DE10031028A1 - Verfahren zur Selektion von Partikeln - Google Patents
Verfahren zur Selektion von PartikelnInfo
- Publication number
- DE10031028A1 DE10031028A1 DE10031028A DE10031028A DE10031028A1 DE 10031028 A1 DE10031028 A1 DE 10031028A1 DE 10031028 A DE10031028 A DE 10031028A DE 10031028 A DE10031028 A DE 10031028A DE 10031028 A1 DE10031028 A1 DE 10031028A1
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- particles
- microchannel
- particle
- marked
- population
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 239000002245 particle Substances 0.000 title claims abstract description 131
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 50
- 230000008569 process Effects 0.000 title claims description 5
- 238000001514 detection method Methods 0.000 claims description 22
- 238000005259 measurement Methods 0.000 claims description 11
- 239000013076 target substance Substances 0.000 claims description 10
- 238000000926 separation method Methods 0.000 claims description 9
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 8
- 238000002060 fluorescence correlation spectroscopy Methods 0.000 claims description 7
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 claims description 5
- 239000003550 marker Substances 0.000 claims description 5
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 5
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 4
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 claims description 4
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 claims description 4
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 claims description 4
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims description 4
- 210000003705 ribosome Anatomy 0.000 claims description 4
- 241000700605 Viruses Species 0.000 claims description 3
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 claims description 2
- 210000003463 organelle Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000004215 spore Anatomy 0.000 claims description 2
- 108091005461 Nucleic proteins Proteins 0.000 claims 1
- 238000002372 labelling Methods 0.000 claims 1
- 230000005284 excitation Effects 0.000 description 5
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 5
- 239000003446 ligand Substances 0.000 description 4
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 4
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 4
- 238000010187 selection method Methods 0.000 description 4
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 3
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 3
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 3
- 241000724791 Filamentous phage Species 0.000 description 2
- 108010052285 Membrane Proteins Proteins 0.000 description 2
- 102000018697 Membrane Proteins Human genes 0.000 description 2
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 2
- 230000009141 biological interaction Effects 0.000 description 2
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 2
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 2
- 230000005684 electric field Effects 0.000 description 2
- 238000001215 fluorescent labelling Methods 0.000 description 2
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 2
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 2
- 102000001189 Cyclic Peptides Human genes 0.000 description 1
- 108010069514 Cyclic Peptides Proteins 0.000 description 1
- 102000004856 Lectins Human genes 0.000 description 1
- 108090001090 Lectins Proteins 0.000 description 1
- 108010004729 Phycoerythrin Proteins 0.000 description 1
- 238000001069 Raman spectroscopy Methods 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 239000012491 analyte Substances 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 1
- 230000004071 biological effect Effects 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 239000002299 complementary DNA Substances 0.000 description 1
- 238000010226 confocal imaging Methods 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 238000002405 diagnostic procedure Methods 0.000 description 1
- 238000009792 diffusion process Methods 0.000 description 1
- 238000010494 dissociation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000005593 dissociations Effects 0.000 description 1
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 238000005370 electroosmosis Methods 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- GNBHRKFJIUUOQI-UHFFFAOYSA-N fluorescein Chemical compound O1C(=O)C2=CC=CC=C2C21C1=CC=C(O)C=C1OC1=CC(O)=CC=C21 GNBHRKFJIUUOQI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000001917 fluorescence detection Methods 0.000 description 1
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 1
- 238000003384 imaging method Methods 0.000 description 1
- 239000002523 lectin Substances 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- 239000002502 liposome Substances 0.000 description 1
- 238000004020 luminiscence type Methods 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 238000000691 measurement method Methods 0.000 description 1
- 238000002703 mutagenesis Methods 0.000 description 1
- 231100000350 mutagenesis Toxicity 0.000 description 1
- 238000007899 nucleic acid hybridization Methods 0.000 description 1
- 238000012634 optical imaging Methods 0.000 description 1
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 1
- 238000005086 pumping Methods 0.000 description 1
- 238000000163 radioactive labelling Methods 0.000 description 1
- PYWVYCXTNDRMGF-UHFFFAOYSA-N rhodamine B Chemical compound [Cl-].C=12C=CC(=[N+](CC)CC)C=C2OC2=CC(N(CC)CC)=CC=C2C=1C1=CC=CC=C1C(O)=O PYWVYCXTNDRMGF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 1
- 238000012163 sequencing technique Methods 0.000 description 1
- 230000002123 temporal effect Effects 0.000 description 1
- MPLHNVLQVRSVEE-UHFFFAOYSA-N texas red Chemical compound [O-]S(=O)(=O)C1=CC(S(Cl)(=O)=O)=CC=C1C(C1=CC=2CCCN3CCCC(C=23)=C1O1)=C2C1=C(CCC1)C3=[N+]1CCCC3=C2 MPLHNVLQVRSVEE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000001685 time-resolved fluorescence spectroscopy Methods 0.000 description 1
- 241001515965 unidentified phage Species 0.000 description 1
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume, or surface-area of porous materials
- G01N15/10—Investigating individual particles
- G01N15/14—Electro-optical investigation, e.g. flow cytometers
-
- G01N15/149—
Abstract
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Selektion von Partikeln mit einer vorbestimmten Eigenschaft aus einer Population einer Vielzahl unterschiedlicher Partikel sowie eine zur Durchführung des Verfahrens geeignete Vorrichtung.
Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Selektion von Partikeln mit einer
vorbestimmten Eigenschaft aus einer Population einer Vielzahl
unterschiedlicher Partikel sowie eine zur Durchführung des Verfahrens
geeignete Vorrichtung.
Zur Identifizierung neuer Liganden für diagnostische, biomedizinische und
pharmazeutische Anwendungen können kombinatorische Bibliotheken,
bestehend aus einer Population einer Vielzahl von Partikeln, z. B. Phagen,
Zellen, Ribosomen etc., eingesetzt werden, wobei die einzelnen Partikel
jeweils unterschiedliche Liganden präsentieren (siehe z. B. WO 90/02809;
WO 92/15677; WO 92/15679; WO 92/06204; WO 92/06176; WO 98/19162;
WO 98/35232; WO 99/06839 und WO 99/5428). Zur Identifizierung von
Liganden mit einer vorbestimmten Eigenschaft wird üblicherweise eine
Musterung der zu untersuchenden Bibliothek durchgeführt, wobei ein
markiertes Zielmolekül mit den einzelnen Partikeln der Bibliothek in Kontakt
gebracht wird und das Auftreten einer Bindung zwischen dem Zielmolekül
und einem bestimmten Partikel der Bibliothek bzw. dem von dem Partikel
präsentierten Liganden bestimmt wird. Anschließend muss das Partikel mit
der vorbestimmten Eigenschaft identifiziert werden. Bisherige Selektions-
und Identifizierungsmethoden, z. B. die sogenannten "Penning"- oder
"Selex"-Verfahren haben jedoch eine relativ geringe Effizienz, sodass ein
bestimmtes Partikel mit gewünschten Eigenschaften oftmals nicht in der
Bibliothek gefunden werden kann, obwohl es dort vorhanden ist.
Ein direkter Nachweis von einzelnen Analytmolekülen ist mit dem im
europäischen Patent 0 679 251 beschriebenen Verfahren zur Fluoreszenz-
Korrelationsspektroskopie (FCS) beschrieben. Mittels FCS kann in einem
kleinen Messvolumen von beispielsweise < 10-14 I ein einziges oder nur
wenige mit Fluoreszenzfarbstoffen markierte Moleküle nachgewiesen
werden. Das Messprinzip der FCS beruht darauf, dass ein kleines
Volumenelement der Probeflüssigkeit einem starken Anregungslicht, z. B.
eines Lasers ausgesetzt wird, sodass nur diejenigen Fluoreszenzmoleküle,
die sich in diesem Messvolumen aufhalten, angeregt werden. Das emittierte
Fluoreszenzlicht aus diesem Volumenelement wird dann auf einen Detektor,
z. B. einen Fotomultiplyer abgebildet. Ein Molekül, das sich im
Volumenelement befindet, wird sich gemäß seiner charakteristischen
Diffusionsgeschwindigkeit mit einer durchschnittlichen, aber für das
betreffende Molekül charakteristischen Zeit wieder aus dem
Volumenelement entfernen und dann nicht mehr zu beobachten sein.
Wird nun die Lumineszenz ein- und desselben Moleküls während seiner
durchschnittlichen Aufenthaltsdauer in dem Messvolumen mehrmals
angeregt, so lassen sich von diesem Molekül viele Signale erfassen.
Die Anwendung der Fluoreszenz-Korrelationsspektroskopie zur Sortierung
und Identifizierung einzelner Moleküle ist bei Eigen und Rigler (Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 91 (1994), 5740-5747) und Rigler (J. Biotech. 41 (1995),
177-186) beschrieben. Es wird die Verwendung einer Quadrupol-Falle und
elektrischer Feldgradienten in Verbindung mit Einzelphotonendetektoren zur
Identifizierung von Einzelmolekülen vorgeschlagen. Obwohl dieses Verfahren
gegenüber den klassischen Selektionierungsprozeduren eine erheblich
höhere Effizienz aufweist, erfordert die Selektion von Einzelmolekülen die
Verwendung extrem geringer Partikelkonzentrationen und ist zeitaufwendig.
Es besteht daher ein Bedürfnis, die Sensitivität und Effizienz bei der
Selektionierung von Partikeln zu verbessern.
Diese Aufgabe wird gelöst durch ein Verfahren zur Selektion eines Partikels
mit einer vorbestimmten Eigenschaft aus einer Population einer Vielzahl
unterschiedlicher Partikeln, umfassend die Schritte:
- a) Bereitstellen einer Population von unterschiedlichen Partikeln,
- b) Markieren von Partikeln, die die vorbestimmte Eigenschaft aufweisen,
- c) Leiten der Partikel in einem Mikrokanal durch ein Detektionselement, das zwischen markierten und nicht markierten Partikeln unterscheiden kann,
- d) Abtrennen markierter Partikel, und
- e) mindestens einmaliges Wiederholen der Schritte (c) und (d), wobei die Konzentration der Partikel in einem nachfolgenden Zyklus gegenüber einem vorhergehenden Zyklus verringert wird.
Das erfindungsgemäße Verfahren ermöglicht die Selektion von einzelnen
Partikeln aus sehr großen Partikelpopulationen, die beispielsweise mehr als
108 oder sogar 1012 oder mehr unterschiedliche Partikel umfassen. Die
Partikel können Zellen, Teile von Zelloberflächen, Zellorganellen, z. B.
Ribosomen, Viren wie etwa Bakteriophagen, z. B. filamentöse Phagen oder
in Phagenhüllen verpackte Plasmide (Phagemide), Nukleinsäuren wie Gene
oder cDNA-Moleküle, Proteine wie etwa Enzyme oder Rezeptoren, oder
niedermolekulare Substanzen sein. Vorzugsweise sind die Partikel Elemente
einer kombinatorischen Bibliothek, z. B. einer Bibliothek von genetischen
Packungen wie Phagen, Zellen, Sporen oder Ribosomen, die auf ihrer
Oberfläche Peptidstrukturen, z. B. lineare oder zirkuläre Peptide, oder
Proteine wie Antikörper, vorzugsweise fusioniert mit Oberflächenproteinen,
z. B. Oberflächenproteinen von filamentösen Phagen, präsentieren.
Das erfindungsgemäße Verfahren ermöglicht eine effiziente Selektion eines
Partikels mit einer vorbestimmten Eigenschaft aus einer Vielzahl
unterschiedlicher Partikel. Unter "vorbestimmte Eigenschaft" im Sinne der
vorliegenden Erfindung ist vorzugsweise die Fähigkeit zur Bindung an eine
Zielsubstanz zu verstehen. Die Bindung des Partikels an die Zielsubstanz
kann eine Liganden-Rezeptor-Bindung, eine Enzym-Substrat-Bindung, eine
Antikörper-Antigen-Bindung, eine Nukleinsäurehybridisierung, eine Zucker-
Lectin-Bindung oder eine andere hochaffine biologische Wechselwirkung
umfassen. Andererseits kann die vorbestimmte Eigenschaft des Partikels
auch darin bestehen, eine biologische Wechselwirkung, z. B. die Bindung an
eine Zielsubstanz, zu verhindern.
Zur Selektion des Partikels mit der vorbestimmten Eigenschaft wird die
Partikelpopulation vorzugsweise mit einer eine nachweisbare Markierung
tragenden Zielsubstanz inkubiert, wobei die Inkubationsbedingungen derart
gewählt werden, dass das Partikel mit der vorbestimmten Eigenschaft an
eine Markierungsgruppe bindet und so von anderen Partikeln abgetrennt
werden kann. Als Markierungsgruppen kommen insbesondere nicht
radioaktive Markierungsgruppen und besonders bevorzugt durch optische
Methoden nachweisbare Markierungsgruppen, wie etwa Farbstoffe, und
insbesondere Fluoreszenzmarkierungsgruppen in Betracht. Beispiele für
geeignete Fluoreszenzmarkierungsgruppen sind Rhodamin, Texas-Rot,
Phycoerythrin, Fluorescein und andere in diagnostischen Verfahren oder
Selektionsverfahren übliche Fluoreszenzfarbstoffe.
Die markierte Zielsubstanz ist für das zu identifizierende Partikel spezifisch,
d. h. die Zielsubstanz bindet unter den Testbedingungen mit ausreichend
hoher Affinität und Selektivität an das Partikel mit der vorbestimmten
Eigenschaft, um eine Selektion zu ermöglichen.
Gegebenenfalls kann die vorbestimmte Eigenschaft des zu selektionierenden
Partikels auch eine biologische Aktivität, z. B. eine enzymatische Aktivität
sein. In diesem Fall können die Partikel mit einem chromogenen oder
fluoreszenten Enzymsubstrat inkubiert und in Vesikeln, z. B. Lipidvesiklen
wie Liposomen, verkapselt werden. Sofern ein Partikel, z. B. ein Phage oder
ein Ribosom, an seiner Oberfläche ein aktives Enzymmolekül präsentiert,
erfolgt innerhalb des Vesikels eine Umsetzung des Substrats, wobei ein
farbiges oder fluoreszentes Produkt gebildet wird, welches nachgewiesen
werden kann.
Zur Unterscheidung von markierten Partikeln, d. h. Partikeln mit der
vorbestimmten Eigenschaft, und nicht markierten Partikeln, d. h. Partikeln
ohne die vorbestimmte Eigenschaft, werden die Partikel in einem Mikrokanal
durch ein Detektionselement geleitet. Das Leiten durch den Mikrokanal
erfolgt vorzugsweise durch einen hydrodynamischen Fluss, beispielsweise
durch Saug- oder Pumpwirkung. Der Fluss kann jedoch auch ein
elektroosmotischer Fluss sein, der durch einen elektrischen Feldgradienten
erzeugt wird. Weiterhin ist eine Kombination von hydrodynamischem Fluss
und Feldgradienten möglich. Der Fluss durch den Mikrokanal weist
vorzugsweise ein parabolisches Flussprofil auf, d. h. die Fließgeschwindigkeit
ist maximal im Zentrum des Mikrokanals und nimmt in einer parabolischen
Funktion zu den Rändern bis zu einer Minimalgeschwindigkeit ab. Die
Flussgeschwindigkeit durch den Mikrokanal liegt im Maximum vorzugsweise
im Bereich von 1 bis 50 mm/sec, besonders bevorzugt im Bereich von 5 bis
10 mm/sec. Der Durchmesser des Mikrokanals liegt vorzugsweise im
Bereich von 1 bis 100 µm, besonders bevorzugt von 10 bis 50 µm.
Vorzugsweise wird die Messung in einem linearen Mikrokanal mit im
Wesentlichen einem konstanten Durchmesser durchgeführt.
Die Identifizierung eines markierten Partikels kann mittels einer beliebigen
Messmethode, z. B. mit einer orts- und/oder zeitaufgelösten Fluoreszenz-
Spektroskopie erfolgen, die in der Lage ist, in einem sehr kleinen
Volumenelement wie es in einem Mikrokanal vorliegt, sehr geringe Signale
von Markierungsgruppen, insbesondere Fluoreszenzsignale bis hinunter zur
Einzelphotonenzählung zu erfassen. Wichtig ist dabei, dass die von
markierten Partikeln stammenden Signale sich deutlich von denen
unterscheiden, die von den markierten Partikeln verursacht werden.
Beispielsweise kann die Detektion mittels Fluoreszenz-
Korrelationsspektroskopie erfolgen, bei der ein sehr kleines konfokales
Volumenelement, beispielsweise 0,1 bis 20 × 10-15 I der durch den
Mikrokanal strömenden Probeflüssigkeit einem Anregungslicht eines Lasers
ausgesetzt wird, das die in diesem Messvolumen befindlichen Rezeptoren
zur Emission von Fluoreszenzlicht anregt, wobei das emittierte
Fluoreszenzlicht aus dem Messvolumen mittels eines Fotodetektors
gemessen wird, und eine Korrelation zwischen der zeitlichen Veränderung
der gemessenen Emission und der relativen Flussgeschwindigkeit der
beteiligten Moleküle erstellt wird, sodass bei entsprechend starker
Verdünnung einzelne Moleküle in dem Messvolumen identifiziert werden
können. Auf Einzelheiten zur Verfahrensdurchführung und apparative Details
zu den für die Detektion verwendeten Vorrichtungen wird auf die
Offenbarung des europäischen Patentes 0 679 251 verwiesen.
Alternativ kann die Detektion auch durch eine zeitaufgelöste
Abklingmessung, ein sogenanntes Time Gating erfolgen, wie beispielsweise
von Rigler et al., "Picosecond Single Photon Fluorescence Spetroscopy of
Nucleic Acids", in: "Ultrafast Phenomenes", D. H. Auston, Ed., Springer
1984, beschrieben. Dabei erfolgt die Anregung der Fluoreszenzmoleküle
innerhalb eines Messvolumens und anschließend - vorzugsweise in einem
zeitlichen Abstand von ≧ 100 ps - das Öffnen eines Detektionsintervalls am
Fotodetektor. Auf diese Weise können durch Raman-Effekte erzeugte
Hintergrundsignale ausreichend gering gehalten werden, um eine im
Wesentlichen störungsfreie Detektion zu ermöglichen.
Besonders bevorzugt umfasst die Vorrichtung zum Nachweis von
fluoreszenzmarkierten Partikeln in der den Mikrokanal durchströmenden
Probeflüssigkeit einen Laser als Fluoreszenzanregungslichtquelle für die
Moleküle, eine optische Anordnung zur Leitung und Fokussierung von
Laserlicht des Lasers auf einen Fokalbereich des Mikrokanals und zur
konfokalen Abbildung des Fokalbereichs auf eine Fotodetektoranordnung zur
Erfassung von Fluoreszenzlicht, welches im Fokalbereich von einem oder
gegebenenfalls mehreren optisch angeregten Molekülen emittiert wurde,
wobei die optische Anordnung ein Beugungselement oder ein
phasenmodulierendes Element im Strahlengang des Lasers aufweist,
welches gegebenenfalls in Kombination mit einem oder mehreren optischen
Abbildungselementen dazu eingerichtet ist, aus dem Laserstrahl des Lasers
ein Beugungsmuster in Form eines linearen oder zweidimensionalen Arrays
von Fokalbereichen in dem Mikrokanal zu erzeugen, wobei die optische
Anordnung dazu eingerichtet ist, jeden Fokalbereich konfokal für die
Fluoreszenzdetektion durch die Fotodetektoranordnung abzubilden.
Alternativ kann die Detektionsvorrichtung zwei den Mikrokanal an einander
gegenüberliegenden Seiten begrenzende Wände aufweisen, von denen eine
ein Array von vorzugsweise integrierten, in den Mikrokanal emittierenden
Laserelementen als Fluoreszenzanregungslichtquellen aufweist, und von
denen die andere ein Array von vorzugsweise integrierten, den
Laserelementen jeweils gegenüberliegend zugeordneten
Fotodetektorelementen als Fluoreszenzlichtdetektoren aufweist, wobei die
Laserelemente vorzugsweise Potenzialtopflaserelemente und die
Fotodetektorelemente Avalanche-Dioden sind. Derartige Vorrichtungen sind
beispielsweise in DE 100 23 423.2 beschrieben.
Die durch das Detektionselement identifizierten markierten Partikel werden
von nicht markierten Partikeln abgetrennt. Dieses Abtrennen kann durch
eine Sortierungsprozedur, wie in Holm et al. (Analytical Methods and
Instrumentation, Special Issue µTAS 96, 85-87), Eigen und Rigler (Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 91 (1994), 5740-5747) oder Rigler (J. Biotech 41
(1995), 177-186) beschrieben, erfolgen. Vorzugsweise erfolgt eine
automatische Sortierungsprozedur, wobei markierte und nicht markierte
Partikel in unterschiedliche Verzweigungen des Mikrokanals geleitet werden.
Die Steuerung der Sortierungsprozedur erfolgt vorzugsweise dadurch, dass
nach Erkennen eines markierten Partikels im Detektionselement ein externes
oder in die Mikrostruktur integriertes Ventil umgeschaltet wird, sodass das
markierte Partikel in die dafür vorgesehene Verzweigung des Mikrokanals
geleitet wird und anschließend das Ventil wieder umgeschaltet wird, sodass
nicht markierte Partikel in die andere Verzweigung des Mikrokanals geleitet
werden.
Das erfindungsgemäße Verfahren ist ein Kaskadenprozess, der eine
gegebenenfalls mehrfache Wiederholung der Detektions- und
Abtrennschritte umfasst. Während die aus dem Stand der Technik bekannte
Prozedur zur Selektion von Einzelmolekülen nur bei extrem hohen
Verdünnungen und somit sehr großen Volumina zuverlässig durchführbar
ist, wird beim erfindungsgemäßen Verfahren die Konzentration der durch die
Detektionsvorrichtung geleiteten Partikel ausreichend hoch eingestellt,
sodass das zu untersuchende Gesamtvolumen an Probeflüssigkeit, welches
die Gesamtpopulation der Partikel enthält, gering gehalten werden kann.
Vorzugsweise wird für den ersten Selektionszyklus eine
Partikelkonzentration von 108 bis 1014 pro 100 µl Probevolumen und
besonders bevorzugt 1010 bis 1012 Partikel pro 100 µl Probevolumen
eingesetzt. Bei diesen Bedingungen nimmt man zwar in Kauf, dass neben
dem markierten Partikel auch eine Anzahl weiterer negativer Partikel,
üblicherweise 102 bis 103 Partikel zunächst als positiv eingestuft werden.
Durch nachfolgende Selektionszyklen, die mit jeweils verringerter
Konzentration gegenüber einem vorhergehenden Zyklus durchgeführt
werden, können jedoch schließlich einzelne Partikel, welche die
vorbestimmten Eigenschaften aufweisen, isoliert werden. Die Verringerung
der Partikelkonzentration wird vorzugsweise so gewählt, dass in einem
weiteren Selektionsschritt ein positiver Partikel eindeutig identifiziert werden
kann. Beispielsweise kann die Partikelkonzentration pro Zyklus um
mindestens den Faktor 104, vorzugsweise um den Faktor 106 bis 108 und
besonders bevorzugt um ca. den Faktor 107 verringert werden. Das
Probenvolumen erhöht sich dabei im allgemeinen nicht wesentlich, da durch
den ersten Selektionszyklus eine signifikante Verringerung der Partikelzahl
erzielt wurde. Gegebenenfalls können nach dem zweiten Selektionszyklus
noch ein oder mehrere weitere Zyklen durchgeführt werden.
Weiterhin umfasst das erfindungsgemäße Verfahren vorzugsweise das
Identifizieren oder/und Charakterisieren der gefundenen Partikel mit der
vorbestimmten Eigenschaft. Dieser Schritt kann beispielsweise eine
Amplifizierung, z. B. im Falle von Zellen und Viren, eine Vermehrung oder im
Falle von Nukleinsäuren eine Amplifikationsreaktion wie PCR oder eine
Sequenzierung umfassen. Das identifizierte bzw. charakterisierte Partikel
bzw. dessen charakteristische Determinante, z. B. ein auf der Oberfläche
präsentiertes Protein, kann anschließend dem jeweils dafür vorgesehenen
Verwendungszweck zugeführt oder als Grundlage zur Herstellung einer
weiteren kombinatorischen Bibliothek, z. B. durch Mutagenese, eingesetzt
werden.
In einer bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens
wird nach dem Markieren der Partikel, aber vor dem Einbringen der Partikel
in die Detektionsvorrichtung eine Affinitäts-Vorselektionsprozedur
vorgenommen. Hierzu erfolgt nach der Markierung, z. B. einer Behandlung
der Partikelpopulation mit einem markierten Bindemolekül, ein weiterer
Behandlungsschritt mit unmarkierten Bindemolekülen, sodass bei Partikeln,
die das markierte Bindemolekül nur schwach gebunden haben, durch
Dissoziation ein Austausch des markierten Bindemoleküls gegen das
unmarkierte Bindemolekül stattfinden kann. Diese schwach bindefähigen
und somit unerwünschten Partikel werden in diesem Fall bei der
Selektionsprozedur von vornherein nicht als positiv erkannt und scheiden
daher aus. Durch Einstellung der Bedingungen bei der Behandlung von
markierten Partikeln mit unmarkierten Bindemolekülen kann die "Stringenz"
der Affinitäts-Vorselektion eingestellt werden. Durch Erhöhung der Zeitdauer
der Inkubation, der Temperatur und der Konzentration unmarkierter
Bindemoleküle wird eine Erhöhung der Stringenz erreicht.
Falls die vorbestimmte Eigenschaft des Partikels darin besteht, selektiv an
eine Zielsubstanz, aber möglichst nicht an eine mit der Zielsubstanz nahe
verwandte Substanz zu binden, kann vor oder/und nach der Markierung der
Zielsubstanz eine Inkubation mit der nahe verwandten Substanz erfolgen,
sodass Partikel mit einer Affinität für die nahe verwandte Substanz bei der
Selektionsprozedur von vornherein nicht erfasst werden.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist eine Vorrichtung zur Selektion
eines Partikels mit einer vorbestimmten Eigenschaft aus einer Population
umfassend eine Vielzahl von unterschiedlichen Partikeln umfassend:
- a) einen optisch transparenten Mikrokanal,
- b) Mittel zum Einbringen von Partikeln in den Mikrokanal,
- c) Mittel zur Detektion einer Markierung auf einem durch den Mikrokanal geleiteten Partikel,
- d) Mittel zum Abtrennen eines markierten Partikeln von nicht markierten Partikeln,
welche dadurch gekennzeichnet ist,
dass die Mittel (c) und (d) derart ausgebildet sind, dass sie eine mindestens
einmalige Wiederholung der Detektions-/Abtrennprozedur vorsehen.
Die Vorrichtung enthält vorzugsweise weiterhin automatische
Manipulationsvorrichtungen, Heiz- oder Kühleinrichtungen wie Peltier-
Elemente, Reservoirs und gegebenenfalls Zufuhrleitungen für
Probeflüssigkeit und Reagenzien sowie elektronische Auswertungsgeräte.
Die Vorrichtung ist insbesondere zur Durchführung des erfindungsgemäßen
Verfahrens geeignet.
Weiterhin soll die Erfindung durch die nachfolgenden Figuren erläutert
werden. Es zeigen:
Fig. 1 einen Ausschnitt einer Vorrichtung zur Durchführung des
erfindungsgemäßen Verfahrens. Durch einen Mikrokanal (2)
werden markierte Partikel (4) und nicht markierte Partikel (6)
zu einem Detektionselement (8) transportiert. Bei Erkennung
eines markierten Partikels (4) durch das Detektionselement (8)
werden Ventile (nicht gezeigt) aktiviert, die an der
Verzweigungsstelle (10) des Mikrokanals betätigt werden,
sodass die markierten Partikel (4) in die Verzweigung (2a) und
unmarkierte Partikel in die Verzweigung (2b) geleitet werden.
Die Partikelkonzentration oder/und die
Durchflussgeschwindigkeit durch den Mikrokanal werden beim
erfindungsgemäßen Verfahren derart groß gewählt, sodass
auch ein Eintritt nicht markierter Partikel (6) in die für markierte
Partikel vorgesehene Verzweigung (2a) erfolgt. Durch
gegebenenfalls mehrfache Wiederholung der Selektions-
/Abtrennprozedur werden schließlich nur markierte Partikel
erhalten.
Fig. 2 das Prinzip der kaskadenartigen Selektions-/Abtrennprozedur.
Die durch den Mikrokanal (20) geleiteten Partikel werden - wie
in Fig. 1 gezeigt - an einer ersten Verzweigung in einen für
die markierten Partikel vorgesehenen Arm (24a) und einen für
die nicht markierten Partikel vorgesehen Arm (22a) des
Mikrokanals aufgetrennt. Die durch den Kanalarm (24a)
geleiteten Partikel werden an einer weiteren Verzweigung
erneut in einen für markierte Partikel vorgesehen Arm (24b)
und einen für nicht markierte Partikel vorgesehenen Arm (22b)
aufgetrennt. Gegebenenfalls kann noch eine weitere
Auftrennung der durch den Mikrokanal (24b) strömenden
Partikel in einen Arm (24c) und einen Arm (22c) erfolgen.
Fig. 3 eine Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung mit
multiplen Eingängen. Partikel aus unterschiedlichen
Subbibliotheken (30a, 30b, 30c, 30d, 30f) können an einem
Schaltventil (32) in einen Mikrokanal (34) eingeleitet und dort
der in Fig. 1 und Fig. 2 gezeigten Kaskaden-Selektions-
/Abtrennprozedur unterzogen werden.
Fig. 4 eine Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung mit
multiplen Ausgängen. Die durch einen Mikrokanal (40)
strömenden Partikel werden an der Verzweigungsstelle (42) in
mehrere Arme (44a, 44b, 44c, 44d) aufgetrennt. Die
Auftrennung in mehr als zwei Arme kann beispielsweise bei
Verwendung mehrerer Markierungsgruppen zweckmäßig sein,
um Partikel mit keiner, jeweils einer oder mehreren
Markierungsgruppen voneinander zu trennen. Alternativ kann
die Trennung auch aufgrund der Intensität der Markierung
durch Einstellung entsprechender Cutoff-Werte am Detektor
erfolgen.
Claims (20)
1. Verfahren zur Selektion eines Partikels mit einer vorbestimmten
Eigenschaft aus einer Population umfassend eine Vielzahl von
unterschiedlichen Partikeln, umfassend die Schritte:
- a) Bereitstellen einer Population von unterschiedlichen Partikeln,
- b) Markieren von Partikeln, die die vorbestimmte Eigenschaft aufweisen,
- c) Leiten der Partikel in einem Mikrokanal durch ein Detektionselement, das zwischen markierten und nicht markierten Partikeln unterscheiden kann,
- d) Abtrennen markierter Partikel, und
- e) mindestens einmaliges Wiederholen der Schritte (c) und (d), wobei die Konzentration der Partikel in einem nachfolgenden Zyklus gegenüber einem vorhergehenden Zyklus verringert wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Partikel aus Zellen, Teilen von Zelloberflächen,
Zellorganellen, Viren, Nukleinsäuren, Proteinen und niedermolekularen
Substanzen ausgewählt werden.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Population eine kombinatorische Bibliothek umfasst.
4. Verfahren nach Anspruch 3,
dadurch gekennzeichnet,
dass die kombinatorische Bibliothek aus genetischen Packungen wie
Phagen, Zellen, Sporen oder Ribosomen ausgewählt wird.
5. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 4,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Population mehr als 108 unterschiedliche Partikel umfasst.
6. Verfahren nach Anspruch 5,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Population mehr als 1012 unterschiedliche Partikel umfasst.
7. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 6,
dadurch gekennzeichnet,
dass das Markieren eine Inkubation der Partikel mit einer eine
nachweisbare Markierung tragenden Zielsubstanz umfasst.
8. Verfahren nach Anspruch 7,
dadurch gekennzeichnet,
dass als Markierung eine Fluoreszenzmarkierungsgruppe verwendet
wird.
9. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 8,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Partikel durch einen Mikrokanal mit einem Durchmesser von
1 bis 100 µm geleitet werden.
10. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 9,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Partikel mittels eines hydrodynamischen Flusses durch den
Mikrokanal geleitet werden.
11. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 10,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Detektion der markierten Partikel durch Fluoreszenz-
Korrelationsspektroskopie erfolgt.
12. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 10,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Detektion der markierten Partikel durch eine zeitaufgelöste
Fluoreszenz-Abklingmessung erfolgt.
13. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 12,
dadurch gekennzeichnet,
dass das Abtrennen das Leiten der markierten Partikel und der nicht
markierten Partikel in unterschiedliche Verzweigungen des
Mikrokanals umfasst.
14. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Konzentration im ersten Selektionszyklus der durch den
Mikrokanal geleiteten Partikel im Bereich von 108 bis 1014 pro 100 µl
Probenvolumen liegt.
15. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Konzentration der Partikel in einem nachfolgenden
Verfahrenszyklus um mindestens den Faktor 104 verringert wird.
16. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, weiterhin
umfassend das Identifizieren oder/und Charakterisieren eines Partikels
mit der vorbestimmten Eigenschaft.
17. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, weiterhin
umfassend einen Affinitäts-Vorselektionsschritt, wobei die markierten
Partikel Bedingungen ausgesetzt werden, bei denen schwächer
markierte Partikel ihre Markierung verlieren.
18. Verfahren nach Anspruch 17,
dadurch gekennzeichnet,
dass nach dem Markieren eine Inkubation mit einer unmarkierten
Zielsubstanz erfolgt.
19. Vorrichtung zur Selektion eines Partikels mit einer vorbestimmten
Eigenschaft aus einer Population umfassend eine Vielzahl von
unterschiedlichen Partikeln umfassend:
- a) einen optisch transparenten Mikrokanal,
- b) Mittel zum Einbringen von Partikeln in den Mikrokanal,
- c) Mittel zur Detektion einer Markierung auf einem durch den Mikrokanal geleiteten Partikel,
- d) Mittel zum Abtrennen eines markierten Partikeln von nicht markierten Partikeln,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Mittel (c) und (d) derart ausgebildet sind, dass sie eine
mindestens einmalige Wiederholung der Detektions-/Abtrennprozedur
vorsehen.
Priority Applications (7)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE10031028A DE10031028B4 (de) | 2000-06-26 | 2000-06-26 | Verfahren zur Selektion von Partikeln |
AU2001269087A AU2001269087A1 (en) | 2000-06-26 | 2001-06-25 | Method for selecting particles |
DE50115349T DE50115349D1 (de) | 2000-06-26 | 2001-06-25 | Verfahren zur selektion von partikeln |
AT01947395T ATE458191T1 (de) | 2000-06-26 | 2001-06-25 | Verfahren zur selektion von partikeln |
US10/312,092 US20030170609A1 (en) | 2000-06-26 | 2001-06-25 | Method for selecting particles |
EP01947395A EP1295105B1 (de) | 2000-06-26 | 2001-06-25 | Verfahren zur selektion von partikeln |
PCT/EP2001/007190 WO2002001189A1 (de) | 2000-06-26 | 2001-06-25 | Verfahren zur selektion von partikeln |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE10031028A DE10031028B4 (de) | 2000-06-26 | 2000-06-26 | Verfahren zur Selektion von Partikeln |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE10031028A1 true DE10031028A1 (de) | 2002-01-03 |
DE10031028B4 DE10031028B4 (de) | 2008-09-04 |
Family
ID=7646806
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE10031028A Expired - Fee Related DE10031028B4 (de) | 2000-06-26 | 2000-06-26 | Verfahren zur Selektion von Partikeln |
DE50115349T Expired - Fee Related DE50115349D1 (de) | 2000-06-26 | 2001-06-25 | Verfahren zur selektion von partikeln |
Family Applications After (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE50115349T Expired - Fee Related DE50115349D1 (de) | 2000-06-26 | 2001-06-25 | Verfahren zur selektion von partikeln |
Country Status (6)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US20030170609A1 (de) |
EP (1) | EP1295105B1 (de) |
AT (1) | ATE458191T1 (de) |
AU (1) | AU2001269087A1 (de) |
DE (2) | DE10031028B4 (de) |
WO (1) | WO2002001189A1 (de) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2002064829A2 (en) * | 2001-02-13 | 2002-08-22 | Smartbead Technologies Limited | Biochemical method and apparatus for detecting genetic characteristics |
WO2002065123A2 (en) * | 2001-02-13 | 2002-08-22 | Smartbead Technologies Limited | Biochemical method and apparatus for detecting protein characteristics |
WO2003060486A1 (en) * | 2002-01-10 | 2003-07-24 | Board Of Regents, The University Of Texas System | Flow sorting system and methods regarding same |
WO2003078972A1 (en) * | 2002-03-14 | 2003-09-25 | Micronics, Inc. | Ribbon flow cytometry and cell sorting |
CN113405955A (zh) * | 2021-06-15 | 2021-09-17 | 中国航发沈阳发动机研究所 | 一种油液磨粒监测装置和监测方法 |
Families Citing this family (33)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE69830598T2 (de) | 1997-01-31 | 2006-05-18 | The Horticulture And Food Research Institute Of New Zealand Limited | Optische vorrichtung und methode |
US6149867A (en) | 1997-12-31 | 2000-11-21 | Xy, Inc. | Sheath fluids and collection systems for sex-specific cytometer sorting of sperm |
US7208265B1 (en) | 1999-11-24 | 2007-04-24 | Xy, Inc. | Method of cryopreserving selected sperm cells |
US7713687B2 (en) | 2000-11-29 | 2010-05-11 | Xy, Inc. | System to separate frozen-thawed spermatozoa into x-chromosome bearing and y-chromosome bearing populations |
AU2002220018A1 (en) | 2000-11-29 | 2002-06-11 | Colorado State University | System for in-vitro fertilization with spermatozoa separated into x-chromosome and y-chromosome bearing populations |
WO2003025563A1 (en) * | 2001-09-16 | 2003-03-27 | Chemometec A/S | Method and a system for detecting and optionally isolating a rare event particle |
MXPA05001100A (es) | 2002-08-01 | 2005-04-28 | Xy Inc | Sistema de separacion de baja presion para celulas de esperma. |
US8486618B2 (en) | 2002-08-01 | 2013-07-16 | Xy, Llc | Heterogeneous inseminate system |
WO2004017041A2 (en) | 2002-08-15 | 2004-02-26 | Xy, Inc. | High resolution flow cytometer |
US7169548B2 (en) | 2002-09-13 | 2007-01-30 | Xy, Inc. | Sperm cell processing and preservation systems |
DK2309245T3 (en) | 2003-03-28 | 2016-01-04 | Inguran Llc | Methods for providing sex-sorted animal semen |
NZ544103A (en) | 2003-05-15 | 2010-10-29 | Xy Llc | Efficient haploid cell sorting for flow cytometer systems |
EP2151243B1 (de) | 2004-03-29 | 2012-10-24 | Inguran, LLC | Spermasuspensionen zur Sortierung in X- oder Y-Chromosomen-tragende angereicherte Populationen |
CA2574499C (en) | 2004-07-22 | 2016-11-29 | Monsanto Technology Llc | Process for enriching a population of sperm cells |
ITBO20040601A1 (it) * | 2004-09-30 | 2004-12-30 | Ima Spa | Metodo per il controllo di capsule |
DE102004047953A1 (de) * | 2004-10-01 | 2006-04-20 | Rudolf Rigler | Selektion von Partikeln im laminaren Fluss |
DE102004048443B3 (de) * | 2004-10-02 | 2005-12-01 | C.D. Wälzholz-Brockhaus GmbH | Verfahren zur walztechnischen Verformung von draht- und stabförmigem Vormaterial, Vorrichtung zur Durchführung des Verfahrens sowie nach dem Verfahren hergestelltes Flachprofil |
US8921102B2 (en) | 2005-07-29 | 2014-12-30 | Gpb Scientific, Llc | Devices and methods for enrichment and alteration of circulating tumor cells and other particles |
US20070178529A1 (en) * | 2006-01-13 | 2007-08-02 | Micronics, Inc. | Electromagnetically actuated valves for use in microfluidic structures |
US20080245740A1 (en) * | 2007-01-29 | 2008-10-09 | Searete Llc, A Limited Liability Corporation Of The State Of Delaware | Fluidic methods |
US8361299B2 (en) * | 2008-10-08 | 2013-01-29 | Sage Science, Inc. | Multichannel preparative electrophoresis system |
US8361298B2 (en) * | 2008-10-08 | 2013-01-29 | Sage Science, Inc. | Multichannel preparative electrophoresis system |
US11022573B2 (en) * | 2010-08-31 | 2021-06-01 | Canon U.S.A., Inc. | Positive controls |
DE102010053749B4 (de) * | 2010-12-08 | 2015-02-19 | Airbus Defence and Space GmbH | Vorrichtung zum Identifizieren biotischer Partikel |
EP2681302A2 (de) * | 2011-03-04 | 2014-01-08 | Evolvemol, Inc. | Vorrichtung und verfahren zur isolierung von bestimmten physikalischen elementen in einem satz aus physikalischen elementen |
DE102011054659A1 (de) * | 2011-10-20 | 2013-04-25 | AeroMegt GmbH | Verfahren und Vorrichtung zum Messen von Aerosolen in einem großen Volumenstrom |
US9108196B1 (en) * | 2012-01-24 | 2015-08-18 | Stratedigm, Inc. | Method and apparatus for control of fluid flow or fluid suspended particle flow in a microfluidic channel |
CA2887341C (en) | 2012-10-12 | 2021-03-16 | Sage Science, Inc. | Side-eluting molecular fractionator |
EP3207163B1 (de) | 2014-10-15 | 2020-05-27 | Sage Science, Inc. | Vorrichtungen, verfahren und systeme zur automatisierten verarbeitung von nukleinsäuren und elektrophoretischen probenvorbereitung |
US11542495B2 (en) | 2015-11-20 | 2023-01-03 | Sage Science, Inc. | Preparative electrophoretic method for targeted purification of genomic DNA fragments |
US11254557B2 (en) | 2016-05-17 | 2022-02-22 | Sony Corporation | Particle extraction apparatus and particle extraction method |
CN110506203A (zh) | 2017-04-07 | 2019-11-26 | 塞奇科学股份有限公司 | 用于通过使用集成电泳dna纯化来检测遗传结构变异的系统和方法 |
US11099118B2 (en) * | 2017-11-27 | 2021-08-24 | Ecole Polytechnique Federale De Lausanne (Epfl) | Device and method for sorting biological entities |
Family Cites Families (16)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3827555A (en) * | 1973-03-05 | 1974-08-06 | Bio Physics Systems Inc | Particle sorter with segregation indicator |
US5415997A (en) * | 1987-07-28 | 1995-05-16 | Biotechnology Australia Pty Limited | Method for detecting low levels of microorganisms |
EP0398880A4 (en) * | 1988-01-04 | 1990-12-27 | E.I. Du Pont De Nemours And Company | Multiple stage affinity process for isolation of specific cells from a cell mixture |
US5223409A (en) * | 1988-09-02 | 1993-06-29 | Protein Engineering Corp. | Directed evolution of novel binding proteins |
GB9008044D0 (en) * | 1990-04-09 | 1990-06-06 | Hatfield Polytechnic Higher Ed | Microfabricated device for biological cell sorting |
US6120735A (en) * | 1992-02-26 | 2000-09-19 | The Ohio States University | Fractional cell sorter |
DE4301005A1 (de) * | 1993-01-18 | 1994-07-21 | Diagen Inst Molekularbio | Verfahren und Vorrichtung zur Bewertung der Fitness von Biopolymeren |
DE59405644D1 (de) * | 1993-01-18 | 1998-05-14 | Evotec Biosystems Gmbh | Verfahren und vorrichtung zur bewertung der fitness von biopolymeren |
US6350576B1 (en) * | 1994-12-20 | 2002-02-26 | Cold Spring Harbor Laboratory | Cancer detection probes |
DE19520298A1 (de) * | 1995-06-02 | 1996-12-05 | Bayer Ag | Sortiervorrichtung für biologische Zellen oder Viren |
EP0799422A1 (de) * | 1995-10-24 | 1997-10-08 | Sangstat Medical Corporation | Anti alpha-galactosyl nachweisverfahren |
US6120666A (en) * | 1996-09-26 | 2000-09-19 | Ut-Battelle, Llc | Microfabricated device and method for multiplexed electrokinetic focusing of fluid streams and a transport cytometry method using same |
WO1999011771A1 (en) * | 1997-09-04 | 1999-03-11 | Science Research Laboratory, Inc. | Cell separation using electric fields |
US6540895B1 (en) * | 1997-09-23 | 2003-04-01 | California Institute Of Technology | Microfabricated cell sorter for chemical and biological materials |
US7056661B2 (en) * | 1999-05-19 | 2006-06-06 | Cornell Research Foundation, Inc. | Method for sequencing nucleic acid molecules |
DE10023423B4 (de) * | 2000-05-12 | 2009-03-05 | Gnothis Holding Sa | Direkter Nachweis von Einzelmolekülen |
-
2000
- 2000-06-26 DE DE10031028A patent/DE10031028B4/de not_active Expired - Fee Related
-
2001
- 2001-06-25 WO PCT/EP2001/007190 patent/WO2002001189A1/de active Application Filing
- 2001-06-25 AU AU2001269087A patent/AU2001269087A1/en not_active Abandoned
- 2001-06-25 DE DE50115349T patent/DE50115349D1/de not_active Expired - Fee Related
- 2001-06-25 US US10/312,092 patent/US20030170609A1/en not_active Abandoned
- 2001-06-25 EP EP01947395A patent/EP1295105B1/de not_active Expired - Lifetime
- 2001-06-25 AT AT01947395T patent/ATE458191T1/de not_active IP Right Cessation
Cited By (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2002064829A2 (en) * | 2001-02-13 | 2002-08-22 | Smartbead Technologies Limited | Biochemical method and apparatus for detecting genetic characteristics |
WO2002065123A2 (en) * | 2001-02-13 | 2002-08-22 | Smartbead Technologies Limited | Biochemical method and apparatus for detecting protein characteristics |
WO2002065123A3 (en) * | 2001-02-13 | 2002-12-12 | Smartbead Technologies Ltd | Biochemical method and apparatus for detecting protein characteristics |
WO2002064829A3 (en) * | 2001-02-13 | 2002-12-12 | Smartbead Technologies Ltd | Biochemical method and apparatus for detecting genetic characteristics |
WO2003060486A1 (en) * | 2002-01-10 | 2003-07-24 | Board Of Regents, The University Of Texas System | Flow sorting system and methods regarding same |
US7452725B2 (en) | 2002-01-10 | 2008-11-18 | Board Of Regents, The University Of Texas System | Flow sorting system and methods regarding same |
WO2003078972A1 (en) * | 2002-03-14 | 2003-09-25 | Micronics, Inc. | Ribbon flow cytometry and cell sorting |
CN113405955A (zh) * | 2021-06-15 | 2021-09-17 | 中国航发沈阳发动机研究所 | 一种油液磨粒监测装置和监测方法 |
CN113405955B (zh) * | 2021-06-15 | 2024-02-02 | 中国航发沈阳发动机研究所 | 一种油液磨粒监测装置和监测方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO2002001189A1 (de) | 2002-01-03 |
US20030170609A1 (en) | 2003-09-11 |
DE10031028B4 (de) | 2008-09-04 |
EP1295105A1 (de) | 2003-03-26 |
DE50115349D1 (de) | 2010-04-01 |
EP1295105B1 (de) | 2010-02-17 |
ATE458191T1 (de) | 2010-03-15 |
AU2001269087A1 (en) | 2002-01-08 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP1295105B1 (de) | Verfahren zur selektion von partikeln | |
DE102004047953A1 (de) | Selektion von Partikeln im laminaren Fluss | |
EP2152913B1 (de) | Detektionsvorrichtung zur detektion von biologischen mikropartikeln wie bakterien, viren, sporen, pollen oder biologische toxine, sowie detektionsverfahren | |
Keller et al. | Single-molecule fluorescence analysis in solution | |
EP0177718B1 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur Sortierung von mikroskopischen Partikeln | |
JP5046337B2 (ja) | 高純度のx染色体保有精子集団およびy染色体保有精子集団 | |
DE60219040T2 (de) | Dielektrophoretisches verfahren und anordnung für hoch-durchsatz screening | |
DE69722800T2 (de) | Probenanalyseverfahren mittels bestimmung einer funktion der spezifischen helligkeit | |
DE69724943T2 (de) | Mikrohergestellter chemischer sensor auf diffusionsbasis | |
WO2004070362A1 (de) | Mehrparametriges zell-identifikations- und sortierverfahren und zugehörige vorrichtung | |
CN102782479A (zh) | 光学分析装置、光学分析方法和用于光学分析的计算机程序 | |
CN102998259B (zh) | 光学测量设备、流式细胞仪及光学测量方法 | |
JP2009115672A (ja) | 微小粒子の光学的測定方法及び分取方法、並びに前記光学的測定方法及び分取方法に用いる流路、光学的測定装置及びフローサイトメータ | |
WO2017089427A1 (de) | Vorrichtung und verfahren zum analysieren biologischer objekte mit raman spektroskopie | |
DE10023423B4 (de) | Direkter Nachweis von Einzelmolekülen | |
EP0765470A2 (de) | Verfahren und vorrichtung zur gezielten entnahme von komponenten aus komplexen mischungen | |
DE4301005A1 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur Bewertung der Fitness von Biopolymeren | |
Khan et al. | Microfluidics add-on technologies for single-cell analysis | |
DE19938369B4 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur Erfassung von Molekülwechselwirkungen über molekulare Motoren | |
Ruzicka et al. | Flow injection cytoanalysis | |
DE10320956B4 (de) | Untersuchungsverfahren für biologische Zellen und zugehörige Untersuchungseinrichtung | |
CA2778245A1 (en) | Methods and systems for reducing dna fragmentation in a population of sperm cells | |
DE10314579A1 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur Sequenzanalyse von Nukleinsäuren | |
EP4088099A1 (de) | Anordnung zur optischen vorkonditionierung einer optisch aktivierbaren biologischen probe | |
DE10152017A1 (de) | Arrays mit Hairpin-Strukturen |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
8127 | New person/name/address of the applicant |
Owner name: GNOTHIS HOLDING SA, ECUBLENS, CH |
|
8181 | Inventor (new situation) |
Free format text: RIGLER, RUDOLF, PROF. DR., ST-SULPICE, CH GOESCH, MICHAEL, DIPL.-ING., STOCKSUND, SE |
|
8110 | Request for examination paragraph 44 | ||
8364 | No opposition during term of opposition | ||
8339 | Ceased/non-payment of the annual fee |