CZ201220A3 - Lipopolyaminy sperminového typu pro konstrukci liposomálních transfekcních systému - Google Patents

Lipopolyaminy sperminového typu pro konstrukci liposomálních transfekcních systému Download PDF

Info

Publication number
CZ201220A3
CZ201220A3 CZ20120020A CZ201220A CZ201220A3 CZ 201220 A3 CZ201220 A3 CZ 201220A3 CZ 20120020 A CZ20120020 A CZ 20120020A CZ 201220 A CZ201220 A CZ 201220A CZ 201220 A3 CZ201220 A3 CZ 201220A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
formula
linker
cholest
acids
bond
Prior art date
Application number
CZ20120020A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ303963B6 (cs
Inventor
Drasar@Lukás
Ledvina@Miroslav
Korvasová@Zina
Turánek@Jaroslav
Original Assignee
Ústav organické chemie a biochemie Akademie ved CR, v.v.i.
Výzkumný ústav veterinárního lékarství, v. v. i.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ústav organické chemie a biochemie Akademie ved CR, v.v.i., Výzkumný ústav veterinárního lékarství, v. v. i. filed Critical Ústav organické chemie a biochemie Akademie ved CR, v.v.i.
Priority to CZ20120020A priority Critical patent/CZ303963B6/cs
Priority to EP13704708.0A priority patent/EP2802556B1/en
Priority to PCT/CZ2013/000004 priority patent/WO2013104346A1/en
Priority to US14/370,526 priority patent/US9393200B2/en
Publication of CZ201220A3 publication Critical patent/CZ201220A3/cs
Publication of CZ303963B6 publication Critical patent/CZ303963B6/cs

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/10Dispersions; Emulsions
    • A61K9/127Synthetic bilayered vehicles, e.g. liposomes or liposomes with cholesterol as the only non-phosphatidyl surfactant
    • A61K9/1271Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes or liposomes coated or grafted with polymers
    • A61K9/1272Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes or liposomes coated or grafted with polymers comprising non-phosphatidyl surfactants as bilayer-forming substances, e.g. cationic lipids or non-phosphatidyl liposomes coated or grafted with polymers
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/06Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite
    • A61K47/16Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite containing nitrogen, e.g. nitro-, nitroso-, azo-compounds, nitriles, cyanates
    • A61K47/18Amines; Amides; Ureas; Quaternary ammonium compounds; Amino acids; Oligopeptides having up to five amino acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07CACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C233/00Carboxylic acid amides
    • C07C233/01Carboxylic acid amides having carbon atoms of carboxamide groups bound to hydrogen atoms or to acyclic carbon atoms
    • C07C233/16Carboxylic acid amides having carbon atoms of carboxamide groups bound to hydrogen atoms or to acyclic carbon atoms having the nitrogen atom of at least one of the carboxamide groups bound to a carbon atom of a hydrocarbon radical substituted by singly-bound oxygen atoms
    • C07C233/17Carboxylic acid amides having carbon atoms of carboxamide groups bound to hydrogen atoms or to acyclic carbon atoms having the nitrogen atom of at least one of the carboxamide groups bound to a carbon atom of a hydrocarbon radical substituted by singly-bound oxygen atoms with the substituted hydrocarbon radical bound to the nitrogen atom of the carboxamide group by an acyclic carbon atom
    • C07C233/18Carboxylic acid amides having carbon atoms of carboxamide groups bound to hydrogen atoms or to acyclic carbon atoms having the nitrogen atom of at least one of the carboxamide groups bound to a carbon atom of a hydrocarbon radical substituted by singly-bound oxygen atoms with the substituted hydrocarbon radical bound to the nitrogen atom of the carboxamide group by an acyclic carbon atom having the carbon atom of the carboxamide group bound to a hydrogen atom or to a carbon atom of an acyclic saturated carbon skeleton
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07CACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C233/00Carboxylic acid amides
    • C07C233/01Carboxylic acid amides having carbon atoms of carboxamide groups bound to hydrogen atoms or to acyclic carbon atoms
    • C07C233/34Carboxylic acid amides having carbon atoms of carboxamide groups bound to hydrogen atoms or to acyclic carbon atoms having the nitrogen atom of at least one of the carboxamide groups bound to a carbon atom of a hydrocarbon radical substituted by amino groups
    • C07C233/35Carboxylic acid amides having carbon atoms of carboxamide groups bound to hydrogen atoms or to acyclic carbon atoms having the nitrogen atom of at least one of the carboxamide groups bound to a carbon atom of a hydrocarbon radical substituted by amino groups with the substituted hydrocarbon radical bound to the nitrogen atom of the carboxamide group by an acyclic carbon atom
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07JSTEROIDS
    • C07J41/00Normal steroids containing one or more nitrogen atoms not belonging to a hetero ring
    • C07J41/0033Normal steroids containing one or more nitrogen atoms not belonging to a hetero ring not covered by C07J41/0005
    • C07J41/0055Normal steroids containing one or more nitrogen atoms not belonging to a hetero ring not covered by C07J41/0005 the 17-beta position being substituted by an uninterrupted chain of at least three carbon atoms which may or may not be branched, e.g. cholane or cholestane derivatives, optionally cyclised, e.g. 17-beta-phenyl or 17-beta-furyl derivatives
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07JSTEROIDS
    • C07J9/00Normal steroids containing carbon, hydrogen, halogen or oxygen substituted in position 17 beta by a chain of more than two carbon atoms, e.g. cholane, cholestane, coprostane
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/87Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
    • C12N15/88Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation using microencapsulation, e.g. using amphiphile liposome vesicle

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Steroid Compounds (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Abstract

Lipopolyaminy sperminového typu obecného vzorce I, kde X je vazba mezi atomem uhlíku koncové skupiny CO hydrofobní domény Y a atomem dusíku polyaminové cásti, nebo aminopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce II, kde n.sub.1 .n.= 1 az 13, nebo .omega.-hydroxy-alkylkarboxamidová spojka obecného vzorce III, kde n.sub.2.n.= 1 az 9, nebo .omega.-hydroxyalkylkarboxaminodopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce IV, kde n.sub.3.n.= 1 az 9 a n.sub.4.n.= 1 az 13, a hydrofobní doména Y je poloze C(2) symetricky vetvený acyl obecného vzorce V, kde n.sub.5.n.= 5 az 30, nebo (3.beta.)-cholest-5-en-3-yl vzorce VI. V prípade, kdyz X je vazba mezi atomem uhlíku koncové skupiny CO hydrofobní domény a atomem dusíku polyaminové cásti, nebo aminopolyethylenglykolkarboxamidová spojka vzorce II, tak Y je v poloze C(2) symetricky vetvený acyl vzorce V, a v prípade, ze X je .omega.-hydroxyalkylkarboxamidová spojka vzorce III nebo .omega.-hydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykolkarboxamidová spojka vzorce IV, tak hydrofobní doména Y je (3.beta.)-cholest-5-en-3-yl vzorce VI. Zpusob prípravy lipopolyaminu obecného vzorce I prevedením v poloze C(2) symetricky vetvené mastné kyseliny obecného vzorce VII, kde n.sub.1.n.= 5 az 30, nebo kyseliny obecného vzorce VIII, kde n.sub.1.n.= 1 az 13 a n.sub.5.n.= 5 az 30, nebo kyseliny obecného vzorce IX, kde n.sub.2.n.= 1 az 9, nebo kyseliny obecného vzorce X, kde n.sub.3.n.= 1 az 9 a n.sub.4.n.= 1 az 13, reakcí s bis(pentafluorfenyl)karbonátem v prítomnosti organické báze v polárním aprotickém rozpoustedle na pentafluorfenyl estery, které se reakcí s N.sup.2.n.N.sup.3.n.N.sup.4.n.-tri-(terc-butoxyka

Description

Oblast techniky
Vynález se týká nových lipopolyaminů, způsobu jejich přípravy a využití těchto látek při konstrukci polykationických samoskladných nosičů léčiv na bázi negativně nabitých fragmentů nukleových kyselin
Dosavadní stav techniky
Jedním z hlavních problémů, které v současnosti limitují zavedení genové terapie a genetických vakcín do běžné klinické praxe, je nedostatečná účinnost transportu fragmentů nukleových kyselin (NK) přes buněčnou stěnu a jejich následná intemalizace do buněčného jádra, tj. tzv. transfekce (Miller, A. D. 2004; Zhang, S. B. a spol. 2010). V tomto případě je „léčivem“ fragment negativně nabité nukleové kyseliny, který musí proniknout buňkou a jadernými membránami. Jde vlastně o korekci genů vložením opravného genu (genů) a utlumení aktivity nevhodných genů. DNA vakcíny jsou specifickým oblastí genové terapie, kde cílovými buňkami jsou buňky imunitního systému presentující antigen (zvláště dendritické buňky a monocyty; Saha, R. a spol. 2011).
Zásadní úlohu zde hraje proces penetrace negativně nabitého fragmentu NK přes fosfolipidovou dvojvrstvu buněčné stěny. Tato skutečnost iniciovala v posledním desetiletí rozsáhlý výzkum zaměřený na vývoj nosičů (tzv. vektorů), které by byly schopny efektivně transportovat NK přes buněčnou membránu. Tyto vektory musí současně zajistit ochranu NK před její degradací in vivo (Kirby, A. J. a spol. 2003; Miller, A. D. 1998; Zhang, S. B. a spol. 2010). S problémem efektivity transportu přes buněčnou membránu se rovněž setkáváme v případě nukleotidových a oligonukleotidových antineoplastik a antivirotik (Holý, A. 2003).
Metody pro vpravení části NK do cílových buněk se obecně dělí na metodiky využívající virové, nebo nevirové vektory. Virové vektory představují v současnosti nej efektivnější transfekční systém, ale vzhledem k možným biologickým rizikům (zejména nepředvídatelným imunitním reakcím) je zavedení virových vektorů do běžné klinické praxe více než problematické (Miller, A. D. 1992; Zhang, S.B. a spol. 2010). Nevirové vektory rozlišujeme podle způsobu, jakým je NK vpravována do intracelulámího prostoru, na vektory « · « t f i « · • < « « « < * ♦ « · ♦ * v ♦ C · « * í « < · · · fyzikální a chemické. Fyzikální vektory pracují s fyzikálním nebo mechanickým narušením buněčné membrány, které umožní inzerci NK do intracelulámího prostoru (André, F. M. a spol. 2010). Chemické vektory jsou založeny na polykationických polymerech nebo na supramolekulámích samoorganizujících se lipidních systémech, které vytvoří s negativně nabitou NK komplex (tzv. polyplex, resp. lipoplex), schopný překonat buněčnou membránu a ve kterém je NK současně chráněna před degradací v krevním řečišti. Nejčastěji používanými kationickými polymery jsou DEAE-dextran (Ohtani, K. a spol. 1989), chitosan (Hejazi, R. a spol. 2003; Koping-Hoggard, M. a spol. 2001), polylysin (Lemaitre, M. a spol. 1987), polyethylenimin (Boussif, O. a spol. 1995), a polyamindendrimery (Haensler, J. a spol. 1993).
Nadějnými kandidáty na nosiče NK, aplikovatelné v humánní medicíně, se v současnosti jeví polykationické samoskladné lipidní struktury (tzv. polykationické liposomy). Ty jsou nejčastěji tvořeny syntetickým lipopolyaminem (tzv. cytofektinem) a neutrálním kolipidem. Polykationické liposomy, na rozdíl od virových vektorů, jsou tvořeny strukturně definovanými molekulami a lze proto strukturními změnami modulovat jejich fyzikální a biologické vlastnosti a zvýšit tak transfekční schopnost a potlačit toxicitu. Tento fakt inicioval rozsáhlý výzkum v oblasti polykationických lipidů. Byla připravena široká paleta kationických lipidů lišících se charakterem kationické a hydrofobní domény (NiculescuDuvaz, D. a spol. 2003; Zhi, D. F. a spol. 2010). Mnohé z těchto kationických lipidů jsou již komerčně dostupné jako transfekční činidla a několik liposomálních formulací bylo použito v klinických testech v genové terapii pro léčení rakoviny a ostatních genetických poruch (Behr, J. P. 1994).
Z hlediska struktury kationické domény představují kationické lipidy, jejichž doména je tvořena polyaminy odvozenými od přírodního sperminu nebo spermidinu, nejúspěšnější třídu kationických lipidů. To je dáno tím, že účinně neutralizují, srážejí a enkapsulují DNA a mají endozomální pufrační vlastnosti (Stewart, L. a spol. 2001). Alternativními nejčastěji se vyskytujícími kationickými doménami jsou např. kvartemí amoniové ionty, guanidinový motiv, dusíkaté heterocykly, bazické aminokyseliny a od nich odvozené krátké peptidy (Niculescu-Duvaz, D. a spol. 2003). Hydrofobní domény jsou nej častěji tvořeny jedním nebo více alifatickými řetězci (nasycenými, nenasycenými nebo fluorovanými), nebo steroidním zbytkem.
I
- 3 — iit »· · < i * *
Celková geometrie kationického lipidu, tj. poměr polární a nepolární části molekuly, má zásadní vliv na utváření strukturních fází v roztoku a transfekční aktivitu. Dvouřetězcové lipidy ve srovnání s jednořetězcovými nebo tři- a víceřetězcovými vytváří lépe lipidové dvojvrstvy, které se ve vodném roztoku samouzavírají do sférických liposomů. Naproti tomu kationické lipidy s jedním nebo třemi alifatickými řetězci mají zvýšenou tendenci vytvářet micely resp. reverzní micely a vykazují proto nižší transfekční aktivitu a mnohdy zvýšenou toxicitu (Niculescu-Duvaz, D. a spol. 2003; Tsukamoto, M. a spol. 1995). Proto drtivá většina používaných kationických lipidů obsahuje dva alifatické řetězce. Nejvíce používanou větvící doménou je glycerol, který, podobně jako v přírodních amfifilech, slouží k presentaci dvou hydrofobních řerězců (Zuhom, I. S. a spol. 2002). Kationické lipidy s touto kostrou mohou být podle místa navázání hydrofobní domény symetrické nebo asymetrické. Zajímavým větvícím principem umožňujícím prezentaci dvou hydrofobních řetězců jsou synteticky dobře dostupné sekundární amidy aminokyselin (Behr, J. P.a spol. 1989). Dalšími strukturními motivy, sloužícími k násobné presentaci hydrofobních domén, jsou např. substituované aromatické kruhy a krátké peptidy (pro přehled ref. Niculescu-Duvaz, D. a spol. 2003). Specifickou skupinou hydrofobních domén jsou steroly s planámí strukturou. Předpokládá se, že lipidy obsahující steroidní jednotku mají tendenci zpevňovat lipidní dvouvrstvu (Regelin, A. E. a spol. 2000). Většinou se jedná o deriváty cholesterolu presentující v poloze C(3) polykationickou doménu polyaminového typu via uretanová spojka. Do této kategorie patři i komerčně dostupný C-DAN, ref. (Gao, X. a spol. 1991; Keller, M. a spol. 2003; Petukhov, I. A.a spol. 2010). Jistým omezením z hlediska širšího použití těchto kationických lipidů je limitovaná stabilita jejich uretanové spojky. Jsou rovněž známy transfekční systémy založené na amidech cholových kyselin (Fujiwara, T. a spol. 2000).
Podstata vynálezu
Předmětný vynález řeší problém: (a) syntetické náročnosti lipopolyaminů obsahujících dvě symetrické alifatické hydrofobní domény, založené na symetrických lipofílních diacylderivátech glycerolu a na symetrických sekundárních amidech aminokyselin, použitím amidů synteticky dobře dostupných v poloze C(2) symetricky větvených mastných kyselin, jakož i inzercí polyethylenglykolové spojky mezi hydrofobní a polykationickou doménou; (b) limitované stability uretanové spojky v případě lipopolyaminů odvozených od cholesterolu její—náhradou spojkou typu amidů ω-Hýďřóxykarboxylových— kyselin—neha__
'4 — • · u • «t • ·· • t «· t* * · · ·4 « • » · » » « •4 « t » ♦· ♦ ·* ♦ · « · její náhradou spojkou typu amidů ω-hydroxykarboxylových kyselin aminpolyethylenglykolkarboxylových kyselin.
nebo
Předmětem vynálezu jsou lipopolyaminy sperminového typu obecného vzorce I (O.
kde X je zvoleno ze skupiny, zahrnující vazbu mezi atomem uhlíku koncové skupiny CO hydrofobní domény Y a atomem dusíku polyaminové části, aminopolyethylenglykolkarboxamidovou spojku obecného vzorce II
kde ni = 1-13, vázanou na polyaminovou část i na hydrofobní doménu Y amidickou vazbou, ω-hydroxyalkylkarboxamidovou spojku obecného vzorce III kde n2 = 1-9, vázanou na atom dusíku polyaminové části amidickou vazbou a prostřednictvím atomu kyslíku do polohy 2 cholesterylového skeletu, a ω-hydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykolkarboxamidovou spojku obecného vzorce
IV
kde n3 = 1-9 a 114 = 1-13, vázanou na atom dusíku polyaminové části amidickou vazbou a prostřednictvím atomu kyslíku do polohy 2 cholesterylového skeletu, * i í ’ » 1 t t < · < < f ? * ϊ f ί » «4 # » fi tt tlil <c a hydrofobní doména Y je zvolena ze symetricky v poloze C(2)větveného acylu obecného vzorce V
(V), kde n5 = 5-30, nebo (3p)-cholest-5-en-3-ylu vzorce VI
přičemž když X je vazba mezi atomem uhlíku koncové skupiny CO hydrofobní domény Y a atomem dusíku polyaminové části nebo aminopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce II, tak Y je poloze C(2) symetricky větvený acyl obecného vzorce V, a když X je ω-hydroxyalkylkarboxamidová spojka obecného vzorce III nebo ωhydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce IV, tak Y je (3P)-cholest-5-en-3-yl vzorce VI.
Dále je význakem vynálezu, že lipopolyaminy sperminového typu obecného vzorce I mají výhodně X tvořeno vazbou mezi atomem uhlíku koncové skupiny CO hydrofobní domény Y a atomem dusíku polyaminové části nebo spojkou výše zmíněného obecného vzorce II, kde m = 3, a Y = acyl výše zmíněného obecného vzorce V, kde ns = 13.
Význakem je také skutečnost, že látky obecného vzorce I mají X s výhodou tvořeno spojkou výše zmíněného obecného vzorce III, kde n2 = 1 či 3, nebo spojkou výše zmíněného obecného vzorce IV, kde n3 = 1 či 3, m = 3 a Y je chlesteryl výše zmíněného obecného vzorce VI.
Předmětem vynálezu je rovněž způsob přípravy lipopolyaminů sperminového typu obecného vzorce I. Ta je založena na kondenzaci komerčně dostupného N2N3N^-Vň-(tercí í í t
kde ni = 1-13 a 115= 5-30, nebo kyselin obecného vzorce IX
kde n2 = 1-9, nebo kyselin obecného vzorce X
kde n3= 1-9 a n4= 1-13;
přičemž kyseliny výše zmíněného obecného vzorce VII, VIII, IX nebo X se reakcí s bis(pentafluorfenyl)karbonátem v přítomnosti organické báze v polárním aprotickém rozpouštědle (s výhodou v přítomnosti 4-methylmorfolinu v V,V-dimethyformamidu) převedou na své pentafluorfenylestery. Reakcí takto získaných pentafluorfenylestrů jmenovaných kyselin sA^A^A^-tri-C/erc-butoxykarbonyjsperminem v přítomnosti organické báze v organickém aprotickém rozpouštědle (s výhodou v přítomnosti ethyldiisopropylaminu v Ν,Ν-dimethyformamidu) se připraví chráněné polykationické lipidy obecného vzorce XI,
9» II í 9
9
9 ·
Ml·
t t ~Ί « 9 i · · · ·
jmenovaných kyselin s vW/Atri-řterc-butoxykarbonyjsperminem v přítomnosti organické báze v organickém aprotickém rozpouštědle (s výhodou v přítomnosti ethyldiisopropylaminu v V^V-dimethyformamidu) se připraví chráněné polykationické lipidy obecného vzorce XI,
Boc Boc_
X/ XZ XZ X/ N xz NH_x_Y
Boc (XI), kde X je vazba mezi atomem uhlíku koncové skupiny CO hydrofobní domény Y a atomem dusíku polyaminové části nebo aminopolyethylenglykolkarboxamidová spojka výše zmíněného vzorce II, nebo ω-hydroxyalkylkarboxamidová spojka výše zmíněného vzorce III, nebo ω-hydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykolkarboxamidová spojka výše zmíněného vzorce IV a Y je v poloze C(2) symetricky větvený acyl výše zmíněného vzorce V, nebo (3β)cholest-5-en-3-yl výše zmíněného vzorce VI, přičemž když X je vazba mezi atomem uhlíku koncové skupiny CO hydrofobní domény Y a atomem dusíku polyaminové části nebo aminopolyethylenglykolkarboxamidová spojka výše zmíněného vzorce II, tak Y je v poloze C(2) symetricky větvený acyl výše zmíněného vzorce V, a když X je ω-hydroxyalkylkarboxamidová spojka výše zmíněného vzorce III nebo ωhydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykolkarboxamidová spojka výše zmíněného vzorce IV, tak Y je (3p)-cholest-5-en-3-yl výše zmíněného vzorce VI.
Hydrolytickým odštěpením íerc-butoxykarbylových chránících skupin (tzv. debocylací) látek výše zmíněného vzorce XI (s výhodou za použití kyseliny trifluoroctové v dichlormethanu) se připraví lipopolyaminy výše zmíněného obecného vzorce I.
Kyseliny obecného vzorce VIII se připraví reakcí pentafluorfenylesterů kyselin výše zmíněného vzorce VII s aminopolyethylenglykolkarboxylovými kyselinami vzorce H2N(CH2)2-[O-(CH2)2]n-O-(CH2)2-COOH, n= 1-13, v přítomnosti organické báze v organickém aprotickém rozpouštědle (s výhodou v přítomnosti ethyldiisopropylaminu v NfTdimethyformamidu).
« · I» » »♦ * »» • « r ·· *» s 1 » » í· ‘ · f · « « « • »*1» • · e♦ • · ·a « ·< · ii
- *9 >9 i fc t · ' ' «·
Kyseliny výše zmíněného vzorce IX se připraví: (a) bazicky katalyzovanou alkylací komerčně dostupného cholesterolu terc-butylesterem kyselin ω-bromalkanových o počtu atomů uhlíku C2 - Cio vaprotickém rozpouštědle a následnou kysele katalyzovaným odštěpením /erc-butoxykarbylové chránící skupiny (s výhodou kyselinou mravenčí v diethyletheru) získaného terc-butylesteru obecného vzorce XII
kde n2 = 1- 9;
(b) reakcí komerčně dostupného O-tosyl derivátu cholesterolu [(3p)-cholest-5-en-3-yloxy-4methylbenzenesulfonátu] s ω-hydroxyalkannitrily s počtem atomů uhlíku C2 - Cio v nepolárním aprotickém rozpouštědle za zvýšené teploty (s výhodou v toluenu za varu) a následnou bazickou hydrolýzou (s výhodou ve směsi toluenu a vodného roztoku NaOH za zvýšené teploty) intermediálních O-[(3P)-cholest-5-en-3-yl]-®-hydroxyalkannitrilů.
Kyseliny výše zmíněného vzorce X se připraví reakcí pentafluorfenylesterů kyselin výše zmíněného vzorce IX s kyselinami aminopolyethylenglykolkarboxylovými vzorce H2N(CH2)2-O-[(CH2)2-O]n-(CH2)-COOH, n= 1-13, v přítomnosti organické báze v organickém aprotickém rozpouštědle (s výhodou v přítomnosti ethyldiisopropylaminu v/VJVdimethylformamidu).
Předmětem vynálezu je dále použití lipopolyaminů sperminového typu obecného vzorce I pro konstrukci polykationických liposomů, tedy samoskladných systémů, jako nosičů nukleotidových a oligonukleotidových terapeutik a terapeutických genových konstruktů.
Schopnost polykationických liposomů konstruovaných na bázi polykationických lipidů obecného vzorce I efektivně transportovat přes buněčnou membránu nukleotidová a oligonukleotidová terapeutika a terapeutické genové konstrukty byla ověřena v následujících in vitro testech.
(a) Zvýšením antivirálního účinku nukleotidového antivirotika Cidofbvir na infekci buněk MDBK bovinním herpesvirem BHV-1.
(b) Transportem fluorescenčně značených modelových oligonukleotidů do buněk MCF-7.
(c) Efektivitou transfekce buněk MCF-7 plasmidem kódujícím enzym luciferázu.
Přehled obrázků na výkresech
Obr. 1: Snímek liposomů s 20% obsahem kationického lipidu 1 z trasmisního elektronového mikroskopu.
< « « « « «
Obr. 2 A,B: Distribuce velikosti liposomů (A) a distribuce zeta-potenciálu liposomů (B) s 0, 10, 20, 30% obsahem lipidu 1.
Obr. 3: Závislost enkapsulační účinnosti liposomů pro Cidofovir na procentuálním zastoupení kationického lipidu 1 v liposomech.
Obr. 4 A,B,C: Toxicita kationických lipidů 1,2,3,4 vůči buněčným liniím MDBK-1 (A), B16F10 (B), MCF-7 (C).
Obr. 5: Cytotoxické křivky pro kationické liposomy, kationické liposomy s enkapsulováným Cidofovirem a pro samotný Cidofovir.
Obr. 6: Antivirální efekt prázdných kationických liposomů, volného Cidofoviru, enkapsulováného Cidofoviru v liposomech s 20 a 30% obsahem lipidu (sloupcové grafy pro jednotlivé titry viru (10-3, 10‘5, ΙΟ'7,10'9).).
Obr. 7: Nenormalizovaná transfekční účinnost různých preparátů kationických liposomů. Transfekční účinnost pro nukleotidy vykazovaly liposomy připravené z kationických lipidů 4 a 2. (Hodnoty v grafu jsou vyjádřeny jako průměr triplikátu ± SD. Množství oligonukleotidu na jamku bylo 500 ng.). EPC = vaječný fosfatidyl cholin
Obr. 8: Transfekční účinnost kationických liposomů na plasmid kódující luciferázu. EPC = vaječný fosfatidyl cholin, Trojene = liposomální transfekční kit.
Příklady provedení vynálezu
Seznam použitých zkratek
TLC chromatografie na tenké vrstvě
HR-MS hmotnostní spektrometrie s vysokým rozlišením
NMR nukleární magnetická resonance
PBS fosfátem pufrovaný fyziologický roztok
MEM minimální esenciální médium
·. t < t
! * t < * * « « « » í « « « · ? t · · t » » ·
Buňky MDBK linie buněk z bovinních ledvin (Madin-Darby Bovine Kidney Cells)
MTT test test životnosti buněk založený na redukci substrátu MTT na formazan
QRT-PCR polymerázová řetězová reakce v reálném čase (Quantitative Real-Time Polymerase Chain Reaction)
Buňky MCF7 estrogen responzivní linie buněk lidského adenokarcinomu prsu
Příklad 1
K 2-tetradecylhexadekanové kyselině VII (kde ni = 13; 51,5 mg, 0,11 mmol) v suchém N,Ndimethylformamidu (4 ml) se přidá bis(pentafluorfenyl)karbonát (49 mg, 0,12 mmol) a 4methylmorfolin (0,1 ml; 1 mmol) a směs se míchá za laboratorní teploty 1 hod. Průběh reakce se monitoruje pomocí chromatografie na tenké vrstvě silikagelu (TLC) ve směsi toluen ethylacetát (10:1). Směs se dvakrát lyofilizuje zdioxanu (2 x 20 ml). Získaný pentafluorfenylester kyseliny VI (kde n5 = 13; 67 mg, 0,1 mmol) se ihned použije ke kondenzaci s parciálně chráněným sperminem.
Směs pentafluorfenylesteru kyseliny VII (kde ns = 13) a ^^kř-tň-percbutoxykarbonyl)sperminu (49 mg, 0,079 mmol) se suší za sníženého tlaku při teplotě místnosti 1 hod. Aparatura se propláchne argonem a pod argonem se přidá suchý N,Ndimethylformamid (4 ml) a ethyldiizopropylamin (1 ml) a směs se míchá za laboratorní teploty 12 hod. Chromatografií reakční směsi na sloupci silikagelu (100 ml) v systému toluenethylacetát (gradient 0-40% ethylacetát, 10 ml/min, 160 min) a následnou lyofilizací odparku z dioxanu homogenní frakce se získá 75 mg (82% výtěžek) Arl-(2-tetradecylhexadekanoyl)A4,7V9,Arl2-tris-/erc-butoxykarbonyl-4,9-diaza-l,12-diaminododekanu XI (X = C-N vazba; Y = hydrofobní doména obecného vzorce V, kde ns = 13). Pro CssHios^Oj-Na HR-MS vypočteno m/z: 937,8291 nalezeno m/z: 937,8297; *H NMR (400 MHz, CDC13) δ ppm: 3,00 - 3,37 m, 12 H (CH2N-); 1,90 - 2,11 m, 1 H (CHCOO); 1,56 - 1,73 m, 8 H (CH?CH,N-); 1,36 - 1,55 m, 27 H (íerc-butyl); 1,17 - 1,34 m, 52 H; 0,80 - 0,94 m, 6 H (2tetradecy lhexadekanoyl).
n » i t Příklad 2
K roztoku látky XI (kde X = C-N vazba; Y = hydrofobní doména obecného vzorce V, kde ns = 13; 253 mg, 0,26 mmol) v dichlormethanu (5 ml) se přidá kyselina trifluoroctová (1 ml, 13 mmol) a směs se míchá za laboratorní teploty 4 hod. Potom se rozpouštědlo oddestiluje za sníženého tlaku a destilační zbytek lyofilizuje zdioxanu (20 ml). Získá se 171 mg (100%) trifluoracetátu JV1-(2-tetradecylhexadekanoyl)-4,9-diaza-l,12-diaminododekanu I (X = C-N vazba; Y = hydrofobní doména obecného vzorce V, kde ns = 13). Pro C40H84N4O-H HR-MS, vypočteno m/z\ 637,67179 nalezeno m/z: 637,67117; ‘H NMR (400 MHz, Aceton-íÁ) δ ppm: 3,98 t, J=6,25 Hz, 2 H (CH2-2); 3,36 t, J=6.13 Hz, 2 H (CH2-6); 3,27 - 3,32 m, 2 H (CH2-9);
3,13-3,21 m, 6 H (CH2-11, CH2-4); 3,10 t, J=6,63 Hz, 2 H (CH2-13); 2,31 - 2,38 m, 1 H (CH-2'); 1,93 - 2,03 m, 6 H (CH2-3, CH2-7, CH2-8); 1,53 - 1,62 m, 2 H (CH2-12); 1,35 1,43 m, 4 H (CH2-3', CH2-1); 1,28 s, 36 H (CH24'-16\ CH21-13); 0,88 t, A=7,00 Hz, 6 H (CH2-17\ CH2-14).
Příklad 3
Ke kyselině jV-(2-tetradecylhexadekanoyl)-15-amino-4,7,10,13-tetraoxapentadekanové VIII (kde ni = 5 a ns = 13; 206 mg, 0,29 mmol) v suchém Λζ/V-dimethylformamidu (10 ml) se přidá bis(pentafluorfenyl)karbonát (128 mg, 0,32 mmol) a 4-methylmorfolin (0,25 ml, 2,45 mmol) a směs se míchá za laboratorní teploty 1 hod. Průběh reakce se monitoruje pomocí TLC v ethylacetátu. Směs se dvakrát lyofilizuje z dioxanu (2 x 50 ml). Získaný pentafluorfenylester kyseliny VIII (kde ni = 5 a n5 = 13; 251 mg) se ihned použije ke kondenzaci s parciálně chráněným sperminem.
Směs pentafluorfenylesteru kyseliny VIII (kde ni = 5an5=13; 181 mg, 0,21 mmol) a A^A^A^-trí-frerc-butoxykarbonyljsperminu (105 mg, 0,2 mmol) se suší za sníženého tlaku 1 hod. Aparatura se propláchne argonem a pod argonem se přidá suchý V,A-dimethylformamid (8 ml) a ethyldiizopropylamin (0,5 ml) a směs se míchá za laboratorní teploty 12 hod. Chromatografií směsi na sloupci silikagelu (150 ml) v systému toluen-ethylacetát (gradient 080% ethylacetát, 10 ml/min, 160 min) a následnou lyofilizací odparku zdioxanu homogenní frakce se získá se získá se 124 mg (50% výtěžek) JV1-[/V-(2-tetradecylhexadekanoyl)-15amino-4,7,10,13-tetraoxapentadekanoyl]-A4,A'9, A12-tris-(fórc-butoxykarbonyl)-4,9-diaza-1,12diami-nododekanu XI (X = aminopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce II, přičemž ni = 3 a Y = hydrofobní doména obecného vzorce V kde ns = 13). Pro CóóHi^NsOn-H HR-MS, vypočteno m/z: 1184,9711 nalezeno m/z: 1184,9716; 'H NMR « <
· *
iC < ·
(400 MHz, CDC13) δ ppm: 5,34 - 5,38 m, 1 H (CH2-6); 3,75 t, 7=6,06 Hz, 2 H (CH2-14); 3,60 - 3,68 m, 12 H; 3,52 - 3,57 m, 2 H; 3,43 - 3,50 m, 2 H (8 x CH2O); 3,04 - 3,31 m, 12 H (6 x CH2N); 2,48 t, 7=5,87 Hz, 2 H (CH2-1); 2,00 tdd, 7=9,25, 9,25, 5,18, 4,74 Hz, 1 H (CH2); 1,76 s, 4 H (CH2-7, CH2-8); 1,52 - 1,72 m, 4 H (CH2-3, CH2-12); 1,41 - 1,51 m, 27 H (íerc-butyl); 1,18 - 1,34 m, 48 H (CH2-4'-15', CH2-1-13); 0,88 t, 7=6,90 Hz, 6 H (CH216', CH2-14).
Příklad 4
K roztoku Nl - [N-(2 -tetradecylhexadekanoyl)-15 -amino-4,7,10,13 -tetraoxapentadekanoyl] 7V4,7V9,jV12-tris-(/erc-butoxykarbonyl)-4,9-diaza-l,12-diaminododekanu XI (X = aminopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce II, přičemž ni = 3 a Y = hydrofobní doména obecného vzorce V, kde ns = 13; 83 mg, 0,07 mmol) v dichlormethanu (5 ml) se přidá kyselina trifluoroctová (2 ml, 26 mmol) a směs se míchá za laboratorní teploty 4 hod. Potom se rozpouštědlo oddestiluje za sníženého tlaku a destilační zbytek lyofilizuje z dioxanu (20 ml). Získá se 61 mg (100% výtěžek) V1-[N-(2-Tetradecylhexadekanoyl)-15-amino-4,7,10,13tetraoxapentadekanoyl]-4,9-diaza-l,12-diaminododekanu I (X = aminopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce II, přičemž ni - 3 a Y = hydrofobní doména obecného vzorce V kde ns = 13). Pro C51H105N5O6-H HR-MS, vypočteno m/z\ 884,8138 nalezeno m/z\ 884,8128; *H NMR (400 MHz, MeOH-74) δ ppm: 5,34 - 5,38 m, 1 H (CH26); 3,75 t, 7=5,94 Hz, 2 H (CH2-3'); 3,63 d, 7=5,56 Hz , 10 H; 3,53 t, 7=5,60 Hz, 2 H (7 x CH2-O); 3,33 - 3,39 m, 4 H (CH2-2); 2,99 - 3,19 m, 10 H (6 x CH2N); 2,49 t, 7=6,00 Hz, 2 H (CH2-2'); 2,18 tt, 7=9,62, 4,85 Hz, 1 H (CH2-2”); 2,09 dt, 7=15,16, 7,71 Hz, 2 H (CH2-3); 1,88 dt, 7=13,50, 6,30 Hz, 2 H; 1,79 - 1,84 m, 4 H (CH2-7, CH2-8, CH2-12); 1,49 - 1,60 m, 4 H (CH2-3, CH2-1'); 1,29 s, 52 H (CH2-4-15, CH2-2'-13'); 0,87 - 0,93 m, 6 H (CH216, CH2-14').
Příklad 5
Směs pentafluorfenylesteru 2-tetradecylhexadekanové kyseliny VII (kde ns = 13; 164 mg, 0,26 mmol) a 15-amino-4,7,10,13-tetraoxa-pentadekanové kyseliny (190 mg; 0,70 mmol) se suší za sníženého tlaku 1 hod. Aparatura se propláchne argonem a pod argonem se přidá suchý V,V-dimethylformamid (8 ml) a ethyldiizopropylamin (1,5 ml) a směs se míchá za laboratorní teploty 12 hod. Chromatografií reakční směsi na sloupci silikagelu (150 ml) v systému toluen-ethylacetát (gradient 0-80% ethylacetát, 10 ml/min, 160 min) se získá 174 mg (94% výtěžek) kyseliny V-(2-tetradecylhexadekanoyl)-15-amino-4,7,10,13f « í » •' « / h / » * tetraoxapentadekanové VIII (kde m = 3 a n5 = 13). Pro C^HsiNOy-Na HR-MS, vypočteno m/z: 722,5905 nalezeno m/z: 722,5906; ’H NMR (400 MHz, CDC13) δ ppm: 3,73 br. s., 16 H;
3.48 d, J=4,93 Hz, 2 H (8 x CH2O); 2,53 t, J=5,49 Hz, 2 H (CH2-1); 2,13 br. s., 1 H (CH-2');
1.48 - 1,64 m, 2 H; 1,35 - 1,44 m, 2 H (CH2-3\ CH2-1); 1,25 d, J=5,94 Hz, 42 H (CH24'-l5', CH2-1-13); 0,81-0,95 m, 6 H (CH2-16', CH2-14).
Příklad 6
Ke kyselině č)-[(3Q)-cholest-5-en-3-yl]glykoylové IX (kde n2 = 1; 134 mg; 0,3 mmol) v suchém JV,JV-dimethylformamidu (4 ml) se přidá bis(pentafluorfenyl)karbonát (130 mg; 0,33 mmol) a 4-methylmorfolin (0,1 ml; 1 mmol) a směs se míchá za laboratorní teploty 1 hod. Průběh reakce se monitoruje pomocí TLC v toluenu. Směs se dvakrát lyofilizuje z dioxanu (2 x 20 ml) a získaný pentafluorofenylester kyseliny O-[(3p)-cholest-5-en-3-yl]glykolové IX (kde n2= 1; 140 mg) se ihned použije ke kondenzaci s parciálně chráněným sperminem.
Směs pentafluorofenylesteru kyseliny <9-[(3P)-cholest-5-en-3-yl]glykoIové IX (kde n2 = 1; 140 mg, 0,23 mmol) a JV2jV3JV4-tri-(fórc-butoxykarbony)sperminu (112mg, 0,23mmol) se suší za sníženého tlaku a při teplotě místnosti 1 hod. Aparatura se propláchne argonem a pod argonem se přidá suchý A,7ť-dimethylfbrmamid (4 ml) a ethyldiizopropylamin (1 ml) a směs se míchá za laboratorní teploty 12 hod. Chromatografií reakční směsi na sloupci silikagelu (100 ml) v systému toluen-ethylacetát (gradient 0-40% ethylacetát, 10 ml/min, 160 min) se získá 178 mg (86% výtěžek) VI-{O-[(3P)-cholest-5-en-3-yl]glykoyl}-?/4,A9,./V12-tris-(íercbutoxykarbonyl)-4,9-diaza-l,12-diaminododekanu XI (kde X = ω-hydroxyalkylkarboxamidová spojka obecného vzorce III, přičemž n2 = 1 a Y = hydrofobní doména obecného vzorce VI). Pro C54H96N4O8-H HR-MS, vypočteno m/z: 929,7301 nalezeno m/z: 929,7304; ’H NMR (400 MHz, CDCI3) δ ppm: 5,30 - 5,38 m, 1 Η (H-6”); 3,98 s, 2 H (CH2-2'); 3,02 3,35 m, 12 H (6 x CH2N); 2,18-2,46 m, 2 H (CH2-4”); 1,37 - 1,51 m, 27 H (terf-butyl); 1,01 s, 3 H (CH3-19); 0,92 d, .7=6,57 Hz, 3 H (CH3-21); 0,88 d, J=l,77 Hz, 3 H (CH3-26); 0,86 d, J=l,89 Hz, 3 H (CH3-27); 0,80 - 2,06 m, 22 H (cholesteryl); 0,68 s, 3 H (CH3-I8).
Příklad 7
K roztoku Nl-{O-[(3 P)-cholest-5-en-3-yl]glykoyl} -A4,A9,:V12-tris-(íerc-butoxykarbonyl)-4,9diaza-l,12-diaminododekanu XI (kde X = ω-hydroxyalkylkarbox-amidová spojka obecného vzorce III, přičemž n2 = 1 a Y = hydrofobní doména obecného vzorce VI; 148 mg, 0,16 i « «
l (
mmol) v dichlormethanu (5 ml) se přidá kyselina trifluoroctová (1 ml, 13 mmol) a směs se
míchá za laboratorní teploty 4 hod. Potom se rozpouštědlo oddestiluje za sníženého tlaku a destilační zbytek lyofilizuje z dioxanu (20 ml). Získá se 100 mg (100% výtěžek) Υ-{Ο-[(3β) cholest-5-en-3-yl]glykoyl}-4,9-diaza-l,12-diaminododekanu I (kde X = ω-hydroxyalkylkarboxamidová spojka obecného vzorce III, přičemž Π2 = 1 a Y = hydrofobní doména vzorce VI). Pro C39H72N4O2-H HR-MS, vypočteno m/z: 629,5728 nalezeno m/z: 629,5715; 'H NMR (400 MHz, MeOH-t/4) δ ppm: 5,36 - 5,40 m, 1 Η (H-6”); 4,01 s, 2 H (CH2-2'); 3,37 t, >6,51 Hz, 2 H; 3,24 tt, >11,20, 4,60 Hz, 2 H; 2,96 - 3,17 m, 8 H (6 x CH2N); 2,35 - 2,44 m, 1 H (CH2-4a); 2,21 - 2,32 m, 1 H (CH2-4b”); 1,72 - 2,14 m, 13 H (CH-1”, H-12”, H2, H-7”, H-16”, CH2-7, CH2-7); 1,04 s, 3 H (CH3-19'); 0,95 d, >6,57 Hz, 3 H (CH3-19”); 0.89 d, >1.52 Hz, 3 H (CH3-19”); 0.87 d, >1.39 Hz, 3 H (CH3-19”); 0.83 - 1.68 m, 16 H (cholesteryl, CH2-3, CH2-9); 0.72 s, 3 H (CH3-19”).
Příklad 8
Ke kyselině O-[(3P)-cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybutanové IX (kde n2 = 3; 283 mg, 0,6 mmol) v suchém A,/V-dimethylformamidu (4 ml) se přidá bis(pentafluorfenyl)karbonát (260 mg, 0,66 mmol) a 4-methylmorfolin (0,1 ml, 1 mmol) a směs se míchá za laboratorní teploty 1 hod. Průběh reakce se monitoruje pomocí TLC ve směsi toluen - ethylacetát (10:1). Směs se dvakrát lyofilizuje z dioxanu (2 x 20 ml) získaný pentafluorofenylester kyseliny Ο-[(3β)cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybutanové IX (kde Π2 - 3; 382 mg) se ihned použije ke kondenzaci s parciálně chráněným sperminem.
Směs pentafluorofenylesteu kyseliny O-[^)-cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybutanové IX (kde n2 = 3; 216 mg, 0,34 mmol) a vWjV4-tri-(tere,-butoxykarbony)sperminu (170 mg, 0,34 mmol) se suší za sníženého tlaku a při teplotě místnosti 1 hod. Aparatura se propláchne argonem, pod argonem se přidá suchý M^-dimethylformarnid (4 ml) a ethyldiizopropylamin (1 ml) a směs se míchá za laboratorní teploty 12 hod. Chromatografií reakční směsi na sloupci silikagelu (100 ml) v systému toluen-ethylacetát (gradient 0-40% ethylacetát, 10 ml/min, 160 min) se získá se 302 mg (93% výtěžek) ?/-{O-[(3P)-cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybytanoyl}jV4,7V9,jVl2-tris-(rerc-butoxykarbonyl)-4,9-diaza-l,12-diaminododekanu XI (kde X = ωhydroxyalkylkarbox-amidová spojka obecného vzorce III, přičemž n2 - 3 a Y = hydrofobní doména vzorce VI). Pro C56H100N4O8-H HR-MS, vypočteno m/z: 957,7614 nalezeno m/z: 957,7621; *H NMR (400 MHz, CDC13) δ ppm: 5,32 - 5,35 m, 1 Η (H-6”); 3,501, >6,32 Hz,
H (CH2-4'); 3,03 - 3,34 m, 12 Η (6 x CH2N); 2,31 - 2,39 m, 1 H (H-4a”); 2,29 t, J= 7,39 Hz, 2 H (CH2-2'); 2,12 - 2,23 m, 1 H (H-4b); 1,77 - 2,06 m, 7 H (CH-1”, H-12”, H-2”, H7, H-16”, CH2-3'); 1,60 - 1,75 m, 8 H (CH2-3, CH2-7, CH2-8, CH2-12); 1,43 - 1,47 m, 27 H (tert-butyl); 1,00 s, 3 H (CH3-19”); 0,92 d, >6,57 Hz, 3 H (CH3-21”); 0,88 d, >1,77 Hz, 2 H (CH3-26); 0,86 d, J=\,T1 Hz, 2 H (CH3-27); 0,81 - 1,58 m, 17 H (cholesteryl); 0,68 s, 2H(CH3-18).
Příklad 9
K roztoku N1 - {O- [(3 P)-cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybytanoyl}-A4,jV9>I2-tris-(rerc-butoxykarbonyl)-4,9-diaza-l,12-diaminododekanu XI (kde X = ω-hydroxyalkylkarboxamidová spojka obecného vzorce III, přičemž n2 = 3 a Y = hydrofobní doména vzorce VI; 259 mg, 0,27 mmol) v dichlormethanu (5 ml) se přidá kyselina trifluoroctová (1 ml; 13 mmol) a směs se míchá za laboratorní teploty 4 hod. Potom se rozpouštědlo oddestiluje za sníženého tlaku a destilační zbytek se lyofilizuje zdioxanu (20 ml). Získá se 175 mg (98% výtěžek) Nl-{O[(3P)-cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybutanoyl}-4,9-diaza-l,12-diaminododekanu I (kde X = ωhydroxyalkylkarbox-amidová spojka obecného vzorce III, přičemž n2 = 3 a Y = hydrofobní doména vzorce VI). Pro C4iH76N4O2-Na HR-MS, vypočteno m/z: 679,6017 nalezeno m/z: 679,6042; 'H NMR (400 MHz, MeOH-dj) δ ppm: 5,35 - 5,39 m, 1 H (CH-6”); 3,521, >6,25 Hz, 2 H (CH2-4); 2,97 - 3,20 m, 12 H (6 x CH2-NH); 2,38 dd, >4,74, 1,83 Hz, 1 H (CH4a”); 2,32 t, >7,40 Hz, 2 H (CH2-2'); 1,96 - 2,22 m, 7 H (cholesteryl); 1,75 - 1,95 m, 14 H (CH2-3; CH2-7; CH2-8; CH2-7; CH2-12; CH2-3'; CH2-2”); 1,04 s, 3 H (CH3-19”); 0,96 d, >6,57 Hz, 3 H (CH3-21”); 0,93 - 1,67 m, 29 H (cholesteryl); 0,91 d, >1,52 Hz, 3 H (CH326”); 0,89 d, >1,52 Hz, 3 H (CH3-27”); 0,74 s, 3 H (CH3-I8”).
Příklad 10
Ke kyselině N- {O-[(3P)-cholest-5-en-3-yl]glykoyl} -15-amino-4,7,10,13-tetraoxapentadekanové obecného vzorce X (kde ns = 1 a Π4 = 3; 149 mg, 0,22 mmol) v suchém V,V-dimethylformamidu (5 ml) se přidá bis(pentafluorfenyl)karbonát (100 mg, 0,39 mmol) a 4-methylmorfolin (0,25 ml, 2,45 mmol) a směs se míchá za laboratorní teploty 1 hod. Průběh reakce se monitoruje pomocí TLC v ethylacetátu. Směs se dvakrát lyofilizuje z dioxanu (2 x 50 ml) a získaný pentafluorofenylester kyseliny N-{O-[(3p)-cholest-5-en-3-yl]glykoyl}-15-amino-
4,7,10,13-tetraoxapentadekanové obecného vzorce (X, kde n3 = la Π4 = 3; 184 mg) se ihned použije ke kondenzaci s parciálně chráněným sperminem.
I i « <
* · • » « f « í <
»
Ϊ i; ·
A * <
* « · í « Λ tt *
• · f
« · » «
Směs pentafluorofenylesteu kyseliny kyseliny V-{(9-[(3P)-cholest-5-en-3-yl]glykoyl}-15amino-4,7,10,13-tetraoxapentadekanové obecného vzorce X (kde n3 = la 114 = 3; 184 mg, 0,21 mmol) a A2A3?/-tri-(Zerc-butoxykarbonyl)sperminu (170 mg, 0,34 mmol) se suší za sníženého tlaku a při teplotě místnosti 1 hod. Aparatura se propláchne argonem a pod argonem se přidá suchýV,jV-dimethylformamid (8 ml) a ethyldiizopropylamin (0,5 ml) a směs se míchá za laboratorní teploty 12 hod. Chromatografií reakční směsi na sloupci silikagelu (100 ml) v systému toluen-ethylacetát (gradient 0-40% ethylacetát, 10 ml/min, 160 min) se získá se 50 mg (19% výtěžek) A1-(A-{č)-[(33)-cholest-5-en-3-yl]glykoyl}-15-amino-
4,7,10,13-tetraoxapentadekanoyl)-7V4,7V9,ŽV12-tris-(Zerc-butoxykarbonyl)-4,9-diaza-1,12-diaminododekanu XI (kde X = ω-hydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce IV, přičemž n3 = l,ru=3aY = hydrofobní doména vzorce VI). Pro C65H117N5O13-H HR-MS, vypočteno m/z: 1176,87206 nalezeno m/z: 1176,87174; ‘H NMR (400 MHz, CDC13) δ ppm: 5,36 d, >5,05 Hz, 1 H (CH2-5); 3,98 s, 2 H (CH2COO); 3,72 3,77 m, 2 H (CH2-3); 3,64 d, >4,04 Hz, 12 H (6 x CH2O); 3,58 t, >4,90 Hz, 3 H (CH2O); 3,50 q, >5,50 Hz, 2 H (CH2-14'); 3,05 - 3,30 m, 13 H (6 x CH2N); 2,481, >5,94 Hz, 2 H (CH2-2'); 2,31 - 2,38 m, 1 H (CH-4a); 2,18 - 2,28 m, 1 H (CH-4b); 1,76 - 2,06 m, 6 H (cholesteryl); 1,61 - 1,73 m, 4 H (CH2-3, CH2-7,CH2-8, CH2-12); 1,41 - 1,51 m, 27 H (tertbutyl); 1,01 s, 3 H (CH3-19); 0,94 - 1,41 m, 17 H (cholesteryl); 0,92 d, >6,57 Hz, 3 H (CH3-2I); 0,87 d, >1,77 Hz, 3 H (CH3-26); 0,86 d, >1,77 Hz, 3 H (CH3-27); 0,68 s, 3 H(CH3-18”).
Příklad 11
K roztoku Nl -(N- {O- [(3 P)-cholest-5 -en-3 -yl] glykoyl} -15 -amino-4,7,10,13 -tetraoxapentadekanoyl)-M,A9,Arl2-tris-(fórc-butoxykarbonyl)-4,9-diaza-l,12-diaminododekanu XI (kde X = ω-hydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce IV, přičemž n3 = 1, ru = 3 a Y = hydrofobní doména vzorce VI; 51 mg, 0,04 mmol) v dichlormethanu (5 ml) se přidá kyselina trifluoroctová (1 ml, 13 mmol) a směs se míchá za laboratorní teploty 4 hod. Potom se rozpouštědlo oddestiluje za sníženého tlaku a destilační zbytek lyofilizuje z dioxanu (5 ml). Získá se 32 mg (84% výtěžek) V1-(V-{O-[(3P)-cholest-5en-3-yl]glykoyl} -15-amino-4,7,10,13-tetraoxapentadekanoyl)-4,9-diaza-1,12-diaminododekanu I (kde X = ω-hydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce IV, přičemž n3 = 1 a 114 = 3 a Y = hydrofobní doména vzorce VI). Pro θ5οΗ93Ν5θγ-Η HR-MS, vypočteno m/z: 876,71478 nalezeno m/z: 876,71418; *H NMR (400
17—
MHz, CDClj) δ ppm: 5,32 br. s., 2 H (CH2-6); 3,73 - 3,86 m, 2 H; 3,54 - 3,72 m, 14 H; 3,48
- 3,54 m, 2H (8 x CH2-O, PEG); 3,26 - 3,47 m, 10H; 3,11 - 3,25 m, 2H; 2,87 - 3,09 m, 2 H (6 x CH2-N, spermin; CH2-N, PEG); 2,54 t, 7=8,20 Hz, 2 H (CH2-4); 2,24 - 2,47 m, 4 H (CH2-2', CH2-2 yloxy acetyl); 1,99 - 2,14 m, 8 H (cholesteryl); 1,76 - 1,99 m, 8 H (4 x CH2-spermin); 1,55 dt, 7=13,1, 6,28 Hz, 15 H (CH2-3, butanoyl); 0,84 - 1,43 m, 37H (cholesteryl); 1,018 s3H (CH3-19”); 0,93 d, 7=6,2 Hz, 3 H (CH3-21); 0,91 d, 7=1,50 Hz, 3 H (CH3-26”); 0,87 d, 7=1,28 Hz, 3 H (CH3-27); 0,69 s, 3 H (CH3-18).
Příklad 12
Ke kyselině N-{<7-[(3p)-cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybutanoyl}-15-amino-4,7,10,13-tetraoxapentadekanové obecného vzorce X (kde n3=3an4=3;117 mg, 0,17 mmol) v suchém N,Ndimethylformamidu (5 ml) se přidá bis(pentafluorfenyl)karbonát (73 mg, 0,18 mmol) a 4methylmorfolin (0,1 ml, 1 mmol) a směs se míchá za laboratorní teploty 1 hod. Průběh reakce se monitoruje pomocí TLC v ethylacetátu. Směs se dvakrát lyofilizuje z dioxanu (2 x 50 ml) a získaný pentafluorofenylester kyseliny ů/-{O-[(3p)-cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybutanoyl}15-amino-4,7,10,13-tetraoxapentadekanové obecného vzorce X (kde n3 = 3, ru = 3; 184 mg) se ihned použije ke kondenzaci s parciálně chráněným sperminem.
Směs pentaíluorofenylesteru kyseliny kyseliny N-{O-[(3P)-cholest-5-en-3-yl]glykoyl}-15amino-4,7,10,13-tetraoxapentadekanové obecného vzorce X (kde n3 = 3,114 = 3; 80 mg, 0,09 mmol) a V2V3Y4-tri-(/erc-butoxykarbonyl)sperminu (60 mg, 0,11 mmol) se suší za sníženého tlaku a při teplotě místnosti 1 hod. Aparatura se propláchne argonem, pod argonem se přidá suchý N,N-dimethylformamid (4 ml) a ethyldiizopropylamin (1 ml) a směs se míchá za laboratorní teploty 12 hod. Chromatografíí reakční směsi na sloupci silikagelu (100 ml) v systému toluen-ethylacetát (gradient 0-40% ethylacetát, 10 ml/min, 160 min) se získá 50 mg (23% výtěžek) T^1-(JV-{0-[(3p)-cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybutanoyl}- 15-amino-4,7,10,13tetraoxapentadekanoyl)-ů/4,V9,jV12-tris-(/erc-butoxykarbonyl)-4,9-diaza-1,12-diaminododekanu XI (kde X = ω-hydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce IV, přičemž n3 = 3, m = 3 a Y = hydrofobní doména vzorce VI). Pro C67H121N50i3-H HR-MS, vypočteno m/z: 1204,90337 nalezeno m/z: 1204,90298; *H NMR (400 MHz, CDC13) δ ppm: 5,34 - 5,38 m, 1 H (CH2-6); 3,741,7=6,10 Hz, 2 H (CH2-3); 3,58
- 3,66 m, 14 H (7 x CH2-O); 3,53 - 3,57 m, 2 H (CH2-14); 3,50 td, 7=6,20, 0,90 Hz, 1 H (CH2-4'); 3,44 q, 7=5,05 Hz, 1 H (CH-3); 3,04 - 3,30 m, 12 H (CH2-N); 2,48 t, 7=6,06 Hz, 1 i *
im v ·· t« « í « »«
J · » »« l « 4 · * i 4 • ·
H (CH2-2); 2,34 ddd, >13,20, 4,70,2,10 Hz, 1 H (H-4a); 2,29 t, J=7,39 Hz, 2 H (CH2-2'); 1,76 - 2,25 m, 13 H (cholesteryl); 1,60 - 1,75 m, 8 H (CH2-3, CH2-7, CH2-8, CH2-12); 1,41 1,47 m, 27 H (terc-butyl); 0,99 s, 3 H (CH3-19); 0,92 d, J=6,51 Hz, 3 H (CH3-21); 0,87 d, >1,77 Hz, 3 H (CH3-26)j 0,86 d, >1,77 Hz, 3 H (CH3-27”)j 0,84 - 1,57 m, 33 H (cholesteryl); 0,68 s, 3 H (CH3-18).
Příklad 13
K roztoku 2/'-(7V-{(9-[(3P)-cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybutanoyl}- 15-amino-4,7,10,13-tetraoxapentadekanoyl)-N4,7T9,N12-tris-(7erc-butoxykarbonyl)-4,9-diaza-1,12-diaminododekanu
XI (kde X = ω-hydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce IV, přičemž n3 = 3, Π4 = 3 a Y = hydrofobní doména vzorce VI; 83 mg, 0,07 mmol) v dichlormethanu (5 ml) se přidá kyselina trifluoroctová (2 ml, 26 mmol) a směs se míchá za laboratorní teploty 4 hod. Potom se rozpouštědlo oddestiluje za sníženého tlaku a destilační zbytek lyofilizuje zdioxanu (2 x 20 ml). Získá se 61 mg (98% výtěžek) JV1-(2V-{O-[(3P)cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybutanoyl}-15-amino-4,7,10,13-tetraoxapentadekanoyl)-4,9diaza-l,12-diami-nododekanu obecného vzorce (I, kde X = ω-hydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykol karboxamidová spojka obecného vzorce IV, přičemž n3 = 3, Π4 = 3 a Y = hydrofobní doména vzorce VI). Pro C52H97N5O7-H HR-MS, vypočteno m/z: 904,74608 nalezeno m/z: 904,74595; *H NMR (400 MHz, CDC13) δ ppm: 5,36 br. s., 2 H (CH2-6); 3,73 - 3,85 m, 2 H; 3,54 - 3,72 m 14 H; 3,46 - 3,54 m, 2 H (8 x CH2-O, PEG); 3,58 t, >6,57 Hz (CH2-4, butanoyl); 3,26 - 3,46 m, 10 H; 3,10 - 3,24 m, 2 H; 2,87 - 3,09 m s, 2 H (6 x CH2N, spermin; CH2-N, PEG); 2,54 t, >8,20 Hz, 2 H (CH2-4); 2,24 - 2,47 m, 4 H (CH2-2\ CH2-3 butanoyl); 1,99 - 2,14 m, 8 H (cholesteryl); 1,76 - 1,99 m, 8 H (4 x CH2-spermin); 1,55 dt, >13,07, 6,22 Hz, 15 H (CH2-3, butanoyl); 0,84 - 1,43 m, 37 H (cholesteryl); 1,018 s, 3 H (CH3-19); 0,945 d, >6,6 Hz, 3 H (CH3-21); 0,90 d, >1,52 Hz, 3 H (CH3-26”);
O, 89 d, >1,26 Hz, 3 H (CH3-27); 0,71 s, 3 H (CH3-18).
Příklad 14
Ke směsi cholesterolu (387 mg; 1 mmol) a NaH (400 mg, 10 mmol, 60% emulze v minerálním oleji promyté hexanem) se přidá tetrahydrofuran (30 ml) a směs se za míchání pod sušícím uzávěrem zahřívá k varu 12 hod. Následně se přidá terc-butylbromoacetát (585 mg; 3 mmol) a v zahřívání se pokračuje dalších 12 hod. Přebytečný hydrid se opatrně rozloží vodou (50 ml) a produkt se vezme do diethyletheru (2 x 50 ml). Spojené organické vrstvy se vysuší nad síranem hořečnatým. Síran hořečnatý se odfiltruje a filtrát se za sníženého tlaku odpaří. Chromatografií odparku na sloupci silikagelu (200 ml) v systému hexanová frakce/íerc-butylmethylether s gradientem od 0% do 30% terc-butylmethyletheru (10 ml/min) se získá 131 mg (26,2% výtěžek) terc-butyl [(3P)-cholest-5-en-3-yl]glykolátu XII (kde Π2 = 1). Pro C33H56O3-Na HR-MS, vypočteno m/z\ 523,41217 nalezeno m/z\ 523,41201; *H NMR (400 MHz, CDC13) δ ppm: 5,34 - 5,38 m, 1 H (H-6); 4,01 s, 2 Η (Η-Γ); 3,24 tt, >11,23,4,56 Hz, 1 H (H-3); 2,37 - 2,43 m, 1 H (H-4a); 2,22 - 2,32 m, 1 H (H-4b); 1,76 - 2,07 m, 5 H (CH-1, H-12, H-2, H-7, H-16); 1,48 s, 9 H (Abutyl); 1,01 s, 3 H (CH3-19); 0,92 d, >6,60 Hz, 3 H (CH3-2I); 0,88 d, >1,80 Hz, 3 H (CH3-26); 0,86 d, >1,80 Hz, 3 H (CH3-27); 0,83 - 1,63 m, 42 H (cholesterol + Abutyl); 0.68 s, 3 H (CH3-I8).
Příklad 15
7erc-butyl [(3P)-cholest-5-en-3-yl]glykolát XII (kde n2 = 1; 111 mg, 0,22 mmol) se rozpustí v etheru (8 ml) a přidá se kyselina mravenčí (5 ml; 132 mmol) a směs se míchá při 64 °C 5 hod. Potom se rozpouštědlo oddestiluje za sníženého tlaku a destilační zbytek lyofilizuje z dioxanu (20 ml). Získá se 99 mg (100% výtěžek) kyseliny [(3P)-cholest-5-en-3yljglykolové IX (kde n2 = 1). Pro C29H4gO3-Na HR-MS, vypočteno m/z'. 467,3496 nalezeno m/z\ 467,3496; !H NMR (400 MHz, CDCI3) δ ppm: 5,33 - 5,41 m, 1 H (H-6); 4,16 s, 2 Η (ΗΓ); 3,31 tt, >11,20, 4,60 Hz, 1 H (H-3); 2,35 - 2,43 m, 1 H (H-4a); 2,23 - 2,33 m, 1 Η (H4b); 1,76 - 2,07 m, 5 H (CH-1, H-12, H-2, H-7, H-16); 1,01 s, 3 H (CH3-19); 0,92 d, >6,57 Hz, 3 H (CH3-2I); 0,88 d, >1,77 Hz, 3 H (CH3-26); 0,86 d, >1,64 Hz, 3 H (CH3-27); 0,79 1,67 m, 33 H (cholesteryl); 0,68 s, 3 H (CH3-I8).
Příklad 16
Ke kyselině [(3fl)-cholest-5-en-3-yl]glykolové IX (kde n2 - 1; 160 mg; 0,36 mmol) v suchém N,N-dimethylformamidu (5 ml) se přidá bis(pentafluorfenyl)karbonát (156 mg; 0,39 mmol) a 4-methylmorfolin (0,25 ml; 2,45 mmol). Směs se míchá jednu hodinu za laboratorní teploty. Průběh reakce se monitoruje pomocí TLC v toluenu. Směs se dvakrát lyofilizuje v dioxanu (2 x 50 ml). Získá se 184 mg pentafluorofenyl kyseliny terc-butyl [(3P)-cholest-5-en-3yljglykolové IX (kde n2 = 1), který se ihned použije ke kondenzaci s 15-amino-4,7,10,13tetraoxa-pentadekanovou kyselinou.
K pentafluorofenyl kyselině íerc-butyl [(3P)-cholest-5-en-3-yl]glykolové IX (kde ni = 1; 175 mg; 0,29 mmol) se přidá 15-amino-4,7,10,13-tetraoxa-pentadekanová kyselina (160 mg; 0,60
ΜΗ
mmol) a směs se hodinu dosuší na vakuu. Pod argonem se přidá suchý N-dimethylformamid (6ml) a N-ethyldiizopropylamin (2 ml). Reakce se míchá za laboratorní teploty do druhého dne a hned se chromatografuje na sloupci silikagelu (200 ml) v systému ethylacetát-methanol (gradient 0-30% methanol, 10 ml/min, 160 min, methanol je okyselen kyselinou mravenčí (10:1). Získá se 167 mg kyseliny A/-{O-[(3P)-cholest-5-en-3-yl]glykolové}-15-amino-
4,7,10,13-tetraoxapentadekanové obecného vzorce X (n3=l; n4=3; 84,3% výtěžek). Pro C4oH69N08-Na HR-MS, vypočteno m/z: 714,4915 nalezeno m/z: 714,4916; lH NMR (400 MHz, CDC13) δ ppm: 5,34 - 5,38 m, 1 H (CH2-5'); 4,00 s, 2 H (CH2COO); 3,78 t, >6,06 Hz, 2 H (CH2-3); 3,59 - 3,68 m, 14 H (7 x CH2O); 3,52 q, >5,47 Hz, 2 H (CH2-14); 3,23 tt, >11,24, 4,36 Hz, 1 H (CH-3'); 2,611, >6,00 Hz, 2 H (CH2-2); 2,36 ddd, >13,20,4,70 (CH4'a); 2,19 - 2,29 m, 1 H (CH-4'b); 1,77 - 2,06 m, 5 H (cholesteryl); 1,00 s, 3 H (CH3-19');
l, 29 d, >3,66 Hz, 24 H (cholesteryl); 0,92 d, >6,57 Hz, 3 H (CH3-2T); 0,88 d, >1,89 Hz, 3 H (CH3-26'); 0,86 d, >1,77 Hz, 3 H (CH3-27'); 0,68 s, 3 H (CH3-I8').
Příklad 17
Komerčně dostupný cholesterol tosylát (2,8 g; 5,1 mmol) se rozpustí v toluenu (10 ml) a přidá se 4-hydroxybutannitril (0,61 g; 7,1 mmol). Reakční směs se pak 24 hodin míchá při 120 °C, odpaří se a rozpustí v izopropanolu (60 ml). K meziproduktu se přidá 12% vodný roztok NaOH (100 ml) a 4 dny se míchá při 100 °C. Přidá se 10% HC1 (100 ml) a extrahuje diethyletherem (4 x 30 ml). Produkt se přečistí na silikagelu (320 ml) v systému toluen ethylacetát (10 ml/min; gradient 0-40% ethylacetát). Získá se 345 mg (10% výtěžek) kyseliny <9-[(3P)-cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybutanové IX (n2= 3). Pro C3iHs2O3 vypočteno: 78,86% C, 11,09% H; nalezeno: 78,80% C, 11,18% H; ’H NMR (400 MHz, CDC13) δ ppm: 5,32 5,39 m, 1 H (H-6); 3,55 td, >5,90, 1,40 Hz, 2 H (CHj-l'); 3,17 tt, >11,21, 4,39 Hz, 1 Η (H3); 2,491, >7,01 Hz, 2 H (CH2-3'); 2,36 ddd, >13,17,4,71, 2,08 Hz, 1 H (H-4a); 2,14-2,24 m, 1 H (H-4b); 1,93 - 2,05 m, 2 H (CH2-1, H-12); 1,90 t, >6,20 Hz, 2 H (CH2-2'); 1,78 1,88 m, 3 Η (H-2, H-7, H-16); 1,02 - 1,63 m, 22 H (chol. skelet); 1,01 s, 3 H (CH3-19); 0,92 d, >6,57 Hz, 3 H (CH3-21); 0,88 d, >1,77 Hz, 3 H (CH3-26); 0,86 d, >1,77 Hz, 3 H (CH3-27); 0,68 s, 3 H (CH3-18).
Příklad 18
Ke kyselině č)-[(3P)-cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybutanové IX (n2 = 3; 283 mg; 0,6 mmol) v suchém N,N-dimethylformamidu (4 ml) se přidá bis(pentafluorfenyl)karbonát (260 mg;
·
21-/.X
0,66 mmol) a 4-methylmorfolin (0,1 ml; 1 mmol). Směs se míchá jednu hodinu za laboratorní teploty. Průběh reakce se monitoruje pomocí TLC ve směsi toluen-ethylacetát (10:1). Směs se dvakrát lyofilizuje v dioxanu (2 x 20 ml). Získá se 382 mg pentafluorfenyl kyseliny Ο-[(3β)cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybutanové IX (n2 = 3; ), který se ihned použije ke kondenzaci s 15-amino-4,7,10,13-tetraoxa-pentadekanovou kyselinou.
K pentafluorfenyl kyselině 0-[(3p)-cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybutanové IX (n2 = 3; 121 mg; 0,19 mmol) se přidá 15-amino-4,7,10,13-tetraoxa-pentadekanová kyselina (104 mg; 0,39 mmol) a směs se hodinu dosuší na vakuu. Pod argonem se přidá suchý N-dimethylformamid (4ml) a N-ethyldiizopropylamin (1 ml). Reakce se míchá za laboratorní teploty do druhého dne a hned se chromatografuje na sloupci silikagelu (100 ml) v systému toluen-ethylacetát (gradient 0-40% ethylacetát, 10 ml/min, 160 min). Získá se 280 mg (88% výtěžek) kyseliny ÍV-{(9-[(3p)-cholest-5-en-3-yl]-4-hydroxybutanoyl}-15-amino-4,7,10,13-tetraoxapentadekanové obecného vzorce (X; n3 = 3; nj = 3). Pro C42H73NO8-H HR-MS, vypočteno m/z\ 720,5409 nalezeno m/z: 720,5407; ‘H NMR (400 MHz, Aceton) δ ppm: 3,71 t, >6,32 Hz, 2 H (CH2-3); 3,55 - 3,60 m, 14 H (7 x CH2-O); 3,511, >5,60 Hz, 2 H (CH2-14); 3,45 t, >6,32 Hz, 2 H (CH2-4'); 3,34 q, >5,73 Hz, 1 H (CH-3); 2,53 t, >6,32 Hz, 2 H (CH2-2); 2,34 ddd, >13,20, 4,70, 2,10 Hz, 1 H (H-4a); 2,24 t, >7,45 Hz, 2 H (CH2-2'); 1,82 - 2,17 m, 5 H (cholesteryl); 1,76 - 1,82 m, 2 H (CH2-3'); 1,01 s, 3 H (CH3-19); 0,94 d, >6,57 Hz, 3 H (CH3-2I”); 0,87 d, >1,26 Hz, 3 H (CH3-26); 0,86 d, >1,52 Hz, 3 H (CH3-27); 0,81 1,66 m, 34 H (cholesteryl); 0,71 s, 3 H (CH3-I8).
Příklady provedení - biologické aktivity
Příklad 19
Enkapsulace anionických antivirotik do kationických liposomů a zvýšení antivirální aktivity in vitro
Metody: Liposomy byly připraveny standardními postupy např. hydratací lipidního filmu a extruzí liposomů přes polykarbonátové filtry Nucleopore s velikostí pórů 100 nm. Velikost a zeta-potenciál byly měřeny na přístroji Nanosizer ZS (Malvem).
Koncentrace enkapsulovaného nukleotidového antivirotika Cidofoviru ® [(S)-l-(3-hydroxy2-phosphonylmethoxypropyl)cytosinu] byla stanovena spektrofotometricky po separaci í
• · · · ♦
« » .22-/3 liposomů od volného Cidofovoru pomocí ultracentrifugace a lyži liposomů 20 mM kyselinou cholovou. UV absorbance byla měřena při 272 nm (extinkční koeficient ε = 9000, pH = 7,0).
Výsledky: Kationické lipidy 1-6 jsou schopny spolu s dalšími pomocnými lipidy (např. EPC = vaječný fosfatidyl cholin) tvořit stabilní lipidní dvojvrstvu a tudíž je lze použít na přípravu liposomů. Tento fakt je dokumentován na Obr. 1. Velikost liposomů koresponduje s velikostí pórů použitého filtru pro extruzi (ukázka pro lipid 1 je Obr. 2.). Zeta potenciál liposomů závisí na poměru kationického lipidu k celkovému množství lipidu. V neutrálním pH roztoku PBS dosahuje pro 20 - 30% kationického lipidu ve směsi hodnot nad 30 mV. Ukázka vlivu obsahu kationického lipidu v liposomech na jejich ζ-potenciál je na Obr. 2.
Zvyšování ζ-potenciálu vede k výraznému zvýšení enkapsulační účinnosti pro anionická analoga nukleotidů díky silné elektrostatické interakci mezi pozitivně nabitou polyaminovou skupinou fosfolipidů v liposomální membráně a negativně nabitou fosfátovou nebo fosfonátovou skupinou v léčivu. Závislost enkapsulační účinnosti na zvyšujícím se obsahu kationického lipidu je na Obr 3. Je dosaženo téměř trojnásobné enkapsulační účinnosti ve srovnání s neutrálními liposomy, kde dochází pouze k pasivní enkapsulaci s účinností kolem 20%.
Příklad 20
Cytotoxicita kationických liposomů
Metody: Pro analýzu cytotoxicity byl použit standardní MTT test cytotoxicity doplněný mikroskopickou analýzou. Buňky byly inkubovány s liposomy 24 h. Koncentrace celkového lipidu je udávána v mg/ml. Pro testování byly použity buněčné linie MDBK, B16F10, MCF-7 (Obr. 4).
Výsledky: Testované kationické lipidy nevykazují výraznou cytotoxicitu in vitro vůči buněčným liniím. Volné kationické lipidy ve formě micel vykazují cytotoxický účinek v rozmezí koncentrací 10-100 μΜ. Cytotoxický efekt liposomální formulace (20% kationického lipidu) se projevuje až za hranicí 10 mg/ml celkového liposomálního lipidu. Tyto koncentrace daleko převyšují koncentrace používané pro in vitro aplikace.
* * ·
Liposomální formulace kationických lipidů výrazně snižují toxicitu volných kationických lipidů. Jako příklad jsou zde uváděny křivky in vitro cytotoxicity pro liposomální Lipid 1 na buněčných liniích MDBK (Obr. 4). Srovnány jsou cytotoxické křivky pro prázdné liposomy, liposomy s enkapsulovaným Cidofovirem a pro samotný Cidofovir. Toxicita není pozorována do koncentrace 100 mg/ml lipidu. Enkapsulace Cidofoviru nemá vliv na cytotoxicitu.
Příklad 21
Antivirální účinek in vitro na modelu BHV-1 virové infekce buněk MDBK
Metody: Testování antivirálního účinku bylo provedeno na in vitro modelu bovinního herpesviru 1 (BHV-1) na buněčné linii MDBK. Tento model skýtá několik výhod pro testování antivirálního účinku. BHV-1 virus není přenosný na člověka a je možné jej kultivovat na MDBK buněčné linii. Kvantifikace virové infekce je možná jednak hodnocením cytopatického efektu a velmi přesně je hodnotitelná pomocí QRT-PCR. Buňky byly inkubovány 6 h s testovanými preparáty, poté bylo médium vyměněno a buňky byly infikovány virem BHV-1 o různém titru (10'3, 10‘5, ΙΟ'7, 109). Produkce virové DNA byla kvantifikována standardním testem kvantitativní PCR (polymerázové řetězové reakce) v reálném čase (QRT-PCR).
Výsledky: Kationické liposomy představují vhodný nosičový systém pro hydrofilní antivirotika na bázi derivátů nukleotidů (např. Cidofovir). Lipsomální formulace Cidofoviru zvyšuje antivirální účinek in vitro proti BHV-1 viru více než o dva řády ve srovnání s volnou látkou (Obr. 6). Po rychlém proniknutí liposomálního léčiva do buňky inhibuje Cidofovir syntézu virové DNA a dochází k produkci defektních virových částic, které nejsou schopny infikovat další buňky.
Množství virové DNA bylo kvantifikováno pomocí metody QRT-PCR.
Kationický lipid 1 je označen zkratkou LD1. Lipsosomy byly připraveny s přídavkem 20% kationických lipidů (zde je ukázka opět s lipidem 1) Buňky MDBK byly inkubovány 6 h s jednotlivými preparáty, potom bylo vyměněno medium a buňky byly infikovány virem BHV-1. Produkce virové DNA byla kvantifikována pomocí QRR-PCR po 24 h.
• 9 • · ♦ · · * • ·
Příklad 22
Zvýšení intemalizace oligonukleotidu s využitím kationických liposomů
Metody: Kationické liposomy byly připraveny z EPC (85%) a kationických lipidů 1-6 (15%). Tento poměr byl shledán jako optimální pro transfekci nukleotidů. Transfekční účinnost byla testována na standardním in vitro modelu s buněčnou linií MCF-7. Buňky byly kultivovány v mikrotitračních deskách (48 jamek) se sérem po dobu 24 hodin. Koncentrační řada liposomů se naředí v médiu Opti-MEM (Life Technologies Corporation, Invitrogen ™) a přidají se oligonukleotidy značené FAM (ss 32-mer) rovněž v Opti-MEM. Liposomy se smíchají s oligonukleotidy, mixují 20 min, centrifugují a nechají inkubovat 30 minut. Poté se přidá komplex liposomů a oligonukleotidy k buňkám po kapkách do média Opti-MEM, které bylo předem vyměněno za čerstvé. Buňky se inkubují dalších 24 hodin a pak se opláchnou lxPBS, přidá se CellScrub buffer, který odmyje komplexy liposom/oligonukleotid, zachycený na membránách. Následuje ještě jeden oplach PBS a poté se buňky lyžují lyzačním roztokem lxCell Culture Lysis Reagent (Promega). Lyžuje se na třepačce 30 minut při laboratorní teplotě. V lyzátu se stanoví proteiny modifikovanou metodou dle Lowryho. Kvantifikace oligonukleotidu se provede fluorometricky v 96 jamkových deskách. Hodnoty fluorescence se normalizují na celkový obsah proteinů (Obr. 7).
Výsledky: Liposomy připravené z kationických lipidů 1 až 6 vykazují schopnost doručit oligonukleotidy do cílových buněk (podobně jako nízkomolekulámí nukleotidové antivirotikum - Cidofovir). Neutrální liposomy připravené pouze z vaječného fosfatidylcholinu tuto aktivitu nevykazují.
Příklad 23
Transfekce plasmidu
Metody: Lipopoliaminy byly použity k přípravě transfekčních liposomů o složení kationický lipid:DOPE 1:1. (DOPE - dioleylfosfatidyletanolamin). Liposomy byly připraveny metodou hydratace lipidního filmu a extruzí přes polykarbonátové filtry. K transfekci byl použit plasmid kódující luciferázu. Transfekce byla provedena standardním testem na buňkách MCF7 (150 000 bb/j. v 500 μΐ OptiMEM). Test byl proveden v 24 jamkových destičkách při konfluenci buněk 90-95%. Transfekční účinnost se stanoví měřením luminiscence na destičkovém luminometru po 24 h kultivaci. Komplexy kationických lipsomů s DNA byly * * » *
připraveny v poměrech DNA (pg): liposomy(pg) 1:1,1:5, 1:10, 1:15,1:20, 1:30, 1:50,1:70. Jako kontrola byl použit komerční liposomální transfekční kit Trojene® (Avanti Polar lipids, USA). U tohoto kitu bylo postupováno podle přiloženého manuálu.
Výsledky: Ukázka transfekční účinnosti je pro lipidy 2 a 4 s objemnou cholesterylovou hydrofobní skupinou. Tyto lipidy jsou pro transfekci pDNA nejvhodnější. Liposomy připravené z těchto kationických lipidů vykazovaly transfekční účinnost srovnatelnou s komerčním kitem Trojene, avšak tyto nové lipidy vykazují nižší toxicitu in vitro.
í l t 1 <
t
« t t tl t<
I* * í t t * *
Přehled použité literatury
André F.M., Mir L.M.: Nucleic acids electrotransfer in vivo: mechanisms and practical aspects, Curr. Gene Ther. 2010,10,267-280.
Behr J.P.: Gene-Transfer with Synthetic Cationic Amphiphiles - Prospects for Gene-Therapy, Bioconjugate Chemistry 1994, 5, 382-389.
Behr J.P., Demeneix B., Loeffler J.P., Mutul J.P.: Efficient Gene-Transfer Into Mammalian Primary Endocrine-Cells with Lipopolyamine-Coated Dna, Proceedings of the National Academy ofSciences of the United States of America 1989, 86, 6982-6986.
Boussif O., Lezoualch F., Zanta M.A., Mergny M.D., Scherman D., Demeneix B., Behr J.P.: A Versatile Vector for Gene and Oligonucleotide Transfer Into Cells in Culture and In-Vivo Polyethylenimine, Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 1995, 92, 7297-7301.
Fujiwara T., Hasegawa S., Hirashima N., Nakanishi M., Ohwada T.: Gene transfection activities of amphiphilic steroid-polyamine conjugates, Biochimica et Biophysica ActaBiomembranes 2000,1468, 396-402.
Gao X., Huang L.: A Novel Cationic Liposome Reagent for Efficient Transfection of Mammalian-Cells, Biochemical and Biophysical Research Communications 1991,179,280285.
Haensler J., Szoka F.C.: Polyamidoamine Cascade Polymers Mediate Efficient Transfection of Cells in Culture, Bioconjugate Chemistry 1993, 4, 372-379.
Hejazi R., Amiji M.: Chitosan-based gastrointestinal delivery systems, Journal of Controlled Release 2003,89,151-165.
Holý A.: Phosphonomethoxyalkyl analogs of nucleotides, Current Pharmaceutical Design 2003, 9, 256Ί-2592.
Keller M., Jorgensen M.R., Perouzel E., Miller A.D.: Thermodynamic aspects and biological profile of CDAN/DOPE and DC-Chol/DOPE lipoplexes, Biochemistry 2003, 42, 6067-6077. Kirby A.J., Camilleri P., Engberts J.B.F.N., Feiters M.C., Nolte R.J.M., Soderman O., Bergsma M., Bell P.C., Fielden M.L., Rodriguez C.L.G., Guedat P., Kremer A., McGregor
C., Perrin C., Ronsin G., van Eijk M.C.P.: Gemini surfactants: New synthetic vectors for gene transfection, Angewandte Chemie-International Edition 2003, 42, 1448-1457.
Koping-Hoggard M., Tubulekas I., Guan H., Edwards K., Nilsson M., Varům K.M.,
Artursson P.: Chitosan as a nonviral gene delivery systém. Structure-property relationships t <
* » ««
and characteristics compared with polyethylenimine in vitro and after lung administration in vivo, Gene Therapy 2001, 8, 1108-1121.
Kusumoto S., Inage M., Shiba T., Azuma I., Yamamura Y.: Synthesis of Long-Chain FattyAcid Esters of Normál-Acetylmuramyl-L-Alanyl-D-Isoglutamine in Relation to Anti-Tumor Activity, Tetrahedron Letters 1978,4899-4902.
Lemaitre M., Bayard B., Lebleu B.: Specific Antiviral Activity of A Poly(L-Lysine)Conjugated Oligodeoxyribonucleotide Sequence Complementary to Vesicular StomatitisVirus N-Protein Messenger-Rna Initiation Site, Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States ofAmerica 1987, 84, 648-652.
Miller A.D.: Human Gene-Therapy Comes of Age, Nátuře 1992, 357,455-460.
Miller A.D.: Cationic liposomes for gene therapy, Angewandte Chemie-International Edition 1998,37, 1769-1785.
Miller A.D.: Gene therapy needs robust synthetic nonviral platform technologies, Chembiochem 2004,5, 53-54.
Niculescu-Duvaz D., Heyes J., Springer C.J.: Structure-activity relationship in cationic lipid mediated gene transfection, Current Medicinal Chemistry 2003,10, 1233-1261.
Ohtani K., Nakamura M., Saito S., Nagata K., Sugamura K., Hinuma Y.: Electroporation Application to Human Lymphoid-Cell Lineš for Stable Introduction of A Transactivator Gene of Human T-Cell Leukemia-Virus Type-I, NucleicAcids Research 1989,17, 1589-1604.
Petukhov I.A., Maslov M.A., Morozova N.G., Serebrennikova G.A.: Synthesis of polycationic lipids based on cholesterol and spermine, Russian Chemical Bulletin 2010, 59, 260-268.
Regelin A.E., Fankhaenel S., Gurtesch L., Prinz C., von Kiedrowski G., Massing U.: Biophysical and lipofection studies of DOTAP analogs, Biochimica et Biophysica ActaBiomembranes 2000,1464, 151-164.
Saha R., Killian S., Donofrio R.S.: DNA vaccines: a mini review, Recent Pat DNA Gene Seq. 2011, 5, 92-96.
Stewart L„ Manvell M., Hitlery E., Etheridge C.J., Cooper R.G., Stark H., van-Heel M., Preuss M., Alton E.W.F.W., Miller A.D.: Cationic lipids for gene therapy part 4 - Physicochemical analysis of cationic liposome-DNA complexes (lipoplexes) with respect to in vitro and in vivo gene delivery efficiency, Journal of the Chemical Society-Perkin Transactions 2 2001, 624-632.
• 4 í * * · «
t · t
< «
Ϊ *
28Új^ Tsukamoto M., Ochiya T., Yoshida S., Sugimura T., Terada M.: Gene-Transfer and Expression in Progeny After Intravenous Dna Injection Into Pregnant Mice, Nátuře Genetics 1995, 9,243-248.
Zhang S.B., Zhao Y.A., Zhao B.D., Wang B.: Hybrids of Nonviral Vectors for Gene Delivery, Bioconjugate Chemistry 2010, 21, 1003-1009.
Zhi D.F., Zhang S.B., Wang B., Zhao Y.N., Yang B.L., Yu S.J.: Transfection Efficiency of Cationic Lipids with Different Hydrophobic Domains in Gene Delivery, Bioconjugate Chemistry 2010, 21, 563-577.
Zuhom I.S., Oberle V., Visser W.H., Engberts J.B.F.N., Bakowsky U., Polushkin E., Hoekstra D.: Phase behavior of cationic amphiphiles and their mixtures with helper lipid influences lipoplex shape, DNA translocation, and transfection efficiency, Biophysical Journal 2002, 83, 2096-2108.

Claims (8)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY —X—Y
    1. Lipopolyaminy sperminového typu obecného vzorce I (I), kde X je zvoleno ze skupiny, zahrnující y ν' vazbu mezi atomem uhlíku koncové skupiny CO hydrofobní domény'a atomem dusíku polyaminové části, aminopolyethylenglykolkarboxamidovou spojku obecného vzorce II kde ni = 1-13, \ z' vázanou na polyaminovou část i na hydrofobní doménu amidickou vazbou, ω-hydroxyalkylkarboxamidovou spojku obecného vzorce III kde n2 = 1-9, vázanou na atom dusíku polyaminové části amidickou vazbou a prostřednictvím atomu kyslíku do polohy 2 cholesterylového skeletu, a ω-hydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykolkarboxamidovou spojku obecného vzorce
    IV kde n3= 1-9aru = 1-13,
    30-J7 vázanou na atom dusíku polyaminové části amidickou vazbou a prostřednictvím atomu kyslíku do polohy 2 cholesterylového skeletu, a hydrofobní doména Y je zvolena ze symetricky v poloze C(2)p ětveného acylu obecného vzorce V (V), kde n5 = 5-30, nebo (3P)-cholest-5-en-3-ylu vzorce VI přičemž když X je vazba mezi atomem uhlíku koncové skupiny CO hydrofobní domény' a atomem dusíku polyaminové části, nebo aminopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce II, tak Y je poloze C(2) symetricky větvený acyl obecného vzorce V, a když X je ω-hydroxyalkylkarboxamidová spojka obecného vzorce III nebo ω- hydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce IV, tak
    Y je (3p)-cholest-5-en-3-yl vzorce VI. / > /’λ//.//-/ j
  2. 2. Lipopolyaminy sperminového typu obecného vzorce Γ podle nároku 1, kde X je vazba mezi atomem uhlíku koncové skupiny CO hydrofobní domén^íTatomem dusíkypolyaminové částiz nebo spojka obecného vzorce II uvedeného v nároku 1, kde ni = 3 a Y je v poloze C(2) symetricky větvený acyl obecného vzorce V uvedeného v nároku 1, kde ns = 13.
  3. 3. Lipopolyaminy sperminového typu obecného vzorce I podle nároku 1, kde X je spojka obecného vzorce III uvedeného v nároku 1, kde Π2 = 1 či 3; nebo spojka obecného vzorce IV ?,/ > ' Z uvedeného v nároku 1, kde n3 = 1 či 3 a η» = 3 a Y je (3P)-cholest-5-en-3-yl vzorce VI, uvedeného v nároku 1.
    • · • · * · «i • · · • « « » < t tttl t t t « • · • · · « • « f • · · * • · · ·
  4. 4. Způsob přípravy lipopolyaminů sperminového typu obecného vzorce I podle nároku 1, vyznačující se tím, že v prvním kroku se kyseliny, zvolené ze skupiny, zahrnující v poloze
    C(2) symetricky větvené mastné kyseliny obecného vzorce VII kde ni = 5-30, kyseliny obecného vzorce VIII kde ni= 1-13 a = 5-30, kyseliny obecného vzorce IX kde n2 = 1-9, a kyseliny obecného vzorce X kde n3= 1-9 aru = 1-13, převedou reakcí s bis(pentafluorfenyl)karbonátem v přítomnosti organické báze v polárním aprotickém rozpouštědle na své pentafluorfenyl estery, «· < r · ♦ * * • » » · í · » · » > t i i t • · t » · « s < < <
    • · > 4 1 t « · · * «9 I · tyto pentafluorfenyl estery se v druhém kroku převedou v přítomnosti organické báze,reakcí s N2N3?Atri-(/erc-butoxykarbonyl)sperminem v organickém aprotickém rozpouštědle^na chráněné polykationické lipidy obecného vzorce XI
    Boc „ I
    Boc (XI), kde X je vazba mezi atomem uhlíku koncové skupiny CO hydrofobní domény Y a atomem dusíku polyaminové části, nebo aminopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce II, popsaného v nároku 1, nebo ω-hydroxyalkylkarboxamidová spojka obecného vzorce III, popsaného v nároku 1, nebo ω-hydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykolkarboxamidová spojka obecného vzorce IV, popsaného v nároku 1, a £/Y je v poloze C(2) symetricky větvený acyl obecného vzorce V popsaného v nároku 1, nebo (3P)-cholest-5-en-3-yl vzorce VI popsaného v nároku 1, přičemž prs X = vazba mezi atomem uhlíku koncové skupiny CO hydrofobní domény Y a atomem dusíku polyaminové části nebo aminopolyethylenglykolkarboxamidová spojka zmíněného vzorce II platí, že Y je v poloze C(2) symetricky větvený acyl obecného vzorce V popsaného v nároku 1, a pro X = ω-hydroxyalkylkarboxamidová spojka zmíněného vzorce III nebo ω-hydroxyalkylkarboxamidopolyethylenglykolkarboxamidová spojka uvedeného vzorce IV platí, že Y je (3P)-cholest-5-en-3-yl zmíněného vzorce VI, ve třetím kroku se chráněné polykationické lipidy popsaného vzorce XI převedou na lipopolyaminy obecného vzorce I popsaného v nároku 1 odštěpením fórc-butoxykarbylových chránících skupin působením kyseliny trifluoroctovoé v dichlormethanu.
  5. 5. Způsob přípravy podle nároku 4, vyznačující se tím, že kyseliny obecného vzorce VIII se připraví bazicky katalyzovanou reakcí pentafluorfenyl esterů kyselin obecného vzorce VII s aminopolyethylenglykolkarboxylovými kyselinami H2N-(CH2)2-O-[(CH2)2-O]n-(CH2)-
    -COOH^kde η = 1 /13, v organickém aprotickém rozpouštědle.
  6. 6. Způsob přípravy podle nároku 4, vyznačující se tím, že kyseliny obecného vzorce IX se připraví bazicky katalyzovanou alkylací cholesterolu pomocí íerc-butylesteru kyselin ω- * f
    -bromalkanových s počtem atomů uhlíku C2 - C]0 vaprotickém rozpouštědle a následným kysele katalyzovaným odštěpením terc-butoxykarbylové chránící skupiny v předchozím kroku získaného terc-butylesteru obecného vzorce XIV • · ·· «· ·· • · · » ·« • · · « ·· ·
    9 · · · ·· >·«····· H « ·t kde n2= 1- 9, nebo reakcí O-tosyl derivátu chlesterolu [(3p)-cholest-5-en-3-yloxy-4-methylbenzensulfonátu] s ω-hydroxyalkannitrily s počtem atomů uhlíku C2 - Cio v nepolárním aprotickém rozpouštědle za zvýšené teploty a následnou bazickou hydrolýzou intermediálního Ο-[(3β)- cholest-5-en-3-yl]-<O-hydroxyalkanoylnitrilu.
  7. 7. Způsob přípravy podle nároku 4, vyznačující se tím, že kyseliny X se připraví bazicky katalyzovanou reakcí pentafluorfenyl esterů kyselin obecného vzorce IX s aminopolyethylenglykolkarboxylovými kyselinami {H2N-(CH2)2-O-[(CH2)2-O]n-(CH2)- !A Ί ' bufa· ~ COOH( η = 1 -13.pv organickém aprotickém rozpouštědle.
  8. 8. Použití lipopolyaminů sperminového typu obecného vzorce I podle nároku 1 pro konstrukci polykationických samoskladných systémů jako nosičů nukleotidových a oligonukleotidových terapeutik a terapeutických genových konstruktů.
CZ20120020A 2012-01-13 2012-01-13 Lipopolyaminy sperminového typu pro konstrukci liposomálních transfekcních systému CZ303963B6 (cs)

Priority Applications (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ20120020A CZ303963B6 (cs) 2012-01-13 2012-01-13 Lipopolyaminy sperminového typu pro konstrukci liposomálních transfekcních systému
EP13704708.0A EP2802556B1 (en) 2012-01-13 2013-01-14 Lipopolyamines of spermine type for construction of liposomal transfection systems
PCT/CZ2013/000004 WO2013104346A1 (en) 2012-01-13 2013-01-14 Lipopolyamines of spermine type for construction of liposomal transfection systems
US14/370,526 US9393200B2 (en) 2012-01-13 2013-01-14 Lipopolyamines of spermine type for construction of liposomal transfection systems

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ20120020A CZ303963B6 (cs) 2012-01-13 2012-01-13 Lipopolyaminy sperminového typu pro konstrukci liposomálních transfekcních systému

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ201220A3 true CZ201220A3 (cs) 2013-07-17
CZ303963B6 CZ303963B6 (cs) 2013-07-17

Family

ID=47721890

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20120020A CZ303963B6 (cs) 2012-01-13 2012-01-13 Lipopolyaminy sperminového typu pro konstrukci liposomálních transfekcních systému

Country Status (4)

Country Link
US (1) US9393200B2 (cs)
EP (1) EP2802556B1 (cs)
CZ (1) CZ303963B6 (cs)
WO (1) WO2013104346A1 (cs)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CZ303963B6 (cs) * 2012-01-13 2013-07-17 Ústav organické chemie a biochemie Akademie ved CR, v.v.i. Lipopolyaminy sperminového typu pro konstrukci liposomálních transfekcních systému
KR101709127B1 (ko) * 2015-06-16 2017-02-22 경동제약 주식회사 Dpp-iv 억제제의 제조를 위한 신규 중간체, 이의 제조방법 및 이를 이용한 dpp-iv 억제제의 제조방법
CZ307452B6 (cs) * 2016-11-03 2018-09-05 Vysoká škola chemicko-technologická v Praze Aminooxylipidy pro konstrukci samoskladných liposomálních systémů umožňujících jejich následnou modifikaci biologicky funkčními molekulami
KR20240027888A (ko) 2016-12-14 2024-03-04 리간달 인코포레이티드 핵산 및 단백질 페이로드 전달을 위한 방법 및 조성물

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2727679B1 (fr) * 1994-12-05 1997-01-03 Rhone Poulenc Rorer Sa Nouveaux agents de transfection et leurs applications pharmaceutiques
FR2741066B1 (fr) * 1995-11-14 1997-12-12 Rhone Poulenc Rorer Sa Nouveaux agents de transfection et leurs applications pharmaceutiques
DE19607686A1 (de) * 1996-02-29 1997-09-04 Chemicon Lab Gmbh Neue metabolisierbare Lipopolyamine, deren Darstellung und Anwendung
DE69727384T2 (de) * 1996-05-24 2004-11-04 IC-VEC Ltd. Polykatonische sterin-derivate zur transfektion
DE19631189A1 (de) * 1996-08-02 1998-02-05 Max Delbrueck Centrum Neuartige kationische Amphiphile für den liposomalen Gentransfer
CZ418599A3 (cs) * 1998-05-25 2000-02-16 Rhone-Poulenc Rorer S. A. Sloučeniny, způsob jejich přípravy a jejich použití pro přenos nukleových kyselin do buněk
GB2458473A (en) * 2008-03-17 2009-09-23 Imuthes Ltd 3'-O-allyl- and 3'-O-carboxymethyl- 2'-aminosaccharide derivatives, & amides thereof with peptides, as adjuvants
US20100260830A1 (en) * 2009-04-08 2010-10-14 Brian A Salvatore Liposomal Formulations of Tocopheryl Amides
CZ303963B6 (cs) * 2012-01-13 2013-07-17 Ústav organické chemie a biochemie Akademie ved CR, v.v.i. Lipopolyaminy sperminového typu pro konstrukci liposomálních transfekcních systému

Also Published As

Publication number Publication date
US20150018436A1 (en) 2015-01-15
EP2802556B1 (en) 2017-01-04
US9393200B2 (en) 2016-07-19
EP2802556A1 (en) 2014-11-19
CZ303963B6 (cs) 2013-07-17
WO2013104346A1 (en) 2013-07-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN114507195B (zh) 一种脂质化合物、包含其的组合物及应用
US8678686B2 (en) Multi-chain lipophilic polyamines
Habrant et al. Design of ionizable lipids to overcome the limiting step of endosomal escape: application in the intracellular delivery of mRNA, DNA, and siRNA
US8759104B2 (en) Cationic lipids
US10385030B2 (en) Cationic lipid
CN103930398B (zh) 具有改进的细胞内动力学的阳离子脂质
US6153434A (en) Methods for the intracellular delivery of substances
JP4467084B2 (ja) 核酸を細胞に導入するための化合物、その製法及びその使用
KR100807060B1 (ko) 신규한 양이온성 지질, 그의 제조 방법 및 그를 포함하는전달체
US20250230131A1 (en) Novel ionizable lipid and lipid nanoparticle composition using same
JP2017014253A (ja) トランスフェクションエンハンサー要素を含む脂質および脂質集合体
JP6605477B2 (ja) 核酸送達のためのカチオン性脂質
US6281371B1 (en) Lipopolyamines, and the preparation and use thereof
CZ201220A3 (cs) Lipopolyaminy sperminového typu pro konstrukci liposomálních transfekcních systému
US20230127080A1 (en) Novel cationic lipid having cystine skeleton
KR100909786B1 (ko) 올리고 펩티드를 수식한 신규한 양이온성 지질, 그의 제조 방법 및 그를 포함하는 전달체
AU2021225909A1 (en) Amino lipid compound, preparation method therefor, and application thereof
CN102532259A (zh) 基于寡肽的阳离子脂质衍生物及在药剂制剂中的应用
JP2005529860A (ja) ジアミノ酸−アミノ酸−ポリアミンに基づいたジェミニ界面活性剤化合物
WO1999043752A1 (fr) Compositions pour transporter des substances chargees negativement
US20030109699A1 (en) Amphiphilic quinolylpolyamines as transfer agents for biologically active macromolecules
Wu et al. Evaluation of pentaerythritol-based and trimethylolpropane-based cationic lipidic materials for gene delivery
TW202400189A (zh) 可離子化脂質
JP2008143844A (ja) N1−ベンジルエタン−1,2−ジアミン誘導体およびその塩ならびにそれを用いた遺伝子キャリア

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20230113