CS240247B1 - Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 8-aminopenicilánovou kyselinu a kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 - Google Patents
Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 8-aminopenicilánovou kyselinu a kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 Download PDFInfo
- Publication number
- CS240247B1 CS240247B1 CS844084A CS844084A CS240247B1 CS 240247 B1 CS240247 B1 CS 240247B1 CS 844084 A CS844084 A CS 844084A CS 844084 A CS844084 A CS 844084A CS 240247 B1 CS240247 B1 CS 240247B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- acid
- microorganisms
- nitrogen
- strain
- cryptococcus
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Řešení se týká způsobu selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolýzujících fenoxymethylpenicilin ňa kyselinu 6-aminopenieilánovou a Je vyznačen tím, že se kultury mikroorganismů naočkují do selektivního média, kde jako jediný zdroj asimilovatelného dusíku, a/nebo jak dusíku, tak uhlíku slouží fenoxyacetamid, 3-fenylpropionamid, 4-hydroxyfenoxyacetamid, fenylakrylamld, a/nebo, kde jako jediné zdroje asimilovatelného uhlíku slouží soli kyseliny 3-fenylprópionové, fenylakrylové, fenoxyoctové a 4-hydroxyfenoxyoctové, popřípadě s amidy těchto kyselin, sloužících jako jediné zdroje asimilovatelného dusíku, nebo s anorganickým zdrojem dusíku, výhodně s amonnými ionty, přičemž vyrostlé kultury mikroorganismů se v těchto půdách pasážují tak dlouho, až se nezvyšuje růstová rychlost, načež se vyrostlá kultura vyočkuje a konzervuje. Vynález se rovněž týká kmene mikroorganismu Cryptococcus sp., CCY 17-22-1 produkujícího vnitrobuněčnou V-penicilin amidázu, která přednostně hydrolyzuje fenoxymethylpenicilin na 6-aminopenicilanovou kyselinu.
Description
Vynález se týká způsobu selekce a nahromadování kmenů mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 6-amlnopenicilánovou kyselinu a kmene mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1.
Je známo, že kyselina 6-aminopenicilánová (dále jen 6-APK) slouží Jako meziprodukt pro výrobu tzv. polosyntetických penicilinů, např. ampicilinu. 6-APK lze připravit z přírodních penicilinů, tj. z benzylpenicillnu (G-penicilinu) nebo fenoxymethylpenicilinu (V-penicilinu), bud chemicky, nebo enzymovou hydrolýzou. Chemická hydrolýza přírodních penicilinů je ekonomicky nevýhodná. Naproti tomu enzymová hydrolýza má podstatně lepší ekonomické parametry, čehož je využíváno pro výrobu 6-APK řadou zahraničních farmaceutických firem.
Ve většině případů ve světě, a rovněž i v Československu, je 6-APK vyráběna enzymovou hydrolýzou benzylpenicilinu. K tomuto účelu byly získány vysokoprodukční kmeny bakterií syntetizující vysoké množství enzymu G-penicilin amidázy, např. kmeny Escherichia coli podle čs. autorských osvědčení č. 162 274 a 188 631.
Fenoxymethylpenicilin (V-penicilin) je však enzymově hydrolyzován bakteriálními kmeny jen velmi vzácně. Např. bylo popsáno pouze několik kmenů bakterií z rodů Erwinia, Achromobacte, Micrococcus, Streptomyces a Actinoplanes, které jsou schopny syntetizovat specifickou V-penicilin amidázu hydrolyzující V-penicilin za vzniku 6-APK. Popisované produkce tohoto enzymu u zmíněných rodů bakterií jsou však velice nízké, u některých druhů je enzym syntetizován extracelulárně (Streptomyces), takže tyto kmeny bakterií nemají v podstatě pro výrobu 6-APK průmyslový význam (Vandamme, E. J., Economic Microbiology, Microbial Enzymes and Bioconversions, Rose, A. H., ed., Vol. 5, Chapter 9, pp. 467 až 522, Acad. Press, New York, 1980].
Citovaný autor naproti tomu uvádí, že u některých eukaryontních mikroorganismů je výskyt V-penicilin amidázy více rozšířen, zejména u některých kvasinek (např. rodyTorulopsis, Zygosaccharomyces, Debaryomyces, Torula, Rhodotorula), plísní (např. rody Penicillium, Aspergillus, Fusarium) a vyšších hub (např. rody Pleurotus, Bovista). Nejlepšími producenty V-penicilin amidázy jsou některé kmeny vyšších hub, zejména Pleurotus ostreatus a Bovista plumbea.
Zvládnutí kultivace těchto organismů ve velkokapacitných fermentorech je pro vysoké náklady na řízení kultivace, složení živné půdy a sterilitu kultury při její dlouhodobé submersní kultivaci (řádově 150 až 200 hodin) značně náročné.
Doposud bylo charakterizováno v základních parametrech jen velmi málo producentů V-penicilin amidáz. Ve většině případů jsou informace uvedeny u plísní a vyšších hub, ojediněle u bakterií a pouze v jednom případě u kvasinek, Rhodotorula glutinis var.
glutinis (Vandamme, E. J. a Voets, J. P., Zeít. Allg. Microblol. 13, 701—710, 1973). Použitím silně koncentrované suspenze intaktních buněk této kvasinky bylo dosaženo 80 % teoretické konverze l°/o (hmota/objem) vodného roztoku draselné soli V-penicilin.u na 6-APK (28 °C, pH 6,5, reakční doba 30 hodin).
Postup podle vynálezu spočívá v tom, že lze selektovat suspektní kmeny přírodních a sbírkových mikroorganismů s V-penicilin amidázovou aktivitou v tekutých nebo na pevných chemicky definovaných živných půdách, kde jako jediný zdroj asimiíovatelného dusíku a/nebo jak dusíku, tak uhlíku slouží fenoxyacetamid, 3-fenylpropionamid, fenylakrylamid (amid skořicové kyseliny) nebo jejich deriváty, přičemž schopnost růstu enzymově aktivních buněk s požadovanou aktivitou je indikována přírůstkem turbidity nebo tvorbou kolonií, popřípadě růstem kmenů v přítomnosti soli kyseliny 3-fenylpropionové, fenylakrylové (skořicové) a fenoxyoctové nebo jejich derivátů, které slouží jako jediné zdroje asimilovátelného uhlíku v chemicky definované živné půdě. Jednorázovou selekci a pasážování v živných půdách obsahující tyto sloučeniny a jejich deriváty lze kombinovat se sekvenční selekcí v libovolných kombinacích z hlediska utilizace, indukce a substrátové specifity enzymu. Tak. lze např. získat kmeny rychle rostoucí na utilizovatelných induktorech syntézy apod.
Jednorázovou a sekvenční selekcí, kterým předcházel rozsáhlý screening sbírkových a přírodních izolátů, byl uvedeným způsobem získán kmen mikroorganismů Cryptococcus sp. CCY 17-22-1, který je rovněž předmětem vynálezu a jehož vlastnosti, především vysoká specifická aktivita V-penicilin amidázy, intracelulární lokalizace enzymu a nepřítomnost /í-laktamázy, dovolují reálný předpoklad jeho využití k enzymové přípravě 6-APK z V-penicilinu pomocí intaktních buněk oddělených od kultivační kapaliny, imobilizovaných buněk, popřípadě může tento kmen sloužit jako zdroj enzymu pro jeho následnou izolaci a jeho další použití v rozpustné nebo imobilizované formě. Základní morfologické a biochemické vlastností předmětného kmene a vlastnosti ve vztahu k základní charakterizaci enzymu u intaktních buněk jsou uveteny v následujícím souhrnu.
Vlastnosti kmene Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 '
Základní vlastnosti kmene
Kvasinka, dqbře rostoucí na sladinovém agaru, tvoří krémové kolonie, polární pučení, světlolomné pouzdro. Při růstu v živných půdách obsahujících rychle asimilovatelné zdroje uhlíku (glukóza) tvoří extra240247 celulární silně viskozní polysacharid. Tvorbu extracelulárního polysacharidu lze eliminovat složením živné půdy a poměry C : : N. Roste dobře na kokuřičném extraktu, směsích aminokyselin a kvasničném hydrolyzátu. Rovněž roste dobře na chemicky definovaných minerálních živných půdách s vhodným zdrojem uhlíku; jako zdroj dusíku využívá amonné ionty.
Růst na níže uvedených sloučeninách jako Vlastnosti kmene ve vztahukV-penicilin
1. lokalizace enzymu;
2. přítomnost /3-laktamázy:
3. indukce syntézy enzymu:
4. substrátová specifita enzymu:
5. katabolická represe syntézy enzymu:
6. Optimum pH aktivity enzymu:
7. Specifická aktivita intaktních buněk*
8. Produkty enzymové přeměny:
jediných zdrojích asimilovatelného uhlíku v tekutých.živných půdách.
Glukóza ( + ), sacharóza ( + ), fruktóza ( + ), galaktóza (—), laktóza (+), glycerol (—), DL-laktát ( — ), sukcinát ( + ), citrát ( + ), ethanol ( + ], soli kyseliny fenyloctové (—), fenoxyoctové (—), 4-hydroxyfenoxyoctové (—), 3-fenylpropionové ( + ), fenylakrylové ( + ).
láze u intaktních buněk intracelulární;
negativní;
kyselina 3-fenylpropionová (+++), fenylakrylová ( + + ), 4-hydroxyfenoxyoctová (++), fenoxyoctová ( + ), fenyloctová ( —); V-penicilin (+++), G-penicilin ( —), ampicilin ( —), monoamid kyseliny glutarové (++), fenoxyacetamid (+), 4-hydroxyfenoxyacetamid ( + ), 3-fenylpropionamid. ( —), amid kyseliny fenylakrylové ( + ), fenylacetamid (—);
V přítomnosti glukózy a sacharózy se enzym nesyntetizuje, i když je přítomen kterýkoliv z induktorů jeho syntézy;
8,0;
0,5 až 12,0 ,«mol 6-APK. mg 1 suché hmoty buněk. Dosažená specifická aktivita závisí na složení živné půdy, kultivačních podmínkách a fyziologickém stavu kultury; Chromatografií na tenké vrstvě celulózy a vysokotlakou kapalinovou chromatografií bylo prokázáno, že při styku intaktních buněk s vodnými roztoky K-soli V-penicilinu, vzniká pouze 6-APK a fenoxyoctová kyselina.
* Jednotka enzymové aktivity V-penicilin amidázy je takové množství enzymu, které katalyzuje hydrolýzu vodného roztoku K-soli V-penicilinu jako substrátu, za vzniku jednoho mikromolú 6-APK v jednom mililitru za jednu hodinu v podmínkách enzymové reakční kinetiky nultého řádu při pH 8,0 a teplotě 37 °C. Rozměr aktivity: gmol 6-APK . ml-1. h'1; rozměr specifické aktivity: μίησί 6-APK. mg-1 suché hmoty buněk. Ke stanovení koncentrace 6-APK byl použit postup uvedený v čs. patentovém spisu č. 116 959.
Podle morfologického, růstového a biochemického chování kultury byl získaný kmen zařazen do rodu Cryptococcus v souhlase s taxonomickými kritérii uvedenými v: The Yeasts, A taxonomie study, second edition, J. Lodder, ed., Nórth-Holland Publishing Company — Amsterdam — London, 1970; J. A. Barnett, R. W. Payne and D. Yarrow, Yeasts, Characterization and Identification, Cambridge, London, New York, New Rochelle, Melbourne, Sydney, 1983. Předmětný . produkční kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. le uložen v čs. sbírce kvasinek (Czechoslovak Collection of Yeasts) v Bratislavě pod č. CCY 17-22-1.
Podstata způsobu jednorázové a sekvenční selekce a nahromaďování kmenů mikroorganismů, zvláště kvasinek, hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 6-amlnopenicilánovou kyselinu podle vynálezu spočívá v tom, že se kultury mikroorganismů naočkují do selektivních chemicky definovaných živných půd, kde jako jediný zdroj asimilovatelného dusíku, a/nebo jak dusíku, tak uhlíku slouží fenoxyacetamid, 4-hydroxyfenoxyacetamid, 3-fenylpropionamid, fenylakrylamid, a/nebo, kde jako jediné zdroje asimilovatelného Uhlíku slouží soli, kyseliny 3-fenvlpropionové, fenylakrylové, fenoxyoctové, hydro syfenoxyoctové, popřípadě s amidy těchto· kyselin sloužících jako jediné zdroje asimilovatelného dusíku, nebo s anorganickým zdrojem dusíku, výhodně s amonnými ionty, přičemž vyrostlé kultury mikroorganismů se v těchto půdách pasážují tak dlouho, až se nezvyšuje růstová rychlost, načež se vyrostlá kultura vyočkuje a konzer-. vuje.
Předmětem vynálezu je dále kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1, který byl získán postupem uvedeným v předchozím odstavci, a který produkuje vnitrobuněčnou V-penicilin amidázu, která přednostně hydrolyzuje fenoxymethylpenicilin na , 6 -aminopenicilánovou kyselinu.
Vynález je dále doložen v příkladech provedení aniž' by se jimi omezoval.
Příklad 1 sbírkových a 8 z přírody izolovaných kmenů kvasinek, které bylo možno podle citované literatury uvedené v popisu předmětného vynálezu taxonomicky zařadit do rodů Saccharomyces, Debaryomyces, Candida, Cryptococcus, Rhodotorula, Torulopsis a Trichosporon, byly naočkovány kličkou ze šikmého hladinového agaru do baněk obsahujících 50 ml tekuté živné půdy o složení: fenoxyacetamid 0,2 °/o, glukóza 0,5 až 1,0 proč. KH2PO4 0,1 %, K2HPO4 0,2 %, kvasničný extrakt 0,05 °/o, MgSO4 0,05 °/o, Na-sůl fenoxyoctové kyseliny0,05 %; pH živné půdy 6,5. Naočkované kultury v baňkách byly umístěny na třepací stroj a submersní kultivace probíhala při 28 °C.
Z testovaných 30 kmenů vyrostlo za uvedených podmínek za různou dobu 19 kultur. Po odstředění suspenze byl analyzován buněčný sediment s cílem průkazu tvorby 6-APK z V-penicilinu postupy uvedenými v popisu předmětného vynálezu. Ani u jedné z vyrostlých kultur však nebyla prokázána aktivita V-penicilin amidázy.
Dále bylo postupováno tak, že 11 nerostoucích kmenů bylo z dalšího výběru vyřazeno a 19 rostoucích kmenů v živné půdě, kde fenoxyacetamid sloužil jako jediný zdroj dusíku, bylo naočkováno do baněk obsahujících 50 ml neselektivní tekuté živné půdy o složení: hydrolyzát kaseinu 0,5 %, pepton 0,5%, kvasničný extrakt 0,1 %, KH2PO4 0,3 %, NH4H2PO4 0,5 %, MgSO4 0,05 %, Na-sůl fenoxyoctové kyseliny 0,05 °/o; pH živné půdy 6,5. Naočkované kultury v baňkách byly umístěny na třepací stroj a submersní kultivace probíhala při 28 °C 24 až 48 hodin. Sedimenty intaktních buněk po odstředění byly opět analyzovány na průkaz tvorby 6-APK z V-penicilinu.
U 19 kultur vyrostlých za uvedených podmínek byla u 5 kmenů analyticky prokázána tvorba 6-APK z V-penicilinu. Jednalo se o kmeny Candida utilis, Rhodotorula sp., Rhodotorula pulcherina, Rhodotorula glutinis a Cryptococcus sp.
Uvedených 5 kmenů bylo v dalším užším výběru hodnoceno kvantitativně na množství produkované V-penicilin amidázy. Kultury byly naočkovány do baněk obsahujících 50 ml tekuté neselektivní živné půdy o složení: kukuřičný extrakt — vysrážený, filtrovaný 2 '% (vlhká hmota), KH2PO4 0,1 °/o, KaHPO4 0,2 °/o, MgSO4 0,05 θ/o, Na-sůl fenoxyoctové kyseliny 0,05 %; pH živné půdy 6,9. Submersní kultivace probíhala při 28 stupních Celsia po dobu 30 hodin. Po odstředění kultur byly sedimenty kvantitativně analyzovány na obsah V-penicilin amidázy v buňkách.
U všech kmenů byla prokázána specifická aktivita tohoto enzymu, avšak kvantitativní rozdíly mezi kmeny vyrostlými za uvedených podmínek byly až několikařádové. Nejvyšší specifické aktivity bylo dosaženo u kmene Cryptococcus sp. (0,28 μΐηοΐ 6-APK. .mg-1 suché hmoty buněk) a Rhodotorula glutinis (0,012 μΐηοΐ 6-APK . mg1 suché hmoty buněk). Pro další selekci a nahromaďování výše produkčních kmenů byl proto zvolen jako výchozí materiál kmen Cryptococcus sp., neboť jeho specifická aktivita byla více jak řádově vyšší ve srovnání s druhým získaným izolátem.
P ř í k 1 a d 2
Při zkoumání specifity indukce V-penicilin amidázy během submersní kultivace kmene Cryptococcus sp. v živných půdách obsahujících sloučeniny chemicky identické nebo chemicky blízké postranním řetězcům přirozených a polosyntetických penicilinů bylo zjištěno, že nejvyšších specifických aktivit enzymu v buňkách je dosahováno v přítomnosti solí 3-fenylpropionové, 4-hydroxyfenoxyoctové, skořicové a fenoxyoctové kyseliny. Tato skutečnost je uvedená v přehledné charakterizaci kmene Cryptococcus sp. v popisu předmětného vynálezu. Některé z uvedených sloučenin jsou využívány jako jediné zdroje asimilovatelného uhlíku, jiné nikoliv. Některé tyto látky tedy fungují jako asimilovatelné induktory, jiné jako „zdaťma“ induktory. Těchto poznaných skutečností bylo využito k volbě selektivní chemicky definované živné půdy s cílem selekce a nahromaďování rychle rostoucích kmenů na uvedených sloučeninách jako jediných zdrojích asimilovatelného uhlíku, zvláště proto, že většina těchto látek je silně toxická a inhibuje růst.
Kmen Cryptococcus sp., který byl získán, jak je uvedeno v příkladu 1, byl očkován ze šikmého sladinového agaru do baněk obsahujících 150 ml tekuté živné půdy o složení: kukuřičný extrakt — vysrážený, filtrovaný 2 % (vlhká hmota), KH2PO4 0,1 K2HPO4 0,2 °/o, kvasničný extrakt 0,05 %, thiamin 0,01 °/o, MgSO4 0,05 %, K-sůl 3-fenylproplonové kyseliny 0,1 %, pH živné půdy 7,2. Submersní kultivace probíhala při 28 °C po dobu 24 hodin.
Vyrostlá kultura byla použita jako inokulum (5 obj. % suspenze) k očkování baněk obsahujících 150 ml tekuté živné půdy o složení: K-sůl 3-fenylpropionové kyseliny 0,5 %, KH2PO4 0,2 %, NaCl 0,05 %, kvasničný extrakt 0,03 °/o, (NH4j2SO4 0,3 °/o, NH4H2PO4 0,2 %, CaCl2 0,002 %, FeSO4 0,0005 proč. MgSO4 0,01 °/o; pH živné půdy 7,3.
Submersní kultivace probíhala střídavým pasážováním kultur při 28 °C vždy přenosem 5 obj. '% vyrostlé kultury ze súbkultury prvé do druhé, z druhé do třetí apod. První subkultura vyrostla za 120 hodin při dosažení suché hmoty buněk při přibližně 1 mg. ml1, druhá subkultura za 70 hodin při dosažení téže sušiny, třetí subkultura za 50 hodin, čtvrtá za 70 hodin a pátá subkultura za 45 hodin při dosažení 1,2 mg su240247 siny. ml-1. V šesté a následujících subkulturách se růstová rychlost a výtěžek sušiny buněk nezvyšoval.
Nahromaděná populace rychleji rostoucích buněk v živné půdě obsahující K-sůl 3-fenylpropionové kyseliny jako jediný zdroj asimilovatelného uhlíku byla z poslední subkultury vyseta na Petriho misky se sladinovým agarem, vyočkovány individuální kolonie a tak získán rychleji rostoucí kmen utilizující 3-fenylpropionovou kyselinu jako jediný zdroj uhlíku. Specifická aktivita V-penlcilin amidázy u tohoto kmene se pohybuje okolo- 4 až 6 ,umol 6-APK. mg1 suché hmoíy buněk při jeho submersní kultivaci v baňkách v tekuté živné půdě obsahující: kukuřičný extrakt — vysrážený, filtrovaný 0,5 % (vlhká hmota), K-sůl, 3-fenylpropionové kyseliny 0,5 %, KH2PO4 0,1 %, K2HPO4 0,2 %, kvasničný extrakt 0,05 %, thiamin 0,01 °/o, MgSO4 0,01 %; pH živné půdy 7,2. Výtěžek suché hmoty buněk se pohybuje okolo 1,5 až 1,8 mg. ml-.1 za 46 hodin kultivace při 28 °C.
P ř í k 1 a d 3
Při sledování substrátové specifity V penicilin amidázy u intaktních buněk Cryptococcus sp., k sloučeninám obsahujícím v molekule amidickou CO—NH vazbu, zvláště amidům kyselin chemicky blízkých postranním řetězcům přírodních a polosyntetických penicilinů bylo zjištěno, že některé z nich jsou rovněž substráty, i když reakční rychlost enzymové hydrolýzy je řádově až několikařádově posunuta ve prospěch hydrolýzy V-penicllinu jako substrátu. Tedy jde vesměs o velmi špatné substráty ve srovnání s V-penicilinem. Tato skutečnost je uvedena v přehledné charakterizaci kmene Cryptococcus sp. v popisu předmětného vynálezu. Nicméně těchto poznaných skutečností byto využito k volbě selektivní chemicky definované živné půdy s cílem nahromadění výše produkčních kmenů použitím amidů zmíněných látek jako jediných zdrojů asimilovatelného dusíku.
Kmen Cryptococcus sp. získaný jak je uvedeno· v příkladu 2, byl očkován ze šikmého sladinového agaru do baněk obsahujících 150 ml tekuté živné půdy o složení, které je uvedeno- rovněž v příkladu 2 v posledním odstavci. Po 46hodinové submersní kultivaci při 28 °C bylo této kultury použito jako inokula (5 obj. °/o) pro očkování selektivní tekuté živné půdy v baňkách plněných 150 ml půdy o složení: 4-hydroxyfenoxyacetamid 0,2 °/o, K-sůl 3-fenylpronlo-nové kyseliny 0,5 °/o, KH2PO4 0,1 %, K2HPO4 0,2 proč. kvasničný extrakt 0,03 °/o, ťhiamln 0,01 proč. MgSO4 0,01 %, pH živné půdy 7,2.
Submersní kultivace probíhá střídavým pasážováním kultur při 28 CC vždy přenosem 5 obj. % vyrostlé kultury ze subkultury prvé do druhé a následujících tak dlouho, až se růstová rychlost neměnila.
Heterogenní populace buněk získaná sekvenční selekcí v živné půdě, kde jako jediný zdroj asimilovatelného dusíku sloužil 4-hydro-xyfenoxyacetamid a jako jediný zdroj asimilovatelného uhlíku K-sůl 3-fenylpro-. pionové kyseliny byla vyseta na Petriho misky se sladinovým agarem, vyočkovány individuální kolonie a tak získán kmen se zvýšeným obsahem V-penicilin amidázy vbuňkách.
Specifická aktivita enzymu u tohoto kmene se pohybuje mezi 6 až 12 ,μπιοΙ 6-APK . . mg-1 suchá hmoty buněk při jeho submersní kultivaci v baňkách v tekuté živné půdě obsahující: K-sůl kyseliny 3-fenylpropionové 0,5 %, KH2PO4 0,2 %, NH4H2PO4 0,2 %, (NH4j9SO4 0,3 %, kvasničný extrakt 0,05 %, thiamin 0,01 °/o, MgSO4 0,01 %, CaCl2 0,002 proč., FeSO4 0,0005 %; pH živné půdy 7,2. Výtěžek suché hmoty buněk se pohybuje okolo 1,3 mg. ml'1 za 48 hodin při 28 °C.
Claims (2)
- PREDMET1. Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenox-ymethylpenlcilin na 6-aminopenicilánovou kyseliny, vyznačený tím, že se kultury mikroorganismů naočkují do selektivních chemicky definovaných živných půd, kde jako jediný zdroj asimilovatelného dusíku, a/nebo- jak dusíku, tak uhlíku slouží fenoxyacetamid, 4-hydro-xyfenoxyacetamid, 3-fenylpropionaraid, fenylakrylamid, a/nebo kde jako· jediné zdroje asimilovatelného uhlíku slouží soli kyseliny 3-fenylpropionové, fenylakrylové, fenoxyoctové, 4-hydroxyfenoxyoctové, popřípadě s amidy těchto kyselin sloužícíchVYNÁLEZU jako jediné zdroje asimilovatelného dusíku, nebo s anorganickým zdrojem dusíku, výhodně s amonnými ionty, přičemž vyrostlé kultury mikroorganismů se v těchto půdách pasážují íak dlouho, až se nezvyšuje růstová rychlost, načež se vyrostlá kultura vyočkuje a konzervuje.
- 2. Kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1, produkující vnitrobuněčnou V-penicilin amidázu, která přednostně hydrolyzyje fenoxymethyípenicilin na 6-aminopenicilánovou kyselinu, získaný způsobem podle bodu 1.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS844084A CS240247B1 (cs) | 1984-11-06 | 1984-11-06 | Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 8-aminopenicilánovou kyselinu a kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS844084A CS240247B1 (cs) | 1984-11-06 | 1984-11-06 | Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 8-aminopenicilánovou kyselinu a kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS240247B1 true CS240247B1 (cs) | 1986-02-13 |
Family
ID=5434904
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS844084A CS240247B1 (cs) | 1984-11-06 | 1984-11-06 | Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 8-aminopenicilánovou kyselinu a kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS240247B1 (cs) |
-
1984
- 1984-11-06 CS CS844084A patent/CS240247B1/cs unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Gosmann et al. | Oxygen uptake of microorganisms entrapped in Ca-alginate | |
| CA1122552A (en) | Enzymic microbiological process for producing optically active aminoacids starting from hydanthoins and/or racemic carbamoyl derivatives | |
| Cole | Formation of 6-aminopenicillanic acid, penicillins, and penicillin acylase by various fungi | |
| Syldatk et al. | Substrate-and stereospecificity, induction and metallo-dependence of a microbial hydantoinase | |
| Tsugawa et al. | Production of l-Glutamic Acid from dl-Hydantoin-5-propionic Acid by Microoganisms: Part I. Screening of l-Glutamic Acid-Producing Microorganisms and Some Optimal Conditions for Production of l-Glutamic Acid | |
| US4111749A (en) | Method of converting racemic hydantoins into optically active aminoacids | |
| FI70596B (fi) | Foerfarande foer enzymatisk hydrolysering av raffinos | |
| JPS60244295A (ja) | (十)‐トランス‐シクロプロパンカルボン酸の製造方法 | |
| Chander et al. | Factors affecting lipase production in Rhizopus nigricans | |
| Ohkishi et al. | Distribution of cysteine desulfhydrase in microorganisms | |
| CS240247B1 (cs) | Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 8-aminopenicilánovou kyselinu a kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 | |
| Eller et al. | STUDIES ON BACTERIAL UTILIZATION OF URONIC ACIDS IV: Alginolytic and Mannuronic Acid Oxidizing Isolates | |
| US20040106172A1 (en) | Hydrolyzing/dehydration condensing enzymes, method for producing the enzyme and method for synthesizing amide by using the enzyme | |
| HU181488B (en) | Process for the hydrolysis of racemic hydantoins into optically active n-carbamoyl-aminoacid derivatives and for preparing the hydrolyzing enzymatic complex | |
| US5206162A (en) | Process for making D-aminoacylase | |
| US4357425A (en) | Process for producing L-amino acid oxidase | |
| Bano et al. | Characterization of Crude Protease Produced by Pleurotus Eryngii ATCC 90888. | |
| CN108018246B (zh) | 一株联产壳聚糖酶和γ-聚谷氨酸的菌株及其应用 | |
| JP2707093B2 (ja) | 新規微生物 | |
| SU644833A1 (ru) | Штамм 85-продуцент -аспарагиновой кислоты | |
| Shukla et al. | Study of some parameters for the production of dextranase by Penicillium aculeatum | |
| El-Sayed et al. | Semicontinuous penicillin production by two Penicillium chrysogenum strains immobilized in calcium alginate beads | |
| CA1334741C (en) | Method for production of a growth factor for bifidobacterium sp | |
| RU2337954C1 (ru) | Штамм бактерий alcaligenes denitrificans - продуцент нитрилазы | |
| KR910007849B1 (ko) | 신균주 스트렙토마이세스 sp.Y-183 및 이로부터 생산되는 히단토인에이즈의 생산방법 |