DK161095B - Fremgangsmaade til enzym-immunanalyse af pankreatisk glucagon og peptid-enzym-konjugat til brug ved denne fremgangsmaade - Google Patents

Fremgangsmaade til enzym-immunanalyse af pankreatisk glucagon og peptid-enzym-konjugat til brug ved denne fremgangsmaade Download PDF

Info

Publication number
DK161095B
DK161095B DK360379A DK360379A DK161095B DK 161095 B DK161095 B DK 161095B DK 360379 A DK360379 A DK 360379A DK 360379 A DK360379 A DK 360379A DK 161095 B DK161095 B DK 161095B
Authority
DK
Denmark
Prior art keywords
peptide
conjugate
asp
arg
gln
Prior art date
Application number
DK360379A
Other languages
English (en)
Other versions
DK161095C (da
DK360379A (da
Inventor
Hayao Ueno
Mitsuhiro Wakimasu
Susumu Iwasa
Original Assignee
Takeda Chemical Industries Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Takeda Chemical Industries Ltd filed Critical Takeda Chemical Industries Ltd
Publication of DK360379A publication Critical patent/DK360379A/da
Publication of DK161095B publication Critical patent/DK161095B/da
Application granted granted Critical
Publication of DK161095C publication Critical patent/DK161095C/da

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/605Glucagons
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/08Tripeptides
    • C07K5/0802Tripeptides with the first amino acid being neutral
    • C07K5/0804Tripeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic
    • C07K5/0808Tripeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic the side chain containing 2 to 4 carbon atoms, e.g. Val, Ile, Leu
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/10Tetrapeptides
    • C07K5/1002Tetrapeptides with the first amino acid being neutral
    • C07K5/1005Tetrapeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic
    • C07K5/101Tetrapeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic the side chain containing 2 to 4 carbon atoms, e.g. Val, Ile, Leu
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/96Stabilising an enzyme by forming an adduct or a composition; Forming enzyme conjugates
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/531Production of immunochemical test materials
    • G01N33/532Production of labelled immunochemicals
    • G01N33/535Production of labelled immunochemicals with enzyme label or co-enzymes, co-factors, enzyme inhibitors or enzyme substrates
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/964Chemistry: molecular biology and microbiology including enzyme-ligand conjugate production, e.g. reducing rate of nonproductive linkage

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

DK 161095 B
Den foreliggende opfindelse angår fremgangsmåde til enzym-immunanalyse af pankreatisk glucagon (H-His-Ser-Gln-Gly-Tilr-Phe-Thr-Ser-Asp-Tyr-Ser-Lys-Tyr-Leu-Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-G?n-Asp-Phe-Val-Gln-Trj5-Leu-Met-Asn-Tfir-OH). Opfin-5 delsen angår tillige et peptid-enzym-konjugat til brug ved denne fremgangsmåde.
Pankreatisk glucagon, der i det følgende også vil blive betegnet PG, er et hormon der spiller en vigtig rolle ved kontrollen med blodsukkerniveauet hos dyr, og til belysning 10 af forstyrrelser i sukkerstofskiftet er det væsentligt at have indsigt i dynamikken med PG-sekretion. Det er derfor ønskeligt at tilvejebringe en praktisk, stærkt følsom og specifik fremgangsmåde til kvantitativ bestemmelse eller analyse af dette hormon, og nu om stunder bruger man udstrakt radioimmunanaly-15 seprocesser, i det følgende for korthedens skyld betegnet RIA, til dette formål.
Som bekendt indebærer RIA imidlertid brug af en radioisotop som et væsentligt analyseredskab, og dette medfører risiko for at påvirke menneskelegemet og for at bevirke for-20 urening af omgivelserne. Radioisotopmetoden har derudover den ulempe at forskellige love, regler og forskrifter gør det nødvendigt at bruge specielt udstyr såvel som kvalificeret personale og eventuelt kontrolpersonale kvalificeret til betjening af sådant udstyr. Som fremgangsmåde til at overvin-25 de disse ulemper ved RIA er det hensigtsmæssigt at bruge den såkaldte enzym-immunanalysemetode (i det følgende for kortheds skyld betegnet EIA), idet en sådan metode er let at udøve og giver overordentligt pålidelige kvantitative resultater.
30 De principper der ligger til grund for EIA ligner dem der ligger til grund for RIA, men eftersom der bruges et enzym som mærkningsmiddel, kan EIA hensigtsmæssigt og uden problemer gennemføres i almindelige forskningslaboratorier eller kliniske laboratorier. Da imidlertid koncentrationen af pan- 35 kreatisk glucagon i blodet er meget lav, har de konventionel- ί ! le EIA-processer ikke hidtil givet tilfredsstillende data i 1 kliniske tilfælde, idet sådanne.fremgangsmåder har ringere følsomhed end RIA.
DK 161095 B
2 På denne tekniske baggrund er der som led i forebere-delserne til den foreliggende opfindelse blevet syntetiseret forskellige peptider og gennemført undersøgelser med henblik på at bruge dem i en tilstand hvor de er mærket med enzymer 5 til udvikling af en EIA-proces som kan tillade specifik kvantitativ bestemmelse af pankreatisk glucagon i en legemsvæske med en følsomhed og nøjagtighed, der i det mindste står på højde med følsomheden og nøjagtigheden af RIA. Disse undersøgelser har vist at et konjugeret produkt af et mærknings-10 enzym med et peptid som ikke er det samme som det peptid der bruges til fremstilling af PG-specifikt antistof, er særdeles værdifuldt til formålet. Denne konstatering blev efterfulgt af yderligere undersøgelser som mundede ud i den foreliggende opfindelse.
15 I overensstemmelse hermed angår opfindelsen et peptid- enzym-konjugat som er ejendommeligt ved det i krav 1's kendetegnende del angivne.
Som nævnt angår opfindelsen også en fremgangsmåde til enzym-immunanalyse af pankreatisk glucagon under anvendelse 20 af et peptid-enzym-konjugat som analysereagens, og denne fremgangsmåde er ifølge opfindelsen ejendommelig ved det i krav 6's kendetegnende del angivne.
Konjugatet og fremgangsmåden ifølge opfindelsen skal i det følgende forklares mere udførligt lige som de peptider 25 der indgår i det pågældende konjugat.
I de ovennævnte formler kan der som eksempler på R^, der jo angår et peptidfragment bestående af 1-10 aminosyre-rester i den nævnte sekvens (3-Ala-Tyr-Leu-Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp, indbefattende Asp i 10-stillingen i denne se-30 kvens, kan nævnes Asp, Gin-Asp, Ala-Gln-Asp, Arg-Ala-Gln-Asp, Arg-Arg-Ala-Gln-Asp, Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp, Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp, Leu-Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp, Tyr-Leu-Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp og β-Ala-Tyr-Leu-Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp.
35 Som et af de foretrukne peptid-enzym-konjugater kan der nævnes et konjugat vundet ved kobling af et mærkningsenzym med et peptid med formlen 3
DK 161095 B
3
H-R^-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Met-Asn-Thr-OH
hvor R er et peptidfragment bestående af 1-7 aminosyrere-ster i sekvensen Asp-slr-A^g-Arg-AlI-GlÉ-Asp, incl. Asp i 7-stillingen.
5 Som peptid der kan indgå i det ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen anvendte konjugat kan nævnes et peptid med formlen
H-R1-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-R2-Asn-Thr-OH
10 1 2 hvor R og R har de ovenfor angivne betydninger og peptidet med formlen
H-R^-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-R2-Asn-Thr-OH
15 hvor R2 betegner Met eller Nle og R^ betegner enten Asp eller Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp eller (3-Ala-Tyr-Leu-Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp.
I nærværende beskrivelse med tilhørende krav er, når aminosyrer, peptider, beskyttelsesgrupper, reaktive grupper 20 etc. er gengivet ved forkortelser, disse forkortelser enten dem der er anvendt i henhold til IUPAC-IUB Commission on Biological Nomenclature eller dem der rutinemæssigt anvendes på dette område af teknikken. De vigtigste af disse forkortelser er vist nedenfor. I denne sammenhæng skal det nævnes at 25 når der er involveret optisk isomeri ved aminosyrer etc., menes der normalt L-formerne med mindre andet er angivet.
Arg: arginin
Trp: tryptofan
Asn: asparagin 30 Asp: asparaginsyre
Thr: threonin
Ser: serin
Glu: glutaminsyre
Gin: glutamin 35 Ala: alanin
Val: valin
Met: metionin
Met(O):metioninsulfoxyd Leu: leucin
DK 161095 B
4
Tyr: tyrosin β-Ala: β-alanin Nle: norleucin
Phe: fenylalanin 5 Z: karbobenzoxy
Boc: t-butyloxykarbonyl OBut: t-butylester OBzl: benzylester ONB: N-hydroxy-5-norbornen-2,3-dikarboximidester 10 MBS: p-metoxybenzensulfonyl HONB: N-hydroxy-5-norbornen-2,3-dikarboximid DCC: N, N'-dicyklohexylkarbodi imid DCU: N,N'-dicyklohexylurinstof DMF: N ,N-dime tyl formamid 15 NMP: N-metyl-2-pyrrolidon TFA: trifluoreddikesyre THF: tetrahydrofuran TEA: triætylamin DCHA: dicyklohexylamin 20 CMC: karboxymetylcellulose ECDI: l-ætyl-3-(3-dimetylaminopropyl)-karboaiimid CMCT: 1-cyklohexyl-3-(2-morfolinoætyl)-karbodiimido-meto-p- toluensulfonat GLA: glutaraldehyd 2 5 m-MBHS: meta-maleimidobenzoyl-N-hydroxy succinimidester p-MCHS s para-maleimidometylcyklohexan-l-karboxyl-N-hydroxy-succinimidester
EDTA: dinatr ium-æty lendiamintetraacetat, 2H2O
HSA: humant serumalbumin 25 BSA: okse-serumalbumin
De forskellige peptider, som er nyttige i forbindelse med den foreliggende opfindelse, kan fremstilles med processer der i og for sig er kendt ved peptidsyntese. Således kan man bruge både fastfase- og væskefasemetoder, men væskefase-30 metoderne er fordelagtige i mange tilfælde. Sådanne metoder til peptidsyntese kan findes i litteraturen, fx Schroder og Lubke: The Peptides, Vol. 1 (1966), Academic Press, New
DK 161095 B
5
York, USA; Izumiya et al: Peptide Gose (Peptide Synthesis), Maruzen Inc., Japan (1975); M. Bodansky og M.A. Ondetti:
Peptide Synthesis, Interscience, New York, 1966; og F.M.
Finn og K. Hofman: The Proteins, bind 2, redigeret af Η.
5 Nenrath, R.L. Hill, Academic Press Inc., New York 1976. Således kan der nævnes azidmetoden, kloridmetoden, syreanhy-dridmetoden, den blandede syreanhydridmetode, DCC-metoden, den aktive estermetode, den metode der indebærer anvendelse af Woodward's reagens K, karbodiimidazolmetoden, reduktions-10 oxydationsmetoden, DCC/additiv (fx HONB, HOBt, HOSu) etc.
Det peptid der indgår i det foreliggende konju-gat kan fremstilles ved at man kondenserer et udgangsmateriale med en reaktiv karboxylgruppe, der svarer til enten et af de to fragmenter af peptidet som delt i en vilkårlig af pep-15 tidbindingerne, med et korresponderende udgangsmateriale med en aktiv aminogruppe svarende til det andet af de to nævnte fragmenter og på i og for sig konventionel måde, hvorpå man såfremt det resulterende kondensationsprodukt indeholder en eller flere beskyttelsesgrupper fjerner den eller dem på i 20 og for sig kendt måde.
Ved udførelse af reaktionen til fremstilling af peptidet foretrækkes det normalt at Asp i forvejen er beskyttet.
I mange tilfælde vindes det ønskede produkt ved fjernelse i sidste trin af beskyttelsesgrupper fra peptidet som er be-25 skyttet i mindst en af de aminosyrerester som peptidet er sammensat af. Beskyttelsen af de funktionelle grupper, som ikke skal involveres i reaktionen og som kan være sket med grupper som kan være til stede i udgangsmaterialet, beskyttelsesgrupper som er nyttige til sådanne formål og fremgangs-30 måder til fjernelse af sådanne beskyttelsesgrupper samt aktivering af de funktionelle grupper, der skal indgå i selve reaktionen, kan alt sammen udføres ved metoder der er i og for sig konventionelle og som kan vælges blandt kendte grupper og fremgangsmåder.
35 Som eksempler på aminobeskyttelsesgrupper som er vel egnede til beskyttelse af aminogrupperne i udgangsmaterialer- [ i ne kan nævnes karbobenzoxy, t-butyloxykarbonyl, t-amyloxykar-bonyl, isobornyloxykarbonyl, p-metoxybenzyloxykarbonyl, 2-
DK 161095 B
6 klorbenzyloxykarbonyl, adamantyloxykarbonyl, trifluoracetyl, ftalyl, formyl, o-nitrofenylsulfenyl,og difenylfosfinotioyl.
Som eksempler på karboxylbeskyttelsesgrupper kan nævnes sådanne esterdannende grupper som dem der har evne til at give 5 alkylestere (fx metyl-, ætyl-, propyl-, butyl- og t-butyl-estere), en benzylester, p-nitrobenzylester, p-metoxybenzyl-ester, p-klorbenzylester og benzhydrylester, samt hydrazid-dannende grupper såsom dem der har evne til at danne karbo-benzoxyhydrazid, t-butyloxykaibonylhydrazjd eller tritylhy-10 drazid. Som grupper egnet til beskyttelse af guanidingruppen i Arg, kan fx nævnes nitro-, tosyl-, p-metoxybenzensulfonyl-, karbobenzoxy-, isobomyloxykarbonyl- og adamantyloxykarbonyl-gruppen. Guanidingruppen kan også beskyttes i form af et salt med en syre, fx benzensulfonsyre, toluensulfonsyre, saltsyre 15 eller svovlsyre.
Hydroxylgruppen i Thr kan fx beskyttes ved forestring eller forætring. Som eksempler på grupper der egner sig til forestringen kan nævnes små alkanoylgrupper som fx acetyl, aroylgrupper som fx benzoyl og grupper afledet af karbonsyrer, 20 fx benzyloxykarbonyl- eller ætyloxykarbonylgruppen. Som grupper der er egnet til forætring kan fx nævnes benzyl, tetra-hydropyranyl og t-butyl. Hydroxylgruppen i Thr behøver imidlertid ikke nødvendigvis at blive beskyttet. Met kan være beskyttet i forvejen i form af et sulfoxyd. Som eksempler på 25 den aktiverede karboxylgruppe i udgangsmaterialet kan nævnes det tilsvarende syreanhydrid, azid, aktive ester (som fx ester med pantaklorfenol, p-nitrofenol, N-hydroxysuccinimid, N-hydroxybenzotriazol eller N-hydroxy-5-norbornen-2,3-dikarb-oximid.
30 Nogle reaktioner til dannelse af peptidbindinger kan gennemføres i nærværelse af et dehydratiseringsmiddel såsom karbodiimidreagenser, fx dicyklohexylkarbodiimid eller karbo-diimidazol. Kondensationsreaktionen til fremstillingen af peptidet kan udføres i nærværelse af et opløsningsmiddel. Op-35 løsningsmidlet kan vælges blandt de opløsningsmidler som er kendt for at være nyttige til peptiddannelses-kondensations-reaktioner. Således kan der fx nævnes tørt eller vandigt dimetylformamid, dimetylsulfoxyd, pyridin, kloroform, dioxan, DK 161095 7 diklormetan, tetrahydrofuran, ætylacetat, N-metylpyrrolidon eller passende blandinger deraf.
Reaktionstemperaturen kan ligge i det område der vides at være hensigtsmæssigt til kondensationsreaktioner til 5 peptiddannelse. Således kan temperaturen normalt ligge inden for området mellem -40 og +60°C, fortrinsvis fra ca. -20°C til ca. 0°C.
Efter kondensationsreaktionen kan den eller de beskyttelsesgrupper der findes på det dannede peptid fjernes på 10 konventionel måde. Som eksempler på sådanne kendte måder kan nævnes reduktive metoder (fx hydrogenering med en katalysator såsom palladium sort eller reduktion med natriummetal i flydende ammoniak) og acidolyse (fx acidolyse med en stærk syre såsom trifluoreddikesyre, hydrogenfluorid eller metan-15 sulfonsyre).
Det peptid der dannes på denne måde kan isoleres fra reaktionsblandingen ved kendte peptidfraskillelsesteknik, fx ekstraktion, fordeling eller søjlekromatografi.
Da peptidet indeholder argininrester, kan det isoleres 20 i form af et salt. Som eksempler på syrer med evne til at danne sådanne salte kan nævnes uorganiske syrer såsom saltsyre, brombrintesyre, salpetersyre, svovlsyre og fosforsyre samt organiske syrer såsom myresyre, eddikesyre, propionsyre, mælkesyre, citronsyre, oxalsyre og maleinsyre.
25 Udgangsmaterialerne til fremstilling af det omhandlede peptid kan også fremstilles ved de ovennævnte konventionelle processer til peptidsyntese, dvs. ved kondensation af aminosyrer i overensstemmelse med aminosyresekvensen i hvert udgangsmateriale .
30 Den foreliggende fremgangsmåde til EIA af pankretisk glucagon er anvendelig til (1) bestemmelse af pankreatisk glucagon i en prøvevæske såsom plasma, bestående i at man tilsætter en kendt mængde peptid-enzym-konjugat og en kendt mængde af et uopløseligt PG-specifikt antistof til en væske 35 indeholdende en ukendt mængde pankreatisk glucagon, hvorpå man bestemmer enzymaktiviteten' af peptid-enzym-konjugatet i væskefasen eller i det omsatte peptid-enzym-konjugat på den faste fase (FEBS Letters 15, 232, 1971; (2) bestemmelse af
DK 161095 B
8 pankreatisk glucagon i en prøvevæske, bestående i at man sætter en kendt mængde af et peptid-enzym-konjugat og en kendt mængde af et opløseligt PG-specifikt antistof til en prøvevæske som indeholder pankreatisk glucagon for at forårsage 5 en konkurrerende bindingsreaktion, hvorefter man tilsætter en kendt mængde af et andet antistof som er uopløseligt i første antistof (dvs. at når fx det PG-specifikke antistof er blevet fremstillet ved hjælp af en kanin, så et anti-ka-nin immunoglobulin G (IgG) antistof), og på samme måde som 10 under (1) bestemmelse af enzymaktiviteten i væskefasen eller på den faste fase (FEBS Letters, loc.cit), og (3) bestemmelse af pankreatisk glucagon i en prøvevæske, bestående i at man sætter en kendt mængde af et peptid-enzym-konjugat og en kendt mængde af et opløseligt PG-specifikt antistof til 15 en prøvevæske indeholdende pankreatisk glucagon, så at man forårsager at en konkurrerende bindingsreaktion finder sted på samme måde som under (2), hvorpå man tilsætter en kendt mængde af et andet antistof og, når det andet antistof er et anti-dyr (fx anti-kanin) IgG antistof, så et normalt dyre-20 serum, fx kaninserum, til at fremkalde en fældningsreaktion, hvorpå man bestemmer enzymaktiviteten i væskefasen eller på den faste fase som beskrevet under (1) (Clinica Chimica Acta 67, 263, 1976). Med en hvilken som helst af disse processer er det fordelagtigt at udføre en aktivitetsbestemmelse på den 25 faste fase, for når man måler væskefasens enzymaktivitet, kan urenheder i prøvevæsken påvirke resultaterne. Ud fra synspunkter med ; hensyn til reproducerbarhed og følsomhed er det mest ønskeligt at bruge de "dobbelte antistofproces-ser", der muliggør bestemmelse med en ringe mængde PG-speci- 30 fikt antistof, nemlig ovennævnte metoder (2) og p) .
forholder det sig saledes I alle de ovennævnte metoder /ht kun hvis peptid-enzym-konjugatets affinitet til antistoffet kan nedsættes i forhold til det pankreatiske glucagon, kan koblingen af konjugatet til antistoffet ved disse analysesystemer let erstattes med 35 en lille mængde pankreatisk glucagon, med det resultat at selv meget små koncentrationer pankreatisk glucagon kan opdages og bestemmes.
Det enzym der bruges som mærkningsmiddel bør være et 9 DK 161095 B ! som er stabilt og har høj specifik aktivitet. Således kan man bl.a. med fordel bruge peroxydase, β-D-glactosidase, β-D-glucosidase, β-glucuronidase, alkalisk fosfatase, glucoamyla-se, a-amylase, Taka-amylase A, urease eller cholinesterase, 5 men ifølge opfindelsen kan man med særlig fordel bruge β-D-galactosidase eller alkalisk fosfatase.
Ved fremstilling af peptid-enzym-konjugatet ifølge opfindelsen kan man udnytte de substituentgrupper som er til stede i peptidet og enzymet såsom amino-, karboxyl-, hydroxy-10 eller/og sulfhydrylgrupper. Som eksempler på kondensationsmidler kan nævnes (i) vandopløselige karbodiimidreagenser som fx EDCI og CMCT, der er i stand til at forbinde den reaktive aminogruppe i peptidet eller enzymet med den reaktive karboxyl-gruppe i modstykket i et vandigt opløsningsmiddel under eli-15 minering af vand, (ii) N-hydroxysuccinimidester-maleimiderings-reagenser, fx m-MBHS og p-MCHS, der har evne til at maleimide-re den reaktive aminogruppe i peptidet ved en reaktion af sidstnævnte med en aktiveret ester af N-hydroxysuccinimid, hvorefter den maleimidérede aminogruppe får lov til at binde 20 sig til enzymets sulfhydrylgruppe, og (iii) dialdehydreagen-serne, fx ravsyredialdehyd og GLA, der har evne til at bevirke at den reaktive aminogruppe i peptidet eller enzymet forener sig med den reaktive aminogruppe i det andet materiale.
Koblings- eller kondensationsreaktionen mellem peptidet 25 og enzymet kan udføres med et hvilket som helst kondensationsmiddel som egner sig til kondensation af de to materialer, skønt forannævnte karbodiimid-, maleimid- og dialdehydreagen-ser foretrækkes. Kondensationsreaktionen kan udføres i vandigt opløsningsmiddel, der kan vælges blandt de opløsningsmid-30 ler der er kendt for at være egnede til kondensation mellem et peptid og et enzym. Som eksempler på sådanne opløsningsmidler kan nævnes fosfatpuffer i pH-området pH 6 til pH 8 og bo-ratpuffer i området pH 7 til pH 9.
Varigheden af kondensationsreaktionen mellem peptidet 35 og enzymet er normalt et eller andet sted mellem 30 minutter og 20 timer. Af hensyn til enzymets stabilitet er reaktions- : tiden fortrinsvis fra 30 minutter til 3 timer. Ved lav temperatur kan reaktionen imidlertid udføres over en forholdsvis
DK 161095 B
10 langvarig forlænget tid på 2-4 døgn. Normalt kan reaktions-temperaturen ligge fra ca. 4°C til 50°C og fortrinsvis fra omkring 15 til 30°C.
Efter kondensationsreaktionen kan det som produkt 5 fremkomne peptid-enzym-konjugat renses og udvindes ved søjlekromatografi på en passende molekylsigte, fx "Sephadex" ® G100 eller G200, "Sepharose" ® 6B eller 4B (alle fra Pharmacia Fine Chemicals, Sverige) eller lignende molekylsigte-materiale.
10 Som eksempler på et peptid-enzym-konjugat der er egnet i relation til den foreliggende opfindelse, kan følgende kon- jugater nævnes. Til bestemmelse af pankreatisk glucagon med 30K, G21, G7, R517 eller et andet antistof fremstillet ved immunisering af kaniner med pankreatisk glucagon, kan der op- 15 nås et i høj grad følsomt resultat med peptid-enzym-konjuga- tet fremstillet ved kondensation af et enzym med et peptid med formlen H-R^-Pfie-Val-Gln-Trp-Leu-R^-Asn-Tiilr-OH, hvor R^ er et peptidfragment bestående af 1-9 aminosyrerester op til . 2 stilling 21 i pankreatisk glucagon, og R betegner Met eller 20 Nle. Særlig velegnet er konjugatet af et enzym med et peptid med formlen H-AsB-Ser-Arg-Arg-Ala-G?R-Asp-Phe-Val-Gln-T^-Leu-Met-Asn- tR? -OH. Til bestemmelse af pankreatisk glucagon med N6C, N6E eller NI6a antistof opnået ved immunisering af kaniner med et peptid med formlen H-Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-G?8-25 Asp-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Met-Asn-TfUr-OH eller et peptid med formlen H-3-Ala-Tyr-Leu-As^-Ser-Arg-Arg-Ala-G?R-Asp-Phe-Val-Gln-Trf-Leu-Met-Asn-Tå§-OH kan der opnås et i høj grad følsomt resultat med peptid-enzym-konjugatet fremstillet ved kondensation af et enzym med et peptid med formlen H-R3-pR1-30 Val-Gln-Tr^-Leu-R2-Asn-Tå?-OH, hvor R3 er et peptidfragment bestående af 1-7 aminosyrerester op til stilling 21 i pankrea- 2 tisk glucagon og R er Met eller Nle. Et særlig følsomt resultat kan opnås med konjugatet af et enzym med et peptid med formlen H-Alp-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Met-Asn-T§?-OH eller et 35 peptid med formlen H-As^-Ser-Arg-Arg-Ala-G?R-Asp-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Nle-Asn-TÉir-OH.
DK 161095 B
11
Det antistof der skal bruges kan være et hvilket som helst af de antistoffer der er reaktivt over for pankreatisk glucagon og over for peptid-enzym-konjugatet. Således kan man med fordel bruge 5 fx 30K ifølge Unger et al (Diabetes, Vol. 17, 1968, side 321), G21 ifølge Ohneda et al (Diabetes, bind 18, 1969, side 1), G7 ifølge Ohneda et al (Hormone and Metabolic Research, bind 8, 1976, side 170), R517 ifølge Sakurai et al ("Naika Hokan", bind 23, 1975, side 247 eller Japanese 10 Journal of Nuclear Medicine, 10, side 135, 1973) samt det N6C, N6E og N16a PG-specifikke antistof som er anvendt i omstående referenceeksempel 12 og eksempel 13.
Det andet antistof som bruges kan fremstilles ved en multipel injektion af IgG fra en dyreart, 15 fx kanin, som er blevet anvendt til fremstilling af anti-PG-antistoffet i en anden dyreart, fx ged. Immuniseringsprocessen kan være en hvilken som helst af de kendte processer til fremstilling af antistoffer. Således kan der fx vindes et tilfredsstillende antistof ved fire subkutane indgifter 20 på hver ca. 2 mg IgG sammen med Freund's fuldstændige adju-vans med mellemrum på 3 uger. Det kommercielle anti-kanin IgG serum (ged) fra Miles Laboratories, Inc., U.S.A., kan også bruges.
Det uopløselige andet antistof kan vindes ved udsalt-25 ning af det på den ovennævnte måde vundne anti-IgG serum med natriumsulfat eller ammoniumsulfat, udførelse af søjlekromatografi på en ionbytter såsom DEAE-cellulose til dannelse af IgG-fraktionen af anti-IgG-serum og kobling heraf med en fast fase såsom BrCN-aktiveret polysakkarid såsom cellulose eller 30 "Sephadex" ® (FEBS Letters 15, 1971, side 232). Man kan også kontakte ovennævnte IgG-fraktion af antiserum med glasstænger, silikonegummisnore eller polystyrenkugler for fysisk at adsorbere det andet antistof derpå ("Kagaku-to-Seibutsu", Chemistry and Biology 14, 1976, side 741).
35 Det plasma som skal bruges i den her omhandlede EIA- metode kan være et hvilket som helst plasma som er egnet som testplasma. Som eksempler kan nævnes plasmaprøve af menneske eller andre pattedyr, fx rotte, mus eller
DK 161095 B
12 marsvin. Sædvanligvis bruges der imidlertid humant plasma for at undersøge opførslen af pankreatisk glucagon i humant plasma.
Analysemetoden ifølge opfindelsen er af stor praktisk 5 værdi, for den giver i høj grad følsomme og specifikke resultater i sammenligning med den konventionelle EIA af pankreatisk glucagon. Følsomheden er faktisk sammenlignelig med RIA's, og denne kendsgerning betyder at EIA ifølge den foreliggende opfindelse med fordel kan bruges selv i kliniske 10 laboratorier der ikke er udstyret med radioisotop (i det følgende benævnt RI) kontrol i stedet for RIA som indebærer forskellige ulemper der knytter sig til brugen af RI til en praktisk kvantitav bestemmelse af pankreatisk glucagon i blodet. I modsætning til radioisotoper, der har en halveringstid, 15 er peptid-enzym-komplexet ifølge den foreliggende opfindelse så stabilt at det muliggør målinger på et stort antal forsøgsprøver med samme portion, hvorved der opnås resultater med glimrende reproducerbarhed.
Nogle eksempler og referenceeksempler samt tegningen 20 tjener til nærmere belysning af opfindelsen.
På tegningen viser fig. 1 standardkurven for pankreatisk glucagon, fremstillet i henhold til eksempel 15, fig. 2 det ultraviolette absorptionsspektrum for pep-25 tid (I) (15-29)-j3-D-galactosidase-konjugat, fremstillet som beskrevet i eksempel 5, fig. 3 det ultraviolette absorptionsspektrum for peptid I (15-29)-alkalisk fosfat-konjugat, fremstillet som beskrevet i eksempel 9, og 30 fig. 4-6 standardkurver for tarm-glucagon, tarm-glu- cagon I og tarm-glucagon II, fremstillet som beskrevet i eksempel 16.
I fig. 4 er B/Bo procentdelen af bundet enzymaktivitet med og uden tilsat tarm-glucagon, i fig. 5 procentdelen af 35 bundet enzymaktivitet med og uden tilsat tarm-glucagon I og
DK 161095 B
13 i i fig. 6 procentdelen af bundet enzymaktivitet med og uden glucagon II tilsat.
I eksemplerne er tyndtlagskromatografiske data opnået ved anvendelse af silikagelplader 60 ^254 ^ra eller 5 Cellulose Plate Avicel SF fra Funakoshi Yakuhin K.K., Japan og følgende fremkaldelses-opløsningsmiddelsystemers
Rf1 = kloroform/metanol/eddikesyre 9:1:0,5 2
Rf = kloroform/metanol/vand 7:3:0,5 3
Rf = n-butanol/pyridin/eddikesyre/vand 30:20:6:24 10
Eksempel 1 15 2 0 25 H-Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Met-Asn-
Tffå-OH, i det følgende betegnet "peptid(I)(15-29)"_ jij 1) F£^stillin2_af_Boc-Asn-Thr-OBzl 112 g Boc-Thr-OBzl opløses i 300 ml TFA og opløsningen omrøres ved stuetemperatur i 20 minutter. Efter tilsætning af 30 ml koncentreret saltsyre koncentreres opløsningen under nedsat tryk. Remanensen opløses i 1 liter THF og under 20 isafkøling neutraliseres opløsningen med 50 ml TEA. Til denne
DK 161095 B
14 opløsning sættes der 76,7 g Boc-Asn-OH, 64,5 g HONB og 74,3 g DCC, efterfulgt af omrøring i 15 timer. Det udfældede DCU fra-filtreres, opløsningsmidlet afdestilleres under nedsat tryk og remanensen opløses i 1 liter ætylacetat. Opløsningen va-5 skes med 3 x 300 ml 10%s vandig citronsyre, 3 x 300 ml mættet vandigt natriumhydrogenkarbonat og 3 x 300 ml vand i nævnte rækkefølge og tørres derefter over vandfrit natriumsulfat. Opløsningemidlet afdestilleres under nedsat tryk og remanensen behandles med 1 liter diætylæter. De resulterende pulve-10 re opsamles ved filtrering og omkrystalliseres fra acetoni- tril. Udbytte 105,1 g (75,2%), smp. 165-166°C; [a]£1 = -13,9° (c = 0,9 i DMF); Rf1 = 0,51.
Beregnet for C 56,75 H 6,90 N 9,92
Fundet: C 57,01 H 6,89 N 9,94%.
15 2) Fremstillin2_af_Boc-Met(cO-Asn-Thr-OBzl
Til 50,0 g Boc-Asn-Thr-OBzl sættes der 170 ml TFA og blandingen rystes ved stuetemperatur i 30 minutter. Opløsningen koncentreres og behandles med 500 ml diætylæter. Det resulterende pulver opsamles ved filtrering og tørres. Det op-20 løses i 400 ml THF og under isafkøling tilsættes der 20 ml TEA. Til denne opløsning sættes der Boc-Met(0)-0NB (fremstillet ved opløsning af 31,3 g Boc-Met(O).OH og 23,3 g HONB i 200 ml THF, tilsætning af 26,8 g DCC under isafkøling og omrøring af blandingen i 4 timer). Blandingen omrøres i 15 ti-25 mer hvorefter opløsningsmidlet afdestilleres under nedsat tryk. Til remanensen sættes der 200 ml ætylacetat og 200 ml æter og de resulterende pulvere opsamles ved filtrering og genudfældes fra acetonitril. Udbytte 48,5 g (72,0%), smp. 145-147°C, [<x]£1 = -6,5° (c = 1,1 i DMF), Rf1 = 0,19.
30 Beregnet for C25H3g09N4S: C 52,62 H 6,71 N 9,82 S 5,62
Fundet: C 52,44 H6,73 N 9,60 S 5,15%.
Til 15,0 g Boc-Met(0)-Asn-Thr-0Bzl sættes der 45 ml TFA og blandingen rystes ved stuetemperatur i 45 minutter.
35 Derefter koncentreres blandingen og udfældes med 100 ml æter.
Fremstilling^af_Boc-Leu2Met_(0)_-Asn-Thr-OBzl i
DK 161095 B
15
Det resulterende pulver opsamles ved filtering, tørres og opløses i 50 ml DMF. Opløsningen afkøles med is og efter tilsætning <af 5,7 ml TEA tilsættes der Boc-Leu-ONB (fremstillet ud fra 6,69 g Boc-Leu-OH, 5,70 g HONB og 6,56 g DCC). Deref-5 ter omrøres blandingen i 15 timer og ved afslutningen af denne periode afdestilleres opløsningsmidlet under nedsat tryk. Til remanensen sættes der 200 ml ætylacetat og det resulterende pulver opsamles ved filtering og genudfældes fra acetonitril/ætylacetat. Udbytte 15,0 g (83,4%), smp. 134-10 136°C, [a]^4 =-15,1° (c = 1,0 i DMF), Rf1 = 0,25.
Beregnet for c3iH49°ioN5S: c 54/45 H 7,22 N 10,24 S 4,69
Fundet: C 54,62 H 7,60 N 9,89 S 3,95%.
4) FremstillingafZ-Gln-Trp-OBzl 50,0 g H-Trp-OBzl, p-toluensulfonat opløses i 500 ml 15 THF og under isafkøling tilsættes der 15,4 ml TEA, 28,0 g Z-Gln-OH, 19,7 g HONB og 22,7 g DCC. Blandingen omrøres i 15 timer. Det udfældede DCU frafiltreres, filtratet koncentreres og remanensen opløses i 300 ml ætylacetat. Opløsningen vaskes med 2 x 150 ml mættet vandig natriumhydrogenkarbonat, 20 2 x 150 ml 10%s vandig citronsyre og 2 x 150 ml vand i nævnte rækkefølge. Opløsningsmidlet afdestilleres under nedsat tryk, remanensen opløses i 300 ml THF og uopløselige stoffer frafiltreres. Filtratet koncentreres og der fældes med 500 ml diætylæter. Det resulterende pulver opsamles ved filtrering 25 og omkrystalliseres fra acetonitril. Udbytte 46,1 g (82,8%), [cx]33 = +5,8° (c = 1,0 i DMF), Rf1 = 0,60.
Beregnet for C 66,89 H 5,80 N 10,07
Fundet: C 66,79 H 5,71 N 10,20%.
5) Fremstillin2_af_Z-Val-Gln-Trg-0H
i 30 50,0 g Z-Gln-Trp-OBzl opløses i 700 ml metanol og der udføres katalytisk reduktion i 5 timer med palladium-sort som katalysator. Det krystallinske bundfald opsamles ved filtrering og suspenderes i 300 ml DMF. Suspensionen opløses ved tilsætning af 13 ml TEA og katalysatoren frafiltreres. Til 35 filtratet sættes der 37,0 g Z-Val-ONB, og efter 10 timers om-
DK 161095B
16 røring neutraliseres blandingen med 100 ml IN saltsyre efterfulgt af tilsætning af 500 ml vand. Det resulterende pulver opsamles ved filtrering og vaskes godt med metanol. Udbytte 43,0 g (84,7%), smp. 246-247°C, [a]33 = +12,4° (c = 0,9 i 5 DMF), Rf1 = 0,14.
Beregnet for ^29^35^7^51 ^/58 H 6,24 N 12,38
Fundet: C 61,86 H 6,30 N 12,36%.
6) Fr^stillin2_af_Z-Phe-Val-Gln-Trp-0H
5,1 g Z-Val-Gln-Trp-OH opløses i 100 ml eddikesyre og 10 der udføres katalytisk reduktion i 3 timer. Katalysatoren fra-filtreres og filtratet koncentreres og suspenderes i 200 ml DMF. Til denne suspension sættes der 2 ml TEA, og desuden tilsættes Z-Phe-ONB som er fremstillet ud fra 2,70 g Z-Phe-OH. Blandingen omrøres i 7 timer. Opløsningsmidlet afdestil-15 leres derefter under nedsat tryk, der sættes vandig eddikesyre til remanensen og den resulterende gel opsamles ved filtrering og genudfældes fra metanol. Udbytte 5,50 g (84,5%), smp. 240°C, [a]34 = +4,1° (c = 1,0 i DMF), Rf1 = 0,15.
Beregnet for C38H440QN6,1/2H20: C 63,23 H 6,28 N 11,64 20 Fundet: C 63,11 H 6,29 N 11,80%.
7) Fremstillin2_af_Boc2Asp-(OBzl)_-Phe-Val-Gln-Trp-OH
I en blanding af 150 ml DMF og 50 ml eddikesyre opløses der 8,5 g Z-Phe-Val-Gln-Trp-OH og der udføres katalytisk reduktion i 5 timer. Katalysatoren frafiltreres, filtratet kon-25 centreres og remanensen udfældes med 100 ml metanol. De derved vundne krystaller suspenderes i 200 ml DMF hvorpå der tilsættes 3,0 ml TEA og Boc-Asp(OBzl)-ONB fremstillet ud fra 3,9 g Boc-Asp(OBzl)-OH, 2,4 g HONB og 2,7 g DCC. Blandingen omrøres i 10 timer og ved slutningen af denne periode afde-30 stilleres opløsningemidlet under nedsat tryk. Til remanensen sættes der vandig eddikesyre og den resulterende gel opsamles ved filtrering og genudfældes fra DMF-vand. Udbytte 6,3 g (58,1%), smp. 191-192°C (sønderdeling), [a]^4 = -6,2° (c = 1,1 i DMF), Rf1 = 0,11.
i
DK 161095 B
17
Beregnet for ,3/2^0: C 60,64 H 6,63 N 10,76
Fundet: C 60,30 H 6,48 N 11,34%.
8) Fremstillin2_af_Bgc-Gln2As£^OBzl)_-Phe-Val-Gln-Tr2-OH
Til 6,0 g Boc-Asp(OBzl)-Phe-Val-Gln-Trp-OH sættes der 5 50 ml TFA i en strøm af nitrogengas og efter rystning i 10 minutter koncentreres blandingen og behandles med diætylæter.
Det resulterende pulver opsamles ved filtrering og opløses i 100 ml DMF, efterfulgt af tilsætning af 20 ml TEA og Boc-Gln-ONB fremstillet ud fra 1,76 g Boc-Gln-OH, 1,34 g HONB 10 og 1,54 g DCC. Blandingen omrøres i 15 timer og efter slutningen af denne periode tilsættes der vandig eddikesyre.
Det resulterende pulver opsamles ved filtrering og genudfældes fra acetonitril-vand. Udbytte 5,50 g (82,6%), smp. 210-212°C (sønderdeling), [a]^4 = -10,1° (c = 1,1 i DMF), Rf1 = 15 0,09.
Beregnet for 05χΗ65°ΐ3Ν9: C 60,52 H 6,47 N 12,46 Fundet: C 60,19 H 6,37 N 12,23%.
9) Fremstillin2_af_Z-Ar2jMBS).3Ala-OBu^ t 31,0 g Z-Ala-OBu opløses i 300 ml metanol og der ud- 20 føres katalytisk reduktion i 5 timer. Katalysatoren frafil- treres og filtratet koncentreres. Særskilt suspenderes 53,0 g Z-Arg(MBS)-OH,DOHA i 500 ml ætylacetat og rystes med 200 ml 10%s citronsyre. Opløsningen vaskes med vand, tørres over vandfrit natriumsulfat og opløses i 500 ml THF. Til denne op- t 25 løsning sættes der H-Ala-OBu , hvis fremstilling er beskrevet ovenfor, efterfulgt af tilsætning af 14,9 g HONB. Under isafkøling tilsættes der 17,1 g DCC og blandingen omrøres i 10 timer. Det udfældede DCU frafiltreres og filtratet koncentreres og opløses i 500 ml ætylacetat. Opløsningen vaskes 30 med 3 x 200 ml 10%s vandig citronsyre, 3 x 200 ml mættet vandigt natriumhydrogenkarbonat og 3 x 200 ml vand og tørres over vandfrit natriumsulfat. Opløsningsmidlet afdestilleres under nedsat tryk, der sættes 300 ml diætylæter til remanensen og det resulterende pulver udvindes ved filtrering. Ud-35 bytte 44,5 g (66,8%), smp. 126-1-27°C, [a]£5 = -6,0° (c = 1,0
DK 161095 B
18 1 DMF), Rf1 = 0,62.
Beregnet for C^gHggOgNgS: C 55,52 H 6,49 N 11,56 S 5,27 Fundet: C 55,71 H 6,49 N 11,81 S 5,29%.
10) Fremstillin2_Z-Ar2^MBS)_-Ar2_(MBS)_-Ala-OBu^ 5 43 g Z-Arg(MBS)-Ala-OBu^ opløses ± 5Q0 ml metanol og der udføres katalytisk reduktion i 5 timer. Reaktionsblandingen koncentreres og remanensen opløses i 200 ml DMF. Til denne opløsning sættes der Z-Arg(MBS)-OH (fremstillet ud fra 49,7 g Z —Arg(MBS)—OH,DCHA) og 14,0 g HONB. Derpå tilsættes 10 der under isafkøling 16,1 g DCC og blandingen omrøres i 15 timer. Det udfældede DCU frafiltreres, filtratet koncentreres og remanensen opløses i 500 ml kloroform. Opløsningen vaskes med 3 x 300 ml 10%s vandig citronsyre, 3 x 300 ml mættet vandigt natriumhydrogenkarbonat og 3 x 300 ml vand i nævnte 15 rækkefølge og tørres over magniumsulfat. Opløsningsmidlet af-destilleres under nedsat tryk og der tilsættes 300 ml metanol. De resulterende krystaller Udvindes ved filtrering og omkrystalliseres fra metanol. Udbytte 52,4 g (79,2%), smp. 116-118°C, [a]p5 =-8,8° (c = 1,0 i DMF), Rf1 = 0,42.
20 Beregnet for C^H^O^NgS^I^O: C 50,86 H 6,35 N 13,02 S 6,62
Fundet: C 51,05 H 6,08 N 13,11 S 6,62%.
11) Fremstilling^af_Boc-Ser-Ar2XMBS^-Arg (.MBS^-Ala-OBu^ 30,0 g Z-Arg(MBS)-Arg(MBS)-Ala-OBu^ opløses i en blanding af 80 ml DMF og 300 ml metanol og der udføres katalytisk 25 reduktion i 7 timer. Katalysatoren frafiltreres, metanolen af-destilleres under nedsat tryk og der tilsættes 7,3 g Boc-Ser-OH og 6,3 g HONB. Under isafkøling tilsættes der 7,3 g DCC og blandingen omrøres i 10 timer. Det udfældede DCU frafiltreres, opløsningsmidlet afdestilleres under nedsat tryk og 30 remanensen opløses i 500 ml kloroform. Opløsningen vaskes med 2 x 300 ml mættet natriumhydrogenkarbonat og 2 x 300 ml vand efterfulgt af tørring over magniumsulfat. Opløsningsmidlet af-destilleres under nedsat tryk og remanensen opløses i 30 ml kloroform og overføres til en kolonne af 400 g silikagel.
35 Kromatogrammet fremkaldes med et opløsningsmiddelsystem af DK 161095 B i 19 [ kloroform/metanol/eddikesyre 9:0,7:0,35, og fraktionerne mellem 800 ml og 2 liter slås sammen, koncentreres og udfældes med diætylæter til frembringelse af et pulver. Udbytte 25,5 g (79,0%), smp. 85-88°C, [a]^6 = -20,9° (c = 1,0 i me-5 tanol), Rf1 = 0,33.
Beregnet for C4iH64O14N10S2/H2O: c 49*09 H 6»63 N 13»96 s 6,39 Fundet: C 48,96 H 6,55 N 13,70 S 5,84%.
12) Fremstillin2_.af_Boc3AspX0B2l)^-Ser-Arg_(MBS)_-Ar2-(MBS)_-Ala-0H
Til 10,5 g Boc-Ser-Arg(MBS)-Arg(MBS)-Ala-OBu*" sættes 10 der 50 ml TFA og blandingen rystes ved stuetemperatur i 60 minutter og koncentreres derefter. Koncentratet behandles med 300 ml æter og det resulterende pulver opsamles ved filtrering og opløses i 50 ml DMF. Til denne opløsning sættes der 4,1 ml TEA og Boc-Asp(OBzl)-ONB (fremstillet ud fra 15 3,40 g Boc-Asp(OBzl),OH, 1,97 g HONB og 2,27 g DCC), og blan dingen omrøres i 15 timer. Opløsningsmidlet afdestilleres under nedsat tryk, der sættes vandig eddikesyre til remanensen og det resulterende pulver opsamles ved filtrering, tørres og genudfældes fra acetonitril/æter. Udbytte 6,0 g (51,5%), 20 smp. 126-130°C, [a]£4 = +3,5° (c = 1,0 i DMF), Rf1 = 0,17.
Beregnet for C 49,26 H 6,12 N 13,17 S 5,48
Fundet: C 49,62 H 5,84 N 13,00 S 5,03%.
13) Fremstilling af Boc-Gln-Asp(OBzl)-Phe-Val-Gln-Trp-Leu- £?§l:i9!l£sn-Thr-OBzl_______________ 25 Til 3,25 g Boc-Leu-Met(0)-Asn-Thr-OBzl sættes der 25 ml TFA og blandingen omrøres ved stuetemperatur i 15 minutter hvorefter den koncentreres. Til remanensen sættes der 100 ml diætylæter og det resulterende pulver opsamles ved filtrering og tørres. Pulveret opløses i 10 ml NMP, opløsningen rystes i 30 godt med 2 ml TEA og der tilsættes 100 ml diætylæter. Det resulterende pulver udvindes igen ved filtrering og opløses i 100 ml DMF. I denne opløsning opløses der desuden 4,80 g Boc-Gln-Asp-(OBzl)-Phe-Val-Gln-Trp-OH og 2,70 g HONB. Under isafkøling tilsættes der 1,55 g DCC og blandingen omrøres i 35 58 timer. Fra den resulterende gel afdestilleres opløsningsmid-
DK 161095 B
20 let under nedsat tryk og remanensen vaskes grundigt med vandigt acetonitril. Udbytte 5,75 g (76,8%), smp. 234°c (sønderdeling), [a]26 = -15,8° (c = 0,4 i eddikesyre), Rf2 = 0,63. Beregnet for C 58,61 H 6,64 N 12,43 S 2,03 5 Fundet: C 59,13 H 6,96 N 12,40 S 1,70%.
14) Fremstilling af Boc-Asp(OBzl)-Ser-Arg(MBS)-Arg(MBS)-Ala-
Til 5,20 g Boc-Gln-Asp(OBzl)-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Met(O)-Asn-Thr-OBzl sættes der 1 ml anisol og under en nitro-10 gengasstrøm tilsættes der 35 ml TFA. Blandingen omrøres ved stuetemperatur i 15 minutter hvorefter den koncentreres. Til remanensen sættes der 100 ml diætylæter og det resulterende pulver opsamles ved filtrering og opløses i 20 ml NMP. Til denne opløsning sættes der 2,77 ml TEA og efter grundig ryst-15 ning tilsættes der 200 ml diætylæter. Det resulterende pulver udvindes ved filtrering og opløses i 150 ml DMF. Til denne opløsning sættes der 3,66 g Boc-Asp(OBzl)-Ser-Arg(MBS)-Arg(MBS)-Ala-OH og 2,36 g HONB, og under afkøling med is-NaCl til -10°C tilsættes der 1,02 g DCC. Reaktionsblandingen om-20 røres ved 0°C i 10 timer og ved stuetemperatur i 24 timer.
Det udfældede DCU frafiltreres og opløsningsmidlet afdestille-res under nedsat tryk. Til remanensen sættes der 50 ml vand og det resulterende pulver udvindes ved filtrering og vaskes godt med vandigt acetonitril. Udbytte 5,3 g (61,1%), smp.
25 237°C (sønderdeling), [a]26 = -7,1° (c = 0,9 i eddikesyre),
Rf2 = 0,63.
Beregnet for C120H161°34N25S3'2H2O: C 54,82 H 6,32 N 13,32 S 3,57 Fundet: C 54,47 H 6,16 N 13,07 S 3,47%.
30 15) Fremstilling af H-Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp-Phe-Val- EEIL2HI^et^o )^Asn-Thr-OH________________________
Til 400 mg Boc-Asp(OBzl)-Ser-Arg(MBS)-Arg(MBS)-Ala-Gln-Asp (OBzl)_-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Met(0) -Asn-Thr-OBzl sættes der 0,25 ral anisol efterfulgt af 5 ml metansulfonsyre. Blan-35 dingen omrøres ved stuetemperatur i 60 minutter, og ved af-
DK 161095 B
21 | slutningen af denne periode tilsættes der 100 ml diætylæter hvorpå der dannes et olieagtigt bundfald. Diætylæteren kasseres ved dekantering og remanensen opløses i 10 ml vand. Opløsningen føres gennem en kolonne på 1 x 10 cm af "Amberlite^ 5 IRA-410 (acetatform), eluatet (50 ml) afkøles med is, der til sættes 10 ml 8N ammoniakvand og blandingen omrøres ved 0°C i 30 minutter hvorefter den frysetørres.
Lyofilisatet opløses i 30 ml vand og overføres til en kolonne på 2,2 x 18 cm af CMC, hvorefter der udføres eluering 10 ved den lineære gradientmetode med 500 ml vand til 500 ml 0,2M vandigt ammoniumacetat. Fraktionerne fra 150 ml til 195 ml forenes og frysetørres. Udbytte 150 mg. Lyofilisatet opløses i 20 ml vand og overføres til en kolonne på 1,6 x 5 cm af "Amberlite" ® XAD-2, og elueringen udføres ved den lineære 15 gradientmetode med 200 ml vand til 200 ml 80%s ætanol. Fraktionerne fra 180 ml til 225 ml forenes, ætanolen afdestille- 24 o res og remanensen frysetørres. Udbytte 115 mg, [α]β = -33,6 (c = 0,6 i 50%s vandig eddikesyre), Rf3 = 0,54 ("Avicel"); aminosyreanalyse (hydrolyseres med 5,7N HC1 i nærværelse af 20 4% tioglykolsyre)i Arg 2,03 (2), Trp 0,87 (1), Asp 3,03 (3),
Thr 0,97 (1), Ser 0,73 (1), Glu 2,13 (2), Ala 1,00 (1), Val 1,03 (1), Met 1,00 (1), Leu 1,03 (1), Phe 1,03 (1); peptidindhold 85,7%.
16) Fremstilling af H-As^-Ser-Arg-Arg-Ala-G?S-Asp-Phe-Val-25 _____ 225 mg H-Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Met(O)-Asn-Thr-OH opløses i 20 ml 5%s vandig tioglykolsyre og opløsningen henstår ved 50°C i 20 timer, hvorefter der udskiller sig en gel. Vandet afdestilleres under nedsat 30 tryk, remanensen opløses i 5 ml 50%s vandig eddikesyre og opløsningen føres gennem en kolonne på 2,3 x 118 cm af "Sephadex" ® G-25, og der udføres eluering med 50%s vandig eddikesyre. Fraktionerne fra 180 ml til 240 ml slås sammen og frysetørres. Udbytte 220 mg, [a]jr^ = -30,0° (c = 0,3 i 50%s
3 U
35 eddikesyre), Rf =0,59 (Avicel), aminosyreanalyse efter hydrolyse med 5,7N HCl i nærværelse af 4% tioglykolsyre: Arg 2,15 (2), Trp 0,91 (1), Asp 3,13 (3), Thr 0,99 (1), Ser 0,87 (1), Glu 2,20 (2), Ala 1,05 (1), Val 0,96 (1), Met 1,00 (1), Leu 1,07 (1), Phe 1,07 (1); peptidindhold 79,3%.
DK 161095 B
22
Eksempel 2 5 H-Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-G?S-Asp-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Nle-Asn-t|| -OH (i det følgende betegnet "peptid (XX) (15-29)11) 1) Fremstilling_af^Boc-Nle^Asn-Thr-OBz1 3,10 9 Boc-Asn-Thr-OBzl opløses i 30 ml TFA og opløsningen rystes ved stuetemperatur i 10 minutter hvorefter 10 den koncentreres. Koncentratet bringes til fældning med 100 ml diætylæter og det resulterende pulver opsamles ved filtrering og tørres. Derefter opløses deti 30 ml DMF og under isafkøling tilsættes der 1,5 ml TEA og derefter Boc-Nle-ONB, fremstillet ud fra 1,69 g Boc-Nle-OH, 1,50 g HONB og 1,73 g DCC.
15 Blandingen omrøres i 15 timer. Opløsningsmidlet afdestilleres under nedsat tryk, remanensen behandles med 50 ml vand og det resulterende pulver opsamles ved filtrering, tørres og vaskes godt med diætylæter. Udbytte 3,80 g (96,7%), smp. 160-163°C, [a]^1'5 = -13,6° (c = 0,8 i DMF), Rf1 = 0,58.
20 Beregnet for C26H40°8^4: C 58,19 H 7,51 N 10,44
Fundet: C 58,40 H 7,60 N 10,37%.
2) Fremstillin2_af_Boc-Leu-Nle-Asn-Thr-OBzl 3,50 g Boc-Nle-Asn-Thr-OBzl opløses i 30 ml TFA og opløsningen rystes ved stuetemperatur i 10 minutter. Derefter 25 koncentreres den og bringes til fældning med 150 ml diætylæter. Det resulterende pulver opsamles ved filtrering, tørres og opløses i 30 ml DMF. Under isafkøling tilsættes der 1,2 ml TEA og derefter Boc-Leu-ONB, fremstillet ud fra 1,66 g Boc-Leu-OH, 1,41 g HONB og 1,63 g DCC. Blandingen omrøres i 15 30 timer hvorefter opløsningsmidlet afdestilleres under nedsat tryk. Remanensen behandles med 50 ml vand og det resulterende pulver opsamles ved filtrering, tørres og vaskes grundigt med
_ O T K
ætylacetat. Udbytte 3,60 g (83,8%), smp. 200-201 C, [a]D ' = -22,7° (c = 0,8 i DMF), Rf1 = 0,60.
DK 161095 B
23
Beregnet for C^Hg^OgNg,1/2^0: C 58,34 H 7/96 N 10,63 Fundet: C 58,06 H 7,99 N 11,02 3) Fremstilling af Boc-Gln-Asp(OBzl)-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Nle-
Asn-Thr-OBzl^____________________________________________ 5 2,00 g Boc-Leu-Nle-Asn-Thr-OBzl opløses i 20 ml TFA og opløsningen rystes ved stuetemperatur i 10 minutter, hvorefter den koncentreres og behandles med 70 ml æter. Det resulterende pulver opsamles ved filtrering, tørres og opløses i 10 ml DMF. Derpå tilsættes der under isafkøling 1,3 ml TEA 10 og blandingen rystes godt og behandles med 100 ml diætylæter. Det resulterende pulver opsamles ved filtrering og opløses i 40 ml DMF. Til denne opløsning sættes 3,00 g Boc-Gln-Asp(OBzl)-Phe-Val-Gln-Trp-OH og 2,20 g HONB, efterfulgt af tilsætning af 1,27 g DCC under isafkøling. Blandingen omrøres i 48 ti-15 mer. Opløsningsmidlet sidestilleres derefter under nedsat tryk, remanensen behandles med 50 ml vand og det resulterende pulver opsamles ved filtrering og vaskes godt med vandigt acetonitril. Udbytte 3,30 g, smp. 210-214°C (sønderdeling), [a]^1'1 2 - -11,8° (c = 0,6 i NMP), Rf3 = 0,66.
20 Beregnet for C78Hio6°19N14: C 60/68 H 6/92 N 12,73 Fundet: C 60,92 H 7,30 N 12,76
Fremstilling af H-As^-Ser-Arg-Arg-Ala-G?8-Asp-Phe-Val-Gln- _____________
Til 3,0 g Boc-Gln-Asp(OBzl)-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Nle-25 Asn-Thr-OBzl sættes der 0,2 ml ætanditiol og 25 ml TFA, og 2 efter rystning ved stuetemperatur i 10 minutter koncentreres blandingen og behandles med diætylæter. Det resulterende pulver opsamles ved filtrering, tørres og opløses i 15 ml NMP. Opløsningen afkøles med is, rystes med 0,8 ml TEA og behand-30 les med diætylæter. Det resulterende pulver opsamles ved filtrering og opløses i 50 ml DMF, efterfulgt af tilsætning af 2,1 g Boc-Asp(OBzl)-Ser-Arg(MBS)-Arg(MBS)-Ala-OH og 0,71 g HONB. Efter afkøling med is-NaCl tilsættes der 0,60 g DCC og blandingen omrøres i 24 timer. Det udfældede DCU frafiltreres, 35 filtratet koncentreres, remanensen behandles med ætylacetat
DK 161095 B
24 og det resulterende pulver opsamles ved filtrering. Udbytte 3,8 g. Til 1,0 g af det resulterende beskyttede peptid sættes 1 ml anisol og efter tilsætning af 10 ml vandfrit hydrogenfluorid omrøres blandingen ved 0°C i 60 minutter, hvoref-5 ter den koncentreres under nedsat tryk. Koncentratet opløses i 50 ml vand, vaskes med diætylæter og føres gennem en kolonne på 1 x 10 cm af "Amberiite"® IRA-410 (acetatform). Elua-tet frysetørres. Lyofilisatet opløses i 10 ml 50%s eddike- (K) syre og overføres på en kolonne på 2,2 x 110 cm af "Sephadex" w 10 LH-20, idet der udføres eluering med 50%s eddikesyre. Frak tionerne fra 125 ml til 180 ml slås sammen og frysetørres. Lyofilisatet opløses herefter i 50 ml vand og overføres til en kolonne på 2,2 x 20 cm af CMC, og eluering udføres ved den lineære gradientmetode med 500 ml 0,005M vandigt ammonium-15 acetat til 500 ml 0,2M vandigt ammoniumacetat. Fraktionerne fra 265 ml til 440 ml forenes og frysetørres. Udbytte 145 mg, [a]^ = -30,9° (c = 0,3 i 50%s eddikesyre), Rf3 = 0,60 (Avicel), aminosyreanalyse (efter hydrolyse med 5,7N HC1 i nærværelse af 4% tioglykolsyre): Arg 2,11 (2), Trp 0,97 (1), 20 Asp 3,40 (3), Thr 0,93 (1), Ser 0,83 (1), Glu 2,10 (2), Ala 1,00 (1), Val 1,04 (1), Leu 0,91 (1), Phe 0,84 (1), Nle 1,06 (1); peptidindhold 74%.
Eksempel 3 H-Asp-Phe-Val-Gln-Trf-Leu-Met-Asn-T^§-OH (i det følgende be- 25 nævnt "peptid (III) (21-29)")......
1,0 g Boc-Leu-Met(0)-Asn-Thr-0Bzl opløses i 10 ml TFA og opløsningen rystes ved stuetemperatur i 10 minutter hvorefter den koncentreres og behandles med 50 ml diætylæter.
Det resulterende pulver opsamles ved filtrering, tørres og op-30 løses i 10 ml DMF. Under isafkøling rystes opløsningen godt med 1,1 ml TEA og derefter behandles den med 100 ml diætylæter. Det resulterende pulver opsamles ved filtrering og opløses i 20 ml DMF. Til opløsningen sættes der 1,33 g Boc-Asp(OBzl)-Phe-Val-Gln-Trp-OH og 520 mg HONB, og efter afkø-35 ling med is tilsættes der 450 mg DCC og blandingen omrøres i 48 timer. Opløsningsmidlet afdestilleres under nedsat tryk,
DK 161095 B
25 der sættes 50 ml vand til remanensen og det resulterende pulver opsamles ved filtrering og vaskes med vandigt acetonitril. Udbytte 1,72 g. Til 1,0 g af dette beskyttede peptid sættes der 0,5 ml anisol efterfulgt af 10 ml metansulfonsyre. Blan-5 dingen omrøres ved stuetemperatur i 10 minutter hvorefter der tilsættes 100 ml diætylæter hvorved der udfælder sig et olieagtigt bundfald. Ætylæteren afdekanteres, remanensen opløses i 20 ml 30%s eddikesyre og opløsningen overføres til en kolonne på 1 x 10 cm af "Amberlite" ®IRA-410 (acetatfor-10 men) og effluenten frysetørres. Lyofilisatet opløses i 5 ml 50%s eddikesyre og overføres til en kolonne på 2,4 x 110 cm af "Sephadex" ®LH-20, hvorpå eluering udføres med 50%s eddikesyre. Fraktionerne fra 195 ml til 235 ml forenes og frysetørres. Udbytte 550 mg. 150 mg af dette peptid udtages og 15 opløses i 5 ml 50%s eddikesyre, og med tilsætning af 0,3 ml tioglykolsyre udføres der reduktion ved 45°C i 16 timer. Reaktionsblandingen føres gennem en kolonne på 3 x 135 cm af "Sephadex" ®LH-20, og der udføres eluering med 30%s eddikesyre. Fraktionerne fra 510 ml til 580 ml forenes og lyofili- 20 seres. Udbytte 64 mg, [a]^ = ”26,0° (c = 0,2 i 80%s eddike-3 u syre), Rf =0,76 (Avicel); aminosyreanalyse efter hydrolyse med 5,7N HCl i nærværelse af 4% tioglykolsyre: Trp 1,07 (1),
Asp 2,06 (2), Thr 0,98 (1), Glu 1,06 (1), Val 0,97 (1), Met 1,00 (1)., Leu 1,04 (1), Phe 1,11 (1); peptidindhold 73%.
25 Eksempel 4 H-3-Ala-Ty^-Leu-As^-Ser-Arg-Arg-Ala-G?8-Asp-Phe-Val-Gln-T^-Leu-Met-Asn- Tå? -OH (i det følgende betegnet "peptid (IV) (13-29) ")_ 1) Fr§mstillin2_af_Z-g-Ala-Tyr-Leu-OMe 30 10,2 g Boc-Tyr-Leu-OMe opløses i 100 ml TFA og opløs ningen rystes ved stuetemperatur i 15 minutter. Opløsningen koncentreres og behandles med 100 ml diætylæter. Det resulterende pulver opsamles ved filtrering, tørres og opløses i 150 ml THF. Opløsningen isafkøles, der tilsættes 4,0 ml TEA 35 og desuden 8,5 g Ζ-β-Ala-ONB. Blandingen omrøres i 15 timer, og efter afslutningen af denne periode afdestilleres opløs-
DK 161095 B
26 ningsmidlet under nedsat tryk. Remanensen opløses i 300 ml ætylacetat, vaskes med 3 x 200 ml mættet vandigt natriumhy-drogenkarbonat, 2 x 200 ml 10%s vandig citronsyre og 3 x 200 ml vand i den nævnte rækkefølge og tørres over vandfrit natrium-5 sulfat. Opløsningsmidlet afdestilleres, remanensen behandles med petroleumsæter og pulveret opsamles ved filtrering og genudfældes fra ætylacetat/petroleumsæter. Udbytte 10,7 g (83,3%), smp. 112-113°C, [a]^1'1 2 3 = -12,8° (c = 0,8 i DMF). Beregnet for C27H3507N3: C 63,14 H 6,87 N 8,18 10 Fundet: C 62,97 H 6,91 N 8,09%.
2) Fremstilling_af_Z-g-Ala-Tyr2Leu-0H
5,0 g Ζ-β-Ala-Tyr-Leu-OMe opløses i 40 ml metanol og efter isafkøling tilsættes der 12 ml 2N vandigt natriumhydro-xyd. Blandingen omrøres derefter ved stuetemperatur i 90 mi-15 nutter. Opløsningen afkøles med is og neutraliseres med 24 ml IN HCl. Opløsningsmidlet afdestilleres under nedsat tryk. Remanensen opløses i 200 ml ætylacetat, skylles med 2 x 200 ml yand og tørres over vandfrit natriumsulfat. Opløsningsmidlet afdestilleres og de resulterende krystaller vaskes med diætyl-20 æter og udvindes ved filtrering. Udbytte 4,4 g (90,5%), smp. 144-145°C, [α]^1/5 = -5,7° (c = 0,9 i DMF).
Beregnet for C2gH3307N3: C 62,50 H 6,66 N 8,41 Fundet: C 62,27 H 6,58 N 8,82%.
Fremstilling af H-3-Ala-Ty^-Leu-As^-Ser-Arg-Arg-Ala-G?R- 2 25 Asp-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Met-Asn-Tå^-OH^(peptid jlVj X13-29I) 3
Til 4,6 g Boc-Asp(OBzl)-Ser-Arg(MBS)-Arg(MBS)-Ala-Gln-Asp(OBzl)-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Met(0)-Asn-Thr-OBzl sættes der 0,5 ml anisol og derpå tilsættes 35 ml TFA under nitrogengasstrøm og efter rystning ved stuetemperatur i 15 minutter kon-30 centreres blandingen og behandles med diætylæter. Det resulterende pulver opsamles ved filtrering og opløses i 20 ml NMP. Opløsningen afkøles med is og rystes godt med 0,8 ml TEA hvorefter der tilsættes diætylæter. Det resulterende pulver opsamles ved filtrering og opløses i 50 ml DMF. Til denne op-35 løsning sættes der 0,90 g Ζ-β-Ala-Tyr-Leu-OH og 0,64 g HONB.
DK 161095 B
27
Under afkøling med is og natriumklorid tilsættes der 0,55 g DCC og blandingen omrøres i 15 timer. Det udfældede DCU fra-filtreres, opløsningsmidlet afdestilleres under nedsat tryk og der sættes 70 ml ætylacetat til remanensen. Det resulte-5 rende pulver opsamles ved filtrering. Udbytte 4,3 g. Til 1 g af det på denne måde vundne beskyttede peptid sættes der 1.5 g anisol efterfulgt af tilsætning af 10 ml vandfrit hydrogenfluorid. Blandingen omrøres ved 0°C i 60 minutter, koncentreres og opløses i 50 ml vand. Opløsningen vaskes med 1 g 50 ml diætylæter. Den føres gennem en kolonne på 1 x 10 cm af "Amberlite" ®IRA-410 (acetatformen) og frysetørres. Lyo-filisatet opløses i 100 ml vand og overføres til en kolonne på 2,2 x 23 cm af CMC, og der foretages eluering ved den lineære gradientmetode med 0,005M vandigt ammoniumacetat 15 (500ml)/0,2M vandigt ammoniumacetat (500 ml). Fraktionerne fra 220 ml til 360 ml slås sammen og frysetørres. Lyofilisa-tet opløses i 5 ml 50%s eddikesyre og føres gennem en kolonne på 2,4 x 118 cm af "Sephadex" ®LH-20, og elueringen foretages med 50%s eddikesyre. Fraktionerne fra 130 ml til 2Q 166 ml forenes og frysetørres. Udbytte 80 mg.
En portion på 70 mg af dette peptid opløses i 7 ml 50%s eddikesyre og efter tilsætning af 0,35 ml tioglykolsyre henstår opløsningen ved 45°C i 12 timer. Efter tilsætning af yderligere 0,35 ml tioglykolsyre henstår opløsningen ved 45°C
i 24 timer hvorefter reaktionen er fuldført. Reaktionsbian-25 (r) dingen føres gennem en kolonne på 2,4 x 120 cm af "Sephadex" ^ G-25, og der foretages eluering med 50%s eddikesyre. Fraktionerne fra 160 ml til 220 ml forenes og frysetørres. Udbytte 66 mg, [a]^1'5 = -29,3° (c = 0,4 i 50%s eddikesyre), Rf3 = 3Q 0,61 (Avicel); aminosyreanalyse (hydrolyseret med 5,7 N HC1 i nærværelse af 4% tioglykolsyre): Arg 2,19 (2), Trp 0,92 (1), Asp 3,44 (3), Thr 0,91 (1), Ser 0,69 (1), Glu 2,32 (2),
Ala 1,12 (1), Val 1,14 (1), Met 1,00 (1), Leu 2,02 (2), Tyr 1.05 (1), Phe 1,05 (1), 3Ala 1,13 (1); peptidindhold 81%.
35
DK 161095 B
28
Referenceeksempel 1
Produktion af peptid (I). (15-29)“BSA-konjugat (1) I 4 ml 0,2M fosfatpuffer (pH 7,3) opløses der 10 mg peptid (I) (15-291 fremstillet i overensstemmelse med eksem-5 pel 1 samt 20 mg BSA. Til denne opløsning sættes der 4 ml af en 5%s opløsning af GLA og blandingen omrøres ved stuetemperatur i 3 timer hvorefter den dialyseres (4x2 liter vand) ved 4°C og frysetørres til dannelse af det i overskriften angivne konjugat. Udbytte 38 mg.
10 Referenceeksempel 2
Fremstilling af peptid (T) (15-29)-BSA-konjugat (2)
Til 10 ml af en 0,2%s vandig opløsning af BSA sættes der 2 mg fast ravsyreanhydrid i små portioner og reaktionen udføres mens pH holdes på 7,0-8,0 ved hjælp af 0,1N NaOH, 15 hvorved BSA succinyleres. Efter fuldførelse af reaktionen dialyseres reaktionsblandingen (4x2 liter vand) ved 4°C og frysetørres. Til dette succinylerede BSA sættes der 10 mg peptid (I) (15-29) ifølge eksempel 1, og blandingen opløses i 10 ml 0,05M fosfatpuffer (pH 6,5). Derefter tilsættes grad-20 vis 10 mg ECDI og reaktionen udføres ved 4°C i 2 døgn under forsigtig omrøring. Efter at reaktionen er fuldført dialyseres reaktionsblandingen (4x2 liter vand) og frysetørres til dannelse af det i overskriften angivne konjugat. Udbytte 39 mg.
2 5 Referenceeksempel 3
Fremstilling af peptid (IV) (13-29)-BSA-konjugat
Fremgangsmåden ifølge referenceeksempel 1 gentages med den forskel at der bruges 10 mg peptid (IV) (13-29) i stedet for 10 mg peptid (I) (15-29) til frembringelse af det ovenfor 30 angivne BSA-konjugat. Udbytte 39 mg.
Referenceeksempel 4 Fremstilling af antistoffet
DK 161095 B
29 1 1 ml fysiologisk kogsaltopløsning opløses der 2 mg af konjugatet af BSA med det ønskede peptid fremstillet som angivet i referenceeksempel 1, 2 eller 3, og opløsningen blandes godt med 1 ml af Freund's fuldstændige adjuvans. Den re- 5 suiterende emulsion injiceres intramuskulært i begge lår og subkutant på mange steder langs rygsiden af en kanin. Denne behandling gentages 5 gange med mellemrum på 2 uger, og der udtages en blodprøve 1 uge efter den sluttelig immunisering til en prøvebestemmelse. På denne måde dannes der er gluca- 10 gon-antistof som ikke reagerer med pankreatisk glucagon og som en som bruges/fortynding pa 100.000-500.000 gange.
Eksempel 5
Peptid (I) (15-29)-β-D-galactosidase-konjugat 2 mg af peptid (I) (15-29) fremstillet ifølge eksempel 15 1 suspenderes i 2 ml Q,1M fosfatpuffer (pH 6,3) og derefter tilsættes 0,5 ml af en 0,5%s opløsning af m-MBHS i THF. Reaktionen gennemføres ved 30°C i 1/2 time. Reaktionsblandingen føres gennem en kolonne på 0,9 x 53 cm af "Sephadex" ®G-25 ækvilibreret med 0,1M fosfatpuffer for at skille den melaimi-20 derede peptidfraktion fra overskydende reagens. Til 1 ml af den på denne måde vundne maleimiderede peptidfraktion sættes der 0,1 ml β-D-galactosidaseopløsning (5 mg/ml) og reaktionen udføres ved stuetemperatur i 2 timer under lejlighedsvis rystning. Efter reaktionen er fuldført renses blandingen ved 25 "Sepharose" ® 6B søjlekromatografi med 0,01M fosfatpuffer (pH 7,0) indeholdende 0,1% BSA, 0,1% NaN^, 0,1M NaCl og 1 mmol MgC^· Den enzymatiske aktive fraktion fraskilles på denne måde til udvinding af peptid-enzym-konjugatet. Dette konjugats egenskaber er som følger: 30 1) Konjugatet nedbryder o-nitrofenyl-|3-D-galactopyranosid og 4-metylumbelliferyl-|3-D-galactopyranosid, der er syntetiske substrater for EIA, til frigivelse af henholdsvis o-nitrofenol og 4-metylumbelliferon.
2) Den optimale pH for enzymatisk aktivitet er 7,0 til 7,7. 35 3) Mere end ca. 90% af dette enzymatisk aktive konjugat er reaktivt over for anti-pankreatisk glucagon-antistof, og
DK 161095B
30 dets immunologiske aktivitet såvel som enzymatiske aktivitet er stabile under køleskabsbetingelser i mere end 6 måneder.
4) Konjugatet har en molekylvægt på ca. 550.000, og molforholdet mellem peptid (I) og enzym er ca. 7.
5 5) Konjugatet er letopløseligt i vandige opløsningsmid ler mellem pH 5 og pH 9.
6). Det ultraviolette ab sorptions spektrum for konjugatet er vist i fig. 2, hvor abscissen angiver bølgelængden i nm og ordinaten absorptionen. Xmax = 283 nm.
10 7) En aminosyreanalyse af konjugatet er anført i tabel 5.
8) Andre egenskaber af konjugatet ligner egenskaberne af β-D-galactosidase (Boyer, The Enzymes, bind 7 (1972), side 617, Academic Press, New York-London).
Eksempel 6 15 Peptid (III (15—29)-β-D-galactosidase-konjugat
Den i eksempel 5 beskrevne proces gentages med den forskel at der bruges 2 mg peptid (II) ifølge eksempel 2 i stedet for 2 mg peptid (I) (15-29) til fremstilling af et pep-tid-3-D-galactosidase-konjugat.
20 Bortset fra de nedenfor anførte egenskaber 3) og 4), er dette konjugats egenskaber lige som de egenskaber under 1), 2) , 5), 6) og 8) for konjugatet ifølge eksempel 5.
3) Mere end ca. 80% af dette enzymatisk aktive konjugat er reaktivt over for anti-PG-antistof, og dets immunologiske 25 aktivitet såvel som enzymatiske aktivitet er stabile under køleskabsbetingelser i mere end 6 måneder.
4) Dette konjugat har en molekylvægt på ca. 550.000, og molforholdet mellem peptid (II) og enzym er ca. 6.
Eksempel 7 30 Peptid (III) (21-29)-β-D-galactosidase-konjugat
Fremgangsmåden i eksempel 5 gentages med den forskel at der bruges 1,2 mg peptid (III) (21-29) ifølge eksempel 3 i stedet for 2 mg peptid (I) (15-29) til fremstilling af et peptid-3-D-galactosidase-konjugat.
DK 161095 31
Undtagen med hensyn t±l nedenstående egenskab 4), ligner egenskaberne af dette konjugat egenskaber 1):, 2)., 3), 5)., 6) og 8) af konjugatet ifølge eksempel 5, 4) Dette konjugat har en molekylvægt på ca. 550.000, og 5 molforholdet mellem peptid (XII) og enzymet er ca. 8.
Eksempel 8
Peptid (IV) (13-29)-β-D-galactosidase-konjugat
Fremgangsmåden i eksempel 5 gentages med den forskel at der bruges 2,4 mg peptid (IV) (13-29) ifølge eksempel 4 10 i stedet for 2 mg peptid (I) (15-29) til fremstilling af et peptid-p-D-galactosidase-konjugat.
Med undtagelse af egenskaberne 3), 4) og 7), ligner dette konjugats egenskaber egenskaberne 1), 2), 5), 6) og 8) af konjugatet ifølge eksempel 5.
15 3) Mere end ca. 75% af dette enzymatisk aktive konjugat er reaktivt over for anti-pankreatisk glucagon-antistof, og dets immunologiske aktivitet såvel som dets enzymatiske aktivitet er stabile under køleskabsbetingelser i mere end 6 måneder.
20 4) Dette konjugat har en molekylvægt på ca. 550.000 og molforholet mellem peptid (IV) og enzym er ca. 5.
7) En aminosyreanalyse af dette konjugat er anført i tabel 6.
Eksempel 9 25 Peptid (I) (15-29)-alkalisk fosfatase-konjugat 0,2 ml af en suspension af alkalisk fosfatase (5 mg/ml) centrifugeres og det resulterende bundfald opløses i 0,1 ml 0,1M fosfatpuffer (pH 6,8). For sig selv opløses 1 mg peptid (I) (15-29) ifølge eksempel 1 i 1 ml af samme puffer som oven-30 for anført, og derefter tilsættes den foran beskrevne enzymopløsning. Derpå tilsættes der 0,1 ml 2%s GLA-opløsning og reaktionen gennemføres ved stuetemperatur i 2 timer; ved afslutning af denne periode dialyseres reaktionsblandingen mod samme fosfatpuffer ved ca. 5°C natten over. Dialysatet renses yder-
DK 161095 B
32 (r) ligere ved hjælp af "Sephadex" ^ GlOO-søjlekromatografi med fosfatpuffer (pH 6/8) indeholdende 0,1M NaCl. De enzymatisk aktive fraktioner forenes til udvinding af et peptid-enzym-konjugat.
5 Dette konjugats egenskaber er som følger.
1) Konjugatet nedbryder fenylfosfat og p-nitrofenylfosfat, der er syntetiske substrater for EIA, til dannelse af henholdsvis fenol og p-nitrofenol.
2) Den optimale pH for enzymatisk aktivitet er 9,5 til 10 10,5.
3) Mere end 90% af dette enzymatisk aktive konjugat er reaktivt over for anti-pankreatisk glucagon-antistof, og detes immunologiske aktivitet såvel som dets enzymatiske aktivitet er stabile under køleskabsbetingelser i mere end 3 15 måneder.
4) Dette konjugat har en molekylvægt på ca. 140.000, og molforholdet mellem peptid (I) og enzym er ca. 20.
5) Konjugatet er letopløseligt i vandige opløsningsmidler med pH 6 og pH 11.
20 6). Det ultraviolette absorptions spektrum for dette konju gat er vist i fig. 3, hvor abscissen angiver bølgelængden i nm og ordinaten absorptionen. lmax = 281 nm.
7) Med hensyn til aminosyreanalyse for konjugatet henvises til tabel 7.
.25 8) Andre egenskaber ligner egenskaberne af alkalisk fosfa tase (Boyer, The Enzymes, bind 4 (1971), side 417, Acadmic Press, New York-London).
Eksempel 10
Peptid (II) (15-29)-alkalisk fosfatase-konjugat 30 Fremgangsmåden i eksempel 9 gentages med den forskel at der bruges 1 mg peptid (li)(15-29) ifølge eksempel 2 i stedet for 1 mg peptid (I) (15-29) til dannelse af et peptid-alkalisk fosfatase-konjugat.
Egenskab nr. 4) afviger, mens egenskaberne af dette 35 konjugat er lige som egenskaberne 1), 2), 3), 5), 6) og 8) beskrevet i eksempel 9.
DK 161095 B
33 4) Dette konjugat har en molekylvægt på ca. 140.000, og molforholdet mellem peptid (II) og enzym er ca. 20.
Eksempel 11
Peptid (III) (21-29)-alkalisk fosfatase-konjugat 5 Fremgangsmåden i eksempel 9 gentages med den forskel at der bruges 0/6 mg peptid (III) (21-29) ifølge eksempel 3 i stedet for 1 mg peptid (I) (15-29) til dannelse af et peptid-alkalisk fosfatase-konjugat.
Egenskaberne af dette konjugat ligner egenskaberne 1), 10 2), 3)/ 5)/ 6) og 8) af konjugatet ifølge eksempel 9, men af viger med hensyn til nedenstående egenskab 4).
4) Dette konjugat har en molekylvægt på ca. 130.000/ og molforholdet mellem peptid (III) og enzym er ca. 23.
Eksempel 12 15 Peptid (IV) (13-29)-alkalisk fosfatase-konjugat
Fremgangsmåden i eksempel 9 gentages med den forskel at der bruges 1,2 mg peptid (IV) (13-29) ifølge eksempel 4 1 stedet for 1 mg peptid (I) (15-29) til frembringelse af et peptid-alkalisk fosfatase-konjugat.
20 Dette konjugats egenskaber er lige som egenskaberne nr. 1), 2), 3)/ 5), 6) og 8) af konjugatet ifølge eksempel 9, men afviger fra dette med hensyn til nedenstående egenskaber 4) og 7) .
4) Dette konjugat har en molekylvægt på ca. 140.000 og 25 et molforhold mellem peptid (IV) og enzym på ca. 16.
7) Med hensyn til aminosyreanalyse af dette enzym henvises til tabel 8.
Referenceeksempel 5
Fremstilling af pankreatisk glucagon (l-29)-fi-D-galactosidase- 30 konjugat................
Fremgangsmåden i eksempel 5 gentages med den forskel at der bruges 4 mg pankreatisk glucaton (1-29) i stedet for 2 mg peptid (I) (15-29) til dannelse af et peptid-ft-D-galacto- 34
DK 16109 5 B
sidase-konjugat.
Dette konjugats egenskaber nr. I}, 2)_, 5), 6) og 8} er som egenskaberne af konjugatet ifølge eksempel 5, mens nedenstående egenskaber 3) og 4) afviger derfra.
5 3) Mere end 65% af dette konjugat er reaktivt over for anti-pankreatisk glucagon-antistof, og det immunologiske aktivitet såvel som enzymatiske aktivitet er stabile under køleskabsbetingelser i mere end 3 måneder.
4) Dette konjugat har en molekylvægt på ca. 550.000 og 10 molforholdet mellem pankreatisk glucagon og enzym er ca. 3.
Referenceeksempel 6
Fremstilling af pankreatisk glucagon (1—29)-alkalisk fosfa- tase-konjugat_ ' ' ' ' ' .......... .
Fremgangsmåden i eksempel 9 gentages med den forskel 15 at der bruges 2 mg pankreatisk glucagon (1-29) i stedet for 1 mg peptid (I) (15-29) til dannelse af et peptid-alkalisk fosfatase-konjugat.
Egenskaberne nr. 1), 2), 3), 5), 6) og 8) af dette konjugat er lige som de tilsvarende egenskaber af konjugatet 20 ifølge eksempel 5, mens der er forskel med hensyn til egenskab 4) som vist nedenfor.
4) Dette konjugat har en molekylvægt på ca. 150.000, og molforholdet mellem pankreatisk glucagon og enzym er ca. 13.
Eksempel 13 25 Ved et indledningsforsøg fremstilles der prøver inde holdende forskellige fortyndinger af antiserum (0,2 ml puffer, 0,1 ml peptid-3-D-galactosidase-komplex og 0,1 ml antiserum, fortyndet fra 100 gange til 1 million gange) for hvert af antiserumerne 30K, Nl6a og N6c, og hver prøve henstår ved 30 5°C i 24 timer, hvorved den enzymatisk aktive fraktion af hvert peptid-p-D-galactosidase-konjugat (med en passende forudbestemt koncentration på ca. 10 μϋ/ml) bindes til antiserumet. Derefter tilsættes der 0,1 ml anti-kanin IgG-serum (10 ganges fortynding af kommercielt antiserum) og 0,1 ml puffer indehol-
DK 161095 B
35
dende 1% normalt kaninserum. Den resulterende blanding henstår ved 5°C natten over og centrifugeres. Bundfaldet vaskes og suspenderes i 0,5 ml af en substratopløsning (20 yg/ml 4-me-tylumbelliferyl-p-D-galactopyranosid opløst i 0,01M fosfat-5 puffer (pH 7,Q) indeholdende 0,1% BSA, 0,1% NaN^, 0,1M
NaCl og 1 mmol MgCl2). Reaktionen gennemføres ved 37°C i 2 timer. Efter at reaktionen er fuldført, måles fluorescens-intensiteten af det 4-metylumbelliferon, der er frigivet ved enzymatisk spaltning, ved en excitation-bølgelængde på 365 nm 10 og en fluorescens-bølgelængde på 450 nm.
Derefter sættes der med henblik på kvantitativ bestemmelse af pankreatisk glucagon i en prøvevæske 0,1 ml af anti-serumet med fortyndingsfaktor som bestemt ovenfor, og af pep-tid-|3-D-galactosidase-konjugatet til en blanding af 0,1 ml 15 af prøvevæsken og 0,1 ml af pufferopløsningen. Derefter følges samme analyseprocedure som beskrevet ovenfor. Resultaterne fremgår af tabel 1-3.
Det vil ses af tabel 1 at ved anvendelse i kombination med peptid (I)!-enzym-konjugatet eller peptid (Il)-enzym-kon-20 jugatet giver 3OK antiserum resultater med udtalt forbedret følsomhed i sammenligning med den analyse som bruger samme antiserum i kombination med det konventionelle PG-enzym-kon-jugat et homologt system.
På lignende måde giver antisera N16a (tabel 2) og N6c 25 (tabel 3) også forbedret følsomhed ved lave koncentrationer af pankreatisk glucagon, navnlig ved anvendelse i kombination med peptid (II)-enzym-konjugatet eller peptid (Ill)-enzym-konjugatet i et heterologt analysesystem ifølge den foreliggende opfindelse.
30 Det vil ses at der opnås meget høje følsomheder i en- zym-immunanalysen af pankreatisk glucagon når konjugatet af et mærkningsenzym med et peptid, som er et andet end det peptid der bruges til fremstilling af et analyse-PG-antistof, bruges i kombination med nævnte antistof (dvs. i et heterologt 35 analysesystem).
36 ΓΊ Η DK 161095 Β Η Η &ι — Ο ι—1 Τ3 σι ο Η CN Μ ο οο ^ +ι ι ο ο γ-» ftiH -Ρ Η φ CM φ ft) ·*- ,β____ *<—Ν Η Η tn ^ 0 γΗ
Td σι ο Η CN μ ο ο ο +> ι φ ο ιη η ϋ am -PH fti φ Η φ ft) w Λ ‘w _____Φ Ο Λ Οι · σ> Φ β οι *>» w m 0 I Η tn Η Φ Ή Η '-'Ο -φ -Ρ ^ Η Ρ Ρ Φ Ό σι ο φ g -Η β -Η cm Ρ ο οο ο > > Ο 0 -Ρ 1 φ ο ιο οο Ρ φ Ο tn ft)in -Ρ Η φ β 03 Φ Φ Η Φ β Μ-Ι 03 Ο ft) ^ XI (< β Ή -Η Η ----- Φ tn Φ Φ 0) φ 03 03 Ο Μ Οι Φ Φ -Ρ 03 β ^ m m ο -Η Φ > 03 -Ρ tn Η tn -Ρ -Ρ Η Φ ο 03 03 · φ Ο —Ν Η Φ Φ β Η
Ρ ^ Ο >ϋ σι Ο HH Μ-) Φ CM
^4 ro ο ·Η οι Ρ ο Η Η p-ι ro β« ·Ρ I Φ ΟΟ'Ψ β β Φ Φ Ο Ο ft)0O -Ρ Η φ φ Ρ) Φ ft« ro -ιη φ Η Φ 'Ο Η ft) ^ ,β ιΗ ι—1 g -Η Ή ·Η φ 03 Η ------Ρ -Ρ β Φ β Λ · -Ρ -Ρ Φ *-« Φ φ φ φ t n «3
Eh t n οι φ φ ιο — Ο φ β β 03 σι σι , η οογο *d β β φ Η <Ν ο οοοιο ·Η Λ Λ X ·“ I g Η 03 Φ Ο Η 0 Ο ·Ρ -Ρ Ε-ι C"' ft) — ,β -Ρ Φ Φ Η ο +> -ρ m φ -η -φ ο τι ________Η > > β “Τ' Φ ·Η Ή !>ι ·Η t n -Ρ -Ρ -Ρ Λ ι ι λ: ·η I I Β Ω Φ Φ 03 g m g >ι t n ι Ρ m Φ φφνο α: αχ φ φ φ Φ Ρ g Ρβ -Ρ β οι χ μ ;> +> Μ-t β t n 4-3 Φ g Φ Ο ·Η 03 03 03 ·Η Φ Ρ β I β tn ·Η 4J φ -Η -ri β Λ β φ •Η 'Ο’Φ Ρβ -ΡΦ -Ρ-Ρ-ΡΡΦ φ 03 Ό φ ·Η φ ·η Φ φ tn Φ Φ -Η.
>-Η β > -Ρ 03 β ΡΡβ β g g Φ Ω -Ρ >ι Ο) ·Η Ο -Ρ Λ! Ο — Ρ>)>)Ρ 4-ΐβ -Ρ -ΡΦ -ΡΛ! ββ tnH Λ Ν Ν 4Η ·* •β Φ Ρ β ft) β| φφφgooo ββ Ρ β Ο β Φ g Ό Ρ)0\ Ο Ο g Φ Φ -Ρ β Φ ρ p Φ ρ ^ >ι β β t n η m ^ Φ-Ρ >Φ > Φ Η Ρ Ν ΟΡΗ Ρ) Ν β β Ρ Φ β g tn g β Φβ «Φ tnw β Φ φ μη ρ Φίηβ-ΗβΦίη-Ρ Φ φ Ω Ω Φ φ β ρ η ρ β Φ t n ι - Μ -Ρ
β ·Η φ Φ Φ β ·Η tn β β —> g .r03+J
-HH 03 -Ρ 03 HH β ·Η ·Η CN 0 ·· Ο β ·Η -pH ·Η -Ρ Η -Ρ Η -ι—ι Η -Ρ Ο CQ ffl Ω < Ω ft)-Η -Ρ β -Ρ fti-H β £3 ft) Ω ~ Φ-Ρ β Ηβ Φ-ΡΟ ΟΦ X <*> ~ ~ — ft) 03 < CQ Φ ft] 03 ,¾ ft) Μ w _ Η CM 00
37 DK 161095 B
H
H
H tr> — o r-1
Ό σι O
H CM Μ O Η (Ti +j I o) o oo m
ftH 4-> H
φ CM <D
cm-' rα___
H
H 01
— O
.—- r—I
iø σι O o ro oo -H CM M O 00 lo
-P I Φ H
ftin +> QJ i—t 0) CM Λ »»—s H 0>
<n “'O
CM <->> H
I Tø (Tv O o oo o ro H om Ρ o σι oo H 4-1 I <U 1-4 w 0) CM m 4-) tn uh o) — β ft — Λ > id ___—--- H O» o CM Ό * o t> · H ro O H 1-1 H 4-> td . —
<D CM ° O1 H
n 0) i—i o <x3 σ v O ^,.¾ (0 cm z CM H CM Η Οι-ΗγΜΛ tj 4J I O o o oo td
^ 0,00 g Η Η -P
(1) H O
_fi____1 - s ? σι P Ci rM Η o o σι -ri I 1¾ o o r~- β
OH φ HH 4J
CM rø P
^ H "tf (0 _____ i—I O' -.-- —--" ————— - -ri 0 4-> oo I H ,
i i S P
g »w g & Oi M ti V
S nj§N0C!in oh
Lig ρ β -ΡΟΗ > ft IH d DI MM 0) g fd H -P H g d β | β Di 4J β O' <1) Ό0) -H 13¾ H 3 |d Η 52 0) co ij <1)-H <D -η Ρ Ρ β
>-H β > -P W β ·Ρ^! _ O
-p >i Pi -Η O ββ tun g © jj β Jj 4J φ -Ρ >ί Η ιί Ιί E O O O 00 Ό β ^ Si T 2 S ram c π d id s fi d t n η ίο φ Q) IH m 0) Ή >( mm >(ø > lin m n W β 0>w Q) o β g en g β β β _—- ti (3&ι3-Η3βεη4-) 0 ~ £ β p HP β β bi ι ™ Μ Ό-ΗΟΙΦΦΤίΗΟιβΌ'- _ HHW4JW-HH3H-HCM m2
4JHH4J-H4JHT1H-P Ο 0W
ft-Η 4J Ρ -Ρ ft Η β Λ ft CQ
044 β i Η β 0)4-10 ΟΦ > <* ~ ~ ft ω rij j CQ β ft Μ .*4 !*ί ft I Μ ___— Η 00 38
_DK 161095 B
Η Η Η tn ^ Ο ^ ιΗ Ό σι ο ο ο ο
Η CM Μ Ο CO 1C
-ft I Φ Η ftr-l -Ρ 0)(Μ φ ft) — Λ Η Η tn W 0 '—- I—1 φ σι ο ο οο ^ Η cm Μ ο h in •P I Φ Η ftiin -μ Φ Η φ ft) ^ Si Η W— tn λ τ) σι ο σ\ Η cm η CM -Ρ I Ο Ο Μ* Ο i 0)ir> g ο ο co LO φ i—1 0 Η Η
Η φ ft) w ,G
— &> C i---------‘ td h tn — o > ·
Ό O H tn H
H -—' O v—’ 0
-p CO · <—«. i—I H
ft) o o rø σ> ο Φ CO φ V0 Ο H CM Μ O CM If) .ft P)S +J I φ OOP- (0
H ft)CO -Ρ Η H -P
φ ΦΗ Φ Λ ft) — Si *3 td _______Φ
Eh S
tn 0 Φ η m
Ο H
σι Μ ο ο σι φ CM Φ OOP' fft
* I -Ρ Η H G
OH φ H <* ft) --- si Λ _________P tn
0 0 H
I—I
I -H
i i a g m g >t tn -Ρ Φ φ φφνολ: φ η
Mg MG -PGM >0) in 3 tn Η Φ g Cd OH ‘Mg M G I 3 Cn ·Η+) tn Φ
ΤΙΦ ·Η τ) Ό Μ 3 -Ρ <d GM
Φ ω ό φ -Η φ-ηιΰφ rd ,¾ >·Η G > -Ρ Μ G Μ Μ G Φ -Ρ >ι ft HO -PrMO'-' ο ο ο go -PG -Ρ -ΡΦ -Ρ ^4 G G tnH ο ο 0 ϋ
Ord Μ tJftj Gi Φ td td g Hin MG
G OG td g O ft) O \ Φ
ΦΗ Η Φ H ~ >i G 3 tn MM
> id |>fdH HN OHHftj ΦΦ
G gtngG td G tø G tn~ H
td tn 3 h 3 td tn-P Φ . —-—*-—“ ^ Φ
GMHM Gdtni cm M
Ό Η φ ΦΦ Ό H tn G'd-' Η Η Μ -G Μ Η H 3 Η H CM tn Φ
-pH H -PH 4J Η ·η Η -P O OM
ftiH -P G -P ftjH G Λ ft) ffl ^ Φ -P G HG Φ-ΡΟ 0Φ "S. <JP — — ft) Μ < M td ft) M A=i tø ftij PQ ^___ H co
Eksempel 14 39
DK 161Q95B
Plasma-PG-titere af flere stammer rotter bestemmes ved den ovenfor beskrevne enzym-immunanalyseproces under anvendelse af 30K antiserum og peptid (I) (15-29)-β-D-galacto-5 sidase-konjugat og resultaterne sammenlignes med resultaterne af konventionelle radioimmunanalyser med samme 3OK antiserum.
Resultaterne fremgår af tabel 4.
Som det ses i tabel 4 frembragte EIA-metoden i henhold 10 til den foreliggende opfindelse til kvantitativ bestemmelse af pankreatisk glucagon resultater der var i god overensstemmelse med resultaterne af den konventionelle RIA med anvendelse af 30K antiserum, der betragtes som en af de mest pålidelige analyseprocesser. Det er således klart at EIA-metoden 15 ifølge den foreliggende opfindelse muliggør hurtig bestemmelse af PG i forskellige plasmaprøver med høj følsomhed og pålidelighed.
Tabel 4
Testplasma Koncentration af PG (ng/ml) on EIA ifølge
u _ opfindelsen RIA
1 0,42 0,50 2 0,27 0,23 3 0,27 0,28 4 0,64 0,57 25 5 0,39 0,42 6 0,40 0,47
Eksempel 15 På samme måde som i eksempel 13 lader man prøver indeholdende forskellige fortyndinger af 30K antiserum (0,2 ml 30 puffer, 0,1 ml peptid (X)-alkalisk fosfatase-konjugat eller peptid (Il)-alkalisk fosfatase-konjugat og 0,1 ml antiserum, fortyndet 10Q gange til 100.000 gange) henstå ved 5°C i 24 timer, hvorved den enzymatisk aktive fraktion af hvert peptid-alkalisk fosfatase-konjugat (med en forudbestemt passende
DK 161095 B
40 koncentration på omkring 4 mU/mi) kobles til antiserumet.
Derpå tilsættes der 0,1 ml anti-kanin-IgG-serum (en 10 ganges fortynding af kommercielt antiserum) og 0,1 ml puffer indeholdende 1% normalt kaninserum, og den resulterende blan-5 ding henstår ved 5°C natten over. Derpå centrifugeres blandingen og bundfaldet vaskes og suspenderes i 0,5 ml substratopløsning (2 mg/ml p-nitrofenylfosfat opløst i 0,05M natriumkarbonatpuffer (pH 9,8) indeholdende 1 mmol MgC^J · Reaktionen får lov at forløbe ved 37°C natten over. Når reaktionen 10 er fuldført måles absorptionsintensiteten af p-nitrofenol, som frigivet ved enzymatisk spaltning, ved 405 nm.
Derpå sættes der med henblik på analyse af PG i en prøvevæske 0,1 ml af 30K-antiserumet ved den ovenfor nævnte forudbestemte fortynding, og 0,1 ml af peptid-alkalisk fosfa-15 tase-konjugatet til en blanding af 0,1 ml af prøvevæsken og 0,1 ml af pufferen. Derefter følges den ovenfor beskrevne analyseprocedure. Analyseresultaterne er vist i fig. 1, hvor abscissen angiver mængden af pankreatisk glucagon i ng/ml og ordinaten absorptionen ved 405 nm.
20 I fig. 1 angiver den fuldt optrukne kurve med fyldte cirkler resultaterne for peptid (Ii-enzyim-konjugatet, den brudte kurve med krydser angiver resultaterne for peptid (II)-enzym-konjugatet og den fuldt optrukne linje med åbne cirkler angiver resultater for PG-enzym-konjugatet.
25 Fig. 1 viser standardkurven for pankreatisk glucagon.
30K-antiserum giver den maximale følsomhed når den bruges i kombination med peptid (I)-alkalisk fosfatase-konju-gatet ifølge eksempel 9 (heterologt analysesystem), mens det konventionelle homologe analysesystem med anvendelse af PG-30 alkalisk fosfatase-konjugatet kun giver lav følsomhed.
Antal af mol af hver aminosyre pr. 100 mol glycin.
Tabel 5
DK 161095 B
41
Aminosyre Peptid (I)-β-D-galactosidase- konjugat 5 Lys (lysin) 50
His (histidin) 42
Arg 115
Asp 166
Thr 78 10 Ser 77
Glu 158
Pro (prolin) 93
Gly (glycin) 100
Ala 102 15 Val 82
Met 18
Ile (isoleucin) 53
Leu 123
Tyr 35 20 Phe 54 β-Ala
DK 161095B
Tabel 6
Antal mol af hver aminosyre pr. 100 mol glycin.
42
Aminosyre Peptid (IV)-|3-D- galactosidase-konjugat 5 Lys(lysin) 57
His (histidin) 34
Arg 120
Asp 177
Thr 80 10 Ser 80
Glu 158
Pro (prolin) 91
Gly (glycin) 100
Ala 116 15 .Val 77
Met 16
Ile (isoleucin) 51
Leu 128
Tyr 32 20 Phe 51 (3-Ala
Tabel 7
Antal mol af hver aminosyre pr. 100 mol glycin.
DK 161095 B
43
Aminosyre Peptid (I)-alkalisk fosfatase-konjugat 5 Lys (lysin) 49
His (histidin) 19
Arg 81
Asp 138
Thr 92 10 Ser 80
Glu 132
Pro (prolin) 66
Gly (glycin) 100
Ala 116 15 Val 88
Met
Ile (isoleucin) 34
Leu 89
Tyr 20 Phe 40 8-Al a
Antal mol af hver aminosyre pr. 100 mol glycin.
DK 161095 B
44
Tabel 8
Aminosyre Peptid (IV)-alkalisk fosfatase-konjugat 5 Lys (lysin) 54
His (histidin) 13
Arg 73
Asp 137
Thr 92 10 Ser 84
Glu 132
Pro (prolin) 68
Gly (glycin) 10Q
Ala 117 15 Val 90
Met
Ile (isoleucin) 36
Leu 99
Tyr 20 Phe 39 y β-Ala 8
Eksempel 16
Ved et indledningsforsøg holdes en blanding bestående af 100 μliter af varierende fortynding af forskellige antise-25 ra (30K, G21, G7, R517 og N6E), 100 yliter peptid-fi-D-galac^ tosidase-konjugat, 50 yliter "Antagosan" (et i Danmark ikke indregistreret varemærke for et produkt fra Hoechst; 10.000 enheder/ml) og 250 yliter analysepuffer (0,02M fosfatpuffer (pH 7,3) indeholdende 0,5% HSA, 0,5% EDTA, 0,1% NaN^ og 30 0,1M NaCl) på 5°C i 96 timer, hvorved den enzymatisk aktive fraktion af det tilsvarende peptid-p-D-galactosidase-konjugat, der har en forudbestemt passende enzymatisk aktivitet på ca.
10 yU/ml; bindes til antiserumet. Derefter tilsættes der 100 yliter af en suspension af 5%s anti-kanin IgG-antistof-cellu-35 losekomplex og reaktionen udføres ved 30°C i 4 timer. Denne
DK 161095 B
45 blanding centrifugeres og bundfaldet vaskes og suspenderes i 500 yliter substratopløsning (20 yg/ml 4-metylumbelliferyl-3-D-galactopyranosid opløst i 0,01M fosfatpuffer (pH 7,0) indeholdende 0,1% BSA, 0,1% NaNg/ 0,1M NaCl og lmmol MgCl2).
5 Reaktionen udføres ved stuetemperatur natten over. Efter at reaktionen er fuldført måles fluorescens-intensiteren af 4-metylumbelliferon som frigivet ved enzymatisk spaltning ved en excitations-bølgelængde på 365 nm og en fluorescens-bølgelængde på 450 nm.
10 Derefter sættes der henblik på analyse af PG i prøve væsken 100 pliter af den ovennævnte forudbestemte fortynding af antiserum og 100 ml peptid-3-D-galactosidase-konjugatet til en blanding af 50 yliter af prøvevæsken, 5Q yliter "Anta-gosan" og 200 yliter analysepuffer. Derefter følges den samme 15 analyseprocedure som beskrevet ovenfor.
Resultaterne af disse analyser fremgår af fig. 4-6, hvor abscissen angiver indholdet af tarm-glucagon i yg/ml og ordinaten forholdet B/Bo i procent.
I fig. 4-6 angiver de fuldt optrukne kurver med lukkede 20 cirkler resultaterne for peptid (I)-enzym-konjugatet, de fuldt optrukne kurver med krydser resultater for peptid (III)-enzym-^ konjugatet og de fuldt optrukne kurver med åbne cirkler resultater for PG-enzym-konjugatet.
Idet der først refereres til fig. 4 blev antiserum 25 R517, vundet ved immunisering af en kanin med PG, omsat med tarm-glucagon ekstraheret fra en hunds tyndtarms slimhinde. Dette antiserum viser en konkurrerende bindingsaffinitet til tarm-glucagon ved anvendelse i kombination med et konjugat af PG selv (i det følgende betegnet "PG (1-29)") med enzymet, 30 men viser ikke nogen signifikant konkurrerende bindingsaffinitet, selv ved en høj koncentration af tarm-glucagon, ved anvendelse i kombination med peptid (I) (15-29)-enzym-konjugat. Det er derfor klart at det analysesystem som indebærer anvendelse af R517 antiserum og peptid (I)-enzym-konjugat er spe-35 cifikt for pankreatisk glucagon.
I de tilfælde der repræsenteres af fig. 5 og 6 blev antiserum G7, vundet ved immunisering af en kanin med pankreatisk glucagon, bragt til reaktion med tarm-glucagon. Her er
DK 161095 B
46 den ovennævnte ekstrakt af hunde-tyndtarmsslimhinden yderligere renset ved gelfiltrerings-søjlekromatografi på "Sepha-dex" ®G50, og de resulterende to tarmglucagoner med forskellige molekylvægte (I anslået molekylvægt ca, 10.000; II anslå-5 et molekylvægt ca. 2.000 til 4.000) (Hormone and Metabolic
Research, bind 8, side 170 (1976)) er anvendt ved undersøgelse af krydsreaktiviteten af ovennævnte antiserum med tarmglu-cagon. Anvendelse af antiserum i kombination med peptid (i) (15-29).-enzym-konjugat eller peptid (III) (21-29)-enzym-kon-10 jugat viser ikke så stor konkurrerende bindingsreaktion med noget af de to tarmglucagoner som den der blev iagttaget når samme antiserum blev brugt i forbindelse med PG (1-29)[-enzymkon jugatet. Således bliver G7 PG-uspecifikt antiserum lige som R517 antiserum åbenbart specifikt over for PG når det an-15 vendes i kombination med peptid (I)-enzymet eller peptid (III)-enzym-konjugatet.
Eksempel 17
Humant plasma fraktioneres ved gelfiltrerings-kolonne-kromatografi i stort plasmaglucagon (i det følgende betegnet 20 "BPG") og pankreatisteglucagon (PG)-fraktioner, og ved den fremgangsmåde der er beskrevet i eksempel 16 bestemmes PG-niveauer. Resultaterne sammenlignes med resultaterne af den konventionelle enzym-immunanalyse med PG-antiserum og PG (1-29)-enzym-konjugat.
25 Resultaterne er anført i tabel 9. Det vil ses i tabel 9 at det heterologe analysesystem ifølge den foreliggende opfindelse ikke afslører nogen signifikant afvigelse af resultaterne for PG-fraktionen, men gav meget lave PG-niveauer for BPG-fraktionen. Det er derfor klart at for så vidt angår 30 antisera 30K og G21, vundet ved immunisering af kaniner med PG, resulterer brugen., af sådanne sera i kombination med peptid (I) (15-29)-enzym-konjugat i en reduktion i den konkurrerende bindingsreaktion med BPG eller af graden af inhiberende virkning af BPG på antigen-antistof-reaktionen, således at 35 det bliver muligt at bestemme PG-niveauet i plasma mere specifikt end ved en analyse med anvendelse af PG (1-29)-enzym-
DK 161095 B
47 konjugatet. Når N6E-antiserum vundet ved immunisering af en kanin med peptid (I) (15-29) bruges i kombination med peptid (III) (21-29)-enzym-konjugat, giver BPG-fraktionen en endnu lavere PG-værdi, hvilket viser at analysesystemet er endnu 5 mere specifikt over for pankreatisk glucagon.
48 DK 161095 B
<n cn cm
CM I
I H
tn cm
H ^ G G
0 0 ~ t n tn ^ h cd nj
HH O O
Η H tn i fl ·~· ''—' O I—i 1—1 in h t n t n Ό Η Ό o (ti •P to -H p o o o oo n to g ,¾ •PS -P ti) cm to ^ t" tn cn ft ft -P co ^ ro cn td ·ρ
d) 0) 0) Η -P
ft ft Λ to ft tO
— 0)
----H----P P
g n ϋ
tn \ O G
h o in -P (ti H ft M ft Ό O ~ •H p o o o oo o in ·· -P 0)-PcMcoror^r^o o·· ft ^ II Ol IS ID CM H ft ø O O -P W ft — ft Λ ·Η >
•P O
h +» in cm tn A! i O O td o o o ro o o O ·
HtUOHCOOHH G
O P CM (O O H H Pi O
SS·· tn O O D ro H s id
ft Λ g !*} O
^ g 0) 3
cn ------P---rtf H
cm i (0 · tn i tn G Λ ^ Η H O O ft oo · cn ^ Htnooocoo'tf 0) to — tn ’’d Oiticocncocotot© w <n<n -h
HØ ·Ρ P O O CM 'tf CM s Η Ό -P
O) ft -P d) D · cn td
Λ ft -P H i—I Ό H <D
(0 00)0 OH'-'P
É-t ft £ g cm M
— · CO H G
oo ----O -P (ti w tn o o o ft t n td Μ Ό Ό O O ti Λ Ή ti fl ro h oootoo'tf-Ptti tn tn o ø O oHinoiocntnft g ft g iH ro m H ro 0 *·*>
O · -P O t" oo -P
.G "tf OG HH G
(ti G 0)
Η 0 Ό Ό H
--------(ti H G G (ti tn o -p -H > I I Μ Λ Λ ·Η I I ε Q > ε g >i t n i G w tn · ,y
o Ονο ta φ o a 'ί !B
p ε p g -p -p -p
(HD (HQ) g (ti 0)¾ QJCDHP
p i 3tn— ωω,οΛοα) Ό 0) Ό Ό P D cm -Pg (ti (ti ft 0) in 0) -P 0) -ro G tn -P -P g g
>-H > -P tn G O Din Ω Q d) O
•p ft-HO-H PO) tntn •pg +> <d -p ,¾ -p ,qtn ·· ·· x Ό(ΰ fl ft G I G P P 0) 0) G G (tig DØ 0 0 gd) D D 0) Ό o) m dim-' >i Pftøftøftø i* p -P-Potn
> (ti >(tiH (UN hfflftfflftWft N (ti (C G G
G g G DG G (ti P P ti) § (ti tn 3 (ti tn-P 0) ----0) g d) 0) p g G P G (ti tn i in-P-PO)
nD-P0)rd-PtnGtO(ti g (ti -P -P H G
P H tø -P H D Η H g OH -P -P 0) 0) •PH-P-PH-l-lH-P 10 H CM ro U) ft HHftP ft-P -P ft-P G rQ ft (ti d)-P G 0) -P O Od) H —· ^ Λ ^ Λ ft t n | ft in ,¾ | & ft | ft___ h cm ro <f m to

Claims (11)

1. Pepetid-enzym-konjugat til brug ved enzym-immunanalyse af pankreatisk glucagon, kendetegnet ved at det er dannet ved kobling af et mærkningsenzym med et peptid med formlen
5 H-R1-Phe-Val-Gln-Trp“Leu-R2-Asn-Thr-OH hvor R1 er et peptidfragment bestående af 1-1Q aminosyrerester, 1 2 3 4 5 inci. Asp i 10-st±llingen, i sekvensen β-Ala-Tyr-Leu-Asp-Ser-6 7 8 9 io 2 Arg-Arg-Ala-Gln-Asp, og hvor R betegner Met eller Nle.
2. Peptid-enzym-konjugat ifølge krav 1, kendete g-10 net ved at det er dannet ved kobling af et mærkningsenzym med et peptid med formlen H-R -Phe-Va 1 -GI n-Trp-Leu-Me t-Asn-Thr-OH 3 hvor R er et peptidfragment bestående af 1-7 aminosyrerester, incl. Asp i 7-stillingen, i sekvensen Alp-sir-Arg-Arg-A^a-Gfn-15 Asp.
3. Peptid-enzym-konjugat ifølge krav 1 eller 2, kendetegnet ved at mærkningsenzymet er β-galactosidase eller alkalisk fosfatase.
4. Peptid-enzym-konjugat ifølge krav 2, kendete g-20 net ved at det er dannet ved kobling af et mærkningsenzym med et peptid med sammensætningen H-Asp-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Met-Asn-Thr-OH eller H-Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Met-Asn-Thr-OH.
5. Peptid-enzym-konjugat ifølge krav 4, kendete g-25 net ved at mærkningsenzymet er β-galactosidase eller alkalisk fosfatase.
6. Fremgangsmåde til enzym-immunanalyse af pankreatisk glucagon under anvendelse af et peptid-enzym-konjugat som analysereagens, kendetegnet ved at der som peptid- 30 enzym-konjugat anvendes det i krav 1 angivne konjugat dannet ved kobling af et mærkningsenzym med et peptid med sammensæt- 1 2 1 ningen H-R -Phe-Val-Gln-Trp-Leu-R -Asn-Thr-OH hvor R er et peptidfragment bestående af 1-10 aminosyrerester i sekvensen β-Alå-Tyr-Leu-Asp-sår-A^g-Arg-Alå-Gln-As^ incl. Asp i 10- 2 DK 161095 B stillingen, og hvor R er Met eller Nle.
7. Fremgangsmåde ifølge krav 6,kendetegnet ved at der anvendes et konjugat dannet ved kobling af et mærkningsenzym med et peptid med formlen
5 H-R3-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Met-Asn-Thr-QH, 3 hvor R er et peptidfragment bestående af 1-7 aminosyrerester i sekvensen Aisp-Ser-A?g-Arg-Alå-Gln-Alp incl. Asp i denne sekvens' 7-stilling. 1 g 8. Fremgangsmåde ifølge krav 6, kendetegnet ved at der anvendes et konjugat dannet ved kobling af et mærkningsenzym med et peptid med formlen H-R4-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-R2-Asn-Thr-OH 15 2 4 hvor R betegner Nle eller fortrinsvis Met og R betegner Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp eller fortrinsvis Asp eller Ø-Ala-Tyr-Leu-Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp.
9. Fremgangsmåde ifølge krav 6 eller 7, kendet eg-20 net ved at der bruges et konjugat hvor mærkningsenzymet er β-D-glactosidase eller alkalisk fosfatase.
10. Fremgangsmåde ifølge krav 7, kendetegnet ved at der bruges et peptid-enzym-konjugat dannet ved kobling af et mærkningsenzym med et peptid med sammensætningen H-Asp- 2^ Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Met-Asn-Thr-OH eller H-Asp-Ser-Arg-Arg-Ala-Gln-Asp-Phe-Val-Gln-Trp-Leu-Met-Asn-Thr-OH.
DK360379A 1978-08-30 1979-08-29 Fremgangsmaade til enzym-immunanalyse af pankreatisk glucagon og peptid-enzym-konjugat til brug ved denne fremgangsmaade DK161095C (da)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP10682878A JPS5539702A (en) 1978-08-30 1978-08-30 Method of measuring enzyme immunity of pancreas glucagon
JP10682878 1978-08-30

Publications (3)

Publication Number Publication Date
DK360379A DK360379A (da) 1980-03-01
DK161095B true DK161095B (da) 1991-05-27
DK161095C DK161095C (da) 1991-11-04

Family

ID=14443617

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DK360379A DK161095C (da) 1978-08-30 1979-08-29 Fremgangsmaade til enzym-immunanalyse af pankreatisk glucagon og peptid-enzym-konjugat til brug ved denne fremgangsmaade

Country Status (5)

Country Link
US (1) US4312943A (da)
EP (1) EP0009147B1 (da)
JP (1) JPS5539702A (da)
DE (1) DE2963813D1 (da)
DK (1) DK161095C (da)

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5657753A (en) * 1979-10-16 1981-05-20 Toyo Jozo Co Ltd Novel glucagon fragment, and its use
EP0111216A3 (en) * 1980-03-31 1985-01-16 Takeda Chemical Industries, Ltd. Method for enzyme immunoassay and peptide-enzyme conjugate, its lyophilizate, antibody and kit therefor
JPS5681450A (en) * 1980-10-23 1981-07-03 Toyo Jozo Co Ltd Determination method for glucagon
CA2091544A1 (en) * 1992-03-26 1993-09-27 Shing F. Kwan Stabilization of functional proteins
CN100346834C (zh) * 2003-01-10 2007-11-07 株式会社新潟Tlo 基因治疗用载体以及利用该基因治疗用载体在哺乳动物中或培养细胞中进行目的蛋白定量的方法
US9453073B2 (en) 2011-12-02 2016-09-27 Eli Lilly And Company Anti-glucagon antibodies and uses thereof
WO2019197313A1 (en) 2018-04-09 2019-10-17 Svar Life Science Ab Glucagon Assay

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NL154599B (nl) * 1970-12-28 1977-09-15 Organon Nv Werkwijze voor het aantonen en bepalen van specifiek bindende eiwitten en hun corresponderende bindbare stoffen, alsmede testverpakking.
US3975342A (en) * 1972-05-15 1976-08-17 Biological Developments, Inc. Tyrosyl-class antigenic conjugates, their preparation and antibodies raised thereto
US4002532A (en) * 1974-10-21 1977-01-11 Weltman Joel K Enzyme conjugates
GB1572220A (en) * 1976-10-07 1980-07-30 Mochida Pharm Co Ltd Immunochemical process of measuring physiologically active substances
US4075194A (en) * 1976-12-09 1978-02-21 Yeda Research And Development Co., Ltd. Novel synthetic undecapeptide and clinical assay
JPS5836308B2 (ja) * 1977-02-10 1983-08-08 大塚製薬株式会社 抗体の製造方法
US4206199A (en) * 1977-07-22 1980-06-03 Takeda Chemical Industries, Ltd. Novel glucagon fragment and its derivatives
US4220722A (en) * 1978-02-10 1980-09-02 Syva Company Method for conjugating to polyamino compounds employing haloacyl groups and compositions prepared thereby
US4218539A (en) * 1978-03-24 1980-08-19 Weltman Joel K Enzyme conjugates and method of preparation and use

Also Published As

Publication number Publication date
JPS6311626B2 (da) 1988-03-15
JPS5539702A (en) 1980-03-19
EP0009147B1 (en) 1982-10-06
DK161095C (da) 1991-11-04
DE2963813D1 (en) 1982-11-11
DK360379A (da) 1980-03-01
EP0009147A3 (en) 1980-04-30
US4312943A (en) 1982-01-26
EP0009147A2 (en) 1980-04-02

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4474754A (en) Human interferon-related peptides, antigens, antibodies and process for preparing the same
Piot et al. Isolation and characterization of two opioid peptides from a bovine hemoglobin peptic hydrolysate
Blombäck et al. Human fibrinopeptides isolation, characterization and structure
Hurley et al. Development of radioimmunoassays for free tetra-L-aspartyl-L-lysine trypsinogen activation peptides (TAP)
US4423034A (en) Process for the preparation of antibodies
JPH0753752B2 (ja) 酵素抵抗性免疫変調ペプチド
JPH01501148A (ja) 悪性‐PTHrPの液性過カルシウム血症において活性なタンパク
Scott et al. Purification and characterization of porcine corticotrophin-like intermediate lobe peptide
US5230999A (en) Monoclonal antibody to endothelin-3 or precursor thereof and use thereof
US4407965A (en) Process for preparing antibody
DK161095B (da) Fremgangsmaade til enzym-immunanalyse af pankreatisk glucagon og peptid-enzym-konjugat til brug ved denne fremgangsmaade
GB2062644A (en) Glucagon fragment and utility hereof
DK168710B1 (da) Monoklont antistof eller fragment deraf, immunogen, immunanalysefremgangsmåde til bestemmelse af glycosyleret nativt humant albumin, peptid samt immunanalysesæt
US4327075A (en) Synthetic antigenically-active polypeptide and a process for its preparation
JP4258271B2 (ja) ポリアミノ酸担体
CA2038030C (en) Synthetic peptides which contain sequences from factor viia, and the use thereof
JPH06157592A (ja) ペプチドもしくはその誘導体、それらとタンパク質との結合体、及びこれらを免疫源とする抗エンドセリン−1抗体の製造方法
Radford et al. Antibodies against an inter‐domain segment of polypeptide chain inhibit active‐site coupling in the pyruvate dehydrogenase multienzyme complex
JP2648855B2 (ja) ペプチド、その抗体およびエンドセリンの定量
JP3194762B2 (ja) モノクローナル抗体、その製造法および用途
JP3419746B2 (ja) エンドセリン−3前駆体に対するモノクローナル抗体およびその用途
JP3167024B2 (ja) エンドセリン―3あるいはエンドセリン―3前駆体に対するモノクローナル抗体およびその用途
JP2628336B2 (ja) ブラジキニン誘導体およびその定量
JP2980991B2 (ja) 癌遺伝子K−samの遺伝子産物に対する抗体、その用途およびペプチド
JPH02104595A (ja) 非ペプチドのペプチド相当物及びそのデザイン方法

Legal Events

Date Code Title Description
PBP Patent lapsed