EP0246518A2 - Unterlage für Zellkulturen - Google Patents

Unterlage für Zellkulturen Download PDF

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EP0246518A2
EP0246518A2 EP87106728A EP87106728A EP0246518A2 EP 0246518 A2 EP0246518 A2 EP 0246518A2 EP 87106728 A EP87106728 A EP 87106728A EP 87106728 A EP87106728 A EP 87106728A EP 0246518 A2 EP0246518 A2 EP 0246518A2
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EP
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biologically active
active substances
cell cultures
proteins
substances
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EP0246518A3 (de
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Rolf Dr. Siegel
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0068—General culture methods using substrates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/20—Small organic molecules
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/70—Polysaccharides

Definitions

  • the invention concerns documents for cell and tissue cultures in vitro. These documents, also called substrates, are known in the art as cell culture tubes, cell culture dishes, "microcarrier beads” and “Roux bottles”.
  • the substrates described below are preferably suitable for cell cultures of cells capable of vectorial mass transport: by suitably arranging these substrates according to the invention, it is easily possible to obtain synthesis products in concentrated form or to build up material gradients.
  • Examples of cells capable of vectorial mass transport are epithelial cells, for example from kidney, gastrointestinal tract and glandular tissue. Arrangements of connected cell groups, such as sponges (sponges) or coelenterates (coelenterata) or arrangements of normally unicellular organisms are also subsumed under this, so that in this context the term cell culture is understood more comprehensively than before.
  • DE-PS 34 40 557 A document for cell growth in vitro is described in DE-PS 34 40 557. These are hydrophobic materials coated with lipoids. After formation of a dense cell lawn on a filter coated in this way, a metabolic energy-dependent substance gradient is obtained and maintained by suitable manipulation. Since only the cells that close the filter pores are available for unhindered transcellular mass transport, such materials are only of limited suitability for these concentration purposes. The majority of the cells adhering to the filter surface (approx. 85%) do not contribute to the creation and maintenance of a material gradient, which is ultimately due to the dense structure of the filter material.
  • the support described below is intended to make it possible to obtain synthesis products of cells in vitro in concentrated form or to optimally utilize the metabolic performance of cells in cell culture in that the entire surface of the support is available for this.
  • thin, mechanically stable, flexible, hydrophilic materials which are permeable to ions and proteins and have at least one reactive (functional) group on their surface are used as starting materials for the substrates in the pm range.
  • Such materials are available, for example, as dialysis membranes made of cellulose (for example with "molecular weight cutoff" which can be freely selected in steps between 3,500 and 14,000 daltons) or else in the form of cellophane films.
  • natural biologically active substances which form the hydrophilic portion ("head") of natural lipoids are used.
  • These natural lipoids can easily be obtained as a lipoid extract from animal or vegetable materials and, depending on the processing, comprise different amounts of lipids containing glycerol such as mono-, di-, triacylglycerols, glyceryl ethers (alkyloxydiglycerides), glycosylmono- and diacylglycerols, phospholipids (phosphatides) , Plasmalogens (acetal phosphatide), sphingosine-containing lipids such as sphingomyeline, ceramides, neutral glycosphingolipids (cerebroside), sialoglycosphingolipids (gangliosides), sulfoglycosphingolipids (sulfatides), complex lipids such as lipoproteins, proteolcharides and lipopolys. Because of the high proportion of (branched) carbohydrate group chains
  • the biologically active substances mentioned are physico-chemical, e.g. well defined in terms of their degree of ionization and their molecular radii.
  • substrate surfaces with positive or negative surface charges e.g. the hydrolysis product of phosphatidylserine and / or cardiolipin as biologically active substances, substrate surfaces with a negative charge are obtained at physiological pH.
  • the respective percentage of the biologically active substances used must be determined experimentally with regard to optimal cell adhesion and cell growth from cell line to cell line. However, this is easily possible.
  • the coating of the surfaces of the starting materials with the aforementioned biologically active substances takes place by incubation. Under suitable reaction conditions, covalent and / or adsorptive bonds are formed in the aqueous environment between reactive groups of starting material and biologically active substances used. To shorten the incubation period, it is easily possible to activate the starting material with BrCN beforehand.
  • the substrate according to the invention can now be used to grow Cells are used in a known manner.
  • a dialysis membrane made of cellulose (“molecular weight cutoff” 6,000-8,000 daltons) is used as the starting material for the base according to the invention.
  • the biologically active substances required for coating the filter are initially extracted as whole lipid from whole blood - based on Folch et al (J. Folch, M. Lees and GH Stanley: J. Biol. Chem. 226, 497 (1957)) - obtained: one part of EDTA blood is mixed with 9 parts of a chloroform / methanol mixture and the resulting lipoid phase is then evaporated to dryness. The lipoids are then resuspended in a butanol solution saturated with Ringer's solution (1 part by volume). This suspension is now for about 24 hours at 28 0 C with an enzyme solution (1 part by volume, which phospholipase C (EC 3. 1. 4. 3), sphingomyelinase (EC 3. 1. 4. 12) and lipase ( EC 3. 1. 1. 3) contains, incubated with constant stirring movement.
  • phospholipase C EC 3. 1. 4. 3
  • sphingomyelinase EC 3. 1. 4. 12
  • lipase EC
  • the biologically active hydrophilic substances are separated from the aliphatics and unhydrolyzed lipoids by adding 0.1 part by volume of chloroform. After separation of the enzymes by column chromatography, the upper aqueous phase containing the biologically active substances is used further for the coating of the starting material according to the invention.
  • the starting material is then incubated with the solution containing the biologically active substances at 28 ° C. until the solvent has completely evaporated and the dialysis membrane is dry.
  • the membrane coated in this way now becomes thorough washed with Ringer's solution, carefully dried and clamped in a filter holder and steam sterilized. Then it is placed in a closable vessel with possibilities for air and carbon dioxide supply or for continuous suction and supply of nutrient medium such that the membrane coated according to the invention is completely covered on both sides by nutrient medium.
  • the filter is removed from the vessel and inoculated in a known manner with an established cell line from maggot darby canine kidney (MDCK) on one side and then incubated in the nutrient-containing vessel under the usual conditions.
  • MDCK maggot darby canine kidney
  • a uniform epithelial cell lawn has formed on the coated membrane surface and can be used according to the method described in DE-PS 34 40 557 for the induced, metabolically active vectorial mass transport.

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Abstract

Es wird eine Unterlage für Zellkulturen mit basalmembranähnlichen Eigenschaften beschrieben: sie ist im µm-Bereich dünn, ist mechanisch stabil und flexibel, weist auf ihrer Oberfläche Kohlenhydrate und/oder Kohlenhydratgruppenketten und/oder Proteine und/oder amphiphile Substanzen auf und ist für Ionen und Proteine permeabel.

Description

  • Bei der Erfindung handelt es sich um Unterlagen für Zell-und Gewebekulturen in vitro. Diese Unterlagen, auch Substrate genannt, sind ausbildungsgemäß als Zellkulturröhrchen, Zellkulturschalen, "microcarrier beads" und "Roux bottles" bekannt.
  • Die im folgenden beschriebenen Substrate eignen sich bevorzugt für Zellkulturen von zum vektoriellen Stofftransport befähigten Zellen: durch geeignete Anordnung dieser erfindungsgemäßen Substrate ist es leicht möglich, Syntheseprodukte in konzentrierter Form zu gewinnen oder Stoffgradienten aufzubauen.
  • Beispiele für zum vektoriellen Stofftransport befähigte Zellen sind Epithelzellen, beispielsweise aus Niere, Gastrointestinaltrakt und Drüsengewebe. Auch Anordnungen von zusammenhängenden Zellverbänden, wie Schwämme (Spongien) oder Hohltiere (Coelenterata) oder Anordnungen von normalerweise einzelligen Organismen werden hierunter subsumiert, so daß in diesem Zusammenhang der Begriff Zellkultur umfassender als bisher verstanden wird.
  • In der DE-PS 34 40 557 wird eine Unterlage für das Zellwachstum in vitro beschrieben. Es handelt sich hierbei um mit Lipoiden beschichtete hydrophobe Materialien. So wird nach Ausbildung eines dichten Zellrasens auf einem derart beschichteten Filter durch geeignete Manipulation ein stoffwechselenergieabhängiger Stoffgradient gewonnen und aufrechterhalten. Da nur die Zellen, die die Filterporen verschließen, für den ungehinderten transzellulären Stofftransport zur Verfügung stehen, sind derartige Materialien für diese Konzentrationszwecke nur bedingt geeignet. Der überwiegende Teil der auf der Filteroberfläche haftenden Zellen (ca. 85%) trägt nicht zur Schaffung und Aufrechterhaltung eines Stoffgradienten bei, was letztendlich durch die dichte Struktur des Filtermaterials bedingt ist.
  • Die im folgenden beschriebene Unterlage soll es ermöglichen, Syntheseprodukte von Zellen in vitro in konzentrierter Form zu gewinnen bzw. Stoffwechselleistungen von Zellen in Zellkultur dadurch optimal auszunutzen, daß die gesamte Oberfläche der Unterlage hierfür zur Verfügung steht.
  • Erfindungsgemäß werden als Ausgangsmaterialien für die Unterlagen im pm-Bereich liegende dünne, mechanisch stabile, flexible, hydrophile, für Ionen und Proteine permeable Materialien, die mindestens eine reaktive (funktionelle) Gruppe auf ihrer Oberfläche aufweisen, verwendet. Solche Materialien stehen beispielsweise als Dialysiermembranen aus Cellulose (beispielsweise mit zwischen 3.500 und 14.000 Dalton stufenweise frei wählbaren "molecular weight cutoff") oder aber auch in Form von Cellophan-Folien zur Verfügung.
  • Die Oberflächen dieser Ausgangsmaterialien werden nun ihrerseits mit natürlichen und/oder synthetischen biologisch aktiven Substanzen, wie Kohlenhydraten und/oder Kohlenhydratgruppenketten und/oder Proteinen und/oder amphiphilen Substanzen als Reinsubstanzen oder mengenmäßig definierte Mischungen so umgesetzt, daß sich zwischen den biologisch aktiven Substanzen und der Materialoberfläche im physiologischen Milieu stabile Bindungen ausbilden.
  • Nach der Umsetzung der Ausgangsmaterialien mit Kohlenhydraten und/oder Kohlenhydratgruppenketten und/oder Proteinen und/oder amphiphilen Substanzen stellen diese die unmittelbare Oberfläche der Unterlage dar und bieten "Ankermöglichkeiten" für Zellen (siehe auch H. Rauvala, Trends in Biochemistry Science, 7, 323 - 325 (1983)).
  • Oben erwähnte synthetische bzw. natürliche biologische Substanzen sind bekannt, sind in reiner Form leicht erhältlich, bzw. können leicht gewonnen werden.
  • Ausgestaltungsgemäß werden natürliche biologisch aktive Substanzen, die den hydrophilen Anteil ("Kopf") von natürlichen Lipoiden bilden, eingesetzt. Diese natürlichen Lipoide können problemlos als Lipoid-Extrakt aus tierischen oder pflanzlichen Materialien gewonnen werden und umfassen je nach Aufarbeitung unterschiedliche Mengen an Glycerin enthaltende Lipide wie Mono-, Di-, Triacylglycerine, Glyceryläther (Alkyloxydiglyceride), Glycosylmono- und diacylglycerine, Phospholipide (Phosphatide), Plasmalogene (Acetalphosphatide), Sphingosin enthaltende Lipide wie Sphingomyeline, Ceramide, neutrale Glycosphingolipide (Cerebroside), Sialoglycosphingolipide (Ganglioside), Sulfoglycosphingolipide (Sulfatide), komplexe Lipide wie Lipoproteine, Proteolipide und Lipopolysaccharide. Wegen des hohen Anteils an (verzweigten) Kohlenhydratgruppenketten wird die Extraktion aus Erythrozyten, Synovia, Hirn und Plazenten bevorzugt.
  • Die Gewinnung der die biologisch aktiven Substanzen darstellenden Kohlenhydrate und/oder Kohlenhydratgruppenketten und/oder Proteine erfolgt seinerseits ausgestaltungsgemäß durch enzymatische Hydrolysierung oben erwähnter natürlicher Lipoide, so daß Substanzen wie Fucose, Mannose, Galaktose, Glucose, N-Acetylgalactosamin, N-Acylneuraminsäure und Glykosaminglykane leicht erhältlich sind, Verbindungen von denen bekannt sind, daß sie ein geordnetes Zellwachstum begünstigen. Einfache Substanzen, wie einfache Zucker, Steroide, Terpene, Cholesterin, Vitamine und Alkohole werden direkt zur Beschichtung eingesetzt.
  • Die erwähnten biologisch aktiven Substanzen sind physikalisch-chemisch, z.B. hinsichtlich ihres Ionisierungsgrades und ihrer Molekülradien gut definiert. So ist es beispielsweise einfach, Substratoberflächen mit positiven oder negativen Oberflächenladungen herzustellen: setzt man z.B. das Hydrolyseprodukt von Phosphatidylserin und/oder Cardiolipin als biologisch aktive Substanzen ein, so erhält man Substratoberflächen mit negativer Ladung bei physiologischen pH. Natürlich müssen die jeweiligen prozentualen Anteile der eingesetzten biologisch aktiven Substanzen hinsichtlich optimaler Zellhaftung und Zellwachstum von Zellinie zu Zellinie experimentell ermittelt werden. Dies ist aber ohne weiteres möglich.
  • Die unter physiologischen Bedingungen stabile Beschichtung der Oberflächen der Ausgangsmaterialien mit den erwähnten biologisch aktiven Substanzen erfolgt durch Inkubation. Unter geeigneten Reaktionsbedingungen kommt es im wässrigen Milieu zur Ausbildung von kovalenten und/oder adsorptiven Bindungen zwischen reaktiven Gruppen von Ausgangsmaterial und eingesetzten biologisch aktiven Substanzen. Zur Verkürzung der Inkubationszeit ist es ohne weiteres möglich, das Ausgangsmaterial vorher mit BrCN zu aktivieren.
  • Nach gründlichem Waschen mit geeigneten Puffern kann nunmehr das erfindungsgemäße Substrat zur Anzüchtung von Zellen in bekannter Art und Weise eingesetzt werden.
    • Beispiel
  • Als Ausgangsmaterial für die erfindungsgemäße Unterlage wird eine Dialysiermembran aus Cellulose("molecular weight cutoff" 6.000 - 8.000 Dalton) verwendet.
  • Die zur Beschichtung des Filters erforderlichen biologisch aktiven Substanzen werden zunächst als Gesamtlipid-Extrakt aus Vollblut - in Anlehnung an Folch et al (J. Folch, M. Lees and G. H. Stanley: J. Biol. Chem. 226, 497 (1957)) - gewonnen: ein Teil EDTA-Blut wird mit 9 Teilen eines Chloroform/Methanol-Gemisches versetzt und die resultierende Lipoid-Phase wird anschließend zur Trockene eingeengt. Danach werden die Lipoide in einer mit einer mit Ringer-Lösung gesättigten Butanol-Lösung resuspendiert (1 Volumenteil). Diese Suspension wird nun für ca. 24 Stunden bei 280C mit einer Enzym-Lösung (1 Volumenteil, welche Phospholipase C (EC 3. 1. 4. 3), Sphingomyelinase (EC 3. 1. 4. 12) und Lipase (EC 3. 1. 1. 3) enthält, unter ständiger rührender Bewegung inkubiert.
  • Die Trennung der biologisch aktiven hydrophilen Substanzen von den Aliphaten und nicht hydrolisierten Lipoiden erfolgt durch Zugabe von O,1 Volumenteil Chloroform. Die obere wässrige, die biologisch aktiven Substanzen enthaltende Phase wird nach säulenchromatographischer Abtrennung der Enzyme für die erfindungsgemäße Beschichtung des Ausgangsmaterials weiterverwendet.
  • Das Ausgangsmaterial wird nun mit der die biologisch aktiven Substanzen enthaltenden Lösung solange bei 28°C inkubiert, bis das Lösungsmittel vollständig verdampft und die Dialysiermembran trocken ist.
  • Die derart beschichtete Membran wird nunmehr gründlich mit Ringerlösung gewaschen, vorsichtig getrocknet und in einen Filterhalter eingespannt und dampfsterilisiert. Danach wird sie in ein verschließbares Gefäß mit Möglichkeiten zur Luft- und Kohlendioxidzuleitung bzw. zur kontinuierlichen Absaugung- und Zuführung von Nährmedium derart gestellt, daß die erfindungsgemäß beschichtete Membran von Nährmedium auf beiden Seiten völlig bedeckt ist.
  • Nach einer ca. 24 Stunden dauernden Äquilibrierungsperiode wird der Filter aus dem Gefäß genommen und in bekannter Art und Weise mit einer etablierten Zellinie aus Maden Darby canine Kidney (MDCK) auf einer Seite beimpft und anschließend in dem nährmediumenthaltenden Gefäß unter den üblichen Bedingungen inkubiert.
  • Nach ca. drei bis vier Tagen hat sich ein gleichmäßiger Epithelzellrasen auf der beschichteten Membranoberfläche ausgebildet und kann gemäß der in der DE-PS 34 40 557 beschriebenen Methode zum induzierten, stoffwechselaktiven vektoriellen Stofftransport weiterverwendet werden.

Claims (2)

1. Unterlagen für Zellkulturen, wobei es sich um dünne, im pm-Bereich liegende, mechanisch stabile, flexible, für Ionen und Proteine permeable Materialien, die mindestens eine Art reaktiver Gruppe auf ihrer Oberfläche aufweisen, handelt, die ihrerseits mit biologisch aktiven Substanzen als Reinsubstanzen oder mengenmäßig definierten Mischungen derart beschichtet sind, daß die entstehenden Bindungen zwischen Materialoberfläche und biologisch aktiven Substanzen im physiologischen Milieu stabil sind, dadurch gekennzeichnet , daß als dünne, im µm-Bereich liegende, mechanisch stabile, flexible, für Ionen und Proteine permeable Materialien, die mindestens eine Art reaktiver Gruppe auf ihrer Oberfläche aufweisen, Dialysiermembranen aus Cellulose oder Cellophan®-Folien eingesetzt sind.
2. Unterlagen für Zellkulturen nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet , daß als biologisch aktive Substanzen solche, die durch enzymatische Hydrolyse aus natürlichen Lipoiden gewonnen werden, eingesetzt sind.
EP87106728A 1986-05-23 1987-05-08 Unterlage für Zellkulturen Ceased EP0246518A3 (de)

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