ES2208641T3 - Polipeptidos con actividad de receptor serotoninergico (5-ht5a), acidos nucleicos que codifican para estos polipeptidos y usos de los mismos. - Google Patents
Polipeptidos con actividad de receptor serotoninergico (5-ht5a), acidos nucleicos que codifican para estos polipeptidos y usos de los mismos.Info
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Abstract
LA PRESENTE INVNCION SE REFIERE A NUEVOS POLIPEPTIDOS LLAMADOS 5HT5A QUE TIENEN UNA ACTIVIDAD DE RECEPTOR SEROTONINERGICO, EL MATERIAL GENETICO QUE PERMITE SU EXPRESION, CUALQUIER CELULA RECOMBINANTE QUE EXPRESE ESTOS POLIPEPTIDOS, Y SU UTILIZACION.
Description
Polipéptidos con actividad de receptor
serotoninérgico (5-HT5a), ácidos nucleicos que
codifican para estos polipéptidos y usos de los mismos.
La presente invención trata de nuevos
polipéptidos y del material genético que permite su expresión. Más
particularmente, trata de nuevos polipéptidos con una actividad de
receptor serotoninérgico.
La serotonina es un neuromodulador capaz de
inducir y modular una amplia variedad de comportamientos, tales como
el sueño, el apetito, la locomoción, la actividad sexual o incluso
la contracción vascular. Se admite que la actividad de la
serotonina está mediada por su interacción con los receptores,
denominados receptores serotoninérgicos o receptores
5-HT (para 5-hidroxitriptamina).
Estudios de biología molecular, así como estudios farmacológicos,
han revelado que existía un gran número de subtipos de receptores
5-HT. Los receptores 5-HT que se han
descrito hasta hoy pertenecen bien a la familia de los receptores
unidos a canales iónicos (receptores 5-HT3) o bien
a la familia de los receptores que interactúan con proteínas G y
que poseen siete dominios transmembrana. Además, el análisis de las
secuencias de aminoácidos a mostrado que los receptores
5-HT que interactúan con proteínas G pueden
subdividirse en dos grupos distintos: los receptores
5-HT1, que comprenden los subtipos mamíferos
5-HT1A, 5-HT1B y
5-HT1D, así como tres receptores
5-HT de drosofila; y los receptores
5-HT2, que comprenden los subtipos
5-HT2 y 5-HT1C.
Estos receptores no son, sin duda, los únicos
receptores 5-HT existentes, en la medida en que
estudios farmacológicos han revelado otros subtipos tales como los
receptores 5-HT4, así como ciertos receptores
similares al subtipo 5-HT1(receptores
"5-HT1 like"). Además, estudios complementarios
de biología molecular han revelado igualmente heterogeneidades en
el seno de los subtipos 5-HT1B/1D.
La presente invención es el resultado de la
puesta en evidencia de nuevos polipéptidos con una actividad de
receptor serotoninérgico. A pesar de que pertenecen a la familia de
los receptores que interactúan con proteínas G, estos nuevos
polipéptidos difieren de los receptores serotoninérgicos ya
descritos (5-HT1, 5-HT2,
5-HT3 y 5-HT4) tanto desde el punto
de vista estructural como desde el punto de vista farmacológico.
Más particularmente, la invención resulta del aislamiento y la
caracterización de estos nuevos polipéptidos, denominados
5-HT5a, así como del material genético que permite
su expresión o su identificación.
Un primer objeto de la invención reside por tanto
en los polipéptidos 5-HT5a que comprenden la
secuencia SEC ID nº1; la invención trata igualmente de los péptidos
5-HT5a que comprenden la secuencia SEC ID nº7, que
corresponde al receptor humano.
Preferiblemente, los polipéptidos de la invención
son polipéptidos que poseen la capacidad de unir la serotonina. Aún
mas preferiblemente, se trata de polipéptidos con una actividad de
receptor serotoninérgico. Siempre según un modo preferible, los
polipéptidos de la invención son susceptibles de ser reconocidos por
los anticuerpos que reconocen la secuencia peptídica SEC ID nº1
completa.
Como se indica en los ejemplos, el polipéptido
5-HT5a puede expresarse en diferentes tipos
celulares para formar un receptor serotoninérgico funcional.
Los polipéptidos de la invención pueden obtenerse
por expresión, en un hospedador celular, de una secuencia
nucleotídica como la descrita a continuación, mediante síntesis
química, sobre la base de la secuencia SEC ID nº1, usando técnicas
conocidas por el experto en la materia o mediante una combinación de
estas técnicas.
En lo sucesivo, los polipéptidos de la invención
como los definidos anteriormente se designan como polipéptidos
5-HT5a.
La presente invención tiene igualmente por objeto
cualquier secuencia nucleotídica que codifique para un polipéptido
5-HT5a. Más preferiblemente, se trata de una
secuencia elegida entre:
- (a)
- la secuencia nucleotídica SEC ID nº1 o su hebra complementaria
- (b)
- cualquier secuencia que hibride con una secuencia (a) y que codifique para un polipéptido como el definido anteriormente, y
- (c)
- las secuencias derivadas de las secuencias (a) y (b) debidas a la degeneración del código genético.
Según un modo de realización particular, la
invención tiene por objeto una secuencia nucleotídica que comprende
la secuencia SEC ID nº7.
Las diferentes secuencias nucleotídicas de la
invención pueden ser o no de origen artificial. Puede tratarse de
secuencias genómicas, de ADNc, de ARN, de secuencias híbridas o de
secuencias sintéticas o semisintéticas. Estas secuencias pueden
obtenerse, por ejemplo, mediante el cribado de bancos de ADN (banco
de ADNc, banco de ADN genómico) por medio de sondas elaboradas sobre
la base de la secuencia SEC ID nº1. Dichos bancos pueden prepararse
a partir de células de diferentes orígenes, mediante las técnicas
clásicas de biología molecular conocidas por el experto en la
materia. Las secuencias nucleotídicas de la invención pueden
prepararse igualmente mediante síntesis química, particularmente
según el procedimiento del fosforamidito, o incluso mediante
procedimientos mixtos que incluyen la modificación química o
enzimática de secuencias obtenidas mediante el cribado de
bancos.
Las secuencias nucleotídicas de la invención
pueden usarse para la producción de polipéptidos
5-HT5a como los definidos anteriormente. En este
caso, la parte que codifica para dicho polipéptido se sitúa
generalmente bajo el control de señales que permiten su expresión en
un hospedador celular. La elección de estas señales (promotores,
terminadores, etc.) puede variar en función del hospedador celular
usado. A este efecto, las secuencias nucleotídicas de la invención
pueden formar parte de un vector, que puede ser de replicación
autónoma o integrativa. Más particularmente, los vectores de
replicación autónoma pueden prepararse usando secuencias de
replicación autónoma en el hospedador elegido. Si se trata de
vectores integrativos, pueden prepararse, por ejemplo, usando
secuencias homólogas en ciertas regiones del genoma del hospedador,
permitiendo, mediante recombinación homóloga, la integración del
vector. Los hospedadores celulares usables para la producción de los
polipéptidos 5-HT5a de la invención por vía
recombinante son tanto los hospedadores eucariotas como los
procariotas. Entre los hospedadores eucariotas adecuados pueden
citarse las células animales, las levaduras o los hongos. En
particular, si se trata de levaduras, pueden citarse las levaduras
del género Saccharomyces, Kluyveromyces, Pichia,
Schwanniomyces o Hansenula. Si se trata de células
animales, pueden citarse las células COS, CHO, C127,
NIH-3T3, etc.. Entre los hongos pueden citarse más
particularmente Aspergillus sps. o Trichoderma sps..
Como hospedadores procariotas se prefiere usar las siguientes
bacterias: E. coli, Bacillus o Streptomyces.
Las secuencias nucleotídicas de la presente
invención son igualmente usables en el ámbito farmacéutico, bien
para la elaboración de secuencias antisentido usables en el marco
de una terapia génica, o bien para la elaboración de sondas que
permitan la detección, mediante experimentos de hibridación, de la
expresión de receptores serotoninérgicos en muestras biológicas, y
para poner en evidencia anomalías genéticas (polimorfismo,
mutaciones) o expresiones aberrantes.
La inhibición de la expresión de ciertos genes
por los oligonucleótidos antisentido han demostrado ser una
estrategia prometedora en el control de la actividad de un gen. Los
oligonucleótidos antisentido son oligonucleótidos de pequeño tamaño,
complementarios de la hebra que codifica para un gen dado, y por
tanto capaces de hibridar específicamente con el ARNm transcrito,
inhibiendo su traducción en proteína. La invención tiene así por
objeto los oligonucleótidos antisentido capaces de inhibir al menos
parcialmente la producción de polipéptidos 5-HT5a
como los definidos anteriormente. Dichos oligonucleótidos pueden
estar constituidos por las secuencias nucleotídicas definidas
previamente.
Como se indica anteriormente, la invención
permite igualmente la elaboración de sondas nucleotídicas,
sintéticas o no sintéticas, capaces de hibridar con las secuencias
nucleotídicas definidas previamente que codifican para los
polipéptidos 5-HT5a de la invención, o con los ARNm
correspondientes. Dichas sondas pueden usarse in vitro como
herramienta de diagnóstico, para la detección de la expresión de un
receptor serotoninérgico 5-HT5a, e incluso para
poner en evidencia anomalías genéticas (mal corte y empalme,
polimorfismo, mutaciones puntuales, etc.). Teniendo en cuenta las
múltiples actividades de la serotonina, las sondas de la invención
pueden permitir también identificar afecciones neurológicas,
cardiovasculares o psiquiátricas que estén relacionadas con los
receptores 5-HT5a. Estas sondas pueden usarse
igualmente para poner en evidencia y aislar secuencias de ácidos
nucleicos homólogas que codifican para los polipéptidos
5-HT5a, como las definidas anteriormente, a partir
de otras fuentes celulares, y preferiblemente de células de origen
humano, tal y como se ilustra en los ejemplos. Las sondas de la
invención comprenden generalmente al menos 10 bases, y pueden
comprender hasta la totalidad de la secuencia SEC ID nº1 o SEC ID
nº7, o de su hebra complementaria. Preferiblemente, estas sondas se
marcan antes de su usación. Para ello pueden emplearse diferentes
técnicas conocidas por el experto en la materia (marcaje
radioactivo, enzimático, etc.). Las condiciones de hibridación en
las que pueden usarse estas sondas se indican en las técnicas
generales de clonaje, a continuación, así como en los ejemplos, a
continuación.
Otro objeto de la invención trata de las células
recombinadas capaces de expresar en su superficie un polipéptido
5-HT5a como el definido anteriormente. Estas células
pueden obtenerse mediante la introducción de una secuencia
nucleotídica como la definida anteriormente que codifique para un
polipéptido de la invención, y después, cultivar dichas células en
las condiciones de expresión de dicha secuencia.
Las células recombinadas según la invención
pueden ser tanto células eucariotas como procariotas. Entre las
células eucariotas adecuadas pueden citarse las células animales,
las levaduras o los hongos. En particular, si se trata de levaduras,
pueden citarse las levaduras del género Saccharomyces,
Kluyveromyces, Pichia, Schwanniomyces o Hansenula. Si se
trata de células animales, pueden citarse las células COS, CHO,
C127, NIH-3T3, etc.. Entre los hongos pueden citarse
más particularmente Aspergillus sps. o Trichoderma
sps.. Como células procariotas se prefiere usar las siguientes
bacterias: E. coli, Bacillus o Streptomyces. Las
células así obtenidas pueden usarse para medir la capacidad de
diferentes moléculas de comportarse como ligando o como modulador de
la actividad de los polipéptidos de la invención. Más
particularmente, también pueden usarse en un procedimiento para
poner en evidencia y aislar ligandos o moduladores de la actividad
de los polipéptidos de la invención, y más preferiblemente, de
agonistas y antagonistas de la serotonina.
Otro objeto de la invención trata por tanto de un
procedimiento para poner en evidencia y/o aislar ligandos de
polipéptidos 5-HT5a de la invención, según el cual
se realizan las siguientes etapas:
- -
- se pone en contacto una molécula o una mezcla que contiene diferentes moléculas, eventualmente no identificadas, con una célula recombinada como la descrita anteriormente, que exprese en su superficie un polipéptido de la invención en unas condiciones que permitan la interacción entre dicho polipéptido de la invención y dicha molécula, en el caso de que ésta poseyera una afinidad por dicho polipéptido, y,
- -
- se detectan y/o aíslan las moléculas unidas a dicho polipéptido de la invención.
En un modo particular, este procedimiento de la
invención se adapta para poner en evidencia y/o aislar agonistas y
antagonistas de la serotonina para los polipéptidos
5-HT5a.
Otro objeto de la invención trata de un
procedimiento para poner en evidencia y/o aislar moduladores de los
polipéptidos 5-HT5a de la invención, según el cual
se realizan las siguientes etapas:
- -
- se pone en contacto una molécula o una mezcla que contiene diferentes moléculas, eventualmente no identificadas, con un célula recombinada como la descrita anteriormente, que exprese en su superficie un polipéptido de la invención, en presencia de 5-HT, en unas condiciones que permitan la interacción entre dicho polipéptido de la invención y dicha 5-HT, y,
- -
- se detectan y/o aíslan las moléculas capaces de modular la actividad de la 5- HT sobre dicho polipéptido de la invención.
Otras ventajas de la presente invención
aparecerán con la lectura de los ejemplos que siguen, que deben ser
considerados como ilustrativos y no limitativos.
SEC ID nº1: secuencias nucleotídica y peptídica
del receptor 5-HT5a. El ADNc de 4 kb se ha
secuenciado sobre las dos hebras desde el sitio EcoRi hasta la
posición 1685. Los 2300 nucleótidos restantes no han sido
secuenciados, con excepción del extremo 3' que contiene la cola
poliA.
Figura 2: porcentajes de homología de la
secuencia peptídica entre el receptor 5-HT5a SEC ID
nº1 y otros receptores de la familia de los receptores acoplados a
proteínas G. las homologías se han calculado sobre las secuencias
conservadas: el dominio transmembrana y sus bucles de conexión.
Figura 3: curva de saturación de
[^{125}I]-LSD en las membranas de células
Cos-7 que expresan el receptor
5-HT5a. Las membranas se han incubado con
concentraciones de ligando que varían desde 50 pM hasta 1,25 nM, con
o sin 10 \muM de 5-HT. Se representa la unión
específica. La inserción representa el análisis de Scatchard de los
resultados.
Figura 4: puesta en evidencia de la secuencias
homólogas: (a) mediante transferencia Northern sobre los ARNm poliA
(5 \mug) de diferentes tejidos; (b) mediante PCR sobre los ARN
totales (1 \mug) de diferentes tejidos.
Tabla 1: perfil farmacológico del receptor
5-HT5a. Los resultados corresponden a experimentos
de competición por la unión de [^{125}I]-LSD, bien
en membranas de células Cos-7 que expresan el
receptor 5-HT5a de forma transitoria, o bien en
membranas de células NS4 que expresan el receptor
5-HT5a de forma estable. Los valores de IC_{50}
(correspondientes a la concentración de ligando necesaria para
desplazar el 50% del [^{125}I]-LSD unido) se han
calculado experimentalmente y se han convertido en K_{i} según la
siguiente ecuación: K_{i} = IC_{50} / (1 + C/K_{d}), en la que
C es la concentración de [^{125}I]-LSD y K_{d}
es la constante de disociación del [^{125}I]-LSD
(308 pM). Los números entre paréntesis corresponden al número de
experimentos independientes realizados, estando cada punto realizado
por
triplicado.
triplicado.
Los procedimientos clásicos usados en biología
molecular, como las extracciones preparativas de ADN plasmídico, la
centrifugación de ADN plasmídico en gradiente de cloruro de cesio,
la electroforesis sobre gel de agarosa o de acrilamida, la
purificación de fragmentos de ADN mediante electroelución, las
extracciones de proteínas con fenol o
fenol-cloroformo, la precipitación de ADN en medio
salino con etanol o isopropanol, la transformación en Escherichia
coli, etc., son bien conocidos por el experto en la materia, y
están abundantemente descritas en la bibliogrfía [Maniatis, T. y
col., "Molecular Cloning, a Laboratory Manual", Cold Spring
Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N. Y., 1982; Ausubel, F. M. Y
col., (eds), "Current Protocols in Molecular Biology", John
Wiley & Sons, Nueva York, 1987].
Las enzimas de restricción han sido
proporcionadas por New England Biolabs (Biolabs), Bethesda Research
Laboratories (BRL) o Amersham, y se usan según las recomendaciones
del proveedor.
Para las uniones se separan los fragmentos de ADN
según su tamaño mediante electroforesis en gel de agarosa o
acrilamida, se extraen con fenol o con una mezcla fenol/cloroformo,
se precipitan con etanol y después se incuban en presencia de ADN
ligasa del pliegue T4 (Biolabs) según las recomendaciones del
proveedor.
El relleno de los extremos 5' prominentes se
realiza mediante el fragmento de Klenow de la ADN polimerasa I de
E. coli (Biolabs), según las especificaciones del proveedor.
La destrucción de los extremos 3' prominentes se realiza en
presencia de la ADN polimerasa del fago T4 (Biolabs) usado según las
recomendaciones del fabricante. La destrucción de los extremos 5'
prominentes se realiza mediante un tratamiento facilitado por la
nucleasa S1.
La mutagénesis dirigida in vitro por
oligodesoxinucleótidos sintéticos se realiza según el procedimiento
desarrollado por Taylor y col. [Nucleic Acids Res. 13 (1985),
8749-8764] usando el equipo distribuido por
Amersham.
La amplificación enzimática de los fragmentos de
ADN mediante la técnica denominada de PCR
[Polimerase-catalyzed Chain
Reaction, Saiki, R. K. Y col., Science 230 (1985),
1350-1354; Mullis, K. B. y Faloona, F. A., Meth.
Enzym. 155 (1987), 335-350] se realiza usando
un "DNA thermal cycler" (ciclador térmico de ADN) (Parkin Elmer
Cetus) según las especificaciones del fabricante.
La verificación de las secuencias nucleotídicas
se realiza por el procedimiento desarrollado por Sanger y col.
[Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU., 74 (1977),
5463-5467] usando el equipo distribuido por
Amersham.
Para los experimentos de hibridación, las
condiciones de astringencia normales son generalmente las
siguientes: hibridación: 3 x SCC en presencia de 5 x Denhart's a
65ºC; lavado: 0,5 x SSC a 65ºC.
Las comparaciones de las secuencias entre los
diferentes receptores serotoninérgicos conocidos hacen aparecer una
cierta conservación, particularmente en ciertas regiones
transmembrana potenciales como los dominios III y IV. Con el objeto
de poner en evidencia y de aislar un nuevo receptor, se han
preparado tres oligonucleótidos degenerados correspondientes a estas
regiones, y después se han usado en una serie de reacciones de PCR
sobre una preparación de ARN de cerebro de rata. La secuencia de los
oligonucleótidos degenerados (i)-(iii) se da en las secuencias SEC
ID nº2-4.
Las reacciones de PCR se han realizado de la
forma siguiente: se han sometido 5 \mug de ARN de cerebro de rata
adulta a una reacción de transcripción inversa en presencia de 500
ng de oligonucleótido (i) y de 200 unidades de transcriptasa inversa
MMLV (BRL). La mitad del producto de esta reacción se ha sometido a
continuación a 30 ciclos de amplificación en presencia de 5 unidades
de polimerasa Taq (Cetus) y de 1 \mug de oligonucleótido (i) y de
oligonucleótido (ii). Un veinteavo del producto de esta reacción se
ha sometido a continuación a 30 ciclos de amplificación
suplementarios en presencia de los oligonucleótidos (i) y (iii). Los
productos así obtenidos han sido digeridos con las enzimas BamHI e
HindIII, insertados en los sitios correspondientes del plásmido
Bluescript (Estratagema) y secuenciados. Uno de los fragmentos así
obtenidos, que presenta una cierta homología con los receptores
serotoninérgicos, se ha marcado mediante "random priming"
(cebado aleatorio) (Feinberg y Vogelstein, Analytical Biochemistry
132 (1984), 6) y se ha usado como sonda para cribar una banco
de ADNc de cerebro de rata construido en el fago UniZap
(Estratagema). Entre los fagos positivos obtenidos, uno de ellos,
denominado \lambdaNS y portado por el plásmido pNS, contenía un
inserto de 4 kb. Este fago se ha aislado, y su inserto se ha
introducido a continuación en el plásmido Bluescript. La secuencia
de este fragmento se ha determinado sobre aproximadamente 1,6 kb
sobre las 2 hebras usando la técnica de los didesoxinucleótidos por
medio de los oligonucleótidos sintéticos.
La secuencia así obtenida se presenta sobre la
secuencia SEC ID nº1. Ésta muestra que el ADNc aislado porta una
fase de lectura abierta de 357 aminoácidos. Además, el análisis de
hidrofobicidad muestra que esta proteína porta siete dominios
hidrófobos, una particularidad reencontrada entre los miembros de la
familia de los receptores acoplados a proteínas G. El extremo
N-terminal contiene además 2 sitios de
N-glucosilación, y el presunto dominio citoplásmico
contiene los sitios consenso de fosforilación por las proteíncinasas
C y A.
La secuencia del receptor 5-HT5a
aislado anteriormente se ha comparado con las secuencias de los
siguientes receptores acoplados a proteínas G:
5-HT1B, 5-HT1D,
5-HT1A, 5-HT-dro2A,
5-Ht-dro1, \alpha2, D2, \beta1,
D1, H2, 5-HT1C y 5-HT2. Estos
experimentos han revelado una cierta homología en el dominio
transmembrana potencial y en ciertos bucles, pero no en las regiones
terminales ni en el tercer bucle citoplásmico. La figura 2 da los %
de homología a nivel de las regiones conservadas.
Como se desprende de esta figura, la homología
con los receptores conocidos es débil, habiendo obtenido el mejor
resultado con el receptor serotoninérgico de drosofila
HT-dro2A (37% de homología).
El fragmento de ADNc aislado en el ejemplo 1 se
ha insertado en un vector de expresión eucariota, que se ha usado
para transfectar las células Cos-7. Las membranas de
las células transfectadas obtenidas se preparan y se ensayan a
continuación para comprobar su capacidad de unir ciertos ligandos
serotoninérgicos marcados.
\newpage
El ADNc de 4 kb que codifica para el receptor
5-HT5a se ha aislado a partir del plásmido pNS en
forma de un fragmento EcoRI-Xhoi, y después se ha
insertado en los sitios correspondientes del vector p513. El vector
p513 deriva del vector pSG5 [Green y col., Nucl. Acids Res.
16 (1988), 369] mediante la adición de un multisitio de
clonaje. El vector recombinante así obtenido, denominado p513NS, se
ha usado a continuación (20 \mug por placa de 10 cm) para
transfectar las células Cos-7 en presencia de
fosfato cálcico.
48 horas después de la transfección, las células
recombinantes se recogen, y las membranas se preparan según la
técnica descrita por Amlaiky y Caron [J. Biol. Chem. 260
(1985), 1983]. A continuación se han realizado experiencias de unión
a saturación y de competición sobre estas membranas en presencia de
los siguientes ligandos radiomarcados:
[^{125}I]-LSD;
[^{125}I]-cianopindolol;
[^{3}H]-8-OH-DPAT
y [^{3}H]-espiperona. Para ello se han incubado
las muestras de membrana (10-20 \mug de proteínas)
10 minutos a 37ºC en presencia del ligando, en un volumen final de
250 \mul de tampón Tris-HCl 50 mM (pH 7,4).
Después se ha parado la reacción mediante filtración a vacío sobre
filtros de fibra de vidrio Whatman GF/C, y se ha enjuagado 4 veces
con 4 ml de tampón Tris-HCl 50 mM (pH 7,4). La unión
no específica se ha determinado en presencia de 5-HT
10 \muM. La radioactividad se ha medido con un contador
\gamma.
Los resultados obtenidos muestran que aunque el
[^{125}I]-cianopindolol, el
[^{3}H]-8-OH-DPAT
y la [^{3}H]-espiperona no unen las membranas
preparadas, el [^{125}I]-LSD presenta un sitio de
unión saturable con una K_{d} = 340 pM y una B_{máx} = 1,6
pmol/mg de proteínas membranales (figura 3). En un experimento
controlado, se ha mostrado además que el
[^{125}I]-LSD no une las células
Cos-7 transfectadas por el plásmido p513.
Para determinar el perfil farmacológico de este
receptor, el [^{125}I]-LSD unido a las membranas
se ha desplazado en presencia de diferentes fármacos
serotoninérgicos (tabla 1). Estos diferentes fármacos muestran el
siguiente orden de eficacia de desplazamiento:
2-bromo-LSD > ergotamina >
5-CT > metisergida > 5-HT =
RU24969 > bufotenina > yohimbina =
8-OH-DPAT (tabla 1). La ketanserina,
el (\pm) pindolol, el sumatriptán, la dopamina y la norepinefrina
son inactivas.
El ADNc clonado en el ejemplo 1 ha sido
igualmente expresado por las células NIH-3T3, que no
expresan ningún receptor serotoninérgico de forma endógena. Para
ello, se ha usado el vector de expresión recombinante descrito en 3,
anteriormente. Se ha introducido (20 \mug por placa de 10 cm) en
las células NIH-3T3 mediante transfección en
presencia de fosfato cálcico, al mismo tiempo que el vector pRSVneo
[Goman y col., Science 221 (1983), 551], que porta el gen de
resistencia G418 (1 \mug por placa de 10 cm). Los clones
transformantes se han seleccionado en presencia de 0,5 mg de G418. A
continuación se han amplificado los clones aislados, y los ARN
totales de estos clones se han preparado y analizado mediante
transferencia Northern para comprobar la expresión del ARNm del
5-HT5a. Así, se han seleccionado 2 clones, NS1 y
NS4, que expresan respectivamente niveles elevados y débiles de ARNm
del 5-HT5a.
Las membranas de las células de estos clones se
han preparado y ensayado a continuación en las condiciones descritas
anteriormente para comprobar su capacidad de unir ciertos ligandos
serotoninérgicos marcados, y para determinar la afinidad de los
receptores por dichos ligandos.
Los resultados obtenidos muestran que las
membranas de estos 2 clones poseen unos sitios de unión de alta
afinidad para el [^{125}I]-LSD, lo que indica que
estos 2 clones expresan los receptores 5-HT5a. Un
experimento control ha mostrado, en efecto, que las células
NIH-3T3 no transfectadas eran incapaces de unir el
[^{125}I]-LSD. A continuación se han realizado
diferentes experimentos de desplazamiento (tabla 1). En el caso del
5-HT, del 5-CT, del sumatriptán y
del 8-OH-DPAT, las curvas de
competición obtenidas eran bifásicas, y un análisis de los
resultados ha revelado 2 componentes de unión, uno con una afinidad
elevada y otro con una afinidad más débil.
La secuencia nucleotídica SEC ID nº1 se ha usado
a continuación para poner en evidencia secuencias homólogas a partir
de otros tejidos. Para ello se han usado tres técnicas:
- la hibridación mediante transferencia
Northern
- la PCR
- la hibridación in situ
Los tejidos usados para la búsqueda de secuencias
homólogas son los siguientes, de origen marino: cerebro, cerebelo,
riñón, hígado, médula espinal, bazo, pulmón y corazón.
A partir de los tejidos indicados anteriormente
se han preparado los ARNm-poliA según la técnica
descrita por Cathala y col.(DNA 2(4) (1983)), seguida
del paso sobre una columna de
oligo(dT)-celulosa. Estos ARNm se han
fraccionado a continuación sobre gel de
agarosa-formaldehído al 1%, y después se han
transferido sobre un filtro de nitrocelulosa. La sonda usada para la
hibridación corresponde al fragmento EcoRI-Xhoi de 4
kb completo, descrito en el ejemplo 1 (SEC ID nº1), previamente
marcado con ^{32}P mediante "random priming" (cebado
aleatorio). La hibridación se ha realizado en condiciones de
astringencia elevadas: 42ºC, en un tampón de fosfato sódico 20 mM
(pH 6,5) que contiene un 50% de formamida, 5 x SSC, 1 x Denhardt's,
0,1% de SDS y 100 \mug/ml de ARNt. los lavados se han realizado a
60ºC en un tampón 0,1 x SSC, 0,1% x SDS.
Este estudio ha permitido poner en evidencia tres
transcritos homólogos en el cerebro y el cerebelo, de 5,8 kb, 5 kb y
4,5 kb (figura 4a).
Para la búsqueda mediante PCR se han usado las
sondas (iv) SEC ID nº5 y (v) SEC ID nº6.
La sonda (iv) corresponde a la posición 1351
sobre la secuencia SEC ID nº1, y la sonda (v) a la posición 947.
Los ARN totales se han preparado a partir de
diferentes tejidos estudiados usando la técnica descrita por Cathala
y col. citada anteriormente. Se ha sometido 1 \mug de estos ARN a
una transcripción inversa en presencia de 200 unidades de
transcriptasa inversa MMLV y de 300 ng de la sonda (iv), durante 1
hora a 37ºC. A continuación se ha amplificado la mitad del producto
de esta reacción (30 ciclos) en presencia de 5 unidades de
polimerasa Taq (Cetus) y de 500 ng de las sondas (iv) y (v). También
se ha tomado una alícuota de esta reacción tras 20 ciclos de
amplificación. Los productos así obtenidos se han transferido a
continuación sobre filtros de nitrocelulosa y se han hibridado en
las condiciones descritas anteriormente en 5.1.
Este estudio ha permitido poner en evidencia
fragmentos de ADN específicos homólogos en la médula espinal y el
cerebro (figura 4b).
Los experimentos de hibridación in situ se
han realizado sobre secciones criostatizadas de cerebro de rata
adulta (de alrededor de 8 semanas) según la técnica descrita por
Hafen y col. [EMBO J. 2 (1983), 617]. La sonda usada para
estos experimentos es una hebra de ARN simple obtenida por
transcripción en presencia de polimerasa T7, de
[^{35}S]-CTP, usando el plásmido pNS como
matriz.
Este estudio ha permitido poner en evidencia las
secuencias homólogas según la invención en la corteza cerebral, el
hipocampo y la capa granular del cerebelo y en el bulbo
olfatorio.
Según la metodología descrita anteriormente en 5,
se ha clonado el receptor 5-HT5a humano.
Para ello se ha preparado un banco de ADN
genómico humano a partir de placenta mediante digestión parcial por
la enzima Mbol, separación en gradiente de sales y subclonaje en el
vector Lamda GEM 12 linealizado para BamHi (hospedador bacteriano:
TAP 90).
El banco así obtenido se ha cribado a
continuación por medio de la sonda descrita en el ejemplo 5.1. Los
fragmentos de ADN que hibridan con esta sonda se han aislado, se han
subclonado en un plásmido Bluescript, se han amplificado y después
secuenciado en los dos sentidos según la técnica del
didesoxinucleótido. La amplificación se ha realizado mediante la
técnica de PCR: 20 ciclos en presencia de polimerasa Thermus
acuaticus (2,5 unidades; Cetus) y de oligonucleótidos 1 (SEC ID
nº8), 2 (SEC ID nº9) por la parte A del receptor más arriba del
intrón, de oligonucleótidos 3 (SEC ID nº10), 4 (SEC ID nº11) por la
parte B del receptor más abajo del intrón. El fragmento A ha sido
digerido por las enzimas Notl y Xhol, y el fragmento B por las
enzimas EcoRI y Xhol. Estos fragmentos se han subclonado en un
vector de expresión P514.
La secuencia obtenida se presenta sobre la
secuencia SEC ID nº7.
Se entiende que pueden repetirse los mismos
experimentos usando otros tejidos, y especialmente tejidos de origen
humano, y otras sondas. Además, las secuencias homólogas puestas en
evidencia durante estos experimento pueden, evidentemente, ser
aisladas a continuación y/o amplificadas mediante las técnicas
clásicas de biología molecular.
(1) INFORMACIÓN GENERAL
\vskip0.666000\baselineskip
- (i)
- DEPOSITANTE:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE: RHONE-POULENC RORER, S.A.
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- CALLE: 20, avenue Raymond ARON
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- CIUDAD: ANTONY
\vskip0.333000\baselineskip
- (D)
- PAÍS: FRANCIA
\vskip0.333000\baselineskip
- (E)
- CÓDIGO POSTAL: 92165
\vskip0.666000\baselineskip
- (ii)
- TÍTULO DE LA INVENCIÓN: Nuevos polipéptidos con actividad de receptor serotoninérgico, ácidos nucleicos que codifican para estos polipéptidos y uso de los mismos.
\vskip0.666000\baselineskip
- (iii)
- NÚMERO DE SECUENCIAS: 11
\vskip0.666000\baselineskip
- (iv)
- FORMA LEGIBLE POR ORDENADOR:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- TIPO DE SOPORTE: Cinta
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- ORDENADOR: IBM PC compatible
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- SISTEMA OPERATIVO: PC-DOS/MS-DOS
\vskip0.333000\baselineskip
- (D)
- PROGRAMA: Patentin Release #1.0 Versión #1.25 (OEB)
\vskip0.666000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID nº1:
\vskip0.666000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 1686 pares de bases
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- NÚMERO DE HEBRAS: doble
\vskip0.333000\baselineskip
- (D)
- CONFIGURACIÓN: lineal
\vskip0.666000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADNc
\vskip0.666000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.666000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: NO
\vskip0.666000\baselineskip
- (vi)
- ORIGEN:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: ratón
\vskip0.666000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA ADICIONAL:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: CDS
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 509..1582
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- OTRAS CARACTERÍSTICAS: /producto= "Gen receptor 5-HT5a de ratón"
\vskip0.666000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID nº1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.666000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID nº2:
\vskip0.666000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 32 pares de bases
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- NÚMERO DE HEBRAS: simple
\vskip0.333000\baselineskip
- (E)
- CONFIGURACIÓN: lineal
\vskip0.666000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADNc
\vskip0.666000\baselineskip
- (vi)
- ORIGEN:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: oligonucleótido (i)
\vskip0.666000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID nº2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipAGAACTAGTG GATCCAARAA NGGNARCCAR CA
\hfill32
\vskip0.666000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID nº3:
\vskip0.666000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 32 pares de bases
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- NÚMERO DE HEBRAS: simple
\vskip0.333000\baselineskip
- (D)
- CONFIGURACIÓN: lineal
\vskip0.666000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADNc
\vskip0.666000\baselineskip
- (vi)
- ORIGEN:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: oligonucleótido (ii)
\vskip0.666000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID nº3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCTTGATATCG AATTCGAYRT NCTNTGYTGY AC
\hfill32
\vskip0.666000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID nº4:
\vskip0.666000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 32 pares de bases
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- NÚMERO DE HEBRAS: simple
\vskip0.333000\baselineskip
- (D)
- CONFIGURACIÓN: lineal
\vskip0.666000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADNc
\vskip0.666000\baselineskip
- (vi)
- ORIGEN:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: oligonucleótido (iii)
\vskip0.666000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID nº4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGCTATCGATA AGCTTATHGC YCTNGAYMGN TA
\hfill32
\vskip0.666000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID nº5:
\vskip0.666000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 21 pares de bases
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- NÚMERO DE HEBRAS: simple
\vskip0.333000\baselineskip
- (D)
- CONFIGURACIÓN: lineal
\vskip0.666000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADNc
\vskip0.666000\baselineskip
- (vi)
- ORIGEN:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: oligonucleótido (iv)
\vskip0.666000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID nº5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCTTCTGCTCC CTCCACGTAT C
\hfill21
\vskip0.666000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID nº6:
\vskip0.666000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 21 pares de bases
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- NÚMERO DE HEBRAS: simple
\vskip0.333000\baselineskip
- (D)
- CONFIGURACIÓN: lineal
\vskip0.666000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADNc
\vskip0.666000\baselineskip
- (vi)
- ORIGEN:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: oligonucleótido (v)
\vskip0.666000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID nº6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCGCCACCTGG AGTACACACT C
\hfill21
\vskip0.666000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID nº7:
\vskip0.666000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 1074 pares de bases
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- NÚMERO DE HEBRAS: doble
\vskip0.333000\baselineskip
- (D)
- CONFIGURACIÓN: lineal
\vskip0.666000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADNc
\vskip0.666000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.666000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: NO
\vskip0.666000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA ADICIONAL:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: CDS
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 1..1074
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- OTRAS CARACTERÍSTICAS: /producto= "Gen del receptor 5-HT5A humano"
\vskip0.666000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID nº7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.666000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID nº8:
\vskip0.666000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 43 pares de bases
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- NÚMERO DE HEBRAS: simple
\vskip0.333000\baselineskip
- (D)
- CONFIGURACIÓN: lineal
\vskip0.666000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADNc
\vskip0.666000\baselineskip
- (vi)
- ORIGEN:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: oligonucleótido 1
\vskip0.666000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID nº8
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGCATGCGCGC GGCCGCGGCA CCATGGATTT ACCTGTGAAC CTA
\hfill43
\vskip0.666000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID nº9:
\vskip0.666000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- NÚMERO DE HEBRAS: simple
\vskip0.333000\baselineskip
- (D)
- CONFIGURACIÓN: lineal
\vskip0.666000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADNc
\vskip0.666000\baselineskip
- (vi)
- ORIGEN:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: oligonucleótido 2
\vskip0.666000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID nº9
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipTTCGGATATC GGTGAGCGC
\hfill20
\vskip0.666000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID nº10:
\vskip0.666000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 41 pares de bases
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- NÚMERO DE HEBRAS: simple
\vskip0.333000\baselineskip
- (D)
- CONFIGURACIÓN: lineal
\vskip0.666000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADNc
\vskip0.666000\baselineskip
- (vi)
- ORIGEN:
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- ORGANISMO: oligonucleótido 3
\vskip0.666000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID nº10
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCCGATATCCG AAGCTGTGGA GGTGAAGGAC TCTGCCAACC A
\hfill41
\vskip0.666000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID nº11:
\vskip0.666000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.333000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 37 pares de bases
\vskip0.333000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- NÚMERO DE HEBRAS: simple
\vskip0.333000\baselineskip
- (D)
- CONFIGURACIÓN: lineal
\vskip0.666000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADNc
\vskip0.666000\baselineskip
- (vi)
- ORIGEN:
\vskip0.333000\baselineskip
- (C)
- ORGANISMO: oligonucleótido 4
\vskip0.666000\baselineskip
- (xi) DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID nº11
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipAACCCGGGCT TAAGTCATG TTGCCTAGAA AAGAAGT
\hfill37
\vskip1.000000\baselineskip
Claims (20)
1. Polipéptido que comprende la secuencia
peptídica SEC ID nº1.
2. Polipéptido según la reivindicación 1,
caracterizado porque posee la capacidad de unir la
serotonina.
3. Polipéptido según la reivindicación 2,
caracterizado porque posee una actividad de receptor
serotoninérgico.
4. Polipéptido según una de las reivindicaciones
1 a 3, caracterizado porque puede ser reconocido por
anticuerpos que reconocen la secuencia peptídica SEC ID nº1.
5. Polipéptido que comprende la secuencia
peptídica SEC ID nº7.
6. Secuencia nucleotídica que codifica para un
polipéptido según una de las reivindicaciones 1 a 5.
7. Secuencia según la reivindicación 6,
caracterizada porque se selecciona entre:
- (a) la secuencia nucleotídica SEC ID nº1 o su hebra complementaria,
- (b) cualquier secuencia que hibride con una secuencia (a) y que codifique para un polipéptido según una de las reivindicaciones 1 a 5, y
- (c) las secuencias derivadas de las secuencias (a) y (b) debidas a la degeneración del código genético.
8. Secuencia según la reivindicación 7,
caracterizada porque comprende la secuencia nucleotídica SEC
ID nº7.
9. Secuencia según la reivindicación 7,
caracterizada porque se selecciona entre las secuencias
genómicas, de ADNc, de ARN, las secuencias híbridas o las secuencias
sintéticas o semisintéticas.
10. Secuencia según una de las reivindicaciones 6
a 9, caracterizada porque la parte que codifica para dicho
polipéptido se sitúa bajo el control de señales que permiten su
expresión en un hospedador celular.
11. Oligonucleótido antisentido capaz de inhibir
al menos parcialmente la producción de polipéptido según una de las
reivindicaciones 1 a 5, caracterizado porque está constituido
por una secuencia nucleotídica según la reivindicación 7.
12. Sonda nucleotídica capaz de hibridar con una
secuencia según la reivindicación 7 o con el ARNm correspondiente,
caracterizada porque comprende la secuencia nucleotídica SEC
ID nº1, la secuencia nucleotídica SEC ID nº7 o sus hebras
complementarias.
13. Sonda nucleotídica capaz de hibridar con una
secuencia según la reivindicación 7 o con el ARNm correspondiente,
caracterizada porque se selecciona entre las secuencias SEC
ID nº5, 6, 8-11.
14. Utilización in vitro de una sonda
según la reivindicación 12 ó 13 como agente para la detección de la
expresión de un receptor serotoninérgico 5-HT5a; o
para poner en evidencia anomalías genéricas (mal corte y empalme,
polimorfismo, mutaciones puntuales, etc.); o para identificar
afecciones neurológicas, cardiovasculares o psiquiátricas que estén
relacionadas con los receptores 5-HT5a; o incluso
para poner en evidencia y aislar secuencias de ácidos nucleicos
homólogos que codifican para los polipéptidos
5-HT5a.
15. Vector de expresión, caracterizado
porque contiene una secuencia nucleotídica según una de las
reivindicaciones 6 a 10.
16. Célula recombinada capaz de expresar en su
superficie un polipéptido según una de las reivindicaciones 1 a 5,
caracterizada porque contiene un vector de expresión según la
reivindicación 15.
17. Célula según la reivindicación 16,
caracterizada porque se selecciona entre las células
eucariotas o procariotas.
18. Procedimiento de puesta en evidencia y/o
aislamiento de ligandos de polipéptidos como los definidos en las
reivindicaciones 1 a 5, caracterizado porque se realiza en
las siguientes etapas:
- -
- se pone en contacto una molécula o una mezcla que contiene diferentes moléculas, eventualmente no identificadas, con un célula recombinada según la reivindicación 16, que exprese en su superficie un polipéptido como el definido en las reivindicaciones 1 a 5 en unas condiciones que permitan la interacción entre dicho polipéptido y dicha molécula, en el caso de que ésta poseyera una afinidad por dicho polipéptido, y,
- -
- se detectan y/o aíslan las moléculas unidas a dicho polipéptido.
19. Procedimiento según la reivindicación 18 para
la puesta en evidencia y/o aislamiento de agonistas o de
antagonistas de la serotonina.
20. Procedimiento de puesta en evidencia y/o
aislamiento de moduladores de polipéptidos como los definidos en las
reivindicaciones 1 a 5, caracterizado porque se realiza en
las siguientes etapas:
- -
- se pone en contacto una molécula o una mezcla que contiene diferentes moléculas, eventualmente no identificadas, con un célula recombinada según la reivindicación 16, que exprese en su superficie un polipéptido como el definido en las reivindicaciones 1 a 5, en presencia de 5-HT, en unas condiciones que permitan la interacción entre dicho polipéptido y la 5-HT, y,
- -
- se detectan y/o aíslan las moléculas capaces de modular la actividad de la 5-HT sobre dicho polipéptido.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FR9208081 | 1992-07-01 | ||
FR9208081A FR2693200B1 (fr) | 1992-07-01 | 1992-07-01 | Nouveaux polypeptides ayant une activité de récepteur sérotoninergique, acides nucléiques codant pour ces polypeptides et utilisations. |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
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