F) y dichos factores de ponderación (W_{A}, W_{B}, W_{C}).
16. Un procedimiento según se define en una de las reivindicaciones 12 a 15, en el que dicho procedimiento comprende además la etapa de:
(g)
determinación de un coeficiente de intensidad (L) con una magnitud basada en dicha magnitud de dicha tercera señal de reflectancia (B_{1}).
17. Un procedimiento según se define en una de las reivindicaciones 12 a 16, en el que la primera y la cuarta señales de reflectancia (G_{1}, G_{2}) se generan en respuesta a la luz verde recibida de dicha almohadilla reactiva.
18. Un procedimiento según se define en una de las reivindicaciones 12 a 17, en el que la segunda señal de reflectancia (R_{1}) se genera en respuesta a una luz roja recibida de dicha almohadilla reactiva.
19. Un procedimiento según se define en una de las reivindicaciones 12 a 18, en el que la tercera señal de reflectancia (B_{1}) se genera en respuesta a una luz azul recibida de dicha almohadilla reactiva.
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