CS240247B1 - Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 8-aminopenicilánovou kyselinu a kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 - Google Patents

Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 8-aminopenicilánovou kyselinu a kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 Download PDF

Info

Publication number
CS240247B1
CS240247B1 CS844084A CS844084A CS240247B1 CS 240247 B1 CS240247 B1 CS 240247B1 CS 844084 A CS844084 A CS 844084A CS 844084 A CS844084 A CS 844084A CS 240247 B1 CS240247 B1 CS 240247B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
acid
microorganisms
nitrogen
strain
cryptococcus
Prior art date
Application number
CS844084A
Other languages
English (en)
Inventor
Vladimir Vojtisek
Zdenka Hunkova
Vladimir Krumphanzl
Antonia Jakubova
Michal Bucko
Emil Miklas
Miroslav Barta
Karel Culik
Original Assignee
Vladimir Vojtisek
Zdenka Hunkova
Vladimir Krumphanzl
Antonia Jakubova
Michal Bucko
Emil Miklas
Miroslav Barta
Karel Culik
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Vladimir Vojtisek, Zdenka Hunkova, Vladimir Krumphanzl, Antonia Jakubova, Michal Bucko, Emil Miklas, Miroslav Barta, Karel Culik filed Critical Vladimir Vojtisek
Priority to CS844084A priority Critical patent/CS240247B1/cs
Publication of CS240247B1 publication Critical patent/CS240247B1/cs

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Řešení se týká způsobu selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolýzujících fenoxymethylpenicilin ňa kyselinu 6-aminopenieilánovou a Je vyznačen tím, že se kultury mikroorganismů naočkují do selektivního média, kde jako jediný zdroj asimilovatelného dusíku, a/nebo jak dusíku, tak uhlíku slouží fenoxyacetamid, 3-fenylpropionamid, 4-hydroxyfenoxyacetamid, fenylakrylamld, a/nebo, kde jako jediné zdroje asimilovatelného uhlíku slouží soli kyseliny 3-fenylprópionové, fenylakrylové, fenoxyoctové a 4-hydroxyfenoxyoctové, popřípadě s amidy těchto kyselin, sloužících jako jediné zdroje asimilovatelného dusíku, nebo s anorganickým zdrojem dusíku, výhodně s amonnými ionty, přičemž vyrostlé kultury mikroorganismů se v těchto půdách pasážují tak dlouho, až se nezvyšuje růstová rychlost, načež se vyrostlá kultura vyočkuje a konzervuje. Vynález se rovněž týká kmene mikroorganismu Cryptococcus sp., CCY 17-22-1 produkujícího vnitrobuněčnou V-penicilin amidázu, která přednostně hydrolyzuje fenoxymethylpenicilin na 6-aminopenicilanovou kyselinu.

Description

Vynález se týká způsobu selekce a nahromadování kmenů mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 6-amlnopenicilánovou kyselinu a kmene mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1.
Je známo, že kyselina 6-aminopenicilánová (dále jen 6-APK) slouží Jako meziprodukt pro výrobu tzv. polosyntetických penicilinů, např. ampicilinu. 6-APK lze připravit z přírodních penicilinů, tj. z benzylpenicillnu (G-penicilinu) nebo fenoxymethylpenicilinu (V-penicilinu), bud chemicky, nebo enzymovou hydrolýzou. Chemická hydrolýza přírodních penicilinů je ekonomicky nevýhodná. Naproti tomu enzymová hydrolýza má podstatně lepší ekonomické parametry, čehož je využíváno pro výrobu 6-APK řadou zahraničních farmaceutických firem.
Ve většině případů ve světě, a rovněž i v Československu, je 6-APK vyráběna enzymovou hydrolýzou benzylpenicilinu. K tomuto účelu byly získány vysokoprodukční kmeny bakterií syntetizující vysoké množství enzymu G-penicilin amidázy, např. kmeny Escherichia coli podle čs. autorských osvědčení č. 162 274 a 188 631.
Fenoxymethylpenicilin (V-penicilin) je však enzymově hydrolyzován bakteriálními kmeny jen velmi vzácně. Např. bylo popsáno pouze několik kmenů bakterií z rodů Erwinia, Achromobacte, Micrococcus, Streptomyces a Actinoplanes, které jsou schopny syntetizovat specifickou V-penicilin amidázu hydrolyzující V-penicilin za vzniku 6-APK. Popisované produkce tohoto enzymu u zmíněných rodů bakterií jsou však velice nízké, u některých druhů je enzym syntetizován extracelulárně (Streptomyces), takže tyto kmeny bakterií nemají v podstatě pro výrobu 6-APK průmyslový význam (Vandamme, E. J., Economic Microbiology, Microbial Enzymes and Bioconversions, Rose, A. H., ed., Vol. 5, Chapter 9, pp. 467 až 522, Acad. Press, New York, 1980].
Citovaný autor naproti tomu uvádí, že u některých eukaryontních mikroorganismů je výskyt V-penicilin amidázy více rozšířen, zejména u některých kvasinek (např. rodyTorulopsis, Zygosaccharomyces, Debaryomyces, Torula, Rhodotorula), plísní (např. rody Penicillium, Aspergillus, Fusarium) a vyšších hub (např. rody Pleurotus, Bovista). Nejlepšími producenty V-penicilin amidázy jsou některé kmeny vyšších hub, zejména Pleurotus ostreatus a Bovista plumbea.
Zvládnutí kultivace těchto organismů ve velkokapacitných fermentorech je pro vysoké náklady na řízení kultivace, složení živné půdy a sterilitu kultury při její dlouhodobé submersní kultivaci (řádově 150 až 200 hodin) značně náročné.
Doposud bylo charakterizováno v základních parametrech jen velmi málo producentů V-penicilin amidáz. Ve většině případů jsou informace uvedeny u plísní a vyšších hub, ojediněle u bakterií a pouze v jednom případě u kvasinek, Rhodotorula glutinis var.
glutinis (Vandamme, E. J. a Voets, J. P., Zeít. Allg. Microblol. 13, 701—710, 1973). Použitím silně koncentrované suspenze intaktních buněk této kvasinky bylo dosaženo 80 % teoretické konverze l°/o (hmota/objem) vodného roztoku draselné soli V-penicilin.u na 6-APK (28 °C, pH 6,5, reakční doba 30 hodin).
Postup podle vynálezu spočívá v tom, že lze selektovat suspektní kmeny přírodních a sbírkových mikroorganismů s V-penicilin amidázovou aktivitou v tekutých nebo na pevných chemicky definovaných živných půdách, kde jako jediný zdroj asimiíovatelného dusíku a/nebo jak dusíku, tak uhlíku slouží fenoxyacetamid, 3-fenylpropionamid, fenylakrylamid (amid skořicové kyseliny) nebo jejich deriváty, přičemž schopnost růstu enzymově aktivních buněk s požadovanou aktivitou je indikována přírůstkem turbidity nebo tvorbou kolonií, popřípadě růstem kmenů v přítomnosti soli kyseliny 3-fenylpropionové, fenylakrylové (skořicové) a fenoxyoctové nebo jejich derivátů, které slouží jako jediné zdroje asimilovátelného uhlíku v chemicky definované živné půdě. Jednorázovou selekci a pasážování v živných půdách obsahující tyto sloučeniny a jejich deriváty lze kombinovat se sekvenční selekcí v libovolných kombinacích z hlediska utilizace, indukce a substrátové specifity enzymu. Tak. lze např. získat kmeny rychle rostoucí na utilizovatelných induktorech syntézy apod.
Jednorázovou a sekvenční selekcí, kterým předcházel rozsáhlý screening sbírkových a přírodních izolátů, byl uvedeným způsobem získán kmen mikroorganismů Cryptococcus sp. CCY 17-22-1, který je rovněž předmětem vynálezu a jehož vlastnosti, především vysoká specifická aktivita V-penicilin amidázy, intracelulární lokalizace enzymu a nepřítomnost /í-laktamázy, dovolují reálný předpoklad jeho využití k enzymové přípravě 6-APK z V-penicilinu pomocí intaktních buněk oddělených od kultivační kapaliny, imobilizovaných buněk, popřípadě může tento kmen sloužit jako zdroj enzymu pro jeho následnou izolaci a jeho další použití v rozpustné nebo imobilizované formě. Základní morfologické a biochemické vlastností předmětného kmene a vlastnosti ve vztahu k základní charakterizaci enzymu u intaktních buněk jsou uveteny v následujícím souhrnu.
Vlastnosti kmene Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 '
Základní vlastnosti kmene
Kvasinka, dqbře rostoucí na sladinovém agaru, tvoří krémové kolonie, polární pučení, světlolomné pouzdro. Při růstu v živných půdách obsahujících rychle asimilovatelné zdroje uhlíku (glukóza) tvoří extra240247 celulární silně viskozní polysacharid. Tvorbu extracelulárního polysacharidu lze eliminovat složením živné půdy a poměry C : : N. Roste dobře na kokuřičném extraktu, směsích aminokyselin a kvasničném hydrolyzátu. Rovněž roste dobře na chemicky definovaných minerálních živných půdách s vhodným zdrojem uhlíku; jako zdroj dusíku využívá amonné ionty.
Růst na níže uvedených sloučeninách jako Vlastnosti kmene ve vztahukV-penicilin
1. lokalizace enzymu;
2. přítomnost /3-laktamázy:
3. indukce syntézy enzymu:
4. substrátová specifita enzymu:
5. katabolická represe syntézy enzymu:
6. Optimum pH aktivity enzymu:
7. Specifická aktivita intaktních buněk*
8. Produkty enzymové přeměny:
jediných zdrojích asimilovatelného uhlíku v tekutých.živných půdách.
Glukóza ( + ), sacharóza ( + ), fruktóza ( + ), galaktóza (—), laktóza (+), glycerol (—), DL-laktát ( — ), sukcinát ( + ), citrát ( + ), ethanol ( + ], soli kyseliny fenyloctové (—), fenoxyoctové (—), 4-hydroxyfenoxyoctové (—), 3-fenylpropionové ( + ), fenylakrylové ( + ).
láze u intaktních buněk intracelulární;
negativní;
kyselina 3-fenylpropionová (+++), fenylakrylová ( + + ), 4-hydroxyfenoxyoctová (++), fenoxyoctová ( + ), fenyloctová ( —); V-penicilin (+++), G-penicilin ( —), ampicilin ( —), monoamid kyseliny glutarové (++), fenoxyacetamid (+), 4-hydroxyfenoxyacetamid ( + ), 3-fenylpropionamid. ( —), amid kyseliny fenylakrylové ( + ), fenylacetamid (—);
V přítomnosti glukózy a sacharózy se enzym nesyntetizuje, i když je přítomen kterýkoliv z induktorů jeho syntézy;
8,0;
0,5 až 12,0 ,«mol 6-APK. mg 1 suché hmoty buněk. Dosažená specifická aktivita závisí na složení živné půdy, kultivačních podmínkách a fyziologickém stavu kultury; Chromatografií na tenké vrstvě celulózy a vysokotlakou kapalinovou chromatografií bylo prokázáno, že při styku intaktních buněk s vodnými roztoky K-soli V-penicilinu, vzniká pouze 6-APK a fenoxyoctová kyselina.
* Jednotka enzymové aktivity V-penicilin amidázy je takové množství enzymu, které katalyzuje hydrolýzu vodného roztoku K-soli V-penicilinu jako substrátu, za vzniku jednoho mikromolú 6-APK v jednom mililitru za jednu hodinu v podmínkách enzymové reakční kinetiky nultého řádu při pH 8,0 a teplotě 37 °C. Rozměr aktivity: gmol 6-APK . ml-1. h'1; rozměr specifické aktivity: μίησί 6-APK. mg-1 suché hmoty buněk. Ke stanovení koncentrace 6-APK byl použit postup uvedený v čs. patentovém spisu č. 116 959.
Podle morfologického, růstového a biochemického chování kultury byl získaný kmen zařazen do rodu Cryptococcus v souhlase s taxonomickými kritérii uvedenými v: The Yeasts, A taxonomie study, second edition, J. Lodder, ed., Nórth-Holland Publishing Company — Amsterdam — London, 1970; J. A. Barnett, R. W. Payne and D. Yarrow, Yeasts, Characterization and Identification, Cambridge, London, New York, New Rochelle, Melbourne, Sydney, 1983. Předmětný . produkční kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. le uložen v čs. sbírce kvasinek (Czechoslovak Collection of Yeasts) v Bratislavě pod č. CCY 17-22-1.
Podstata způsobu jednorázové a sekvenční selekce a nahromaďování kmenů mikroorganismů, zvláště kvasinek, hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 6-amlnopenicilánovou kyselinu podle vynálezu spočívá v tom, že se kultury mikroorganismů naočkují do selektivních chemicky definovaných živných půd, kde jako jediný zdroj asimilovatelného dusíku, a/nebo jak dusíku, tak uhlíku slouží fenoxyacetamid, 4-hydroxyfenoxyacetamid, 3-fenylpropionamid, fenylakrylamid, a/nebo, kde jako jediné zdroje asimilovatelného Uhlíku slouží soli, kyseliny 3-fenvlpropionové, fenylakrylové, fenoxyoctové, hydro syfenoxyoctové, popřípadě s amidy těchto· kyselin sloužících jako jediné zdroje asimilovatelného dusíku, nebo s anorganickým zdrojem dusíku, výhodně s amonnými ionty, přičemž vyrostlé kultury mikroorganismů se v těchto půdách pasážují tak dlouho, až se nezvyšuje růstová rychlost, načež se vyrostlá kultura vyočkuje a konzer-. vuje.
Předmětem vynálezu je dále kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1, který byl získán postupem uvedeným v předchozím odstavci, a který produkuje vnitrobuněčnou V-penicilin amidázu, která přednostně hydrolyzuje fenoxymethylpenicilin na , 6 -aminopenicilánovou kyselinu.
Vynález je dále doložen v příkladech provedení aniž' by se jimi omezoval.
Příklad 1 sbírkových a 8 z přírody izolovaných kmenů kvasinek, které bylo možno podle citované literatury uvedené v popisu předmětného vynálezu taxonomicky zařadit do rodů Saccharomyces, Debaryomyces, Candida, Cryptococcus, Rhodotorula, Torulopsis a Trichosporon, byly naočkovány kličkou ze šikmého hladinového agaru do baněk obsahujících 50 ml tekuté živné půdy o složení: fenoxyacetamid 0,2 °/o, glukóza 0,5 až 1,0 proč. KH2PO4 0,1 %, K2HPO4 0,2 %, kvasničný extrakt 0,05 °/o, MgSO4 0,05 °/o, Na-sůl fenoxyoctové kyseliny0,05 %; pH živné půdy 6,5. Naočkované kultury v baňkách byly umístěny na třepací stroj a submersní kultivace probíhala při 28 °C.
Z testovaných 30 kmenů vyrostlo za uvedených podmínek za různou dobu 19 kultur. Po odstředění suspenze byl analyzován buněčný sediment s cílem průkazu tvorby 6-APK z V-penicilinu postupy uvedenými v popisu předmětného vynálezu. Ani u jedné z vyrostlých kultur však nebyla prokázána aktivita V-penicilin amidázy.
Dále bylo postupováno tak, že 11 nerostoucích kmenů bylo z dalšího výběru vyřazeno a 19 rostoucích kmenů v živné půdě, kde fenoxyacetamid sloužil jako jediný zdroj dusíku, bylo naočkováno do baněk obsahujících 50 ml neselektivní tekuté živné půdy o složení: hydrolyzát kaseinu 0,5 %, pepton 0,5%, kvasničný extrakt 0,1 %, KH2PO4 0,3 %, NH4H2PO4 0,5 %, MgSO4 0,05 %, Na-sůl fenoxyoctové kyseliny 0,05 °/o; pH živné půdy 6,5. Naočkované kultury v baňkách byly umístěny na třepací stroj a submersní kultivace probíhala při 28 °C 24 až 48 hodin. Sedimenty intaktních buněk po odstředění byly opět analyzovány na průkaz tvorby 6-APK z V-penicilinu.
U 19 kultur vyrostlých za uvedených podmínek byla u 5 kmenů analyticky prokázána tvorba 6-APK z V-penicilinu. Jednalo se o kmeny Candida utilis, Rhodotorula sp., Rhodotorula pulcherina, Rhodotorula glutinis a Cryptococcus sp.
Uvedených 5 kmenů bylo v dalším užším výběru hodnoceno kvantitativně na množství produkované V-penicilin amidázy. Kultury byly naočkovány do baněk obsahujících 50 ml tekuté neselektivní živné půdy o složení: kukuřičný extrakt — vysrážený, filtrovaný 2 '% (vlhká hmota), KH2PO4 0,1 °/o, KaHPO4 0,2 °/o, MgSO4 0,05 θ/o, Na-sůl fenoxyoctové kyseliny 0,05 %; pH živné půdy 6,9. Submersní kultivace probíhala při 28 stupních Celsia po dobu 30 hodin. Po odstředění kultur byly sedimenty kvantitativně analyzovány na obsah V-penicilin amidázy v buňkách.
U všech kmenů byla prokázána specifická aktivita tohoto enzymu, avšak kvantitativní rozdíly mezi kmeny vyrostlými za uvedených podmínek byly až několikařádové. Nejvyšší specifické aktivity bylo dosaženo u kmene Cryptococcus sp. (0,28 μΐηοΐ 6-APK. .mg-1 suché hmoty buněk) a Rhodotorula glutinis (0,012 μΐηοΐ 6-APK . mg1 suché hmoty buněk). Pro další selekci a nahromaďování výše produkčních kmenů byl proto zvolen jako výchozí materiál kmen Cryptococcus sp., neboť jeho specifická aktivita byla více jak řádově vyšší ve srovnání s druhým získaným izolátem.
P ř í k 1 a d 2
Při zkoumání specifity indukce V-penicilin amidázy během submersní kultivace kmene Cryptococcus sp. v živných půdách obsahujících sloučeniny chemicky identické nebo chemicky blízké postranním řetězcům přirozených a polosyntetických penicilinů bylo zjištěno, že nejvyšších specifických aktivit enzymu v buňkách je dosahováno v přítomnosti solí 3-fenylpropionové, 4-hydroxyfenoxyoctové, skořicové a fenoxyoctové kyseliny. Tato skutečnost je uvedená v přehledné charakterizaci kmene Cryptococcus sp. v popisu předmětného vynálezu. Některé z uvedených sloučenin jsou využívány jako jediné zdroje asimilovatelného uhlíku, jiné nikoliv. Některé tyto látky tedy fungují jako asimilovatelné induktory, jiné jako „zdaťma“ induktory. Těchto poznaných skutečností bylo využito k volbě selektivní chemicky definované živné půdy s cílem selekce a nahromaďování rychle rostoucích kmenů na uvedených sloučeninách jako jediných zdrojích asimilovatelného uhlíku, zvláště proto, že většina těchto látek je silně toxická a inhibuje růst.
Kmen Cryptococcus sp., který byl získán, jak je uvedeno v příkladu 1, byl očkován ze šikmého sladinového agaru do baněk obsahujících 150 ml tekuté živné půdy o složení: kukuřičný extrakt — vysrážený, filtrovaný 2 % (vlhká hmota), KH2PO4 0,1 K2HPO4 0,2 °/o, kvasničný extrakt 0,05 %, thiamin 0,01 °/o, MgSO4 0,05 %, K-sůl 3-fenylproplonové kyseliny 0,1 %, pH živné půdy 7,2. Submersní kultivace probíhala při 28 °C po dobu 24 hodin.
Vyrostlá kultura byla použita jako inokulum (5 obj. % suspenze) k očkování baněk obsahujících 150 ml tekuté živné půdy o složení: K-sůl 3-fenylpropionové kyseliny 0,5 %, KH2PO4 0,2 %, NaCl 0,05 %, kvasničný extrakt 0,03 °/o, (NH4j2SO4 0,3 °/o, NH4H2PO4 0,2 %, CaCl2 0,002 %, FeSO4 0,0005 proč. MgSO4 0,01 °/o; pH živné půdy 7,3.
Submersní kultivace probíhala střídavým pasážováním kultur při 28 °C vždy přenosem 5 obj. '% vyrostlé kultury ze súbkultury prvé do druhé, z druhé do třetí apod. První subkultura vyrostla za 120 hodin při dosažení suché hmoty buněk při přibližně 1 mg. ml1, druhá subkultura za 70 hodin při dosažení téže sušiny, třetí subkultura za 50 hodin, čtvrtá za 70 hodin a pátá subkultura za 45 hodin při dosažení 1,2 mg su240247 siny. ml-1. V šesté a následujících subkulturách se růstová rychlost a výtěžek sušiny buněk nezvyšoval.
Nahromaděná populace rychleji rostoucích buněk v živné půdě obsahující K-sůl 3-fenylpropionové kyseliny jako jediný zdroj asimilovatelného uhlíku byla z poslední subkultury vyseta na Petriho misky se sladinovým agarem, vyočkovány individuální kolonie a tak získán rychleji rostoucí kmen utilizující 3-fenylpropionovou kyselinu jako jediný zdroj uhlíku. Specifická aktivita V-penlcilin amidázy u tohoto kmene se pohybuje okolo- 4 až 6 ,umol 6-APK. mg1 suché hmoíy buněk při jeho submersní kultivaci v baňkách v tekuté živné půdě obsahující: kukuřičný extrakt — vysrážený, filtrovaný 0,5 % (vlhká hmota), K-sůl, 3-fenylpropionové kyseliny 0,5 %, KH2PO4 0,1 %, K2HPO4 0,2 %, kvasničný extrakt 0,05 %, thiamin 0,01 °/o, MgSO4 0,01 %; pH živné půdy 7,2. Výtěžek suché hmoty buněk se pohybuje okolo 1,5 až 1,8 mg. ml-.1 za 46 hodin kultivace při 28 °C.
P ř í k 1 a d 3
Při sledování substrátové specifity V penicilin amidázy u intaktních buněk Cryptococcus sp., k sloučeninám obsahujícím v molekule amidickou CO—NH vazbu, zvláště amidům kyselin chemicky blízkých postranním řetězcům přírodních a polosyntetických penicilinů bylo zjištěno, že některé z nich jsou rovněž substráty, i když reakční rychlost enzymové hydrolýzy je řádově až několikařádově posunuta ve prospěch hydrolýzy V-penicllinu jako substrátu. Tedy jde vesměs o velmi špatné substráty ve srovnání s V-penicilinem. Tato skutečnost je uvedena v přehledné charakterizaci kmene Cryptococcus sp. v popisu předmětného vynálezu. Nicméně těchto poznaných skutečností byto využito k volbě selektivní chemicky definované živné půdy s cílem nahromadění výše produkčních kmenů použitím amidů zmíněných látek jako jediných zdrojů asimilovatelného dusíku.
Kmen Cryptococcus sp. získaný jak je uvedeno· v příkladu 2, byl očkován ze šikmého sladinového agaru do baněk obsahujících 150 ml tekuté živné půdy o složení, které je uvedeno- rovněž v příkladu 2 v posledním odstavci. Po 46hodinové submersní kultivaci při 28 °C bylo této kultury použito jako inokula (5 obj. °/o) pro očkování selektivní tekuté živné půdy v baňkách plněných 150 ml půdy o složení: 4-hydroxyfenoxyacetamid 0,2 °/o, K-sůl 3-fenylpronlo-nové kyseliny 0,5 °/o, KH2PO4 0,1 %, K2HPO4 0,2 proč. kvasničný extrakt 0,03 °/o, ťhiamln 0,01 proč. MgSO4 0,01 %, pH živné půdy 7,2.
Submersní kultivace probíhá střídavým pasážováním kultur při 28 CC vždy přenosem 5 obj. % vyrostlé kultury ze subkultury prvé do druhé a následujících tak dlouho, až se růstová rychlost neměnila.
Heterogenní populace buněk získaná sekvenční selekcí v živné půdě, kde jako jediný zdroj asimilovatelného dusíku sloužil 4-hydro-xyfenoxyacetamid a jako jediný zdroj asimilovatelného uhlíku K-sůl 3-fenylpro-. pionové kyseliny byla vyseta na Petriho misky se sladinovým agarem, vyočkovány individuální kolonie a tak získán kmen se zvýšeným obsahem V-penicilin amidázy vbuňkách.
Specifická aktivita enzymu u tohoto kmene se pohybuje mezi 6 až 12 ,μπιοΙ 6-APK . . mg-1 suchá hmoty buněk při jeho submersní kultivaci v baňkách v tekuté živné půdě obsahující: K-sůl kyseliny 3-fenylpropionové 0,5 %, KH2PO4 0,2 %, NH4H2PO4 0,2 %, (NH4j9SO4 0,3 %, kvasničný extrakt 0,05 %, thiamin 0,01 °/o, MgSO4 0,01 %, CaCl2 0,002 proč., FeSO4 0,0005 %; pH živné půdy 7,2. Výtěžek suché hmoty buněk se pohybuje okolo 1,3 mg. ml'1 za 48 hodin při 28 °C.

Claims (2)

  1. PREDMET
    1. Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenox-ymethylpenlcilin na 6-aminopenicilánovou kyseliny, vyznačený tím, že se kultury mikroorganismů naočkují do selektivních chemicky definovaných živných půd, kde jako jediný zdroj asimilovatelného dusíku, a/nebo- jak dusíku, tak uhlíku slouží fenoxyacetamid, 4-hydro-xyfenoxyacetamid, 3-fenylpropionaraid, fenylakrylamid, a/nebo kde jako· jediné zdroje asimilovatelného uhlíku slouží soli kyseliny 3-fenylpropionové, fenylakrylové, fenoxyoctové, 4-hydroxyfenoxyoctové, popřípadě s amidy těchto kyselin sloužících
    VYNÁLEZU jako jediné zdroje asimilovatelného dusíku, nebo s anorganickým zdrojem dusíku, výhodně s amonnými ionty, přičemž vyrostlé kultury mikroorganismů se v těchto půdách pasážují íak dlouho, až se nezvyšuje růstová rychlost, načež se vyrostlá kultura vyočkuje a konzervuje.
  2. 2. Kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1, produkující vnitrobuněčnou V-penicilin amidázu, která přednostně hydrolyzyje fenoxymethyípenicilin na 6-aminopenicilánovou kyselinu, získaný způsobem podle bodu 1.
CS844084A 1984-11-06 1984-11-06 Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 8-aminopenicilánovou kyselinu a kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 CS240247B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS844084A CS240247B1 (cs) 1984-11-06 1984-11-06 Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 8-aminopenicilánovou kyselinu a kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS844084A CS240247B1 (cs) 1984-11-06 1984-11-06 Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 8-aminopenicilánovou kyselinu a kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS240247B1 true CS240247B1 (cs) 1986-02-13

Family

ID=5434904

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS844084A CS240247B1 (cs) 1984-11-06 1984-11-06 Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 8-aminopenicilánovou kyselinu a kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS240247B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gosmann et al. Oxygen uptake of microorganisms entrapped in Ca-alginate
CA1122552A (en) Enzymic microbiological process for producing optically active aminoacids starting from hydanthoins and/or racemic carbamoyl derivatives
Cole Formation of 6-aminopenicillanic acid, penicillins, and penicillin acylase by various fungi
Syldatk et al. Substrate-and stereospecificity, induction and metallo-dependence of a microbial hydantoinase
Tsugawa et al. Production of l-Glutamic Acid from dl-Hydantoin-5-propionic Acid by Microoganisms: Part I. Screening of l-Glutamic Acid-Producing Microorganisms and Some Optimal Conditions for Production of l-Glutamic Acid
US4111749A (en) Method of converting racemic hydantoins into optically active aminoacids
FI70596B (fi) Foerfarande foer enzymatisk hydrolysering av raffinos
JPS60244295A (ja) (十)‐トランス‐シクロプロパンカルボン酸の製造方法
Chander et al. Factors affecting lipase production in Rhizopus nigricans
Ohkishi et al. Distribution of cysteine desulfhydrase in microorganisms
CS240247B1 (cs) Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 8-aminopenicilánovou kyselinu a kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1
Eller et al. STUDIES ON BACTERIAL UTILIZATION OF URONIC ACIDS IV: Alginolytic and Mannuronic Acid Oxidizing Isolates
US20040106172A1 (en) Hydrolyzing/dehydration condensing enzymes, method for producing the enzyme and method for synthesizing amide by using the enzyme
HU181488B (en) Process for the hydrolysis of racemic hydantoins into optically active n-carbamoyl-aminoacid derivatives and for preparing the hydrolyzing enzymatic complex
US5206162A (en) Process for making D-aminoacylase
US4357425A (en) Process for producing L-amino acid oxidase
Bano et al. Characterization of Crude Protease Produced by Pleurotus Eryngii ATCC 90888.
CN108018246B (zh) 一株联产壳聚糖酶和γ-聚谷氨酸的菌株及其应用
JP2707093B2 (ja) 新規微生物
SU644833A1 (ru) Штамм 85-продуцент -аспарагиновой кислоты
Shukla et al. Study of some parameters for the production of dextranase by Penicillium aculeatum
El-Sayed et al. Semicontinuous penicillin production by two Penicillium chrysogenum strains immobilized in calcium alginate beads
CA1334741C (en) Method for production of a growth factor for bifidobacterium sp
RU2337954C1 (ru) Штамм бактерий alcaligenes denitrificans - продуцент нитрилазы
KR910007849B1 (ko) 신균주 스트렙토마이세스 sp.Y-183 및 이로부터 생산되는 히단토인에이즈의 생산방법