CZ2009277A3 - Zpusob biotechnologické prípravy derivátu linkomycinu - Google Patents

Zpusob biotechnologické prípravy derivátu linkomycinu Download PDF

Info

Publication number
CZ2009277A3
CZ2009277A3 CZ20090277A CZ2009277A CZ2009277A3 CZ 2009277 A3 CZ2009277 A3 CZ 2009277A3 CZ 20090277 A CZ20090277 A CZ 20090277A CZ 2009277 A CZ2009277 A CZ 2009277A CZ 2009277 A3 CZ2009277 A3 CZ 2009277A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
lincomycin
strain
gene
biosynthesis
inactivated
Prior art date
Application number
CZ20090277A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ302256B6 (cs
Inventor
Ulanova@Dana
Novotná@Jitka
Smutná@Yvona
Kameník@Zdenek
Gažák@Radek
Janata@Jirí
Kopecký@Jan
Spížek@Jaroslav
Original Assignee
Mikrobiologický ústav AV CR, v.v.i.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Mikrobiologický ústav AV CR, v.v.i. filed Critical Mikrobiologický ústav AV CR, v.v.i.
Priority to CZ20090277A priority Critical patent/CZ302256B6/cs
Priority to PCT/CZ2010/000057 priority patent/WO2010127645A2/en
Publication of CZ2009277A3 publication Critical patent/CZ2009277A3/cs
Publication of CZ302256B6 publication Critical patent/CZ302256B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10Transferases (2.)
    • C12N9/1003Transferases (2.) transferring one-carbon groups (2.1)
    • C12N9/1007Methyltransferases (general) (2.1.1.)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P17/00Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
    • C12P17/16Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms containing two or more hetero rings

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Zpusob prípravy derivátu linkomycinu biotechnologickou kultivací kmene Streptomyces lincolnensis ATCC 25466, který má inaktivovaný alespon jeden gen z lmb shluku kódujícího biosyntézu 4-L-propylprolinu. Do kultivacního média je dodávána náhrada za složku, jejíž syntéza je inaktivací zablokována. Biosyntézou tak vznikají nové, biologicky úcinné deriváty linkomycinu.

Description

Oblast techniky
Vynález se týká využití mutantních kmenů producentů linkomycinu defektních v biosyntéze linkomycinu k výrobě hybridních látek na bází linkosamidových antibiotik.
Dosavadní stav techniky
V poslední době vzhledem k vysokému počtu patogenních mikroorganismů, rezistentních ke známým antimikrobiálním látkám narůstá zájem o výzkum a vývoj nových, účinných antibiotik. Jednou z možností vedoucí ke vzniku mnoha potenciálně účinných látek je kombinatomí biosyntéza. Tímto způsobem lze pomocí genetické úpravy již známých genů, kódujících biosyntézu účinných látek nebo celých shluků genů získat mikroorganismus, produkující sloučeniny snovou strukturou a novými vlastnostmi. Jednou z takových to biologcky účinných látek je linkomycin a jeho deriváty. Linkomycin je metabolit produkovaný různými druhy aktinomycet včetně kmenu Streptomyces lincolnensis a je využíván k léčbě infekcí způsobených grampozitivními patogeny. Klindamycin je nejznámějším semisyntetickým derivátem linkomycinu a jeho antimikrobiální spektrum je rozšířeno o grampozitivní anaerobní bakterie a původce malárie Plasmodium falciparum. Ostatní deriváty linkomycinu byly připraveny převážně chemicky. Zároveň byly prováděny obohacovací pokusy kmenu S.lincolnensis na principu přidávání různých prekurzorů do kultivačního media vedoucí ke vzniku nových látek na bázi linkomycinu. Nové látky byly testovány in vitro a in vivo vůči různým patogenním mikroorganizmům.
V biosyntéze linkomycinu dochází k oddělené syntéze dvou prekurzorů 4-L-propylprolinu (dále PPL) a methylthiolinkosamidu (MTL), které jsou kondenzací spojeny na Ndemethyllinkomycin (NDL) a ten je dále methylován na výsledný linkomycin.
V roce 1995 byla publikována sekvence shluku genů kódujících proteiny pro biosyntézu linkomycinu v nadprodukčním kmenu - Imb shluk. Tento shluk obsahuje geny pro biosyntézu obou prekurzorů, geny pro kondenzační reakci, regulační geny a geny pro rezistenci k antibiotiku. Nedávno byla publikována sekvence linkomycinového shluku pro typový kmen Streptomyces lincolnensis ATCC 25466.
Ke dnešnímu dni byla experimentálně prokázána a publikována pouze funkce proteinů LmbB 1 a B2 zodpovědných za první kroky biosyntézy PPL části molekuly. Funkce ostatních genů jsou buď neznámé, nebo byly navrženy na základě homologií s jinými geny z databáze
BLAST.
Podstata vynálezu
Pro přípravu nových látek na bázi linkosamidových antibiotik lze využít soubor kmenů producentů linkomycinu dcfektních v jednom či více krocích v biosyntéze.
Pro tyto účely byly provedeny v typovém kmenu Streptomyces lincolnensis ATCC 25466 mutace určitých genů pro biosyntézu linkomycinu. Byl vytvořen soubor kmenů S.lincolnensis defektních v biosyntéze PPL (geny ImbA, Bl, B2, W, X, T) a závěrečné methylaci (gen ImbJ).
Takto připravené kmeny jsou určeny k dalšímu testování na produkci nových látek a to i v závislosti na zvolených kultivačních podmínkách. Podle toho co kóduje konkrétní gen, který byl přípravou kmene zablokován, je do kultivačního média potřeba přidávat komponenty, které jsou schopny toto nahradit, což jsou deriváty linkomycinových prekurzorů, biosyntéza tak není zablokována a probíhá za vzniku naprosto nových látek, biologicky aktivních derivátů linkomycinu.
V těchto kmenech je biosyntéza linkomycinu kódována Imb shlukem, který obsahuje geny ImbA, Bl, B2, JF, X, Y kódující proteiny pro tvorbu prekurzoru 4-L-propylprolinu a gen ImhJ. kódující závěrečnou methylaci N-demethyllinkomycinu. Zablokováním tvorby 4-Lpropylprolinu lze do kultivačního média přidávat jiný derivát prolinu, který bude mikroorganismus schopen v biosyntéze využít a 4-L-propylprolin jím nahradit. Tímto způsobem lze připravit celou řadu nových derivátů linkomycinu aniž by se musely připravovat synteticky.
Přehled obrázků
Obr. 1: Primery pro syntézu inaktivačních kazet
Obr.2: Chromatogram analýzy UPLC, detekovány jsou píky butyllinkomycinu a pentyllinkomycinu
Obr. 3: Struktura linkomycinu
Obr. 4: Seznam použitých kmenů E.coli včetně obsaženého plasmidu a antibiotika přítomného v jeho kultivačním médiu případně potřebná kultivační teplota
Obr. 5: Seznam použitých antibiotik včetně jejich používané zkratky a koncentrace
v kultivačních médiích
Obr.6: Seznam použitých médií včetně jejich složení
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1
Pro získání kmene Slreplomyces lincolnensis ATCC 25466 defektního vbiosyntéze linkomycinu byla provedena ínaktivace jednoho z genu účastnícího se syntézy propylprolinu za použití kitu pro cílenou mutagenezi streptomycet (REDIRECT PCR targeting systém, Proč Nati Acad Sci USA. 100(4), 1541-1546. 2003).
Kosmid LK6, který je uchováván v E. coli BW25113/pIJ790, pochází ze Streptomyces lincolnensis a nese celý Imb shluk. V tomto kmeni byl gen ImbX nahrazen inaktivační kazetou aac(3)IV/oriT kódující rezistenci k apramycinu. Tato inaktivační kazeta byla vytvořena PCR reakcí s pomocí příměru Xf a Xr obsahujících homologní úseky okolí genu ImbX. Jako templát byl použit 1383 pb fragment vzniklý štěpením plazmidu pIJ773 restrikčními enzymy EcoRI a HindlII. Kmen E. coli BW25113 obsahující kosmid LK6 a plazmid pIJ790 s geny potřebnými pro rekombinaci byl elektroporačně transformován inaktivační kazetou a selektován na rezistenci k apramycinu (50 mg/L), kanamycinu (50 mg/L) a karbamycínu (100 mg/L) na LB médiu. Kazeta byla rekombinačně integrována do kosmidu LK6 výměnou za gen ImbX.
Takto připravený kosmid byl konjugačně vnesen do kmene X lincolnensis ATCC 25466 podle protokolu Kieser T., Bibb M.J., Bittner M.J., Cháter K.F., Hopwood D.A. : Practical Streptomyces genetics, John Innes Centre, Norwich Research Park, Colney, Norwich, England. (2000)
Transformace S. lincolnensis plasmidovou DNA mezidruhovou konjugací s E. coli
Kompetentní buňky E. coli ET12567/pUZ8002 byly elektroporací transformovány kosmidem pLK6 s inaktivační kazetou a selektovány na LB médiu s apramycinem (50 pg/ml) a karbenicilinem (100 pg/ml). Jedna z kolonií byla zaočkována do 10 ml LB média obsahujícího apramycin (50 pg/ml), chloramfenikol (25 pg/ml) a kanamycin (50 pg/ml) a kultivována přes noc. 100 pl přes noc narostlé kultury bylo přeočkováno do 10 ml čerstvého LB média obsahujícího apramycin (50 pg/ml), chloramfenikol (25 pg/ml) a kanamycin (50 pg/ml) a inkubováno na třepačce do dosažení ODóou = 0,4 (cca 4 h). Antibiotika byla z kultury odstraněna dvojnásobným promytím buněk 10 ml LB média centrifugací (1000 g, 10 min,
20°C) a buňky byly poté resuspendovány v 1 ml LB média.
K 10 μΐ sporové suspenze Streptomyces lincolnensis (10scfu) bylo přidáno 500 μΐ 2 χ YT média a spory byly podrobeny tepelnému šoku v 50°C po dobu 10 min a ochlazeny na laboratorní teplotu.
0,5 ml suspenze buněk E. coli ET12567/pUZ8002 bylo smícháno s 0,5 ml sporové suspenze Streptomyces lincolnensis a centrifugováno (10 000 g, 5 s, 20°C). Sediment byl resuspendován v 50 μΐ reziduálního média. Ze suspenze byla připravena ředící řada od 10'1 do 104 (suspenze byla ředěna sterilní destilovanou H2O). 100 μΐ každého ředění bylo vyseto na MS agar s 10 mmol/1 MgCh bez selekce a inkubováno ve 30°C. Po 16 - 20 h byla každá miska o průměru 8 cm rovnoměrně přelita 1 ml sterilní destilované H2O obsahující 0,5 mg kyseliny nalidixové a 1,25 mg apramycinu a dále inkubována při 30°C 3-5 dnů.
Klony S.lincolnensis obsahující inaktivační kazetu ve své DNA byly selektovány na rezistenci k apramycinu (50 mg/L) nejdříve na MS agaru, pak na DNA agaru.
Pro eliminaci vlivu inaktivační kazety na transkripci genů ve stejné transkripční jednotce bylo v kmenu E.coli DH5a provedeno vkosmidu LK6 vyštěpení kazety pomocí FLP rekombinázy, kódované genem neseným na plazmidu pBT340. FLP rekombináza odstranila centrální část inaktivační kazety a na jejím místě zanechala 81 pb dlouhý úsek DNA -, jizvu“ (teplota nutná pro indukci exprese rekombinázy je 42°C, buňky E.coli DH5a splazmidem BT340 a kosmidem LK6 byly proto pěstovány při této teplotě).
Mutovaný kosmid s jizvou byl pak vnesen transformací protoplastů podle protokolu Jandová Z., Tichý P.: Transformation of Streptomyces lincolnensis protoplasts with plasmid vectors, in Folia Microbiol (Praha),37(3),181-7.(1992) do buněk streptomycetového kmene, které měly již funkční gen ImbX nahrazen za inaktivační kazetu.
Příprava protoplastů S, lincolnensis
Inokulum bylo připraveno zaočkováním 50 ml YEME média s 10 % sacharózou a 5 mmol/l MgCb sporami kmene Streptomyces lincolnensis s inaktivační kazetou ze šikmého agaru a inkubací na třepačce při 30°C po dobu 24 h. Poté byl 1 ml inokula přeočkován do čerstvého YEME média s 10 % sacharózou, 5 mmol/1 MgCh a 0,5 % glycinem a kultura byla inkubována na třepačce při 28°C po dobu 16-17 hod. Buňky byly sklizeny centrifugací (10 min, 12°C, 6000 g), dvakrát promyty 15 ml P pufru za týchž podmínek a resuspendovány v 10 ml P pufru slyzozymem (2 mg/ml). Suspenze buněk byla inkubována při 30°C s občasným promícháním. Tvorba protoplastů byla sledována mikroskopicky. Zbytky mycelia byly odstraněny centrifugací (10 min, 20°C, 1 000 g). Protoplasty byly přefiltrovány přes sterilní vatový filtr, centrifugovány (10 min, 20°C, 3000 g) a dvakrát promyty P pufrem za týchž podmínek. Nakonec byly sedimentované protoplasty resuspendovány ve 200 μΐ P pufru a ihned použity pro transformaci.
Transformace protoplastů S. lincolnensis
500 ng v objemu 5 μΐ plazmidové DNA mutovaného kosmidu s jizvou bylo smícháno s 5 μΐ 50 % sacharózy a ke směsi bylo přidáno 100 μΐ suspenze protoplastů. Po promíchání bylo k suspenzi přidáno 200 μΐ T pufru, suspenze protoplastů byla opět promíchána a ihned vyseta na R2YE agar. Po 16 hodinách inkubace při 30°C byly obě misky přelity 2 ml vodného roztoku kanamycinu o koncentraci 200 pg/ml R2YE agaru a inkubována při 30°C po dalších
7-10 dnů.
Homologní rekombinací se inaktivační kazeta vyměnila za jizvu. Dvojité rekombinanty získaného kmene Streptomyces lincolnensis XlmhX byly selektovány na ztrátu apramycinové rezistence.
Buňky E. coli byly kultivovány v tekutých nebo na pevných médiích (LB, SOC) při 37°C. Kmen BW251 l3/LK6/pIJ790 byl kultivován při 30°C. Po transformaci kazetou daný kmen byl pěstován pří 37°C. Kmen DH5a obsahující plazmid pBT340 byl pěstován při 30°C. Tekuté kultury byly inkubovány na rotační třepačce při 200 RPM.
Buňky Streptomyces lincolnensis byly kultivovány v tekutých nebo na pevných médiích (R2YE, MS, DNA, YT) při 28- 30°C. Tekuté kultury byly inkubovány na rotační třepačce při 230 RPM a byly zakládány v Erlenmayerových baňkách o objemu 500 ml, které byly opatřeny vlisy pro zabránění tvorby shluků mycelia. Pro selekci buněk nesoucích vektor byla do kultivačních médií přidána odpovídající antibiotika.
Příklad 2
Kmen Streptomyces lincolnensis klmbX defektní v biosyntéze PPL byl v koncentraci y spor naočkován do 50 ml ínokulačního média YEME a kultivován 30 hod při 28°C. Poté bylo do 20 ml produkčního média AVM s přídavkem 4-L-butyl prolinu (100 mg/1) naočkováno 5 % inokulační kultury. Kultivace trvala 120 hod při 28°C. Po jejím ukončení byla kultivační kapalina od narostlé kultury oddělena centrifugací a získaný supematant byl použit na analýzu pro stanovení produkovaného derivátu linkomycinu - butyliinkomycinu.
Přiklad 3
Kmen Streptomyces lincolnensis SlmbX defektní v biosyntéze PPL byl v koncentraci 108 spor naočkován do 50 ml inokulačního média YEME a kultivován 30 hod při 28°C. Poté bylo do 20 ml produkčního média AVM s přídavkem 4-L-pentyl prolinu (100 mg/l) naočkováno 5 % inokulační kultury. Kultivace trvala 120 hod při 28°C. Po jejím ukončení byla kultivační kapalina od narostlé kultury oddělena centrifugací a získaný supematant byl použit na analýzu pro stanovení produkovaného derivátu linkomycinu pentyllinkomycinu.
Příklad 4
Pro analýzu butyllinkomycinu (dále BuLIN) byl použit Acquity UPLC systém (Waters, Milford, Massachusetts) s 2996 PDA detektorem nastaveným na 194 nm. Výsledky byly zpracovány pomocí počítačového programu Empower 2 (Waters). Supematant kultivačního média byl přečištěn pomocí SPE Oasis HLB 3cc extrakčních kolonek. Vzorek (4 ml) byl nanesen na kolonku předem kondicionovanou a ekvilibrovanou methanolem (3 ml) a vodou (3 ml). Část matrice vzorku byla vymyta vodou (3 ml) a 10% methanolem (v/v, 1 ml). Frakce obsahující deriváty linkomycinu byly vymyty 80% methanolem (v/v, lml), odpařeny do sucha a znovu rozpuštěny ve 200 μΐ methanolu.Vzorky byly analyzovány na chromatografické koloně BEH Cl8 column (50 x 2.1 mm, průměr částic 1.7 μτη, Waters); mobilní fáze byla složena ze složky A, 1 mmol/1 mravenčan amonný (pH 9,0), a složky B, acetonitril; izokratická eluce (24 % B); průtoková rychlost: 0,4 ml min'1, teplota kolony: 35°C, rychlost sběru dat: 20 pts s'1, dávkovaný objem: 5 μΐ, čas analýzy: 3,5 min. Po každé analýze následoval výplach kolony (100% acetonitrilem, 1 min) a její ekvilibrace (1,5 min). Eluent za kolonou obsahující BuLIN (retenční čas 5,05 min) byl odebrán, vysušen do sucha a použit pro MS analýzu, která přítomnost butyllinkomycinu ve vzorku potvrdila.
Příklad 5
Pro analýzu pentyllinkomycinu (dále PeLIN) byl použit Acquity UPLC systém (Waters, Milford, Massachusetts) s 2996 PDA detektorem nastaveným na 194 nm. Výsledky byly zpracovány pomocí počítačového programu Empower 2 (Waters). Supematant kultivačního média byl přečištěn pomocí SPE Oasis HLB 3cc extrakčních kolonek. Vzorek (4 ml) byl nanesen na kolonku předem kondicionovanou a ekvilibrovanou methanolem (3 ml) a vodou (3 ml). Část matrice vzorku byla vymyta vodou (3 ml) a 10% methanolem (v/v, 1 ml). Frakce obsahující deriváty linkomycinu byly vymyty 80% methanolem (v/v, lml), odpařeny do sucha
Ί a znovu rozpuštěny ve 200 μΐ methanolu. Vzorky byly analyzovány na chromatografické koloně BEH Cl8 column (50 x 2.1 mm, průměr částic 1.7 pm, Waters); mobilní fáze byla složena ze složky A, 1 mmol/1 mravenčan amonný (pH 9,0), a složky B, acetonitril; lineární gradientova eluce min/% B: 0/5, 10/52,5; průtoková rychlost: 0,4 ml min'1, teplota kolony: 35°C, rychlost sběru dat: 20 pts s'1, dávkovaný objem. 5 pl, čas analýzy: 3,5 min. Po každé analýze následoval výplach kolony (100% acetonitrilem, 1 min) a její ekvilibrace (1,5 min). Eluent za kolonou obsahující PeLIN (retenční čas 7,10 min) byl odebrán, vysušen do sucha a použit pro MS analýzu, která přítomnost pentyllinkomycinu ve vzorku potvrdila.
Příklad 6
Pro získání kmene Streptomyces lincolnensis ATCC 25466 defektního vbiosyntéze propylprolinu a v závěrečné methylaci N-demetyllinkomycinu byla současně provedena inaktivace genů ImbX a ImbJ za použití kitu pro cílenou mutagenezi streptomycet (REDIRECT PCR targeting systém, Proč Nati Acad Sci USA. 100(4), 1541-1546. 2003). V kosmidu LK6 nesoucím celý Imb shluk byl gen ImbX nahrazen inaktivační kazetou aac(3)IV/oriT kódující rezistencí k apramycinu (50 mg/L). Tato inaktivační kazeta byla vytvořena PCR reakcí s pomocí primeru Xf a Xr (tab. 2.) obsahujících homologní úseky okolí genu ImbX. Jako templát byl použít 1383 pb fragment vzniklý štěpením plazmidu pIJ773 restrikčními enzymy EcoRI a HindlII. Další gen ImbJ byl nahrazen ve stejném kosmidu kazetou vph, kódující rezistenci kviomycinu (30 mg/L). Tato inaktivační kazeta byla vytvořena PCR reakcí s pomocí primeru Jf a Jr obsahujících homologní úseky okolí genu ImbJ. Jako templát byl použit 1622 pb fragment vzniklý štěpením plazmidu pIJ781 restrikčními enzymy EcoRI a HindlII. Kmen E. coli BW25113 obsahující kosmid LK6 a plazmid pIJ790 s geny potřebnými pro rekombinaci byl postupně transformován inaktivačními kazetami. Kazety byly rekombinačně integrovány do kosmidu LK6 výměnou za geny ImbXa ImbJ. Takto připravený kosmid byl konjugačně vnesen do kmene S. lincolnensis ATCC 25466. Klony S.lincolnensis obsahující kazety byly selektovány na rezistenci k apramycinu a viomycinu. Pro eliminaci vlivu inaktivačních kazet na transkripci genů ve stejné transkripční jednotce bylo provedeno vyštěpení kazet pomocí FLP rekombinázy, kódované genem neseným na plazmidu pBT340. FLP rekombináza odstranila centrální části inaktivačních kazet a zanechala 81 pb dlouhé úseky DNA - Jizvy“, Mutovaný kosmid s jizvami byl pak vnesen do buněk streptomycetového kmene, který měl již geny ImbX a J nahrazeny za inaktivační kazety. Homologní rekombinaci se inaktivační kazety vyměnily za jizvy. Kultivační, selekční a transformační podmínky byly shodné s podmínkami uvedenými v příkladu 1.
Průmyslová využitelnost
Nově připravené deriváty linkomycinových antibiotik jsou využitelné pro vývoj nových účinných látek proti infekcím patogenních mikroorganismů. Tedy ve farmaceutickém průmyslu, lékařství.

Claims (7)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Způsob biotechnologické přípravy derivátů linkomycinu vyznačující se tím, že pro kultivaci je použit kmen Streptomyces lincolnensis ATCC 25466, který má inaktivovaný alespoň jeden gen ze sluku Imb kódující biosyntézu 4-L-propylprolinu, přičemž do kultivačního média musí být dodána náhrada za složku, jejíž syntéza je inaktivací zablokována.
  2. 2. Způsob biotechnologické přípravy derivátů linkomycinu podle nároku 1 vyznačující se tím, že inaktivovaný je gen ImbX pro biosyntézu 4-Lpropylprolinu.
  3. 3. Způsob biotechnologické přípravy derivátů linkomycinu podle nároku 2 vyznačující se tím, že jako náhrada za složku je do média přidáván derivát prolinu.
  4. 4. Použití kmene podle nároku 1 pro biotechnologickou přípravu biologicky aktivnějších derivátů linkomycinu.
  5. 5. Použití kmene podle nároku 4 který má inaktivované geny ImbJ a ImbX pro biotechnologickou přípravu biologicky aktivnějších derivátů linkomycinu.
  6. 6. Použití kmene podle nároku 4 který má inaktivovaný gen ImbX pro biotechnologickou přípravu biologicky aktivnějších derivátů linkomycinu.
  7. 7. Použití kmene podle nároku 4 který má inaktivovaný gen hnbJ pro biotechnologickou přípravu biologicky aktivnějších derivátů linkomycinu
CZ20090277A 2009-05-04 2009-05-04 Zpusob biotechnologické prípravy derivátu linkomycinu CZ302256B6 (cs)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ20090277A CZ302256B6 (cs) 2009-05-04 2009-05-04 Zpusob biotechnologické prípravy derivátu linkomycinu
PCT/CZ2010/000057 WO2010127645A2 (en) 2009-05-04 2010-05-04 The method of biotechnological preparation of lincomycin derivatives and its using

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ20090277A CZ302256B6 (cs) 2009-05-04 2009-05-04 Zpusob biotechnologické prípravy derivátu linkomycinu

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ2009277A3 true CZ2009277A3 (cs) 2010-11-18
CZ302256B6 CZ302256B6 (cs) 2011-01-12

Family

ID=43050536

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20090277A CZ302256B6 (cs) 2009-05-04 2009-05-04 Zpusob biotechnologické prípravy derivátu linkomycinu

Country Status (2)

Country Link
CZ (1) CZ302256B6 (cs)
WO (1) WO2010127645A2 (cs)

Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105566411B (zh) 2014-11-07 2020-11-13 中国科学院上海有机化学研究所 林可霉素生物合成中间产物及其制法和用途
CZ307305B6 (cs) 2017-03-10 2018-05-23 Mikrobiologický ústav AV ČR, v. v. i. Linkosamidy, jejich příprava a použití
CN107881190B (zh) * 2017-11-15 2021-02-09 安徽大学 通过改造林可链霉菌slcg_2919基因提高林可霉素产量的方法
CN111117942B (zh) * 2020-01-16 2021-05-25 华东理工大学 一种产林可霉素的基因工程菌及其构建方法和应用
CN114540212B (zh) * 2020-11-26 2023-11-03 浙江珲达生物科技有限公司 一种链霉菌及其发酵产来普霉素b的方法
CN119799607B (zh) * 2025-01-07 2025-07-22 合肥师范学院 通过改造林可链霉菌slcg_3904基因提高林可霉素产量的方法和应用

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3674647A (en) * 1970-10-07 1972-07-04 Upjohn Co Preparation of lincomycin analogues

Also Published As

Publication number Publication date
CZ302256B6 (cs) 2011-01-12
WO2010127645A2 (en) 2010-11-11
WO2010127645A3 (en) 2011-01-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Enghiad et al. Cas12a-assisted precise targeted cloning using in vivo Cre-lox recombination
Luo et al. Activation and characterization of a cryptic polycyclic tetramate macrolactam biosynthetic gene cluster
Zhou et al. Genome mining‐directed activation of a silent angucycline biosynthetic gene cluster in Streptomyces chattanoogensis
Ito et al. Deciphering pactamycin biosynthesis and engineered production of new pactamycin analogues
CN102219815B (zh) 六种台勾霉素类化合物及其制备方法和在制备抗菌药物中的应用
CZ2009277A3 (cs) Zpusob biotechnologické prípravy derivátu linkomycinu
RU2719189C2 (ru) Биосинтетический генный кластер карримицина
Song et al. Cytochrome P450-mediated hydroxylation is required for polyketide macrolactonization in stambomycin biosynthesis
Li et al. Mining of a streptothricin gene cluster from Streptomyces sp. TP-A0356 genome via heterologous expression
Wu et al. Improving gentamicin B and gentamicin C1a production by engineering the glycosyltransferases that transfer primary metabolites into secondary metabolites biosynthesis
Erb et al. Cloning and sequencing of the biosynthetic gene cluster for saquayamycin Z and galtamycin B and the elucidation of the assembly of their saccharide chains
Strobel et al. Tracking down biotransformation to the genetic level: identification of a highly flexible glycosyltransferase from Saccharothrix espanaensis
CN103215281B (zh) 一种格瑞克霉素和p-1894b的生物合成基因簇及其应用
Greule et al. Wide distribution of foxicin biosynthetic gene clusters in Streptomyces strains–An unusual secondary metabolite with various properties
Jian et al. Glycodiversification of gentamicins through in vivo glycosyltransferase swapping enabled the creation of novel hybrid aminoglycoside antibiotics with potent activity and low ototoxicity
Hu et al. 1.07-Bacterial Type II Polyketide Synthases
Limbrick et al. Methyltransferase contingencies in the pathway of everninomicin D antibiotics and analogues
CN105002106B (zh) 平板霉素和平板素的高产工程菌株及其发酵和分离纯化工艺
TWI601822B (zh) Uk-2生合成基因和使用彼以改善uk-2生產率之方法
EP2308970A1 (en) Antibiotic compositions, methods for providing the same and Streptomyces coelicolor mutants for use in such methods
Heide et al. Combinatorial biosynthesis, metabolic engineering and mutasynthesis for the generation of new aminocoumarin antibiotics
Tao et al. Functional characterization of tlmH in Streptoalloteichus hindustanus E465-94 ATCC 31158 unveiling new insight into tallysomycin biosynthesis and affording a novel bleomycin analog
CN116676353A (zh) 天蓝色链霉菌M145-chry及其在发酵生产金黄霉素中应用
Singh et al. Precursor for biosynthesis of sugar moiety of doxorubicin depends on rhamnose biosynthetic pathway in Streptomyces peucetius ATCC 27952
CN100387609C (zh) 新角蒽环聚酮类抗生素的制造方法

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20190504