DK141339B - Fremgangsmåde til fremstilling af felin-calicivirus vaccine. - Google Patents

Fremgangsmåde til fremstilling af felin-calicivirus vaccine. Download PDF

Info

Publication number
DK141339B
DK141339B DK516975AA DK516975A DK141339B DK 141339 B DK141339 B DK 141339B DK 516975A A DK516975A A DK 516975AA DK 516975 A DK516975 A DK 516975A DK 141339 B DK141339 B DK 141339B
Authority
DK
Denmark
Prior art keywords
virus
cats
feline
feline calicivirus
vaccine
Prior art date
Application number
DK516975AA
Other languages
English (en)
Other versions
DK141339C (da
DK516975A (da
Inventor
James Long Bittle
Wayne J Rubic
Original Assignee
Pitman Moore Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Pitman Moore Inc filed Critical Pitman Moore Inc
Publication of DK516975A publication Critical patent/DK516975A/da
Publication of DK141339B publication Critical patent/DK141339B/da
Application granted granted Critical
Publication of DK141339C publication Critical patent/DK141339C/da

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/125Picornaviridae, e.g. calicivirus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5254Virus avirulent or attenuated
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/55Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the host/recipient, e.g. newborn with maternal antibodies
    • A61K2039/552Veterinary vaccine
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/16011Caliciviridae
    • C12N2770/16034Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S424/00Drug, bio-affecting and body treating compositions
    • Y10S424/819Viral vaccine for feline species, e.g. cats

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

(11) FREMLÆGGELSESSKRIFT 141339 DANMARK ",llntc|ift e? Asms (21) Ansøgning nr. 5169/75 (22) Indleveret den 17· HOV. 1975 f(23) Løbedag 17- nOV. 1975 (44) Ansøgningen fremlagt og fremlæggelsesskriftet offentliggjort den 25 · f eb · 19 80 DIREKTORATET FOR u PATENT- OG VAREMÆRKEVÆSENET <3°) Pnoritet besæret fra den 21. nov. 197^, 525689, us <7U PITMAN-MOORE INC., Box ?44, Bear Tavern Road, Washington Crossing, flew Jersey, US.
(72) Opfinder: James Long Bittle, 67 Foxcroft Drive, Doyles town, Penn= sylvania, US: Wayne J7 Ruble, Box ?48, R.D. no. 1, Pennington-Washing= ton Crossing Road, Titusville, New Jersey, US.
(74) Fuldmægtig under sagens behandling:
Th. Os tenf eld Patentbureau A/s._ (54) Fremgangsmåde til fremstilling af felln-calicivirus vaccine.
Den foreliggende opfindelse angår en fremgangsmåde til fremstilling af en vaccine, som er i stand til, når den injiceres i katte, at immunisere dem over for felin-calicivirus, ved hvilken et inokulum af levende infektiøs felin-calicivirus svækkes i et næringsvæske-felint vævskulturmedium, som er ikke-toksisk over for viruset.
Felin-calicivirus infektion er en almindelig alvorlig kattesygdom, sædvanligvis associeret med åndedrætssystemet. Mange sero-typer forårsagende fra lette åndedrætsproblemer til alvorlig pneumonia hos katte er omtalt i litteraturen. Rapporter i litteraturen viser, at denne sygdom er ansvarlig for omkring halvdelen af de kliniske tilfælde af feline åndedrætssysteminfektioner. Viruset inficerer epitelcellerne i snude, lunge, pharynx, trachea og øje og bevirker epitheliolyse og nekrose. Symptomerne varierer fra ikke tydelig infektion over mildt til alvorligt angreb af åndedrætssystemet med pneumonia og undertiden død. Endvidere er såvel uleerøse læsioner af snuden og tungen som anorexia og pyrexia ofte 141339 2 forbundet med sygdommen. Viruset udspredes fra snude, øjne og mund under forløbet af det kliniske angreb. Felin-calicivirus infektioner er ofte alvorlige og kompliceres yderligere af bakterier, når resistensen bliver lav. Dødeligheden kan være betydelig især hos unge killinger. Overførelsen af felin-calicivirus til modtagelige katte sker sædvanligvis ved intranasal instillation, for eksempel ved små dråber udstødt under nysen eller ved kontakt (sædvanligvis snude til snude). Resistensen som følger efter restitutionen efter naturlig eller eksperimental infektion er af moderat varighed.
Felin-calicivirus (FO.7)-gruppen af serotyper kaldtes tidligere Picorna virus. Dette navn ændredes af den Internationale Komite angående virus nomenklatur i 1971, idet denne virusgruppe kaldtes Picorna viradae inden for slægten calicivirus. Den første isolering af en felin-calicivirus serotype rapporteredes af L. B.
Fastier i Arner. J. Vet. Res., 18, 382 (1957). Siden da er der fremkommet adskillige rapporter i litteraturen, som bekræfter isoleringen af felin-calicivirus fra feline individer i forskellige dele af verden, som identificerer viruset som et felinmedlem af calicivirus, og som . beskriver overførslen, epidemilogien og de histologiske karakteristika af sygdommen, såvel som infektionerne iagttaget med forskellige serotyper. For eksempel se J. L. Bittie et al.. Amer. J. Vet. Res., 21, 547 (1960) og 22, 374 (1961); F. Biirki,
Arch. F. die Gesam. Vir., 15, 690 (1965); R. A. Crandall, Proc.
Soc. Exptl. Biol. & Med. 126, 240 (1967); Kahn & Gillespie,
Cornell Vet., £0, 669 (1970); Holzinger & Kahn, Amer. J. Vet. Res., 31, 1623 (1970); og E. Takahashi et al., Jap. J. Vet. Sci., 33, 81 (1971).
En udmærket up-to-date oversigt gives af Gillespie and Scott i bogen "Advances in Veterinary Science and Comparative Medicine", Volume 17, udgivet af C. A. Brandly and C.E. Cornelius, sider 176-188, Academic Press, Inc., New York, 1973. Tidligere forsøg på immunisering med felin-calicivirus betegnes uanvendelige i praksis af Gillespie & Scott, (side 189). Indtil nu har der ikke været nogen effektiv vaccine til rådighed til beskyttelse af katte mod felin-calic ivirus.
3 141339 I overensstemmelse med nærværende opfindelse har det vist sig, at felin-calicivirus (FCV) kan propageres i feline vævskulturer, fortrinsvis nyre og tunge, og at virulensen af viruset kan modificeres og reduceres således, at der ikke iagttages symptomer på sygdommen ved parenteral·inokulering.
Den foreliggende opfindelse frembringer i overensstemmelse hermed en modificeret eller svækket stamme af levende felin-calicivirus, som immuniserer kattene overfor virulent FCV sygdom, når den inokuleres parenteralt, fortrinsvis intramuskulært i katte. Ligeledes frembringes en vaccine, som er svækket i en sådan udstrækning, at den vil stimulere en anti-stofdannelse som effektivt immuniserer kattene i længere perioder.
Vaccinen er sikker derved, at den ikke vil fremkalde sygdom hos katte, som modtager den ad den parenterale vej, lige så lidt som det modificerede felin-calicivirus vil overføres fra den vaccinerede kat til andre katte i kontakt med den, hvorved muligheden for forøgelse af virusets virulens ved animal overførsel elimineres. Dette frembringer et signifikant fremskridt i bekæmpelsen af sygdom forårsaget af felin-calicivirus.
Levende, virulent felin-calicivirus kan fås fra katte inficeret med viruset efter isolerings- og identifikationsmetoder beskrevet i litteraturen [f.eks. se J.L. Bittie et al.. Amer. J. Vet. Res., 21, 547 (I960)]. De foretrukne serotyper af felin-calicivirus til brug ved denne opfindelse er de, som er serologisk beslægtede som bestemt ved konventionelle teknikker, f.eks. kryds-serumneutra-lisationstests. På side 183 (tabel I) i Gillespie and Scott (ibid), vises en liste over adskillige feline calicivirus-serotyper. Blandt de mest foretrukne til denne opfindelses formål er de to serotyper betegnet som "F-9" og "F-S". F-9-stammen er deponeret i American Type Culture Collection (ATCC) /VR-782.
Virus-isoleringerne kan i almindelighed foretages ved tørring af de nasale og konjuntivale membraner på inficerede katte med fugtige sterile bomuldstamponer, som dernæst anbringes i et passende felint vævskulturmedium, efterfulgt af standard-serieoverførsler
Kl 333 4 til opdyrkning og isolering af viruset. Et særligt egnet dyrkningsmedium er et afledt af barkvævet i nyrer fra 8 til 12 uger gamle killinger, som trypsiniseres ved en fremgangsmåde lig den beskrevet af J. Youngner [Proc. Soc. Exptl. Biol. & Med., 8£>, 202, (1954)] for abenyreceller.
Fra beskrivelsen til USA-patent nr. 3.520.972 kendes en fremgangsmåde til svækkelse af feline vira ved propagering af viruset ved serieoverførsler gennem feline vævskulturer. Den for felin-picorna-virus, den tidligere anvendte betegnelse for felin-calici-virus, benyttede inkubationstemperatur er 37°C.
Det har nu overraskende vist sig, at svækkelsen og modifikationen af det virulente feline calicivirus kan gennemføres nemt ved relativt få, ialt mindst ca. 10, fortrinsvis mindst 13 og sædvanligvis ca. 13 til ca. 35 serieoverførsler, omfattende rensning ved standard slutfortyndingsteknikker, til felint væv, idet der anvendes lavere inkubationstemperaturer på 30l2°C, fortrinsvis 29-31°C. Rensningen af viruspræparaterne kan gennemføres ved konventionelle reagensglas- eller plaguemetoder under eller efter gennemførelsen af serieoverførslerne.
Felin-calicivirus kan propageres i felint vævskultursystemer som f.eks. lunge-, testikel-, nyre-, thymus-, tunge- og embryo-fostervæv og også i etablerede cellesystemer såsom f.eks. Crandall's kattenyrecelle-system (CrFK), kattetungecellesysterner, f. eks. ved det tredie overførselsniveau (Fc3Tg) og felint neuro-fibrosarcomacelle-system (FNFS). Feline tungecellesystemer er særligt foretrukne.
Overførselstids-intervallerne skal være sådan, at de i tilstrækkelig grad tillader gendannelse af virusmængden mellem overførslerne, nærmere betegnet fra 1 til 6 dage. Det optimale overførselstids-interval kan let bestemmes ved standardteknikker, f. eks. ved cytopatiske observationer såsom ved at lade viruset udvikle sig under en bestemt overførelse indtil det punkt, hvor en tydelig cytopatisk virkning (CPE) kan observeres, når inkubationen fortsættes.
Opnåelsen af vellykkede vacciner ved få overførsler og lav temperatur i henhold til den foreliggende fremgangsmåde er overraskende på baggrund af det faktum, at serieoverførsler til felint væv ved normale inkubationstemperaturer, ca. 35-37°C, ikke ændrer 141339 5 eller modificerer viruset eller dets patogene virkning ved omkring det samme antal overførsler.
I overensstemmelse med opfindelsen frembringes derfor en fremgangsmåde til fremstilling af en vaccine, som er i stand til, når den injiceres i katte, at immunisere dem over for felin-calicivirus, ved hvilken et inokulum af levende infektiøs felin-calicivirus svækkes i et næringsvæske-felint vævskulturmedium, som er ikke-toksisk over for viruset, hvilken fremgangsmåde er ejendommelig ved, at viruset propageres ved inkubering af det inoku-lerede flydende medium ved en temperatur på 30l2°C i et tidsrum på 1-6 dage, hvorefter et inokulum af viruset adskilles derfra, og viruset serieoverføres gennem andre sådanne feline vævskulturer, ialt mindst ca. 10 overførsler, samt at den opnåede svækkede feline calicivirus om ønsket propageres ved et tilstrækkeligt antal serieoverførsler gennem feline vævskulturer i en næringsvæske ved en inkubationstemperatur på 32-37°C, indtil det flydende medium 3 8 indeholder fra ca. 10 til ca. 10 vævskultur-infektionsdoser af svækket virus pr. ml, og den flydende vaccine udvindes.
Viruspræparaterne kan fortyndes til indstilling af deres styrke, og de kan tilsættes stabilisatorer såsom dextrose og lactose eller andre ikke-toksiske substanser. Viruspræparaterne kan også tørres f.eks. ved frysetørring til lagringsformål eller til efterfølgende formulering til flydende vacciner. Stabilisatorer, som er nyttige ved frysetørring af viruser, beskrives i W.A. Rightsel et al., Cryobiology, 1967, 3:423 og D. Freiff et al., Advances in Freeze Drying, L. Rey, Ed., side 103-122, Hermann,
Paris, 1966. Ydermere kan vaccinerne anvendes i en blanding med andre immunogene vacciner til administrering til katte.
Fremgangsmåden ifølge opfindelsen beskrives mere detaljeret i forbindelse med de efterfølgende specifikke eksperimenter.
Eksempel 1
En prøve af virulent felin-calicivirus (F-9 serotype, ATCC 70VR-782), dyrket og isoleret i overensstemmelse med fremgangsmåden beskrevet af J.L. Bittie et al., Amer. J. Vet. Res., 21, 547, (1960), sættes til monolag af et felint diploid tungecellesystem i standarddyrkningsglas eller leighton glas (16 x 125 mm) forberedt som følger. Det anvendte tungecellesystem er Fc3Tg-systemet, hvortil der henvises i K.M. Lee et al., Cornell Veterinarian 59, 1 Al 339 6 539 (1969). Hvert cellesystemrør indeholdende 1-2 ml vækstmedium bestående af Eaglés Minimum Essential Medium (MEM) suppleret med 10% kalvefosterserum, 0,1% lactalbuminhydrolysat, 30 enheder penicillin, 30 ug streptomycin og 2,5 ug amphotericin, podes med 1 ml feline tungeceller (200.000 celler pr. ml). Om nødvendigt indstilles pH med natriumbicarbonat til opretholdelse af en pH-værdi på ca. 7,2 - 7,8. Man lader cellerne gro ved ca. 35-2°C, indtil et monolag af celler opnås. Dernæst hældes væskerne fra, og 1- 2 ml af et fortsættelsesmedium (det samme som ovenfor, bortset fra, at der anvendes 1-2% kalvefosterserum) tilsættes. Ca. 4 til 6 sådanne rør anvendes pr. virusoverførelse.
Til hvert vævskulturglas tilsættes F-9 felin-calicivirus inokulet. Det således podede glas opbevares ved 29 - 31°C, indtil en cytopatisk effekt iagttages ved mikroskopisk undersøgelse (ca.
2- 7 dage). Når CPE når ca. 75 - 90% af monolaget, udvindes glassets indhold, og 0,2 ml inokuler underkastes identiske serieoverførsler i yderligere 6 overførsler (7 overførsler ialt). Efter den 7. overførsel foretages en standard slutfortyndingsrensning ved anvendelse af Eagles MEM suppleret med de før omtalte antibiotika som fortynder, idet inkubationen opretholdes ved 29-31°C. Efter 7 dage udvindes inokulet fra det sidste glas, som er positivt med 75-90% CPE, og hele fremgangsmåden gentages to gange til ialt 10 overførsler. En 11. overførsel gennemføres med det formål at forøge voluminet ved inokulering af en 0,5 ml prøve fra den 10. overførsel til flasker indeholdende monolag af feline diploid-tungecellekulturer opnået ved propagering af tungecellerne som tidligere beskrevet. Ved afslutningen af den 11. overførsel udvindes, identificeres og titreres massen ved kendte metoder.
Den således fremstillede masse udgør en basisvaccine, som kan fortyndes i overensstemmelse med titeren, eller som kan tilsættes stabilisatorer eller andre ikke-toksiske substanser. Til brug som vaccine kan den tørres, eller den kan tilberedes på flydende form.
Til propageringen og svækkelsen af viruset kan anvendes et hvilket som helst ikke-toksisk næringsvæske-felint vævskulturmedium. Det er underforstået, at ud over det supplerede Eagles MEM-medium beskrevet ovenfor kan også andre ikke-toksiske næringsvæske-vævskulturmedier anvendes.
14 133S
7
Eksempel 2 1 ml af en vaccine fremstillet ifølge Eksempel 1 og titreret til en virustiter ved 35±2°C på 104,1 TCID50/ml (bestemt ved CPE) administreres intramuskulært til tre modtagelige katte. To andre katte holdes uvaccinerede som kontrol. Alle 5 katte er tidligere bestemt som sero-negative overfor felin-calicivirus. Tegn på alvorlig FCV-sygdom iagttages sædvanligvis som startende med pyrexia på andendagen, og andre kliniske tegn ses fra ca. fjerdedagen efter normal eller påtvungen kontakt med virulent felin-calicivirus. Antistof-titeren af alle 5 katte forud for vaccinationen er mindre end 1:3 og en måned senere, umiddelbart forud for den påtvungne smitte, er antistof-titeren af de 3 podede katte 1 gennemsnit 1:15 i sammenligning med mindre end 1:3 for de 2 uvaccinerede kontrolkatte. Alle 5 katte udsættes intranasalt for virulent felin-calicivirus (F-9 serotype) tilført ved hjælp af en forstøver (hver kat i en lukket atmosfære? total dosis 0,025 ml indeholdende ca. ΙΟ** TCID5Q). Kattene iagttages i 3 uger for tilsynekomst af klinisk sygdom. Alle de 3 vaccinerede katte forbliver normale uden klinisk sygdom eller symptomer i modsætning til de 2 uvaccinerede kontrolkatte, som bliver meget syge af FCV-sygdom og udviser typiske symptomer såsom febril reaktion, løbende øjne og næse, appetitløshed og almindeligt ildebefindende.
Eksempel 3.
Levende virulent felin-calicivirus, dyrket og isoleret ifølge fremgangsmåden beskrevet af J. L. Bittie et al., ibid., og betegnet af de omtalte opfindere som et "F-9"-isolat, overførtes i rækkefølge 7 på hinanden følgende gange til primære felin-nyrevævskulturer med 1-6 dages intervaller ved ca. 35° C efterfulgt af 3 successive 141339 8 slutfortyndinger i lignende vævskulturer, ialt 10 overførsler (virulent virus). Viruset tilpassedes så til et felint tungecelle-system (Fc3Tg) ved 37° C (11. overførsel). Tre yderligere overførsler til CrFK-celler ved 37° C foretoges. Viruset som havde været overført 14 gange, testedes på katte og fandtes at bevirke typiske kliniske tegn på FCV-infektion (virus stadig virulent).
Virus som havde været overført 11 gange (betegnet P-0) overførtes også til glas indeholdende et felint tungecellesystem (Fc3Tg-celler) ved 29-31° C, ialt 8 successive overførsler (P-8) med 1-6 dages intervaller efterfulgt af 3 successive slutfortyn-dinger (P-ll) til lignende tungekulturer ved denne temperatur.
To overførsler mere (P-13) foretoges til frembringelse af et forråd efterfulgt af endnu to overførsler (P-15). Materialet herfra anvendtes som moderpodestof. Yderligere 5 overførsler (P-20) gennemførtes til forøgelse af mængden. P-13, P-15 og P-20 virusoverførslerne identificeredes ved serumneutralisation tests med specifik F-9 gede-antiserum. Vaccination af katte med nævnte P-13, P-15 og P-20 virusoverførslerne producerer betydelige mængder af beskyttende antistoffer, som gør dyrene i stand til at modstå virulent felin-calicivirus.
Eksempel .4 .
1 ml af vaccinen fremstillet i Eksempel 3 (p-20 overførslen) o 5 5 og med en virustiter ved 35 C på ca. 10 ' TCID50/ml (bestemt ved CPE) administreredes intramuskulært til 4 katte, som tidligere var bestemt til at være seropositive overfor FCV (serotype ukendt). Gennemsnitstiteren før vaccinationen bestemtes til at være ca. 1:64, og gennemsnitstiteren en måned efter vaccinationen fandtes at være ca. 1:292. To af kattene udsattes for virulent felin-calicivirus [FPV-255 serotype; se Kahn & Gillespie, Cornell Vet., ¢[0, 669 (1970) og Amer. J. Vet. Res., 32, 521 (1971); og Holzinger & Kahn, Amer. J. Vet. Res., 31, 1623 (1970); prøve modtaget fra Kahn] efter 3 1/2 måned og de andre to katte efter 5 måneder. Smitten tilførtes med en forstøver som beskrevet i Eksempel 2.13 uger efter smitten iagttoges kattene dagligt, uden at nogen kliniske tegn på sygdom 9 141339 observeredes. Uvaccinerede kontrolkatte viste derimod typiske alvorlige tegn på FCV-sygdom. Dette eksempel viser, at en simpel dosis af vaccine givet til allerede eksponerede katte forøgedé antistofdannelsen omkring 4-5 gange, og at dyrene var beskyttede, når de smittedes med virulent felin-calicivirus.
Eksempel 5.
500 ml af virusmateriale opnået ved P-20 overførselsniveauet beskrevet under Eksempel 3 sattes til 500 ml N-Z afflinlaetose- glutaminat stabilisator og fordeltes i standardvaccine flasker, som tørredes ved konventionelle frysetørrings procedurer. Til inokulerings- formål genfortyndedes flaskerne med 1 ml pyrogenfrit sterilt de- 5 3 stilleret vand (gennemsnitstiter ca. 10 * TCID,-0/ml). Forud for vaccinationen fandtes alle forsøgskatte at have en antistoftiter på mindre end 1:2. 1 ml af den således fremstillede vaccine administreredes intramuskulært til 10 modtagelige katte, mens 5 andre katte bevaredes uvaccinerede som kontrol. En måned senere indgaves de 10 vaccinerede katte intramuskulært en identisk booster-dosis. Antistof-bestemmelser før og 2 uger efter boostei^inokuleringen viste som nedenfor anført en ca. 7-fold forøgelse i antistof-dannelsen.
Før 2 uger booster efter booster
Kat nr. 1 1:3 1:93 - - 2 1:23 1:370 - - 3 1:30 1:837 - - 4 1:8 1:40 - - 5 1:40 1:70 - - 6 1:70 1:120 - - 7 1:53 1:70 - - 8 1:4 1:14 - - 9 1:53 1:471 - - 10 1:53 1:160 1:34 .1:225 (gennemsnit) (gennemsnit).
10 1A13 3 9
Ud over fremstillingen af de direkte vacciner fra levende virulent felin-calicivirus omfatter opfindelsen også fremstillingen af en FCV-vaccine under anvendelse af virus, fortrinsvis F-9 serotypen, som er blevet modificeret ved den ovenfor beskrevne fremgangsmåde. Til fremstilling af en vaccine i kommerciel målestok ville det ikke være praktisk gennemførligt at anvende levende, virulent felin-calicivirus opnået fra inficerede katte som udgangsmateriale for hver ny vaccineportion og dernæst gå igennem de nødvendige serieoverførsler for at opnå den modificerede virus til brug som en vaccine. Opfindelsen omfatter derfor som en eventualitet et fremgangsmådetrin, ved hvilket der som udgangsmateriale anvendes et virus, som allerede er blevet modificeret ved serie-overførsler til feline vævskulturer som tidligere beskrevet, dvs. et "pode"-virus fra en moderportion af svækket virus. I overensstemmelse hermed er der frembragt en fremgangsmåde til fremstilling af felin-calicivirus vaccine, som omfatter propagering af et svækket felin-calicivirus ved et tilstrækkeligt antal serieoverførsler ved en inkubationstemperatur på 32-37°C til et passende næringsvæske-felinvævs-dyrkningsmedium, som er ikke-toksisk over 3 for det omtalte virus, indtil væskemediet indeholder fra ca. 10
Q
til ca. 10 vævskultur infektionsdoser af det omtalte svækkede virus pr. ml, og udvinding af den flydende vaccine.
Ved anvendelse af den heri beskrevne fremgangsmåde kan et modificeret felin-calicivirus hurtigt dyrkes i store mængder og i høje koncentrationer. Ved anvendelse af et med felint vævskultur propageret, modificeret felin-calicivirus, f.eks. F-9 serotypen, i koncentrationer på i det mindste ca. 10 , og sædvanligvis fra ca.
3 8 10 til ca. 10 , vævskultur infektionsdoser af virus pr. 1,0 ml færdig vaccine og ved parenteral administrering af 1 ml af en sådan vaccine til katte, stimuleres hos sådanne vaccinerede katte produktionen af beskyttende FCV-antistoffer, som kan sammenlignes med dem, der er produceret ved naturlige infektioner, uden at de sædvanlige patologiske symptomer på sygdom, som skyldes felin-calicivirus, frembringes. De vaccinerede katte er også i stand til at modstå smitte med sygdomsfrembringende virus.
En bemærkelsesværdig forøgelse i antistofreaktionen er blevet iagttaget ved parenteral administrering af en anden, og selv en tredie eller flere "booster"-doser af de omhandlede vacciner. Det har f.eks. vist sig, at nyttige resultater opnås, når en anden intramuskulær injektion gives ca. 2 uger efter den indledende 1A1339 11 vaccination. For opnåelse af de bedste resultater anbefales det, at den anden injektion ikke gives senere end ca. 3-4 uger efter den første injektion.
Det skal endvidere bemærkes, at forøgelse af antistofdannelsen ud over ved den førnævnte parenterale administrering af booster-doser af de omhandlede vacciner kan opnås ved at katte, som tidligere er blevet immuniseret ved parenteral, fortrinsvis intra-muskulær administrering af de omhandlede vacciner, eksponeres for felin-calicivirus, f.eks. af F-9 serotypen ad intranasal vej, hvilket virus enten er blevet svækket i overensstemmelse med opfindelsen eller er i dets ikke-svækkede virulente form.
En sådan intranasal indgivelse, som efterfølger parenteral vaccination, frembringer betydeligt høje niveauer af antistoffer, som vedvarer i lange perioder. F.eks. er beskyttelsen, som frembringes meget mere pålidelig, når således behandlede dyr smittes med virulent virus, hvilket viser sig ved manglen på kliniske sygdomssymptomer efter smitte med høje vævskultur-infektionsdoser af virulent ikke-modificeret felin-calicivirus. For opnåelse af de bedste resultater anbefales det, at tilstrækkelig tid forløber, til at katten bliver sensibiliseret efter den indledende parenterale vaccination, for at i det mindste en minimal grad af immunitet kan udvikles, hvilket viser sig ved forøget antistofdannelse, før dyret underkastes den efterfølgende intranasale kontakt med virulent FCV. Fortrinsvis foretages den intranasale indgivelse inden for 2-5 uger efter den indledende parenterale vaccination.
Intranasal indgivelse foretages let ved inhalering af det feline calicivirus, enten ved hjælp af konventionelle aerosolforbindelser sprøjtet i nasalgangene eller ved små dråber anbragt på de ydre næsebor eller i nasalgangene. En passende koncentration af felin-calicivirus, for eksempel F-9 serotypen, enten modificeret som beskrevet tidligere, eller i dets levende virulente usvækkede form, til intranasalt indgivelsesformål efterfølgende indledende 3 vaccination ved parenteral administrering, er fra ca. 10 til ca.
8 10 vævskultur infektionsdoser pr. ml.
Den indledende vaccination ad den parenterale vej efterfulgt af kontakt med FCV, enten modificeret eller umodificeret, ad den respiratoriske vej antages at frembyde en ny metode til immunisering over for felin-calicivirus. En sådan metode forsyner dyret med en humoral antistofreaktion og en lokal immunitet af åndedrætssystemet, som er meget mere beskyttende over for sygdom, som 141339 12 skyldes FCV. Der frembringes således et middel til effektiv, længe varende beskyttelse overfor de fleste FCV-serotyper.
Eksempel 6.
1 ml af vaccinen fremstillet i Eksempel 3 (P-20 overførsels- o 5 5 niveau) og med en virustiter ved 35 C på ca. 10 ’ TCID^/ml administreredes intramuskulært til en modtagelig kat (kat A), som tidligere var bestemt til at være seronegativ overfor FCV. En anden kat holdtes som uvaccineret kontrol. En måned efter den indledende inokuleringsdag, indgaves den vaccinerede kat intramuskulært endnu en 1 ml injektion. Omkring 3 1/2 måned efter den indledende inokuleringsdag udsattes den vaccinerede kat og den uvaccinerede kontrolkat for intranasal indgivelse af >10^ TCID^q af virulent felin-calicivirus (FPV-255) med en forstøver på lignende måde som beskrevet i Eksempel 2. De efterfølgende resultater opnåedes, som viser en signifikant højere antistofreaktion og mangel på kliniske sygdomssymptomer, når intranasal administrering af viruset efterfølger parenteral vaccination.
Antistof reaktion
Titer på tids- Titer én måned Kliniske symp-punktet af intra- efter intranasal tomer efter intra-nasal indgivelse indgivelse_ nasal indgivelse
Kat A 1:18 1:180 ingen
Kontrol <1:2 1:120 alvorlige.
Det foregående Eksempel 6 viser, hvordan vaccinen fremstillet ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen er i stand til at yde katte effektiv længe varende immunisering over for FCV ved en fremgangsmåde, som omfatter, at man til en kat først parenteralt administre-rer en vaccine på i det mindste ca. 10 vævskultur infektionsdoser af et svækket felin-calicivirus, fortrinsvis F-9 serotypen, hvilket virus er svækket ved i det mindste ti 1-6 dages serieoverførsler gennem feline vævskulturer i en næringsvæske ved en inkubations- temperatur på 30-2°C, hvilken administrering efterfølges af en 3 8 yderligere administrering af fra ca. 10 til ca. 10 vævskultur infektionsdoser af felin-calicivirus i dets levende virulente usvækkede form ad den respiratoriske vej. Lignende resultater kan også nås ved respiratorisk administrering af fra ca. 10 til ca.
DK516975AA 1974-11-21 1975-11-17 Fremgangsmåde til fremstilling af felin-calicivirus vaccine. DK141339B (da)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US52568974 1974-11-21
US05/525,689 US3944469A (en) 1974-11-21 1974-11-21 Feline calicivirus vaccine and production thereof

Publications (3)

Publication Number Publication Date
DK516975A DK516975A (da) 1976-05-22
DK141339B true DK141339B (da) 1980-02-25
DK141339C DK141339C (da) 1980-08-25

Family

ID=24094242

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DK516975AA DK141339B (da) 1974-11-21 1975-11-17 Fremgangsmåde til fremstilling af felin-calicivirus vaccine.

Country Status (17)

Country Link
US (1) US3944469A (da)
JP (1) JPS5173118A (da)
AT (1) AT340584B (da)
AU (1) AU508944B2 (da)
BE (1) BE835784A (da)
CA (1) CA1055844A (da)
CH (1) CH622702A5 (da)
DE (1) DE2552137A1 (da)
DK (1) DK141339B (da)
ES (1) ES442892A1 (da)
FI (1) FI53593C (da)
FR (1) FR2291766A1 (da)
GB (1) GB1522006A (da)
NL (1) NL7513644A (da)
NO (1) NO753676L (da)
SE (1) SE7512828L (da)
ZA (1) ZA757294B (da)

Families Citing this family (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4287178A (en) * 1974-03-25 1981-09-01 Pitman-Moore, Inc. Feline rhinotracheitis vaccine and production and use thereof
ZA796476B (en) * 1978-11-30 1981-07-29 Wellcome Found Feline infectious peritonitis vaccine
US4303644A (en) * 1979-10-16 1981-12-01 Norden Laboratories, Inc. Feline infectious peritonitis virus vaccines
US4303645A (en) * 1980-04-18 1981-12-01 Cornell Research Foundation, Inc. Modified living canine parvovirus vaccine
US4537769A (en) * 1982-04-06 1985-08-27 American Cyanamid Company Stabilization of influenza virus vaccine
US4522810A (en) * 1982-12-09 1985-06-11 The Regents Of The University Of California Feline calicivirus vaccine
US5374424A (en) * 1986-10-03 1994-12-20 Miles Inc. Multivalent felv-infected feline vaccine
CA2090515C (en) * 1992-02-28 2002-10-29 Kazuhiko Kimachi Anti-feline calicivirus recombinant antibody and gene fragment encoding the same
US6355246B1 (en) 1999-06-10 2002-03-12 Board Of Trustees Of Michigan State University Feline calicivirus isolated from cat urine and vaccines thereof
US7309495B2 (en) * 2003-03-14 2007-12-18 The Regents Of The University Of California Hemorrhagic feline calicivirus
EP1606391B1 (en) * 2003-03-14 2011-01-19 Regents of the University of California Virulent systemic feline calicivirus
US7306807B2 (en) 2004-09-13 2007-12-11 Wyeth Hemorrhagic feline calicivirus, calicivirus vaccine and method for preventing calicivirus infection or disease
ES2357679T3 (es) 2005-07-28 2011-04-28 Pfizer Products Inc. VACUNA CONTRA CALICIVIRUS FELINO (FCV) QUE COMPRENDE UNA PROTEINA DE CAPSIDA DE UN FCV O UNA PROTEINA DE LA CAPSIDA DE UN FCV AISLADA QUE COMPRENDE UNA SECUENCIA PROTEICA SEC ID Nº: 13 O SECUENCIAS PROTEICAS CON, AL MENOS, 95% DE IDENTIDAD CON ELLA.
WO2008150404A1 (en) * 2007-05-30 2008-12-11 Wyeth Raccoon poxvirus expressing genes of feline antigens
US10188725B2 (en) 2015-12-14 2019-01-29 Elanco Us Inc. Hybrid core feline vaccines
CN114874997B (zh) * 2022-05-26 2023-05-23 中国农业科学院哈尔滨兽医研究所(中国动物卫生与流行病学中心哈尔滨分中心) 猫杯状病毒

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB1177635A (en) * 1966-02-18 1970-01-14 Wellcome Found Cell Stains.

Also Published As

Publication number Publication date
AU8675575A (en) 1977-05-26
ES442892A1 (es) 1977-08-16
US3944469A (en) 1976-03-16
AT340584B (de) 1977-12-27
FR2291766B1 (da) 1978-07-28
FI53593B (da) 1978-02-28
DK141339C (da) 1980-08-25
FI753274A (da) 1976-05-22
FR2291766A1 (fr) 1976-06-18
ATA884975A (de) 1977-04-15
ZA757294B (en) 1977-06-29
BE835784A (fr) 1976-05-20
DE2552137A1 (de) 1976-05-26
SE7512828L (sv) 1976-05-24
NL7513644A (nl) 1976-05-25
FI53593C (fi) 1978-06-12
GB1522006A (en) 1978-08-23
JPS5173118A (da) 1976-06-24
NO753676L (da) 1976-05-24
CA1055844A (en) 1979-06-05
CH622702A5 (da) 1981-04-30
AU508944B2 (en) 1980-04-17
DK516975A (da) 1976-05-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP3715675B2 (ja) ブタ生殖呼吸症候群ウイルス(prrsv)のヨーロッパワクチン株
McClurkin et al. Studies on transmissible gastroenteritis of swine: II. Selected characteristics of a cytopathogenic virus common to five isolates from transmissible gastroenteritis
KR100374295B1 (ko) 돼지생식및호흡증후군바이러스의생육방법과백신에서그의용도
US5690940A (en) Low pathogencity PRRS live virus vaccines and methods of preparation thereof
KR100484041B1 (ko) 돼지생식 및 호흡증후군 바이러스의 유럽백신 균주
US6001370A (en) Attenuated strain of the virus causing the porcine reproductive respiratory syndrome (PRRS), and vaccines
DK141339B (da) Fremgangsmåde til fremstilling af felin-calicivirus vaccine.
US3937812A (en) Feline calicivirus vaccine and production thereof
JPS5874618A (ja) 家禽に対する伝染性気管支炎ワクチン、その製法、伝染性気管支炎の予防法及び伝染性気管支炎ウイルス株
DK162421B (da) Hundeparvovirus-vaccine, fremgangsmaade til fremstilling heraf og virusstamme til brug i vaccinen
US3520972A (en) Feline virus vaccines obtained by propagation and serial passage attenuation of virulent feline viruses in diploid feline embryo tissue cell serial passage subculture strains
IE51389B1 (en) Feline infectious peritonitis virus,its preparation and vaccines containing it
KR100531491B1 (ko) 백신으로서 소 호흡 코로나바이러스
KR0127116B1 (ko) 전염성 점액낭 질병의 예방을 위한 왁찐
US3709782A (en) Heteroploid cell lines
Hess et al. In vitro differentiation and pH sensitivity of field and cell culture-attentuated strains of transmissible gastroenteritis virus
US4287178A (en) Feline rhinotracheitis vaccine and production and use thereof
EP0627936A1 (en) Feline infectious peritonitis vaccine and method of preparation
EP0261168A1 (en) Feline infectious peritonitis vaccine
US4714678A (en) Temperature sensitive strain of bovine viral diarrhoea virus
US3544680A (en) Intranasal immunization against rubella
US5043157A (en) Feline infectious peritonitis vaccine and method of preparation
US4618493A (en) Temperature sensitive strains of bovine viral diarrhoea virus, preparation thereof and vaccines containing them
Schwedler et al. Fish viruses: serologic comparison of the golden shiner and infectious pancreatic necrosis viruses
US5670156A (en) Feline infectious peritonitis vaccine and method of preparation