CZ2008565A3 - Príprava monoklonálních protilátek proti FoxP3 proteinu s použitím modifikovaných virum podobných cástic Masonova-Pfizerova opicího viru - Google Patents

Príprava monoklonálních protilátek proti FoxP3 proteinu s použitím modifikovaných virum podobných cástic Masonova-Pfizerova opicího viru Download PDF

Info

Publication number
CZ2008565A3
CZ2008565A3 CZ20080565A CZ2008565A CZ2008565A3 CZ 2008565 A3 CZ2008565 A3 CZ 2008565A3 CZ 20080565 A CZ20080565 A CZ 20080565A CZ 2008565 A CZ2008565 A CZ 2008565A CZ 2008565 A3 CZ2008565 A3 CZ 2008565A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
protein
virus
particles
fusion protein
monoclonal antibodies
Prior art date
Application number
CZ20080565A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ301144B6 (cs
Inventor
Grznárová@Petra
Haubová@Šárka
Lipov@Ján
Ruml@Tomáš
Ulbrich@Pavel
Vorácková@Irena
Šimšová@Marcela
Matejková@Dobromila
Borovicková@Ivana
Anderová@Miroslava
Original Assignee
Vysoká škola chemicko technologická v Praze
Apronex S.R.O.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Vysoká škola chemicko technologická v Praze, Apronex S.R.O. filed Critical Vysoká škola chemicko technologická v Praze
Priority to CZ20080565A priority Critical patent/CZ2008565A3/cs
Publication of CZ301144B6 publication Critical patent/CZ301144B6/cs
Publication of CZ2008565A3 publication Critical patent/CZ2008565A3/cs

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Fúzní protein tvorený kapsidovým a nukleokapsidovým proteinem (CANC) Masonova-Pfizerova opicího viru (M-PMV) a interním peptidem FoxP3 proteinu, který je pripojen na N-konec CANC. Virum podobné cástice tvoren in vitro z takto modifikovaného proteinu. Použití modifikovaných cástic pro imunizaci zvírecích modelu a produkci monoklonálních protilátek.

Description

Oblast techniky:
Vynález se týká přípravy monoklonálních protilátek proti FoxP3 proteinu pro laboratorní a vědecké účely. Monoklonální protilátky jsou izolovány z laboratorních zvířecích modelů po jejich imunizaci modifikovanými virům podobnými částicemi Masonova--Pfizerova opičího viru.
Použití modifikovaných virových částic pro přípravu monoklonálních protilátek je založeno na poznatku, že přítomnost virových proteinů při imunizaci a simulace tvaru virových částic zvyšují imunitní odpověď cílového organismu.
Dosavadní stav techniky:
Produkce samotných protilátek proti komerčně zajímavým peptidům je důležitým odvětvím farmaceutického průmyslu, a proto je na výzkum v této oblasti kladen velký důraz. Nároky na protilátky jsou zejména z hlediska jejich specifity, kvality a zároveň co nejlevnější produkce velmi vysoké, Nová generace imunizačních protokolů je založena na obecně přijímaném poznatku, že přítomnost virových proteinů při imunizaci a simulace tvaru virových částic zvyšují imunitní odpověď cílového organismu. Byly tedy navrženy a připraveny různé typy vakcín, které obsahují části virových proteinů, nebo celé viry zbavené patogenity a byly jimi imunizovány živočišné organismy. Nespornou výhodou takto produkovaných protilátek je jejich vysoký titr v séru imunizovaného organismu a taky jejich vysoká specifita. Kromě toho je možné ze séra izolovat také protilátky proti všem virovým proteinům, které byly pro imunizaci užity.
FoxP3 protein je členem forkhead/winged-helix rodiny transkripčních regulátorů. Je specificky exprimován v lidských CD4+ a CD25+ regulačních T-buňkách. Protilátky proti tomuto proteinu jsou žádoucí hlavně pro experimentální a detekční účely. Zejména proto bylo přistoupeno k řešení problematiky jejich přípravy.
Modifikace virových částic s cílem exponovat na jejich povrch různé typy peptidů je v posledních letech vědci často využívaná metoda. Jsou známé i patentované postupy, kde například na N-konec hlavního obalového proteinu papilomavirů je fúzován příslušný peptid
-2cit* > « » I· •* · * t í · · ·· l i * Μ I »'· · jako část sekvence proteinu viru (mezinárodní přihláška číslo WO 99/50424). Známé je též vázání peptidů, resp. ligandů, na C-konec tzv. fiber proteinu adenovirů, čím je docíleno expozice ligandů na povrchu virové částice (mezinárodní přihláška číslo WO 99/36545). Nejčastěji jsou modifikované částice, například retrovirové, užívané k cílení do vybraných typů buněk s využitím v genových terapiích (mezinárodní přihláška Číslo WO 99/28488).
Retroviry patří do čeledi Retroviridae, dle morfogenetické cesty tvorby nezralých částic jsou retro viry děleny do dvou hlavních skupin, a to retroviry typu C (členem této skupiny je i Human immunodeficiency virus - HIV) a typů A, B a D, kam se řadí také Masonův-Pfizerův opičí virus (Mason-Pfizer monkey virus, dále M-PMV). Nezralá částice M-PMV je složena z proteinových prekursorů Gag, Gag-Pro a Gag-Pro-Pol umístěných pod fosfolipidovou membránou, dále ze dvou kopií genomové RNA, tRNA a dalších nespecifických virových RNA, transmembránových a povrchových glykoproteinů, které jsou zakotveny ve fosfolipidové membráně [1], Polyproteinový prekursor Gag má následovně uspořádaní: MA (matrixový protein) - PP (fosfoprotein) - protein pl2 - CA (kapsidový protein) - NC (nukleoprotein) - protein p4. Procesem maturace vzniká z nezralé virové Částice zralá virová částice. Jedná se o proces proteolytického štěpení polyproteinů Gag, Gag-Pro a Gag-Pro-Pol aktivovanou virovou proteasou na jednotlivé proteiny. Produkty tohoto štěpení se pak reorganizují do struktury zralé virové částice. Matrixový protein vytváří vnější obalu virionu, zatímco kapsidový protein tvoří jádro virové částice tzv. „core“, které obklopuje komplex genomové RNA a nukleokapsidového proteinu.
Polyproteinový prekursor Gag má schopnost asociovat a tvořit tak nezralou částici i za nepřítomnosti ostatních částí viru. Předchozí studie ukázaly, že exprese samotného genu gag je dostatečná pro tvorbu virům podobných částic v živočišných buňkách i v bakteriích [2, 3,4, 5]. U těchto částic, na rozdíl od nezralých virů, nedochází k jejich zrání, neobsahují povrchové glykoproteíny a nejsou ani infekční. Pomocí elektronové mikroskopie bylo zjištěno, že jsou svou velikostí í strukturou nerozlišitelné od nezralých virů. Dle RumlováKliková a kol. je fuzní protein tvořen kapsidovým (CA) a nukleokapsidovým proteinem (NC), dále CANC, postačující pro skládaní do viru podobné částici. Tento fuzní protein může být dokonce zkrácen o jeden motiv zinkových prstu v NC doméně bez významného vlivu na tvorbu částic. N-terminální prolin kapsidového proteinu má ovšem rozhodující vliv, a to na tvar částic vznikajících z CANC proteinu. Jestliže je deletován nebo skryt připojením dalšího proteinu, např. MA nebo pl2, dochází k tvorbě sférických částic, zatímco exprese CANC s koncovým prolinem vede ke skládání planámích útvarů [6]. Označením CANC je v našem případě míněn fuzní kapsidový - nukleokapsidový protein včetně jeho mutantů, u kterých je zachovaná schopnost tvořit viru podobné částice, například mutantů s deletovanou koncovou aminokyselinou prolin, dále CANCPro-, Byl navržen a zkonstruován vektor pro expresi CANC se sekvencí interního peptidu FoxP3 (FoxPJCANC) na N-konci. Prostřednictvím transformovaných buněk E.coli B121 (DE3) byly produkovány molekuly FoxP3CANC fuzního proteinu, tj. každá molekula CANC měla na svém N-konci fúzován interní peptid FoxP3. Pro složení molekul proteinů do viru podobných Částic je nutná jejich vzájemná αϊ' interakce, což představuje vznik komplexu 1500 * 2000 molekul fuzního proteinu pro složení jediné částice. Tím je na povrchu částice exponován ekvivalentní počet molekul FoxP3, čím se zvyšuje efektivita procesu imunizace.
Podstata vynálezu:
Podstatou vynálezu je příprava fuzního proteinu FoxP3CANC tvořeného kapsidovým a nukleokapsídovým proteinem Masonova-Pfízerova opičího viru, na jehož N-konec je připojen interní peptid FoxP3 proteinu sekvence QLSTVDAHARTPVLQ. Tento protein je vhodný pro přípravu monoklonálních protilátek.
Podstatou vynálezu je dále příprava monoklonálních protilátek pomocí modifikovaných retrovirových kapsid M-PMV, kdy na N-konec fuzního kapsidového a nukleokapsidového proteinu byl připojen interní peptid FoxP3 proteinu. Pro produkci protilátek je třeba aby byl peptid exponován na povrchu částice. Proto je nutné umístit sekvenci pro FoxP3 peptid na Nkonec sekvence CANC, kde je, jak je uvedeno výše, buď deletovaný N-terminální prolin nebo je tento danou sekvenci skryt, pro dosažení tvorby sférických částic, /Popi# obrázků nafeHtežeftýeh/ výkresech:
Obr, 1:
Na obrázku č.l je SDS PAGE analýza úspěšnosti izolace jednotlivých fuzních proteinů. V sloupci označeném l, je fuzní protein HisCANC, jehož velikost je 36,2 kDa, v sloupci označeném 2, je fuzní protein 3HisCANC, jehož velikost je 37,88 kDa, v sloupci 3 je fuzní protein lFlagCANC, jehož velikost je 36,4 kDa, v sloupci 4 je fuzní protein 3FlagCANC, jehož velikost je 38,4 kDa a v sloupci 5 je fuzní protein FoxPSCANC, jehož velikost je 37,03 kDa.
-4I 4 » f < ♦ í · ·*· t * · · · ·· ii t · » *I *
Obr. 2:
Jedná se o elektronmikroskopické snímky sbalených viru podobných částic. Na obrázku 2A je možné vidět viru podobné částice složené z fuzního proteinu HisCANC, které jsou různých velikostí, jsou prasklé a jsou v zanedbatelně malé koncentraci, proces skládaní byl tedy neúspěšný. Na obrázku 2B je zřejmé, že proces sbalování fuzního proteinu 3HisCANC byl taky neúspěšný. Pozorovali jsme jenom pozadí tvořené nesloženým proteinem a zřídka proteinové agregáty, které ale neměly strukturu ani velikost odpovídající viru podobné částici. Na obrázku 2C jsou složeny částice z fuzního proteinu FlagCANC. Jsou v dostatečné koncentraci a mají strukturu odpovídající viru podobné částici. Tento proces skládaní byl úspěšný a tyto viru podobné částice byly poskytnuty pro imunizaci zvířecích modelů. Z obrázku 2D je zřejmé, že proces skládání fuzního proteinu 3FlagCANC nebyl úspěšný. Pozorovali jsme jenom pozadí tvořené nesloženým proteinem a proteinové agregáty různých velikostí a tvarů. Na obrázku 2E jsou úspěšně složené viru podobné částice, které byly připraveny skládáním fúzního proteinu FoxP3CANC. Na obrázku jsou částice ve více vrstvách, proto je jejich struktura hůř pozorovatelná, nicméně tyto částice byly poskytnuty pro imunizace.
Příklady provedení vynálezu:
Příklad Č.I.:
Z kompletní aminokyselinové sekvence proteinu FoxP3 (s označením NP 054728 v NCBI genové databázi) byla pro omezení velikosti peptidu exponovatelného na povrchu viru podobné částici použita sekvence interního peptidu (QLSTVDAHARTPVLQ). Na základě této sekvence byly navrženy oligonukleotidové sekvence s přesahy, viz sekvence id. č.5, které jsou komplementární k přesahům vzniklým restrikčním štěpením příslušnými endonukleasami expresního vektoru pET22b. Byla připravena sekvence pro kapsidový a nukleokapsidový protein (CANC), viz sekvence id. č.4. Obě sekvence byly tigovány do vektoru, jehož schéma je na Obr.3. Takto připraveným konstruktem byla transformována E. coli BL21(DE3).
Příklad Č.2:
Fúzní protein FoxP3CANC byl zE. coli BL21(DE3) izolován lýzí a po převedení do fosfátového pufru (50mM NaH2PO4 + Na2HPO4, 500mM NaCI, pH 7,5) byl purifikován pomocí chelatačního nosiče “HiTrap™ Chelating HP Column“. Byla využita přítomnost motivů 2 zinkových prstů v nukleoproteinu, které mají afinitu k zinečnatým iontům vázaným na koloně. Po eluci proteinu z kolony a převedení proteinu do pufru s obsahem Tris-HCl (50mM Tris-HCl, lOOmM NaCl, 0,07% merkaptoetanol, ΙμΜ ZnSCU) a do fosfátového pufru (50mM NaH2PO4 + NaiHPCú, 500mM NaCl, 0,07% merkaptoetanol, ΙμΜ ZnSO^ byl protein zahuštěn na koncentraci 1 mg/ml. V této koncentraci byl použit k přípravě viru podobných částic in vitro.
Příklad č.3:
Viru podobné částice byly z fuzního proteinu FoxP3CANC připraveny dvě hodiny trvající dialýzou směsi sestávající z alikvotní části proteinu aalikvotního množství MS2 RNA (genomová RNA bakteriofága MS2, ale je možné použít i libovolnou jinou nukleovou kyselinu) proti pufru s obsahem 50mM Tris-HCl, lOOmM NaCl a ΙμΜ ZnSC>4 při pokojové teplotě za neustálého míchaní. Proces správného skládaní proteinu do viru podobných částic byl ověřován pomocí transmisní elektronové mikroskopie.
Příklad Č.4:
Připravenými viru podobnými částicemi byly imunizovány laboratorní myši kmene BALB/c (je možné použít i hybridní myši Ft (BALB/c x BIO.A)) třemi dávkami podávanými subkutánně ve čtrnáctidenních intervalech. Před zahájením imunizace a dále po druhé a třetí imunizační dávce byly odebírány vzorky krve. V séru připraveném z těchto vzorků byl stanoven titr protilátek u dané myši metodou detekce specifických protilátek v Terasakiho destičkách. Myším, jejichž sérum mělo nej silnější reakci, se aplikovala intraperitoneálně čtvrtá dávka antigenu (obvykle dvojnásobek předcházejících dávek). Imunizovaná myš byla usmrcena v souladu se zákonem 77/2004 Sb., v platném znění, na ochranu zvířat proti týrání. Z myší byla odebrána plná krev a slezina. Získané sérum se používá jako pozitivní kontrola při testu supematantů na obsah specifických protilátek. Část slezinných buněk byla resuspendovaná v kultivačním médiu, zcentriíugovaná a peleta byla resuspendováná v kultivačním médiu bez séra. Takto připraveny slezinné buňky byly smíchány s myelomovými buňkami, rovněž centrifugovanými a resuspendovanými v kultivačním médiu bez séra. Myelomové buňky byly připraveny týden před plánovanou fúzí, a to rozmražením a pasážovaním s cílem dosáhnout co největšího počtu rychle prolifcrujících buněk,
-6Mi · > * t r j · · · i » «· > · > · * zcentrifugováním a resuspendováním vbezsérovém médiu. Takto připravené myelomové buňky byly smíchávány se slezinnými buňkami v poměru 15x106 myelomových buněk k ať 6
10Qx200 x 10 slezinných buněk. Směs buněk byla následně centrifugovaná. Supematant byl odstraněn a buněčný sediment byl lehce roztřepán. Fúze byla provedena dle následujícího schématu:
0. - 1. min přidání 50% roztoku PEG (polyetylenglykol)...................I ml (pro vyvolání buněčných fúzí jsou používány roztoky polyetylenglykolů o molekulové w
hmotnosti 1000r6000 g/mol)
1. -2. min míchání
2. -3. min přidání bezsérového média.................1ml
3. -4, min přidání bezsérového média1 ml
4. - 7. min přidání bezsérového média.................7ml
Buněčná suspenze byla opět centrifugována, buněčný sediment byl resuspendován v selekčním HAT médiu (hypoxantin, aminopterin, thymidin, kompletní kultivační médium RPMI). Tato suspenze byla rozpipetována do mikrokultivačních destiček s předem připravenými podpůrnými buňkami. Čtrnáctý den po fúzi bylo HAT médium zaměněno za HT médium (hypoxantin, thymidin, kompletní kultivační médium RPMI) a za dalších sedm dní za kompletní kultivační médium. Supematant z dobře narostlých jamek byl testován na ar produkci specifických protilátek, Od každého pozitivního klonu byly vybrány 1 * 2 subklony, které se nechaly narůst. Supemanant od každého klonu pak byl podroben dalšímu testování pro stanovení specifity daného klonu.
Příklad č, 5
Postupem uvedeným v příkladech 1 a 2 jsme kromě FoxP3CANC připravili také 4 další fuzní polypeptidy. Na N-konec CANC proteinu jsme připojili sekvenci 6 histidinů, sekvenci 18 histidinů, sekvenci Flag (sekvence id. č.6) a sekvenci tří po sobě následujících Flag sekvencí. Jednotlivé fuzní proteiny, které byly produkovány po expresi vektorů v buňkách E. coli BL21(DE3), byly dle příslušného fúzovaného peptidu označeny jako HisCANC (sekvence 6 histidinů), 3HisCANC (sekvence 18 histidinů), FlagCANC (sekvence Flag), 3FlagCANC (sekvence tří po sobě následujících Flag sekvencí) a FoxP3CANC (interní peptid FoxP3 proteinu). Už při izolaci jednotlivých fůzních proteinů z buněk, se projevily rozdílné vlastnosti jednotlivých proteinů, a proto byly některé podmínky purifikace a izolace nutně modifikovány. Přehled úspěšnosti izolace jednotlivých fůzních proteinů, jejich složení do viru podobných částic a úspěšnost imunizace těmito částicemi je uvedena v tabulce č.1.
• « * t
· 4 ··««*· ’ » ’
7» a·· · a » a <
_ 4 a < a a a a · a a · < * «
Tabulka č.l Přehled úspěšnosti jednotlivých procesů, které jsou součástí přípravy monoklonálních protilátek.
+++ proces byl úspěšný vhledem ke koncentraci a čistotě produktu proces byl neúspěšný
Fúznl protein s exponovaným peptidem Vyizolovaný protein Složené částice Tvorba monoklonálních protilátek proti FoxP3
HisCANC +++ - -
3HisCANC +++ - -
FlagCANC +++ +++ -
3FlagCANC +++ - -
FoxP3CANC +++ +++ +++
I když izolace všech pěti fuzních proteinů byla úspěšná, viz Obr. č.l, proces skládaní proteinů do viru podobných částic byl úspěšný jen u dvou fuzních proteinů, a to FoxP3CANC a FlagCANC, viz Obr. č.2. Úspěšnost skládání byla zřejmě ovlivněna samotnými vlastnostmi jednotlivých aminokyselin v sekvenci peptidu, jenž byl fúzován na N-konec CANC. Konkrétně u proteinů HisCANC a 3HisCANC dochází k vysoké kumulaci bazických aminokyselin, což by mohlo mít za následek neschopnost jednotlivých molekul fuzních proteinů vzájemně intereagovat a skládat se do viru podobných částic. Jak je zřejmé z Obr.2 (A,B), bylo pozorováno zanedbatelné množství vytvořených částic, které ještě byly i značně poškozené. U 3 FlagCANC byla důvodem neúspěšného skládání proteinu zřejmě příliš dlouhá sekvence fúzovaného peptidu, jednalo se o 24 aminokyselin. Není tedy vůbec pravidlem, že po připojení libovolného peptidu na N-konec fuzního proteinu CANC dojde ke složení fuzního proteinu do viru podobné částice.
Ale ani úspěšná příprava složených viru podobných částic ještě není zárukou úspěšné produkce protilátek imunizovaným organismem. Na povrchu viru podobné částici exponovaný peptid totiž nemusí být dostupný buňkám imunitního systému. Povrch částice je poměrně členitý a tak délka exponovaného peptidu nemusí být postačující pro požadovaný přesah nad povrchové nerovnosti částice. Taky může dojít k různým konformačním ohybům řetězce peptidu. Konkrétně naše dva úspěšně složené proteiny FlagCANC a FoxP3CANC byly poskytnuty pro imunizace za stejných podmínek, Ze zvířete imunizovaného částicemi FlagCANC se ale nepodařilo izolovat protilátky proti danému peptidu, tedy Flag sekvenci, ale jenom protilátky proti samotným proteinům virové částice.
Podstata úspěšné přípravy monoklonálních protilátek tímto způsobem tedy spočívá ve zvolení správné aminokyselinové sekvence s optimálním uspořádáním jednotlivých aminokyselin a • ·
-8* · ·
taky ve správně zvolené délce této sekvence. Samotná technika je v porovnání s běžně užívanou technikou kovalentní vazby peptidu na adjuvans účinnější, V odborné literatuře z oblasti modelování a přípravy vakcín s použitím adjuvans se uvádějí problémy s velmi slabou nebo žádnou imunomodulační schopností použitého adjuvans a tedy velmi nízkým títrem požadovaných protilátek v organismu. Naopak u virových proteinů je imunomodulační schopnost velmi vysoká. Adjuvans jsou většinou složena z různých komponentů a jejich aplikace je Často doprovázena různými negativními reakcemi imunizovaného organismu. Adjuvans jsou různě chemicky a biologicky definována, ale i tak jsou často málo stabilní. Na sloučeniny, jenž mají být použity jako adjuvans, jsou kladeny vysoké nároky z hlediska jejich imunogenicity, biodegradabilnosti a biokompatibility. Protože se jedná o chemické sloučeniny připravované synteticky, je nevyhnutné zmapovat také jejich dlouhodobé působení na organismus z hlediska toxikologického. U některých typů vakcín užívajících jako nosič cílového peptidu adjuvans byla v cílovém organismu sledovaná indukce různých autoimunitních reakcí způsobených právě přítomností daného adjuvans [7], Složené virům podobné částice určené pro imunizace jsou hodně dobře skladovatelné, jsou velmi stabilní, l(Jf C i několik let, a protože se jedná o biologický materiál, nedochází k nežádoucí kumulaci n
v organismu.
Průmyslová využitelnost:
Modifikované viru podobné částice dle předloženého vynálezu jsou vhodné pro přípravu monoklonálnich protilátek proti FoxP3 proteinu, který je členem forkhead/winged-helix rodiny transkripčních regulátorů.
Reference:
1. Rawat S.S., Viard M., Gallo S., Rein A., Blumenthal R., Puri A.: Modulation of entry of enveloped viruses by cholesterol and sphingolipids, Mol.Membr Biol, 2003, vol. 20, p. 243254.
2. Kliková M., Rhee S., Hunter E., Ruml T.: Efficient in vivo and in vitro assembly of retroviral capsíds from Gag precursor proteins expressed in bakteria, Joumal of Virology, 1995, vol.69, p.1093-1098.
3. Parker S.D., Hunter E.: A Cell-Line-Specific Defect in the Intracellular Transport and Release of Assembled Retroviral Capsids, Joumal of Virology, 2000, vol.74, p.784-795.
• i t ♦ « 1 · · • · li
4. Rhee S.S., Hunter E.: Amino acid substitutions within the matrix protein of type D retroviruses affect assembly, transport and membrane association of a capsid, EMBO J., 1991, vol. 10, p.535-546.
5. Sakalian M., Parker S.D., Weldon R.A., Hunter E.: Synthesis and assembly of retrovirus Gag precursors into immature capsids in vitro, Joumal of Virology, 1996, vol.70, p.37063715.
6. Kliková-Rumlová M., Hunter E., Nermut M.V., Pichová I., Ruml T.: Analysis of MasonPfizer moneky virus Gag domains required for capsid assembly in bacteria: Role of Nterminal proline residue of CA in directing particle shape, Joumal of Virology, 2000, vol. 74, p.8452-8459.
7. Guy B., The perfect mix: recent progress in adjutant research, Nátuře Reviews, Mikrobiology, 2007, vol.5, p.505-515.
Přehled sekvencí:
Identifikační číslo: 1
Charakteristika: aminokyselinová sekvence modifikovaného fuzního kapsidového a nukleokapsídového proteinu s aminokyselinovou sekvencí peptidu FoxP3 (vyznačeno tlustým písmem) na N-konci.
MQLSTVDAHARTPVLQGSVTETVDGQGQAWRHHNGFDFAVIKELKTAASQYGAT APYTLAIVESVADNWLTPTDWNTLVRAVLSGGDHLLWKSEFFENCRDTAKRNQQAG NGWDFDMLTGSGNYSSTDAQMQYDPGLFAQIQAAATKAWRKLPVKGDPGASLTGV KQGPDEPFADFVHRLITTAGRIFGSAEAGVDYVKQLAYENANPACQAAIRPYRKKTD LTGYIRLCSDIGPSYQQGLAMAAAFSGQTVKDFLNNKNKEKGGCCFKCGKKGHFAK NCHEHAHNNAEPKVPGLCPRCKRGKHWANECKSKTDNQGNPIPPHQGNGWRGQPQ APKQAY
Identifikační číslo: 2
Charakteristika: aminokyselinová sekvence proteinu FoxP3 s vyznačeným interním peptidem (vyznačeno tlustým písmem), který byl použit pro N-terminální fúzí s CANC.
MPNPRPGKPSAPSLALGPSPGASPSWRAAPKASDLLGARGPGGTFQGRDLRGGAHAS SSSLNPMPPSQLQLPTLPLVMVAPSGARLGPLPHLQALLQDRPHFMHQLSTVDAHAR » « . .......
-10 - ·· *· *·
TPVLQVHPLESPAMISLTPPTTATGVFSLKARPGLPPGINVASLEWVSREPALLCTFPN PSAPRKDSTLSAVPQSSYPLLANGVCKWPGCEKVFEEPEDFLKHCQADHLLDEKGRA QCLLQREMVQSLEQQLVLEKEKLSAMQAHLAGKMALTKASSVASSDKGSCCIVAAG SQGPVVPAWSGPREAPDSLFAVRRHLWGSHGNSTFPEFLHNMDYFKFHNMRPPFTY ATLIRWAILEAPEKQRTLNEIYHWFTRMFAFFRNHPATWKNAIRHNLSLHKCFVRVE SEKGAVWTVDELEFRKKRSQRPSRCSNPTPGP
Identifikační číslo: 3
Charakteristika: aminokyselinová sekvence fuzního kapsidového a nukleokapsidového proteinu s naznačenou delecí terminální aminokyseliny prolin (vyznačeno tlustým písmem), která vede ke vzniku mutanta CANCPro-.
PVTETVDGQGQAWRHHNGFDFAVIKELKTAASQYGATAPYTLAIVESVADNWLTPT DWNTLVRAVLSGGDHLLWKSEFFENCRDTAKRNQQAGNGWDFDMLTGSGNYSSTD AQMQYDPGLFAQIQAAATKAWRKLPVKGDPGASLTGVKQGPDEPFADFVHRLITTA GRIFGSAEAGVDYVKQLAYENANPACQAAIRPYRKKTDLTGYIRLCSDIGPSYQQGL AMAAAFSGQTVKDFLNNKNKEKGGCCFKCGKKGHFAKNCHEHAHNNAEPKVPGLC PRCKRGKHWANECKSKTDNQGNPIPPHQGNGWRGQPQAPKQAY
Identifikační číslo: 4
Charakteristika: DNA sekvence fuzního kapsidového a nukleokapsidového proteinu s naznačenou delecí kodonu pro koncovou aminokyselinu prolin (vyznačeno tlustým písmem), která vede k vzniku mutanta CANCPro-,
CCAGTGACTGAAACCGTTGATGGGCAAGGTCAAGCCTGGAGACACCATAATGGT TTTGATTTTGCCGTCATAAAAGAATTAAAAACAGCTGCTTCCCAATATGGGGCTA CTGCCCCATACACATTAGCCATAGTGGAATCTGTAGCGGACAATTGGCTTACCCC TACAGATTGGAATACGCTTGTTAGGGCAGTCCTCTCAGGAGGAGATCACTTACTG TGGAAATCTGAGTTTTTTGAAAATTGCAGAGATACGGCTAAAAGAAACCAACAA GCCGGTAATGGCTGGGATTTTGACATGTTAACAGGTTCGGGTAATTATTCCAGCA CCGATGCACAAATGCAGTATGATCCAGGATTGTTTGCTCAAATTCAAGCGGCTGC TACAAAAGCCTGGAGAAAACTTCCCGTTAAGGGAGACCCAGGAGCCTCCCTTAC AGGAGTCAAACAAGGACCCGATGAGCCATTTGCAGATTTCGTACACAGACTTATA
I · g 4*1 II···» · · <
♦ .«*»*·* 4
-]]- ····· I* * · ♦· “
ACAACTGCTGGGAGAATCTTTGGAAGTGCTGAGGCCGGTGTAGACTATGTAAAAC
AACTAGCATATGAAAATGCTAATCCAGCTTGTCAGGCAGCCATTCGCCCCTATAG
AAAGAAGACAGATTTAACTGGCTATATCCGTCTTTGCTCGGATATTGGGCCCTCTT ATCAGCAAGGCCTGGCCATGGCCGCCGCCTTTAGCGGGCAGACTGTAAAAGATTT TCTTAACAACAAAAATAAAGAGAAAGGAGGGTGTTGCTTTAAATGCGGTAAAAA AGGACACTTTGCAAAAAATTGTCATGAACATGCACATAACAATGCTGAACCAAA AGTTCCCGGACTCTGCCCTAGATGTAAAAGAGGGAAACATTGGGCCAATGAATG CAAATCCAAAACTGATAATCAAGGAAACCCAATACCACCCCATCAGGGAAACGG GTGGAGGGGCCAGCCCCAGGCCCCGAAACAAGCTTAT
AGTTCCCGGACTCTGCCCTAGATGTAAAAGAGGGAAACATTGGGCCAATGAATG CAAATCCAAAACTGATAATCAAGGAAACCCAATACCACCCCATCAGGGAAACGG GTGGAGGGGCCAGCCCCAGGCCCCGAAACAAGCTTATTAAC
Identifikační číslo: 5
Charakteristika: DNA sekvence interního peptidu FoxP3 proteinu.
TATGCAACTCTCAACGGTAGATGCCCACGCCCGAACCCCTGTGCTTCAGG
Identifikační číslo: 6
Charakteristika: aminokyselinová sekvence peptidu Flag, který byl použit pro N-terminální fúzi s CANC.
DYKDDDDK

Claims (8)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Fúzní protein FoxP3CANC tvořený kapsidovým a nukleokapsidovým proteinem
    Masonova-Pfizerova opičího viru, na jehož N-konec je připojen peptid sekvence QLSTVDAHARTPVLQ.
  2. 2. Fúzní protein dle nároku 1, který má sekvenci id. č. 1.
  3. 3. Viru podobné částice tvořené fiizním proteinem dle nároků 1 nebo 2.
  4. 4. Molekula nukleové kyseliny kódující fuzní protein dle nároku 1 nebo 2.
  5. 5. Expresní vektor obsahující molekulu nukleové kyseliny dle nároku 4.
  6. 6. Hostitelská buňka obsahující vektor dle nároku 5.
  7. 7. Hostitelská buňka dle nároku 6, kterou je E. coli B121 (DE3).
  8. 8. Použití fůzního proteinu FoxP3CANC dle kteréhokoli z nároků 1 a 2 pro přípravu monoklonálních protilátek proti FoxP3 proteinu.
CZ20080565A 2008-09-15 2008-09-15 Príprava monoklonálních protilátek proti FoxP3 proteinu s použitím modifikovaných virum podobných cástic Masonova-Pfizerova opicího viru CZ2008565A3 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ20080565A CZ2008565A3 (cs) 2008-09-15 2008-09-15 Príprava monoklonálních protilátek proti FoxP3 proteinu s použitím modifikovaných virum podobných cástic Masonova-Pfizerova opicího viru

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ20080565A CZ2008565A3 (cs) 2008-09-15 2008-09-15 Príprava monoklonálních protilátek proti FoxP3 proteinu s použitím modifikovaných virum podobných cástic Masonova-Pfizerova opicího viru

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ301144B6 CZ301144B6 (cs) 2009-11-18
CZ2008565A3 true CZ2008565A3 (cs) 2009-11-18

Family

ID=41297127

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20080565A CZ2008565A3 (cs) 2008-09-15 2008-09-15 Príprava monoklonálních protilátek proti FoxP3 proteinu s použitím modifikovaných virum podobných cástic Masonova-Pfizerova opicího viru

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ2008565A3 (cs)

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1044274A2 (en) * 1998-01-16 2000-10-18 Genzyme Corporation Adenoviral vectors with modified capsid proteins
GB9806666D0 (en) * 1998-03-27 1998-05-27 Stanley Margaret Antigen preparation and use
TWI441648B (zh) * 2007-01-03 2014-06-21 Oncotherapy Science Inc Foxp3胜肽疫苗

Also Published As

Publication number Publication date
CZ301144B6 (cs) 2009-11-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU2020200303B9 (en) Novel multivalent nanoparticle-based vaccines
TWI227242B (en) Peptide composition for prevention and treatment of HIV infection and immune disorders
US9109011B2 (en) Dendritic cell-specific antibody conjugate comprising anti-CD40 monoclonal antibodies conjugated to HIV-1 Gag/Nef
US5747334A (en) Random peptide library
Adamson et al. The molecular basis of HIV capsid assembly—five years of progress
Taylor et al. Influence of three‐dimensional structure on the immunogenicity of a peptide expressed on the surface of a plant virus
US7628987B2 (en) Vectors derived from antibodies for transferring substances into cells
RU2677799C2 (ru) Модифицированные суперспиральные белки с улучшенными свойствами
JPH06303987A (ja) 細胞への核酸運搬方法
Sharifzadeh et al. A review of virus-like particle-based SARS-CoV-2 vaccines in clinical trial phases
JPH06504907A (ja) 抗原発現キメラタンパク質
CN106255699A (zh) 细胞穿透肽和使用其输送生物活性物质的方法
CN112089831A (zh) 重组新型冠状病毒亚单位疫苗的制备方法
CN114703204A (zh) 猫细小病毒vp2蛋白及所得自主组装病毒样颗粒
US20160000901A1 (en) Compositions and Methods for the Production of Virus-Like Particles
Tan et al. Recombinant turnip yellow mosaic virus coat protein as a potential nanocarrier
JP7062595B2 (ja) 複合ポリペプチド単量体、細胞浸透機能を有する当該複合ポリペプチドの単量体の会合体、及び、当該会合体を有効成分とする皮下、皮内、経皮又は筋肉内投与用ノロウイルスコンポーネントワクチン
CA2077277A1 (en) Cellular immunity vaccines from bacterial toxin-antigen conjugates
CZ2008565A3 (cs) Príprava monoklonálních protilátek proti FoxP3 proteinu s použitím modifikovaných virum podobných cástic Masonova-Pfizerova opicího viru
Ogrina et al. Bacterial expression systems based on Tymovirus-like particles for the presentation of vaccine antigens
KR20140135771A (ko) Hiv-1 gp41 프리-헤어핀 중간체의 안정한 펩티드 모방체
Yang et al. Convenient auto-processing vector based on bamboo mosaic virus for presentation of antigens through enzymatic coupling
WO2024130671A1 (zh) 一种细胞穿膜肽及其应用
JP7651129B2 (ja) ウイルスの非構造タンパク質が担持された複合タンパク質単量体、当該単量体の会合体、及び当該会合体を有効成分とするコンポーネントワクチン
CN120441714A (zh) 一种广谱性冠状病毒蛋白嵌合型纳米颗粒疫苗及其制备方法与应用

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20150915