DE19822050A1 - Verfahren zur Durchführung von chemischen oder biologischen Reaktionen - Google Patents
Verfahren zur Durchführung von chemischen oder biologischen ReaktionenInfo
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Abstract
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Durchführung von chemischen oder biologischen Reaktionen in einer mit einer Rührvorrichtung ausgestatteten, ein flüssiges, feste Partikeln enthaltendes Medium aufweisenden Kammer, wobei die Reaktion an den festen Partikeln erfolgt und diese festen Partikeln von einem für das flüssige Medium durchlässigen Behältnis umfaßt werden. Ein solches Verfahren bietet erhebliche Vorteile, wenn Reaktionen mit empfindlichen Komponenten durchgeführt werden, weil das erfindungsgemäße Verfahren eine vollständige Trennung des von dem Behältnis umfaßten Raums und dem Rest der Kammer vorsieht. DOLLAR A Das erfindungsgemäße Verfahren wird am besten mit einem bestimmten Behältnis durchgeführt, das sich besonders zum Einsatz in kommerziell erhältlichen Gewebekulturplatten eignet. Das Behältnis gemäß der Erfindung umfaßt einen zylinderförmigen Mantel, ein Sieb sowie mindestens drei Standbeine. Bei Anwendung dieses Behältnisses und Verwendung eines Magnetrührers als Rührvorrichtung in der Vertiefung der Gewebekulturplatte kann auf äußerst schonende Weise eine Kultivierung von menschlichen oder tierischen Zellen durchgeführt werden.
Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Durchführung von chemischen oder biologischen
Reaktionen, welches in einer Kammer durchgeführt wird, welche mit einer Rührvorrichtung
ausgestattet ist und ein flüssiges Medium aufweist welches feste Partikeln enthält. Die
Erfindung betrifft ebenfalls ein Behältnis zur Durchführung des Verfahrens.
Verfahren welche in einem flüssigen Medium mit festen Partikeln, welches sich in einer
Kammer mit Rührvorrichtung befindet, durchgeführt werden, sind in der Technik ziemlich
üblich. Seither werden zwar solche Verfahren bevorzugt, welche in einem völlig homogenen
System ablaufen können wie z. B. in einer die Ausgangsprodukte sowie die Endprodukte in
gelöster Form enthaltenden Flüssigkeit, weil in einem solchen homogenen System die Konstanz
und Gleichmäßigkeit der Reaktionsbedingungen im Reaktionssystem am einfachsten zu
kontrollieren und zu beherrschen sind. In vielen Reaktionen müssen jedoch Produkte
eingesetzt werden, die bezüglich ihrer Löslichkeit unter den Bedingungen der Reaktion ein
Problem darstellen. Viele größere Moleküle wie z. B. Eiweißmoleküle oder Antikörper, stellen
dem Untersucher häufig solche Probleme, während bei Reaktionen, die nicht in einem zellfreien
sondern einem Zellen enthaltenden System durchgeführt werden müssen, naturgemäß ebenfalls
kein homogenes Reaktionssystem vorliegt.
Es sind verschiedene praktische Möglichkeiten verfügbar, um Reaktionen mit unlöslichen
Bestandteilen durchzuführen. So ist es möglich die unlöslichen Bestandteile in der Flüssigkeit
aufzuschwemmen wobei praktisch eine Suspension vorliegt. Dabei liegt die Notwendigkeit
vor, eine ständige Bewegung der Flüssigkeit vorzunehmen, da eine nicht ausreichende
Bewegung zu einem Gradient irgendwelcher Inhaltsstoffe der Flüssigkeit führen kann, wie
einem durch Diffusionsvorgänge entstandenen Gradient von löslichen Bestandteilen oder einem
schwerkraftbedingten Gradient der unlöslichen Bestandteile in der Flüssigkeit. Bei völlig
unzureichenden Rührbedingungen werden die Partikeln sich sogar auf dem Boden des
Reaktionsgefäßes absetzen was zu einer gänzlich mangelhaften Kontrolle führt. Diese
Verfahrensweise, insbesondere das Vorhandensein einer Rührvorrichtung, führt häufig zu
unerwünschten Nebeneffekten.
Es gibt manche Reaktionen welche extrem hohe Anforderungen an den Reaktionsbedingungen
stellen und wobei speziell die unlösliche Bestandteile im System relativ ungestört bleiben
müssen. Bereits geringe äußerliche Kräfte führen zu erheblichen Mängeln im
Reaktionsergehnis. Es ist offensichtlich, daß die Scherkräfte welche bei einem Rührvorgang
aufgeweckt werden können bereits zu solchen äußerlichen Kräften zu rechnen sind,
geschweige noch der direkte Kontakt der zwischen Rührvorrichtung und unlöslichen
Bestandteilen auftreten kann, denn dieser Kontakt kann bei empfindlichen, unlöslichen
Bestandteilen regelmäßig zu einer Zerstörung führen.
Ein weiterer Nachteil stellt manchmal die Tatsache dar, daß am Ende der Reaktion eine
Trennung der Bestandteile vorgenommen werden muß. Es liegt in der Natur der Sache, daß
eine Trennung zwischen Ausgangsprodukten und Endprodukt vorgenommen werden muß,
weil üblicherweise ein reines Endprodukt verlangt wird und ebenso ist es erforderlich in
solchen Fällen wo kein einzelnes Produkt sondern eine Mischung von verschiedenen Produkten
entsteht, auch hier eine Aufreinigung zu betreiben, wiederum damit als Ergebnis ein reines
Endprodukt vorliegt. In Verfahren wo unlösliche Bestandteile eine Rolle spielen, ist es
notwendig eine Trennung von gelösten und ungelösten Produkten vorzunehmen. Obwohl
bekanntermaßen die Filtrierungstechnik seit jeher technisch benutzt wird und dem Fachmann
eine Reihe von brauchbaren Techniken zur Verfügung steht, sind die Nachteile welche bei ihrer
Durchführung auftreten können, vielfältig und dem Fachmann ebenfalls bekannt. Auch die
einfachsten Filtrierverfahren stellen ein extra Schritt im Verfahren dar, welcher zu Verlusten an
Zeit und Material führt.
Eine besondere Art der Durchführung einer Reaktion mit einem System welche Partikeln in
einem flüssigen Medium umfaßt, betrifft die Kultivierung von menschlichen Zellen. Dabei
werden die Zellen in einer Kammer gehalten, welche ein Wachstumsmedium enthält und mit
einer Rührvorrichtung ausgestattet ist, und sind an einem Trägermaterial angesiedelt.
Es gibt in der Forschung und in der therapeutischen Medizin viele Gründe, menschliche Zellen
außerhalb des menschlichen Körpers am Leben zu halten oder sogar zu züchten, wobei hierbei
mit Zucht eine Vermehrung der menschlichen Zellen unter Laborbedingungen gemeint wird.
Es gibt z. B. konkrete Anforderungen aus der Humantherapie wo Knochenmark oder aus Blut
gewonnene periphere Knochenmarkstammzellen benötigt werden:
- (1) bei der autologen Knochenmarktransplantation wird einem Patienten Knochenmark entnommen und es ihm im Rahmen einer späteren Therapie oder z. B. nach erfolgter chemotherapeutischer Behandlung reimplantiert,
- (2) bei Erkrankungen von Blutzellen könnte man eine Heilung solcher Zellen außerhalb des Körpers zustande bringen, um anschließend die geheilten Zellen zu reimplantieren, eine solche gezielte Behandlung käme z. B. bei Leukämie in Betracht,
- (3) bei allogener Knochenmarkstransplantation wird Knochenmark eines gesunden Spenders einem Leukämiepatienten anstelle dessen eigenen Knochenmark implantiert.
Bei den hiervor aufgeführten Beispielen ist die Ursache des Leidens eine Störung auf dem
Niveau des Knochenmarks und stellt eine Behandlung mit Knochenmarkszellen somit eine
kausale Therapie der Krankheit dar.
Eine gängige Möglichkeit in bezug auf die Implantation eines Knochenmarkgemisches stellt die
Implantation von sogenannten Stammzellen dar. Solche Stammzellen sind die Vorläufer
sämtlicher Blutzellen und werden im Knochenmark sowie im peripheren Blut angetroffen.
Gerade die Tatsache, daß Stammzellen im Blut angetroffen werden, macht sie zu einer
attraktiven Möglichkeit, da eine wenig belastende Gewinnung möglich wird und durch eine
gezielte Gewinnung der gewünschten Stammzellen beim Spender kein Verlust anderer
Blutzellen eintritt.
Somit wird die Stammzelle für viele Anwendungen in der Humanmedizin als wertvolles
Ausgangsmaterial für eine kausale Therapie angesehen und hat es entsprechend viele
Anstrengungen gegeben, Stammzellen nach der Entnahme möglichst lange am Leben zu halten
und ein Verfahren zu entwickeln, die Stammzellen in vitro zu vermehren, um somit für die
Therapie eine unbeschränkte oder zumindest eine große Quelle von homogenem Material zur
Verfügung zu haben.
Was vorstehend beispielhaft für die Stammzelle beschrieben wurde, gilt natürlich
gleichermaßen für andere Zelltypen welche für eine kausale Therapie in Betracht kommen.
Dabei ist z. B. zu denken an Myokardzellen, Hirnzellen, Augenzellen, Leberzellen,
Nierenzellen, usw. Dabei muß der Bedarf auch nicht zum humanen Bereich beschränkt
angesehen werden, gleiche Anforderungen können sich stellen im Veterinärbereich oder im
Rahmen einer gezielten Sortenschutzentwicklung im Bereich der Entwicklung neuer
Pflanzenzüchtungen.
Ein großes Problem im Rahmen vieler Entwicklungsarbeiten stellt die Tatsache dar, daß bei
vielen Typen von Zellen eine ausgeprägte Empfindlichkeit vorliegt. Diese Empfindlichkeit
verhindert bereits eine sinnvolle Handhabung unter reinen Haltungsbedingungen und hat auch
zur Folge daß notwendige Untersuchungen zur Optimierung von Haltungs- und
Vermehrungsbedingungen nicht durchgeführt werden können.
Insbesondere auch bei den hämatopoietischen Zellen einschließlich Stammzellen sind die
praktischen Probleme bei der Entwicklung neuer therapeutischen Ansätze erheblich. Die
Zeilen zeigen eine besonders hohe Empfindlichkeit gegenüber jeder Abweichung von der
idealen Situation, wobei bereits geringe mechanische Belastungen zu einer Verschlechterung
der Überlebensrate der Zellen führt. Dies ist bei den Zellen dieses Zelltyps sicherlich teilweise
auf die Tatsache zurückzuführen, daß sie keine Zellwand aufweisen und aus dem Grunde
mechanischen Belastungen schlechter standhalten. Bereits eine relativ geringe
Scherkraftbelastung reicht aus, um eine hohe Mortalität bei diesen Zellen hervorzurufen.
Frühere Ansätze haben das Problem der hohen Empfindlichkeit nicht in ausreichendem Maße
lösen können.
In der Anmeldung P 195 05 109.2 wird ein Verfahren beschrieben, menschliche oder tierische
Zellmischpopulationen in einem Wirbelschichtreaktor auf mikroporöse Mikroträger
anzusiedeln. Bei diesem Verfahren aus dem Stand der Technik werden die Mikroträger
suspendiert in einem Wachstumsmedium gehalten, wobei die Strömungsgeschwindigkeit des
Wachstumsmediums gering gehalten wird, um mögliche Verluste zu vermeiden.
Das Verfahren hat trotz Vorteile die Probleme nicht vollständig lösen können. Es war bei
bestimmten Zelltypen, insbesondere bei den für Forschung und Therapie äußerst wertvollen
Stammzellen, nicht möglich, unter Routinelaborbedingungen Ansätze zu fahren, wobei die
Zellen in gewünschtem Umfang überlebten und eine Vermehrung konnte unter solchen
Bedingungen überhaupt nicht festgestellt werden.
Es ist ein weiteres Problem bei Forschungsanstrengungen dieser Art, daß die Menge des
verfügbaren Materials gering ist. Es ist den Spendern, egal ob Patient oder Proband nicht
zuzumuten, häufig eine Entnahme von größeren Mengen Blut oder Knochenmarksmaterial
vertragen zu müssen und folglich muß bei den Untersuchungen mit einer geringen Menge
Ausgangsmaterial gearbeitet werden, welche nur bedingt aus gleicher Quelle angefüllt werden
kann. Dies ist in der Phase, wo sich die Forschung zur Zeit befindet, besonders beschwerlich,
da die notwendigen Arbeiten zur Optimierung vieler Verfahrensparameter lediglich im Rahmen
eines umfangreichen Screeningprogramms sinnvoll zum Abschluß gebracht werden können.
Voraussetzung für ein solches Screeningprogramm ist die Verfügbarkeit einer größeren Menge
eines homogenen Ausgangsmaterials.
Der Erfindung lag die Aufgabe zugrunde ein Verfahren zur Durchführung von Reaktionen bei
denen feste Partikeln in einem flüssigen Medium beteiligt sind zur Verfügung zu stellen, das
einfach handhabbar und praktisch gut durchführbar ist und wobei insbesondere solche
Bedingungen im System vorliegen, daß das relativ aufwendige und zu Verlusten führende
Filtrierungsverfahren auf einfachere Weise durchgeführt werden kann. Durch das Verfahren
soll eine Verbesserung der Kultivierung von menschlichen oder tierischen Zellen möglich
werden, wobei die Kultivierung unter besonders schonenden Bedingungen durchgeführt wird.
Es ist dabei ein besonderes Ziel, ein Verfahren zur Verfügung zu stellen, wobei mit geringen
Mengen an Material gearbeitet werden kann.
Die Aufgabe wird durch ein Verfahren mit den kennzeichnenden Merkmalen des
Hauptanspruchs gelöst.
Es betrifft somit ein Verfahren zur Durchführung von chemischen oder biologischen
Reaktionen welche in einem flüssigen Medium enthaltend feste Partikeln durchgeführt wird.
Die chemischen und biologischen Reaktionen umfassen zunächst die übliche Lehrbuchchemie
wobei aus einem oder mehreren Ausgangsprodukten ein Endprodukt oder mehrere
Endprodukte gebildet werden. Dabei ist es im Rahmen der Erfindung möglich, daß ein
Ausgangsprodukt oder mehrere Ausgangsprodukte als feste Partikeln vorgelegt werden,
ebenso ist denkbar, daß nicht die Ausgangsprodukte sondern der bei der Reaktion erforderliche
Katalysator als festes Teilchen oder an feste Partikeln gebunden vorliegt. Dabei kann der
Katalysator anorganischer Natur sein oder ganz wesentlich im Rahmen der Erfindung ein
Enzym sein. Insbesondere Enzyme als hochmolekulare Produkte eignen sich besonders zur
Durchführung des erfindungsgemaßen Verfahrens. Die Enzyme können als Einzelprodukt
eingesetzt werden oder gekoppelt an irgendeinem Trägermaterial vorliegen. Insbesondere die
letztgenannte Anwendung wobei das Enzym mittels einer chemischen Reaktion oder eines
anderen Mechanismus an reaktionsneutrale Teilchen befestigt wird, stellt im Rahmen der
Erfindung eine besonders attraktive Verfahrensweise dar. Ebenso gut durchführbar ist das
Verfahren für biologische Reaktionen welche mit Hilfe einer Antikörperreaktion durchgeführt
werden. Das Antikörper kann dabei z. B. als Hilfsmittel bei der Aufreinigung oder für eine
beliebige andere Verwendung benutzt werden.
Die Reaktion wird in einer Kammer durchgeführt welche mit einer Rührvorrichtung
ausgestattet ist. Dabei kommt es auf die besondere Form der Kammer gar nicht an, gemeint ist
lediglich irgendeine Geometrie welche in der Lage ist, eine Flüssigkeit zu enthalten. Welche
Form die Kammer aufweist, aus welchem Material sie besteht, ob sie abschließbar ist oder
offen ausgebildet ist, ob sie ausgestattet ist mit bestimmten Zu- oder Abführleitungen, ob sie
begast werden kann, welches Volumen an Flüssigkeit sie aufnehmen hängt grundsätzlich von
dem jeweiligen Typ der anvisierten chemischen oder biologischen Reaktion ab.
Es sollte im Rahmen des erfindungsgemäßen Verfahrens keineswegs ausgeschlossen werde,
daß es im Rahmen einer großtechnischen Herstellung durchgeführt wird. Auch bei
Herstellungen in größerem Maßstab kann das erfindungsgemäße Verfahren eine
wünschenswerte Anwendung finden, vielleicht sogar speziell in einem solchen größeren
Maßstab, da es geradezu bei einer industriellen Anwendung besonders auf Vereinfachung und
Einsparung ankommt und bereits relativ geringe Vorteile im industriellen Umfeld eine
erhebliche Auswirkung haben.
Trotzdem ist es das primäre Augenmerk der Erfinder, ein Verfahren zur Verfügung zu stellen,
daß im Labormaßstab eingesetzt werden kann und seine Vorteile optimal entfaltet, wo der
Untersucher welcher das erfindungsgemäße Verfahren anwendet gezwungenermaßen mit
äußerst geringen Mengen an Ausgangsmaterial arbeiten muß.
Dieses primäre Augenmerk hat die Erfinder veranlaßt das Verfahren speziell für solche
Reaktionsbedingungen vorzusehen, wobei die Materialmengen äußerst gering sind und der
Untersucher ständig darauf bedacht ist, die Bedingungen der Reaktion auf die geringe
Materialmenge auszurichten.
Das Problem der geringen Menge an Ausgangsmaterial wird z. B. ausgeprägt begegnet, wenn
es ein Verfahren zur Kultivierung von menschlichen oder tierischen Zellen wie z. B.
hämatopoietische Stammzellen betrifft, wie es nachher im Rahmen einer bevorzugten
Ausführungsform noch ausführlicher dargestellt wird.
Es stellt somit eine bevorzugte Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens dar, daß
die Kammer welche zur Durchführung des Verfahrens vorgesehen ist, ein Volumen von unter
20 ml aufweist. Bevorzugt wird ein Reaktionsvolumen von 0,37 bis 16,8 ml, besonders
bevorzugt wird ein Volumen von etwa 6 ml. Ein solches Volumen ist auch praktikabel für
Versuch wo lediglich kleinste Mengen Ausgangsmaterial vorliegen, andererseits erlaubt ein
solches Volumen eine Durchführung im Routinebetrieb. Wie nachher weiter ausgeführt wird,
ist es eine der attraktiven Möglichkeiten bei einer bevorzugten Ausführungsform des
erfindungsgemäßen Verfahrens das erfindungsgemäße Verfahren zu Screeningzwecken im
Rahmen spezialisierter Untersuchungen zur Optimierung von Wachstumsbedingungen für
menschliche Blutzellen einzusetzen.
Wie später anhand der Beschreibung konkret durchgeführter Versuchsreihen nach
ausführlicher dargestellt wird, ist es eine weitere besonders bevorzugte Ausführungsform des
erfindungsgemäßen Verfahrens als Kammer zur Durchführung der Reaktion eine Vertiefung
oder Aussparung einer Gewebekulturplatte zu verwenden.
Eine solche Bezeichnung definiert zwar nicht ohne weiteres automatisch die Geometrie einer
solchen Vertiefung, es ist auch keineswegs erforderlich ein bestimmtes Format zu selektieren,
da die Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens grundsätzlich mit praktisch jedem
Typ von Vertiefung durchführbar ist. Andererseits ist es durchaus eine bevorzugte Ausführung
des Verfahrens, Gewebekulturplatten zu nehmen, welche kommerziell erhältlich sind. Sehr gut
anwendbar sind die sog. "Corning® Multiple well plates" der Firma Corning Costar
Corporation (Cambridge, MA 02140): Solche Platten haben sich in der biologischen
Forschung wegen ihrer günstigen Eigenschaften eine hervorragende Stellung besorgt und
stellen auch im Rahmen dieser Erfindung ein bevorzugtes Arbeitsmaterial dar. "Corning®
Muitiplewell plates" sind Platten mit einer unterschiedlicher Zahl von Vertiefungen (auch als
"wells" bezeichnet) verfügbar. Welche Ausführungsform bei der Durchführung des Verfahrens
im einzelnen gewählt wird, wird primär durch die Menge des verfügbaren Materials und die
Zwecke der Versuchsreihe bestimmt. Grundsätzlich kann das erfindungsgemäße Verfahren mit
jeder erhältlichen Ausführungsform der "Corning® Multiple well plates" durchgeführt werden.
Das erfindungsgemäße Verfahren wird in einem flüssigen Medium durchgeführt. Das Medium
kann dabei jede denkbare Zusammensetzung aufweisen. Hier sind den theoretischen
Möglichkeiten keine Grenzen gesetzt. Jede denkbare Möglichkeit variierend von einem
chemischen Verfahren in einem organischen Lösungsmittel zu einer biologischen Technik unter
Zuhilfenahme einer wäßrigen Pufferlösung kann in Betracht kommen, wobei allerdings
jederzeit zu beachten ist, daß das gewählte flüssige Medium sich mit den weiteren
Bestandteilen im Verfahren verträgt.
Die festen Partikeln sind nicht an einer bestimmten Ausführungsform gebunden. Auch in
bezug auf diese feste Partikeln gibt es eine beliebige Variation an Möglichkeiten. Einzige
Bedingung zur Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens ist die Voraussetzung, daß
die festen Partikeln im ausgewählten flüssigen Medium nicht löslich sind. Ansonsten ist bei
dem Material der Partikeln und bei deren genauen Geometrie lediglich auf deren Zweck im
Verfahren zu achten. Im Rahmen der Erfindung wird es sicherlich eine bevorzugte Variante
darstellen, von mehr oder weniger kugelförmige Partikeln auszugehen. Diese bieten eine
relativ große Oberfläche, lassen sich hervorragend zu einer Packung stapeln und erlauben
trotzdem einen ungestörten Durchfluß von flüssigem Medium.
Wie nachher im Rahmen der Ausführungsbeispiel näher erörtert wird, ist es eine bevorzugte
Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens, es im Rahmen der Kultivierung von
menschlichen Körperzellen zu verwenden. Bei solchen Versuchen haben sich bestimmte
Partikeln als äußerst gut verwendbar gezeigt. Besonders zweckmäßig sind poröse
Wirbelkörper mit 200-1500 µm Durchmesser und einer Dichte von mindestens 1,1 kg/l, deren
Poren mit Medium gefüllt sind.
Zunächst wurden günstige Erfahrungen mit Siran® Kugeln (Firma Schott, Mainz) gemacht.
Solche Siran® Kugeln sind poröse Glasträger mit etwa 50% Porosität und einer Korngröße
von 200-1500 µm, vorzugsweise von 400-700 µm. Die Glasträger können vor dem Einsatz
im Verfahren mit einer verdünnten Gelatinelösung vorbehandelt werden. Die Siran®-Kugeln
haben sich in Versuchen mit menschlichen oder tierischen Zellen immer wieder durch ihre
hervorragenden Eigenschaften in bezug auf Haftung und Stabilität ausgezeichnet.
Eine weitere Variante welche ebenfalls bevorzugt im Rahmen von Untersuchungen mit
Zellmaterial zur Anwendung kommt sind Kollagenmikroträger. Auch diese Träger sind in
verschiedenen Größere und Ausführungen verfügbar. Kollagenmikroträger zeigen ähnlich gute
Eigenschaften im Versuch, weisen im Vergleich zu den Glaskugeln eine besondere Eigenschaft
auf; welche ihnen je nach Bedarf einen entscheidenden Vorteil verschaffen kann. Es kommt
nämlich häufig bei der Anwendung von Partikeln mit angehafteten Komponenten vor, daß
gewünscht wird; diese Komponenten am Ende der Reaktion zurückzugewinnen; mit dem Ziel
eines erneuten Einsatzes oder einer anschließenden Weiterbearbeitung. Es kann sich dabei um
chemische Moleküle wie z. B. Enzyme oder Antikörper handeln; häufig wird dieser Wunsch
auch bei Versuchen welche mit Zellen durchgeführt werden, vorliegen, etwa wie wenn die
Partikeln verwendet wurden, um eine Kultivierung von menschlichen oder tierischen Zellen zu
bewerkstelligen. Bei solchen Kultivierungen stellen die angewachsenen Zellen den Zweck des
Versuches dar und ist es somit unumgänglich sie von den Partikeln, wie z. B. den Siran®-
Kugeln oder den Kollagenmikroträgern zu lösen. Gerade dann zeigt sich der Vorteil der
letztgenannten Partikeln, weil man die Kollagenmikroträger einfach in einem eine Kollagenase
enthaltenden System überführen kann, mit der Folge, daß die Träger sich auflösen und die
Zellen welche von dem Enzym nicht angegriffen werden aus der Lösung isoliert werden
können.
Es ist eine entscheidende Eigenschaft der vorliegenden Erfindung, daß die festen Partikeln
nicht frei in dem flüssigen Medium schweben, wie es im Stand der Technik üblich ist, sondern
von einem Behältnis umfaßt werden, welches sich in der Kammer im flüssigen Medium
befindet. Dieses Umfassen ist so aufzufassen, daß in der Kammer ein separater Raum
vorgesehen ist und die Partikeln lediglich innerhalb dieses Raums und überhaupt nicht
außerhalb des Raumes festgestellt werden.
Das Behältnis kann jede denkbare Form annehmen und unterschiedlich ausgeführt sein. Gut
denkbar ist ein Behältnis, das vollständig abschließbar ist und entweder im Medium treibt oder
fast aufgestellt wird. Eine solche Lösung ist z. B. dann empfehlenswert, wenn es feste Partikeln
betrifft, welche eine sehr geringe Dichte aufweisen oder untereinander eine sehr geringe
Adhäsion zeigen. Bei einer solchen Konstellation wäre die Gefahr gegeben, daß die Wirkung
der ebenfalls nach dem erfindungsgemäßen Verfahren vorgesehenen Rührvorrichtung eine
solche Wirbeiung des flüssigen Mediums hervorruft; daß die festen Partikeln aufgeschwemmt
werden und dadurch in der Kammer außerhalb des Behältnisses gelangen. Dies ist absolut
unerwünscht, denn es ist gerade einer der Vorteile des erfindungsgemäßen Verfahrens, daß das
die festen Partikeln umfassende Behältnis als Merkmal des Verfahrens eine sehr einfache
Handhabung dieses Verfahrens erlaubt. Es kann nach Belieben in die Kammer gebracht und
wieder daraus entfernt werden, was eine optimale Steuerung des Verfahrens erlaubt. Am Ende
des Verfahrens kann das Behältnis ganz aus der Kammer entfernt werden, wobei die von dem
Behältnis umfaßten Partikeln sofort zur anderweitigen Anwendung zur Verfügung und
hierdurch ein umständliches Abtrennungs- oder Isolierungsverfahren entfällt.
Im Gegenzug zu der gerade geschilderten Variante des Behältnisses, wobei dieses vollständig
abschließbar ist, gibt es die andere Variante wobei dieses vollständige Abschließen nicht
erfolgt. Bei vielen Reaktionen werden die festen Partikeln eine solche Dichte aufweisen oder
untereinander eine solche Zusammenhang besitzen; daß das Abschließen entfallen kann, weil es
praktisch nicht zu einem unerwünschten Aufschwemmen der Partikeln kommen kann. In
solchen Fällen ist natürlich die Variante des nicht abschließbaren Behältnisses zu bevorzugen,
weil es im allgemeinen eine einfachere und kostengünstigere Ausführung darstellen wird und
vermutlich auch weniger Handlungen des Anwenders benötigt, weil naturgemäß das
Abschließen und wieder Öffnen entfällt. Dabei gibt es bei den nicht abschließbaren
Behältnissen noch die Möglichkeit; daß sie im Vergleich zu der Dimension der Kammer eine
solche Konstruktion aufweisen; daß ihre Öffnung aus der Kammer hinausragt oder sich
zumindest oberhalb der Oberfläche des flüssigen Mediums befindet sowie die alternative
Möglichkeit, daß das Behältnis insgesamt in dem flüssigen Medium angeordnet ist und die
Öffnung dem Behältnisses sich dementsprechend unterhalb der Oberfläche des flüssigen
Mediums befindet.
Entscheidend für das Funktionieren des Behältnisses im Sinne der Erfindung ist die Tatsache,
daß es durchlässig für das flüssige Medium ist. Dies bedeutet, daß das Behältnis eine solche
Konstruktion aufweist; daß ein freier und ungestörter Austausch von Flüssigkeit innerhalb und
außerhalb des Behältnisses möglich ist. Denkbar ist die Anwendung eines semipermeablen
Membrans als vollständige oder partielle Hülle des Behältnisses, wobei hierdurch ein freier
Austausch von Molekülen bis zu einer bestimmten Größe erfolgen kann. Ein solches
semipermeables Membran kann vorteilhaft sein, wenn es sehr kleine und schwer handhabbare
feste Partikeln betrifft. Üblicherweise wird jedoch nicht eine solche Ausführungsform benutzt,
sondern eine solche, wobei das Behältnis Öffnungen aufweist; mit einer solchen Größe; daß sie
für die festen Partikeln nicht passierbar sind. Theoretisch kann das Behältnis eine einzelne
Öffnung aufweisen; üblicherweise werden es jedoch mehr sein, weil es für die meisten
chemischen und biologischen Reaktionen erforderlich ist, daß die einzelnen Bestandteile der
Reaktion untereinander in intensiven Kontakt treten können, und dieser intensive
Kontakt mit lediglich einer Öffnung ungenügend zustandekommt. Es stellt ein bevorzugte
Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens dar, eine Mehrzahl von einzelnen
Öffnungen im Behältnis vorzusehen. Dies läßt sich z. B. sehr gut dadurch realisieren, daß man
im Behältnis einen Sieb einbaut oder das Behältnis eine solche Konstruktion aufweist, daß es
ganz oder teilweise aus einem Siebmaterial konstruiert ist. Es wird weiter unten einen weiteren
Aspekt der Erfindung beschrieben werden; wobei ein bestimmtes Behältnis zur Verfügung
gestellt wird, das sich aufgrund seiner einfachen und praktischen Konstruktion, optimal zur
Anwendung im erfindungsgemäßen Verfahren eignet.
Es wurde bereits bei den einführenden Bemerkungen erwähnt, wie schädlich in vielen Systemen
eine arbeitende Rührvorrichtung sein kann. Es ist offensichtlich, daß es geradezu eine der
größten Vorteile des erfindungsgemäßen Verfahrens darstellt, daß man sehr leicht eine
räumliche Trennung der bewegenden Teile der Rührvorrichtung und der festen Partikeln
erreichen kann. Die Rührvorrichtung, welche jede denkbare Ausführung aufweisen kann,
bringt an irgendeiner Stelle in der Kammer das flüssige Medium in Bewegung. Ebenfalls in der
Kammer befindet sich das Behältnis, welches die festen Partikeln umfaßt. Es ist völlig klar,
daß die Rührvorrichtung dergestalt angeordnet ist, daß ihre bewegenden Teile lediglich mit
dem flüssigen Medium außerhalb des Behältnisses in Berührung kommen können. Diese
Ausrichtung verhindert somit vollständig die vorstehend geschilderten Nachteile, daß die
Rührvorrichtung zu erheblichen Störungen im System führt und entweder zu Beschädigungen
oder sogar Zerstörungen der festen Partikeln selbst oder zu Beeinträchtigungen der Haftung
von Molekülen oder Zellen an den festen Partikeln führt. Zwar führt jedes Rührverfahren zu
Bewegung und kann somit theoretisch zu einer Störung im System führen, aber es ist eine der
großen Vorteile des erfindungsgemäßen Verfahrens, daß mit einfachsten Rührvorrichtungen
ohne besonderen Aufwand eine sehr schonende Durchführung einer Reaktion möglich ist.
Die Rührvorrichtung gemäß dem erfindungsgemäßen Verfahren kann wie vorstehend
ausgeführt jede beliebige Form besitzen. Besonders bevorzugt wird jedoch eine
Rührvorrichtung mit einem Magnetrührer, insbesondere dann, wenn gemäß einer besonders
bevorzugten Ausführungsform mit einer Gewebekulturplatte gearbeitet wird und noch mehr
bevorzugt wenn in mehreren Vertiefungen (wells) der Gewebekulturplatte gleichzeitig eine
Reaktion abläuft, was ja gerade eine der attraktiven Möglichkeiten des erfindungsgemäßen
Verfahrens darstellt. Anwendung eines Magnetrührers mit entsprechender Benutzung einer
Mehrzahl voll einzelnen Magnetrührstäben in jeder Vertiefung wo eine Reaktion abläuft ist
sicherlich die einfachste und am wenigsten aufwendige Art das erfindungsgemäße Verfahren
gemäß der besonders bevorzugten Ausführungsform mit einer Gewebekulturplatte
durchzuführen. Dabei wird die Gewebekulturplatte auf einen Mehrstellen Magnetrührer
positioniert, wodurch mit einem Magnetrührer sämtliche Magnetrührstäbe gleichzeitig
angesteuert werden.
Es stellt eine weitere Variante des erfindungsgemäßen Verfahrens dar, eine Temperierung
vorzusehen, wenn es im Verfahren auf einer ganz bestimmten Temperatur, die nicht mit der
Umgebungstemperatur oder mit der Temperatur im Brutschrank übereinstimmt, ankommt.
Auch hat sich manchmal gezeigt, wenn gemäß der im vorherigen Paragraphen beschriebenen
Ausführungsform mit einem Magnetrührer gearbeitet wird, daß die Durchführung der Reaktion
mit einem solchen Magnetrührer zu einer unerwünschten lokalen Erhitzung führt. Diese
Erhitzung macht sich natürlich dann am stärksten bemerkbar, wenn die Reaktion über längere
Zeit abläuft. Längere Reaktionszeiten sind z. B. bei Reaktionen mit menschlichen oder
tierischen Zellen; wie Kultivierungsversuchen mit solchen Zellen, keine Seltenheit. Eine
Reaktionszeit von mehr als 24 Stunden ist dabei völlig normal. Da die Erhitzung zu
Temperaturen im flüssigen Medium von über 50°C führen kann, war es unumgänglich eine
Vorkehrung zur Kühlung vorzusehen, da speziell für die Durchführung biologischer
Reaktionen eine Abweichung von der Optimumtemperatur sehr schnell zu einer
Verschlechterung der Reaktionsabläufe führen und bei Durchführung von Reaktionen mit
menschlichen oder tierischen Zellen sogar das Überleben dieses Zellmaterials gefährden kann.
Es ist deswegen eine besonders bevorzugte Ausführungsform, bei der Durchführung des
Verfahrens unter Anwendung eines Magnetrührers gleichzeitig eine Kühlung im Verfahren
vorzusehen, wobei diese Kühlung praktisch am einfachsten abläuft, wenn zwischen
Magnetrührer und Gewebekulturplatte eine Kühlvorrichtung angeordnet wird. Diese
Kühlvorrichtung kann als ein ziemlich flaches Reservoir ausgebildet sein, welches dauerhaft mit
Wasser von 36°C durchströmt wird. Bereits eine solche einfache Form reicht vollständig aus,
eine Erhitzung des Reaktionsgemisches in der Kammer zu verhindern.
Es ist bei der Beschreibung des erfindungsgemäßen Verfahrens bereits mehrfach ausgeführt,
daß es gemäß bevorzugten Ausführungsformen leicht möglich ist, verschiedene
Reaktionsansätze parallel zu fahren. Sehr konkret ist diese Möglichkeit gegeben, wenn
Gewebekulturplatten eingesetzt werden, da es bei dieser Anwendung von Vorteil ist, die
Reaktion in einer Mehrzahl von einzelnen Vertiefungen ablaufen zu lassen, wobei es
selbstverständlich grundsätzlich gleichgültig ist, ob mehrere identische Ansätze parallel
ablaufen wie z. B. in Mehrfachversuchen oder wenn durch Variationen in der
Reaktionsparameter in jeder Vertiefung eine ganz bestimmte Reaktion stattfindet. Es ist
jedoch eine der entscheidenden Vorteile des erfindungsgemäßen Verfahrens, daß das Verfahren
in einem geringen Volumen durchgeführt werden kann. Dies ist immer dann von sehr großem
Vorteil, wenn die Materialmengen nicht ausreichen würden, um größere Ansätze zu fahren.
Auch bei geringen Mengen Ausgangsmaterial, z. B. wenn das Ausgangsmaterial aus einem
Menschen oder einem Tier beschafft werden muß, bietet das erfindungsgemäße Verfahren die
Möglichkeit, speziell wenn die bevorzugte Variante mit der Gewebekulturplatte mit
geringvolumigen Vertiefungen benutzt wird, um eine größere Zahl an einzelnen Reaktionen
parallel ablaufen zu lassen. Auch dies stellt eine der sehr attraktiven Aspekte des
erfindungsgemäßen Verfahrens dar, da diese parallele Durchführung einer größeren
Versuchsreihe ein Screeningprogramm in größerem Umfang erlaubt. Solche
Screeningprogramme werden bei Untersuchungen in bezug auf menschliches oder tierisches
Zellmaterial vielfach benötigt, in etwa in Zusammenhang mit der Frage, wie bestimmte
Zelltypen kultivierbar sind. Solche Untersuchungen wo eine große Reihe von einzelnen
Parametern variiert werden müssen, können nur durch umfangreiche Screeningprogramme in
Angriff genommen werden. Das erfindungsgemäße Verfahren ist geradezu prädestiniert bei
solchen Screeningprogrammen eingesetzt zu werden. Es ist somit ein weiterer Aspekt der
Erfindung das erfindungsgemäße Verfahren im Rahmen der Durchführung von
Screeeingprogrammen zu verwenden.
Der Einsatz des erfindungsgemaßen Verfahrens im Rahmen der Untersuchungen mit
menschlichen oder tierischen Zellen ist nicht auf irgendwelche Zelltypen begrenzt.
Grundsätzlich alle Zelltypen können zum Einsatz kommen. Es ist dabei von der Erfindung mit
umfaßt, daß die Zellen selbst feste Partikel im Sinne des Hauptanspruchs sind und sich somit
innerhalb des Behältnisses eine Zellkultur befindet. Ein solcher Einsatz kommt jedoch für viele
Zelltypen gar nicht in Betracht, weil sie ohne einen Träger gar nicht überlebensfähig sind. Für
solche Zellen werden Verfahren bevorzugt, welche eine Ansiedlung der untersuchten Zellen
auf irgendwelche Träger vorsehen, wie z. B. auf die bereits vorher besprochenen Siran®
Partikeln oder auf Kollagenmikroträger. Es ist bei solchen Trägern und bei anderen Typen von
Trägern durchaus möglich, alleine die untersuchten Zellen selber auf die Träger zu bringen, da
Zellen eine eigene haftende Fähigkeit besitzen. Es ist genauso gut möglich, für die Haftung
Hilfsmittel wie z. B. Adhesionsmoleküle zu benutzt.
Es stellt eine weitere oft praktizierte Möglichkeit dar, Zellen nicht alleine, sondern in einer
Kokultur mit einem weiteren Zelltyp oder mehreren weiteren Zelltypen auf Träger zu bringen.
Eine solche Kombination von verschiedenen Zelltypen nennt man eine Kokultur. Eine
Kokultur kann viele Vorteile aufweisen. Es ist erstens möglich, daß eine gleichzeitige oder
vorher erfolgte Haftung mit bestimmten Zellen, dem eigentlich untersuchten Zelltyp eine
bessere Grundlage für die Haftung bietet, mit der Folge, daß die Haftung der untersuchten
Zellen in einer Kokultur günstiger abläuft, weil einfach eine bessere Grundlage vorliegt. Ein
weiterer Aspekt kann die Tatsache sein, daß der weitere Zelltyp einen eigenen Einfluß auf die
Reaktionsbedingungen ausübt, wobei ein solcher Einfluß sich ganz konkret als die Produktion
und Ausscheidung in das flüssige Medium von Stoffen die beim Metabolismus oder Wachstum
der untersuchten Zellen eine Rolle spielen, darstellen kann.
Die Möglichkeit, eine Kokultur verschiedener Zelltypen einzusetzen, wird im Rahmen der
Erfindung z. B. dann benutzt, wenn es Untersuchungen in bezug auf menschliche Plasmazellen
betrifft. Hier haben bereits frühere Untersuchungen gezeigt, daß eine Kokultur mit
Stromazellen bzw. Fibroblasten von großem Vorteil ist, wobei die Bedeutung der Stromazellen
für die Kultur der Stammzellen darin besteht, daß die mit den Stromazellen besiedelten
Partikeln den Plasmazellen eine verbesserte mechanische Stabilität verschaffen und die
Stromazellen außerdem vermutlich durch Produktion von Zytokinen zu einer Verbesserung der
Funktionalität der Stammzellen beitragen. Es ist des weiteren grundsätzlich zu bedenken, daß
auch in der natürlichen Situation im Körper die Zellen nicht völlig isoliert und unabhängig von
anderen Zellen angetroffen werden, sondern immer in ständigem Kontakt und Austausch mit
irgendwelchen anderen Zellen stehen. Eine Kokultivierung mit anderen Zellen stellt somit eine
bessere Annäherung der natürlichen Lage dar und durch das hierbei entstehende Gebilde ist die
Situation im Knochenmark besser mimikriert. Es ist somit auch ausdrücklich ein Aspekt der
vorliegenden Erfindung die untersuchten Zellen zusammen mit anderen Zellen auf das
Trägermaterial zu immobilisieren, insbesondere menschliche Stammzellen zusammen mit
Stromazellen auf die festen Träger zu fixieren.
Es ist möglich, die Partikeln unvorbehandelt in das Behältnis zu bringen und die
Manipulationen vollständig in dem Behältnis vorzunehmen. Es ist auf der anderen Seite
ebenfalls möglich, bereits vorher eine Behandlung der Partikeln vorzunehmen und sie als
behandelte Partikeln in das Behältnis zu bringen. Die letzte Vorgehensweise mag manchmal
Vorteile aufweisen, sie hat jedoch immer den Nachteil; daß sie mit mehr Arbeit verbunden ist.
Es ist noch ein weiterer Aspekt der vorliegenden Erfindung, ein Behältnis zur Verfügung zu
stellen, das besonders geeignet zur Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens ist.
Gemäß dem erfindungsgemäßen Verfahren ist es eine Voraussetzung für die Benutzung des
Behältnisses im erfindungsgemäßen Verfahren, das es für ein flüssiges Medium durchlässig ist,
aber eine solche Ausgestaltung aufweist, daß die festen Partikeln im Behältnis dauerhaft von
ihn erfaßt werden, d. h. es muß ausgeschlossen sein, daß die festen Partikeln aus dem
Innenraum des Behältnisses ausgeschwemmt werden.
Ein solches bevorzugtes Behältnis besteht aus einem zylinderförmigen Grundkörper, welch der
bevorzugt aus Edelstahl besteht. Dieser zylinderförmige Mantel weist zwei Öffnungen auf,
eine auf der unteren Seite und eine auf der gegenüberliegenden oberen Seite, wobei die
Bezeichnungen "untere" und "obere" Seite verwendet werden, weil das Behältnis stehend
benutzt wird d. h. die zentrale Symmetrieachse des Zylinders befindet sich mehr oder weniger
senkrecht relativ zu der Oberfläche des flüssigen Mediums in der Kammer. Die untere Seite
des Behältnisses ist mit einem Sieb abgeschlossen. Die Größe der Poren in dem Sieb werden
nach Bedarf gewählt, sie wird anhand der Größe der festen Partikeln welche von dem Behältnis
umfaßt werden festgelegt. Der Sieb kann aus jedem beliebigen Material gefertigt werden, da
der Mantel bevorzugt aus Edelstahl besteht, sieht eine ebenfalls bevorzugte Variante vor, daß
der Sieb ebenfalls aus dem Material Edelstahl besteht. Es werden Hilfsmittel angeordnet,
damit gewährleistet ist, daß unterhalb des Behältnisses ungestört einen Rührvorgang
stattfinden kann. Solche Hilfsmittel können z. B. kleine Haken sein, welche an der Außenseite
der Zylindermantel angebracht sind und auf dem äußeren Rand der Kammer ruhen. Bevorzugt
wird jedoch eine Ausführung mit Standbeinen welche ebenfalls am äußeren Rand des
Behältnisses befestigt sind und womit das Behältnis insgesamt auf dem Boden der Kammer
positioniert wird. Diese Ausführungsform wird bevorzugt in allen Fällen wo die Kammer einen
flachen Boden aufweist. Wenn der Boden jedoch nicht flach ist, sondern z. B. konkav, kann
eine Ausführung des Behältnisses mit Standbeinen zu einer gewissen Instabilität führen und ist
eine Ausführung des Behältnisses mit Haken zu bevorzugen. Die Zahl der Haken sowie der
Standbeine kann beliebig gewählt werden. Da nicht nur die Stabilität aber auch der Kostpreis
des Behältnisses ein Aspekt bei dieser Überlegung darstellt, wird es als Optimum beider
Überlegungen angesehen, das Behältnis mit drei Haken oder Standbeinen zu versehen.
Auf die Dimension des Behältnisses relativ zu der Dimension der Kammer kommt es nicht
genau an. Auch bei einer sehr schmalen Spalt zwischen Behältnis und Kammerwand wird das
Verfahren funktionieren, genau wie bei einem Behältnis, das im Verhältnis zur Kammer relativ
klein ist. Bevorzugt wird jedoch ein Bereich, welcher mit dem in der P 195 05 109.2
übereinstimmt, nämlich ein Verhältnis Schüttvolumen Festbettkörper:Gesamtvolumen
flüssiges Medium von 0,1-0,6.
Beschreibung der Erfindung anhand von Ausführungsbeispielen.
Fig. 1 stellt ein Behältnis zur Durchführung des Verfahrens in Oberansicht dar (leer).
Fig. 2 stellt ein Behältnis zur Durchführung des Verfahrens in Oberansicht dar (gefüllt).
Fig. 3 stellt in Querschnitt eine schematische Darstellung eines Behältnisses zur Durchführung
des Verfahrens dar.
Fig. 4 stellt in Querschnitt eine schematische Darstellung eines Behältnisses zur Durchführung
des Verfahrens dar.
Fig. 5 stellt das Ergebnis einer Versuchsreihe mit einer stromalen Zellinie dar.
In der Fig. 1 ist ein Behältnis in perspektivischer Oberansicht dargestellt. Das Behältnis weist
einen zylindrischen Mantel 1 auf, welcher aus Edelstahl gebildet ist. Am unteren Ende des
zylindrischen Mantels sind drei Standbeine 2 befestigt. In dem Behältnis ist ein Sieb 3 sichtbar
welche auf Vorsprünge 4, welche an der Innenseite des zylindrischen Mantels angeordnet sind,
ruht.
In der Fig. 2 ist das gleiche Behältnis wie in der Fig. 1 dargestellt. Hier befindet sich jedoch
das Behältnis nicht mehr in leerem Zustand, sondern ist es mit kugelförmigen Partikeln 5
gefüllt.
In der Fig. 3 ist in Querdurchschnitt die Vertiefung 6 einer Gewebekulturplatte abgebildet.
Diese Vertiefung weist einen flachen Boden 7 auf. Die Kammer weist ein Behältnis 8 sowie
ein Magnetrührstab 9 auf.
Das Behältnis 8 ist hier ebenfalls in Querdurchschnitt dargestellt. Sichtbar sind der zylindrische
Mantel 1 und zwei Standbeine 2. In dem Behältnis sind die kugelförmigen Partikeln 5 sichtbar.
Während die Fig. 3 die Ruhelage im erfindungsgemäßen Verfahren darstellt, wird
demgegenüber in der Fig. 4 angezeigt, welche Strömungsbewegung einsetzt, wenn das
flüssige Medium (in der Figur nicht separat dargestellt) durch den Magnetrührstab 9 gerührt
wird. Wie in der Fig. 4 dargestellt, befindet sich der Magnetrührstab 9 in der Mitte unter dem
Behältnis. Durch die drehende Bewegung des Magnetrührstabes 9 wird das flüssige Medium
von oben angezogen. Das bedeutet bei der vorliegenden Lage in der Kammer, daß das flüssige
Medium aus dem mit festen Partikeln 5 gefüllte Festbett 10 nach unten gefördert wird, durch
die Bewegung des Magnetrührstabs radial gefördert wird und an der Wand entlang in Richtung
der Pfeile 11 und 12 aufwärts bewegt und durch den offenen Eingang des Behältnisses durch
das Festbett 10 geführt wird.
Die in der Fig. 4 dargestellte Strömungsdynamik zeigt eine Reihe von Vorteilen. Es macht
erstens deutlich, warum das in der Fig. 1 dargestellt Behältnis ohne Absperrung auf der
oberen Seite auskommt. Eine solche Absperrung wäre selbstverständlich ohne weiteres
möglich gewesen, z. B. als aufklappbare Sieb. Dies hätte allerdings zu mehr Aufwand bei der
Herstellung der Behältnisse und dadurch zu einem höheren Kostpreis geführt und hätte auch
das Arbeiten mit den Behältnissen um einige Handlungen erschwert. Bei dem Verfahren
gemäß der Erfindung ist eine solche Absperrung überflüssig, weil die Strömung in der Kammer
das Festbett in das Behältnis hinein drückt und ein Entweichen von einzelnen festen Partikeln 5
aus dem Behältnis praktisch nicht vorkommen wird. Auch eine relativ leichte niederwärts
Bewegung des flüssigen Mediums wird völlig ausreichen, das Festbett intakt zu halten.
Die in der Fig. 4 dargestellte Strömung zeigt deutlich auf, daß eine Beladung der festen
Partikeln, beispielsweise mit bestimmten Zellen, einfach dadurch vorgenommen werden kann,
daß diese Zellen an einer willkürlichen Stelle in der Kammer zugesetzt werden. Die Strömung
des flüssigen Mediums führt dann sofort dazu, daß die zugesetzten Zellen von oben ab durch
das Festbett 10 geführt werden wobei die Gleichmäßigkeit des Flüssigkeitsstroms durch das
Festbett eine homogene Verteilung garantiert. Natürlich gilt das gleiche analog für andere
Komponenten der Reaktion, welche der Kammer zugesetzt werden. Die Strömung führt
automatisch dazu, daß solche Komponenten dem Festbett rasch und gleichmäßig zugeführt
werden. Es ist aber trotzdem zu beachten, daß eine Beladung der Partikeln bevorzugt durch
direktes Auftragen auf die Schüttung vorgenommen wird.
Die Fig. 4 führt außerdem vor Augen, wie wenig belastend sich die Strömungsverhältnisse in
der Kammer auf die festen Partikeln auswirken. Nicht nur ist ein direkter Kontakt mit dem
Magnetrührstab ausgeschlossen, außerdem wird das flüssige Medium dem Festbett von oben
gleichmäßig zugeführt und mit Regelmaß durch das Festbett gezogen.
Schließlich ist die Anwendung des erfindungsgemäßen Behältnisses auch deswegen von
großem Vorteil, weil durch das durchströmte Festbett ein dreidimensionales Gebilde mit einer
großen Oberfläche entsteht, das eine gewebeähnliche Zelldichte zeigt.
Beschreibung der Erfindung anhand von Ausführungsbeispielen.
Für die Untersuchungen mit menschlichen hämatopoietischen Zellen war es vorgesehen, eine
Kokultivierung mit stromalen Zellen vorzunehmen, weil bei einer solchen Kokultivierung
Ansiedlung besser abläuft und die Überlebensrate der hämatopoietischen Zellen günstiger ist.
Für eine solche Kokultivierung war es wichtig, die Immobilisierungseigenschaften der
einzelnen Zelltypen zu charakterisieren. Erst dadurch ist man in der Lage, gezielt
Konzentrationen von Zeilen auf dem Trägermaterial einzustellen.
Für die Charakterisierung der Immobilisierungseigenschaften der murinen Stroma Zellinie M2-10B4
(Lemoine et al, Expl Hematol, 1988; 16: 718-726) wurden verschiedene
Inokulumsdichten in parallelen Ansätzen verglichen.
Es wurde das in der Fig. 1 dargestellte Behältnis aus Edelstahl benutzt. Die Behältnisse
wurden gemeinsam mit den dazugehörigen Magnetrührstäben und Pinzetten durch
Autoklavieren sterilisiert. In eine sterile 12-Loch-Gewebekulturplatte (Corning Costar Corp.,
Cambridge) wurde in jede Vertiefung zunächst ein Magnetrührstab und ein steriles Behältnis
eingesetzt und anschließend mit 3 ml Kulturmedium überschichtet. Als Kulturmedium wurde
RPMI 1640 mit 10%igem Fötalen Kälberserum (jeweils Gibco BRL, Eggenstein) verwendet.
In die Behältnisse wurde jeweils 1 ml steriler Träger pipettiert und das Behältnis anschließend
vollständig mit Medium bedeckt. Die so präparierte Gewebekulturplatte wurde im
Brutschrahk (36,5°C, 5% CO2) auf einen 12-Stellen-Magnetrührer (Telesystem HP 12 p; H+P
Labortechnik, Oberschließheim) gestellt und für 25 Stunden in einen Steriltest genommen.
Die Zellen wurden in Gewebekulturplatten vorkultiviert und zur Wachstumsarretierung mit 80
Gy bestrahlt. Nach dem Abzentrifugieren wurde die gewünschte Inokulumsmenge in 100 µl
Kulturmedium aufgenommen und vorsichtig über die Träger geschichtet.
Für die Untersuchung der Immobilisierungseigenschaften der stromalen Zellinie wurden vier
verschiedene Inokulumsdichten (5.105, 1.106, 5.106 und 1.107 Zellen/Ansatz) jeweils in
einem Dreifachansatz untersucht. Nach 24 Stunden Kultivierung wurden die einzelnen
Ansätze abgeerntet. Dazu wurden die Behältnisse mit einer sterilen Pinzette aus den
Vertiefungen genommen und jeweils in ein 50 ml Zentrifugenröhrchen (Greiner,
Frickenhausen) überführt, in dem 5 ml PBS (phosphate buffered saline) vorgelegt waren. Nach
einmaligem Waschen mit PBS wurde die Zahl der immobilisierten Zellen mittels einer
Kernfärbung mit Kristallviolett (Merck, Darmstadt) bestimmt.
Die Ergebnisse der Versuchsreihe sind in der Fig. 5 dargestellt.
Die Fig. 5 belegt einen eindeutigen linearen Zusammenhang zwischen der Zahl der
inokulierten und der Zahl der davon immobilisierten Zellen. Daraus folgt, daß im untersuchten
Konzentrationsbereich eine konstante Immobilisierungsrate stromaler Zellen auf
Kollagenträgern von etwa 45% angenommen werden kann. Das hohe Maß an
Reproduzierbarkeit dieser Ergebnisse läßt sich aus den äußerst geringen
Standardabweichungen der Dreifachansätze, die als Fehlerbalken zusätzlich in der Fig. 5
gezeigt sind, ablesen.
Es wurde einen weiteren Versuch zur Untersuchung der Möglichkeit der Kokultivierung
hämatopoietischer Zellen durchgeführt. Bei diesem Versuch wurden im direkten Vergleich
Mikroträger aus Borosilikatglas (Siran®, Schott Glaswerke, Mainz) und Kollagen (Cellex
Bioscience Inc., USA) untersucht.
Das Kultivierungssystem wurde wie im Beispiel 1 beschrieben, bestückt. Die eine Hälfte der
Behältnisse wurde mit Borosilikatträgern, die andere Hälfte mit Kollagenträgern gefüllt. Als
Kulturmedium wurde IMDM verwendet, das 12,5% Pferdeserum (Boehringer Mannheim
GmbH, Mannheim), 10 ng/ml IL-3 (Produziert durch ein Baculoexpressionssystem,
Insektenzellinie Sf 9 und Virus AcNPV, mit rekombinantem humanem IL-3), 10 ng/ml G-CSF
(Amgen, München) und 50 ng/ml murinen SCF (produziert durch E. coli SG 13009,
Expressionsvektor pDS(0), exprimiert wird der extrazelluläre Anteil des murinen Kit
Liganden) enthielt.
Nach einem Steriltest wurden die Träger in jeder Vertiefung mit 2.106 wachstumsarretierten
M2-10B4 Zellen (Stromale Zellinie) besiedelt. Die Bedingungen entsprachen den Angaben zu
Beispiel 1.
Nach ein Immobilisierungszeit von 24 Stunden wurden in jede Vertiefung 2.105 CD34+
hämatopoietische Zellen aus Nabelschnurvenenblut inokuliert und im Brutschrank bei 36,5°C
und 5% CO2 kultiviert. Es wurden am Tag 3, 5 und 7 nach Beginn der Kokultur jeweils zwei
Einsätze mit Borosilikatträgern und zwei mit Kollagenträgern gemäß dem oben beschriebenen
Verfahren abgeerntet. Am Tag 5 wurde zusätzlich ein halber Medienwechsel durchgeführt.
Dazu wurde über eine Spritze mit Kanüle (Braun, Melsungen) aus dem Spalt zwischen
Behältnis und Wand der Vertiefung (Position 13 in der Fig. 3) Medium abgezogen und auf
die gleiche Weise durch frisches Medium ersetzt.
Für die Analyse wurden im Falle der Borosilikatträger die Zellen mit Trypsin abgelöst.
Die Kollagenträger wurden dagegen enzymatisch aufgelöst. Dazu wurde weitgehend die
gesamte Flüssigkeit über den Trägern abgezogen und 1 ml Kollagenase Lösung (2 mg/ml
Kollagenase Typ 1A, C 9891, Sigma, Deisenhofen) zugesetzt. Nach einer Stunde bei 37°C
waren die Träger lysiert und die enzymatische Reaktion wurde durch Zugabe von 5 ml
PBS/FDTA-Lösung (0,5 mM) gestoppt. Die so suspendierten Zellen wurden abzentrifugiert
und in 1 ml frischem Kulturmedium aufgenommen.
Eine Lebendzellzählung mit Trypanblau (Sigma, Deisenhofen) wurde in einer Neubauer-Zählkammer
durchgeführt. Zur phänotypischen Charakterisierung der Zellen im
Durchflußzytometer (FACScalibur, Becton Dickinson, Heidelberg) wurden diese mit
PE-konjugierten Antikörpern gegen CD34 und FTTC konjugierten Antikörpern gegen CD45
(beide Dako, Hamburg) gefärbt. Die biologische Aktivität der hämatopoietischen Zellen
wurde über den Methylzellulose Assay (MC) zur Detektion von Colony-Forming-Cells
(Koloniebildender Zellen) und dem Long-term Culture Initiating Cell-Assay (LTC-IC) zur
Analyse früherer Vorläuferzellen untersucht. Im MC-Assay wurden 500 CD34+-Zellen pro
Platte eingesetzt und MethoCult™ (Cellsystems, St. Katharinen) mit 10 ng/ml IL-3 und 100
ng/ml SCF als Medium verwendet (Herstellerangaben siehe oben). Nach zwei Wochen
Kultivierungsdauer wurde der Assay ausgewertet. Der LTC-IC wurde in einer 96-Loch-
Gewebekulturplatte durchgeführt, wobei je Vertiefung 7.103 M2-10B4 Zellen (mit 80 Gy
bestrahlt) als feeder-layer eingesät wurden. In 10-fach Replikaten wurden 3, 6, 12, 24, 48 und
96 CD34+-Zellen je Vertiefung inokuliert und über einen Zeitraum von 6 Wochen einmal
wöchentlich mit frischem Medium gefüttert (IMDM, 12,5% FCS, 12,5% HS, 10 ng/ml IL-3
und 10 ng/ml G-CSF, Herstellerangaben siehe oben). Nach der anschließenden
Überschichtung der Zellen mit Methylzellulosemedium konnte der Assay nach zwei Wochen
ausgewertet werden.
Die Wahl der Medienzusätze ist von entscheidender Bedeutung bei der Kultivierung
hämatopoetischer Zellen.
Bei einer vergleichenden Untersuchung wurde der Einfluß einzelner Zytokine auf das
Wachstum CD34+ hämatopoietischer Zellen in Kokultur untersucht. Hierzu wurde das
Behältnis wie in Beispiel 1 beschrieben mit Kollagenträgern bestückt und die Sterilität geprüft.
Bereits in dieser Phase der Untersuchung wurden in die verschiedenen Vertiefungen der
Gewebekulturplatte unterschiedliche Medien eingesetzt. Grundsätzlich wurde als Medium
IMDM verwendet, welches 12,5% Fötales Kälberserum (beides Gibco BRL, Eggenstein) und
12,5% Pferdeserum (Boehringer Mannheim GmbH, Mannheim) enthielt.
Als Zytokine wurden verwendet:
- - 10 ng/ml IL-3,
- - 100 ng/ml IL-6,
- - 50 ng/ml SCF,
- - 50 ng/ml GM-SCF und
- - 100 ng/ml flt-3
(Lieferant sämtlicher Zytokine: Genzyme, Rüsselsheim).
In Doppelansätzen wurden jeweils vier dieser Zytokine dem Medium zugegeben. Ein
Doppelansatz enthielt alle fünf Zytokine.
Nach einem Steriltest wurden die Träger jeder Vertiefung mit 2.106 wachstumsarretierten
M2-10B4 Zellen (Stromale Zellinie) besiedelt (wie in Beispiel 1 beschrieben). Nach einer
Immobilisierungszeit von 24 Stunden wurden in jede Vertiefung 2.105 CD34+
hämatopoietische Zellen aus Nabelschnurvenenblut inokulier und im Brutschrank bei 36,5°C
und 5% CO2 kultiviert. Nach 4 Tagen wurde ein halber Medienwechsel durchgeführt. Nach
7 Tagen wurden die Zellen abgeerntet. Eine Lebendzellzählung mit Trypanblau, eine
phänotypische Charakterisierung der Zellen im Durchflußzytometer, sowie MC- und LTC-IC-
Assays wurden durchgeführt (wie in Beispiel 2 beschrieben).
Claims (15)
1. Verfahren zur Durchführung von chemischen oder biologischen Reaktionen in einer mit
einer Rührvorrichtung ausgestatteten, ein flüssiges, feste Partikeln enthaltendes Medium
aufweisenden Kammer, wobei die Reaktion an den festen Partikeln erfolgt, dadurch
gekennzeichnet, daß diese festen Partikeln von einem für das flüssige Medium durchlässigen
Rehältnis umfaßt werden.
2. Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Kammer ein Volumen unter
20 ml aufweist.
3. Verfahren gemäß Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß die Kammer die
Vertiefung einer Gewebekulturplatte ist.
4. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 3, wobei die Partikeln Antikörperfunktionen
besitzen.
5. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 3, wobei die Partikeln Enzyme enthalten.
6. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 3 zur Kultivierung Zellen menschlicher oder
tierischer Herkunft, wobei die menschlichen oder tierischen Zellen den Partikeln angesiedelt
sind.
7. Verfahren gemäß Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß die Zellen menschliche
Stammzellen sind.
8. Verfahren nach einem der Ansprüche 6 oder 7, dadurch gekennzeichnet, daß die Partikeln
Glasträger von 400 bis 700 µm oder Kollagenmikroträger sind.
9. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 6 bis 8, dadurch gekennzeichnet, daß in sämtlichen
Kammern der Gewebekulturplatte, z. B. 6 oder mehr, eine Untersuchung mit dem gleichen
Zellmaterial abläuft.
10. Verfahren gemäß Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß die Rührvorrichtung in jeder
einzelnen Kammer ein Rührmagnetstab ist, welche von einem einzelnen Magnetrührer
angetrieben wird.
11. Verfahren nach einem der Ansprüche 6 bis 10, dadurch gekennzeichnet, daß die
untersuchten Zellen zusammen mit weiteren Zellen auf das Trägermaterial immobilisiert
werden.
12. Verwendung des Verfahrens nach einem der Ansprüche 6 bis 11 zur Etablierung eines
Screeningverfahrens zur Untersuchung von Reaktionsbedingungen zur Kultivierung
menschlicher oder tierischer Zellen, wie beispielsweise menschlicher Stammzellen.
13. Behältnis zur Aufnahme von festen Partikeln zur Anwendung in einem Verfahren gemäß
einem der Ansprüche 1 bis 12, wobei das Behältnis einen zylinderförmigen Mantel, einen
Sieb womit die untere Seite des zylinderförmigen Mantels abgeschlossen ist und Hilfsmittel
damit zwischen dem Boden der Kammer und der unteren Seite des Behältnisses ein freier
Raum entsteht, umfaßt.
14. Behältnis gemäß Anspruch 13, dadurch gekennzeichnet, daß das Behältnis sowie der Sieb
aus Edelstahl bestehen.
15. Behältnis gemäß einem der Ansprüche 13 oder 14, dadurch gekennzeichnet, daß die
Hilfsmittel drei oder mehr am unteren äußeren Rand des Behältnisses befestigten Standbeine
sind.
Priority Applications (2)
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NL1011981A NL1011981C2 (nl) | 1998-05-16 | 1999-05-06 | Werkwijze voor het verrichten van chemische en biologische reacties. |
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DE1998122050 DE19822050A1 (de) | 1998-05-16 | 1998-05-16 | Verfahren zur Durchführung von chemischen oder biologischen Reaktionen |
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Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2009036617A1 (fr) * | 2007-09-21 | 2009-03-26 | Bioright Worldwide Company Limited | Dispositif réactif de catalyseur solide et son procédé d'exécution |
CN103480305A (zh) * | 2013-08-29 | 2014-01-01 | 连力生 | 一种气相催化反应器 |
DE10322054B4 (de) * | 2003-05-15 | 2015-06-18 | Sartorius Stedim Biotech Gmbh | Vorrichtung und Verfahren zur Kultivierung von Zellen |
Family Cites Families (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR1000549A (fr) * | 1946-02-27 | 1952-02-13 | Ch Gervais | Procédé de fabrication d'alcool à partir de moûts pauvres en sucre et dépourvus de véhicules de levure, notamment à partir de sérum de lait |
JPS5724199B2 (de) * | 1974-03-12 | 1982-05-22 | ||
GB2168904B (en) * | 1984-11-30 | 1988-01-27 | Ceskoslovenska Akademie Ved | Method of circulation of liquid phase through a solid phase particularly for biocatalytical reactions and a device for realization thereof |
US4833083A (en) * | 1987-05-26 | 1989-05-23 | Sepragen Corporation | Packed bed bioreactor |
DE3818776C2 (de) * | 1988-06-02 | 1994-06-30 | Maerkl Herbert | Verfahren zur Kultivierung von Zellen in einem Fermenter und zur Durchführung des Verfahrens bestimmter Fermenter |
GB8822180D0 (en) * | 1988-09-21 | 1988-10-26 | Glaverbel | Separation of product of biological process from fluid medium |
EP0417227A1 (de) * | 1989-03-15 | 1991-03-20 | KINDERVATER, Ralf | Biokatalytisches verfahren sowie trägerteilchen, das aus magnetischem glas oder keramikteilchen besteht, und vorrichtung zur durchführung |
JPH07114686B2 (ja) * | 1989-06-26 | 1995-12-13 | 明治乳業株式会社 | 回流式培養装置 |
WO1994017178A1 (en) * | 1993-01-29 | 1994-08-04 | New Brunswick Scientific Co., Inc. | Method and apparatus for anchorage and suspension cell culture |
-
1998
- 1998-05-16 DE DE1998122050 patent/DE19822050A1/de not_active Ceased
-
1999
- 1999-05-06 NL NL1011981A patent/NL1011981C2/nl not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Patents Abstracts of Japan, C-486, April 8, 1988, Vol. 12/No. 110 betr. die JP 62-2 37 938 A * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE10322054B4 (de) * | 2003-05-15 | 2015-06-18 | Sartorius Stedim Biotech Gmbh | Vorrichtung und Verfahren zur Kultivierung von Zellen |
WO2009036617A1 (fr) * | 2007-09-21 | 2009-03-26 | Bioright Worldwide Company Limited | Dispositif réactif de catalyseur solide et son procédé d'exécution |
CN103480305A (zh) * | 2013-08-29 | 2014-01-01 | 连力生 | 一种气相催化反应器 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
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NL1011981A1 (nl) | 1999-11-17 |
NL1011981C2 (nl) | 2000-05-22 |
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