DE4444996A1 - Nucleosid-Derivate mit photolabilen Schutzgruppen - Google Patents
Nucleosid-Derivate mit photolabilen SchutzgruppenInfo
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Description
Gegenstand der vorliegenden Erfindung sind Nucleosid-
Derivate mit photolabilen Schutzgruppen und Verfahren zu
deren Herstellung.
Photolabile Schutzgruppen für die Hydroxy- und
Phosphatfunktionen in Nucleosiden bzw. Nucleotiden sind
von besonderem Interesse, da sie bspw. für
lichtgesteuerte Parallel-Synthesen von Oligonucleotiden
auf einem festen Träger geeignet sind (vgl. S.P.A. Fodor
et al. Science 1991, 251 S. 767 ff). Mit ihrer Hilfe
können sogenannte DNA-Chips (d. h. Trägerplättchen, auf
dessen Oberfläche viele verschiedene Oligonucleotide
angeordnet sind) hergestellt werden, die wiederum in der
Molekularbiologie für eine schnelle DNA-Sequenz-Analyse
benötigt werden.
Entsprechend dem Stand der Technik wurden bisher als
photolabile Schutzgruppen in der Nucleosid- bzw.
Nucleotidchemie vor allem die o-Nitrobenzyl-Gruppe und
ihre Derivate eingesetzt (vgl. V.N.R. Pillai Org.
Photochem. 1987, 9 S. 225 ff bzw. J.W. Walker et al.
J. Am. Chem. Soc. 1988, 110, S. 7170 ff). Als besonders
nachteilig bei diesen Schutzgruppen hat sich die langsame
und zum Teil nur unvollständige Entschützung der
entsprechenden Nucleosid- bzw. Nucleotid-Derivate
erwiesen. Außerdem entstehen bei der Abspaltung der
o-Nitrobenzyl-Verbindungen z. T. unerwünschte
Nebenprodukte in Form von toxischen Nitrosophenyl
verbindungen.
Als weitere photolabile Schutzgruppe für Nucleoside wurde
entsprechend dem Artikel von W. Pfleiderer et al. in
"Biophosphates and Their Analogues - Synthesis,
Structure, Metabolism and Activity" Elsevier Science
Publishers B.V. (Amsterdam) 1987, S. 133 ff die
2-(o-Nitrophenyl)ethylgruppe empfohlen, die jedoch
ausschließlich als Schutzgruppe im Basenteil,
insbesondere in O⁶-Stellung des Guanosins, eingeführt
wird. In derselben Publikation werden auch die p-Nitro
phenylethoxycarbonyl(NPEOC)- und die 2,4-Dinitrophenyl
ethoxycarbonyl(DNPEOC)-Gruppen sowohl als Schutzgruppen
für die Aminofunktion als auch für die Hydroxylfunktionen
im Zuckerteil beschrieben, doch erfolgt die Abspaltung
dieser Gruppen ausschließlich durch basenkatalysierte
β-Eliminierung.
Der vorliegenden Erfindung lag daher die Aufgabe zugrunde,
Nucleosid-Derivate mit photolabilen Schutzgruppen für die
5′-OH-Funktion im Zuckerteil zu entwickeln, welche die
genannten Nachteile entsprechend dem Stand der Technik
nicht aufweisen, sondern sich vergleichsweise schnell,
quantitativ und ohne Bildung unerwünschter Nebenprodukte
entschützen lassen.
Diese Aufgabe wurde erfindungsgemäß durch Nucleosid-
Derivate der allgemeinen Formel I entsprechend Anspruch 1
gelöst. Es hat sich nämlich überraschenderweise gezeigt,
daß sich die erfindungsgemäßen Schutzgruppen wesentlich
schneller und vollständiger abspalten lassen als z. B.
die o-Nitrobenzylgruppen. Außerdem konnten bei der
Entschützung bisher keine unerwünschten Nebenprodukte
festgestellt werden, was ebenfalls nicht vorhersehbar
war.
Die erfindungsgemäßen Nucleosid-Derivate weisen folgende
allgemeine Formel (I) auf:
wobei die Reste R¹, R² und R³ am Phenylring folgende
Bedeutung haben können:
R¹ = H, NO₂, CN, OCH₃
R² = H, OCH₃
R³ = H, F, Cl, Br, NO₂.
Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform bedeutet R³ = H, falls R² = OCH₃ ist.
R¹ = H, NO₂, CN, OCH₃
R² = H, OCH₃
R³ = H, F, Cl, Br, NO₂.
Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform bedeutet R³ = H, falls R² = OCH₃ ist.
Der Rest R⁴, der am C₂-Atom der o-Nitrophenylethyl-
Gruppierung sitzt, kann entweder H, Cl, OCH₃ oder ein
Alkylrest mit 1 bis 4 C-Atomen sein. Der Alkylrest kann
hierbei linear oder verzweigt sowie gesättigt oder
ungesättigt sein. Vorzugsweise stellt R⁴ einen Methylrest
dar. Im Falle von R⁴ ≠ H sind die Substituenten R¹, R²
und R³ am Phenylring vorzugsweise Wasserstoffreste.
Außerdem stellt im Falle von R² = OCH₃ R³ insbesondere
einen Wasserstoffrest dar.
Der Nucleosidteil der erfindungsgemäßen Verbindungen
besteht aus den üblichen D-Ribofuranose- bzw. 2′-Desoxy
ribose-Einheiten sowie den Pyrimidin- (B = Cytosin,
Thymin, Uracil) bzw. Purinbasen (B = Adenin, Guanin).
Die OH-Gruppe(n) im Ribofuranosid- bzw. 2′-Desoxyribosid-
Teil können je nach Bedarf frei oder geschützt sein. Für
die 3′-Stellung haben sich hierbei die bekannten
Phosphitamid-Gruppen bewährt, wie z. B.
wobei R⁷ = lineare oder verzweigte Alkylreste mit 1 bis 4
C-Atomen bedeuten und vorzugsweise Ethyl- oder
Diisopropylreste sind.
In der 2′-Stellung des Ribofuranosid-Teiles kann die
freie OH-Gruppe ggf. ebenfalls geschützt sein, wobei auf
die üblichen O-Alkyl-, O-Alkenyl-, O-Acetal- oder
O-Silylether-Schutzgruppen zurückgegriffen werden kann.
Bevorzugte Beispiele für O-Alkyl-Schutzgruppen sind
O-Methyl- oder O-Ethylreste, für O-Alkenyl-Schutzgruppen
O-Vinylreste, für O-Acetal-Schutzgruppen O-Tetrahydro
pyranyl- bzw. O-Methoxytetrahydropyranyl-Reste sowie für
O-Silylether-Schutzgruppen O-t-Butyldimethylsilyl-Reste.
Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform können die
Pyrimidin- bzw. Purinbasen mit primären Aminofunktionen
(also Adenin, Cytosin und Guanin) noch permanente
Schutzgruppen vorzugsweise auf Carbonylbasis aufweisen.
Bevorzugt sind hierbei vor allem Phenoxyacetyl- oder
Dimethylformamidino-Reste, die für alle drei genannten
Basen in Frage kommen. Daneben gibt es noch spezielle
Schutzgruppen, die nur bei bestimmten Basen eingeführt
werden. Dies sind bspw. im Falle von Adenin Benzoyl- oder
p-Nitrophenylethoxycarbonyl (p-NPEOC)-Reste. Für Guanin
können neben den p-NPEOC-Resten auch Isobutyroyl-
Schutzgruppen eingeführt werden. Schließlich eignen sich
für Cytosin neben den p-NPEOC-Resten auch noch Benzoyl-
Schutzgruppen.
Die Herstellung der erfindungsgemäßen Nucleosid-Derivate
ist relativ unproblematisch und erfolgt üblicherweise in
zwei Stufen. In der ersten Stufe a) wird ein Alkohol der
allgemeinen Formel (II)
in der R¹, R², R³, R⁴ die oben angegebene Bedeutung
besitzen, mit einem Phosgen-Derivat vorzugsweise in einem
unpolaren organischen Lösemittel bei Temperaturen
zwischen -20 und +25°C zur Umsetzung gebracht. Als
Phosgen-Derivat kann neben dem bevorzugten Phosgen auch
Diphosgen (Chlorameisensäuretrichlormethylester) oder
Triphosgen (Bis-trichlormethylcarbonat) verwendet werden.
Die Alkoholkomponente ist in den meisten Fällen bekannt
oder kann in analoger Weise nach bekannten Verfahren
hergestellt werden. Als unpolares organisches Lösemittel
wird in Stufe a) vorzugsweise Toluol oder THF verwendet.
Die Reaktionskomponenten können zwar in annähernd
stöchiometrischem Verhältnis eingesetzt werden, doch wird
das Phosgen-Derivat vorzugsweise in deutlichem Überschuß,
bspw. in zwei- bis fünffachem molaren Überschuß, bezogen
auf die Alkoholkomponente eingesetzt. Auch die
Konzentration der Alkoholkomponente kann in weiten
Grenzen variiert werden, doch hat es sich als besonders
vorteilhaft erwiesen, diese Konzentration auf 0,1 bis
10,0 mmol pro 10 ml Solvens einzustellen.
Bei dieser Reaktion (Reaktionsdauer ca. 1 bis 6 Std.)
entstehen in guter Reinheit und hoher Ausbeute (< 90%)
die entsprechenden Chlorkohlensäureester der allgemeinen
Formel (IV)
Die Aufarbeitung der entsprechenden Produkte ist
ebenfalls ziemlich unproblematisch, indem man das
überschüssige Phosgen sowie das Lösemittel vorzugsweise
im Vakuum abdestilliert. Der Chlorkohlensäureester (IV)
kann dann ohne weitere Aufarbeitung in Stufe b) mit den
Nucleosiden der allgemeinen Formel (III)
umgesetzt werden, wobei R⁵, R⁶ und B die oben angegebene
Bedeutung besitzen.
Die Umsetzung erfolgt vorzugsweise in einem
Lösemittelgemisch bestehend aus Dichlormethan und einem
polaren organischen Lösemittel ggf. in Gegenwart einer
Base bei Temperaturen zwischen -60 und +25°C. Als
polares organisches Lösemittel wird hierbei bevorzugt DMF
oder Pyridin eingesetzt, wobei im Falle von Pyridin keine
zusätzliche Base erforderlich ist. Wird jedoch mit
Dichlormethan/DMF-Lösemittelgemischen gearbeitet,
empfiehlt sich die Zugabe einer Base wie z. B. Pyridin,
Triethylamin oder Hünig-Base, um die bei der Reaktion
freigesetzten Protonen abzufangen. Das Mischungsverhältnis
Dichlormethan zu Pyridin bzw. DMF ist ebenfalls
unkritisch, doch werden vorzugsweise 1 bis 3 Vol.-teile
Dichlormethan pro Vol.-teil Pyridin bzw. DMF eingesetzt.
Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform wird das
entsprechende Nucleosid (III), welches in Pyridin oder
DMF/Base gelöst wurde, vorgelegt und eine Lösung des
Chlorkohlensäureesters in Dichlormethan bei der
jeweiligen Reaktionstemperatur zugetropft. Das
Molverhältnis von Nucleosid zu Chlorkohlensäureester kann
hierbei entsprechend der Stöchiometrie auf ca. 1 : 1
eingestellt werden. Vorzugsweise wird jedoch der
Chlorkohlensäureester im Überschuß eingesetzt, und zwar
in einer solchen Menge, daß das Molverhältnis Nucleosid
zu Chlorkohlensäureester 1 : 1 bis 1 : 2 beträgt.
Schließlich kann auch die Konzentration des Nucleosids im
Lösemittelgemisch in weiten Grenzen variiert werden, doch
wird es bevorzugt auf 0,1 bis 3,0 mmol pro 10 ml Solvens
eingestellt.
Nach erfolgter Umsetzung (Reaktionszeit ca. 1 bis 5 Std.)
können die erfindungsgemäßen Nucleosid-Derivate nach
bekannten Methoden isoliert bzw. gereinigt werden, wie
z. B. Verdünnen mit Dichlormethan, Auswaschen der
anorganischen Salze mit Wasser, Trocknen der organischen
Phase, Einengen der Lösung bzw. Kristallisation und
anschließende Kieselgel-Chromatographie. Auf diese Weise
können die entsprechenden Nucleosid-Derivate mit hoher
Reinheit und in guten Ausbeuten (60 bis 85%) erhalten
werden.
Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform kann man im
Anschluß an die Reaktionsstufe b) in die 3′-Stellung der
Nucleosid-Derivate mit R⁵ = H die Phosphitamid-Gruppe
NC-CH-CH₂-O-P-N-(R⁷)₂ oder p-NO₂-C₆H₄-CH₂-CH₂-O-P-N-(R⁷)₂
nach bekannten Methoden einführen. Üblicherweise erfolgt
diese Umsetzung mit den entsprechenden Phosphinen in
Gegenwart von 1H-Tetrazol als Aktivator in einem
Lösemittelgemisch bestehend aus Dichlormethan und
Acetonitril bei Temperaturen zwischen 0 und 25°C.
Vorzugsweise wird das Phosphin in zwei- bis dreifachem
molaren Überschuß eingesetzt, während das Molverhältnis
Phosphin zu 1H-Tetrazol auf 3 : ca. 1,0 eingestellt wird.
Das Mengenverhältnis von Dichlormethan zu Acetonitril ist
relativ unkritisch und beträgt vorzugsweise 1 : 1 bis
4 : 1. Nach erfolgter Umsetzung (ca. 10 bis 20 h) kann
das entsprechende Nucleosid wie in Stufe b) beschrieben
aufgearbeitet werden.
Wie Bestrahlungsversuche mit polychromatischem Licht mit
Wellenlänge < 289 nm belegen, lassen sich die
erfindungsgemäßen Nucleoside sehr rasch (t₀₅ = 1 bis 7
Min.) und weitgehend entschützen (Ausbeuten bis zu 97%),
so daß die besonderen Anforderungen an die Photolabilität
der Schutzgruppen in hervorragender Weise erfüllt werden.
Aufgrund dieser besonderen Eigenschaften eignen sich die
erfindungsgemäßen Nucleoside sehr gut für die Herstellung
von Oligonucleotiden durch lichtgesteuerte
Schutzgruppenabspaltung insbesondere auf festen
Trägerplatten.
Die nachfolgenden Beispiele sollen die Erfindung näher
erläutern.
Ein Gemisch von o-Nitrotoluol (9,2 g, 67 mmol) und
Paraformaldehyd (0,8 g, 25 mmol) in DMSO (10 ml, z.S.-
Qualität, zusätzlich 2 d über Molsieb 4 Å getrocknet)
wurde mit KOH (21 mg, 0,37 mmol) versetzt und 2,5 h bei
95°C gerührt. Das Lösemittel wurde im Hochvakuum
abdestilliert. Der Rückstand wurde durch FC (SiO₂, 20 ×
3 cm, Lösemittel: Toluol 750 ml, Toluol/EtOAc 10 : 1 500
ml, 7 : 1 500 ml, 5 : 1 500 ml) gereinigt. Man erhielt
2-(2-Nitrophenyl)ethanol (2,33 g, 21%) als gelbes Öl.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc 10 : 1) 0,21
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (4,07), 256 (3,65), 348 (Schulter, 2,56)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,93 (dd, 1 arom. H, ortho zu NO₂); 7,49 (m, 3 arom. H); 3,96 (t,α-CH₂); 3,17 (t,β-CH₂), 1,72 (s, OH)
C₈H₉NO₃ (167,2)
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc 10 : 1) 0,21
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (4,07), 256 (3,65), 348 (Schulter, 2,56)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,93 (dd, 1 arom. H, ortho zu NO₂); 7,49 (m, 3 arom. H); 3,96 (t,α-CH₂); 3,17 (t,β-CH₂), 1,72 (s, OH)
C₈H₉NO₃ (167,2)
Literatur:
[1] G. M. Bennet, M. M. Hafez, J. Chem. Soc. 1941, 287
[2] E. Uhlmann, W. Pfleiderer, Helv. Chim. Acta 1981, 64, 1688.
[1] G. M. Bennet, M. M. Hafez, J. Chem. Soc. 1941, 287
[2] E. Uhlmann, W. Pfleiderer, Helv. Chim. Acta 1981, 64, 1688.
In eine Lösung von 2-(2-Nitrophenyl)ethanol (5,2 g, 31
mmol) in THF (20 ml, dest. über CaH₂) wurde bei RT unter
Rühren Phosgen eingeleitet. Nach 1,5 h wurde das
überschüssige Phosgen sowie das Lösemittel im Hochvakuum
abdestilliert. Man erhielt 2-(2-Nitrophenyl)ethoxy
carbonylchlorid (6,69 g, 94%) als gelbes Öl.
Rf (SiO₂, CHCl₃) 0,84
UV (CH₃CN), λmax [nm] (log ε): 202 (4,12), 218 (Schulter, 3,74); 256 (3,70); 298 (Schulter, 3,16); 346 (Schulter, 2,59)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,99 (dd, H-C(3)); 7,48 (m, 3 arom. H); 4,62 (t,α-CH₂); 3,31 (t,β-CH₂),
Anal. ber. für C₉H₈ClNO₄ (229,62): C 47,08, H 3,51, N 6,10; gef.: C 47,30, H 3,70, N 6,00.
Rf (SiO₂, CHCl₃) 0,84
UV (CH₃CN), λmax [nm] (log ε): 202 (4,12), 218 (Schulter, 3,74); 256 (3,70); 298 (Schulter, 3,16); 346 (Schulter, 2,59)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,99 (dd, H-C(3)); 7,48 (m, 3 arom. H); 4,62 (t,α-CH₂); 3,31 (t,β-CH₂),
Anal. ber. für C₉H₈ClNO₄ (229,62): C 47,08, H 3,51, N 6,10; gef.: C 47,30, H 3,70, N 6,00.
Thymidin (1 g, 4,13 mmol) wurde mit Pyridin (2 × 10 ml
p. A.-Qualität, zusätzlich über Molsieb 4 Å getrocknet),
in Pyridin (10 ml, s. o.) gelöst und auf -30°C gekühlt.
In 10 min wurde hierzu eine Lösung von 2-(2-Nitrophenyl)
ethoxycarbonylchlorid (1,45 g, 6,31 mmol) getropft. Nach
weiteren 4 h 50 min Rühren unter i-PrOH/N₂-Kühlung (-30
bis -15°C) wurde das Gemisch mit CH₂Cl₂ (150 ml)
verdünnt und mit H₂O (150 ml) gewaschen. Die wäßrigen
Phasen wurden mit CH₂Cl₂ (2 × 150 ml) nachextrahiert. Die
vereinigten organischen Phasen wurden über MgSO₄
getrocknet, filtriert, einrotiert und mit Toluol (5 × 20
ml) und CH₂Cl₂ (2 × 20 ml) koevaporiert. Das Rohprodukt
wurde durch FC (SiO₂, 15 × 3,5 cm, Lösemittel: CH₂Cl₂
1300 ml, CH₂Cl₂/Aceton 20 : 1 1200 ml, 10 : 1 600 ml, 8 : 1 500
ml, 5 : 1 500 ml, 4 : 1 500 ml, 2 : 1 750 ml, 1 : 1 500 ml)
gereinigt. Man erhielt 5′-O-(2-(2-Nitrophenyl)ethoxy
carbonyl)thymidin (1,15 g, 64%) als farblosen Feststoff.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,46
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (4,31), 262 (4,12), 334 (Schulter, 2,64)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,92 (s (br), NH); 7,96 (dd, (H-C(3) v. NPEOC); 7,55 (t, 1 arom. H v. NPEOC); 7,42 (m, H-C(6) v. Thymin, 2 arom. H v. NPEOC); 6,35 (t, H-C(1′)); 4,44 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. NPEOC; 4,15 (q, H-C(4′)); 3,34 (m, β-CH₂ v. NPEOC); 2,89 (d, OH-C(3′)); 2,41 (m, H-C(2′)); 2,22 (m, H-C(2′)); 1,85 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₁₉H₂₁N₃O₉ (435,39): C 52,41, H 4,86, N 9,65; gef.: C 52,07, H 5,15, N 9,65.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,46
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (4,31), 262 (4,12), 334 (Schulter, 2,64)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,92 (s (br), NH); 7,96 (dd, (H-C(3) v. NPEOC); 7,55 (t, 1 arom. H v. NPEOC); 7,42 (m, H-C(6) v. Thymin, 2 arom. H v. NPEOC); 6,35 (t, H-C(1′)); 4,44 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. NPEOC; 4,15 (q, H-C(4′)); 3,34 (m, β-CH₂ v. NPEOC); 2,89 (d, OH-C(3′)); 2,41 (m, H-C(2′)); 2,22 (m, H-C(2′)); 1,85 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₁₉H₂₁N₃O₉ (435,39): C 52,41, H 4,86, N 9,65; gef.: C 52,07, H 5,15, N 9,65.
Zu 2,6-Dinitrotoluol (18,2 g, 0,1 mol, 3 d im Hochvakuum
über Blaugel getrocknet) und Paraformaldehyd (3 g, 0,1
mol) in DMSO (50 ml, z. S.-Qualität, zusätzlich 2 d über
Molsieb 4 Å getrocknet) wurde eine Lösung von
Kaliumtertiärbutylat (1,8 g, 8 mmol) in tert.-Butanol (20
ml, z. S.-Qualität, 99%) gegeben. Nach der Zugabe der
Kaliumtertiärbutylat-Lösung trat ein Farbumschlag von
gelb nach tief-violett ein. Es wurde 5 min bei RT und 10
min bei 70°C (Ölbadtemperatur) gerührt. Danach ließ man
auf RT abkühlen, neutralisierte das Gemisch mit konz.
HCl, verdünnte mit H₂O (300 ml) und versetzte es mit NaCl
bis zur Sättigung. Die wäßrige Phase wurde mit EtOAc (3 ×
500 ml) extrahiert. Die vereinigten organischen Phasen
wurden mit ges. NaCl Lösung (300 ml) gewaschen, über
Na₂SO₄ getrocknet, filtriert und einrotiert. Das
Rohprodukt (24,3 g) wurde in wenig EtOAc in der
Siedehitze gelöst, mit Petrolether (100 ml) versetzt und
im Eisfach zur Kristallisation gebracht. Der Niederschlag
wurde abgesaugt und durch FC (20,7 g verunreinigtes
Produkt, 300 g SiO₂, 18 × 6,5 cm, Lösemittel: Toluol/
EtOAc 5 : 1, 4 : 1, 3 : 1) gereinigt. Mischfraktionen wurden
einrotiert und durch erneute FC (200 g SiO₂, 20 × 5,3 cm,
Lösemittel: Toluol/EtOAc 7 : 1) gereinigt. Man erhielt nach
Einrotieren der reinen Produktfraktionen 2-(2,6-Dinitro
phenyl)ethanol (13,6 g, 64%) als gelben Feststoff.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc 9 : 1) 0,21
Schmelzpunkt: 69 bis 70°C (Lit. [1]: 69°C)
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 203 (4,20), 231 (4,00), 280 (Schulter, 3,17), 327 (Schulter, 2,80).
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,00 (d, J = 8,1, H-C(3), H-C(5)); 7,57 (t, J = 8,1, H-C(4)); 3,97 (q, α-CH₂); 3,33 (t, β-CH₂); 1,69 (t, OH)
Anal. ber. für C₈H₈N₂O₅ (212,16): C 45,29, H 3,80, N 13,20; gef.: C 45,39, H 3,90, N 13,32
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc 9 : 1) 0,21
Schmelzpunkt: 69 bis 70°C (Lit. [1]: 69°C)
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 203 (4,20), 231 (4,00), 280 (Schulter, 3,17), 327 (Schulter, 2,80).
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,00 (d, J = 8,1, H-C(3), H-C(5)); 7,57 (t, J = 8,1, H-C(4)); 3,97 (q, α-CH₂); 3,33 (t, β-CH₂); 1,69 (t, OH)
Anal. ber. für C₈H₈N₂O₅ (212,16): C 45,29, H 3,80, N 13,20; gef.: C 45,39, H 3,90, N 13,32
Literatur:
[1] N. S. Girgis, H. B. Cottam, R. K. Robins, J. Heterocycl. Chem. 1988, 25, 361.
[1] N. S. Girgis, H. B. Cottam, R. K. Robins, J. Heterocycl. Chem. 1988, 25, 361.
Zu einer auf 0°C gekühlten Lösung von Chlorameisensäure
trichlormethylester (3,81 g, 2,33 ml, 19,28 mmol) in THF
(10 ml, dest. über CaH₂) wurde in 20 min eine Lösung von
2-(2,6-Dinitrophenyl)ethanol (4,08 g, 19,23 mmol) und
Et₃N (2,7 ml, 19,28 mmol) in THF (30 ml, s. o.)
zugetropft. Es wurde 25 min unter Eisbadkühlung und 1 h
45 min bei RT gerührt. Die Mischung wurde über Celite
filtriert. Nachwaschen mit THF, Abdestillieren des
Lösemittels sowie des überschüssigen Reagenses und
Trocknen im Hochvakuum ergaben 5,13 g 2-(2,6-Dinitro
phenyl)ethoxycarbonylchlorid (97%) als hellbraunen
Feststoff.
Rf (SiO₂, CH₂Cl₂) 0,76
Schmelzpunkt: 84 bis 85°C
UV(CH₃CN), λmax [nm] (log ε): 233 (4,02), 292 (Schulter, 3,11), 331 (Schulter, 2,82).
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,10 (d, J = 8,2, H-C(3), H-C(5)); 7,67 (t, J = 8,1, H-C(4)); 4,67 (t, α-CH₂); 3,50 (t, β-CH₂)
Anal. ber. für C₉H₇ClN₂O₆ (274,616): C 39,36, H 2,57, N 10,20; gef.: C 39,40, H 2,60, N 10,20.
Rf (SiO₂, CH₂Cl₂) 0,76
Schmelzpunkt: 84 bis 85°C
UV(CH₃CN), λmax [nm] (log ε): 233 (4,02), 292 (Schulter, 3,11), 331 (Schulter, 2,82).
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,10 (d, J = 8,2, H-C(3), H-C(5)); 7,67 (t, J = 8,1, H-C(4)); 4,67 (t, α-CH₂); 3,50 (t, β-CH₂)
Anal. ber. für C₉H₇ClN₂O₆ (274,616): C 39,36, H 2,57, N 10,20; gef.: C 39,40, H 2,60, N 10,20.
Thymidin (1 g, 4,13 mmol) wurde mit Pyridin (3 × 10 ml,
p. A.-Qualität, zusätzlich über Molsieb 4 Å getrocknet)
koevaporiert, in Pyridin (15 ml, s. o.) gelöst und auf
-50°C gekühlt. Hierzu tropfte man in 1 h eine Lösung von
2-(2,6-Dinitrophenyl)ethoxycarbonylchlorid (1,7 g, 6, 19
mmol) in CH₂Cl₂ (15 ml, dest. über CaH₂). Nach weiteren
3,5 h Rühren unter i-PrOH/N₂-Kühlung (-50 bis -20°C)
wurde das Gemisch mit CH₂Cl₂ (50 ml) verdünnt und mit H₂O
(50 ml) gewaschen. Die wäßrigen Phasen wurden mit CH₂Cl₂
(2 × 50 ml) nachextrahiert. Die vereinigten organischen
Phasen wurden über Na₂SO₄ getrocknet, filtriert,
einrotiert und mit Toluol (3 × 50 ml) koevaporiert. Das
Rohprodukt (2,66 g) wurde in CH₂Cl₂/MeOH 2 : 1 (60 ml) in
der Siedehitze digeriert. Der erhaltene weiße
Niederschlag wurde abgesaugt und aus MeOH (25 ml)
umkristallisiert. Man erhielt 5′-O-(2-(2,6-Dinitrophenyl)
ethoxycarbonyl)thymidin (855 mg, 43%) als farblosen,
amorphen Feststoff. Die vereinigten Filtrate wurden zur
Trockene einrotiert und durch FC (1,4 g Rohprodukt, 56 g
SiO₂, 17 × 3 cm, CH₂Cl₂/MeOH 100 : 5 1240 ml, 100 : 7 105 ml,
100 : 10 330 ml) gereinigt. Man erhielt 5′-O-(2-(2,6-
Dinitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin (691 mg, 34, 8%)
als farblosen Feststoff. Die Ausbeute an 5′-O-(2-(2,6-
Dinitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin betrug insgesamt
1,55 g (78%).
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,41
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 206 (4,28), 244 (Schulter, 4,07), 256 (4,08) 355 (Schulter, 2,72)
¹H-NMR (250 MHz, DMSO-d⁶): 11,32 (s, NH), 8,27 (d, H-C(3), H-C(5)); 7 ,78 (t,H-C(4)); 7,40 (s, H-C(6) v. Thymin); 6,18 (t, H-C(1′)); 5,44 (d, OH-C(3′)); 4,37 (t, α-CH₂); 4,23 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′)); 3,91 (m, H-C(4′)); 3,29 (t, β-CH₂); 2,15 (m, 2 × H-C(2′)); 1,71 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₁₉H₂₀N₄O₁₁ (480,386): C 47,51, H 4,20, N 11,66; gef.: C 47,40, H 4,15, N 11,57.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,41
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 206 (4,28), 244 (Schulter, 4,07), 256 (4,08) 355 (Schulter, 2,72)
¹H-NMR (250 MHz, DMSO-d⁶): 11,32 (s, NH), 8,27 (d, H-C(3), H-C(5)); 7 ,78 (t,H-C(4)); 7,40 (s, H-C(6) v. Thymin); 6,18 (t, H-C(1′)); 5,44 (d, OH-C(3′)); 4,37 (t, α-CH₂); 4,23 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′)); 3,91 (m, H-C(4′)); 3,29 (t, β-CH₂); 2,15 (m, 2 × H-C(2′)); 1,71 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₁₉H₂₀N₄O₁₁ (480,386): C 47,51, H 4,20, N 11,66; gef.: C 47,40, H 4,15, N 11,57.
Zu 2-Fluor-6-nitrotoluol (776 mg, 5 mmol) und
Paraformaldehyd (150 mg, 5 mmol) in DMSO (2,5 ml, z.S.-
Qualität, zusätzlich 2 d über Molsieb 4 Å getrocknet)
wurde eine Lösung von Kaliumtertiärbutylat (90 mg, 0,8
mmol) in tert.-Butanol (1 ml, z.S.-Qualität, 99%)
gegeben. Nach der Zugabe der Kaliumtertiärbutylat-Lösung
trat ein Farbumschlag von gelb nach tief-violett ein. Es
wurde 5 min bei RT und 30 min bei 70°C (Ölbadtemperatur)
gerührt. Danach ließ man auf RT abkühlen und
neutralisierte mit wenigen Tropfen konz. HCl. Das Gemisch
wurde mit EtOAc (30 ml) verdünnt und mit H₂O (20 ml)
gewaschen. Die wäßrige Phase wurde mit EtOAc (2 × 20 ml)
nachextrahiert. Trocknen der organischen Phasen über
Na₂SO₄, Filtrieren und Abrotieren des Lösemittels ergaben
das Rohprodukt (1,11 g), welches durch FC (20 g SiO₂, 12
× 2 cm, Lösemittel: PE 40 ml, PE/EtOAc 10 : 1 110 ml, 8 : 1
270 ml, 6 : 1 210 ml, 5 : 1 60 ml, 4 : 1 50 ml) gereinigt
wurde. Man erhielt 2-(2-Fluor-6-nitrophenyl)ethanol (653
mg, 71%) als gelben Feststoff.
Rf(SiO2,Toluol/EtOAc 9 : 1) 0,24
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (4,06), 251 (3,61), 294 (Schulter, 3,21)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,73 (m, 1 arom. H); 7,36 (m, 2 arom. H); 3,94 (t, α-CH₂); 3,21 (dt, J = 2,2, 6,5, β-CH₂); 1,67 (s (br), OH)
Anal. ber. für C₈H₈FNO₃ (185,154): C 51,90, H 4,36, N 7,57; gef.: C 51,92, H 4,40, N 7,42
Rf(SiO2,Toluol/EtOAc 9 : 1) 0,24
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (4,06), 251 (3,61), 294 (Schulter, 3,21)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,73 (m, 1 arom. H); 7,36 (m, 2 arom. H); 3,94 (t, α-CH₂); 3,21 (dt, J = 2,2, 6,5, β-CH₂); 1,67 (s (br), OH)
Anal. ber. für C₈H₈FNO₃ (185,154): C 51,90, H 4,36, N 7,57; gef.: C 51,92, H 4,40, N 7,42
Literatur:
[1] Chem. Abstr. 1989, 110, P 75032 k.
[1] Chem. Abstr. 1989, 110, P 75032 k.
Zu einer auf 0°C gekühlten Lösung von Chlorameisensäure
trichlormethylester (641 mg, 3,24 mmol) in THF (6,75 ml,
dest. über CaH₂) wurde in 5 min eine Lösung von
2-(2-Fluor-6-nitrophenyl)ethanol (500 mg, 2,7 mmol) und
Et₃N (273 mg, 2,7 mmol, dest. über KOH) in THF (6,75 ml,
s. o.) zugespritzt. Man ließ 1 h unter Eisbadkühlung und
1 h bei RT rühren. Das Gemisch wurde über Celite
filtriert. Nachwaschen mit THF und Abdestillieren des
Lösemittels sowie des überschüssigen Reagenses bei 30°C
im Hochvakuum ergaben 2-(2-Fluor-6-nitrophenyl)ethoxy
carbonylchlorid (620 mg, 93%) als hellbraunes Öl.
Rf (SiO2,PE/EtOAc 19 : 1) 0,25
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 204 (4,04), 251 (3,67), 293 (Schulter, 3,23)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,83 (d, J = 7,7, 1 arom. H); 7,44 (m, 2 arom. H); 4,63 (t, α-CH₂); 3,37 (dt, J = 1,6, 6,4, β-CH₂
Anal. ber. für C₉H₇ClFNO₄ (247,609): C 43,66, H 2,85, N 5,66; gef.: C 43,97, H 3,02, N 5,59.
Rf (SiO2,PE/EtOAc 19 : 1) 0,25
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 204 (4,04), 251 (3,67), 293 (Schulter, 3,23)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,83 (d, J = 7,7, 1 arom. H); 7,44 (m, 2 arom. H); 4,63 (t, α-CH₂); 3,37 (dt, J = 1,6, 6,4, β-CH₂
Anal. ber. für C₉H₇ClFNO₄ (247,609): C 43,66, H 2,85, N 5,66; gef.: C 43,97, H 3,02, N 5,59.
Thymidin (200 mg, 0,83 mmol) wurde mit Pyridin (3 × 3 ml,
p.A.-Qualität, zusätzlich über Molsieb 4 Å getrocknet)
koevaporiert, in Pyridin (3 ml, s. o.) gelöst und auf
-60°C (i-PrOH/N₂) gekühlt. Hierzu tropfte man in 20 min
eine Lösung von 2-(2-Fluor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl
chlorid (280 mg, 1,13 mmol) in CH₂Cl₂ (3 ml, dest. über
CaH₂). Man ließ 3 h 40 min unter i-PrOH/N₂ Kühlung (-60
bis -15°) und danach 1 h ohne Kältebad rühren, wobei die
Temperatur gegen Ende bei 0°C lag. Die Reaktionsmischung
wurde mit CH₂Cl₂ (10 ml) verdünnt und mit H₂O (10 ml)
gewaschen. Die wäßrige Phase wurde mit CH₂Cl₂ (3 × 10 ml)
nachextrahiert. Trocknen der organischen Phasen über
Na₂SO₄, Filtrieren, Abrotieren des Lösemittels und
Koevaporieren mit Toluol (3 × 10 ml) ergaben das
Rohprodukt, welches durch FC (20 g SiO₂, 12 × 2 cm,
Lösemittel: CH₂Cl₂/MeOH 100 : 1 50 ml, 100 : 2 102 ml, 100 : 3
206 ml, 100 : 3,5 103 ml, 100 : 4 208 ml) gereinigt wurde.
Man eluierte zuerst 3′,5′-Bis-O-(2-(2-Fluor-6-nitro
phenyl)ethoxycarbonyl)thymidin, dann 3′-O-(2-(2-Fluor-6-
nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin und zuletzt 5′-O-(2-
(2-Fluor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin. Nach
Abrotieren des Lösemittels und Trocknen im Hochvakuum
erhielt man 3′,5′-Bis-O-(2-(2-Fluor-6-nitrophenyl)ethoxy
carbonyl)thymidin (27 mg, 5%) als hellgelben Schaum,
3′-O-(2-(2-Fluor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin
(15 mg, 4%) als farblosen Schaum und 5′-O-(2-(2-Fluor-6-
nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin (262 mg, 70%) als
farblosen Feststoff.
5′-O-(2-(2-Fluor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin:
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,44
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (4,29), 261 (4,10)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,09 (s (br), NH); 7,76 (m, 1 arom. H v. FNPEOC); 7,41 (m, H-C(6) v. Thymin, 2 arom. H v. FNPEOC), 6,35 (t, H-C(1′)); 4,45 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. FNPEOC); 4,14 (q, J = 3,2, H-C(4′)); 3,36 (m, β-CH₂ v. FNPEOC); 2,40 (m, H-C(2′)); 2,23 (m, H-C(2′), OH-C(3′)); 1,85 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₁₉H₂₀FN₃O₉ (453,379): C 50,34, H 4,45 N 9,27; gef.: C 50,22, H 4,49, N 9,18.
5′-O-(2-(2-Fluor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin:
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,44
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (4,29), 261 (4,10)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,09 (s (br), NH); 7,76 (m, 1 arom. H v. FNPEOC); 7,41 (m, H-C(6) v. Thymin, 2 arom. H v. FNPEOC), 6,35 (t, H-C(1′)); 4,45 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. FNPEOC); 4,14 (q, J = 3,2, H-C(4′)); 3,36 (m, β-CH₂ v. FNPEOC); 2,40 (m, H-C(2′)); 2,23 (m, H-C(2′), OH-C(3′)); 1,85 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₁₉H₂₀FN₃O₉ (453,379): C 50,34, H 4,45 N 9,27; gef.: C 50,22, H 4,49, N 9,18.
Zu einem Gemisch aus 2-Chlor-6-nitrotoluol (25 g, 146
mmol) und Paraformaldehyd (1,9 g, 60 mmol) in DMSO (20
ml, z. S.-Qualität, zusätzlich 2 d über Molsieb 4 Å
getrocknet) gab man Triton B (2 ml, 35% in MeOH) und
ließ bei 90°C rühren. Nach 2 h wurde das
Reaktionsgemisch mit wenigen Tropfen konz. HCl
neutralisiert, mit H₂O (50 ml) verdünnt und mit EtOAc
(4 × 150 ml) extrahiert. Die vereinigten organischen
Phasen wurden über MgSO₄ getrocknet, filtriert und
einrotiert. Das Rohprodukt wurde durch Sublimation im
Hochvakuum (p = 0,06 Torr, Ölbadtemperatur 95°C)
gereinigt. Man erhielt 2-(2-Chlor-6-nitrophenyl)ethanol
(8,01 g, 66%) in Form von hellgelben Kristallen.
Rf(SiO2,Toluol/EtOAc 10 : 1) 0,36
Schmelzpunkt: 59 bis 61°C
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 212 (4,13), 248 (3,48), 294 (Schulter, 3,03); 336 (Schulter, 2,58)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,70 (dd, 1 arom. H); 7,62 (dd, 1 arom. H); 7,31 (t, H-C(4)); 3,94 (q, α-CH₂); 3,26 (t, β-CH₂), 1,70 (t, OH)
Anal. ber. für C₈H₃ClNO₃ (201,61): C 47,66, H 4,00, N 6,95; gef.: C 47,79, H 4,06, N 6,92
Rf(SiO2,Toluol/EtOAc 10 : 1) 0,36
Schmelzpunkt: 59 bis 61°C
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 212 (4,13), 248 (3,48), 294 (Schulter, 3,03); 336 (Schulter, 2,58)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,70 (dd, 1 arom. H); 7,62 (dd, 1 arom. H); 7,31 (t, H-C(4)); 3,94 (q, α-CH₂); 3,26 (t, β-CH₂), 1,70 (t, OH)
Anal. ber. für C₈H₃ClNO₃ (201,61): C 47,66, H 4,00, N 6,95; gef.: C 47,79, H 4,06, N 6,92
Literatur:
[1] T. Morimoto, I. Hashimoto, H. Yamaoka, Chem. Abstr. 1978, 88, 104880 v.
[2] Y. Tsuji, S. Kotachi, K.-T. Huh, Y. Watanabe, J. Org. Chem. 1990, 55, 580.
[1] T. Morimoto, I. Hashimoto, H. Yamaoka, Chem. Abstr. 1978, 88, 104880 v.
[2] Y. Tsuji, S. Kotachi, K.-T. Huh, Y. Watanabe, J. Org. Chem. 1990, 55, 580.
In eine Lösung von 2-(2-Chlor-6-nitrophenyl)ethanol (31
g, 154 mmol) in THF (190 ml, dest. über CaH₂) wurde bei
RT unter Rühren Phosgen eingeleitet. Nach 2,5 h wurden
das überschüssige Phosgen sowie das Lösemittel im
Hochvakuum abdestilliert. Man erhielt 2-(2-Chlor-6-nitro
phenyl)ethoxycarbonylchlorid (39,4 g, 97%) als gelbes
Öl.
Rf (SiO₂, CHCl₃) 0,76
UV(CH₃CN), λmax [nm] (log ε): 211 (4,14), 253 (3,53), 300 (Schulter, 3,02)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,81 (dd, 1 arom. H); 7,69 (dd, 1 arom. H); 7,41 (t, H-C(4)); 4,63 (t, α-CH₂); 3,46 (t, β-CH₂
Anal. ber. für C₉H₇Cl₂NO₄ (264,06): C 40,94, H 2,67, N 5,30; gef.: C 41,05, H 2,73, N 5,00.
Rf (SiO₂, CHCl₃) 0,76
UV(CH₃CN), λmax [nm] (log ε): 211 (4,14), 253 (3,53), 300 (Schulter, 3,02)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,81 (dd, 1 arom. H); 7,69 (dd, 1 arom. H); 7,41 (t, H-C(4)); 4,63 (t, α-CH₂); 3,46 (t, β-CH₂
Anal. ber. für C₉H₇Cl₂NO₄ (264,06): C 40,94, H 2,67, N 5,30; gef.: C 41,05, H 2,73, N 5,00.
Thymidin (4 g, 16,5 mmol) wurde mit Pyridin (3 × 40 ml,
p.A.-Qualität, zusätzlich über Molsieb 4 Å getrocknet)
koevaporiert, in Pyridin (48 ml, s. o.) gelöst und auf
-50°C (i-PrOH/N₂) gekühlt. Hierzu tropfte man in 2 h 45
min eine Lösung von 2-(2-Chlor-6-nitrophenyl)ethoxy
carbonylchlorid (5,2 g, 19,8 mmol) in CH₂Cl₂ (48 ml,
dest. über CaH₂). Man ließ weitere 30 min unter i-PrOH/N₂
Kühlung (-50 bis -30°C) rühren. Die Reaktionsmischung
wurde mit CH₂Cl₂ (100 ml) verdünnt und mit H₂O (100 ml)
gewaschen. Die wäßrige Phase wurde mit CH₂Cl₂ (2 × 100
ml) nachextrahiert. Trocknen der organischen Phasen über
Na₂SO₄, Filtrieren, Abrotieren des Lösemittels und
Koevaporieren mit Toluol (3 × 50 ml) ergaben das
Rohprodukt, welches durch FC (305 g SiO₂, 22 × 5,9 cm,
Lösemittel: CH₂Cl₂ 200 ml, CH₂Cl₂/MeOH 100 : 2 1020 ml,
100 : 3 515 ml, 100 : 4 1560 ml, 100 : 5 850 ml, 100 : 6 318 ml,
100 : 8 324 ml, 100 : 9 654 ml) gereinigt wurde. Man eluierte
zuerst eine Mischfraktion (1,4 g) von 3′,5′-Bis-O-(2-(2-
Chlor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin und 3′-O-(2-
(2-Chlor-6-nitro-phenyl)ethoxycarbonyl)thymidin, dann
eine Mischfraktion (367 mg) von 3′-O-(2-(2-Chlor-6-nitro
phenyl)ethoxycarbonyl)thymidin und 5′-O-(2-(2-Chlor-6-
nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin und zuletzt eine
reine Fraktion von 5′-O-(2-(2-Chlor-6-nitrophenyl)ethoxy
carbonyl)thymidin (6,21 g, 80%, farbloser Feststoff).
Die Mischfraktionen wurden durch weitere FC gereinigt.
Man erhielt 3′,5′-Bis-O-(2-(2-Chlor-6-nitrophenyl)ethoxy
carbonyl)thymidin (1,175 g, 10%) als hellgelben Schaum,
3′-O-(2-(2-Chlor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin
(203 mg, 3%) als farblosen Schaum und 5′-O-(2-(2-Chlor-
6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin (182 mg, 2%) als
farblosen Feststoff. Die Gesamtausbeute an 5′-O-(2-
(2-Chlor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin betrug
somit 6,392 g (82%).
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,53
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 210 (4,36), 263 (4,05)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,11 (s, NH); 7,74 (d, J = 8,2, 1 arom. H v. ClNPEOC); 7,67 (d, J = 8,0, 1 arom. H v. ClNPEOC), 7,39 (t, H-C(4) v. ClNPEOC); 7,38 (s, H-C(6) v. Thymin); 6,36 (t, H-C(1′)); 4,44 m, α-CH₂ v. ClNPEOC, H-C(3′), 2 × H-C(5′)); 4,15 (q, H-C(4′)); 3,45 (t, β-CH₂ v. ClNPEOC); 2,38 (m, H-C(2′)); 2,26 (m, H-C(2′)), 2,18 (d, J = 3,9, OH-C(3′)); 1,86 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₁₉H₂₀ClN₃O₉ (469,83): C 48,57, H 4,29, N 8,94; gef.: C 48,53, H 4,34, N 8,91.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,53
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 210 (4,36), 263 (4,05)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,11 (s, NH); 7,74 (d, J = 8,2, 1 arom. H v. ClNPEOC); 7,67 (d, J = 8,0, 1 arom. H v. ClNPEOC), 7,39 (t, H-C(4) v. ClNPEOC); 7,38 (s, H-C(6) v. Thymin); 6,36 (t, H-C(1′)); 4,44 m, α-CH₂ v. ClNPEOC, H-C(3′), 2 × H-C(5′)); 4,15 (q, H-C(4′)); 3,45 (t, β-CH₂ v. ClNPEOC); 2,38 (m, H-C(2′)); 2,26 (m, H-C(2′)), 2,18 (d, J = 3,9, OH-C(3′)); 1,86 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₁₉H₂₀ClN₃O₉ (469,83): C 48,57, H 4,29, N 8,94; gef.: C 48,53, H 4,34, N 8,91.
Zu 2-Brom-6-nitrotoluol (1,08 g, 5 mmol) und
Paraformaldehyd (150 mg, 5 mmol) in DMSO (2,5 ml, z.S.-
Qualität, zusätzlich 2 d über Molsieb 4 Å getrocknet)
wurde eine Lösung von Kaliumtertiärbutylat (90 mg, 0,8
mmol) in tert.-Butanol (1 ml, z.S.-Qualität, 99%)
gegeben. Nach der Zugabe der Kaliumtertiärbutylat-Lösung
trat ein Farbumschlag von gelb nach tief-violett ein. Es
wurde 5 min bei RT und 30 min bei 70°C (Ölbadtemperatur)
gerührt. Danach ließ man auf RT abkühlen und
neutralisierte mit wenigen Tropfen konz. HCl. Das Gemisch
wurde mit EtOAc (30 ml) verdünnt und mit H₂O (20 ml)
gewaschen. Die wäßrige Phase wurde mit EtOAc (2 × 20 ml)
nachextrahiert. Trocknen der organischen Phasen über
Na₂SO₄, Filtrieren und Abrotieren des LM ergaben das
Rohprodukt (1,49 g), welches durch FC (20 g SiO₂, 20 × 2
cm, Lösemittel: PE 45 ml, PE/EtOAc 10 : 1 110 ml, 8 : 1 180
ml, 7,5 : 1 340 ml, 6 : 1 140 ml) gereinigt wurde. Man
erhielt 2-(2-Brom-6-nitrophenyl)ethanol (867 mg, 70%)
als gelben Feststoff.
Rf(SiO2,Toluol/EtOAc 9 : 1) 0,32
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 204 (4,18), 210 (Schulter, 4,16), 251 (3,48), 293 (Schulter, 3,07)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,82 (dd, J = 1,1, 8,0, 1 arom. H); 7,74 (dd, J = 1,1, 8,2, 1 arom. H); 7,26 (m, H-C(4)); 3,96 (t, α-CH₂); 3,30 (t, β-CH ¥); 1,75 (s (br), OH)
Anal. ber. für C₈H₈BrNO₃ (246,06): C 39,05, H 3,28, N 5,69; gef.: C 39,09, H 3,26, N 5,56
Rf(SiO2,Toluol/EtOAc 9 : 1) 0,32
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 204 (4,18), 210 (Schulter, 4,16), 251 (3,48), 293 (Schulter, 3,07)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,82 (dd, J = 1,1, 8,0, 1 arom. H); 7,74 (dd, J = 1,1, 8,2, 1 arom. H); 7,26 (m, H-C(4)); 3,96 (t, α-CH₂); 3,30 (t, β-CH ¥); 1,75 (s (br), OH)
Anal. ber. für C₈H₈BrNO₃ (246,06): C 39,05, H 3,28, N 5,69; gef.: C 39,09, H 3,26, N 5,56
Literatur:
[1] Chem. Abstr. 1989, 110, P 75032 k.
[1] Chem. Abstr. 1989, 110, P 75032 k.
Zu einer auf 0°C gekühlten Lösung von Chlorameisensäure
trichlormethylester (442 mg, 2,23 mmol) in THF (5 ml,
dest. über CaH₂) wurde in 10 min eine Lösung von
2-(2-Brom-6-nitrophenyl)ethanol (500 mg, 2,03 mmol) und
Et₃N (206 mg, 2,03 mmol, dest. über KOH) in THF (5 ml, s.
o.) zugespritzt. Man ließ 5 min unter Eisbadkühlung und
1 h 45 min bei RT rühren. Das Gemisch wurde über Celite
filtriert. Nachwaschen mit THF und Abdestillieren des
Lösemittels sowie des überschüssigen Reagenses bei 30°C
im Hochvakuum ergaben 2-(2-Brom-6-nitrophenyl)ethoxy
carbonylchlorid (625 mg, 99,8%) als hellbraunes Öl.
Rf(SiO₂, PE/EtOAc 19 : 1) 0,31
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (Schulter, 4,14), 211 (4,16), 254 (3,52), 297 (Schulter, 3,05)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,85 (2 arom. H); 7,33 (t, H-C(4)); 4,62 (t, α-CH₂); 3,47 (t, β-CH₂)
Anal. ber. für C₉H₇BrClNO₄ (308,515): C 35,04, H 2,29, N 4,54; gef.: C 35,50, H 2,58, N 4,50.
Rf(SiO₂, PE/EtOAc 19 : 1) 0,31
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (Schulter, 4,14), 211 (4,16), 254 (3,52), 297 (Schulter, 3,05)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,85 (2 arom. H); 7,33 (t, H-C(4)); 4,62 (t, α-CH₂); 3,47 (t, β-CH₂)
Anal. ber. für C₉H₇BrClNO₄ (308,515): C 35,04, H 2,29, N 4,54; gef.: C 35,50, H 2,58, N 4,50.
Thymidin (200 mg, 0,83 mmol) wurde mit Pyridin (3 × 3 ml,
p.A.-Qualität, zusätzlich über Molsieb 4 Å getrocknet)
koevaporiert, in Pyridin (3 ml, s. o.) gelöst und auf
-60°C (i-PrOH/N₂) gekühlt. Hierzu tropfte man in 10 min
eine Lösung von 2-(2-Brom-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl
chlorid (354 mg, 1,15 mmol) in CH₂Cl₂ (3 ml, dest. über
CaH₂). Man ließ 3 h 40 min unter i-PrOH/N₂ Kühlung (-60
bis -20°C) rühren. Die Reaktionsmischung wurde mit CH₂Cl₂
(10 ml) verdünnt und mit H₂O (10 ml) gewaschen. Die
wäßrige Phase wurde mit CH₂Cl₂ (2 × 10 ml)
nachextrahiert. Trocknen der organischen Phasen über
Na₂SO₄, Filtrieren, Abrotieren des Lösemittels und
Koevaporieren mit Toluol (4 × 10 ml) ergaben das
Rohprodukt (552 mg). Durch Kristallisation aus wenig
CH₂Cl₂ und MeOH konnte 5′-O-(2-(2-Brom-6-nitrophenyl)
ethoxycarbonyl)thymidin (163 mg, 38%) als farbloser
Feststoff isoliert werden. Der Rückstand wurde durch FC
(18 g SiO₂, 11 × 2 cm, Lösemittel: CH₂Cl₂/MeOH 100:1 50
ml, 100 : 3 103 ml, 100 : 4 208 ml, 100 : 5 52 ml) gereinigt.
Man eluierte zuerst 3′,5′-Bis-O-(2-(2-Brom-6-nitro
phenyl)ethoxycarbonyl)thymidin, dann 3′-O-(2-(2-Brom-6-
nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin und zuletzt 5′-O-(2-
(2-Brom-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin. Die
Produktfraktionen wurden einrotiert und im Hochvakuum
getrocknet. Man erhielt 3′,5′-Bis-O-(2-(2-Brom-6-nitro
phenyl)ethoxycarbonyl)thymidin (62 mg, 10%) als
farblosen Schaum, 3′-O-(2-(2-Brom-6-nitrophenyl)ethoxy
carbonyl)thymidin (8 mg, 2%) als farbloses Öl und
5′-O-(2-(2-Brom-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin
(151 mg, 35%) als farblosen Feststoff. Die
Gesamtausbeute an 5′-O-(2-(2-Brom-6-nitrophenyl)ethoxy
carbonyl)thymidin betrug somit 314 mg (73%).
5′-O-(2-(2-Brom-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,38
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 210 (4,37), 263 (4,06)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,35 (s, NH); 7,85 (d, 1 arom. H v. BNPEOC); 7,76 (d, 1 arom. H v. BNPEOC), 7,38 (s, H-C(6) v. Thymin); 7,30 (t, H-C(4) v. BNPEOC, teilweise unter CHCl₃-Signal verborgen); 6,37 (t, H-C(1′)); 4,45 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. BNPEOC)); 4,15 (m, H-C(4′)); 3,47 (t, β-CH₂ v. BNPEOC); 2,41 (m, H-C(2′), OH-C(3′)); 2,25 (m, H-C(2′)); 1,86 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₁₉H₂₀BrN₃O₉ (514,285): C 44,37, H 3,92, N 8,17; gef.: C 44,31, H 3,96, N 8,11.
5′-O-(2-(2-Brom-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,38
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 210 (4,37), 263 (4,06)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,35 (s, NH); 7,85 (d, 1 arom. H v. BNPEOC); 7,76 (d, 1 arom. H v. BNPEOC), 7,38 (s, H-C(6) v. Thymin); 7,30 (t, H-C(4) v. BNPEOC, teilweise unter CHCl₃-Signal verborgen); 6,37 (t, H-C(1′)); 4,45 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. BNPEOC)); 4,15 (m, H-C(4′)); 3,47 (t, β-CH₂ v. BNPEOC); 2,41 (m, H-C(2′), OH-C(3′)); 2,25 (m, H-C(2′)); 1,86 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₁₉H₂₀BrN₃O₉ (514,285): C 44,37, H 3,92, N 8,17; gef.: C 44,31, H 3,96, N 8,11.
Ein Gemisch von 4-Chlor-2-nitrotoluol (50 g, 291 mmol)
und Paraformaldehyd (3,8 g, 120 mmol) in DMSO (40 ml,
z. S.-Qualität, zusätzlich 2 d über Molsieb 4 Å
getrocknet) wurde mit Triton B (4 ml, 35% in MeOH)
versetzt und 2,5 h bei 90°C gerührt. Man neutralisierte
mit wenigen Tropfen konz. HCl, verdünnte mit H₂O (100 ml)
und extrahierte mit EtOAc (5 × 150 ml). Die vereinigten
organischen Phasen wurden über MgSO₄ getrocknet,
filtriert und einrotiert. Der ölige Rückstand wurde durch
Sublimation im Hochvakuum (p = 0,1 Torr, Ölbadtemperatur
110°C) gereinigt. Man erhielt 2-(4-Chlor-2-nitrophenyl)
ethanol (13,23 g, 55%) in Form gelber Kristalle.
Rf (SiO²., Toluol/EtOAc 10 : 1) 0,26
Schmelzpunkt: 61 bis 64°C
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 213 (4,29), 252 (3,61), 294 (Schulter, 3,10)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,94 (d, J = 2,2, H-C(3)); 7,53 (dd, H-C(5)); 7,40 (d, H-C(6)); 3,93 (t, α-CH₂); 3,14 (t, β-CH₂); 1,70 (s, OH)
Anal. ber. für C₈H₈ClNO₃ (201,61): C 47,66, H 4,00, N 6,95; gef.: C 47,69, H 4,01, N 6,76
Rf (SiO²., Toluol/EtOAc 10 : 1) 0,26
Schmelzpunkt: 61 bis 64°C
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 213 (4,29), 252 (3,61), 294 (Schulter, 3,10)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,94 (d, J = 2,2, H-C(3)); 7,53 (dd, H-C(5)); 7,40 (d, H-C(6)); 3,93 (t, α-CH₂); 3,14 (t, β-CH₂); 1,70 (s, OH)
Anal. ber. für C₈H₈ClNO₃ (201,61): C 47,66, H 4,00, N 6,95; gef.: C 47,69, H 4,01, N 6,76
Literatur:
[1] J. Bakke, Acta Chem. Scand. 1969, 23, 3055
[2] T. Morimoto,I. Hashimoto, H. Yamaoka, Chem. Abstr. 1978, 88, 104880 v
[3] Y. Tsuji, S. Kotachi, K.-T. Huh, Y. Watanabe, J. Org. Chem. 1990, 55, 580.
[1] J. Bakke, Acta Chem. Scand. 1969, 23, 3055
[2] T. Morimoto,I. Hashimoto, H. Yamaoka, Chem. Abstr. 1978, 88, 104880 v
[3] Y. Tsuji, S. Kotachi, K.-T. Huh, Y. Watanabe, J. Org. Chem. 1990, 55, 580.
In eine Lösung von 2-(4-Chlor-2-nitrophenyl)ethanol
(6,8 g, 34 mmol) in THF (50 ml, dest. über CaH₂) wurde
bei RT Phosgen eingeleitet. Nach 2,5 h wurde das
überschüssige Phosgen sowie das Lösemittel im Hochvakuum
abdestilliert. Man erhielt 2-(4-Chlor-2-nitrophenyl)
ethoxycarbonylchlorid (8,53 g, 95%) als gelbes Öl.
Rf (SiO₂, CHCl₃) 0,85
UV (CH₃CN), λmax [nm] (log ε): 213 (4,26); 254 (3,63); 300 (Schulter, 3,14)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,03 (d, H-C(3)); 7,59 (dd, H-C(5)); 7,36 (d, H-C(6)); 4,62 (t, α-CH₂); 3,32 (β-CH₂)
Anal. ber. für C⁹H₇Cl₂NO₄ (264,06): C 40,94, H 2,67, N 5,30; gef.: C 40,97, H 2,69, N 5,00.
Rf (SiO₂, CHCl₃) 0,85
UV (CH₃CN), λmax [nm] (log ε): 213 (4,26); 254 (3,63); 300 (Schulter, 3,14)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,03 (d, H-C(3)); 7,59 (dd, H-C(5)); 7,36 (d, H-C(6)); 4,62 (t, α-CH₂); 3,32 (β-CH₂)
Anal. ber. für C⁹H₇Cl₂NO₄ (264,06): C 40,94, H 2,67, N 5,30; gef.: C 40,97, H 2,69, N 5,00.
Thymidin (150 mg, 0,62 mmol) wurde mit Pyridin (2 × 5 ml,
p. A. -Qualität, zusätzlich über Molsieb 4 Å getrocknet)
koevaporiert, in Pyridin gelöst und auf -30°C gekühlt.
Hierzu tropfte man in 5 min eine Lösung von 2-(4-Chlor-2-
nitrophenyl)ethoxycarbonylchlorid (255 mg, 0,97 mmol).
Nach 4 h Rühren unter i-PrOH/N₂-Kühlung (-30 bis -15°C)
wurde das Gemisch mit CH₂Cl₂ (30 ml) verdünnt und mit H₂O
(30 ml) gewaschen. Die wäßrige Phase wurde mit CH₂Cl₂ (2
× 30 ml) nachextrahiert. Die vereinigten organischen
Phasen wurden über MgSO₄ getrocknet, filtriert und mit
Toluol (4 × 10 ml) und CH₂Cl₂ (20 ml) koevaporiert. Das
Rohprodukt wurde durch FC (SiO₂, 15 × 3 cm, Lösemittel:
CH₂Cl₂/MeOH 100 : 7 700 ml) gereinigt. Man erhielt 5′-O-
(4-Chlor-2-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin (219 mg,
75%) als farblosen Feststoff.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,36
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 212 (4,43), 261 (4,08), 310 (Schulter, 3,07)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,75 (s (br), NH); 7,94 (d, H-C(3) v. CNPEOC); 7,52 (dd, H-C(5)); 7,31 (m, H-C(6) v. CNPEOC, H-C(6) v. Thymin); 6,32 (t, H-C(1′)); 4,41 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. CNPEOC); 4,12 (q, H-C(4′)); 3,27 (t, β-CH₂ v. CNPEOC); 2,75 (s (br), OH-C(3′)); 2,39 (m, H-C(2′)); 2,19 (m, H-C(2′)); 1,86 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₁₉H₂₀ClN₃O₉ (469,83): C 48,57, H 4,29, N 8,94; gef.: C 48,87, H 4,56, N 8,64.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,36
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 212 (4,43), 261 (4,08), 310 (Schulter, 3,07)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,75 (s (br), NH); 7,94 (d, H-C(3) v. CNPEOC); 7,52 (dd, H-C(5)); 7,31 (m, H-C(6) v. CNPEOC, H-C(6) v. Thymin); 6,32 (t, H-C(1′)); 4,41 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. CNPEOC); 4,12 (q, H-C(4′)); 3,27 (t, β-CH₂ v. CNPEOC); 2,75 (s (br), OH-C(3′)); 2,39 (m, H-C(2′)); 2,19 (m, H-C(2′)); 1,86 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₁₉H₂₀ClN₃O₉ (469,83): C 48,57, H 4,29, N 8,94; gef.: C 48,87, H 4,56, N 8,64.
Ein Gemisch aus 5-Methoxy-2-nitrotoluol (25 g, 150 mmol)
und Paraformaldehyd (2,3 g, 73 mmol) in DMSO (20 ml,
z. S.-Qualität, zusätzlich 2 d über Molsieb 4 Å
getrocknet) wurde bei 80°C mit Triton B (2 ml, 35% in
MeOH) versetzt. Nach 2,5 h Rühren bei dieser Temperatur
ließ man auf RT abkühlen und neutralisierte mit wenigen
Tropfen konz. HCl. Das Gemisch wurde mit H₂O (50 ml)
verdünnt und mit EtOAc (5 × 100 ml) extrahiert. Die
organischen Phasen wurden über MgSO₄ getrocknet,
filtriert und einrotiert. Der Rückstand wurde einer
Destillation im Hochvakuum (p = 0,1 Torr) unterworfen,
wobei bei 70°C eine Fraktion mit Edukt (12,1 g) erhalten
wurde. Das restliche Rohprodukt wurde durch FC (240 g
SiO₂, Lösemittel: Tol/EtOAc 8 : 1 1400 ml, 7 : 1 1600 ml, 6 : 1
400 ml, 5 : 1 400 ml, 3 : 1 400 ml, 2 : 1 600 ml und 1 : 1 600 ml)
gereinigt. Man erhielt 2-(5-Methoxy-2-nitrophenyl)ethanol
(6,87 g, 48%) als gelbes Öl.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc 1 : 1) 0,43
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 204 (4,00); 231 (3,82); 301 (3,84)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,04 (dd, H-C(4); 6,82 (m, H-C(3), H-C(6)); 3,94 (q, α-CH₂); 3,87 (s, OCH₃); 3,20 (t, β-CH₂); 1,64 (s (br), OH)
Anal. ber. für C₉H₁₁NO₄ (197,19): C 54,82, H 5,62, N 7,10; gef.: C 54,78, H 5,86, N 7,00
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc 1 : 1) 0,43
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 204 (4,00); 231 (3,82); 301 (3,84)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,04 (dd, H-C(4); 6,82 (m, H-C(3), H-C(6)); 3,94 (q, α-CH₂); 3,87 (s, OCH₃); 3,20 (t, β-CH₂); 1,64 (s (br), OH)
Anal. ber. für C₉H₁₁NO₄ (197,19): C 54,82, H 5,62, N 7,10; gef.: C 54,78, H 5,86, N 7,00
Literatur:
[1] T. Morimoto, I. Hashimoto, H. Yamaoka, Chem. Abstr. 1978, 88, 104880 v
[2] Y. Tsuji, S. Kotachi, K.-T. Huh, Y. Watanabe, J. Org. Chem. 1990, 55, 580.
[1] T. Morimoto, I. Hashimoto, H. Yamaoka, Chem. Abstr. 1978, 88, 104880 v
[2] Y. Tsuji, S. Kotachi, K.-T. Huh, Y. Watanabe, J. Org. Chem. 1990, 55, 580.
In eine Lösung von 2-(5-Methoxy-2-nitrophenyl)ethanol
(3,0 g, 15 mmol) in THF (40 ml, dest. über CaH₂) wurde
bei RT unter Rühren Phosgen eingeleitet. Nach 2,5 h
wurden das überschüssige Phosgen sowie das Lösemittel im
Hochvakuum abdestilliert. Man erhielt 2-(5-Methoxy-2-
nitrophenyl)ethoxycarbonylchlorid (3,72 g, 96%) als
gelbes Öl.
Rf (SiO₂, CHCl₃) 0,79
UV (CH₃CN), λmax [nm] (log ε): 222 (Schulter, 3,87), 230 (3,90), 303 (3,87)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,12 (d, H-C(3)); 6,88 (dd, H-C(4)); 6,79 (d, J = 2,8, H-C(6)); 4,63 (t, α-CH₂); 3,89 (s, OCH₃); 3,35 (t, β-CH₂)
Anal. ber. für C₁₀H₁₀ClNO₅ : C 46,26, H 3,88, N 5,39; gef. C 46,42, H 4,00, N 5,50.
Rf (SiO₂, CHCl₃) 0,79
UV (CH₃CN), λmax [nm] (log ε): 222 (Schulter, 3,87), 230 (3,90), 303 (3,87)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,12 (d, H-C(3)); 6,88 (dd, H-C(4)); 6,79 (d, J = 2,8, H-C(6)); 4,63 (t, α-CH₂); 3,89 (s, OCH₃); 3,35 (t, β-CH₂)
Anal. ber. für C₁₀H₁₀ClNO₅ : C 46,26, H 3,88, N 5,39; gef. C 46,42, H 4,00, N 5,50.
Thymidin (150 mg, 0,62 mmol) wurde mit Pyridin (2 ×
5 ml), p. A.-Qualität, zusätzlich über Molsieb 4 Å
getrocknet) koevaporiert, in Pyridin (5 ml, s. o.) gelöst
und auf -30°C (i-PrOH/N₂) gekühlt. Hierzu tropfte man
in 5 min eine Lösung von 2-(5-Methoxy-2-nitrophenyl)
ethoxycarbonylchlorid (250 mg, 0,96 mmol) in CH₂Cl₂
(5 ml, dest. über CaH₂). Nach insgesamt 4 h Rühren unter
i-PrOH/N₂ Kühlung (-30 bis -15°C) wurde das Gemisch mit
CH₂Cl₂ (30 ml) verdünnt und mit H₂O (30 ml) gewaschen.
Die wäßrige Phase wurde mit CH₂Cl₂ (2 × 30 ml)
nachextrahiert. Trocknen der organischen Phasen über
Na₂SO₄, Filtrieren, Abrotieren des Lösemittels und
Koevaporieren mit Toluol (4 × 10 ml) und CH₂Cl₂ (10 ml)
ergaben das Rohprodukt, welches durch FC (SiO₂, 16 × 3
cm, CH₂Cl₂/MeOH 100 : 6 800 ml) gereinigt wurde. Man
erhielt 5 ′-O-(2-(5-Methoxy-2-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)
thymidin (205 mg, 71%) als farblosen Feststoff.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,32
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε) 205 (4,30), 234 (Schulter, 3,94), 270 (4,09), 302 (Schulter, 3,84)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,79 (s, NH); 8,06 (H-C(3)) v. MNPEOC); 7,34 (s, H-C(6) v. Thymin); 6,85 (dd, H-C(4) v. MNPEOC); 6,77 (d, J = 2,7, H-C(6) v. MNPEOC); 6,32 (t, H-C(1′)); 4,43 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. MNPEOC); 4,12 (q, H-C(4′)); 3,85 (s, OCH₃); 3,33 (m, β-CH₂ v. MNPEOC); 2,75 (d, OH-C(3′)); 2,38 (m, H-C(2¹)); 2,18 (m, H-C(2′)); 1,83 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₂₀H₂₃N₃0₁₀ (465,42): C 51,61, H 4,98, N 9,03; gef.: C 51,31, H 5,09, N 8,63.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,32
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε) 205 (4,30), 234 (Schulter, 3,94), 270 (4,09), 302 (Schulter, 3,84)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,79 (s, NH); 8,06 (H-C(3)) v. MNPEOC); 7,34 (s, H-C(6) v. Thymin); 6,85 (dd, H-C(4) v. MNPEOC); 6,77 (d, J = 2,7, H-C(6) v. MNPEOC); 6,32 (t, H-C(1′)); 4,43 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. MNPEOC); 4,12 (q, H-C(4′)); 3,85 (s, OCH₃); 3,33 (m, β-CH₂ v. MNPEOC); 2,75 (d, OH-C(3′)); 2,38 (m, H-C(2¹)); 2,18 (m, H-C(2′)); 1,83 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₂₀H₂₃N₃0₁₀ (465,42): C 51,61, H 4,98, N 9,03; gef.: C 51,31, H 5,09, N 8,63.
Zu einem Gemisch von 2,4-Dichlor-6-nitrotoluol (1,03 g,
5 mmol) und Paraformaldehyd (150 mg, 5 mmol) in DMSO
(2,5 ml, z. S.-Qualität, zusätzlich 2 d über Molsieb
4 Å getrocknet) wurde eine Lösung von
Kaliumtertiärbutylat (90 mg, 0,8 mmol) in tert.-Butanol
(1 ml, z. S.-Qualität, 99%) gegeben. Nach der Zugabe der
Kaliumtertiärbutylat-Lösung trat ein Farbumschlag von
gelb nach tief-violett ein. Es wurde 5 min bei RT und 30
min bei 70 bis 80°C (Ölbadtemperatur) gerührt. Danach
ließ man auf RT abkühlen und neutralisierte mit wenigen
Tropfen konz. HCl. Das Gemisch wurde mit EtOAc (30 ml)
verdünnt und mit H₂O (30 ml) gewaschen. Die wäßrige Phase
wurde mit EtOAc (2 × 30 ml) nachextrahiert. Trocknen der
organischen Phasen über Na₂SO₄, Filtrieren und Abrotieren
des Lösemittels ergaben das Rohprodukt, welches durch FC
(20 g SiO₂, 12 × 2 cm, Lösemittel: PE 30 ml, PE/EtOAc
10 : 1 110 ml, 9 : 1 100 ml, 8 : 1 360 ml, 7 : 1 80 ml) gereinigt
wurde. Man erhielt 2-(2,4-Dichlor-6-nitrophenyl)ethanol
(769 mg, 65%) als gelben Feststoff.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc 9 : 1) 0,41
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (4,32), 218 (4,20), 254 (Schulter, 3,40), 292 (3,08)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,73 (d, J = 2,0, 1 arom. H); 7,65 (d, J = 2,0, 1 arom. H); 3,92 (m, α-CH₂); 3,26 (t, β-CH₂); 1,70 (s (br), OH)
Anal. Ber. für C₈H₇Cl₂NO₃ (236,054): C 40,71, H 2,99, N 5,93; gef.: C 40,36, H 2,96, N 5,85.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc 9 : 1) 0,41
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (4,32), 218 (4,20), 254 (Schulter, 3,40), 292 (3,08)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,73 (d, J = 2,0, 1 arom. H); 7,65 (d, J = 2,0, 1 arom. H); 3,92 (m, α-CH₂); 3,26 (t, β-CH₂); 1,70 (s (br), OH)
Anal. Ber. für C₈H₇Cl₂NO₃ (236,054): C 40,71, H 2,99, N 5,93; gef.: C 40,36, H 2,96, N 5,85.
Zu einer auf 0°C gekühlten Lösung von
Chlorameisensäuretrichlormethylester (503 mg, 2,5 mmol)
in THF (5 ml, dest. über CaH₂) wurde in 5 min eine Lösung
von 2-(2,4-Dichlor-6-nitrophenyl)ethanol (500 mg, 2,12
mmol) und Et₃N (214 mg, 2,12 mmol, dest. über KOH) in THF
(5 ml, s. o.) zugespritzt. Man ließ 1 h unter
Eisbadkühlung und 2 h bei RT rühren. Das Gemisch wurde
dann über Celite filtriert. Nachwaschen mit THF und
Abdestillieren des Lösemittels und des überschüssigen
Reagenses bei 30°C im Hochvakuum ergaben 2-(2,4-Dichlor-
6-nitrophenyl)ethoxycarbonylchlorid (597 mg, 94%) als
hellgelben Feststoff.
Rf (SiO₂, PE/EtOAc 19 : 1) 0,57
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 204 (4,35), 217 (4,25), 252 (Schulter, 3,47), 295 (3,10)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,82 (d, J = 1,8, 1 arom. H); 7,70 (d, J = 1,8, 1 arom. H); 4,59 (t, α-CH₂); 3,42 (t, β-CH₂
Anal. ber. für C₉H₆Cl₃NO₄ (298,509): C 36,21, H 2,03, N 4,69; gef.: C 36,37, H 2,30, N 4,60.
Rf (SiO₂, PE/EtOAc 19 : 1) 0,57
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 204 (4,35), 217 (4,25), 252 (Schulter, 3,47), 295 (3,10)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,82 (d, J = 1,8, 1 arom. H); 7,70 (d, J = 1,8, 1 arom. H); 4,59 (t, α-CH₂); 3,42 (t, β-CH₂
Anal. ber. für C₉H₆Cl₃NO₄ (298,509): C 36,21, H 2,03, N 4,69; gef.: C 36,37, H 2,30, N 4,60.
Thymidin (200 mg, 0,83 mmol) wurde mit Pyridin (3 × 3 ml,
p. A.-Qualität, zusätzlich über Molsieb 4 Å getrocknet)
koevaporiert, in Pyridin (3 ml, s. o.) gelöst und auf
-60°C (iPrOH/N₂) gekühlt. Hierzu tropfte man in 15 min
eine Lösung von 2-(2,4-Dichlor-6-nitrophenyl)
ethoxycarbonylchlorid (320 mg, 1,07 mmol) in CH₂Cl₂
(3 ml, dest. über CaH₂). Nach insgesamt 6 h Rühren unter
i-PrOH/N₂ Kühlung (-60°C bis -15°C) wurde das Gemisch
mit CH₂Cl₂ (10 ml) verdünnt und mit H₂O (10 ml)
gewaschen. Die wäßrige Phase wurde mit CH₂Cl₂ (2 × 10 ml)
nachextrahiert. Trocknen der organischen Phasen über
Na₂SO₄, Filtrieren, Abrotieren des Lösemittels und
Koevaporieren mit Toluol (4 × 10 ml) ergaben das
Rohprodukt (543 mg), welches durch FC (20 g SiO₂,
12,5 × 2,1 cm, Lösemittel: CH₂Cl₂/MeOH 100 : 1 50 ml, 100 : 2
204 ml, 100 : 3 360 ml) gereinigt wurde. Man eluierte
zuerst 3′,5′-Bis-O-(2-(2,4-Dichlor-6-nitrophenyl)
ethoxycarbonyl)thymidin, dann 3′-O-(2-(2,4-Dichlor-6-
nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin und 5′-O-(2-(2,4-
Dichlor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin. Die
Produktfraktionen wurden einrotiert und im Hochvakuum
getrocknet. Man erhielt 3′,5′-Bis-O-(2-(2,4-Dichlor-6-
nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin (53 mg, 8%) als
hellgelben Schaum sowie 3′-O-(2-(2,4-Dichlor-6-nitro
phenyl)ethoxycarbonyl)thymidin (14 mg, 3%) und 5′-O-(2-
(2,4-Dichlor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin (339
mg, 81%) jeweils als farblosen Schaum.
5′-O-(2-(2,4-Dichlor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl) thymidin:
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,40
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 203 (4,51), 214 (Schulter, 4,38), 263 (4,02), 304 (Schulter, 3,06)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,91 (s, NH); 7,75 (d, J = 2,1, 1 arom. H v. DCNPEOC); 7,68 (d, J = 2,1, 1 arom. H v. DCNPEOC); 7,37 (s, H-C(6) v. Thymin); 6,37 (t, H-C(1′)); 4,63 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. DClNPEOC); 4,16 (m, H-C(4′)); 3,40 (t, β-CH₂ v. DClNPEOC); 2,86 (d, OH-C(3′)); 2,42 (m, H-C(2′)); 2,24 (m, H-C(2′)); 1,89 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₁₉H₁₉Cl₂N₃O₉ (504,279): C 45,25, H 3,80, N 8,33, gef.: C 45,02, H 3,89, N 8,04.
5′-O-(2-(2,4-Dichlor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl) thymidin:
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,40
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 203 (4,51), 214 (Schulter, 4,38), 263 (4,02), 304 (Schulter, 3,06)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,91 (s, NH); 7,75 (d, J = 2,1, 1 arom. H v. DCNPEOC); 7,68 (d, J = 2,1, 1 arom. H v. DCNPEOC); 7,37 (s, H-C(6) v. Thymin); 6,37 (t, H-C(1′)); 4,63 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. DClNPEOC); 4,16 (m, H-C(4′)); 3,40 (t, β-CH₂ v. DClNPEOC); 2,86 (d, OH-C(3′)); 2,42 (m, H-C(2′)); 2,24 (m, H-C(2′)); 1,89 (s, CH₃)
Anal. ber. für C₁₉H₁₉Cl₂N₃O₉ (504,279): C 45,25, H 3,80, N 8,33, gef.: C 45,02, H 3,89, N 8,04.
Zu einer auf -10°C (Viehsalz/Eis) gekühlten Mischung aus
Homoveratrylalkohol (3,02 g, 16,6 mmol) in Eisessig
(30 ml) wurde in 6 min unter Rühren konz. HNO₃ (4,8 ml,
65%, d = 1,4) zugetropft. Anschließend ließ man in 30
min auf 23°C erwärmen. Nach 1 h Rühren bei dieser
Temperatur wurde das Gemisch mit H₂O (30 ml) verdünnt,
mit NaHCO₃ neutralisiert und mit EtOAc (3 × 30 ml)
extrahiert. Die vereinigten organischen Phasen wurden
über Na₂SO₄ getrocknet, filtriert und einrotiert. Der
Rückstand (3,25 g) wurde durch FC (90 g SiO₂ Toluol/EtOAc
4 : 1 500 ml, Toluol/EtOAc 3 : 1 400 ml, Toluol/EtOAc 2 : 1 300
ml) gereinigt. Man erhielt 2-(4,5-Dimethoxy-2-nitro
phenyl)ethanol (2,13 g, 56%) als gelben Feststoff.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc 2 : 1) 0,24
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 202 (4,18), 216 (4,06), 242 (3,97), 297 (3,63), 340 (3,70)
¹H-NMR-Spektrum (250 MHz, CDCl₃): 7,61 (s, H-C(3)); 6,80 (s, H-C(6)); 3,97 (s, OCH₃); 3,96 (m, α-CH₂, versteckt); 3,95 (s, OCH₃); 3,21 (t, β-CH₂), 1,70 (s (br), OH)
Anal. ber. für C₁₀H₁₃NO₅ (227,216): C 52,86, H 5,77, N 6,16; gef.: C 52,87, H 5,82, N 6,12
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc 2 : 1) 0,24
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 202 (4,18), 216 (4,06), 242 (3,97), 297 (3,63), 340 (3,70)
¹H-NMR-Spektrum (250 MHz, CDCl₃): 7,61 (s, H-C(3)); 6,80 (s, H-C(6)); 3,97 (s, OCH₃); 3,96 (m, α-CH₂, versteckt); 3,95 (s, OCH₃); 3,21 (t, β-CH₂), 1,70 (s (br), OH)
Anal. ber. für C₁₀H₁₃NO₅ (227,216): C 52,86, H 5,77, N 6,16; gef.: C 52,87, H 5,82, N 6,12
Literatur
[1] E. McDonald, R. D. Wylie, Tetrahedron 1979, 35, 1415.
[1] E. McDonald, R. D. Wylie, Tetrahedron 1979, 35, 1415.
Chlorameisensäuretrichlormethylester (0,26 ml, 2,2 mmol)
in THF (5 ml, dest. über CaH₂) wurde mittels eines
Eisbades auf 0°C gekühlt. Hierzu tropfte man in 10 min
eine Lösung von 2-(4,5-Dimethoxy-2-nitrophenyl)ethanol
(500 mg, 2,2 mmol) und Et₃N (218 mg, 0,3 ml, 2,2 mmol,
dest. über CaH₂) in THF (15 ml, dest. über CaH₂)
Anschließend entfernte man das Eisbad und ließ bei RT
weiterrühren. Nach 30 min Rühren versetzte man die
Reaktionsmischung mit einer Spatelspitze Aktivkohle. Das
Reaktionsgemisch wurde nach weiteren 2,5 h Rühren bei RT
über Celite abgesaugt. Man destillierte das Lösemittel
sowie überschüssiges Reagens im Hochvakuum ab und erhielt
2-(4,5-Dimethoxy-2-nitrophenyl)ethoxycarbonylchlorid (624
mg, 98%) als gelbbraunen Feststoff.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc 2 : 1) 0,77
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 203 (4,18), 217 (4,08), 242 (4,01), 297 (3,67), 339 (3,73)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,67 (s, H-C(3)); 6,74 (s, H-C(6)); 4,66 (t, α-CH₂); 3,99 (s, OCH₃); 3,96 (s, OCH₃); 3,36 (t, β-CH₂)
Anal. ber. für C₁₁H₁₂NO₆Cl (289,671): C 45,61, H 4,18, N 4,84; gef.: C 45,59, H 4,26, N 4,94.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc 2 : 1) 0,77
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 203 (4,18), 217 (4,08), 242 (4,01), 297 (3,67), 339 (3,73)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,67 (s, H-C(3)); 6,74 (s, H-C(6)); 4,66 (t, α-CH₂); 3,99 (s, OCH₃); 3,96 (s, OCH₃); 3,36 (t, β-CH₂)
Anal. ber. für C₁₁H₁₂NO₆Cl (289,671): C 45,61, H 4,18, N 4,84; gef.: C 45,59, H 4,26, N 4,94.
Thymidin (200 mg, 0,83 mmol) wurde mit Pyridin (2 × 2 ml,
p. A.-Qualität, zusätzlich über Molsieb 4 Å getrocknet)
koevaporiert, in Pyridin (2,4 ml, s. o.) gelöst und auf
-60°C (iPrOH/N₂) gekühlt. Hierzu tropfte man in 15 min
eine Lösung von 2-(4,5-Dimethoxy-2-nitrophenyl)
ethoxycarbonylchlorid (361 mg, 1,25 mmol) in CH₂Cl₂
(2,4 ml, dest. über CaH₂). Nach insgesamt 6,5 h Rühren
unter i-PrOH/N₂ Kühlung (-40 bis -15°C) wurde das
Gemisch mit CH₂Cl₂ (10 ml) verdünnt und mit H₂O (10 ml)
gewaschen. Die wäßrige Phase wurde mit CH₂Cl₂ (2 × 10 ml)
nachextrahiert. Trocknen der organischen Phasen über
Na₂SO₄, Filtrieren, Abrotieren des Lösemittels und
Koevaporieren mit Toluol (4 × 20 ml) ergaben das
Rohprodukt (530 mg), welches durch FC (20 g SiO₂,
CH₂Cl₂/MeOH 100 : 3 309 ml, 100 : 4 104 ml, 100 : 5 160 ml)
gereinigt wurde. Man eluierte zuerst 3′,5′-Bis-O-(2-
(4,5-Dimethoxy-2-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin
und dann 5′-O-(2-(4,5-Dimethoxy-2-nitrophenyl)
ethoxycarbonyl)thymidin. Die Produktfraktionen wurden
einrotiert und im Hochvakuum getrocknet. Man erhielt
3′,5′-Bis-O-(2-(4,5-Dimethoxy-2-nitrophenyl)
ethoxycarbonyl)thymidin (154 mg, 25%) als hellgelben
Schaum und 5′-O-(2-(4,5-Dimethoxy-2-nitrophenyl)
ethoxycarbonyl)thymidin (272 mg, 66%) als hellgelben
Feststoff.
5′-O-(2-(4,5-Dimethoxy-2-nitrophenyl)ethoxycarbonyl) thymidin:
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,23
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 203 (4,33), 212 (Schulter, 4,30), 247 (4,13), 267 (4,03), 343 (3,69)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 9,10 (s, NH); 7,62 (s, H-C(3)); 7,37 (d, J = 1,2, H-C(6) v. Thymin); 6,73 (s, H-C(6)); 6,35 (t, H-C(1′)); 4,44 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. DMNPEOC); 4,15 (m, H-C(4′)); 3,96 (s, OCH₃); 3,94 (s, OCH₃); 3,33 (dt, β-CH₂ v. DMNPEOC); 3,06 (s (br), OH-C(3′)); 2,42 (m, H-C(2′)); 2,20 (m, H-C(2′)); 1,88 (d, J = 0,9, CH₃)
Anal. ber. für C₂₁H₂₅N₃O₁₁ (495,441): C 50,91, H 5,09, N 8,48, gef.: C 50,94, H 5,09, N 8,32.
5′-O-(2-(4,5-Dimethoxy-2-nitrophenyl)ethoxycarbonyl) thymidin:
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,23
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 203 (4,33), 212 (Schulter, 4,30), 247 (4,13), 267 (4,03), 343 (3,69)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 9,10 (s, NH); 7,62 (s, H-C(3)); 7,37 (d, J = 1,2, H-C(6) v. Thymin); 6,73 (s, H-C(6)); 6,35 (t, H-C(1′)); 4,44 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. DMNPEOC); 4,15 (m, H-C(4′)); 3,96 (s, OCH₃); 3,94 (s, OCH₃); 3,33 (dt, β-CH₂ v. DMNPEOC); 3,06 (s (br), OH-C(3′)); 2,42 (m, H-C(2′)); 2,20 (m, H-C(2′)); 1,88 (d, J = 0,9, CH₃)
Anal. ber. für C₂₁H₂₅N₃O₁₁ (495,441): C 50,91, H 5,09, N 8,48, gef.: C 50,94, H 5,09, N 8,32.
Zu 2-Nitroethylbenzol (3,02 g, 20 mmol) und
Paraformaldehyd (600 mg, 20 mmol) in DMSO (10 ml, z.S.-
Qualität, zusätzlich 2 d über Molsieb 4 Å getrocknet)
wurde eine Lösung von Kaliumtertiärbutylat (360 mg, 3,2
mmol) in tert.-Butanol (4 ml, dest. über CaH₂) gegeben.
Es wurde 15 min bei RT und 1 h 45 min bei 70°C
(Ölbadtemperatur) gerührt. Danach ließ man auf RT
abkühlen und neutralisierte mit wenigen Tropfen konz.
HCl. Das Gemisch wurde mit EtOAc (100 ml) verdünnt und
mit ges. NaCl-Lsg. (60 ml) gewaschen. Die wäßrige Phase
wurde mit EtOAc (2 × 100 ml) nachextrahiert. Trocknen der
organischen Phasen über Na₂SO₄, Filtrieren und Abrotieren
des Lösemittels ergaben das Rohprodukt (5,06 g), welches
durch FC (80 g SiO₂, 19 × 3,4 cm, Lösemittel: Toluol 150
ml, Toluol/EtOAc 8 : 1 270 ml, 7 : 1 240 ml, 6 : 1 280 ml, 5 : 1
180 ml) gereinigt wurde. Man erhielt 2-(2-Nitrophenyl)
propanol (2,539 g, 70%) als hellgelbes Öl.
Rf(SiO2,Toluol/EtOAc 9 : 1) 0,25
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 206 (4,08), 220 (Schulter, 3.75), 254 (3,53), 285 (Schulter, 3,27)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,75 (dd; J = 1,2, 8,1, 1 arom. H, ortho zu NO₂); 7,55 (m, 2 arom. H); 7,36 (m, 1 arom. H); 3,80 (m, α-CH₂); 3,52 (sextett, β-CH); 1,67 (s (br), OH); 1,33 (d, J = 6,9, CH₃)
Anal. ber. für C₉H₁₁NO₃ (181,191): C 59,66, H 6,12, N 7,73; gef.: C 59,55, H 6,12, N 7,90
Rf(SiO2,Toluol/EtOAc 9 : 1) 0,25
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 206 (4,08), 220 (Schulter, 3.75), 254 (3,53), 285 (Schulter, 3,27)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,75 (dd; J = 1,2, 8,1, 1 arom. H, ortho zu NO₂); 7,55 (m, 2 arom. H); 7,36 (m, 1 arom. H); 3,80 (m, α-CH₂); 3,52 (sextett, β-CH); 1,67 (s (br), OH); 1,33 (d, J = 6,9, CH₃)
Anal. ber. für C₉H₁₁NO₃ (181,191): C 59,66, H 6,12, N 7,73; gef.: C 59,55, H 6,12, N 7,90
Literatur:
[1) J. Org. Chem. 1986, 3143
[2] Chem. Abstr. 1989, 110, P 75032 k.
[1) J. Org. Chem. 1986, 3143
[2] Chem. Abstr. 1989, 110, P 75032 k.
Zu einer auf 0°C gekühlten Lösung von Chlorameisensäure
trichlormethylester (655 mg, 3,3 mmol) in THF (6,75 ml,
dest. über CaH₂) wurde in 5 min eine Lösung von
2-(2-Nitrophenyl)propanol (500 mg, 2,76 mmol) und Et₃N
(279 mg, 0,385 ml, 2,76 mmol, dest. über KOH) in THF
(6,75 ml, s. o.) zugespritzt. Man ließ 1 h unter
Eisbadkühlung und 1 h bei RT rühren. Das Gemisch wurde
über Celite filtriert. Nachwaschen mit THF und
Abdestillieren des Lösemittels sowie des überschüssigen
Reagenses bei 30°C im Hochvakuum ergaben 2-(2-Nitro
phenyl)propoxycarbonylchlorid (644 mg, 96%) als
hellbraunes Öl.
Rf(SiO2,PE/EtOAc 19 : 1) 0,24
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (4,07); 218 (Schulter, 3,75), 251 (3,59),
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,84 (dd, J = 1,2, 8,0, 1 arom. H, ortho zu NO₂); 7,62 (m, 1 arom. H); 7,44 (m, 2 arom. H); 4,50 (d, J = 6,3, α-CH₂); 3,80 (sextett β-CH₂); 1,42 (d, J = 7,0, CH₃
Anal. ber. für C₁₀H₁₀ClNO₄ (243,646): C 49,30, H 4,14, N 5,75; gef.: C 49,71, H 4,32, N 5,70.
Rf(SiO2,PE/EtOAc 19 : 1) 0,24
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (4,07); 218 (Schulter, 3,75), 251 (3,59),
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,84 (dd, J = 1,2, 8,0, 1 arom. H, ortho zu NO₂); 7,62 (m, 1 arom. H); 7,44 (m, 2 arom. H); 4,50 (d, J = 6,3, α-CH₂); 3,80 (sextett β-CH₂); 1,42 (d, J = 7,0, CH₃
Anal. ber. für C₁₀H₁₀ClNO₄ (243,646): C 49,30, H 4,14, N 5,75; gef.: C 49,71, H 4,32, N 5,70.
Thymidin (1 g, 4,1 mmol) wurde mit Pyridin (3 × 15 ml, p.
A.-Qualität, zusätzlich über Molsieb 4 Å getrocknet)
koevaporiert, in Pyridin (15 ml, s. o.) gelöst und auf
-60°C (i-PrOH/N₂) gekühlt. Hierzu tropfte man in 30 min
eine Lösung von 2-(2-Nitrophenyl)propoxycarbonylchlorid
(1,31 g, 5,38 mmol) in CH₂Cl₂ (18 ml, dest. über CaH₂).
Man ließ weitere 6 h unter i-PrOH/N₂ Kühlung (-60 bis
-20°C) rühren. Die Reaktionsmischung wurde mit CH₂Cl₂
(50 ml) verdünnt und mit H₂O (50 ml) gewaschen. Die
wäßrige Phase wurde mit CH₂Cl₂ (3 × 50 ml)
nachextrahiert. Trocknen der organischen Phasen über
Na₂SO₄, Filtrieren, Abrotieren des Lösemittels und
Koevaporieren mit Toluol (4 × 15 ml) ergaben das
Rohprodukt (2,22 g), welches durch FC (80 g SiO₂, 19 ×
3,4 cm, Lösemittel: CH₂Cl₂/MeOH 100 : 1 101 ml, 100 : 2 204
ml, 100 : 3 206 ml, 100 : 3,5 207 ml, 100 : 4 520 ml, 100 : 5 53
ml, 100 : 6 53 ml) gereinigt wurde. Man eluierte zuerst
3′,5′-Bis-O-(2-(2-Nitrophenyl)propoxycarbonyl)thymidin,
dann 3′-O-(2-(2-Nitrophenyl)propoxycarbonyl)thymidin und
zuletzt 5′-O-(2-(2-Nitrophenyl)propoxycarbonyl)thymidin.
Nach Einrotieren der Produktfraktionen und Trocknen im
Hochvakuum erhielt man 3′,5′-Bis-O-(2-(2-Nitrophenyl)
propoxycarbonyl)thymidin (145 mg, 5%) als hellgelben
Schaum sowie 3′-O-(2-(2-Nitrophenyl)propoxycarbonyl)
thymidin (71 mg, 4%) und 5′-O-(2-(2-Nitro-phenyl)
propoxycarbonyl)thymidin (1,307 g, 71%) jeweils als
farblosen Schaum.
5′-O-(2-(2-Nitrophenyl)propoxycarbonyl)thymidin:
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,43
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 207 (4,30), 263 (4,07)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,66 (s, NH, Diastereomer); 8,64 (s, NH, Diastereomer); 7,77 (m, 1 arom. H v. NPPOC); 7,59 (t, 1 arom. H v. NPPOC); 7,43 (m, 2 arom. H v. NPPOC); 7,33 (s, H-C(6) v. Thymin, Diastereomer); 7,30 (s, H-C(6) v. Thymin, Diastereomer); 6,34 (t, H-C(1′), Diastereomer); 6,32 (t, H-C(1′), Diastereomer); 4,29 (m, H-C(3′), H-C(4′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. NPPOC); 3,80 (m, β-CH v. NPPOC); 2,62 (d, J = 4,2, OH- C(3′), Diastereomer); 2,60 (d, J = 4,4, OH-C(3′), Diastereomer); 2,39 (m, H-C(2′)); 2,18 (m, H-C(2′)); 1,86 (s, CH₃ v. Thymin, Diastereomer); 1,75 (s, CH₃ v. Thymin, Diastereomer); 1,38 (d, J = 7,0, CH₃ v. NPPOC, Diastereomer); 1,37 (d, J = 7,0, CH₃ v. NPPOC, Diastereomer)
Anal. ber. für C₂₀H₂₃ N₃ O₉ (449,416): C 53,45, H 5,16, N 9,35; gef.: C 53,14, H 5,21, N 9,16.
5′-O-(2-(2-Nitrophenyl)propoxycarbonyl)thymidin:
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,43
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 207 (4,30), 263 (4,07)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,66 (s, NH, Diastereomer); 8,64 (s, NH, Diastereomer); 7,77 (m, 1 arom. H v. NPPOC); 7,59 (t, 1 arom. H v. NPPOC); 7,43 (m, 2 arom. H v. NPPOC); 7,33 (s, H-C(6) v. Thymin, Diastereomer); 7,30 (s, H-C(6) v. Thymin, Diastereomer); 6,34 (t, H-C(1′), Diastereomer); 6,32 (t, H-C(1′), Diastereomer); 4,29 (m, H-C(3′), H-C(4′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. NPPOC); 3,80 (m, β-CH v. NPPOC); 2,62 (d, J = 4,2, OH- C(3′), Diastereomer); 2,60 (d, J = 4,4, OH-C(3′), Diastereomer); 2,39 (m, H-C(2′)); 2,18 (m, H-C(2′)); 1,86 (s, CH₃ v. Thymin, Diastereomer); 1,75 (s, CH₃ v. Thymin, Diastereomer); 1,38 (d, J = 7,0, CH₃ v. NPPOC, Diastereomer); 1,37 (d, J = 7,0, CH₃ v. NPPOC, Diastereomer)
Anal. ber. für C₂₀H₂₃ N₃ O₉ (449,416): C 53,45, H 5,16, N 9,35; gef.: C 53,14, H 5,21, N 9,16.
Eine Lösung von 2-Nitrobenzylchlorid (4,3 g, 25 mmol) in
DMSO (3,5 ml, z. S.-Qualität, zusätzlich 2 d über Molsieb
4 Å getrocknet) wurde mit Paraformaldehyd (750 mg, 25
mmol) und DBU (0,5 ml, 3,3 mmol) versetzt und bei RT 20
min gerührt. Der pH-Wert der Reaktionsmischung wurde mit
wenigen Tropfen konz. AcOH auf etwa pH 3 eingestellt. Das
Gemisch wurde mit CH₂Cl₂ (120 ml) verdünnt, mit H₂O
gewaschen (80 ml) und mit CH₂Cl₂ (2 × 100 ml)
nachextrahiert. Die organischen Phasen wurden über Na₂SO₄
getrocknet, filtriert und einrotiert. Das Rohprodukt
(5,543 g) wurde durch FC (150 g SiO₂, 22 × 4,1 cm,
Lösemittel Toluol 150 ml, Toluol/EtOAc 25 : 1 260 ml, 15 : 1
320 ml, 10 : 1 330 ml, 5 : 1 720 ml, 4 : 1 250 ml) gereinigt.
Man eluierte zuerst das Edukt (2,587 g, 60%), dann eine
Mischfraktion (267 mg) und zuletzt 2-Chlor-2-(2-nitro
phenyl)ethanol (1,178 g, 23% bzw. 61% bezüglich des
umgesetzten Edukts). Die erhaltene Mischfraktion (267 mg)
wurde durch eine weitere FC (8 g SiO₂, 15 × 1,2 cm;
Lösemittel: Toluol 50 ml, Toluol/EtOAc 100 : 1 50 ml)
gereinigt. Es wurde zuerst weiteres Edukt (44 mg, 1%)
und dann 2-Nitrostyrolepoxid (68 mg, 2% bzw. 4% bzgl.
des umgesetzten Edukts) eluiert. Die Gesamtmenge an
zurückisoliertem Edukt betrug 2,631 g (61%).
2-Chlor-2-(2-nitrophenyl)ethanol (gelber Feststoff):
Rf (SiO₂, CH₂Cl₂) 0,23
Schmelzpunkt: 49 bis 50°C
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 209 (4,11), 254 (3,64), 332 (Schulter, 2,70)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,94 (dd, J = 1,3, 8,3, 1 arom. H); 7,89 (dd, J = 1,3, 7,9, 1 arom. H); 7,69 (m, 1 arom. H); 7,51 (m, 1 arom. H); 5,73 (dd, J = 4,6, 6,8, β-CH); 4,11 (dd, J = 4,6, 12,1, α-CH); 4,00 (dd, J = 6,8, 12,0, β-CH); 2,14 (s, OH)
¹H-NMR (250 MHz, DMSO-d₆): 7,94 (dd, J = 1,2, 8,1, 1 arom. H); 7,86 (dd, J = 1,5, 7,9, 1 arom. H); 7,77 (dt, J = 1,2, 7,4, 1 arom. H); 7,60 (dt, J = 1,6, 8,3, 1 arom. H); 5,43 (t, J = 6,4, β-CH; s (br), teilweise versteckt, OH), 3,86 (d, J = 6,4, α-CH₂)
Anal. ber. für C₈H₈ClNO₃ (201,609): C 47,66, H 4,00, N 6,95; gef.: C 48,01, H 4,11, N 7,00.
2-Chlor-2-(2-nitrophenyl)ethanol (gelber Feststoff):
Rf (SiO₂, CH₂Cl₂) 0,23
Schmelzpunkt: 49 bis 50°C
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 209 (4,11), 254 (3,64), 332 (Schulter, 2,70)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 7,94 (dd, J = 1,3, 8,3, 1 arom. H); 7,89 (dd, J = 1,3, 7,9, 1 arom. H); 7,69 (m, 1 arom. H); 7,51 (m, 1 arom. H); 5,73 (dd, J = 4,6, 6,8, β-CH); 4,11 (dd, J = 4,6, 12,1, α-CH); 4,00 (dd, J = 6,8, 12,0, β-CH); 2,14 (s, OH)
¹H-NMR (250 MHz, DMSO-d₆): 7,94 (dd, J = 1,2, 8,1, 1 arom. H); 7,86 (dd, J = 1,5, 7,9, 1 arom. H); 7,77 (dt, J = 1,2, 7,4, 1 arom. H); 7,60 (dt, J = 1,6, 8,3, 1 arom. H); 5,43 (t, J = 6,4, β-CH; s (br), teilweise versteckt, OH), 3,86 (d, J = 6,4, α-CH₂)
Anal. ber. für C₈H₈ClNO₃ (201,609): C 47,66, H 4,00, N 6,95; gef.: C 48,01, H 4,11, N 7,00.
Eine Lösung von Diphosgen (1,7 ml, 14 mmol) in THF (10
ml, dest. über CaH₂) wurde mittels eines Eisbades auf
etwa 0°C gekühlt. Hierzu wurde eine Lösung von 2-Chlor-
2-(2-nitrophenyl)ethanol (705 mg, 3,5 mmol) und Et₃N (354
mg, 0,485 ml, 3,5 mmol) in THF (10 ml, dest. über CaH₂)
in ca. 30 min gespritzt. Nach einer weiteren Stunde
Rühren wurde das Eisbad entfernt. Man ließ noch 3 h bei
RT rühren. Das Gemisch wurde über Celite abfiltriert. Der
Niederschlag wurde mit THF (10 ml, dest. über CaH₂)
nachgewaschen. Die vereinigten Filtrate wurden einrotiert
und anschließend im Hochvakuum bei RT getrocknet. Man
erhielt 2-Chlor-2-(2-nitrophenyl)ethoxycarbonylchlorid
(896 mg, 97%) als hellbraunes Öl.
Rf(SiO₂, CH₂Cl₂) 0,82
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 208 (4.11); 253 (3,66)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,01 (dd, J = 1,1, 8,1, 1 arom. H); 7,93 (dd, J = 1,1, 7,9, 1 arom. H); 7,74 (dt, J = 1,1, 8,2, 1 arom. H); 7,57 (m, 1 arom. H); 5,89 (dd, J = 4,9, 6,4, β-CH); 4,80 (dd, J = 6,5, 11,4, α-CH); 4,73 (dd, J = 4,9, 11,5, β-CH)
Anal. ber. für C₉H₇Cl₂NO₄ (264,064): C 40,94, H 2,67, N 5,30; gef.: C 41,39, H 2,89, N 5,38.
Rf(SiO₂, CH₂Cl₂) 0,82
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 208 (4.11); 253 (3,66)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,01 (dd, J = 1,1, 8,1, 1 arom. H); 7,93 (dd, J = 1,1, 7,9, 1 arom. H); 7,74 (dt, J = 1,1, 8,2, 1 arom. H); 7,57 (m, 1 arom. H); 5,89 (dd, J = 4,9, 6,4, β-CH); 4,80 (dd, J = 6,5, 11,4, α-CH); 4,73 (dd, J = 4,9, 11,5, β-CH)
Anal. ber. für C₉H₇Cl₂NO₄ (264,064): C 40,94, H 2,67, N 5,30; gef.: C 41,39, H 2,89, N 5,38.
Thymidin (250 mg, 1,03 mmol) wurde mit Pyridin (2 × 3 ml,
p. A.-Qualität, zusätzlich über Molsieb 4 Å getrocknet)
koevaporiert, in Pyridin (3,5 ml, s. o.) gelöst und auf
ca. -40°C (i-PrOH/N₂) gekühlt. Hierzu wurde in ca. 30
min eine Lösung von 2-Chlor-2-(2-nitrophenyl)ethoxy
carbonylchlorid (356 mg, 1,35 mmol) in CH₂Cl₂ (3,5 ml,
dest. über CaH₂) gespritzt. Man ließ weitere 4 h 45 min
unter i-PrOH/N₂ Kühlung (-40 bis -10°C) rühren. Die
Reaktionsmischung wurde mit H₂O (10 ml) verdünnt und mit
CH₂Cl₂ (4 × 10 ml) extrahiert. Die organischen Phasen
wurden über Na₂SO₄ getrocknet, abfiltriert, einrotiert
und mit Toluol (4 × 10 ml) koevaporiert. Das Rohprodukt
(665 mg) wurde durch FC (20 g SiO₂, 12 × 2,1 cm,
Lösemittel: CH₂Cl₂ 100 ml, CH₂Cl₂/MeOH 100 : 1 101 ml,
100 : 2 102 ml, 100 : 2,5 102 ml, 100 : 3 206 ml, 100 : 4 104 ml,
100 : 5 105 ml) gereinigt. Man eluierte zuerst Bis(2-Chlor-
2-(2-nitro-phenyl)ethyl)carbonat (60 mg, 10%) als gelbes
Öl, anschließend 3′,5′-Bis-O-(2-Chlor-2-(2-nitrophenyl)
ethoxycarbonyl)thymidin (48 mg) als hellgelben Schaum,
dann 3′-O-(2-Chlor-2-(2-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)
thymidin (16 mg, 3%) als farblosen Schaum und zuletzt
5′-O-(2-Chlor-2-(2-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin
(394 mg, 81%) als farblosen Schaum.
5′-O-(2-Chlor-2-(2-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin:
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,34
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 209 (4,34), 262 (4,10)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,37 (s, (br), NH); 7,97 (d, J = 8,1, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,91 (dd, J = 1,0, 7,9, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,72 (t, J = 7,3, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,55 (m, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,34 (m, H-C(6) v. Thymin), 6,35 (dd, J = 4,0, 6,7, H-C(1′), Diastereomer); 6,32 (dd, J = 3,9, 6,5, H-C(1′), Diastereomer); 5,89 (m, β-CH v. CNPEOC); 4,57 (m, α-CH₂ v. CNPEOC), H-C(3′), 2 × H-C(5′)); 4,15 (q, J = 3,2, H-C(4′)); 2,41 (m, H-C(2′)); 2,22 (m, H-C(2′)); 1,90 (s, CH₃ v. Thymin, Diastereomer); 1,86 (s, CH₃ v. Thymin, Diastereomer); 1,61 (s (br), OH-C(3′))
Anal. ber. für C₁₉H₂₀ClN₃O₉ (469,834): C 48,57, H 4,29, N 8,94; gef.: C 48,17, H 4,40, N 8,47
5′-O-(2-Chlor-2-(2-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin:
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,34
UV(MeOH), λmax [nm] (log ε): 209 (4,34), 262 (4,10)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,37 (s, (br), NH); 7,97 (d, J = 8,1, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,91 (dd, J = 1,0, 7,9, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,72 (t, J = 7,3, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,55 (m, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,34 (m, H-C(6) v. Thymin), 6,35 (dd, J = 4,0, 6,7, H-C(1′), Diastereomer); 6,32 (dd, J = 3,9, 6,5, H-C(1′), Diastereomer); 5,89 (m, β-CH v. CNPEOC); 4,57 (m, α-CH₂ v. CNPEOC), H-C(3′), 2 × H-C(5′)); 4,15 (q, J = 3,2, H-C(4′)); 2,41 (m, H-C(2′)); 2,22 (m, H-C(2′)); 1,90 (s, CH₃ v. Thymin, Diastereomer); 1,86 (s, CH₃ v. Thymin, Diastereomer); 1,61 (s (br), OH-C(3′))
Anal. ber. für C₁₉H₂₀ClN₃O₉ (469,834): C 48,57, H 4,29, N 8,94; gef.: C 48,17, H 4,40, N 8,47
Zu einer Lösung von 2-Nitrobenzylmethylether (4,18 g,
25 mmol) in DMSO (3,5 ml, z. S.-Qualität, zusätzlich
2 d über Molsieb 4 Å getrocknet) gab man Paraformaldehyd
(750 mg, 25 mmol) und DBU (1,85 ml, 12,4 mmol) und ließ
bei RT 4 h rühren. Der pH-Wert wurde mit wenigen Tropfen
konz. AcOH von pH 9 auf etwa pH 3,5 eingestellt. Das
Gemisch wurde mit CH₂Cl₂ (120 ml) verdünnt und mit H₂O
(80 ml) gewaschen. Die wäßrige Phase wurde mit CH₂Cl₂
(2 × 80 ml) nachextrahiert. Die vereinigten organischen
Phasen wurden über Na₂SO₄ getrocknet, filtriert und
einrotiert. Das Rohprodukt (5,56 g) wurde durch FC
(140 g SiO₂, 21 × 4,2 cm, Lösemittel: Toluol 300 ml,
Toluol/EtOAc 20 : 1 210 ml, 15 : 1 160 ml, 10 : 1 220 ml, 15 : 2
170 ml, 6 : 1 210 ml, 5 : 1 180 ml, 4 : 1 400 ml, 3 : 1 240 ml,
2 : 1 240 ml) gereinigt. Zuerst wurde 2-Nitrobenzylmethyl
ether (2,442 g, 58%) eluiert und dann 2-Methoxy-2-(2-
nitrophenyl)ethanol (1,696 g, 34% bzw. 82% bezüglich
des umgesetzten Edukts).
2-Methoxy-2-(2-nitrophenyl)ethanol (gelber Feststoff):
Rf (SiO₂, CH₂Cl₂/MeOH 100 : 3) 0,31
Schmelzpunkt: 61 bis 63°C
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 206 (4,09), 256 (3,66)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,00 (m, 1 arom. H); 7,70 (m, 2 arom. H); 7,48 (m, 1 arom. H); 4,95 (dd, J = 3,2, 7,2, β-CH); 3,94 (ddd, J = 3,2, 8,8, 11,8, α-CH); 3,67 (ddd, J = 4,4, 7,2, 11,7, α-CH); 3,31 (s, OCH₃); 2,29 (dd, J = 4,4, 8,8, OH)
Anal. ber. für C₉H₁₁NO₄ (197,19): C 54,82, H 5,62, N 7,10; gef.: C 55,14, H 5,57, N 7,15.
2-Methoxy-2-(2-nitrophenyl)ethanol (gelber Feststoff):
Rf (SiO₂, CH₂Cl₂/MeOH 100 : 3) 0,31
Schmelzpunkt: 61 bis 63°C
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 206 (4,09), 256 (3,66)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,00 (m, 1 arom. H); 7,70 (m, 2 arom. H); 7,48 (m, 1 arom. H); 4,95 (dd, J = 3,2, 7,2, β-CH); 3,94 (ddd, J = 3,2, 8,8, 11,8, α-CH); 3,67 (ddd, J = 4,4, 7,2, 11,7, α-CH); 3,31 (s, OCH₃); 2,29 (dd, J = 4,4, 8,8, OH)
Anal. ber. für C₉H₁₁NO₄ (197,19): C 54,82, H 5,62, N 7,10; gef.: C 55,14, H 5,57, N 7,15.
Zu einer auf 0°C gekühlten Lösung von Diphosgen (1,2 ml,
10 mmol) in THF (15 ml, dest. über CaH₂) wurde in 1 h
eine Lösung von 2-Methoxy-2-(2-nitrophenyl)ethanol
(986 mg, 5 mmol) und Et₃N (506 mg, 0,693 ml, 5 mmol) in
THF (10 ml, dest. über CaH₂) zugespritzt. Nach weiteren
15 min Rühren bei 0°C wurde das Eisbad entfernt. Man
ließ noch 1 h 30 min bei RT rühren. Das Gemisch wurde
über Celite abfiltriert und der Niederschlag wurde mit
THF (30 ml, dest. über CaH₂) nachgewaschen. Die
vereinigten Filtrate wurden einrotiert und im Hochvakuum
bei RT getrocknet. Man erhielt 2-Methoxy-2-(2-nitro
phenyl)ethoxycarbonylchlorid (1,264 g, 97%) als
hellbraunes Öl.
Rf (SiO₂, CH₂Cl₂) 0,73
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (4,12), 253 (3,71), 348 (Schulter, 2,74)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,07 (dd, J = 1,1, 8,2, 1 arom. H); 7,81 (dd, J = 1,6, 7,8, 1 arom. H); 7,73 (dt, J = 1,1, 7,6, 1 arom. H); 7,54 (m, 1 arom. H); 5,13 (dd, J = 3,2, 6,3, β-CH); 4,60 (dd, J = 3,2, 11,2, α-CH); 4,54 (dd, J = 6,4, 11,3, α-CH)
Anal. ber. für C₁₀H₁₀ClNO₅ (259,645): C 46,26, H 3,88, N 5,39; gef.: C 46,74, H 3,88, N 5,40.
Rf (SiO₂, CH₂Cl₂) 0,73
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (4,12), 253 (3,71), 348 (Schulter, 2,74)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,07 (dd, J = 1,1, 8,2, 1 arom. H); 7,81 (dd, J = 1,6, 7,8, 1 arom. H); 7,73 (dt, J = 1,1, 7,6, 1 arom. H); 7,54 (m, 1 arom. H); 5,13 (dd, J = 3,2, 6,3, β-CH); 4,60 (dd, J = 3,2, 11,2, α-CH); 4,54 (dd, J = 6,4, 11,3, α-CH)
Anal. ber. für C₁₀H₁₀ClNO₅ (259,645): C 46,26, H 3,88, N 5,39; gef.: C 46,74, H 3,88, N 5,40.
Thymidin (250 mg, 1,03 mmol) wurde mit Pyridin (2 ×
3 ml, p. A.-Qualität, zusätzlich über Molsieb 4 Å
getrocknet) koevaporiert, in Pyridin (3,5 ml, s. o.)
gelöst und auf ca. -50°C (i-PrOH/N₂) gekühlt. Hierzu
wurde in ca. 1,5 h eine Lösung von 2-Methoxy-2-(2-
nitrophenyl)ethoxycarbonylchlorid (348 mg, 1,34 mmol)
in CH₂Cl₂ (3,5 ml, dest. über CaH₂) gespritzt. Man ließ
weitere 3,5 h unter i-PrOH/N₂ Kühlung (-40 bis -10°C)
rühren. Die Reaktionsmischung wurde mit H₂O (10 ml)
verdünnt und mit CH₂Cl₂ (3 × 10 ml) extrahiert. Die
organischen Phasen wurden über Na₂SO₄ getrocknet,
abfiltriert, einrotiert und mit Toluol (4 × 10 ml)
koevaporiert. Das Rohprodukt (578 mg) wurde durch FC
(20 g SiO₂, 12 × 2,1 cm, Lösemittel: CH₂Cl₂ 100 ml,
CH₂Cl₂/MeOH 100 : 1 202 ml, 100 : 2 102 ml, 100 : 3 103 ml,
100 : 4 104 ml, 100 : 5 105 ml, 100 : 6 106 ml) gereinigt. Man
eluierte zuerst Bis(2-Methoxy-2-(2-nitrophenyl)ethyl)
carbonat (88 mg, 16%) als hellgelben Feststoff und dann
eine Mischfraktion von 3′-O-(2-Methoxy-2-(2-nitrophenyl)
ethoxycarbonyl)thymidin und 5′-O-(2-Methoxy-2-(2-
nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin (323 mg). Die
Mischfraktion wurde durch erneute FC (7 g SiO₂, 13 ×
1,2 cm, Lösemittel: CH₂Cl₂ 30 ml, CH₂Cl₂/MeOH 100 : 1 50
ml, 100 : 2 51 ml, 100 : 2,5 51 ml, 100 : 3 51 ml, 100 : 4 52 ml,
100 : 5 52 ml) gereinigt. Es wurde zuerst 3′-O-(2-Methoxy-
2-(2-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin (11 mg, 2%)
und dann 5′-O-(2-Methoxy-2-(2-nitrophenyl)
ethoxycarbonyl)thymidin (290 mg, 60%) jeweils als
farbloser Schaum eluiert.
5′-O-(2-Methoxy-2-(2-nitrophenyl)ethoxycarbonyl) thymidin:
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,40
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 207 (4,33), 263 (4,12)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,67 (s (br), NH); 8,03 (d, J = 5,0, 1 arom. H v. MNPEOC); 7,78 (m, 1 arom. H v. MNPEOC); 7,70 (t, J = 7,5, 1 arom. H v. MNPEOC); 7,52 (m, 1 arom. H v. MNPEOC); 7,43 (m, H-C(6) v. Thymin); 6,38 (dd, J = 3,8, 6,7, H-C(1′), Diastereomer); 6,35 (dd, J = 3,7, 6,4, H-C(1′), Diastereomer); 5,14 (m, β-CH v. MNPEOC); 4,42 (m, α-CH₂ v. MNPEOC, H-C(3′), 2 × H-C(5′)); 4,15 (q, J = 3,2, H-C(4′)); 3,28 (s, OCH₃, Diastereomer); 3,27 (s, OCH₃, Diastereomer); 2,64 (s (br), OH-C(3′)); 2,42 (m, H-C(2′)); 2,23 (m, H-C(2′)); 1,94 (s, CH₃ v. Thymin, Diastereomer); 1,92 (s, CH₃ v. Thymin, Diastereomer)
Anal. ber. für C₂₀H₂₃N₃O₁₀ (465,415): C 51,51, H 4,98, N 9,03; gef.: C 51,65, H 5,18, N 8,94.
5′-O-(2-Methoxy-2-(2-nitrophenyl)ethoxycarbonyl) thymidin:
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,40
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 207 (4,33), 263 (4,12)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,67 (s (br), NH); 8,03 (d, J = 5,0, 1 arom. H v. MNPEOC); 7,78 (m, 1 arom. H v. MNPEOC); 7,70 (t, J = 7,5, 1 arom. H v. MNPEOC); 7,52 (m, 1 arom. H v. MNPEOC); 7,43 (m, H-C(6) v. Thymin); 6,38 (dd, J = 3,8, 6,7, H-C(1′), Diastereomer); 6,35 (dd, J = 3,7, 6,4, H-C(1′), Diastereomer); 5,14 (m, β-CH v. MNPEOC); 4,42 (m, α-CH₂ v. MNPEOC, H-C(3′), 2 × H-C(5′)); 4,15 (q, J = 3,2, H-C(4′)); 3,28 (s, OCH₃, Diastereomer); 3,27 (s, OCH₃, Diastereomer); 2,64 (s (br), OH-C(3′)); 2,42 (m, H-C(2′)); 2,23 (m, H-C(2′)); 1,94 (s, CH₃ v. Thymin, Diastereomer); 1,92 (s, CH₃ v. Thymin, Diastereomer)
Anal. ber. für C₂₀H₂₃N₃O₁₀ (465,415): C 51,51, H 4,98, N 9,03; gef.: C 51,65, H 5,18, N 8,94.
N⁴-(2-(4-Nitrophenyl)ethoxycarbonyl)-2′-desoxycytidin
(5 g, 11,9 mmol) wurde mit Pyridin (2 × 60 ml, p. A.-
Qualität, zusätzlich über Molsieb 4 Å getrocknet)
koevaporiert, in Pyridin (60 ml, s. o.) gelöst und auf
-60°C (i-PrOH/N₂) gekühlt. Hierzu tropfte man in 75 min
eine Lösung von 2-(2-Chlor-6-nitrophenyl)
ethoxycarbonylchlorid (4,7 g, 17,8 mmol) in CH₂Cl₂
(60 ml, dest. über CaH₂) und ließ 1 h 45 min unter
i-PrOH/N₂ Kühlung (-40 bis -25°C) rühren. Das Gemisch
wurde mit CH₂Cl₂ (150 ml) verdünnt und mit H₂O (100 ml)
gewaschen. Die wäßrigen Phasen wurden mit CH₂Cl₂ (100
ml) nachextrahiert. Trocknen der organ. Phasen über
Na₂SO₄, Filtrieren, Abrotieren des Lösemittels und
Koevaporieren mit Toluol (3 × 50 ml) ergaben das
Rohprodukt (9,8 g), welches durch FC (440 g SiO₂, 32 ×
5,9 cm, Lösemittel: CH₂Cl₂/MeOH 100 : 4) gereinigt wurde.
Man erhielt 5′-O-(2-(2-Chlor-6-nitrophenyl)ethoxy
carbonyl)-N⁴-(2-(4-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)-2′-
desoxycytidin (5,247 g, 68%) als farblosen Schaum.
Rf (SiO₂, CH₂Cl₂/MeOH 5 : 1) 0,82
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (Schulter, 4,56), 211 (4,58), 242 (4,28), 275 (4,17)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,18 (m, 2 arom. H v. NPEOC, ortho zu NO₂); 8,04 (d, H-C(6) v. Cytosin); 8,03 (s (br), NH, teilweise verborgen); 7,73 (dd, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,66 (dd, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,41 (m, 2 arom. H v. NPEOC, meta zu NO₂); 7,37 (t, H-C(4) v. CNPEOC, teilweise verborgen); 7,22 (d, H-C(5) v. Cytosin), 6,34 (t, H-C(1′)); 4,43 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. CNPEOC, α-CH₂ v. NPEOC); 4,26 (m, H-C(4′)); 3,76 (s (br), OH-C(3′)); 3,43 (t, β-CH₂ v. CNPEOC); 3,12 (t, β-CH₂ v. NPEOC); 2,73 (m, H-C(2′)); 2,14 (m, H-C(2′)).
Anal. ber. für C₂₇H₂₆N₅O₁₂Cl (647,981): C 50,05, H 4,04, N 10,81; gef.: C 49,87, H 4,17, N 10,74.
Rf (SiO₂, CH₂Cl₂/MeOH 5 : 1) 0,82
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 205 (Schulter, 4,56), 211 (4,58), 242 (4,28), 275 (4,17)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,18 (m, 2 arom. H v. NPEOC, ortho zu NO₂); 8,04 (d, H-C(6) v. Cytosin); 8,03 (s (br), NH, teilweise verborgen); 7,73 (dd, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,66 (dd, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,41 (m, 2 arom. H v. NPEOC, meta zu NO₂); 7,37 (t, H-C(4) v. CNPEOC, teilweise verborgen); 7,22 (d, H-C(5) v. Cytosin), 6,34 (t, H-C(1′)); 4,43 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. CNPEOC, α-CH₂ v. NPEOC); 4,26 (m, H-C(4′)); 3,76 (s (br), OH-C(3′)); 3,43 (t, β-CH₂ v. CNPEOC); 3,12 (t, β-CH₂ v. NPEOC); 2,73 (m, H-C(2′)); 2,14 (m, H-C(2′)).
Anal. ber. für C₂₇H₂₆N₅O₁₂Cl (647,981): C 50,05, H 4,04, N 10,81; gef.: C 49,87, H 4,17, N 10,74.
N⁶-(2-(4-Nitrophenyl)ethoxycarbonyl)-2′-desoxyadenosin
(5 g, 11,3 mmol) wurde mit Pyridin (2 × 60 ml, p. A.-
Qualität, zusätzlich über Molsieb 4 Å getrocknet)
koevaporiert, in Pyridin (60 ml, s. o.) gelöst und auf
-60°C (i-PrOH/N₂) gekühlt. Hierzu tropfte man in 2 h
eine Lösung von 2-(2-Chlor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl
chlorid (4,17 g, 15,8 mmol) in CH₂Cl₂ (60 ml, dest. über
CaH₂). Nach weiteren 2 h Rühren unter i-PrOH/N₂ Kühlung
(-40 bis -25°C) wurde das Gemisch mit CH₂Cl₂ (150 ml)
verdünnt und mit H₂O (100 ml) gewaschen. Die wäßrigen
Phasen wurden mit CH₂Cl₂ (100 ml) nachextrahiert.
Trocknen der organ. Phasen über Na₂SO₄, Filtrieren,
Abrotieren des Lösemittels und Koevaporieren mit Toluol
(3 × 50 ml) ergaben das Rohprodukt (8,73 g), welches
durch FC (400 g SiO₂, 28 × 5,7 cm, Lösemittel:
CH₂Cl₂/MeOH 100 : 3) gereinigt wurde. Man erhielt 5′-O-(2-
(2-Chlor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)-N⁶-(2-(4-nitro
phenyl)ethoxycarbonyl)-2′-desoxyadenosin (6,318 g, 83%)
als farblosen Schaum.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,33
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 209 (4,67), 266 (4,46)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,71 (s, H-C(8)); 8,53 (s (br), NH, teilweise verborgen), 8,23 (s, H-C(2)); 8,17 (m, 2 arom. H v. NPEOC, ortho zu NO₂); 7,73 (dd, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,65 (dd, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,44 (m, 2 arom. H v. NPEOC, meta zu NO₂); 7,36 (t, H-C(4) v. CNPEOC, teilweise verborgen); 6,54 (t, H-C(1′)); 4,77 (m, H-C(3′)); 4,55 (t, α-CH₂ v. CNPEOC); 4,41 (m, α-CH₂ v. NPEOC, 2 × H-C(5′)); 4,29 (q, H-C(4′)); 3,43 (t, β-CH₂ v. CNPEOC); 3,16 (t, β-CH₂ v. NPEOC); 3,15 (s (br), OH-C(3′), teilweise verborgen); 2,89 (m, H-C(2′)); 2,60 (m, H-C(2′))
Anal. ber. für C₂₈H₂₆N₇O₁₁Cl (672,007): C 50,05, H 3,90, N 14,59; gef.: C 49,62, H 3,96, N 14,33.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,33
UV (MeOH), λmax [nm] (log ε): 209 (4,67), 266 (4,46)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,71 (s, H-C(8)); 8,53 (s (br), NH, teilweise verborgen), 8,23 (s, H-C(2)); 8,17 (m, 2 arom. H v. NPEOC, ortho zu NO₂); 7,73 (dd, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,65 (dd, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,44 (m, 2 arom. H v. NPEOC, meta zu NO₂); 7,36 (t, H-C(4) v. CNPEOC, teilweise verborgen); 6,54 (t, H-C(1′)); 4,77 (m, H-C(3′)); 4,55 (t, α-CH₂ v. CNPEOC); 4,41 (m, α-CH₂ v. NPEOC, 2 × H-C(5′)); 4,29 (q, H-C(4′)); 3,43 (t, β-CH₂ v. CNPEOC); 3,16 (t, β-CH₂ v. NPEOC); 3,15 (s (br), OH-C(3′), teilweise verborgen); 2,89 (m, H-C(2′)); 2,60 (m, H-C(2′))
Anal. ber. für C₂₈H₂₆N₇O₁₁Cl (672,007): C 50,05, H 3,90, N 14,59; gef.: C 49,62, H 3,96, N 14,33.
In einem mit Argon gespülten Kolben wurden 5′-O-(2-(2-
Chlor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin (1,9 g, 4
mmol) und 1H-Tetrazol (140 mg, 2 mmol) in CH₂Cl₂ (20 ml,
dest. über CaH₂) und CH₃CN (8 ml, p. A.-Qualität)
suspendiert und mit Bis(diisopropylamino)(β-cyanoethoxy)
phosphin (1,87 g, 6,2 mmol) versetzt. Nach 16,5 h Rühren
bei RT wurde das Gemisch mit CH₂Cl₂ (50 ml) verdünnt und
mit ges. NaHCO₃-Lsg. (25 ml) gewaschen. Die wäßrige Phase
wurde mit CH₂Cl₂ (2 × 25 ml) nachextrahiert. Trocknen der
organ. Phasen über Na₂SO₄, Filtrieren und Abrotieren des
Lösemittel ergaben das Rohprodukt (3,4 g), welches durch
FC (40 g SiO₂, 12 × 3,1 cm, Lösemittel: Toluol/EtOAc 5 : 1
160 ml, 4 : 1-150 ml, 3 : 1 120 ml, 2 : 1 150 ml, 1 : 1 100 ml,
1 : 2 150 ml, 1 : 3 160 ml, jeweils unter Zugabe von 1 Vol.-%
Et₃N) gereinigt wurde. Man erhielt 5′-O-(2-(2-Chlor-6-
nitrophenyl)ethoxycarbonyl)thymidin-3′-O-((β-cyanoethoxy)
(N,N-diisopropylamino)phosphoramidit) (2,012 g, 75%) als
farblosen Schaum.
Rf (Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,64 und 0,70 (Diastereomere)
UV (MeOH); λmax [nm] (log ε): 205 (4,45), 262 (4,06)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,40 (s, NH); 7,74 (td, 1 arom. H v. CNPEOC; 7,66 (dd, 1 arom H v. CNPEOC); 7,38 (m, H-C(4) v. CNPEOC); 6,37 (m, H-C(1′)); 4,61 bis 4,35 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. CNPEOC); 4,28 (m, H-C(4′), Diastereomer); 4,22 (m,H-C(4′), Diastereomer); 3,90-3,66 (m, α-CH₂ v. Cyano ethoxy); 3,57 (m, 2 × NCH); 3,43 (td, β-CH₂ v. CNPEOC); 2,66 (t, β-CH₂ von Cyanoethoxy); 2,48 (m, H-C(2′)); 2,23 (m, H-C(2′)); 1,86 (d, CH₃); 1,23 (m, 2 × NC(CH₃)₂)
³¹P-NMR (161,7 MHz, CDCl₃): 149,73 und 149,85 (Diastereomere)
Anal. ber. für C₂₈H₃₇N₅O₁₀PCl (670,056): C 50,19, H 5,57, N 10,45; gef.: C 50,43, H 5,90, N 10,43.
Rf (Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,64 und 0,70 (Diastereomere)
UV (MeOH); λmax [nm] (log ε): 205 (4,45), 262 (4,06)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,40 (s, NH); 7,74 (td, 1 arom. H v. CNPEOC; 7,66 (dd, 1 arom H v. CNPEOC); 7,38 (m, H-C(4) v. CNPEOC); 6,37 (m, H-C(1′)); 4,61 bis 4,35 (m, H-C(3′), 2 × H-C(5′), α-CH₂ v. CNPEOC); 4,28 (m, H-C(4′), Diastereomer); 4,22 (m,H-C(4′), Diastereomer); 3,90-3,66 (m, α-CH₂ v. Cyano ethoxy); 3,57 (m, 2 × NCH); 3,43 (td, β-CH₂ v. CNPEOC); 2,66 (t, β-CH₂ von Cyanoethoxy); 2,48 (m, H-C(2′)); 2,23 (m, H-C(2′)); 1,86 (d, CH₃); 1,23 (m, 2 × NC(CH₃)₂)
³¹P-NMR (161,7 MHz, CDCl₃): 149,73 und 149,85 (Diastereomere)
Anal. ber. für C₂₈H₃₇N₅O₁₀PCl (670,056): C 50,19, H 5,57, N 10,45; gef.: C 50,43, H 5,90, N 10,43.
In einem mit Argon gespülten Kolben wurden 5′-O-(2-(2-
Chlor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)-N⁴-(2-(4-nitrophenyl)
ethoxycarbonyl)-2′-desoxycytidin (1,9 g, 2,9 mmol) und
1H-Tetrazol (102 mg, 1,45 mmol) in CH₂Cl₂ (20 ml, dest.
über CaH₂) und CH₃CN (8 ml, p. A.-Qualität) mit Bis(di
isopropylamino)(β-cyanoethoxy)phosphin (1,32 g, 4,38 mmol)
versetzt und bei RT gerührt. Nach 13,5 h wurde die Lösung
mit CH₂Cl₂ (50 ml) verdünnt und mit ges. NaHCO₃-Lsg.
(25 ml) gewaschen. Die wäßrige Phase wurde mit CH₂Cl₂ (2
× 25 ml) nachextrahiert. Die vereinigten organischen
Phasen wurden über Na₂SO₄ getrocknet, filtriert und
einrotiert. Das Rohprodukt (2,99 g) wurde durch FC (61 g
SiO₂, 18 × 3,2 cm, Lösemittel PE/Aceton 5 : 1 170 ml, 4 : 1
200 ml, 3 : 1 200 ml, 2 : 1 600 ml, 3 : 2 150 ml, 1 : 1 80 ml, 2 : 3
300 ml, 1 : 2 90 ml) gereinigt. Man erhielt 5′-O-(2-(2-
Chlor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)-N⁴-(2-(4-nitrophenyl)
ethoxy-carbonyl)-2′-desoxycytidin-3′-O-((p-cyanoethoxy)
(N,N-diisopropylamino)phosphoramidit) (2,29 g, 93%) als
farblosen Schaum.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,61 und 0,67 (Diastereomere)
UV (MeOH); λmax [nm] (log ε): 203 (4,66), 209 (Schulter, 4,64), 241 (4,30), 276 (Schulter, 4,18)
¹H-NMR Spektrum (250 MHz, CDCl₃): 8,18 (m, 2 arom. H v. NPEOC), ortho zu NO₂); 8,02 (m, H-C(6) v. Cytosin); 7,74 (td, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,66 (dd, 1 arom H v. CNPEOC); 7,40 (m, 2 arom. H v. NPEOC, meta zu NO₂); 7,39 (m, H-C(4) v. CNPEOC, teilweise verborgen); 7,17 (d, H-C(5) v. Cytosin); 6,28 (m, H-C(1′)); 4,47 bis 4,29 (m, α-CH₂ v. NPEOC, α-CH₂ von CNPEOC), H-C(3′), H-C(4′), 2 × H-C(5′)); 3,90 bis 3,53 (m, α-CH₂ v. Cyanoethoxy, 2 × NCH); 3,43 (t, β-CH₂ von CNPEOC); 3,12 (t, β-CH₂ v. NPEOC); 2,73 (m, H-C(2′) teilweise verborgen); 2,65 (t, β-CH₂ v. Cyanoethoxy); 2,17 (m, H-C(2′)); 1,23 (m, 2 × NC(CH₃)₂)
³¹P-NMR Spektrum (161,7 MHz, CDCl₃): 149,67 und 150,02 (Diastereomere)
Anal. ber. für C₃₆H₄₃N₇O₁₃PCl (848,203): C 50,98, H 5,11, N 11,56; gef.: C 50,88, H 5,18, N 11,36.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,61 und 0,67 (Diastereomere)
UV (MeOH); λmax [nm] (log ε): 203 (4,66), 209 (Schulter, 4,64), 241 (4,30), 276 (Schulter, 4,18)
¹H-NMR Spektrum (250 MHz, CDCl₃): 8,18 (m, 2 arom. H v. NPEOC), ortho zu NO₂); 8,02 (m, H-C(6) v. Cytosin); 7,74 (td, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,66 (dd, 1 arom H v. CNPEOC); 7,40 (m, 2 arom. H v. NPEOC, meta zu NO₂); 7,39 (m, H-C(4) v. CNPEOC, teilweise verborgen); 7,17 (d, H-C(5) v. Cytosin); 6,28 (m, H-C(1′)); 4,47 bis 4,29 (m, α-CH₂ v. NPEOC, α-CH₂ von CNPEOC), H-C(3′), H-C(4′), 2 × H-C(5′)); 3,90 bis 3,53 (m, α-CH₂ v. Cyanoethoxy, 2 × NCH); 3,43 (t, β-CH₂ von CNPEOC); 3,12 (t, β-CH₂ v. NPEOC); 2,73 (m, H-C(2′) teilweise verborgen); 2,65 (t, β-CH₂ v. Cyanoethoxy); 2,17 (m, H-C(2′)); 1,23 (m, 2 × NC(CH₃)₂)
³¹P-NMR Spektrum (161,7 MHz, CDCl₃): 149,67 und 150,02 (Diastereomere)
Anal. ber. für C₃₆H₄₃N₇O₁₃PCl (848,203): C 50,98, H 5,11, N 11,56; gef.: C 50,88, H 5,18, N 11,36.
In einem mit Argon gespülten Kolben wurde ein Gemisch
von 5′-O-(2-(2-Chlor-6-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)-N⁶-(2-
(4-nitrophenyl)ethoxycarbonyl)-2′-desoxyadenosin (2 g,
2,98 mmol) und 1H-Tetrazol (104 mg, 1,49 mmol) in CH₂Cl₂
(20 ml, dest. über CaH₂) und CH₃CN (8 ml, p. A.-Qualität)
mit Bis(diisopropylamino)(β-cyanoethoxy)phosphin (1,36 g,
4,51 mmol) versetzt und bei RT 13,5 h gerührt. Die Lösung
wurde mit CH₂Cl₂ (50 ml) verdünnt und mit ges. NaHCO₃-Lsg.
(25 ml) gewaschen. Die wäßrige Phase wurde mit CH₂Cl₂ (2
× 25 ml) nachextrahiert. Die vereinigten organischen
Phasen wurden über Na₂SO₄ getrocknet, filtriert und
einrotiert. Das Rohprodukt wurde durch FC (92 g SiO₂, 13
× 4,2 cm, Lösemittel: PE/Aceton 6 : 1 140 ml, 5 : 1 180 ml,
4 : 1 200 ml, 3 : 1 240 ml, 2 : 1 750 ml, 3 : 2 150 ml, 1 : 1 400
ml, 2 : 3 600 ml, jeweils unter Zugabe von 1 Vol.-% Et₃N)
gereinigt. Man erhielt 5′-O-(2-(2-Chlor-6-nitrophenyl)
ethoxycarbonyl)-N⁶-(2-(4-nitrophenyl)ethoxy-carbonyl)-
2′-desoxyadenosin-3′-O-((β-cyanoethoxy)(N,N-diisopropyl
amino)phosphoramidit) (2,146 g, 83%) als farblosen
Schaum.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,71 und 0,76 (Diastereomere)
UV (MeOH); λmax [nm] (log ε): 205 (4,68), 266 (4,43)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,74 (d, H-C(8) v. Adenin); 8,23 (s, H-C(2) v. Adenin); 8,18 (m, 2 arom. H v. NPEOC, ortho zu NO₂); 7,73 (m, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,65 (m, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,44 (m, 2 arom. H v. NPEOC, meta zu NO₂); 7,36 (t, H-C(4) v. CNPEOC); 6,52 (m, H-C(1′)); 4,77 (m, H-C(3′)); 4,54 (t, α-CH₂ v. CNPEOC); 4,39 (m, α-CH₂ v. NPEOC, H-C(4′), 2 × H-C(5′)); 3,93 bis 3,59 (m, 2 × NCH, α-CH₂ v. Cyanoethoxy); 3,41 (td, β-CH₂ v. CNPEOC); 3,16 (t, β-CH₂ v. NPEOC); 2,90 (m, H-C(2′)); 2,71 (m, H-C(2′), teilweise verborgen); 2,67 (m, β-CH₂ v. Cyanoethoxy); 1,24 (m, 2 × NC(CH₃)₂)
³¹P-NMR (161,7 MHz, CDCl₃): 149,70 und 149,79 (Diastereomere)
Anal. ber. für C₃₇H₄₃N₉O₁₂PCl (872,229): C 50,95, H 4,97, N 14,45; gef.: C 50,92, H 5,11, N 14,21.
Rf (SiO₂, Toluol/EtOAc/MeOH 5 : 4 : 1) 0,71 und 0,76 (Diastereomere)
UV (MeOH); λmax [nm] (log ε): 205 (4,68), 266 (4,43)
¹H-NMR (250 MHz, CDCl₃): 8,74 (d, H-C(8) v. Adenin); 8,23 (s, H-C(2) v. Adenin); 8,18 (m, 2 arom. H v. NPEOC, ortho zu NO₂); 7,73 (m, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,65 (m, 1 arom. H v. CNPEOC); 7,44 (m, 2 arom. H v. NPEOC, meta zu NO₂); 7,36 (t, H-C(4) v. CNPEOC); 6,52 (m, H-C(1′)); 4,77 (m, H-C(3′)); 4,54 (t, α-CH₂ v. CNPEOC); 4,39 (m, α-CH₂ v. NPEOC, H-C(4′), 2 × H-C(5′)); 3,93 bis 3,59 (m, 2 × NCH, α-CH₂ v. Cyanoethoxy); 3,41 (td, β-CH₂ v. CNPEOC); 3,16 (t, β-CH₂ v. NPEOC); 2,90 (m, H-C(2′)); 2,71 (m, H-C(2′), teilweise verborgen); 2,67 (m, β-CH₂ v. Cyanoethoxy); 1,24 (m, 2 × NC(CH₃)₂)
³¹P-NMR (161,7 MHz, CDCl₃): 149,70 und 149,79 (Diastereomere)
Anal. ber. für C₃₇H₄₃N₉O₁₂PCl (872,229): C 50,95, H 4,97, N 14,45; gef.: C 50,92, H 5,11, N 14,21.
Die entsprechend geschützten Thymidin-Nucleoside wurden
mittels einer Bestrahlungsapparatur (Leihgabe der AG
Steiner) bestrahlt. Die Apparatur bestand aus einer Hg-
Höchstdrucklampe (OSRAM HBO, 200 W, Lampenspektrum siehe
Anlage), einer Sammellinse, einem Verschluß (Fa. Prontor)
mit einem elektronischen Steuergerät zur Einstellung der
Verschlußzeiten sowie einem temperierbaren
Küvettenhalter. Es war außerdem ein Wärmefilter (0,032
molare CuSO₄ -Lsg.) zwischen Lampe und Probe eingebaut. Es
wurden 0,2 mM Lösungen der Nucleoside in MeOH/H₂O 1 : 1 bei
20 bis 30°C mit dem gesamten Lampenspektrum
(polychromatisches Licht mit Wellenlängen λ < 289 nm)
belichtet.
Die Abspaltung der Schutzgruppen wurde durch HPLC
quantitativ verfolgt. Die HPLC-Anlage bestand aus
folgenden Geräten: Merck-Hitachi L-6200 Intelligent Pump,
Merck-Hitachi Intelligent Auto Sampler AS 4000, Merck-
Hitachi Interface, Merck Lichrosorb-Säule RP 18, 125 ×
5 mm. Das UV/VIS-Spektrophotometer war ein UVIKON 730 LC
der Fa. Kontron. Die Detektion erfolgte bei 260 nm. Die
Integration der Chromatogramm-Signale erfolgte mittels
Software der Fa. Merck: D-6000 HPLC-Manager.
Es wurde grundsätzlich in MeOH/H₂O-Gemischen
chromatographiert. Dabei wurde folgender Gradient
verwendet (Flow: 1 ml/min):
Für Thymidin und die geschützten Nucleoside wurde durch
Einspritzen von Verdünnungsreihen in den Chromatographen
Eichkurven erstellt.
Aus den belichteten Lösungen wurden nach bestimmten
Zeitintervallen Proben (Schleifen-Volumen: 20 µl)
entnommen. Jede Probe wurde zweimal in den
Chromatographen eingespritzt. Für die weitere Auswertung
wurden die Mittelwerte dieser Doppelbestimmungen
genommen. Die Peakflächen der Chromatogramme wurden
mittels der oben erstellten Eichkurven in die
Konzentrationen der geschützten Nucleoside bzw. von
Thymidin umgerechnet. Die so erhaltenen
Konzentrationswerte wurden durch die maximal erreichbare
Konzentration von 0,2 mM (= Konzentration der geschützten
Nucleoside zu Beginn der Belichtung) dividiert und als
"Relative Menge" in Prozent gegen die Bestrahlungszeit
aufgetragen. Durch diese Meßpunkte wurden mittels eines
Computerprogramms (Programm: Kaleidagraph 2,0; Rechner:
Apple Macintosh) Kurven gelegt, anhand derer die
Abspaltung der Schutzgruppen graphisch verdeutlicht
wurde.
Für die Eichung von Thymidin wurde eine Verdünnungsreihe
mit folgenden Konzentrationen erstellt: 0,2 mM, 0,16 mM,
0,12 mM, 0,08 mM und 0,04 mM. Hiervon wurden je
Konzentration drei Einspritzungen in den Chromatographen
gemacht. Aus den resultierenden Mittelwerten sowie dem
Nullpunktswert (0 Peakfläche = 0 Konzentration) wurden
mittels linearer Regression die Eichgerade berechnet
(siehe Tabelle).
Es wurde eine Verdünnungsreihe mit folgenden drei
Konzentrationen erstellt: 0,2 mM, 0,14 mM und 0,08 mM.
Die Mittelwerte aus drei Einspritzungen je Konzentration
sowie der Nullpunktswert wurden zur Berechnung der
Regressionsgerade eingesetzt (siehe Tabelle):
Claims (26)
1. Nucleosid-Derivate mit photolabilen Schutzgruppen der
allgemeinen Formel (I)
in der
R¹ = H, NO₂, CN, OCH₃
R² = H, OCH₃
R³ = H, F, Cl, Br, NO₂
R⁴ = H, Cl, OCH₃ oder ein Alkylrest mit 1 bis 4 C-Atomen
R⁵ = H, mit R⁷ = Alkylreste mit 1 bis 4 C-Atomen
R⁶ = H, OH oder O-Alkyl-, O-Alkenyl-, O-Acetal- oder O-Silylether-Schutzgruppen und
B = Adenin, Cytosin, Guanin, Thymin und Uracil bedeuten, wobei im Falle von B = Adenin, Cytosin oder Guanin die primäre Aminofunktion ggf. eine permanente Schutzgruppe aufweist.
R¹ = H, NO₂, CN, OCH₃
R² = H, OCH₃
R³ = H, F, Cl, Br, NO₂
R⁴ = H, Cl, OCH₃ oder ein Alkylrest mit 1 bis 4 C-Atomen
R⁵ = H, mit R⁷ = Alkylreste mit 1 bis 4 C-Atomen
R⁶ = H, OH oder O-Alkyl-, O-Alkenyl-, O-Acetal- oder O-Silylether-Schutzgruppen und
B = Adenin, Cytosin, Guanin, Thymin und Uracil bedeuten, wobei im Falle von B = Adenin, Cytosin oder Guanin die primäre Aminofunktion ggf. eine permanente Schutzgruppe aufweist.
2. Nucleosid-Derivate nach Anspruch 1, dadurch
gekennzeichnet, daß im Falle von R⁴ ≠ H
R¹ = R² = R³ = H ist.
3. Nucleosid-Derivate nach Anspruch 1, dadurch
gekennzeichnet, daß im Falle von R² = OCH₃ R³ = H ist.
4. Nucleosid-Derivate nach den Ansprüchen 1 bis 3,
dadurch gekennzeichnet, daß R⁴ einen Methylrest
darstellt.
5. Nucleosid-Derivate nach den Ansprüchen 1 bis 4,
dadurch gekennzeichnet, daß R⁷ in der
Phosphitamidfunktion ein Isopropyl- oder Ethylrest
bedeutet.
6. Nucleosid-Derivate nach den Ansprüchen 1 bis 5,
dadurch gekennzeichnet, daß als O-Alkyl-Schutzgruppe
ein O-Methyl- oder O-Ethylrest verwendet wird.
7. Nucleosid-Derivate nach den Ansprüchen 1 bis 5,
dadurch gekennzeichnet, daß als O-Alkenyl-
Schutzgruppe ein O-Vinylrest eingesetzt wird.
8. Nucleosid-Derivate nach den Ansprüchen 1 bis 5,
dadurch gekennzeichnet, daß als O-Acetal-Schutzgruppe
ein O-Tetrahydropyranyl- bzw. O-Methoxytetrahydro
pyranyl-Rest Verwendung findet.
9. Nucleosid-Derivate nach den Ansprüchen 1 bis 8,
dadurch gekennzeichnet, daß man als O-Silylether-
Schutzgruppe einen O-t-Butyldimethylsilyl-Rest
verwendet.
10. Nucleosid-Derivate nach den Ansprüchen 1 bis 9,
dadurch gekennzeichnet, daß man im Falle von B =
Adenin, Cytosin oder Guanin als permanente
Schutzgruppe Phenoxyacetyl- oder
Dimethylformamidino-Reste einsetzt.
11. Nucleosid-Derivate nach den Ansprüchen 1 bis 9,
dadurch gekennzeichnet, daß man im Falle von
B = Adenin als permanente Schutzgruppe Benzoyl- oder
p-Nitrophenylethoxycarbonyl-(p-NPEOC)-Reste
heranzieht.
12. Nucleosid-Derivate nach den Ansprüchen 1 bis 9,
dadurch gekennzeichnet, daß im Falle von B = Guanin
die permanente Schutzgruppe Isobutyroyl- oder
p-NPEOC-Reste darstellen.
13. Nucleosid-Derivate nach den Ansprüchen 1 bis 9,
dadurch gekennzeichnet, daß man im Falle von
B = Cytosin als permanente Schutzgruppen Benzoyl-
oder p-NPEOC-Reste einsetzt.
14. Verfahren zur Herstellung von Nucleosid-Derivaten
nach den Ansprüchen 1 bis 13 in mindestens zwei
Stufen, dadurch gekennzeichnet, daß man
- a) einen Alkohol der allgemeinen Formel (II) in der R¹, R², R³, R⁴ die oben angegebene Bedeutung besitzen, mit einem Phosgen-Derivat umsetzt und anschließend
- b) den in Stufe a) gebildeten Chlorkohlensäureester mit Nucleosiden der allgemeinen Formel (III) in der R⁵, R⁶ und B die oben angegebene Bedeutung besitzen, reagieren läßt und ggf. anschließend
- c) in der 3′-Stellung der Nucleosid-Derivate mit R⁵ = H die Phosphitamid-Gruppe nach bekannten Methoden einführt.
15. Verfahren nach Anspruch 14, dadurch gekennzeichnet,
daß man Stufe a) in einem unpolaren organischen
Lösemittel bei Temperaturen zwischen -20 und +25°C
durchführt.
16. Verfahren nach den Ansprüchen 14 und 15, dadurch
gekennzeichnet, daß man in Stufe a) das Phosgen-
Derivat in zwei- bis fünffachem Überschuß bezogen auf
die Alkoholkomponente einsetzt.
17. Verfahren nach den Ansprüchen 14 bis 16, dadurch
gekennzeichnet, daß man in Stufe a) als unpolares
organisches Lösemittel Toluol oder THF verwendet.
18. Verfahren nach den Ansprüchen 14 bis 17, dadurch
gekennzeichnet, daß die Konzentration der
Alkoholkomponente in Stufe a) 0,1 bis 10,0 mmol pro
10 ml Solvens beträgt.
19. Verfahren nach den Ansprüchen 14 bis 18, dadurch
gekennzeichnet, daß man Stufe b) in einem
Lösungsmittelgemisch bestehend aus Dichlormethan und
einem polaren organischen Lösemittel ggf. in
Gegenwart einer Base bei Temperaturen zwischen -60
und +25°C durchführt.
20. Verfahren nach den Ansprüchen 14 bis 19, dadurch
gekennzeichnet, daß man in Stufe b) als polares
organisches Lösemittel DMF oder Pyridin heranzieht.
21. Verfahren nach den Ansprüchen 14 bis 20, dadurch
gekennzeichnet, daß man in Stufe b) ein
Lösemittelgemisch bestehend aus Dichlormethan und DMF
sowie eine Base ausgewählt aus der Gruppe Pyridin,
Triethylamin und Hünig-Base einsetzt.
22. Verfahren nach den Ansprüchen 14 bis 21, dadurch
gekennzeichnet, daß das Mischungsverhältnis
Dichlormethan zu Pyridin bzw. DMF 1 : 1 bis 3 : 1
beträgt.
23. Verfahren nach den Ansprüchen 14 bis 22, dadurch
gekennzeichnet, daß das Molverhältnis Nucleosid zu
Chlorkohlensäureester 1 : 1 bis 1 : 2 beträgt.
24. Verfahren nach den Ansprüchen 14 bis 23, dadurch
gekennzeichnet, daß man in Stufe b) das in Pyridin
oder DMF/Base gelöste Nucleosid vorlegt und eine
Lösung des Chlorkohlensäureesters in Dichlormethan
bei der jeweiligen Reaktionstemperatur zutropfen
läßt.
25. Verfahren nach den Ansprüchen 14 bis 24, dadurch
gekennzeichnet, daß die Konzentration des Nucleosids
im Lösemittelgemisch in Stufe b) 0,1 bis 3,0 mmol
pro 10 ml Solvens beträgt.
26. Verfahren nach den Ansprüchen 14 bis 25, dadurch
gekennzeichnet, daß man die Einführung der
Phosphitamid-Gruppe (Stufe c) durch Umsetzung der
Nucleosid-Derivate (mit R⁵ = H) mit den
entsprechenden Phosphinen in Gegenwart von 1H-
Tetrazol als Aktivator in einem Lösemittelgemisch
bestehend aus Dichlormethan und Acetonitril bei
Temperaturen zwischen 0 und 25°C vornimmt.
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