EA029002B1 - Съедобная композиция - Google Patents

Съедобная композиция Download PDF

Info

Publication number
EA029002B1
EA029002B1 EA201391803A EA201391803A EA029002B1 EA 029002 B1 EA029002 B1 EA 029002B1 EA 201391803 A EA201391803 A EA 201391803A EA 201391803 A EA201391803 A EA 201391803A EA 029002 B1 EA029002 B1 EA 029002B1
Authority
EA
Eurasian Patent Office
Prior art keywords
glucose
glucoside
flavonoid
composition according
inhibitor
Prior art date
Application number
EA201391803A
Other languages
English (en)
Other versions
EA029002B9 (ru
EA201391803A1 (ru
Inventor
Марк Джон Берри
Марк Иан Фаулер
Алан Дэвид Хит
Original Assignee
Унилевер Н.В.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Унилевер Н.В. filed Critical Унилевер Н.В.
Publication of EA201391803A1 publication Critical patent/EA201391803A1/ru
Publication of EA029002B1 publication Critical patent/EA029002B1/ru
Publication of EA029002B9 publication Critical patent/EA029002B9/ru

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/7042Compounds having saccharide radicals and heterocyclic rings
    • A61K31/7048Compounds having saccharide radicals and heterocyclic rings having oxygen as a ring hetero atom, e.g. leucoglucosan, hesperidin, erythromycin, nystatin, digitoxin or digoxin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/715Polysaccharides, i.e. having more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages; Derivatives thereof, e.g. ethers, esters
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L33/00Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/10Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
    • A23L33/105Plant extracts, their artificial duplicates or their derivatives
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33Heterocyclic compounds
    • A61K31/335Heterocyclic compounds having oxygen as the only ring hetero atom, e.g. fungichromin
    • A61K31/35Heterocyclic compounds having oxygen as the only ring hetero atom, e.g. fungichromin having six-membered rings with one oxygen as the only ring hetero atom
    • A61K31/352Heterocyclic compounds having oxygen as the only ring hetero atom, e.g. fungichromin having six-membered rings with one oxygen as the only ring hetero atom condensed with carbocyclic rings, e.g. methantheline 
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/7028Compounds having saccharide radicals attached to non-saccharide compounds by glycosidic linkages
    • A61K31/7034Compounds having saccharide radicals attached to non-saccharide compounds by glycosidic linkages attached to a carbocyclic compound, e.g. phloridzin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23VINDEXING SCHEME RELATING TO FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES AND LACTIC OR PROPIONIC ACID BACTERIA USED IN FOODSTUFFS OR FOOD PREPARATION
    • A23V2002/00Food compositions, function of food ingredients or processes for food or foodstuffs

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)

Abstract

Продукты или питание с высоким содержанием доступных углеводов, таких как сахароза или крахмал, повышают постпрандиальные концентрации глюкозы в крови. Повторяющиеся высокие постпрандиальные "всплески" глюкозы в плазме ассоциируют с повышенным риском развития диабета второго типа. Неконтролируемые колебания уровня глюкозы являются нежелательными и любое снижение или "притупление" постпрандиальной концентрации глюкозы в крови потенциально является благоприятным. Данное открытие относится к съедобной композиции для замедления поглощения глюкозы в кишечнике через синергетическое ингибирование как активного натрий-глюкозного котранспортера 1 (SGLT1), так и пассивного транспортера глюкозы 2 (GLUT2), приводя к выравниванию или притуплению постпрандиального глюкозного пика. Таким образом, в первом аспекте изобретения предоставлена съедобная композиция, при этом композиция содержит по меньшей мере 5%, в расчете на сухую массу, по меньшей мере одного флавоноидного агликона и по меньшей мере 5%, в расчете на сухую массу, по меньшей мере одного флавоноидного глюкозида, где флавоноидный глюкозид по меньшей мере на 20%, предпочтительно по меньшей мере на 40%, наиболее предпочтительно по меньшей мере на 60% более устойчив к гидролизу с помощью лактазы-флоридзингидролазы, чем кверцетин-4-глюкозид, и где флавоноидный агликон является ингибитором GLUT2 и флавоноидный глюкозид является ингибитором SGLT1.

Description

изобретение относится к съедобной композиции для замедления всасывания глюкозы в кишечнике посредством синергетического ингибирования как натрий-глюкозного котранспортера 1 (8СЬТ1), так и пассивного транспортера глюкозы 2 (СЬиТ2), приводя к выравниванию или притуплению постпрандиального пика глюкозы.
Сущность изобретения
В первом аспекте изобретения предоставлена съедобная композиция, при этом композиция содержит по меньшей мере 5%, в расчете на сухую массу, по меньшей мере одного флавоноидного агликона и по меньшей мере 5%, в расчете на сухую массу, по меньшей мере одного флавоноидного моноглюкозида, где флавоноидный моноглюкозид по меньшей мере на 20%, предпочтительно по меньшей мере на 40%, наиболее предпочтительно по меньшей мере на 60% более устойчив к гидролизу с помощью лактазы-флоридзингидролазы, чем кверцетин-4-глюкозид, и где флавоноидный агликон является ингибитором СЬиТ2 и флавоноидный моноглюкозид является ингибитором §СЬТ 1.
Лактаза-флоридзингидролаза (ЬРН), бета-галактозидаза, является ферментом, обнаруженным в тонком кишечнике, вовлеченным в гидролиз дисахарида лактозы на составляющие его мономеры - галактозу и глюкозу. В частности, фермент гидролизирует бета-гликозидную связь в Ό-лактозе. Нехватка этого фермента вызывает непереносимость лактозы. ЬРН также обладает глюкозидазной активностью. Таким образом, важным является то, что глюкозид проявляет степень устойчивости к гидролизу ЬРН в тонком кишечнике, где происходит абсорбция глюкозы посредством транспортеров глюкозы.
Под термином "по меньшей мере на 20% более устойчив к гидролизу посредством ЬРН, чем кверцетин-4-глюкозид" подразумевается, что скорость гидролиза посредством ЬРН на по меньшей мере 20% ниже, чем скорость для кверцетин-4'-глюкозида. Таким образом, скорость равнялась бы нулю, если бы имела место на 100% большая устойчивость к гидролизу ЬРН, чем для кверцетин-4-глюкозида.
Под термином "флавоноидный агликон" подразумевается негликозилированный флавоноид. Под термином "флавоноидный моноглюкозид" подразумевается флавоноид, присоединенный к одиночному глюкозному звену. Под термином "ингибитор ОЬиТ2" подразумевается соединение, которое ингибирует трансмембранный белок-переносчик, известный как пассивный транспортер глюкозы 2. Под термином "ингибитор §СЬТ1" подразумевается соединение, которое ингибирует трансмембранный белокпереносчик, известный как натриевый котранспортер глюкозы 1.
Флавоноидный агликон может быть выбран из группы, состоящей из флавоновых агликонов, флаваноловых агликонов, флаваноновых агликонов, изофлавоновых агликонов и их смеси. Таким образом, под терминами "флавоновый агликон", "флаваноловый агликон", "флаваноновый агликон" и "изофлавоновые агликоны" подразумеваются негликозилированный флавон, флаванол, флаванон и изофлавон соответственно. В частности, флавоноидный агликон может быть выбран из группы, состоящей из апигенина, лютеолина, кверцетина, кемпферола, мирицетина, нарингенина, пиноцембрина, гесперетина, генистеина и их смеси.
Флавоноидный моноглюкозид может быть выбран из группы, состоящей из лютеолин-7-глюкозида, апигенин-8-С-глюкозида, кемпферол-7-О-глюкозида, кемпферол-3-О-глюкозида, нарингеноин-7-Οглюкозида, даидзеин-8-глюкозида, цианидин-3-глюкозида, кверцетин-3-глюкозида, пелагонидин-3глюкозида, мальвидин-3-глюкозида, дельфинидин-3-глюкозида и их смеси.
Молярное отношение флавоноидного агликона к флавоноидному моноглюкозиду может быть в диапазоне от 4:1 до 1:4, предпочтительно от 3:1 до 1:3, наиболее предпочтительно от 2:1 до 1:2.
Композиция может содержать не более чем 50%, предпочтительно не более чем 10%, наиболее предпочтительно не более чем 2% по массе флавоноидного агликона и отдельно не более чем 50%, предпочтительно не более чем 10%, наиболее предпочтительно не более чем 2% по массе флавоноидного моноглюкозида. Таким образом, при концентрации не более чем 2% по массе флавоноидного агликона, композиция должна содержать воду для того, чтобы композиция содержала по меньшей мере 5%, в расчете на сухую массу, по меньшей мере одного флавоноидного агликона.
Композиция предпочтительно представлена в форме суточной дозы, при этом суточная доза содержит по меньшей мере 50 мкмоль, предпочтительно по меньшей мере 100 мкмоль, наиболее предпочтительно по меньшей мере 250 мкмоль флавоноидного агликона и по меньшей мере 50 мкмоль, предпочтительно по меньшей мере 100 мкмоль, наиболее предпочтительно по меньшей мере 250 мкмоль флавоноидного моноглюкозида.
Композиция по изобретению может быть в форме упакованного напитка, содержащего не более чем 99,95% мас./мас. воды. Она также может быть в форме сухого порошка, содержащегося в саше, при этом сухой порошок пригоден для добавления к питанию.
Во втором аспекте изобретения предоставлен способ уменьшения постпрандиальной пиковой ам- 1 029002
плитуды глюкозы в крови или гликемического ответа у не больного диабетом индивидуума, при этом способ содержит этапы:
(a) пероральное введение композиции по первому аспекту изобретения не больному диабетом индивидууму; и
(b) пероральное введение сахарида не больному диабетом индивидууму;
где этап (а) происходит одновременно, предшествует на от 0 до 90, предпочтительно от 0 до 60 мин, или следует через от 0 до 30 мин за этапом (Ь) и
где сахарид содержит или является глюкозой.
В третьем аспекте изобретения предоставлен способ лечения индивидуума, нуждающегося в этом, от диабета 2-го типа, при этом способ содержит этапы:
(a) пероральное введение композиции по первому аспекту изобретения индивидууму, нуждающемуся в этом; и
(b) пероральное введение сахарида индивидууму, нуждающемуся в этом;
где этап (а) происходит одновременно, предшествует на от 0 до 90, предпочтительно от 0 до 60 мин, или следует через от 0 до 30 мин за этапом (Ь) и
где сахарид содержит или является глюкозой.
Сахарид может быть выбран из группы, состоящей из полисахарида, олигосахарида, дисахарида, моносахарида и их смеси.
В четвертом аспекте изобретения предоставлена композиция в соответствии с первым аспектом изобретения для применения для уменьшения постпрандиальной пиковой амплитуды глюкозы в крови или гликемического ответа у не больного диабетом индивидуума.
В пятом аспекте изобретения предоставлена композиция в соответствии с первым аспектом изобретения для применения в лечении диабета 2-го типа.
В шестом аспекте изобретения предоставлено применение композиции в соответствии с первым аспектом изобретения для получения лекарственного средства для уменьшения постпрандиальной пиковой амплитуды глюкозы в крови или гликемического ответа у не больного диабетом индивидуума.
В седьмом аспекте изобретения предоставлено применение композиции в соответствии с первым аспектом изобретения для получения лекарственного средства для лечения диабета 2-го типа.
Краткое описание фигур
Изобретение проиллюстрировано с помощью фигур, которые демонстрируют следующее: фиг. 1 - временный модель концентрации глюкозы во время приема пищи;
фиг. 2 - общий кумулятивный транспорт глюкозы (мкМ) через дифференцированные монослои Сасо-2 в присутствии или отсутствии ингибитора 8СЬТ1 (300 мкМ флоридзина (Ρζ)) в течение первых 15 мин в 5 мМ Ό-глюкозы и затем в присутствии или отсутствии ингибитора ОЬИТ2 (125 мкМ флоретина (Ρΐ)) в 25 мМ Ό-глюкозе в течение остальных 45 мин (ОК = носитель отрицательный контроль);
фиг. 3 - общий кумулятивный транспорт глюкозы (мкМ) через дифференцированные монослои Сасо-2 в присутствии или отсутствии ингибитора 8СЬТ1 (300 мкМ лютеолин-7-глюкозид (Ь7С)) в течение первых 15 мин в 5 мМ Ό-глюкозе и затем в присутствии или отсутствии ингибитора СЬиТ2 (50 мкМ генистеина (С)) в 25 мМ Ό-глюкозе в течение остальных 45 мин (ОК = носитель - отрицательный контроль);
фиг. 4 - общий кумулятивный транспорт глюкозы (мкМ) через дифференцированные монослои Сасо-2 в присутствии или отсутствии ингибитора 8СЬТ1 (300 мкМ апигенин-8-С-глюкозид (А8С)) в течение первых 15 мин в 5 мМ Ό-глюкозе и затем в присутствии или отсутствии ингибитора СЬИТ2 (50 мкМ генистеина (С)) в 25 мМ Ό-глюкозе в течение остальных 45 мин (ОК = носитель - отрицательный контроль);
фиг. 5 - общий кумулятивный транспорт глюкозы (мкМ) через дифференцированные монослои Сасо-2 в присутствии или отсутствии ингибитора 8СЬТ1 (300 мкМ кверцетин-3-глюкозид (Ц3С)) в течение первых 15 мин в 5 мМ Ό-глюкозе и затем в присутствии или отсутствии ингибитора СЬИТ2 (100 мкМ гесперетина (Н)) в 25 мМ Ό-глюкозе в течение остальных 45 мин (ОК = носитель - отрицательный контроль);
фиг. 6 - общий кумулятивный транспорт глюкозы (мкМ) через дифференцированные монослои Сасо-2 в присутствии или отсутствии ингибитора 8СЬТ1 (300 мкМ кверцетин-3-глюкозид (Ц3С)) в течение первых 15 мин в 5 мМ Ό-глюкозе и затем в присутствии или отсутствии ингибитора СЬИТ2 (50 мкМ лютеолина (Ь)) в 25 мМ Ό-глюкозе в течение остальных 45 мин (ОК = носитель - отрицательный контроль);
фиг. 7 - общий кумулятивный транспорт глюкозы (мкМ) через дифференцированные монослои Сасо-2 в присутствии или отсутствии ингибитора 8СЬТ1 (300 мкМ кемпферол-3-глюкозид (К3С)) в течение первых 15 мин в 5 мМ Ό-глюкозе и затем в присутствии или отсутствии ингибитора СЬИТ2 (50 мкМ гесперетин (Н)) в 25 мМ Ό-глюкозе в течение остальных 45 мин (ОК = носитель - отрицательный контроль);
фиг. 8 - общий кумулятивный транспорт глюкозы (мкМ) через дифференцированные монослои Сасо-2 в присутствии или отсутствии ингибитора 8СЬТ1 (300 мкМ кверцетин-3-глюкозид (Ц3С)) в течение
- 2 029002
первых 15 мин в 5 мМ Ό-глюкозе и впоследствии в присутствии или отсутствии ингибитора ОЬИТ2 (50 мкМ нарингенин (Ν)) в 25 мМ Ό-глюкозе в течение остальных 45 мин (ОК = носитель - отрицательный контроль);
фиг. 9 - общий кумулятивный транспорт глюкозы (мкМ) через дифференцированные монослои Сасо-2 в присутствии или отсутствии ингибитора 8ОЬТ1 (300 мкМ нарингенин-7-глюкозид (N70)) в течение первых 15 мин в 5 мМ Ό-глюкозе и затем в присутствии или отсутствии ингибитора ОЬИТ2 (50 мкМ апигенин (А)) в 25 мМ Ό-глюкозе в течение остальных 45 мин (ОК = носитель - отрицательный контроль);
фиг. 10 - общий кумулятивный транспорт глюкозы (мкМ) через дифференцированные монослои Сасо-2 в присутствии или отсутствии ингибитора 80ЬТ1 (300 мкМ дельфинидин-3-глюкозид (Ό30)) в течение первых 15 мин в 5 мМ Ό-глюкозе и затем в присутствии или отсутствии ингибитора ОЬИТ2 (50 мкМ генистеин (О)) в 25 мМ Ό-глюкозе в течение остальных 45 мин (ОК = носитель - отрицательный контроль).
Подробное описание изобретения
Пример 1. Идентификация ингибиторов §ОЬТ1 и ОЬИТ2.
Рутинное клеточное культивирование.
Человеческие эпителиальные клетки колоректальной аденокарциномы (Сасо-2) получали в Американской коллекции типовых культур (АТСС) и культивировали в среде для выращивания, состоящей из модифицированной по способу Дульбекко среды Игла (содержащей О1и1атах-1, 4,5 г/л Ό-глюкозы и 25 мМ 4-(2-гидрокиэтил)-1-пиперазин этансульфоновую кислоту (Нерез) (1иуЦгодеи)), 10% фетальной бычьей сыворотки (§1§та), 1% неосновных аминокислот (1иуЦгодеи) и 1 мМ пирувата натрия (§1§та). Клетки пересеивали стандартным образом при приблизительно 80% конфлюентности с использованием трипсиноподобного фермента ТтурЬЕ™ Е.хргезз §1аЫе ДиуЦтодеи) для открепления клеток и сеяли приблизительно 114 клеток в расчете на 1 мм2 в чистые колбы для культивирования тканей. Для экспериментов использовали только клетки между пересевами под номерами 45 и 49.
Приготовление дифференцированных клеточных монослоев Сасо-2.
96-луночные проницаемые вставные подложки Сотшид® НТ§ ТгаизуеП® (§1дта) являлись покрытыми коллагеном с 40 мкл 50 мкг/мл коллагена типа I из крысиного хвоста (ΒΌ Вюзаеисез) в 0,02 М уксусной кислоте в течение 1 ч при комнатной температуре в стерильных условиях. Вставки промывали два раза в забуференном фосфатом физиологическом растворе (ΡΒδ ДиуИгодеи)) и клетки Сасо-2 сеяли на вставки при 9,6х105 клеток/мл (75 мкл в расчете на вставку) в среде для выращивания и 30 мл среды для выращивания добавляли к питающему планшету снизу. Клетки оставляли для прикрепления коллагеновому матриксу и образования монослоев в течение 48 ч при 37°С, 5% СО2. И вставки, и питательный планшет промывали ΡΒδ и клетки инкубировали со средой для дифференцирования эритроцитов ΒΌ Еи1ето^Т1М™, содержащей раствор сывороточного наполнителя М1ТО+™ (оба ΒΌ Β^о8с^еисе8), 75 мкл в расчете на вставку и 30 мл в питающий планшет, в течение дополнительных 48 ч при 37°С, 5% СО2.
Клеточное скрининговое исследование ингибитора транспорта глюкозы.
Дифференцированные клеточные монослои аккуратно промывали забуференным фосфатом Дульбекко, содержащим СаС12 и МдС12 (ΡΒδ(+) (1иуЦгодеи)) и вставки переносили на новый 96-луночный приемный планшет Сотшид® ΠΡδ ТгаизуеП®- (δίβΐηη). Клетки инкубировали со свежим ΡΒδ(+) (75 мкл в расчете на вставку и 225 мкл в расчете на лунку) в течение 60 мин при 37°С, 5% СО2. ΡΒδ(+) аккуратно аспирировали и замещали 75 мкл в расчете на вставку или 5 мМ Ό-глюкозы ^1дта) ± тестируемое активное вещество, или 25 мМ Ό-глюкозы ± тестируемое активное вещество в трех повторах, и в каждую лунку быстро добавляли 225 мкл в расчете на лунку ΡΒδ(+). Лунки с 5 мМ глюкозы и лунки с 25 мМ глюкозы инкубировали при 37°С, 5% СО2 в течение 15 и 30 мин соответственно. Особенности всех тестируемых активных веществ приведены в табл. 1. Клеточные вставки переносили в новый приемный планшет, супернатант аккуратно аспирировали от клеток и замещали на 100 мкл 100 мкМ раствора Ьиа£ет Уе11о\у (δίβΐηη) для подтверждения целостности монослоев. В каждую лунку добавляли 225 мкл ΡΒδ(+) и инкубировали при 37°С, 5% СО2 в течение 1 ч. Затем клеточные вставки отбирали и проверяли проницаемость мембран к Ьисйет Уе11о\у измерением флуоресценции образцов при 485 нм (возбуждение) и 530 нм (эмиссия) на микропланшетном ридере флуоресценции δресΐ^атаx Оетий ЕМ.
Глюкозный анализ.
Количество глюкозы, перенесенное через клеточные монослои, измеряли с использованием глюкозного анализа на основе набора для анализа глюкоза/глюкозоксидаза 1иуйгодеи'8 Атр1ех Кеб. Кратко, 50 мкл каждого тестового образца переносили в 96-луночный планшет с черными сторонами/прозрачным дном (Отешет ΒΟ- Оие), в который добавляли 100 мкл реакционного буфера (0,5 мкл 10 мМ Атрййи Кеб, 1 мкл 10 пероксидазы хрена ЕД./мл, 1 мкл глюкозоксидазы 10 ЕД./мл и 97,5 мкл ΡΒδ (все δίβΐηη)). После 10 мин инкубирования при комнатной температуре, измеряли флуоресценцию образцов при 530 нм (возбуждение) и 590 нм (эмиссия) на флуоресцентном микропланшетном ридере δрес1татах Оетий ЕМ и концентрацию глюкозы экстраполировали по стандартной кривой.
Табл. 1 демонстрирует процент ингибирования каждым тестируемым активным веществом перено- 3 029002
са глюкозы через дифференцированный клеточный монослой Сасо-2. При более низкой концентрации Όглюкозы - 5 мМ, ранний перенос глюкозы через клеточный монослой происходит преимущественно посредством апикально экспрессированного, высокоаффинного, глюкозного транспортера с низкой емкостью - §СЬТ1. При более высоких концентрациях Ό-глюкозы §СЬТ1 транспортер становится насыщенным, и вследствие этого большая часть транспорта глюкозы через монослой совершается низкоаффинным транспортером с высокой емкостью - ОЬИТ2, который направляется к апикальной мембране только после первоначального §СЬТ1-зависимого переноса глюкозы. Клеточная модель скрининга, детально описанная в способах выше, разработана для использования преимуществ этих различий в оптимальных условиях для каждого транспортера для идентификации как §ОЬТ1, так и ОЬИТ2 специфичных ингибиторов. Хотя как §ОЬТ1, так и ОЬИТ2 на апикальной мембране переносят глюкозу внутрь энтероцита, ОЬИТ2 также экспрессируется на базолатеральной мембране, где он необходим для транспорта глюкозы из клетки. Следовательно, ОЬиТ2-специфичные ингибиторы будут не только блокировать апикальнонаправленные транспортеры при высоких концентрациях Ό-глюкозы (25 мМ), они также будут проникать в клетку и блокировать выход глюкозы из энтероцита при низких концентрациях Ό-глюкозы (5 мМ). Вследствие этого для дифференциации между ингибированием апикальных и базолатеральных транспортеров каждое активное вещество тестировали как при 5 мМ Ό-глюкозе в течение 15 мин, так и при 25 мМ Ό-глюкозе в течение 30 мин. Активные вещества классифицировали как §СЬТ1 ингибиторы, если они проявляли по меньшей мере на 20% ингибирование транспорта глюкозы при 5 мМ Ό-глюкозе и соответствующее не более чем 20% ингибированию при 25 мМ Ό-глюкозе. Активные вещества, которые были способны ингибировать транспорт глюкозы по меньшей мере на 20%, в обоих условиях классифицировали как ОЬиТ2-специфичные ингибиторы. Этот подход проверяли посредством применения хорошо известных специфичных ингибиторов как §СЬТ1, так и ОЬИТ2, а именно флоридзина и флоретина соответственно.
Вышеупомянутая клеточная модель транспорта глюкозы, описанная Кс11с11 с1 а1. (ΌίαόοΙοδ. 54, 10, 3056-62 (2005)) и проиллюстрированная фиг. 1, была разработана для имитации локализованных изменений концентрации глюкозы в тонком кишечнике во время потребления богатого углеводом питания.
Перед приемом пищи концентрация свободной глюкозы в просвете кишечника является низкой (<5 мМ), и апикально экспрессируемый транспортер 8СЬТ1 интенсивно переносит любую доступную глюкозу внутрь энтероцита. Транспортеры 0ШТ2 также активны на базолатеральной мембране энтероцита, при этом перенося глюкозу из крови в клетку для поддержания клеточного метаболизма при необходимости. Во время приема пищи локальная концентрация глюкозы начинает повышаться (5-10 мМ) и переносится из кишечного просвета посредством §СЬТ1 и затем в системный кровоток посредством СЬиТ2. В результате этого первоначального транспорта глюкозы через энтероцит, внутриклеточные запасы СЬиТ2 мобилизуются и направляются к апикальной мембране. Кратко, после приема пищи имеют место очень высокие локальные концентрации глюкозы (25-100 мМ) по мере того, как содержащиеся в питании углеводы разлагаются на моносахариды альфа-глюкозидазными ферментами, расположенными на апикальной мембране энтероцита. При этих высоких уровнях глюкозы высокоаффинный транспортер §СЬТ1 с низкой емкостью становится насыщенным, и большая часть транспорта глюкозы через энтероцит происходит благодаря низкоаффинным транспортерам 0ШТ2 с высокой емкостью, в это время присутствующим в апикальной мембране.
Табл. 1 демонстрирует, что для ингибирования §СЬТ1 требуется флавоноидный моноглюкозид, как подтверждено посредством лютеолин-7-глюкозида, апигенин-7-глюкозида, апигенин-8-С-глюкозида, кемпферол-3-глюкозида, кемпферол-7-глюкозида, кверцетин-3-глюкозида, кверцетин-4-глюкозида, нарингенин-7-глюкозида, эридиктиол-7-глюкозида, даидзеин-8-С-глюкозида, даидзеин-7-глюкозида, цианидин-3-глюкозида, мальвидин-3-О-глюкозида, дельфинидин-3-глюкозида и пеларгонидин-3-глюкозида. Действительно, наличие дополнительной группы глюкозы в химической структуре нарушает это ингибиторное действие, как продемонстрировано с помощью кверцетин-3,4'-диглюкозида. Специфичность к глюкозиду подтверждается отсутствием ингибирующей §СЬТ1 активности у других тестированных флавоноидных гликозидов, включая цианидин-3-рутинозид и мальвидин-3-О-галактозид. В дополнение, недостаток ингибирующей §СЬТ1 активности, продемонстрированный посредством гидрохинонмоноглюкозида, арбутина, укрепляет важность флавоноидной структуры в молекуле глюкозида. Другие нефлавоноидные глюкозиды, которые, по утверждению ХУсйсН с1 а1. (ί. о£ ΝυΙτίΙίοη, 119, 11, 1698-704 (1989)), являются ингибиторами глюкозного транспортера, такие как хлорогеновая кислота, кофеиновая кислота и розмариновая кислота (сложный эфир кофеиновой кислоты), продемонстрировали отсутствие ингибиторной активности в этой клеточной модели как по отношению к §СЬТ1, так и по отношению к 0ШТ2ингибированию. Табл. 1 также демонстрирует, что было подтверждено, что все агликоны, тестируемые из каждого выбранного флавоноидного класса, за исключением антоцианидинов, являлись ингибиторами СЬиТ2.
Пример 2. Синергизм между ингибиторами §СЬТ1 и 0ШТ2.
Приготовление дифференцированного клеточного монослоя Сасо-2.
Клетки Сасо-2 культивировали и стандартным образом пересеивали, как описано в примере 1. Клетки Сасо-2 сеяли на фибриллярные коллагеновые мультилуночные вставки ВюСоа! НТ§ (ΒΌ Вю8С1- 4 029002
епсез) при 2,5х105 клеток/мл (500 мкл в расчете на вставку) в среде для выращивания, и 30 мл среды для выращивания добавляли на питающий планшет снизу. Клетки оставляли для прикрепления к коллагеновому матриксу и образования монослоев в течение 24 ч при 37°С, 5% СО2. Как вставки, так и питающий планшет в РВ8 и клетки инкубировали со средой для дифференциации энтероцитов ΒΌ Еп!его-8Т1М™, содержащей раствор сывороточного наполнителя М1ТО+™ (оба ΒΌ Вюзшепсез), 500 мкл в расчете на вставку и 30 мл в питающий планшет, в течение дополнительных 48 ч при 37°С, 5% СО2.
Таблица 1
Активные вещества, тестируемые на 8ОЬТ1 и ОЬиТ2 ингибирующую активность в клетках Сасо-2 с использованием 5 мМ Ό-глюкозы в течение 15 мин и 25 мМ Ό-глюкозы в течение 30 мин соответственно. Обозначенный класс транспортера, ингибируемый каждым активным веществом, основан на ингибиторах 8ОЬТ1, имеющих >20% ингибирования транспорта глюкозы при 5 мМ Ό-глюкозы и <20% ингибирования при 25 мМ Ό-глюкозе, и ОТНТ2 ингибиторах, имеющих >20% ингибирования как при 5 мМ, так
и при 25 мМ Ό-глюкозе
Химическое семейство: Тестируемое активное вещество3 Растворитель % ингибирования транспорта глюкозы Классь Поставщик
5 мМ 25 мМ
Халкон Флоридзин ЕДОН 57,57 18,42 36ЬТ1 ЗДдта
Флоретин ЕДОН 86, 77 76, 14 сьитг ЗДдта
Флавоноиды: | Флавоны Апигении ДМСО 56, 83 49,28 сьитг 31дта
Лютеолин ДМСО 77,42 63,24 сьитг 31дта
Лютеолин-7-глюкозид ДМСО 44,09 17,03 36ЬТ1 ЕхДгазупДНезе
Апигенин-7-глюкозид ДМСО 37,97 12,81 36ЬТ1 ЕхДгазупДНезе
Апигенин-8-С-глюкозид ДМСО 33, 84 5,76 36ЬТ1 ЕхДгазупДНезе
Кверцетин ДМСО 80,78 61,37 сьитг 31дта
Кемпферол ДМСО 25, 96 32,44 сьитг 31дта
Мирицетин ДМСО 76, 80 55, 04 сьитг Зтдта
Флавонолы Кемпферол 7-0-глюкозид ДМСО 43, 89 14,42 36ЬТ1 ЕхДгазупДНезе
Кемпферол 3-0-глюкозид ДМСО 53, 89 19, 12 36ЬТ1 ЕхДгазупДНезе
Кверцетин-3-глюкозид ДМСО 46,40 12,20 36ЬТ1 Р1апДСНет
Кверцетин-4-глюкозид ДМСО 43,20 19, 05 36ЬТ1 Р1апДСНет
Кверцетин-3,4'диглюкозид ДМСО 17,48 НТ Нет Р1апДСНет
Нарингенин ДМСО 68,96 57,05 сьитг ЗДдта
Пиноцембрин ДМСО 47,72 48,07 сьитг 31дта
Флаваноны Гесперетин ДМСО 72,34 74,43 сьитг 31дта
Нарингенин-7-0-глюкозид ДМСО 29, 56 0, 06 36ЬТ1 ЕхДгазупДНезе
Эридиктиол-7-0-глюкозид ДМСО 38,88 4,98 36ЬТ1 ЕхДгазупДНезе
Генистеин ДМСО 56, 53 57,73 сьитг 31дта
Изофлавоны Даидзеин-8-С-глюкозид ДМСО 20,31 12,88 36ЬТ1 31дта
Даидзеин-7-глюкозид ДМСО 35, 03 7,23 56ЪТ1 ЕхДгазупДНезе
Цианидин ДМСО 7,93 3,21 Нет СНгота Оех
Пеларгонидин ДМСО 4,07 16,48 Нет СНгота Оех
Мальвидин ДМСО 14,21 4,99 Нет СНгота Оех
Дельфининдин ДМСО 0, 01 15,86 Нет СНгота Оех
Антоцианидины Цианидин-3-глюко зид ДМСО 42,48 НО ЗСДТ1 ЕхДгазупДНезе
Цианидин-3-рутинозид ДМСО 19, 42 НО Нет ЕхДгазупДНезе
Мальвидин-3-0-глюкозид ДМСО 22,92 10, 91 36ЬТ1 ЕхДгазупДНезе
Дельфинидин-3-глюкозид ДМСО 41,27 13,58 56ЪТ1 ЕхДгазупДНезе
Пеларгонидин-3-глюкозид ДМСО 27,30 НО ЗСЬТ1 ЕхДгазупДНезе
Мальвидин 3-0-Галактозид ДМСО 19, 05 10,41 Нет Зтдта
а Все активные вещества тестировались в 150 мкМ и 300 мкМ для анализов ингибирования ОТНТ2 и ингибирования 8ОЬТ1 соответственно.
ь На основе ингибиторов 8ОЬТ1, имеющих >20% ингибирования при 5 мМ (глюкоза) и <20% ингибирования при 25 мМ, и ОТНТ2, имеющих >20% ингибирования и при 5 мМ и 25 мМ.
НО - не обнаружен.
НТ - не тестировался.
- 5 029002
Клеточная модель транспорта глюкозы.
Дифференцированные клеточные монослои аккуратно промывали в РВ§(+) и вставки переносили в новый стандартный 24-луночный планшет для культивирования тканей. Клетки инкубировали со свежим РВ§(+) (500 мкл в расчете на вставку и 1 мл в расчете на лунку) в течение 30 мин при 37°С 5% СО2. РВ§(+) аккуратно аспирировали и замещали на 250 мкл в расчете на вставку 5 мМ Ό-глюкозы ± тестируемое активное вещество, и 1 мл РВ§(+) быстро добавляли в каждую лунку снизу перед тем, как клетки помещали в инкубатор при 37°С 5% СО2. После 15 мин клеточные вставки переносили в новый 24луночный планшет, и затем добавляли 250 мкл 45 мМ Ό-глюкозы ± тестируемое активное вещество в каждую вставку (что привело в результате к конечной концентрации глюкозы 25 мМ) и еще раз в лунки добавляли 1 мл РВ§(+). После дополнительных 15 мин вставки еще раз переносили в новый 24-луночный планшет и в этот раз в лунки снизу добавляли только свежеприготовленный РВ§(+). Этот этап повторяли после еще 15 мин. Клеточные вставки переносили в новый 24-луночный планшет, супернатант аккуратно аспирировали от клеток и замещали 500 мкл 100 мкМ раствора ЬистСег Уе11о\у (§1§та) для подтверждения целостности монослоев. В каждую лунку добавляли 1 мл РВ§(+) и инкубировали при 37°С, 5% СО2 в течение 1 ч. Затем клеточные вставки удаляли и проницаемость мембран к ЬисгСег Уе11о\у проверяли измерением флуоресценции образцов при 485 нм (возбуждение) и 530 нм (эмиссия) на микропланшетном ридере флуоресценции §рес1татах Сетий ЕМ.
Глюкозный анализ.
После последней инкубации весь оставшийся РВ§(+) из каждого этапа (т.е. при 15, 30, 45 и 60 мин) подвергали исследованию уровней глюкозы, как описано в примере 1, и рассчитывали общий кумулятивный транспорт глюкозы.
Локализованные изменения концентрации глюкозы в просвете, описанные и проиллюстрированные в примере 1, имитировали ίη νίίτο посредством первоначального короткого инкубирования дифференцированных клеток Сасо-2 с низким уровнем Ό-глюкозы (5 мМ в течение 15 мин), за которым незамедлительно следовало длительное инкубирование с высоким уровнем Ό-глюкозы (конечная концентрация 25 мМ в течение 45 мин).
Фиг. 2 изображает общий кумулятивный транспорт глюкозы через дифференцированные монослои Сасо-2 в присутствии или отсутствии ингибитора §СЬТ1 в течение первых 15 мин в 5 мМ Ό-глюкозе и впоследствии в присутствии или отсутствии ингибитора СЬИТ2 в 25 мМ Ό-глюкозе в течение остальных 45 мин. Для подтверждения достоверности этой клеточной системы флоридзин (Р/) и флоретин (РА использовали в качестве общепризнанных специфичных ингибиторов §СЬТ1 и СЬИТ2 соответственно. §СЬТ1-специфичный ингибитор, флоридзин (Р/). демонстрирует снижение в общем кумулятивном переносе глюкозы (оКПГ), при добавлении сначала клеточной системы (Р/ ОК - столбик с горизонтальными полосками), при этом демострируя ингибирование 8СЬТ1, который является доминантным активным транспортером при низких уровнях глюкозы. Однако Р/ демонстрирует отсутствие ингибирования оКПГ при добавлении позже с высокой концентрацией Ό-глюкозы (ОК Р/ -столбик с точками), так как §СЬТ1транспортеры в этот момент являются насыщенными, и транспорт глюкозы в этот момент зависит от транспортеров СЬИТ2 с высокой емкостью. Специфичный ингибитор СЬиТ2, флоретин (Р1), демонстрирует значительное (р<0,05) снижение оКПГ при добавлении при высокой концентрации Ό-глюкозы, как и предполагалось (ОК Рί - столбики с диагональными полосками). Однако комбинация 300 мкМ Р/ при низких концентрациях глюкозы, за которой следует 125 мкМ Рί при высокой концентрации глюкозы, как оказалось, значительно (р<0,01) и синергетически ингибирует оКПГ. В этом синергизме используется требование первоначального переноса глюкозы внутрь энтероцита 8СЬТ1 перед тем, как высокоемкий СЬИТ2 может быть направлен к апикальной мембране. При использовании в комбинации как §СЬТ1, так и СЬИТ ингибиторы могут синергетически ингибировать локализованное всасывание глюкозы из кишечного просвета и, следовательно, снижают высокие "пики" постпрандиальной глюкозы в крови, связанные с началом диабета 2-го типа.
Следовательно, любой флавоноидный моноглюкозид, идентифицированный в примере 1 как специфичный ингибитор 8СЬТ1, может быть комбинирован с любым флавоноидным агликоном, идентифицированным в примере 1 в качестве специфичных СЬИТ2 ингибиторов для демонстрации для проявления синергетического ингибирования транспорта глюкозы через дифференцированный клеточный монослой Сасо-2, как подробно описано выше для комбинации Р/ и РР Это подтверждается комбинированием флавоновых моноглюкозидов лютеолин-7-глюкозида (Ь7С) и апигенин-8-С-глюкозида (А8С) с изофлавоновым агликон генистеином (фиг. 3 и 4 соответственно). Подобным образом, флавоноловые моноглюкозиды кверцетин-3-глюкозид (О3С) и кемпферол-3-глюкозид (К3С) могут быть комбинированы с флавоновым агликоном лютеолином и флаваноновыми агликонами гесперетина и нарингенина для демонстрации синергизма, как показано на фиг. 5, 6, 7 и 8. Более того, флаваноновый моноглюкозид - нарингенин-7-глюкозид (N70) демонстрирует ингибирование синергетического транспорта глюкозы при комбинировании с флавоновым агликоном апигенина (фиг. 9). В заключение, фиг. 10 демонстрирует синергетическое ингибирование транспорта глюкозы, демонстрируемое антоцианин дельфинидин-3-глюкозидом (Ό30) и изофлавоновым агликоном генистеина.
- 6 029002
Пример 3. Устойчивость флавоноидных глюкозидов к расщеплению человеческой лактазафлоридзингидролазой (ЙБРН).
Приготовление экстракта человеческой лактаза-флоридзингидролазы (БРН).
Человеческие эпителиальные клетки колоректальной аденокарциномы (Сасо-2) получали в Американской коллекции типовых культур (АТСС) и культивировали в модифицированной по способу Дульбекко среде Игла (ΌΜΕΜ) (с СЗШаМАХ™ I, 4500 мг/л И-глюкозы, 25 мМ НЕРБ5, 1пуйго§еп) +10% фетальная телячья сыворотка (РС5) (Зщша), неосновные аминокислоты ΜΕΜ (Пзйег 8с1епййс ИК Б1б,) и 1,0 мМ пирувата натрия (5ΙΟΜΑ) при конфлюентности в течение 21 дня перед экстракцией набором для экстракции трансмембранного белка Ыоуадеп ΡτοϊΌοΕχΐταΗΤΜ с использованием "Реагента А" (мягкий экстракционный реагент для регенерации хрупких белковых комплексов) и коктейля ингибиторов протеаз (включен в набор). Получали 200 мкл экстракта из каждой колбы Т175 см2. Экстракты хранили при -80°С в 50 мкл аликвотах. Перед применением экстракты частично очищали, удаляя низкомолекулярные интерферирующие компоненты пропусканием через маленькую спин-колонку С-25 Зерйабех 50-100 мкл (Косйе или ТйегтоПзйег ЗСепййс).
ЙБРН ферментный анализ.
10 мкл частично очищенного БРН экстракта добавляли к 90 мкл глюкозида (1,0 мМ конечная концентрация) в 0,1 М малеатном (51§ша) буфере, рН 6,0 и инкубировали в течение 60 мин при 37°С. Реакцию прекращали добавлением 200 мкл 2М Трис (51§ша), рН 8,0. Соответствующие холостые опыты осуществляли для каждого глюкозида (1,0 мМ) при 37°С в течение 60 мин добавлением Трис 2 М и затем БРН экстракта только в конце. 200 мкл получающейся в результате реакционной смеси пропускали через маленькую колонку С-18 (5ер-Рак® БщЫ С18 картридж 55-105 мкм, Аа!егз Б1б.), приготовленную с (метанолом степени очистки НРБС (У^К) и малеатным буфером)х5 раз для удаления потенциально интерферирующего гидрофобного БРН экстракта, субстрата (глюкозид) и компонентов продукта реакции (агликон). Это позволяло полную регенерацию глюкозы, что измеряли с использованием анализа глюкоза/глюкозоксидаза Атр1ех® Кеб. Кратко, 100 мкл реакционного реагента (0,5% 10 мМ Атрййи Кеб; 1,0% пероксидазы хрена 10 ЕД./мл и 1,0% глюкозоксидазы 100 ЕД./мл в забуференном фосфатом физиологическом растворе (РВ8), все реагенты от 8ΙΘΜΑ) добавляли к 50 мкл образца и инкубировали при комнатной температуре на орбитальном встряхивателе в течение 20 мин. Флуоресценцию считывали на планшетном ридере δресί^аΜаχ Сет1ш ΕΜ δΝ (Μο1еси1а^ Иеуюез) (возбуждение 530 нм и эмиссия при 590 нм).
Таблица 2
Глюкозидный гидролиз с БРН и устойчивость по сравнению с ^4С. Глюкозиды (1,0 мМ) смешивали с 10% БРН экстракта (клеточная линия Сасо2) в течение 1 ч при 37°С. Степень БРН гидролиза оценивали измерением продукта глюкозной реакции с использованием анализа глюкоза/глюкозоксидаза Атр1ех® Кеб. В таблице приведены глюкозиды, демонстрирующие большую устойчивость к гидролизу БРН, чем
94С
Субстраты (1,0 мМ) мкМ гидролизированного Устойчивость к гидролизу- Поставщик
субстрата/ч % от 04с
Ω3Ο Кверцетин-3глюкозид 0, 178 94,26 5 ЮМА
кзс Кемпферол-3глюкозид 0,224 92,78 ЕхДгазупДЬезе
ΡΣΖ Флоридзин 0,507 83, 64 31СМА
ϋδο Даидзеин-8глюкозид 0,552 82,19 31СМА
К7С Кемпферол-7глюкозид 0, 618 80,05 ЕхДгазупДЬезе
- 7 029002
А8С Апигенин-8глюкозид 0, 685 77,90 3Ι6ΜΑ
Ь7С Лютеолин-7глюкозид 0, 814 73,72 ЕхЕгазупЕНезе
РЗО Пеларгонидин-3глюкозид 1,272 58,94 Ро1урЬепо1з
N70 Нарингенин-7глюкозид 1,564 49, 52 ЕхЕгазупЕНезе
Ω4Ο Кверцетин-4глюкозид 3, 098 3Ι6ΜΑ
Табл. 2 демонстрирует изменение в скорости расщепления различных флавоноидных глюкозидов посредством ББРН. В то время как 940 демонстрирует наибольшую степень расщепления посредством ББРН, оказалось, что 930 является на приблизительно 95% более устойчивым к НБРН в этом анализе, чем 940. Подобным образом, все другие восемь глюкозидов демонстрируют повышенную устойчивость к НБРН по сравнению с 940, которая варьируется от 49,5% для N70 до 92,8% для К3О. Вследствие этого, эти глюкозиды будут менее подверженными гидролизу НБРН в кишечнике во время приема пищи и таким образом потенциально продлевают ее активность в качестве ингибитора 50БТ1. Вследствие этого выбор флавоноидных глюкозидов с по меньшей мере на 20% повышенной устойчивостью к НБРН, чем у 940, будет благоприятным для продлевания любой глюкозид-специфичной активности ΐη νίνο.
Пример 4. Бутилированная вода.
Сухой порошок, содержащий 200 мг кверцетин-3-глюкозида в расчете на 1 г и 125 мг лютеолина в расчете на 1 г и также содержащий ароматизаторы, добавляли к воде до концентрации 2 г сухого порошка в расчете на 1 л воды. Состав разливали в 250-мл бутылки и запечатывали. Каждую бутылку помечали "1 в день" или словами для этого эффекта. Следовательно, каждая бутылка доставляет суточную дозу 100 мг кверцетин-3-глюкозида и 62,5 мг лютеолина.
Пример 5. Саше для добавления к питанию.
Сухой порошок, содержащий 100 мг лютеолин-7-глюкозида в расчете на 1 г и 60 мг генистеина в расчете на 1 г и также содержащий ароматизаторы, рассыпали в саше с концентрацией 1 г в расчете на саше и запечатывали. Каждое саше помечали "1 в день" или словами для этого эффекта.

Claims (15)

  1. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ
    1. Съедобная композиция для замедления всасывания глюкозы в кишечнике, содержащая
    по меньшей мере 5%, в расчете на сухую массу, ингибитора транспортера глюкозы 2 (0БИТ2), где в качестве указанного ингибитора 0БИТ2 указанная композиция содержит по меньшей мере один флавоноидный агликон, и
    по меньшей мере 5%, в расчете на сухую массу, ингибитора натрий-глюкозного котранспортера 1 (50БТ1), где в качестве указанного ингибитора 50БТ1 указанная композиция содержит по меньшей мере один флавоноидный моноглюкозид,
    где указанный флавоноидный моноглюкозид выбран с обеспечением скорости его гидролиза лактаза-флоридзингидролазой менее 2,4784 мкМ/ч при измерении с использованием 1,0 мМ флавоноидного моноглюкозида и 10% экстракта лактаза-флоридзингидролазы (линии клеток Сасо-2) по прошествии 1 ч при 37°С.
  2. 2. Композиция по п.1, где флавоноидный агликон выбран из группы, состоящей из флавоновых агликонов, флаваноловых агликонов, флаваноновых агликонов, изофлавоновых агликонов и их смесей.
  3. 3. Композиция по п.2, где флавоноидный агликон выбран из группы, состоящей из апигенина, лютеолина, кверцетина, кемпферола, мирицетина, нарингенина, пиноцембрина, гесперетина, генистеина и их смесей.
  4. 4. Композиция по любому из предшествующих пунктов, где флавоноидный моноглюкозид выбран из группы, состоящей из лютеолин-7-глюкозида, апигенин-8-С-глюкозида, кемпферол-7-О-глюкозида, кемпферол-3 -О-глюкозида, нарингеноин-7-О-глюкозида, даидзеин-8-глюкозида, цианидин-3 -глюкозида, кверцетин-3-глюкозида, пелагонидин-3-глюкозида, мальвидин-3-глюкозида, дельфинидин-3-глюкозида и их смесей.
  5. 5. Композиция по любому из предшествующих пунктов, где молярное отношение флавоноидного
    - 8 029002
    агликона к флавоноидному моноглюкозиду находится в диапазоне от 4:1 до 1:4, предпочтительно от 3:1 до 1:3, наиболее предпочтительно от 2:1 до 1:2.
  6. 6. Композиция по любому из предшествующих пунктов, где указанная композиция содержит не более чем 50%, предпочтительно не более чем 10% по массе флавоноидного агликона.
  7. 7. Композиция по любому из предшествующих пунктов, где указанная композиция содержит не более чем 50%, предпочтительно не более чем 10% по массе флавоноидного моноглюкозида.
  8. 8. Композиция по любому из предшествующих пунктов в форме суточной дозы, при этом указанная суточная доза содержит по меньшей мере 50 мкмоль, предпочтительно по меньшей мере 100 мкмоль, наиболее предпочтительно по меньшей мере 250 мкмоль флавоноидного агликона и по меньшей мере 50 мкмоль, предпочтительно по меньшей мере 100 мкмоль, наиболее предпочтительно по меньшей мере 250 мкмоль флавоноидного моноглюкозида.
  9. 9. Композиция по любому из пп.1-8 для уменьшения постпрандиальной пиковой амплитуды глюкозы в крови или гликемического ответа у индивидуума, который не болен диабетом.
  10. 10. Композиция по любому из пп.1-8 для лечения диабета 2-го типа.
  11. 11. Способ уменьшения постпрандиальной пиковой амплитуды глюкозы в крови или гликемического ответа у индивидуума, который не болен диабетом, включающий следующие этапы:
    (a) пероральное введение композиции по пп.1-9 указанному индивидууму;
    (b) пероральное введение сахарида указанному индивидууму,
    где этап (а) происходит одновременно, предшествует на время от 0 до 90 мин или следует через 030 мин за этапом (Ь) и
    где указанный сахарид содержит глюкозу или является глюкозой.
  12. 12. Способ лечения диабета 2-го типа, включающий следующие этапы:
    (a) пероральное введение композиции по любому из пп.1-8 индивидууму, нуждающемуся в этом; и
    (b) пероральное введение сахарида индивидууму, нуждающемуся в этом,
    где этап (а) происходит одновременно, предшествует на время от 0 до 90 мин или следует через 030 мин за этапом (Ь) и
    где указанный сахарид содержит глюкозу или является глюкозой.
  13. 13. Способ по п.11 или 12, где указанный сахарид может быть выбран из группы, состоящей из полисахарида, олигосахарида, дисахарида, моносахарида и их смесей.
  14. 14. Применение композиции по любому из пп.1-8 для получения лекарственного средства для уменьшения постпрандиальной пиковой амплитуды глюкозы в крови или гликемического ответа у индивидуума, который не болен диабетом.
  15. 15. Применение композиции по любому из пп.1-8 для получения лекарственного средства для лечения диабета 2-го типа.
EA201391803A 2011-06-06 2012-05-29 Съедобная композиция EA029002B9 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP11168797 2011-06-06
PCT/EP2012/059956 WO2012168108A1 (en) 2011-06-06 2012-05-29 An edible composition

Publications (3)

Publication Number Publication Date
EA201391803A1 EA201391803A1 (ru) 2014-03-31
EA029002B1 true EA029002B1 (ru) 2018-01-31
EA029002B9 EA029002B9 (ru) 2019-02-28

Family

ID=44588275

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
EA201391803A EA029002B9 (ru) 2011-06-06 2012-05-29 Съедобная композиция

Country Status (9)

Country Link
US (1) US9387219B2 (ru)
EP (1) EP2717721B1 (ru)
CN (1) CN103813723B (ru)
AU (1) AU2012266581B2 (ru)
BR (1) BR112013030171B1 (ru)
CA (1) CA2835753C (ru)
EA (1) EA029002B9 (ru)
WO (1) WO2012168108A1 (ru)
ZA (1) ZA201308549B (ru)

Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2944311A1 (de) * 2014-05-16 2015-11-18 BioActive Food GmbH Kombination von biologisch aktiven Substanzen zur Behandlung von hyperglykämischen Erkrankungen
EA032673B1 (ru) * 2015-09-03 2019-06-28 Юнилевер Н.В. Съедобная композиция
CN108882742A (zh) * 2016-02-10 2018-11-23 Pm国际股份公司 用以减少和/或阻止肠道葡萄糖吸收的含有番石榴苷的组合物、膳食补充剂、组合物的用途和膳食补充剂的制备方法
WO2019002498A1 (en) * 2017-06-30 2019-01-03 Unilever Plc EDIBLE COMPOSITION
CN111973580B (zh) * 2020-09-15 2023-01-24 河南大学 咖啡酸在制备促进葡萄糖吸收药物方面的应用
CN115645431B (zh) * 2022-12-12 2023-03-21 汤臣倍健股份有限公司 一种组合物及其应用

Citations (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000025795A1 (en) * 1998-10-29 2000-05-11 Merck Patent Gmbh Compositions comprising a mixture of bioflavonols
JP2002080362A (ja) * 2000-06-21 2002-03-19 Kao Corp Ppar依存的遺伝子転写活性化剤
JP2004182685A (ja) * 2002-12-05 2004-07-02 Go Ri 苦蕎麦を原料とするアルドース還元酵素阻害剤及びソルビトール降下剤
US20040131749A1 (en) * 2002-08-29 2004-07-08 Archer-Daniels-Midland Company Phytochemicals from edible bean process streams
JP2004229615A (ja) * 2003-01-31 2004-08-19 New Industry Research Organization ケルセチン組成物、食品保存剤及びその製造方法
WO2005070441A1 (de) * 2004-01-27 2005-08-04 Lichtwer Healthcare Gmbh & Co. Kg Zwiebelextrakte
EP1576893A1 (en) * 2002-12-24 2005-09-21 Fuji Oil Company, Ltd. Composition containing isoflavone of high purity at high concentration and process for producing the same
WO2006031293A2 (en) * 2004-07-29 2006-03-23 Michigan State University Methods and compositions for the treatment of obesity, insulin related diseases and hypercholesterolemia
WO2006097660A2 (fr) * 2005-03-14 2006-09-21 Scalime Nutrition Utilisation d'un extrait d'oignon pour la fabrication d'une composition pour controler la prise de poids
WO2008135643A1 (fr) * 2007-05-04 2008-11-13 Nutraceutic Et Business Consulting Composition a activité lipolytique, son procédé d'obtention et utilisation de la composition.
KR20090125918A (ko) * 2008-06-03 2009-12-08 (주)에스에스사이언스 항당뇨성 조성물 및 그 제조방법
FR2935096A1 (fr) * 2008-08-21 2010-02-26 Cooperative Agricole D Elle Et Compositions riches en acide chlorogenique, leur procede d'obtention et leur utilisation
JP2011140457A (ja) * 2010-01-06 2011-07-21 Kobe Univ 筋肉の糖取り込み促進剤

Family Cites Families (17)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3806210A1 (de) 1988-02-26 1989-09-07 Robugen Gmbh Kamille
DE10053496A1 (de) 2000-10-27 2002-05-08 Peter Fuerst Zusammensetzungen enthaltend Flavonoide und Phloridzin oder Phloretin
DE60232140D1 (de) 2001-03-23 2009-06-10 Nutricia Nv Zusammensetzung zur prävention und/oder behandlung von verändertem knochenmetabolismus
FR2836336B1 (fr) 2002-02-26 2004-08-27 Diana Ingredients Utilisation dans un traitement cosmetique d'une fraction phenolique riche en dihydrochalcones
WO2006074278A2 (en) 2005-01-05 2006-07-13 Mitsunori Ono Compositions for treating diabetes or obesity
TW200637488A (en) 2005-01-21 2006-11-01 Western Holdings Llc Compositions containing botanical extracts rich in phlorizin and methods for using such compositions in blood glucose modification and to affect aging
US20060172012A1 (en) 2005-01-28 2006-08-03 Finley John W Anti-inflammatory supplement compositions and regimens to reduce cardiovascular disease risks
US20070009615A1 (en) 2005-04-29 2007-01-11 Litao Zhong Compositions and methods for controlling glucose uptake
US20070036874A1 (en) 2005-08-05 2007-02-15 Litao Zhong Compositions and methods for controlling glucose and lipid uptake from foods
FR2889955B1 (fr) 2005-08-31 2008-12-19 Cooperative Agricole Elle Et V Procede d'obtention d'un extrait vegetal de fruits a pepins, extrait vegetal ainsi obtenu et ses utilisations
US20080096825A1 (en) 2006-04-21 2008-04-24 Ehrenkranz Joel R L Preparation and Use of Phlorizin Compositions
EP2040708B1 (en) 2006-07-17 2018-03-14 Thomas Christian Lines Quercetin-containing compositions
MX2009009996A (es) 2007-03-19 2010-01-20 Atm Metabolics Lllp Composicion y metodo para tratar diabetes y trastornos metabolicos.
WO2008124105A1 (en) 2007-04-04 2008-10-16 Naturegen, Inc. Compositions and methods for obesity, diabetes and metabolic syndrome control and management
WO2009066303A2 (en) 2007-11-22 2009-05-28 Ganga Raju Gokaraju New synergistic phytochemical composition for the treatment of obesity
IT1392101B1 (it) 2008-12-12 2012-02-09 Zuccari Societa A Responsabilita Limitata In Breve Zuccari S R L Composizione comprendente isoflavoni
CN101991593A (zh) * 2009-08-14 2011-03-30 张景元 槲皮苷在制药中的应用

Patent Citations (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000025795A1 (en) * 1998-10-29 2000-05-11 Merck Patent Gmbh Compositions comprising a mixture of bioflavonols
JP2002080362A (ja) * 2000-06-21 2002-03-19 Kao Corp Ppar依存的遺伝子転写活性化剤
US20040131749A1 (en) * 2002-08-29 2004-07-08 Archer-Daniels-Midland Company Phytochemicals from edible bean process streams
JP2004182685A (ja) * 2002-12-05 2004-07-02 Go Ri 苦蕎麦を原料とするアルドース還元酵素阻害剤及びソルビトール降下剤
EP1576893A1 (en) * 2002-12-24 2005-09-21 Fuji Oil Company, Ltd. Composition containing isoflavone of high purity at high concentration and process for producing the same
JP2004229615A (ja) * 2003-01-31 2004-08-19 New Industry Research Organization ケルセチン組成物、食品保存剤及びその製造方法
WO2005070441A1 (de) * 2004-01-27 2005-08-04 Lichtwer Healthcare Gmbh & Co. Kg Zwiebelextrakte
WO2006031293A2 (en) * 2004-07-29 2006-03-23 Michigan State University Methods and compositions for the treatment of obesity, insulin related diseases and hypercholesterolemia
WO2006097660A2 (fr) * 2005-03-14 2006-09-21 Scalime Nutrition Utilisation d'un extrait d'oignon pour la fabrication d'une composition pour controler la prise de poids
WO2008135643A1 (fr) * 2007-05-04 2008-11-13 Nutraceutic Et Business Consulting Composition a activité lipolytique, son procédé d'obtention et utilisation de la composition.
KR20090125918A (ko) * 2008-06-03 2009-12-08 (주)에스에스사이언스 항당뇨성 조성물 및 그 제조방법
FR2935096A1 (fr) * 2008-08-21 2010-02-26 Cooperative Agricole D Elle Et Compositions riches en acide chlorogenique, leur procede d'obtention et leur utilisation
JP2011140457A (ja) * 2010-01-06 2011-07-21 Kobe Univ 筋肉の糖取り込み促進剤

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
HODA M EID, LOUIS C MARTINEAU, AMMAR SALEEM, ASIM MUHAMMAD, DIANE VALLERAND, ALI BENHADDOU-ANDALOUSSI, LIDIA NISTOR, ARVIND AFSHAR: "Stimulation of AMP-activated protein kinase and enhancement of basal glucose uptake in muscle cells by quercetin and quercetin glycosides, active principles of the antidiabetic medicinal plant Vaccinium vitis-idaea", MOLECULAR NUTRITION & FOOD RESEARCH, WILEY - VCH VERLAG, WEINHEIM, DE, vol. 54, no. 7, 1 July 2010 (2010-07-01), DE, pages 991 - 1003, XP002659611, ISSN: 1613-4125, DOI: 10.1002/mnfr.200900218 *
JACKSON C-J C; DINI J P; LAVANDIER C; RUPASINGHE H P V; FAULKNER H; POYSA V; BUZZELL D; DEGRANDIS S: "Effects of processing on the content and composition of isoflavones during manufacturing of soy beverage and tofu", PROCESS BIOCHEMISTRY, ELSEVIER SCIENCE PUBLISHERS LTD, GB, vol. 37, no. 10, 1 May 2002 (2002-05-01), GB, pages 1117 - 1123, XP002659610, ISSN: 0032-9592, DOI: 10.1016/S0032-9592(01)00323-5 *
WPI / Thomson Week 200242, 19 March 2002 Derwent World Patents Index; XP002659613, HASE T; MURASE T; TOKIMITSU I: "Peroxisome proliferator activated receptor (PPAR) dependent gene transcription activators" *
WPI / Thomson Week 200447, 2 July 2004 Derwent World Patents Index; XP002659612, RI G: "Aldose reductase inhibitor for treating diabetes, contains nigasoba component, obtained by crushing and alcohol extracting nigasoba-plant parts containing outer layer of fruit, as active ingredient" *
WPI / Thomson Week 200458, 19 August 2004 Derwent World Patents Index; XP002659614, ISHIMURA F; KANAZAWA K: "Composition used in foodstuff preservative, contains quercetin, quercetin glycoside and protocatechuic acid" *
WPI / THOMSON Week 201042, 8 December 2009 Derwent World Patents Index; XP002682623, OH C; PARK D: "Antidiabetic composition comprises isoquercetin and one or more of rutin, quercetin, quercetinin and quercetin glycoside" *

Also Published As

Publication number Publication date
BR112013030171B1 (pt) 2021-10-05
WO2012168108A1 (en) 2012-12-13
CN103813723A (zh) 2014-05-21
ZA201308549B (en) 2015-02-25
EP2717721A1 (en) 2014-04-16
CA2835753A1 (en) 2012-12-13
EP2717721B1 (en) 2017-07-12
AU2012266581B2 (en) 2014-10-30
EA029002B9 (ru) 2019-02-28
BR112013030171A2 (pt) 2016-08-09
US9387219B2 (en) 2016-07-12
CN103813723B (zh) 2017-03-15
CA2835753C (en) 2020-03-10
EA201391803A1 (ru) 2014-03-31
AU2012266581A1 (en) 2013-11-21
US20140107052A1 (en) 2014-04-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US9943535B2 (en) Edible composition comprising resveratrol and flavonoid monoglucoside
Hakimuddin et al. Selective cytotoxicity of a red grape wine flavonoid fraction against MCF-7 cells
EA029002B1 (ru) Съедобная композиция
Cermak et al. Quercetin glucosides inhibit glucose uptake into brush-border-membrane vesicles of porcine jejunum
Schulze et al. Inhibition of the intestinal sodium‐coupled glucose transporter 1 (SGLT1) by extracts and polyphenols from apple reduces postprandial blood glucose levels in mice and humans
Day et al. Absorption of quercetin-3-glucoside and quercetin-4′-glucoside in the rat small intestine: the role of lactase phlorizin hydrolase and the sodium-dependent glucose transporter
Manach et al. Pharmacokinetics and metabolism of dietary flavonoids in humans
US20090075908A1 (en) Agent For Strengthening Calcium Containing Tissue and Use Thereof
CA2573510C (en) Insulin secretion by anthocyanins and anthocyanidins
US10806744B2 (en) Edible composition
Calhau et al. Interaction of polyphenols with the intestinal and placental absorption of some nutrients and other compounds
Chen et al. Are there age-related changes in flavonoid bioavailability
JP2007314446A (ja) Ampk活性化剤
Day et al. Absorption of quercetin glycosides
US20110274679A1 (en) Compositions and Methods of SIRT Activation
JP2004323469A (ja) Ii型糖尿病の予防、治療用の医薬組成物および食品
Ranjbar Influence of lactase on the in vitro and in vivo antiglycaemic effects of onion flavonoids
Pyner The chronic and acute effects of (poly) phenols on sucrase isomaltase using the Caco-2/TC7 cell model
Edwards Biological activity of anthocyanins and their phenolic degradation products and metabolites in human vascular endothelial cells
Walle et al. and Jaya b. Vaidyanathan Medical University of South Carolina Charleston, South Carolina, USA
Kren 12.7 Glycoside vs. Aglycon: The Role of Glycosidic Re-sidue in Biological Activity

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s)

Designated state(s): AM AZ BY KZ KG TJ TM

TH4A Publication of the corrected specification to eurasian patent