DE3823996A1 - Verfahren (metall-indikator-detektion) zur komplexometrischen bestimmung von oxyanionen/ polyanionen mit picomol-empfindlichkeit anwendung zur kontinuierlichen nachsaeulendetektion bei fluessigkeitschromatographischer auftrennung und zur detektion nach trennung auf duennschichttraegern - Google Patents
Verfahren (metall-indikator-detektion) zur komplexometrischen bestimmung von oxyanionen/ polyanionen mit picomol-empfindlichkeit anwendung zur kontinuierlichen nachsaeulendetektion bei fluessigkeitschromatographischer auftrennung und zur detektion nach trennung auf duennschichttraegernInfo
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Description
Die chromatographische Trennung und Quantifizierung von Anionen und
insbesondere von Polyanionen stellt mittlerweile ein allgemein
verwendetes präparatives, aber auch ein sehr weitverbreitetes
analytisches Verfahren dar, welches in zunehmendem Maße naßchemische
Verfahren ersetzt. Diese Methodik, heute meist mit HPLC-Systemen und
hochauflösenden Anionenaustauschersäulen auf Styrol- oder Silicabasis,
zum Teil auch nach dem Prinzip der Ionenpaarchromatographie oder nach
anderen flüssigkeitschromatographischen Verfahren durchgeführt, ist
mittlerweile zum Standard in der wasserchemischen Analytik und zu einer
Routinetechnik in zahlreichen anderen chemischen Disziplinen geworden.
Neben der Bestimmung monovalenter sauerstofffreier Anionen spielen
Oxyanionen wie Nitrit, Nitrat, Sulfat, Bicarbonat, Carbonat, Phosphat,
Carbonsäuren und polyanionische sauerstoffhaltige Chelatoren, vor allem
als Wasserenthärter verwendet, eine Rolle. Dies sind Pyro- und
Polyphosphate aber auch Phosphatersatzstoffe z.B. Polysulfonsäuren und
Polycarbonsäuren.
Auch in der biologischen und physiologischen Chemie spielt die Analytik
aber auch die chromatographische Isolierung von Oxy- und Polyanionen,
z. B. von Mono- Di- und Tricarbonsäuren, Phosphoglycuronsäuren,
Zuckermono- und -bisphosphaten, Glycosaminoglycuronanen und deren
sulfatierten Derivaten, Nucleosid(poly)phosphaten, Nucleosidphospho
sulfaten, Oligonucleotiden, Phosphopeptiden, sauren Peptiden und
Polypeptiden, Pyrophosphat und Pyrophosphoestern, Phosphodiestern,
Polyphosphaten und den neuerdings ins Zentrum des Interesses geratenen
Inositol(poly)phosphaten eine äußerst große Rolle.
Mit Ausnahme der Nucleosid- und Peptidverbindungen sind die meisten
dieser Anionen nicht direkt photometrisch oder fluorimetrisch
detektierbar. In der Ionenchromatographie wird deshalb vor allem die
Leitfähigkeitsdetektion zur Bestimnung der aufgetrennten Anionen
eingesetzt. Dies führt jedoch in der Regel zu einer Limitierung der
chromatographischen Trennungen auf isokratische Verfahren. Erst in
jüngster Zeit deuten sich Fortschritte an im Bemühen, auch nach
Gradientenelution mittels Leitfähigkeit Anionen zu detektieren.
Fortschritte brachten hier sowohl elektronische als auch chemische
Verfahren zur Suppresion der bei Gradientenelution stark zunehmenden
Basisleitfähigkeit.
Gerade die besonders stark negativ geladenen Polyanionen, die sowohl
wasserchemisch als auch biologisch besonderes aktuelles Interesse
erfahren, lassen sich ausschließlich durch steile Gradientenelution
adäquat auftrennen bzw. überhaupt erst von Anionenaustauschern
eluieren. Die insbesondere bei den biologisch-chemischen
Fragestellungen angestrebten Empfindlichkeiten im Nanomol- bis
Picomolbereich werden jedoch derzeit trotz der o.g. Suppressions
verfahren bei Leitfähigkeitsdetektion nicht erreicht. Auch alternative
Verfahren zur Analytik solcher Verbindungen wie etwa gaschromatogra
phisch-massenspektrometrische Verfahren (Sherman, W.R. et al. (1986)
Biochem. Envir. Mass. Spectrometry 13, 333-341) sind noch nicht
hinreichend entwickelt und auch um ein vielfaches teurer als die
Ionenchromatographie.
Die Erfindung ist geeignet, die für die hochempfindliche
chromatographische Trennung von Polyanionen und Oxyanionen bestehende
"Detektionslücke" mit einem sehr kostengünstigen, vielseitig
anwendbaren und hochsensitiven komplexometrischen Verfahren zu
schließen. Sie stellt ein Verfahren dar, das, bei ionenchromato
graphischen und anderen flüssigkeitschromatographischen Trennverfahren
als Nachsäulendetektion angewendet, geeignet ist, auch bei steilen
Gradientenelutionen jedes Polyanion/Oxyanion in quantifizierbarer
Weise ohne große Basislinienprobleme zu detektieren.
Die hierbei erreichbare Empfindlichkeit erlaubt die Bestimmung von
Picomolmengen derartiger Anionen. Diese Art der Anwendung des
erfindungsgemäßen Verfahrens ist in den Anwendungsbeispielen 1 und 2
erläutert.
Die Erfindung ist auch geeignet, chromatographisch oder ektrophore
tisch/iontophoretisch auf Papier, Folien, Dünnschichtgelen oder
-platten aufgetrennte Polyanionen/Oxyanionen mittels eines Sprüh- oder
Tauchreagenzes mit ähnlicher Empfindlichkeit zu detektieren. Diese
Anwendung des erfindungsgemäßen Verfahrens ist in Anwendungsbeispiel 3
erläutert.
Die Erfindung ist schließlich dafür anwendbar, Oxyanionen/Polyanionen
bei Auswahl eines geeigneten Kationenindikators und geeigneter
Detektorkationen in gelösten Einzelproben photometrisch oder fluorime
trisch quantitativ zu bestimmen.
Bei dem erfindungsgemäßen Verfahren erfolgt diese Detektion mit einem
komplexometrischen Verfahren, das die Eigenschaft von polyvalenten
Oxyanionen ausnützt, mit zwei- oder insbesondere höherwertigen
metallischen Kationen zum größten Teil sehr hochaffine Komplexe zu
bilden. Die Dissoziationskonstanten dieser Komplexe bestimmen, in
welchem Ausmaß im Elutionsmittel vorhandene derartige Kationen, die als
Detektorkationen bezeichnet seien, mit den Polyanionen/Oxyanionen
Komplexe bilden. Diese Dissoziationskonstanten sollen möglichst klein
sein (picomolar bis nanomolar) und unter dem Konzentrationsbereich
liegen, in dem die Anionen von einer Trennsäule eluieren. Die
Konzentration an Detektorkationen, die dem Elutionsmittel vor der
Trennsäule zugesetzt ist oder nach der Trennsäule dem Eluat zugemischt
wird, kann dann so niedrig gewählt werden, daß sie durch genannte
Komplexierung signifikant abnimmt. Immer wenn nun ein solches Oxyanion
im Eluat auftaucht, kann man die Abnahme der freien Kationenkonzentra
tion mittels eines geeigneten, dem Eluat zugesetzten kationenspezi
fischen Indikators detektieren (Abb. 1). Bei genügend niedrigen
Dissoziationskonstanten der Oxyanionen-Kationen-Komplexe besteht nahezu
Linearität zwischen Oxyanionenkonzentration und Abnahme der freien
Kationenkonzentration (Abb. 2); die Steigung dieser Geraden wird für
jedes Oxyanion von der Stöchiometrie der hochaffinen Kationenbindung
definiert. Die in den Anwendungsbeispielen angewendeten Detektor
kationen sind Verteter der Lanthaniden bzw. Yttrium. Sie vereinen alle
der für eine optimale Anwendung im erfindungsgemäßen Detektionsver
fahren nötigen Eigenschaften. Sie sind dreiwertig, weisen dadurch sehr
hohe Assoziationskonstanten für die meisten Oxyanionen/Polyanionen
auf, sie sind stabil in ihrem Oxidationszustand und greifen deshalb die
Trennharze nicht oxidativ an, sie sind sehr rein erhältlich, und
darüberhinaus billig und relativ atoxisch.
Besagter Kationenindikator soll zur hochaffinen Bindung des Detektor
kations geeignet sein. Seine Dissoziationskonstante für die Bindung des
Kations muß ebenfalls nahe dem Bereich der freien Kationenkonzentra
tion liegen. Gegenüber der Oxyanionen/Polyanionen sollte der Indikator
das Kation jedoch signifikant schwächer binden. Das Kation muß ferner
so ausgewählt sein, daß es vom Kationenindikator und aus bei höheren pH-
Werten gebildeten Hydroxokomplexen mit ausreichender Geschwindigkeit
(im für die Zumischung nach der Säule vorgesehenen Zeitintervall)
abdissoziieren kann, nur so ist ein Equilibrium der Bindung an die
Oxyanionen und damit der Detektion erreichbar. Der kationenspezifische
Indikator sollte im Idealfall so beschaffen sein, daß er ein möglichst
starkes (im Falle eines Chromophors oder Fluorophors) optisches oder
andersartiges Signal erzeugt, das möglichst kationenselektiv ist, d.h.
möglichst nur vom Detektorkation, nicht jedoch von kontaminierenden
Kationen auslösbar und in Abwesenheit des Detektorkations nahe Null
ist. Im Idealfalle ist dieses Signal nicht pH-abhängig, über die Zeit
stabil und wenig temperaturabhängig. 4-(2-Pyridylazo)-Resorcinol (PAR;
Elchuk, S. und Cassidy, R.M. (1979) Anal. Chem. 51, 1434-1438) erfüllt
etliche dieser Voraussetzungen und ist darüberhinaus über einen weiten
pH-Bereich stabil.
Eine wesentliche Bedeutung für die Detektionsempfindlichkeit spielt der
pH-Wert bei der komplexometrischen Detektion. Die
Detektionsempfindlichkeit ist in der Regel bei alkalischen pH-Werten
höher als bei sauren pH-Werten. Dies beruht vor allem auf der pH-
Abhängigkeit der Stabilitätskonstanten der Oxyanionen-Kationen-
Komplexe. Oxyanionen werden bei Erniedrigung des pH-Wertes protoniert
und die Protonen konkurrieren mit anderen Kationen um die Bindung. Die
Folge ist eine signifikante Abnahme der apparenten Stabilitätskon
stanten der Komplexe mit anderen Kationen, auch dem Detektorkation.
Deprotonierung erhöht somit immer die Stabilitätskonstanten für das
Detektorkation. Da Carbonsäurereste in der Regel über pH 5 deprotoniert
sind, sind für deren Bestimmung entsprechend hohe pH-Werte nötig.
Phosphomonoester und terminale Phosphatgruppen von Polyphosphaten gehen
erst über pH 7, in manchen Fällen (bei Inositolphosphaten hohen
Phosphatgehalts) auch erst bei viel höheren pH-Werten in die dianio
nische Form über, die Detektion von Phosphoverbindungen erfolgt also am
empfindlichsten im alkalischen pH-Bereich.
Die meisten der kationenspezifischen Indikatoren sind ebenfalls
protonierbar und zeigen ein entsprechendes pH-abhängiges Verhalten
ihrer Assoziationskonstanten, oft auch des kationenspezifischen
Signals. Ein möglichst konstanter pH-Wert bei der Detektion während des
gesamten Elutionsprogramms, nötigenfalls herbeigeführt durch
Pufferzufuhr nach der Trennsäule, trägt damit ganz entscheidend zu
einer stabilen Basislinie und einer konstanten Detektionssensitivität
bei pH-Variation im Elutionsprogramm bei.
Eine Limitierung des pH-Wertes nach oben hin kommt durch eine
zunehmende Bildung von Hydroxokomplexen (Hydrolyse der Detektorkation-
Hydratkomplexe) mit entsprechender Abnahme der freien
Kationenkonzentration und durch eventuell einsetzende Präzipitation der
Kationenkomplexe mit den Polyanionen/Oxyanionen bzw. dem
Kationenindikator zustande. In den genannten Beispielen werden pH-Werte
zwischen 7,5 und 9,5 zur Detektion eingestellt. Hier liegt eine hohe
Detektionssensitivität vor, andererseits sind die oben genannten
störenden Effekte bei diesen pH-Werten noch beherrschbar.
Elutionsmittel und Puffer müssen beide derart beschaffen sein, daß
deren Komponenten möglichst keine unerwünschten Wechselwirkungen mit
Detektorkation und Kationenindikator eingehen. Bei den Elutionsmitteln
wird diese Bedingung in der Regel durch monovalente Non-Oxyanionen und
monovalente Kationen, insbesondere große organische Kationen (z. B.
Tetraalkylammoniumionen) besonders gut erfüllt, bei Puffern durch
monobasische organische Kationen wie zum Beispiel Ammoniak,
Trimethylamin, Triethylamin, Triethanolamin, Trishydroxymethylamino
methan oder basische Ringverbindungen wie zum Beispiel Imidazol. Auch
die Verwendung von Oxyanionen vom Monocarbonsäure- oder Sulfonsäuretyp
als Eluans-Anion bzw. Puffersubstanz ist in vielen Fällen möglich. Di-
oder Polycarbonsäuren, Sulfat, Orthophosphat und Orthophosphoester sind
hingegen in der Regel wegen ihrer starken Komplexbildung mit den
Detektorkationen als Komponenten der Elutionsmittel ungeeignet.
Die für das erfindungsgemäße Verfahren der Nachsäulendetektion nötige
Gerätekonstellation richtet sich danach, welche der möglichen
Verfahrensvarianten und welcher Typ von Kationenindikator gewählt
wurde. In der Regel erfolgt bei dem erfindungsgemäßen Detektionsver
fahren die kontinuierliche Zumischung des Detektionsreagenzes zum
Säuleneluat, oder, bei präparativer Chromatographie, zu einem
kontinuierlich abgezweigten Volumenanteil hiervon. Aus Empfindlichkeits
gründen ist die Flußrate in der Regel im Verhältnis zur Flußrate des
Eluats klein, zweckmäßigerweise unter 1:1. Wird, wie in der Regel bei
präparativen Anwendungen, für die Detektion ein Teil des Eluats
kontinuierlich abgezweigt, so erfolgt dies am zweckmäßigsten mittels
einer möglichst konstant und mit kleinem Totvolumen fördernden
peristaltischen oder Kolbenpumpe (i.d.R. HPLC-Pumpe) über ein
totvolumenarmes T-Stück. Eine kontinuierliche, flußkonstante Zumischung
von Detektionsreagens erfolgt am zweckmäßigsten durch eine pulsations
arme Kolbenpumpe (i.d.R. eine HPLC-Pumpe), eine Perfusorpumpe, oder
eine pulsationsarme peristaltische Pumpe (Rollerpumpe). Die Zuführung
des Detektionsreagenz erfolgt in der Regel durch ein totvolumenarmes T-
Stück. Die Vermischung des Reagenz mit dem Eluat kann über ein
beliebiges Mischsystem erfolgen, etwa einen "Jetstream-Mischer", eine
motorgetriebene Magnetmischkammer oder eine längere Reaktionsschleife,
am zweckmäßigsten in Form einer "gestrickten Kapillare" oder durch
Kombinationen hiervon. Alternativ kann das Detektionsreagens in einem
sog. Membranreaktor durch Druckdiffusion über eine permeable Membran in
konstanter Rate zugeführt werden. Das Totvolmen des Mischsystems ist in
der Regel so bemessen, daß eine stabile, pulsationsfreie Basislinie des
Detektionssignals resultiert, daß die Assoziation des Detektorkations
an eluierende Anionen und Kationenindikator möglichst bis zum
Equilibrium erfolgt ist, daß andererseits jedoch keine signifikante
Verbreiterung der einzelnen substanzspezifischen Signalgipfel erfolgt.
Das erfindungsgemäße Verfahren erlaubt drei verschiedene Varianten zur
Realisierung des ternären komplexometrischen Nachsäulen-Detektions
prinzips:
- 1. Das Detektorkation ist im Elutionsmittel oder allen bei Gradienten- oder Stufenelution verwendeten Elutionsmitteln in gleicher oder ähnliche, in der Regel mikro- bis millimolarer Konzentration enthalten. Der Kationenindikator ist im nach der Trennsäule zugeführten Detektionsreagens, in der Regel ebenfalls in mikro- bis millimolarer Konzentration enthalten. Langsame störende Präzipita tionsreaktionen zwischen Detektorkation und Kationenindikator, welche insbesondere bei alkalischen pH-Werten auftreten können, werden dadurch umgangen. Dieses Verfahren ist insbesondere bei analytischen Chromatographien dann anwendbar, wenn das oder die Elutionsmittel deutlich saure pH-Werte aufweisen. Dies ist häufig bei Anionenaustauschchromatographien der Fall. Unerwünschte Komplexierungen des Detektorkations mit den zu trennenden Anionen vor oder während der Trennung sowie eventuell auftretende Hydrolysereaktionen des Detektorkations sind dann minimal. Ein für die Detektion in der Regel günstigerer alkalischer pH-Wert des entstehenden Gemisches wird durch Zusatz eines geeigneten Puffers mit ausreichender Pufferkapazität zum Detektionsreagens herbeige führt.
- 2. Das oder die Elutionsmittel sind frei von Detektorkation und Kationenindikator. Beides wird nach der Trennsäule zusammen in einem einzigen Detektionsreagens oder einzeln in zwei separat zugeführten Reagenzien zugemischt. Dieses Verfahren ist bei analytischen Chromatographien insbesondere dann günstig, wenn das oder die Elutionsmittel bereits neutrale bis basische pH-Werte aufweisen. Dies macht aus den unter 1. erläuterten Gründen den Zusatz des Detektorkations zum Elutionsmittel problematisch. Andererseits kann bei alkalischem pH-Wert des Eluats das Detektions reagenzes auf saure pH-Werte eingestellt werden, was häufig eine problemlose a priori-Vermischung von Detektorkation und Kationen indikator in mikro- bis millimolaren Konzentrationen erlaubt. Anionenaustauschchromatographien, Ionenpaarchromatographien und Adsorptions- bzw. Verteilungschromatographien von Polyanionen/ Oxyanionen werden häufig bei neutralem bis alkalischem pH durch geführt und eignen sich dann für diese Detektionsvariante. Sie ist die Methode der Wahl bei halbpräparativen und präparativen Chromato graphien, da hier in der Regel jeder Zusatz zum Elutionsmittel unerwünscht ist.
- Bei sauren Elutionsmitteln muß diese Detektionsvariante in der Regel mittels zweier separater Zumischsysteme realisiert werden. Am günstigsten erfolgt hierbei die separate Zufuhr eines auf sauren pH- Wert eingestellten Gemisches aus Detektorkation und Kationenindikator und eines auf alkalischen pH-Wert eingestellten Puffers. Bei ungenügender Säurestabilität des Kationenindikators kann dieser auch dem Puffer zugesetzt werden.
- 3. Das oder die Elutionsmittel enthalten den Kationenindikator. Das Detektorkation wird nach der Trennsäule in der Regel aus schwach saurer Lösung zugemischt. Langsame Präzipitationsreaktionen zwischen Kationenindikator und Detektorkation werden hier ebenso wie bei Variante 1 vermieden. Da aus dem unter 1 genannten Grund das Detektionsreagens leicht sauer sein muß, ist die Anwendung dieser Variante auf neutrale bis alkalische Elutionsmittel beschränkt. Eine Einschränkung der Anwendbarkeit dieser Variante kommt von der Gefahr einer Zerstörung des Trennmaterials durch Verunreinigungen des Kationenindikators bzw. durch langsam akkumulierende Präzipitate des Kationenindikators mit im Elutionsmittel als Kontaminator vorhandenen polyvalenten Kationen.
Das erfindungsgemäße Verfahren eignet sich auch, Polyanionen/Oxyan
ionen nach ihrer chromatographischen oder elektrophoretisch/iontopho
retischen Auftrennung auf Papier, Folien, Dünnschichtgelen oder
-platten geeigneter Beschaffenheit mit Nanomol-Empfindlichkeit
semiquantitativ zu detektieren. Hierbei gelten die gleichen Prinzipien
wie in den vorhergehenden Abschnitten erläutert.
Die Detektion erfolgt zweckmäßigerweise durch Entwicklung der Träger
mittels eines Sprüh- oder Tauchreagenzes. Erfolgt die Trennung auf dem
Dünnschichtträger im Alkalischen, so kann dies allein durch Besprühen
mit oder Tauchen in einem Detektionsreagens bewerkstelligt werden.
Dieses enthält Detektorkation und den Kationenindikator in der Regel
beide in mikro- bis millimolaren Konzentrationen in schwach saurer nur
gering gepufferter Lösung. Erfolgt die Trennung auf dem Dünnschicht
träger bei sauren pH-Werten, so kann man entweder unmittelbar vor
Verwendung des Reagenzes diesem eine größere Konzentration eines auf
alikalische pH-Werte eingestellten Puffers zusetzen oder die mit dem
Detektionsreagens behandelten Dünnschichtträger in einem Dampf einer
volatilen Base, zum Beispiel in Ammoniakdampf, so lange entwickeln, bis
auf dem Dünnschichtträger ausreichend alkalische pH-Werte erreicht
sind.
Alternativ kann die Trennung auf dem Dünnschichtträger in Gegenwart
entweder des Detektorkations oder des Kationenindikators im
Chromatographie- bzw. Elektrophoresepuffer erfolgen und die Enwicklung
sodann mit einem Detektionsreagens erfolgen, das die zweite nötige
Komponente und gegebenenfalls auf alkalischen pH-Wert eingestellten
Puffer enthält. Diese Variante ist dann gut praktikabel, wenn das
Laufmittel bzw. der Elektrophoresepuffer sauer ist, dann wird
zweckmäßigerweise das Detektorkation zum Laufmittel/Elektrophore
sepuffer zugesetzt. Im Detektionsreagens ist dann in der Regel eine
problemlose Mischung des Kationenindikators mit auf alkalischen pH
eingestelltem Puffer möglich.
Bei der Anwendung dieses Detektionsverfahrens auf Dünnschichtplatten
oder Folien kann häufig eine erhebliche Sensitivitätssteigerung durch
geeignete Vorbehandlung der Dünnschichtträger zur Entfernung
höherwertiger Kationen erreicht werden. Geeignet sind Vorbehandlungen
mit verdünnten vorzugsweisen volatilen Säuren, mit mikromolaren
Lösungen von Chelatoren und Vorläufe unter Trennbedingungen.
Für die Anwendung des erfindungsgemäßen Verfahrens zur photometrischen
oder fluorimetrischen quantitativen Bestimmung von Oxyanionen/
Polyanionen in gelösten Einzelproben gelten sinngemäß die in den
vorhergehenden Abschnitten genannten Prinzipien und Bedingungen. Am
zweckmäßigsten erfolgt eine solche Bestimmung, in dem man zu Proben,
die bis auf das oder die zu bestimmenden Oxyanionen/Polyanionen immer
eine konstante ionale Zusammensetzung aufweisen, und die gegebenenfalls
durch Pufferzusatz auf konstanten alkalischen pH-Wert gebracht wurden,
ein definiertes Volumen eines schwach sauren Detektionsreagenzes
zumischt, welches Detektorkation und Kationenindikator, beide in der
Regel in mikromolaren Konzentrationen, enthält. Die photometrische oder
fluorimetrische Messung erfolgt zweckmäßigerweise bei definierter
Temperatur und für alle Proben zu identischer Zeit nach Zumischung des
Detektionsreagenzes.
Picomol-Analytik zellulärer Phosphoverbindungen, speziell der Inositol
polyphosphate, durch Anionenaustausch-HPLC mit Metall-Indikator-Nach
säulendetektion.
Für diese Analysen wurde eine Elution mit einem stark sauren
Elutionssystem auf Styrol-Anionenaustauscher mit der Detektionsvariante
1 kombiniert.
Ein HPLC-System von Pharmacia-LKB, Freiburg (zwei Pumpen P-3500,
Controller LCC-500, niederdruckseitige Gradientenmischung mittels
Mischventils, Monitor UV-M, und automatischer Probengeber ACT-100)
wurde für die HPLC-Analysen verwendet. Alle mit Elutionsmittel
benetzten Teile des HPLC-Systems wurden aus Teflon, Titan oder Plastik
gefertigt. Glas-Säulen des Typs HR-5 (5, 10 oder 20 cm Länge) wurden
mit Anionenaustauscherharz des Typs Mono-Q (Monodisperse Anionenaus
tauscherpartikel auf Styrolbasis mit 10 µm Durchmesser und niedriger
Austauscherkapazität) gepackt. Eine Filtereinheit (8 mm Durchmesser)
mit einem 1 mm dicken Zellulosefilter und einem hydrophoben Filter mit 1
µm Porendurchmesser (Schleicher und Schüll) wurde der Säule zu deren
Schutz vorgeschaltet. Als schwaches Elutionsmittel (A) wurde 0,2 mM
HCl, welche 9 bzw. 18 µM YC13 enthielt, verwendet. Das starke
Elutionsmittel (B) enthielt 0,4 M HC1 und 14 bzw. 28 µM YCl3. Mit
diesen beiden Elutionsmitteln wurde ein aufwärts konkaver Gradient von
40 bis 70 min Dauer geformt. Das Detektionsreagens (C) enthielt 100 bis
500 µM PAR (aus 20 mM Stammlösung in Äthanol zugegeben) und 1,3 M
Triäthanolamin, mit HCl auf pH 8,4 eingestellt. Alle Lösungen wurden
unmittelbar vor Benützung durch Millipore-Filter mit 1 µm Porendurch
messer gefiltert und hierbei gleichzeitig entgast, zusätzlich wurden die
beiden Elutionslösungen kontinuierlich durch Heliumbegasung entgast.
Die Flußgeschwindigkeit des Elutionsmittels betrug 1 ml/min, das
Detektionsreagens wurde mit einer Flußgeschwindigkeit von 0,5 ml/min
mit einer zweiten HPLC Pumpe nach der Trennsäule über ein T-Verbindungs
stück zugeführt. Vor diesem T-Stück war eine Filtereinheit analog der
oben beschriebenen installiert. Sie enthielt nur ein Zellulose-Filter.
Eine "gestrickte" Kapillare mit einem Totalvolumen von 200 bis 400 µl
wurde zur gleichmäßigen Vermischung von Detektionsreagens und Eluans
verwendet. Die Detektion erfolgte bei 546 nm über eine optische
Weglänge von 5 mm. Das Detektorsignal wurde nach dem Start jedes
Einzelchromatogramms automatisch auf Null gesetzt und invertiert. Das
invertierte Signal wurde von einem Integrator der Firma Shimadzu,
Düsseldorf (C-R5A Chromatopac) Basislinien-subtrahiert und integriert.
Biologische Extrakte wurden zum Teil durch eine Kohlebehandlung von
Nukleinsäuren und zum Teil durch eine sich anschließende Festphasen
extraktion von die Retentionszeiten beeinflussenden höheren Salzkon
zentrationen.
Abb. 2 zeigt für einige Phosphoverbindungen die Abhängigkeit der
Amplituden-Zeit-Integrale der Detektorsignale von der Substanzmenge.
Mit Ausnahme einiger Nucleotide zeigten alle unter den angegebenen
Bedingungen analysierten Phosphoverbindungen eine nahezu lineare
Abhängigkeit der Flächenintegrale von der Substanzmenge bis herab zu
etwa 50 Picomolen Substanzmenge. Die Detektionsempfindlichkeit zeigte
bei den Inositolphosphaten eine Abhängigkeit von der Zahl der Phosphat
reste eines Moleküls. Sie war maximal bei Inositolhexakisphosphat.
Durch die Metall-Indikator-Detektion in Verbindung mit HPLC-Trennver
fahren werden Substanzen wie etwa Inositolpolyphosphate, für welche
bisher keinerlei hochempfindliche On-line-Detektionsverfahren
existierten, einer direkten Massenbestimmung mit Picomol-Empfindlich
keit zugänglich gemacht. Dies wird in Abb. 3 und Abb. 4 gezeigt.
Derartige Verbindungen finden sich in einer Vielzahl von verschiedenen
Isomeren in tierischen und pflanzlichen Zellen, viele von ihnen jedoch
nur in mikromolaren Konzentrationen. Gezeigt ist ein Chromatogramm, bei
dem eine Gesamtmenge von etwa 10 Nanomolen verschiedener Inositolphos
phate (von Inositolmono- bis -hexakisphosphat) zusammen mit einem
Gemisch verschiedener Mono- bis Trinukleotide injiziert wurde. Aus dem
Vergleich des unten eingeschobenen bei gleicher Empfindlichkeit vor der
Derivatisierung registrierten UV-Chromatogramms mit dem durch Metall-
Indikator-Detektion erhaltenen Chromatogramm (oben) wird klar, daß
selbst Nukleotide mit letzterer Methode zumeist vielfach empfindlicher
als mittels UV-Absorption detektierbar werden.
In Abb. 4 sind Beispiele der Analytik solcher polyvalenter
Oxyanionen aus biologischem Material gezeigt. Auf dem linken Teilbild
sind die Analysen von je 30 µl Vogelvollblut nach einstündiger
Inkubation (im Tonometer) bei 20 Vol.% 02 (unteres Chromatogramm) und
0 Vol.% 02 (oberes Chromatogramm) dargestellt. Die Analysen wurden
ohne vorherige Kohlebehandlung durchgeführt, entsprechend werden sowohl
Nukleotide als auch Zucker- und Inositolphosphate detektiert. Im
rechten Teilbild ist die Analyse der (Nicht-Nukleotid-)Phosphoverbin
dungen von unstimulierten und stimulierten Blutplättchen (unteres bzw.
oberes Chromatogramm) dargestellt. Durch eine vorausgehende Kohle
extraktion wurden die zellulären Nukleotide bis auf einen kleinen Rest
an ATP weitgehend entfernt.
Hochempfindliche Analytik von Polyphosphaten, und von Di-, Tri- und
Tetracarbonsäuren mittels Anionenaustausch-HPLC mit Metall-Indikator-
Detektion.
Diese Verbindungen spielen als Wasserenthärter und Chelatoren in
Haushalt bzw. Industrie eine große Rolle, Polyphosphate kommen
darüberhinaus bei einigen, Di- und Tricarbonsäuren bei allen Lebewesen
vor. Ihr empfindlicher Nachweis, von zunehmender Bedeutung v.a. in der
Umweltanalytik, ist mit dem erfindungsgemäßen Verfahren möglich. Für
die Analytik von Polyphosphaten kann das stark saure Elutionsmittel wie
in Beispiel 1 beschrieben verwendet werden. Auf Grund der niedrigen
pKs-Werte dieser Verbindungen ist hierbei eine adäquate Trennung auf
Anionenaustauschern möglich. Dies ist in Abb. 5 für ein Gemisch von
Polyphosphaten gezeigt. Die verwendeten Elutions- und Detektions
bedingungen sind ähnlich denjenigen von Beispiel 1. Bei niedrigeren
Assoziationskonstanten der zu analysierenden Verbindungen für das
Detektorkation kann es günstig sein, durch einen leicht sauren pH-Wert
des Detektionsreagens auch die Stabilitätskonstante des PAR-Detektor
kation-Komplexes zu erniedrigen, oder einen weniger affinen Kationen
indikator (z.B. Tetramethylmurexid) zu wählen. Dies begünstigt die
Linearität der Detektion. Auch (Poly)Sulfonylverbindungen, welche
zunehmend als Polyphosphatersatzstoffe Verwendung finden, können mit
diesem System bestimmt werden.
Für eine adäquate HPLC-chromatographische Trennung von Di-, Tri- und
Tetracarbonsäuren muß auf Grund der z.T. deutlich höheren pKs-Werte
ein weniger saures Elutionssystem verwendet werden. Es eignen sich
beispielsweise 5 mM Tetramethylammoniumacetat, pH 5,0, 25 µM YCl3 als
schwaches Elutionsmittel und 5 mM Tetramethylammoniumacetat, 0,6 M
Tetramethylammoniumchlorid, pH 5,0, 25 µM YCl3 als starkes Elutions
mittel. Als Detektionsreagens eignet sich 300 µM PAR in 30 mM
Triäthanolamin/HCl, pH 9,0, in einem Volumenverhältnis von 0,5:1 zum
Säuleneluat zugemischt.
Detektion von auf Papier oder Dünnschichten getrennten Oxyanionen
mittels eines Metall-Indikator-Reagenzes.
Polyvalente Oxyanionen können elektrophoretisch/iontophoretisch auf
Papier, Zellulose- und anderen hydrophilen Dünnschichtträgern oder
Dünnschichtgelen aufgetrennt werden. Darüberhinaus können derartige
Verbindungen auch chromatographisch auf Papier, hydrophilen Dünnschicht
trägern (z.B. Zellulose, Polyäthylenimin-Zellulose, organischen
Ionenaustauschharzen) aufgetrennt werden. Mit Ausnahme von Nukleotiden,
die auf Fluorophor-imprägnierten Dünnschichten über die Quenchung der
UV-Fluoreszenz des Trägermaterials hochsensitiv (bis zu etwa 0,2
nMolen) detektierbar sind, gibt es für Polyanionen und Oxyanionen keine
vergleichbar sensitive Detektionsmöglichkeit. Phosphoverbindungen
werden üblicherweise mit Hanes-Isherwood-Reagens (Hanes, C.S. &
Isherwood, F.A. (1949) Nature 164, 1107-1110) detektiert, hierbei
werden jedoch typischerweise Substanzmengen deutlich über 20 nMolen
benötigt.
Das erfindungsgemäße Verfahren der Metall-Indikator-Detektion erlaubt
eine Detektion mit Subnanomol-Empfindlichkeit.
In dem in Abb. 6 gezeigten Beispiel wurden Gemische von Nukleotiden auf
vorbeschichteten HPTLC-Dünnschichtplatten der Firma E. Merck, Darm
stadt, Typ NH2 F254s (Nr. 15647) in folgendem Laufmittel aufge
trennt: 0,2 M Tetramethylammoniumchlorid, pH 6, in Aceton/Wasser
(20:80, v/v). Die HPTLC-Platten wurden mit diesem Laufmittel durch
mehrmaliges Tauchen vorbehandelt. Nach der Chromatographie wurden die
Nukleotide über die Quenchung der UV-Fluoreszenz identifiziert.
Für die Metall-Indikator-Detektion wurden folgende Lösungen herge
stellt: 25 mM Triäthanolamin/HCl, pH 9, mit 250 µM PAR (alkalische
Indikatorlösung); 0,5 mM YCl3 pH 6 (Detektorkation-Lösung).
Unmittelbar vor Benutzung wurden diese beiden Lösungen im Verhältnis
4:1 gut vermischt und die Platten sofort hierin getaucht oder hiermit
besprüht und angetrocknet. Die Substanzflecken lassen sich durch ihre
hellere, gelbliche Färbung auf dem dunkler braunen Hintergrund
erkennen. Wurden sehr kleine Substanzmengen appliziert, so läßt sich
durch eine Verringerung der Konzentration von Detektorkation und
Indikator die Empfindlichkeit deutlich steigern. Substanzmengen unter 1
nMol lassen sich so problemlos detektieren bzw. mittels eines Dünn
schichtscanners bei 520 bis 540 nm quantifizieren.
Fig. 1
REALISIERUNG EINES HPLC-SYSTEMS MIT METALL-INDIKATOR-DETEKTION.
REALISIERUNG EINES HPLC-SYSTEMS MIT METALL-INDIKATOR-DETEKTION.
A: Prinzip der Detektion; B: Aufbau des HPLC-Systems. Me, ein zur
Detektion geeignetes Übergangsmetall; InsPx, Inositolpolyphosphat als
typischer Vertreter polyvalenter Oxyanionen; PAR, 4-(2-Pyridylazo)-
Resorcin; A und B, schwaches bzw. starkes Elutionsmittel; C, Indikator-
Reagens.
Fig. 2
LINEARITÄT DER MASSENBESTIMMUNG VON OXYANIONEN DURCH METALL-INDIKATOR- DETEKTION.
LINEARITÄT DER MASSENBESTIMMUNG VON OXYANIONEN DURCH METALL-INDIKATOR- DETEKTION.
Die Substanzen, die in der Abbildung spezifiziert sind (Ins steht für
Inositol, 2,3 BPG für 2,3-Bisphosphoglyzerat) wurden auf eine Säule
Mono Q (5/5) injiziert. Die Elutionsmittel A und B enthielten 9 bzw. 14
µM YCl3. Das Detektionsreagens C enthielt 100 µM PAR. Eluiert wurden
die Substanzen mit einem aufwärts konkaven Gradienten von 40 min Dauer.
Fig. 3
HPLC-ANALYSE EINES GEMISCHES VON INOSITOLPHOSPHATEN UND NUCLEOTIDEN MITTELS METALL-INDIKATOR-DETEKTION.
HPLC-ANALYSE EINES GEMISCHES VON INOSITOLPHOSPHATEN UND NUCLEOTIDEN MITTELS METALL-INDIKATOR-DETEKTION.
Die Trennung erfolgte auf einer Mono Q (5/15)-Säule. Die Elutionspuffer
waren wie unter Abb. 2 beschrieben, das Reagens C enthielt jedoch 200
µM PAR. Die Flußraten für das Elutionsmittel und Reagens C waren 1,2
bzw. 0,6 ml/min. Der angelegte Gradient ist in die Abbildung eingezeichnet.
Das obere Chromatogramm zeigt das Detektorsignal der Metall-Indikator-
Detektion (5 mm opt. Weglänge, 546 nm), der linke Balken gibt 0,01
Absorptionseinhieten an. Unten ist das gleichzeitig durch UV-Detektion
(254 nm, 5 mm opt. Weglänge) vor Zumischung von Reagens C erhaltene UV-
Chromatogramm dargestellt. Die Zahlen auf den Signalgipfeln bedeuten:
(Inositol ist jeweils mit Ins abgekürzt) 1, Pi+InsP; 2, Ins(1,2)P₂ +Ins(1,6)P₂; 3, PPi; 4, nicht identifiziert; 5, Ins(1,3,5)P₃+ Ins(2,4,6)P₃; 6, Ins(1,3,4)P₃; 7, Ins(1,2,3)P₃+Ins(1,2,6)P₃+ Ins(1,4,5)P₃+Ins(2,4,5)P₃; 8, Ins(1,5,6)P₃, 9, Ins(4,5,6)P₃; 10, Ins(1,2,3,5)P₄+Ins(1,2,4,6)P₄; 11. Ins(1,2,3,4)P₄ vor Ins(1,2,4,5)P₄+Ins(1,3,4,6)P₄; 12, Ins(1,3,4,5)P₄; 13, Ins(1,2,5,6)P₄; 14, Ins(2,4,5,6)P₄; 15, Ins(1,4,5,6)P₄; 16, Ins(1,2,3,4,6)P₅; 17, Ins(1,2,3,4,5)P₅; 18, Ins(1,2,4,5,6)P₅; 19, Ins(1,3,4,5,6)P₅; 20, InsP₆. Die entsprechenden Buchstaben im unteren Chromatogramm bezeichnen:
a, AMP+CMP+NAD; b, cAMP; c, GMP; d, NADH; e, UMP; f, NADP; g, ADP+ADPR; h, ATP+CTP; i, GDP; k, IDP; l, GTP; m, UDP; n, ITP; o, UTP. Die injizierten Mengen einzelner Substanzen variierten zwischen 50 und 1500 pMol. InsP wurde in einer Menge von 5 nMol injiziert.
(Inositol ist jeweils mit Ins abgekürzt) 1, Pi+InsP; 2, Ins(1,2)P₂ +Ins(1,6)P₂; 3, PPi; 4, nicht identifiziert; 5, Ins(1,3,5)P₃+ Ins(2,4,6)P₃; 6, Ins(1,3,4)P₃; 7, Ins(1,2,3)P₃+Ins(1,2,6)P₃+ Ins(1,4,5)P₃+Ins(2,4,5)P₃; 8, Ins(1,5,6)P₃, 9, Ins(4,5,6)P₃; 10, Ins(1,2,3,5)P₄+Ins(1,2,4,6)P₄; 11. Ins(1,2,3,4)P₄ vor Ins(1,2,4,5)P₄+Ins(1,3,4,6)P₄; 12, Ins(1,3,4,5)P₄; 13, Ins(1,2,5,6)P₄; 14, Ins(2,4,5,6)P₄; 15, Ins(1,4,5,6)P₄; 16, Ins(1,2,3,4,6)P₅; 17, Ins(1,2,3,4,5)P₅; 18, Ins(1,2,4,5,6)P₅; 19, Ins(1,3,4,5,6)P₅; 20, InsP₆. Die entsprechenden Buchstaben im unteren Chromatogramm bezeichnen:
a, AMP+CMP+NAD; b, cAMP; c, GMP; d, NADH; e, UMP; f, NADP; g, ADP+ADPR; h, ATP+CTP; i, GDP; k, IDP; l, GTP; m, UDP; n, ITP; o, UTP. Die injizierten Mengen einzelner Substanzen variierten zwischen 50 und 1500 pMol. InsP wurde in einer Menge von 5 nMol injiziert.
Fig. 4:
ANALYSE VON POLYPHOSPHOVERBINDUNGEN LEBENDER ZELLEN DURCH HPLC MIT METALL-INDIKATOR-DETEKTION.
ANALYSE VON POLYPHOSPHOVERBINDUNGEN LEBENDER ZELLEN DURCH HPLC MIT METALL-INDIKATOR-DETEKTION.
Säulentyp und Elutionsprotokoll waren wie für Abb. 3 beschrieben, außer
daß hier der letzte Teil des Gradienten etwas steiler war. Die
Absorption wurde bei 546 nm (5 mm opt. Weglänge) gemessen, die Balken
geben 0,01 Absorptionseinheiten an.
(A) Analyse von Perchlorsäureextrakten von normoxem und anoxem
Vogelblut. Heparinisiertes Vollblut einer Hausgans wurde bei 40°C in
einem Tonometer gegen eine feuchte Gasphase aus 5% CO2, 75% N2 und
20% O2 bzw. 5% CO2 und 95% N2 für 2 Stunden equilibriert. Neutralisierte Perchlorsäureextrakte aus jeweils 30 µl Vollblut wurden injiziert. Die identifizierten Verbindungen sind mit denselben Abkürzungen wie in Abb. 3 verwendet markiert.
20% O2 bzw. 5% CO2 und 95% N2 für 2 Stunden equilibriert. Neutralisierte Perchlorsäureextrakte aus jeweils 30 µl Vollblut wurden injiziert. Die identifizierten Verbindungen sind mit denselben Abkürzungen wie in Abb. 3 verwendet markiert.
(B) Analyse der Nicht-Nucleotid-Phosphoverbindungen von Thrombozyten im
unstimulierten Zustand (unteres Chromatogramm) und 2 min nach Zugabe
von einer Einheit Thrombin/ml (oberes Chromatogramm). Jeweils 30 mg
gepackter Zellen wurden Perchlorsäure-extrahiert, zur Entfernung von
Nucleotiden kohlebehandelt und schließlich zur Entfernung der Salze des
Suspensionsmediums auf kleinen Anionenaustauschersäulen Festphasen
extrahiert. Das mit gestrichelter Linie eingezeichnete mittlere
Chromatogramm stammt von einer Standardmischung aus 1 nMol ATP, 1 nMol
Ins(1,4)P2, 1 nMol 2,3-BPG, 500 pMol Ins(1,4,5)P3, 500 pMol
Ins(1,3,4,5)P4, and 500 pMol Ins(1,4,5,6)P4.
Fig. 5
METALL-INDIKATOR-DETEKTION VON HPLC-CHROMATOGRAPHISCH GETRENNTEN POLYPHOSPHATEN.
METALL-INDIKATOR-DETEKTION VON HPLC-CHROMATOGRAPHISCH GETRENNTEN POLYPHOSPHATEN.
Die Chromatographie wurde ähnlich wie für Abb. 2 beschrieben durchge
führt. Als Detektorkation wurde Lanthan verwendet. Die hierdurch
erreichbare Detektionsempfindlichkeit ist etwa 1/5 derjenigen von
YCl3. Die Elutionsmittel A und B enthielten 18 bzw. 28 µM LaCl3,
das Detektionsreagens enthielt 500 µM PAR. Injiziert wurden: Pi, 5
nMol; PPi, 5 nMol, Trimetaphosphat, 2,5 nMol; Tetrapolyphosphat, 4
nMol; Pentapolyphosphat, 1 nMol. Der Balken zeigt eine Absorption von
0,01 bei 546 nm (5 nm opt. Weglänge) an.
Fig. 6
METALL-INDIKATOR-DETEKTION VON AUF HPTLC-DUNNSCHICHTPLATTEN GETRENNTEN NUCLEOTIDEN UND ANDEREN PHOSPHOVERBINDUNGEN.
METALL-INDIKATOR-DETEKTION VON AUF HPTLC-DUNNSCHICHTPLATTEN GETRENNTEN NUCLEOTIDEN UND ANDEREN PHOSPHOVERBINDUNGEN.
Siehe Text zu Beispiel III für den HPTLC-Trägertyp, die Laufbedingungen
und die Durchführung der Detektion. Mittels Metall-Indikator-Detektion
identifizierte Substanzflecke für Nucleotide waren jeweils identisch
mit den durch Quenchung der UV-Fluoreszenz identifizierten (punktiert).
Aufgetragen wurden (jeweils 1 nMol Substanz): 1, ATP; 2, ADP; 3, AMP;
4, GTP; 5, GDP; 6, GMP; 7, UTP; 8, UMP; 9, Pi; 10, PPi; 11,
Ins(1,4)P2; 12, Ins(1,4,5)P3.
Claims (7)
1. Verfahren zur komplexometrischen Detektion und quantitativen
Bestimmung von Oxyanionen/Polyanionen mit bis zu Picomol-
Empfindlichkeit
dadurch gekennzeichnet, daß man
- a) die Komplexbildung von Oxyanionen/Polyanionen beliebiger Struktur mit mehrwertigen Kationen, insbesondere zwei- oder höherwertigen Metallen oder Übergangsmetallen, Scandium, Yttrium, Lanthaniden oder Actiniden als Detektionsprinzip (Detektorkation!) zugrunde legt,
- b) diese Komplexbildung mittels eines kationenspezifischen Farbstoffes, oder Fluorophors, oder eines andersartigen sog. Kationenindikators (Beispiele: Murexid, Tetramethylmurexid, Pyridylazo-Resorcinol, Chlortetracyclin, Antipyrylazo, Quin, Fura, Indo, Kronenverbindungen) über die Veränderung von Absorption, Fluoreszenz, oder einer anderen Eigenschaft des entsprechenden Kationenindikators verfolgt,
- c) die nach a) und b) bezeichneten Prinzipien derart zu einem ternären Detektionsprinzip kombiniert, daß hiermit eine hochsensitive, quantitative Nachsäulendetektion von flüssigkeitschromatographisch getrennten Oxyanionen/Polyanionen beliebiger Struktur ermöglicht wird,
- d) die nach a) und b) bezeichneten Prinzipien derart zu einem ternären Detektionsprinzip kombiniert, daß hiermit eine semiqantitative Detektion von chromatographisch oder elektrophoretisch auf Dünnschichtträgern getrennten Oxyanionen/Polyoxyanionen mittels Sprüh oder Tauchreagens ermöglicht wird.
- e) die nach a) und b) bezeichneten Prinzipien derart zu einem ternären Detektionsprinzip kombiniert, daß hiermit ein hochsensitives, quantitatives photometrisches oder fluorimetrisches Verfahren zur Bestimmung von Oxyanionen/Polyanionen aus Einzelproben ermöglicht wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1c), dadurch gekennzeichnet, daß man eine
analytische Auftrennung von Oxyanionen/Polyanionen, auf
Anionenaustauschermaterialien jedweder Strukur in Trennsäulen jedweder
Art bei beliebigen Drücken durchgeführt, mit einer Detektion nach dem
erfindungsgemäßen Verfahren in einer der folgenden Varianten
kombiniert:
- a) Elutionsmittel mit beliebigem pH-Wert, vorzugsweise unter pH 5, enthält das Detektorkation. Nach der Trennsäule kontinuierliche Zumischung von Kationenindikator und, vorzugsweise bei saurem Elutionsmittel, von Puffer, eingestellt auf pH-Wert über 5, vorzugsweise über 8, dessen Kapazität so bemessen ist, daß sich ein stabiler, höherer pH-Wert einstellt. Detektion entsprechend dem verwendeten Kationenindikator durch Absorptions-, Fluoreszenz-, oder anderes adäquates Detektorsystem.
- b) Elutionsmittel mit beliebigem pH-Wert enthält weder Detektorkation noch Kationenindikator. Nach der Trennsäule kontinuierliche Zumischung sowohl des Detektorkations als auch des Kationenindikators jeweils einzeln oder als Gemisch, und, bei saurem Elutionsmittel, von Puffer mit pH-Wert über 5, vorzugsweise über 8, in genügender Kapazität. Detektion wie unter a).
- c) Elutionsmittel mit beliebigem pH-Wert enthält den Kationenindikator. Nach der Trennsäule kontinuierliche Zumischung des Detektorkations, und, bei saurem Elutionsmittel von Puffer mit pH-Wert über 5, vorzugsweise über 8, in genügender Kapazität. Detektion analog a).
3. Verfahren nach Anspruch 1c), dadurch gekennzeichnet, daß man eine
chromatographische Auftrennung von Oxyanionen/Polyanionen im
analytischen Maßstab mittels des Prinzips der Ionenpaarchromatographie,
auf beliebiger hydrophober stationärer Phase mit beliebigem Ionenpaar-
Reagens durchgeführt, mit dem erfindungsgemäßen Detektionsverfahren
unter einer der in Anspruch 2a) bis c), genannten Varianten
kombiniert.
4. Verfahren nach Anspruch 1c), dadurch gekennzeichnet, daß man im
analytischen Maßstab eine Trennung von Polyanionen/Oxyanionen nach dem
Prinzip der Adsorptionschromatographie, der Verteilungschromatographie,
der Ionenausschlußchromatographie, der hydrophoben Chromatograpie, der
Gelfiltration, der isoelektrischen Fokussierung oder einer anderen
flüssigkeitschromatographischen Technik durchführt und mit dem
erfindungsgemäßen Detektionsverfahren in einer der bei Anspruch 2
genannten Varianten a) bis c) kombiniert.
5. Verfahren nach Anspruch 2, 3 oder 4, dadurch gekennzeichnet, daß
man die genannte chromatographische Auftrennung von Oxyanionen/
Polyanionen im halbpräparativen oder präparativen oder großtechnischen
Maßstab unter Verwendung entsprechend dimensionierter Säulen und
entsprechend geeigneter Säulenmaterialien jedweder Struktur durchführt,
und von einem vom Eluat mit konstanter Flußrate abgezweigten
Volumenanteil eine kontinuierliche Detektion nach dem erfindungsgemäßen
Verfahren entsprechend einer der in Anspruch 2a) bis c) bezeichneten
Varianten durchführt.
6. Verfahren nach Anspruch 1d), dadurch gekennzeichnet, daß man nach
einer chromatographischen oder elektrophoretischen Auftrennung von
Oxyanionen/Polyanionen auf Papier, Folie, Dünnschichtgel oder
Dünnschichtplatten jedweder Beschaffenheit deren Detektion durch die
Verwendung eines Sprühreagens durchführt, welches Detektorkation,
Kationenindikator und, bei sauren pH-Werten von Laufmittel bzw.
Elektrophoresepuffer, Puffer mit einem pH-Wert über 5, vorzugsweise
über 8, enthält; oder, in dem man ein entsprechendes Reagens verwendet,
das nur eine der beiden für die Detektion nötigen Komponenten enthält
und die andere Komponente ins Laufmittel bzw. den Elektrophoresepuffer
einbringt.
7. Verfahren nach Ansprüchen 1 mit 7, bei welchen mehrere Detektor
kationen oder Kationenindikatoren gleichzeitig oder andere als die bei
den Ansprüchen 1a) und 1b) beispielhaft angegebenen Detektorkationen
und Kationenindikatoren angewendet werden oder bei denen abweichende
Bedingungen verwendet werden, das Detektionsprinzip jedoch dem in
Anspruch 1 erläuterten ternären Prinzip grundsätzlich entspricht.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19883823996 DE3823996A1 (de) | 1988-07-15 | 1988-07-15 | Verfahren (metall-indikator-detektion) zur komplexometrischen bestimmung von oxyanionen/ polyanionen mit picomol-empfindlichkeit anwendung zur kontinuierlichen nachsaeulendetektion bei fluessigkeitschromatographischer auftrennung und zur detektion nach trennung auf duennschichttraegern |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19883823996 DE3823996A1 (de) | 1988-07-15 | 1988-07-15 | Verfahren (metall-indikator-detektion) zur komplexometrischen bestimmung von oxyanionen/ polyanionen mit picomol-empfindlichkeit anwendung zur kontinuierlichen nachsaeulendetektion bei fluessigkeitschromatographischer auftrennung und zur detektion nach trennung auf duennschichttraegern |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE3823996A1 true DE3823996A1 (de) | 1990-01-18 |
Family
ID=6358731
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19883823996 Withdrawn DE3823996A1 (de) | 1988-07-15 | 1988-07-15 | Verfahren (metall-indikator-detektion) zur komplexometrischen bestimmung von oxyanionen/ polyanionen mit picomol-empfindlichkeit anwendung zur kontinuierlichen nachsaeulendetektion bei fluessigkeitschromatographischer auftrennung und zur detektion nach trennung auf duennschichttraegern |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE3823996A1 (de) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE19703025A1 (de) * | 1997-01-28 | 1998-07-30 | Bernd Dr Lorenz | Methode zur Bestimmung von anorganischen Polyphosphaten, Pyrophosphat und ähnlichen Verbindungen unter Verwendung von Fura-2 oder anderen kationensensitiven Fluoreszenzfarbstoffen und ihre Anwendung |
CN112240916A (zh) * | 2020-09-03 | 2021-01-19 | 四川佳士特环境检测有限公司 | 一种水中高氯酸盐测定的方法 |
-
1988
- 1988-07-15 DE DE19883823996 patent/DE3823996A1/de not_active Withdrawn
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE19703025A1 (de) * | 1997-01-28 | 1998-07-30 | Bernd Dr Lorenz | Methode zur Bestimmung von anorganischen Polyphosphaten, Pyrophosphat und ähnlichen Verbindungen unter Verwendung von Fura-2 oder anderen kationensensitiven Fluoreszenzfarbstoffen und ihre Anwendung |
DE19703025C2 (de) * | 1997-01-28 | 1999-04-29 | Bernd Dr Lorenz | Verfahren zur Messung von Konzentrationen sowie zur kontinuierlichen oder diskontinuierlichen Messung des Umsatzes und der Geschwindigkeit enzymatischer oder nichtenzymatischer Reaktionen von Pyrophosphaten und/oder linearen Polyphosphaten unter Ausschluß von zyklischen Polyphosphaten als auch von Orthophosphaten in einer Probe sowie Anwendung des Verfahrens |
CN112240916A (zh) * | 2020-09-03 | 2021-01-19 | 四川佳士特环境检测有限公司 | 一种水中高氯酸盐测定的方法 |
CN112240916B (zh) * | 2020-09-03 | 2023-05-30 | 四川佳士特环境检测有限公司 | 一种水中高氯酸盐测定的方法 |
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