DE10014997A1 - Biopolymere und ihre Herstellung mit Koppelproduktgewinnung - Google Patents
Biopolymere und ihre Herstellung mit KoppelproduktgewinnungInfo
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Abstract
Vorgeschlagen werden Biopolymere mit einem Proteingehalt von maximal 1% m/m und einem Calciumgehalt von maximal 1% m/m, die dadurch erhältlich sind, daß man chitinhaltige Ausgangsstoffe in Gegenwart von biologisch abbaubaren Komplexbildnern und Proteasen demineralisiert und deproteiniert und ein Verfahren zu deren Herstellung. Das Verfahren zeichnet sich durch Abfalleinsparung über Verwertung aller Schalenprodukte und des Komplexbildners aus.
Description
Die Erfindung befindet sich auf dem Gebiet der Biopolymere und betrifft Biopolymere mit einem Protein
gehalt von maximal 1% m/m und einem Calciumgehalt von maximal 1% m/m und ein Verfahren zu ihrer
Herstellung aus chitinhaltigen Ausgangsstoffen in Gegenwart von biologisch abbaubaren Komplexbild
nern und Proteasen. Die dabei anfallenden Beiprodukte können als Wertstoffe Protein, Farbpigment
und Calcium in Tierfutter weiterverwendet werden.
Chitin (Poly β-(1-4)-N-acetyl-D-glucosamine) ist das nach Cellulose weltweit am häufigsten vorkom
mende natürliche Biopolymer. Es stellt den Hauptanteil der Gerüstsubstanz von marinen Krustentieren,
Insekten und Pilzen dar und hat als Vorprodukt von Chitosan, seiner deacetylierten Form, in den letzten
zwei Jahrzehnten beachtlich an Bedeutung gewonnen.
Seit dem Einsatz von Chitosan und seinen Derivaten in kosmetischen, medizinischen Anwendungen, in
der Papierindustrie, Biotechnologie, im Lebensmittelbereich, zur Abwasserreinigung oder auch Saatgut
veredlung besteht Bedarf an großtechnischen, umweltschonenden und rentablen Herstellungsmetho
den. Neben der guten ökologischen Verträglichkeit neuer Verfahren steht eine bessere Ausnutzung der
entstehenden Beiprodukte im Vordergrund. Die älteste und häufigste Methode der Chitingewinnung
beinhaltet die Zerkleinerung von Crustaceen-Abfällen, Demineralisierung durch Salzsäure, Deproteinie
rung durch Natronlauge und anschließende Waschschritte [Rigby G. W.; US-Patentschrift 1 040 879].
Das reine Chitin wird dann durch Deacetylierung mit konzentrierter Natronlauge zu Chitosan umgesetzt.
Durch die beschriebenen Verfahren der Chitinherstellung sind die Abwässer der Prozesse hoch mit Salz
und organischen, sauerstoffzehrenden Substanzen belastet. Wertvolle Beiprodukte der Chitinherstel
lung wie Proteinhydrolysat und Astaxanthin, der rote Farbstoff der Crustaceen, wurden nicht weiterver
arbeitet. Der Wertstoff "Farbpigment" in den Krabbenschalen wird durch die übliche Aufarbeitung stark
abgebaut oder kann unter wirtschaftlichen Gesichtspunkten nicht mehr isoliert werden.
Schonendere Wege der Deproteinierung bei der Chitinherstellung wurden durch den Einsatz von prote
olytischen Enzymen beschritten.
Joensen, J. O, beschreibt in der Patentanmeldung WO 8606082 A1 die Behandlung von chitinhaltigem
Ausgangsmaterial mit sauren Proteasen aus Fischinnereien. Dabei findet die Deproteinierung durch die
Proteasen der Innereien und die Demineralisierung durch den Zusatz einer anorganischen Säure statt.
Astaxanthin wird isoliert durch anschließende Extraktion mit Ölen. Dieses Verfahren isoliert als einziges
beschriebenes Verfahren sowohl Chitin, als auch Astaxanthin und Proteinhydrolysat. Es hat allerdings
die Nachteile, daß Calcium als unlösliches Sulfat ausfällt und abgetrennt werden muß, Proteinhydroly
sat und Astaxanthin in getrennten Phasen vorliegen und die sauren Bedingungen zu einer partiellen
Hydrolyse von Chitin führen.
Diesen Nachteil zu umgehen, wurden in einem anderen Verfahren neutrale Proteasen (Actinase) zur
Deproteinierung eingesetzt. Zur Demineralisierung diente in diesem Beispiel EDTA [Santoso et al.,
Tokyo Nogyo Daigaku Nogaku Shuho 1993]. Diese Methode erlaubte jedoch keine Isolierung von
Proteinhydrolysat oder Astaxanthin, das gelöste Calcium wird nicht genutzt, da EDTA weder als Futter
zusatz verwendbar noch biologisch abbaubar ist.
Die bessere ökologische Verträglichkeit versuchten Bustos und Healy [Chitin World 1994, S. 15-25]
durch den Einsatz von proteinabbauenden Bakterienkulturen zu erreichen. Dazu zählten zum einen
Proteaseexkretierende Stämme, zum anderen wurden Milchsäurebakterien eingesetzt [Rao et al. in
Adv. in Chitin Science, 1997]. Häufig fand jedoch eine Proteinentfernung durch diese Methoden nur
partiell statt, oder die sauren Bedingungen führten zu einer teilweisen Chitin-Polymerspaltung. Die
nachträgliche notwendige Abtrennung der Mikroorganismen stellte ein neues Problem dar. Eine Isolie
rung von löslichem Calcium und Astaxanthin wurde nicht beschrieben.
Die Aufgabe der vorliegenden Erfindung hat somit darin bestanden, Biopolymere von hoher Reinheit zur
Verfügung zu stellen, die sich für die Weiterverarbeitung zu hochmolekularen Chitosan mit guten filmbil
denden Eigenschaften eignen. Dieses soll jedoch durch einen umweltschonenden Herstellungsprozess
ermöglicht werden, der die Nutzung der anfallenden Haupt- und Beiprodukte ermöglicht. Der Prozess
soll neben der ausreichenden Aufreinigung des Rohchitins die Abtrennung von Protein oder abgebau
tem Protein von dem unlöslichen Chitin und die Solubilisierung und Isolierung des Pigments aus den
Krabbenschalen ohne nennenswerte Zerstörung erlauben. Eine bessere Verwertung der Beiprodukte
soll auch durch die Überführung von mineralischem unlöslichem Kalk in lösliches biologisch verwertba
res Calcium gegeben sein. Trotzdem soll die Qualität des gewonnenen Chitins nicht unter den ökologi
schen Gesichtspunkten leiden.
Es galt also, eine wirtschaftliche Balance zu finden zwischen der ausreichenden Reinigung des Rohchi
tins, der Minimierung der Säure, Auswahl einer biologisch verwertbaren Säure, des Reinigungsmittels
und einer integrierten Ausarbeitung der weiteren Wertstoffe Protein, Calcium, und Pigment.
Gegenstand der Erfindung sind Biopolymere mit einem Proteingehalt von maximal 1% m/m und einem
Calciumgehalt von maximal 1% m/m, dadurch erhältlich, daß man chitinhaltige Ausgangsstoffe in Ge
genwart von biologisch abbaubaren Komplexbildnern und Proteasen demineralisiert und deproteiniert.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zur Herstellung von Biopolymeren mit einem
Proteingehalt von maximal 1% m/m und einem Calciumgehalt von maximal 1% m/m, bei dem man chi
tinhaltige Ausgangsstoffe in Gegenwart von biologisch abbaubaren Komplexbildnern und Proteasen
demineralisiert und deproteiniert und das Wertprodukt von dem Calcium und Proteinhydrolysat enthal
tenden Beiprodukt abtrennt. Ebenfalls Gegenstand der Erfindung ist die Verwendung der Biopolymere
zur Herstellung von Chitosan und/oder Chitosanderivaten, sowie die Verwendung der in dem Verfahren
anfallenden Beiprodukte als Tierfutter.
In dem erfindungsgemäßen Verfahren gelang es, alle Parameter zu kombinieren, so daß unter ökono
mischen Gesichtspunkten weniger Rohstoffe zur Reinigung eingesetzt werden als im derzeit techni
schen Prozeß, der mit den Chemikalien Salzsäure und Natronlauge gefahren wird.
Überraschenderweise wurde gefunden, daß die Deproteinierung und Demineralisation unter neutralen
bis alkalischen Bedingungen die Chitinspaltung vermeidet, so daß aus diesem Vorprodukt hochmole
kulares Chitosan mit guten filmbildenden Eigenschaften durch Deacetylierung hergestellt werden kann.
Die nach dem Verfahren aus chitinhaltigem Ausgangsmaterial hergestellten Biopolymere weisen in Be
zug auf den Restgehalt an Calcium und Proteinen neben der geringen hydrolytischen Zersetzung eine
hohe Reinheit auf. Die Proteinentfernung mit Proteasen ermöglicht einen Proteinrestgehalt von maximal
1% m/m. Die Calciumentfernung ist mit dem ausgewählten Komplexbildner aus gemahlenen Schalen
annähernd vollständig möglich, mit ganzen Schalen bleiben Rest-Calciumgehalte von maximal
1% m/m.
Der bei der Chitingewinnung eingesetzte Komplexbildner ist im Gegensatz zu anderen Komplexbildnern
(z. B. EDTA) als Futtermitteladditiv einsetzbar. Er braucht im Prozeß nicht abgetrennt zu werden und
erhöht den Nährwert des Futtermitteladditivs. Der rote Farbstoff Astaxanthin kann unter obigen neutra
len bis alkalischen Bedingungen annähernd quantitativ isoliert werden.
Ein weiterer Vorteil des erfindungsgemäßen Verfahrens ist die Tatsache, daß Calcium nach der Chitin
gewinnung in löslicher Form als Citrat vorliegt und als Tierfuttermittel zum Beispiel bei Fischen den
Knochenaufbau (Lachse) und Schalenaufbau (Shrimps) schnell wachsender Zuchttiere positiv unter
stützen kann. Das als Beiprodukt zusammen mit Calciumcitrat und Astaxanthin anfallende Protein
hydrolysat dient ebenfalls als Nahrungsquelle. Somit wird neben der Gewinnung eines qualitativ hoch
wertigen Biopolymers zur Chitosanherstellung eine Abfalleinsparung über Verwertung aller Schalenpro
dukte und des Komplexbildners mit dem erfindungsgemäßen Verfahren ermöglicht.
Das beschriebene Verfahren soll vorwiegend bei der Gewinnung von Chitin aus Krustentieren einge
setzt werden, was jedoch die Verwendung bei anderen Ausgangsstoffen wie Insekten oder Pilzen nicht
einschränken soll.
Das chitinhaltige Ausgangsmaterial wird dabei mit dem bioabbaubaren Komplexbildner und einer Pro
tease versetzt und unter definierten Temperaturen und eingestelltem pH-Wert über mehrere Stunden
gerührt. Der Überstand bestehend aus Proteinhydrolysat, gelöstem Calcium, Komplexbildner und Asta
xanthin wird danach abdekantiert, der feste Rückstand (die Schalen) mit Wasser gewaschen und erneut
mit Komplexbildner und Protease versetzt. Der Vorgang kann beliebig oft wiederholt werden, bis die
gewünschte Reinheit des Biopolymeres erreicht ist. Das erfindungsgemäße Verfahren kann auch zu
sätzlich mit herkömmlichen Methoden kombiniert werden. Eine nach der enzymatischen Reaktion an
schließende Behandlung mit Mineralsäuren und Alkalilaugen wie zum Beispiel Salzsäure und Natron
lauge ist dabei denkbar. Durch das gemischt enzymatisch-chemische Verfahren können trotz einer Ver
ringerung der Umweltbelastung deutlich über 99% sowohl des Proteins als auch des Calciums aus dem
Krustentierabfall entfernt werden.
Zur Demineralisierung des Ausgangsmaterials werden Komplexbildner eingesetzt, die biologisch ab
baubar sind und eine hohe Umweltverträglichkeit aufweisen. Sie sind somit sogar als Futterbestandteil
ohne vorherige Abtrennung einsetzbar. Dabei sind Citrate, insbesondere Natriumcitrat das bevorzugte
Agens zur Demineralisierung.
Die Komplexbildner können direkt in situ durch Einsatz von Säuren und Laugen, im hervorgehobenen
Fall Citronensäure und Natronlauge, hergestellt werden. Dabei finden Konzentrationen von 25 bis
500 mM, vorzugsweise 50 bis 200 mM Natriumcitrat bezogen auf das Gesamtvolumen Anwendung.
Zur enzymatischen Deproteinierung sollen Proteasen eingesetzt werden, die ihr Optimum im neutralen
bis alkalischen Bereich haben. Sie ermöglichen eine schonende Behandlung des Chitins, unter Vermei
dung einer hydrolytischen Spaltung, so daß ein hochmolekulares Biopolymer als Ausgangssubstanz für
hochmolekulares Chitosan mit guten filmbildenden Eigenschaften zur Verfügung steht. Mögliche Pro
teasen sind Chymotrypsin, Trypsin, Chymopapain, Papain, Thermolysin, Alcalase, Nagarse, Proteinase
A, Proteinase K, Metalloendopeptidase, Endoproteinase, Kallikrein, Ficin, Elastase, Collagenase,
Clostripain, Calpain oder aus Bakterien isolierte Proteasen mit einem pH-Optimum im neutralen bis
basischen Bereich. Protease-Cocktails, das heißt Mischungen von mehreren Proteasetypen mit unter
schiedlichen pH-Optima, sind ebenfalls zur Deproteinierung einsetzbar. Besonders bevorzugt aufgrund
ihres guten Leistungs/Einsatzmengen-Verhältnisses sind Proteasen vom Subtilisin-Typ. Je nach Pro
teasetyp und Reaktionszeiten werden die Enzyme eingesetzt im Enzym/Schalen-Gewichtsverhältnis
von 0,1 : 100 bis 5 : 100. Subtilisin findet Anwendung im Enzym/Schalen-Gewichtsverhältnis von 0,1 : 100
bis 3 : 100, vorzugsweise 0,2 : 100 bis 0,5 : 100.
Der pH-Wert, bei dem die Deproteinierung abläuft, ist dem Reaktionsoptimum des jeweiligen Enzyms
anzupassen. Im Falle von Subtilisin soll der pH-Bereich der Reaktion auf pH-Werte von pH 7 bis 11,
vorzugsweise pH 9,0 bis 10 eingestellt werden. Auch die Reaktionstemperatur muß im ersten Schritt
dem Temperaturoptimum des Enzyms angepasst werden. Der Gesamtprozess findet bei Temperaturen
im Bereich von 20 bis 100°C statt, wobei für den ersten Schritt Temperaturen von 20 bis 50°C bevor
zugt werden, während weitere Schritte, wie zum Beispiel Waschschritte wiederum bei höheren Tempe
raturen ablaufen können.
100 g Shrimp Peeling-Abfall wurden mit 1000 ml 100 mM Na-Citrat eingestellt auf pH 9,1
(Lösung wurde in situ aus Citronensäure und NaOH hergestellt).
0,5 ml 5 gew.-%ige Subtilisin-Lösung wurden zugefügt.
Der Ansatz wurde 16 h bei 45°C gerührt, der Überstand wurde abdekantiert und die Schalen wurden gründlich mit Wasser gewaschen.
Die Schalen (Roh-Chitin) wurden erneut inkubiert, mit 500 ml 100 mM Na-Citrat eingestellt auf pH 9,1 (Lösung wurde in situ aus Citronensäure und NaOH hergestellt).
0,25 ml 5 gew.-%ige Subtilisin-Lösung wurden zugefügt.
Der Ansatz wurde 63 h bei 30°C gerührt, der Überstand wurde abdekantiert und Schalen wurden gründlich mit Wasser und Ethanol gewaschen.
Das Chitin wurde gefriergetrocknet.
0,5 ml 5 gew.-%ige Subtilisin-Lösung wurden zugefügt.
Der Ansatz wurde 16 h bei 45°C gerührt, der Überstand wurde abdekantiert und die Schalen wurden gründlich mit Wasser gewaschen.
Die Schalen (Roh-Chitin) wurden erneut inkubiert, mit 500 ml 100 mM Na-Citrat eingestellt auf pH 9,1 (Lösung wurde in situ aus Citronensäure und NaOH hergestellt).
0,25 ml 5 gew.-%ige Subtilisin-Lösung wurden zugefügt.
Der Ansatz wurde 63 h bei 30°C gerührt, der Überstand wurde abdekantiert und Schalen wurden gründlich mit Wasser und Ethanol gewaschen.
Das Chitin wurde gefriergetrocknet.
50 g getrocknetes und gemahlenes Pulver aus Shrimp Peeling-Abfall wurden
analog zu Ansatz 1 aufgearbeitet.
200 g Shrimp Peeling-Abfall wurden mit 1000 ml 50 mM Na-Citrat eingestellt auf pH 9,5
(Lösung wurde in situ aus Citronensäure und NaOH hergestellt).
0,5 ml 5 gew.-%ige Subtilisin-Lösung wurde zugefügt.
Der Ansatz wurde 4 h bei 50°C gerührt, der Überstand abdekantiert und die Schalen wurden gründlich mit Wasser und einmal mit 100 mM HCl gewaschen.
Die Behandlung der Schalen wurde zweimal wie oben beschrieben wiederholt.
1. Wiederholung): Volumen 750 ml, t = 4 h, T = 50°C
2. Wiederholung): Volumen 500 ml, t = 13 h, T = 30°C
Nach der dritten Inkubation wurde für 1 h mit heißem Wasser (80°C) gewaschen.
Das Chitin wurde gefriergetrocknet.
0,5 ml 5 gew.-%ige Subtilisin-Lösung wurde zugefügt.
Der Ansatz wurde 4 h bei 50°C gerührt, der Überstand abdekantiert und die Schalen wurden gründlich mit Wasser und einmal mit 100 mM HCl gewaschen.
Die Behandlung der Schalen wurde zweimal wie oben beschrieben wiederholt.
1. Wiederholung): Volumen 750 ml, t = 4 h, T = 50°C
2. Wiederholung): Volumen 500 ml, t = 13 h, T = 30°C
Nach der dritten Inkubation wurde für 1 h mit heißem Wasser (80°C) gewaschen.
Das Chitin wurde gefriergetrocknet.
200 g Shrimp Peeling-Abfall
2000 ml 100 mM HCl-Lösung
Der Ansatz wurde 14 h bei Raumtemperatur gerührt, der Überstand wurde abdekantiert, und die Schalen wurden gründlich mit Wasser gewaschen.
Die weitere Behandlung der Schalen erfolgt analog zu Ansatz 3
1. Ansatz): Volumen 1000 ml, t = 3 h, T = 50°C
1. Wiederholung): Volumen 500 ml, t = 3 h, T = 50°C
2. Wiederholung): Volumen 500 ml, t = 4 h, T = 50°C
Nach der dritten Inkubation wurde für 1 h mit heißem Wasser (80°C) gewaschen.
Das Chitin wurde gefriergetrocknet.
2000 ml 100 mM HCl-Lösung
Der Ansatz wurde 14 h bei Raumtemperatur gerührt, der Überstand wurde abdekantiert, und die Schalen wurden gründlich mit Wasser gewaschen.
Die weitere Behandlung der Schalen erfolgt analog zu Ansatz 3
1. Ansatz): Volumen 1000 ml, t = 3 h, T = 50°C
1. Wiederholung): Volumen 500 ml, t = 3 h, T = 50°C
2. Wiederholung): Volumen 500 ml, t = 4 h, T = 50°C
Nach der dritten Inkubation wurde für 1 h mit heißem Wasser (80°C) gewaschen.
Das Chitin wurde gefriergetrocknet.
Fazit: Die alkalische Protease vom Typ Subtilisin ist gut geeignet zur Deproteinierung von Shrimp Pee
ling-Abfall.
Vergleiche mit Literaturdaten zur Deproteinierung von Shrimp-Schalen mit anderen Proteasen zeigen,
daß alkalische Proteasen vom Subtilin-Typ ein sehr gutes Leistungs/Einsatzmenge-Verhältnis haben
(Tabelle 3). Andere Autoren (Takeda & Abe, 1962; Takeda & Katsura, 1964) erzielten mit verschiede
nen anderen Proteasen lediglich Rest-Protein Gehalte im Chitin von 5% bei < 60 h Reaktionszeit.
50 g Shrimp Peeling-Abfall wurden mit 100 ml Wasser und 3 g Na-Citrat versetzt und der pH-
Wert eingestellt auf pH 9,5.
0,1 ml 5 gew.-%ige Subtilisin-Lösung wurden zugefügt.
Der Ansatz wurde 14 h bei 45°C gerührt, der Überstand wurde abdekantiert, und die Schalen wurden gründlich mit Wasser gewaschen.
Roh-Chitin wurde mit 100 ml 4 Gew.-% NaOH versetzt, der Ansatz wurde 2 h bei 80°C gerührt, der Überstand wurde abdekantiert, und die Schalen wurden gründlich mit Wasser gewaschen.
Roh-Chitin wurde mit 100 ml 3 Gew.-% HCl versetzt, der Ansatz wurde 3 h bei Raumtemperatur gerührt, der Überstand wurde abdekantiert, und die Schalen wurden einmal gründlich bei 80°C für 1 h mit Wasser gewaschen. Das Chitin wurde gefriergetrocknet.
0,1 ml 5 gew.-%ige Subtilisin-Lösung wurden zugefügt.
Der Ansatz wurde 14 h bei 45°C gerührt, der Überstand wurde abdekantiert, und die Schalen wurden gründlich mit Wasser gewaschen.
Roh-Chitin wurde mit 100 ml 4 Gew.-% NaOH versetzt, der Ansatz wurde 2 h bei 80°C gerührt, der Überstand wurde abdekantiert, und die Schalen wurden gründlich mit Wasser gewaschen.
Roh-Chitin wurde mit 100 ml 3 Gew.-% HCl versetzt, der Ansatz wurde 3 h bei Raumtemperatur gerührt, der Überstand wurde abdekantiert, und die Schalen wurden einmal gründlich bei 80°C für 1 h mit Wasser gewaschen. Das Chitin wurde gefriergetrocknet.
Mit der gemischt chemisch und enzymatischen Behandlung können deutlich über 99% sowohl von
Protein als auch Calcium aus dem Shrimp Peeling-Abfall entfernt wurden.
50 g Shrimp Peeling-Abfall wurden mit 100 ml Wasser und 3 g Na-Citrat versetzt und der pH-
Wert eingestellt auf pH 9,5.
0,1 ml 5 gew.-%ige Subtilisin-Lösung wurden zugefügt.
Der Ansatz wurde 14 h bei 45°C gerührt, der Überstand wurde abdekantiert. Der Überstand wurde komplett gefriergetrocknet.
0,1 ml 5 gew.-%ige Subtilisin-Lösung wurden zugefügt.
Der Ansatz wurde 14 h bei 45°C gerührt, der Überstand wurde abdekantiert. Der Überstand wurde komplett gefriergetrocknet.
Fazit: In Relation zum gewonnenen Chitin (durchschnittlich etwa 4%/Feuchtgewicht Shrimp Peeling-
Abfall) läßt sich ein 6facher Überschuß pulverförmiger Wertstoff gewinnen, der reich an partiell hydroly
siertem Protein, Citrat und Calcium ist. Der gewonnene rote Farbstoff entspricht in der Größenordnung
den Literaturangaben zum Astaxanthin-Gehalt in Shrimp Peeling-Abfall von der Gattung Pandalus Bo
realis (230 ppm auf getrocknetes Produkt, Joensen & Villadsen, In Chitin World 1994).
Extrahiertes Calcium entspricht etwa 65% des maximal extrahierbaren Calciums. Mit höheren Citrat-
Konzentrationen konnten auch höhere Werte gelösten Calciums erzielt werden (~ 0,9 g = 7,5%).
Herstellung von Chitosan aus enzymatisch hergestelltem Chitin durch chemische Deacetylie
rung. Qualitative Untersuchung der produzierten Chitosane im Vergleich zu chemisch hergestell
tem Chitosan.
200 mg getrocknetes und gemahlenes Chitin aus Ansatz 1 wurden mit
10 ml 50% NaOH versetzt und 4 h unter Rühren und Rückfluß gekocht.
Der Überstand wurde abdekantiert und das Chitosan gewaschen bis das Waschwasser neutral wurde.
Der Überstand wurde abdekantiert und das Chitosan gewaschen bis das Waschwasser neutral wurde.
200 mg getrocknetes und gemahlenes Chitin aus Ansatz 3 wurden mit
10 ml 50% NaOH versetzt und 4 h unter Rühren und Rückfluß gekocht.
Der Überstand wurde abdekantiert und das Chitosan gewaschen bis das Waschwasser neutral wurde.
Der Überstand wurde abdekantiert und das Chitosan gewaschen bis das Waschwasser neutral wurde.
200 mg getrocknetes und gemahlenes Chitin aus Ansatz 4 wurden mit
10 ml 50% NaOH versetzt und 4 h unter Rühren und Rückfluß gekocht.
Der Überstand wurde abdekantiert und das Chitosan gewaschen bis das Waschwasser neutral wurde.
Der Überstand wurde abdekantiert und das Chitosan gewaschen bis das Waschwasser neutral wurde.
200 mg getrocknetes und gemahlenes Chitin aus Ansatz 5 wurden mit 10 ml 50% NaOH ver
setzt und 4 h unter Rühren und Rückfluß gekocht.
Der Überstand wurde abdekantiert und das Chitosan gewaschen bis das Waschwasser neutral wurde.
Der Überstand wurde abdekantiert und das Chitosan gewaschen bis das Waschwasser neutral wurde.
200 g Shrimp Peeling-Abfall wurden mit 350 ml 4% HCl versetzt. Der Ansatz wurde 14 h bei
4°C gerührt, der Überstand wurde abdekantiert, und die Schalen wurden gründlich mit Wasser
gewaschen.
Das Roh-Chitin wurde mit 350 ml 4,5% NaOH versetzt. Der Ansatz wurde 2 h bei 80°C ge rührt, der Überstand wurde abdekantiert und die Schalen wurden gründlich mit Wasser gewa schen.
Das Roh-Chitin wurde mit 350 ml 2% HCl versetzt und der Ansatz wurde 3 h bei Raumtempe ratur gerührt. Der Überstand wurde abdekantiert, und die Schalen wurden gründlich bei 80°C für 1 h mit Wasser gewaschen. Das Chitin wurde gefriergetrocknet.
200 mg getrocknetes und gemahlenes Chitin wurden mit 10 ml 50% NaOH 4 h unter Rühren und Rückfluß gekocht. Der Überstand wurde abdekantiert und das Chitosan gewaschen bis das Waschwasser neutral wurde.
Das Roh-Chitin wurde mit 350 ml 4,5% NaOH versetzt. Der Ansatz wurde 2 h bei 80°C ge rührt, der Überstand wurde abdekantiert und die Schalen wurden gründlich mit Wasser gewa schen.
Das Roh-Chitin wurde mit 350 ml 2% HCl versetzt und der Ansatz wurde 3 h bei Raumtempe ratur gerührt. Der Überstand wurde abdekantiert, und die Schalen wurden gründlich bei 80°C für 1 h mit Wasser gewaschen. Das Chitin wurde gefriergetrocknet.
200 mg getrocknetes und gemahlenes Chitin wurden mit 10 ml 50% NaOH 4 h unter Rühren und Rückfluß gekocht. Der Überstand wurde abdekantiert und das Chitosan gewaschen bis das Waschwasser neutral wurde.
Da die Deproteinierung und Demineralisierung nach dem erfindungsgemäßen Verfahren eine Chitin
spaltung verhindert, bietet das nach dieser Methode hergestellte Chitin ein hochwertiges Vorprodukt
für die Herstellung von hochmolekularem Chitosan mit guten filmbildenden Eigenschaften.
Verwendung findet das Chitosan zur Herstellung von kosmetischen und/oder pharmazeutischen Mitteln,
wie beispielsweise Haut- oder Haarpflegemitteln, Hautrepairstoffen und Wundheilmitteln, in denen sie
in Mengen von 0,01 bis 10 Gew.-%, vorzugsweise 0,1 bis 1,5 Gew.-% - bezogen auf die Mittel -
enthalten sein können.
Das weiterhin bei der Chitinherstellung gewonnene Proteinhydrolysat findet wie auch das Astaxanthin
und gelöstes Calcium Verwendung als Futtermittelzusatz, insbesondere als Fischfutter.
Claims (10)
1. Biopolymere mit einem Proteingehalt von maximal 1% m/m und einem Calciumgehalt von maximal
1% m/m, dadurch erhältlich, daß man chitinhaltige Ausgangsstoffe in Gegenwart von biologisch ab
baubaren Komplexbildnern und Proteasen demineralisiert und deproteiniert.
2. Verfahren zur Herstellung von Biopolymeren mit einem Proteingehalt von maximal 1% m/m und
einem Calciumgehalt von maximal 1% m/m, bei dem man chitinhaltige Ausgangsstoffe in Gegen
wart von biologisch abbaubaren Komplexbildnern und Proteasen demineralisiert und deproteiniert
und das Wertprodukt von dem Calcium und Proteinhydrolysat enthaltenden Beiprodukt abtrennt.
3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß man Citrate als Komplexbildner zur
Demineralisierung einsetzt.
4. Verfahren nach den Ansprüchen 2 und 3, dadurch gekennzeichnet, daß man als chitinhaltiges
Ausgangsmaterial Schalen von Krustentieren einsetzt.
5. Verfahren nach den Ansprüchen 2 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß man zur enzymatischen
Deproteinierung neutrale und/oder alkalische Proteasen einsetzt.
6. Verfahren nach den Ansprüchen 2 bis 5, dadurch gekennzeichnet, daß man die enzymatische
Deproteinierung bei einem pH-Wert von 7 bis 11 durchführt.
7. Verfahren nach den Ansprüchen 2 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß man die Deproteinierung
und Demineralisierung bei Temperaturen im Bereich von 20 bis 100°C durchführt.
8. Verfahren nach den Ansprüchen 2 bis 7, dadurch gekennzeichnet, daß das im Beiprodukt ent
haltene Calcium in gelöster Form vorliegt.
9. Verwendung der bei dem Verfahren nach Anspruch 2 anfallenden Beiprodukte als Tierfuttermittel.
10. Verwendung der Biopolymere nach Anspruch 1 zur Herstellung von Chitosan und/oder Chitosande
rivaten.
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Owner name: COGNIS DEUTSCHLAND GMBH & CO. KG, 40589 DUESSELDOR |
|
8139 | Disposal/non-payment of the annual fee |