CS240247B1 - A method for selecting and accumulating phenoxymethylpenicillin hydrolyzing microorganisms to 8-aminopenicillanic acid and a strain of Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 - Google Patents

A method for selecting and accumulating phenoxymethylpenicillin hydrolyzing microorganisms to 8-aminopenicillanic acid and a strain of Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 Download PDF

Info

Publication number
CS240247B1
CS240247B1 CS844084A CS844084A CS240247B1 CS 240247 B1 CS240247 B1 CS 240247B1 CS 844084 A CS844084 A CS 844084A CS 844084 A CS844084 A CS 844084A CS 240247 B1 CS240247 B1 CS 240247B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
acid
microorganisms
nitrogen
strain
cryptococcus
Prior art date
Application number
CS844084A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Vladimir Vojtisek
Zdenka Hunkova
Vladimir Krumphanzl
Antonia Jakubova
Michal Bucko
Emil Miklas
Miroslav Barta
Karel Culik
Original Assignee
Vladimir Vojtisek
Zdenka Hunkova
Vladimir Krumphanzl
Antonia Jakubova
Michal Bucko
Emil Miklas
Miroslav Barta
Karel Culik
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Vladimir Vojtisek, Zdenka Hunkova, Vladimir Krumphanzl, Antonia Jakubova, Michal Bucko, Emil Miklas, Miroslav Barta, Karel Culik filed Critical Vladimir Vojtisek
Priority to CS844084A priority Critical patent/CS240247B1/en
Publication of CS240247B1 publication Critical patent/CS240247B1/en

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Řešení se týká způsobu selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolýzujících fenoxymethylpenicilin ňa kyselinu 6-aminopenieilánovou a Je vyznačen tím, že se kultury mikroorganismů naočkují do selektivního média, kde jako jediný zdroj asimilovatelného dusíku, a/nebo jak dusíku, tak uhlíku slouží fenoxyacetamid, 3-fenylpropionamid, 4-hydroxyfenoxyacetamid, fenylakrylamld, a/nebo, kde jako jediné zdroje asimilovatelného uhlíku slouží soli kyseliny 3-fenylprópionové, fenylakrylové, fenoxyoctové a 4-hydroxyfenoxyoctové, popřípadě s amidy těchto kyselin, sloužících jako jediné zdroje asimilovatelného dusíku, nebo s anorganickým zdrojem dusíku, výhodně s amonnými ionty, přičemž vyrostlé kultury mikroorganismů se v těchto půdách pasážují tak dlouho, až se nezvyšuje růstová rychlost, načež se vyrostlá kultura vyočkuje a konzervuje. Vynález se rovněž týká kmene mikroorganismu Cryptococcus sp., CCY 17-22-1 produkujícího vnitrobuněčnou V-penicilin amidázu, která přednostně hydrolyzuje fenoxymethylpenicilin na 6-aminopenicilanovou kyselinu.The solution relates to a method for selecting and accumulating microorganisms hydrolyzing phenoxymethylpenicillin to 6-aminopenicillin acid and is characterized in that cultures of microorganisms are inoculated into a selective medium, where the sole source of assimilable nitrogen, and/or both nitrogen and carbon are phenoxyacetamide, 3-phenylpropionamide, 4-hydroxyphenoxyacetamide, phenylacrylamide, and/or where the sole sources of assimilable carbon are salts of 3-phenylpropionic, phenylacrylic, phenoxyacetic and 4-hydroxyphenoxyacetic acids, optionally with amides of these acids, serving as the sole sources of assimilable nitrogen, or with an inorganic source of nitrogen, preferably with ammonium ions, wherein the grown cultures of microorganisms are passaged in these media until the growth rate does not increase, after which the grown culture is inoculated and preserved. The invention also relates to a strain of the microorganism Cryptococcus sp., CCY 17-22-1 producing an intracellular V-penicillin amidase that preferentially hydrolyzes phenoxymethylpenicillin to 6-aminopenicillanic acid.

Description

Vynález se týká způsobu selekce a nahromadování kmenů mikroorganismů hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 6-amlnopenicilánovou kyselinu a kmene mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1.The invention relates to a method for the selection and accumulation of microorganisms hydrolyzing phenoxymethylpenicillin to 6-amlnopenicillanic acid and a strain of Cryptococcus sp. CCY 17-22-1.

Je známo, že kyselina 6-aminopenicilánová (dále jen 6-APK) slouží Jako meziprodukt pro výrobu tzv. polosyntetických penicilinů, např. ampicilinu. 6-APK lze připravit z přírodních penicilinů, tj. z benzylpenicillnu (G-penicilinu) nebo fenoxymethylpenicilinu (V-penicilinu), bud chemicky, nebo enzymovou hydrolýzou. Chemická hydrolýza přírodních penicilinů je ekonomicky nevýhodná. Naproti tomu enzymová hydrolýza má podstatně lepší ekonomické parametry, čehož je využíváno pro výrobu 6-APK řadou zahraničních farmaceutických firem.It is known that 6-aminopenicillanic acid (hereinafter 6-APK) serves as an intermediate for the production of so-called semi-synthetic penicillins, e.g. ampicillin. 6-APK can be prepared from natural penicillins, ie benzylpenicillin (G-penicillin) or phenoxymethylpenicillin (V-penicillin), either chemically or by enzymatic hydrolysis. Chemical hydrolysis of natural penicillins is economically disadvantageous. In contrast, enzymatic hydrolysis has significantly better economic parameters, which is used to produce 6-APK by a number of foreign pharmaceutical companies.

Ve většině případů ve světě, a rovněž i v Československu, je 6-APK vyráběna enzymovou hydrolýzou benzylpenicilinu. K tomuto účelu byly získány vysokoprodukční kmeny bakterií syntetizující vysoké množství enzymu G-penicilin amidázy, např. kmeny Escherichia coli podle čs. autorských osvědčení č. 162 274 a 188 631.In most cases in the world, as well as in Czechoslovakia, 6-APK is produced by the enzymatic hydrolysis of benzylpenicillin. For this purpose, high-producing strains of bacteria synthesizing a high amount of the enzyme G-penicillin amidase, for example strains of Escherichia coli according to US Pat. No. 162 274 and 188 631.

Fenoxymethylpenicilin (V-penicilin) je však enzymově hydrolyzován bakteriálními kmeny jen velmi vzácně. Např. bylo popsáno pouze několik kmenů bakterií z rodů Erwinia, Achromobacte, Micrococcus, Streptomyces a Actinoplanes, které jsou schopny syntetizovat specifickou V-penicilin amidázu hydrolyzující V-penicilin za vzniku 6-APK. Popisované produkce tohoto enzymu u zmíněných rodů bakterií jsou však velice nízké, u některých druhů je enzym syntetizován extracelulárně (Streptomyces), takže tyto kmeny bakterií nemají v podstatě pro výrobu 6-APK průmyslový význam (Vandamme, E. J., Economic Microbiology, Microbial Enzymes and Bioconversions, Rose, A. H., ed., Vol. 5, Chapter 9, pp. 467 až 522, Acad. Press, New York, 1980].However, phenoxymethylpenicillin (V-penicillin) is rarely enzymatically hydrolyzed by bacterial strains. E.g. only a few strains of bacteria of the genera Erwinia, Achromobacte, Micrococcus, Streptomyces and Actinoplanes have been described which are capable of synthesizing a specific V-penicillin amidase hydrolyzing V-penicillin to form 6-APK. However, the production of this enzyme in said bacterial genera is very low, in some species the enzyme is synthesized extracellularly (Streptomyces), so these strains of bacteria are not of industrial importance for the production of 6-APK (Vandamme, EJ, Economic Microbiology, Microbial Enzymes and Bioconversions) , Rose, AH, ed., Vol. 5, Chapter 9, pp. 467-522, Acad. Press, New York, 1980].

Citovaný autor naproti tomu uvádí, že u některých eukaryontních mikroorganismů je výskyt V-penicilin amidázy více rozšířen, zejména u některých kvasinek (např. rodyTorulopsis, Zygosaccharomyces, Debaryomyces, Torula, Rhodotorula), plísní (např. rody Penicillium, Aspergillus, Fusarium) a vyšších hub (např. rody Pleurotus, Bovista). Nejlepšími producenty V-penicilin amidázy jsou některé kmeny vyšších hub, zejména Pleurotus ostreatus a Bovista plumbea.The cited author, on the other hand, states that in some eukaryotic microorganisms, the incidence of V-penicillin amidase is more widespread, particularly in some yeasts (eg, the genus Torulopsis, Zygosaccharomyces, Debaryomyces, Torula, Rhodotorula), fungi (eg the genus Penicillium, Aspergillus, Fusarium) higher fungi (eg, the genera Pleurotus, Bovista). The best producers of V-penicillin amidase are some strains of higher fungi, especially Pleurotus ostreatus and Bovista plumbea.

Zvládnutí kultivace těchto organismů ve velkokapacitných fermentorech je pro vysoké náklady na řízení kultivace, složení živné půdy a sterilitu kultury při její dlouhodobé submersní kultivaci (řádově 150 až 200 hodin) značně náročné.Managing the cultivation of these organisms in large-capacity fermenters is very demanding due to the high cost of cultivation control, nutrient composition and sterility of the culture during long-term submersive cultivation (of the order of 150 to 200 hours).

Doposud bylo charakterizováno v základních parametrech jen velmi málo producentů V-penicilin amidáz. Ve většině případů jsou informace uvedeny u plísní a vyšších hub, ojediněle u bakterií a pouze v jednom případě u kvasinek, Rhodotorula glutinis var.To date, very few V-penicillin amidase producers have been characterized in baseline parameters. In most cases, information is reported for fungi and higher fungi, rarely for bacteria and only for one yeast, Rhodotorula glutinis var.

glutinis (Vandamme, E. J. a Voets, J. P., Zeít. Allg. Microblol. 13, 701—710, 1973). Použitím silně koncentrované suspenze intaktních buněk této kvasinky bylo dosaženo 80 % teoretické konverze l°/o (hmota/objem) vodného roztoku draselné soli V-penicilin.u na 6-APK (28 °C, pH 6,5, reakční doba 30 hodin).glutinis (Vandamme, E. J. and Voets, J. P., Zeit. Allg. Microblol. 13, 701-710, 1973). Using a highly concentrated suspension of intact cells of this yeast, an 80% theoretical conversion of 1% w / v aqueous solution of V-penicillin.u potassium salt to 6-APK (28 ° C, pH 6.5, 30 hours reaction time) was achieved ).

Postup podle vynálezu spočívá v tom, že lze selektovat suspektní kmeny přírodních a sbírkových mikroorganismů s V-penicilin amidázovou aktivitou v tekutých nebo na pevných chemicky definovaných živných půdách, kde jako jediný zdroj asimiíovatelného dusíku a/nebo jak dusíku, tak uhlíku slouží fenoxyacetamid, 3-fenylpropionamid, fenylakrylamid (amid skořicové kyseliny) nebo jejich deriváty, přičemž schopnost růstu enzymově aktivních buněk s požadovanou aktivitou je indikována přírůstkem turbidity nebo tvorbou kolonií, popřípadě růstem kmenů v přítomnosti soli kyseliny 3-fenylpropionové, fenylakrylové (skořicové) a fenoxyoctové nebo jejich derivátů, které slouží jako jediné zdroje asimilovátelného uhlíku v chemicky definované živné půdě. Jednorázovou selekci a pasážování v živných půdách obsahující tyto sloučeniny a jejich deriváty lze kombinovat se sekvenční selekcí v libovolných kombinacích z hlediska utilizace, indukce a substrátové specifity enzymu. Tak. lze např. získat kmeny rychle rostoucí na utilizovatelných induktorech syntézy apod.The process according to the invention is characterized in that it is possible to select suspect strains of natural and collecting microorganisms with V-penicillin amidase activity in liquid or solid chemically defined nutrient media, where phenoxyacetamide serves as the only source of assimilable nitrogen and / or both nitrogen and carbon. -phenylpropionamide, phenylacrylamide (cinnamic amide) or derivatives thereof, wherein the ability to grow enzymatically active cells with the desired activity is indicated by the increase in turbidity or colony formation or growth of strains in the presence of the 3-phenylpropionic, phenylacrylic and phenoxyacetic acid salts , which serve as the only sources of assimilable carbon in a chemically defined culture medium. Single selection and passage in nutrient media containing these compounds and their derivatives can be combined with sequential selection in any combination in terms of utilization, induction, and substrate specificity of the enzyme. So. for example, strains rapidly growing on utilizable synthesis inducers, etc. can be obtained.

Jednorázovou a sekvenční selekcí, kterým předcházel rozsáhlý screening sbírkových a přírodních izolátů, byl uvedeným způsobem získán kmen mikroorganismů Cryptococcus sp. CCY 17-22-1, který je rovněž předmětem vynálezu a jehož vlastnosti, především vysoká specifická aktivita V-penicilin amidázy, intracelulární lokalizace enzymu a nepřítomnost /í-laktamázy, dovolují reálný předpoklad jeho využití k enzymové přípravě 6-APK z V-penicilinu pomocí intaktních buněk oddělených od kultivační kapaliny, imobilizovaných buněk, popřípadě může tento kmen sloužit jako zdroj enzymu pro jeho následnou izolaci a jeho další použití v rozpustné nebo imobilizované formě. Základní morfologické a biochemické vlastností předmětného kmene a vlastnosti ve vztahu k základní charakterizaci enzymu u intaktních buněk jsou uveteny v následujícím souhrnu.A single and sequential selection, preceded by extensive screening of collection and natural isolates, resulted in the strain of Cryptococcus sp. CCY 17-22-1, which is also a subject of the invention and whose properties, in particular the high specific activity of V-penicillin amidase, intracellular localization of the enzyme and the absence of β-lactamase, make it possible to use it for the enzymatic preparation of 6-APK from V-penicillin. by means of intact cells separated from the culture liquid, immobilized cells, optionally this strain can serve as a source of enzyme for its subsequent isolation and its further use in soluble or immobilized form. The basic morphological and biochemical properties of the subject strain and those related to the basic characterization of the enzyme in intact cells are summarized in the following summary.

Vlastnosti kmene Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 'Properties of the strain Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 '

Základní vlastnosti kmeneBasic characteristics of the strain

Kvasinka, dqbře rostoucí na sladinovém agaru, tvoří krémové kolonie, polární pučení, světlolomné pouzdro. Při růstu v živných půdách obsahujících rychle asimilovatelné zdroje uhlíku (glukóza) tvoří extra240247 celulární silně viskozní polysacharid. Tvorbu extracelulárního polysacharidu lze eliminovat složením živné půdy a poměry C : : N. Roste dobře na kokuřičném extraktu, směsích aminokyselin a kvasničném hydrolyzátu. Rovněž roste dobře na chemicky definovaných minerálních živných půdách s vhodným zdrojem uhlíku; jako zdroj dusíku využívá amonné ionty.The yeast, growing well on the wort agar, forms a creamy colonies, a polar bud, a refracted capsule. When grown in broths containing rapidly assimilable carbon sources (glucose), extra240247 forms a highly viscous polysaccharide cellular. Extracellular polysaccharide formation can be eliminated by the nutrient composition and C: N ratio. It grows well on corn extract, amino acid mixtures and yeast hydrolyzate. It also grows well on chemically defined mineral nutrient media with a suitable carbon source; it uses ammonium ions as a nitrogen source.

Růst na níže uvedených sloučeninách jako Vlastnosti kmene ve vztahukV-penicilinGrowth on the compounds listed below as N-Penicillin strain properties

1. lokalizace enzymu;1. enzyme localization;

2. přítomnost /3-laktamázy:2. Presence of β-lactamase:

3. indukce syntézy enzymu:3. Induction of enzyme synthesis:

4. substrátová specifita enzymu:4. substrate specificity of the enzyme:

5. katabolická represe syntézy enzymu:5. Catabolic repression of enzyme synthesis:

6. Optimum pH aktivity enzymu:6. Optimum pH of enzyme activity:

7. Specifická aktivita intaktních buněk*7. Specific activity of intact cells *

8. Produkty enzymové přeměny:8. Enzyme conversion products:

jediných zdrojích asimilovatelného uhlíku v tekutých.živných půdách.the only sources of assimilable carbon in liquid nutrient soils.

Glukóza ( + ), sacharóza ( + ), fruktóza ( + ), galaktóza (—), laktóza (+), glycerol (—), DL-laktát ( — ), sukcinát ( + ), citrát ( + ), ethanol ( + ], soli kyseliny fenyloctové (—), fenoxyoctové (—), 4-hydroxyfenoxyoctové (—), 3-fenylpropionové ( + ), fenylakrylové ( + ).Glucose (+), sucrose (+), fructose (+), galactose (-), lactose (+), glycerol (-), DL-lactate (-), succinate (+), citrate (+), ethanol (+ ], phenylacetic acid (-), phenoxyacetic (-), 4-hydroxyphenoxyacetic (-), 3-phenylpropionic (+), phenylacrylic (+) salts.

láze u intaktních buněk intracelulární;intact cells in intact cells;

negativní;negative;

kyselina 3-fenylpropionová (+++), fenylakrylová ( + + ), 4-hydroxyfenoxyoctová (++), fenoxyoctová ( + ), fenyloctová ( —); V-penicilin (+++), G-penicilin ( —), ampicilin ( —), monoamid kyseliny glutarové (++), fenoxyacetamid (+), 4-hydroxyfenoxyacetamid ( + ), 3-fenylpropionamid. ( —), amid kyseliny fenylakrylové ( + ), fenylacetamid (—);3-phenylpropionic acid (+++), phenylacrylic acid (+), 4-hydroxyphenoxyacetic acid (++), phenoxyacetic acid (+), phenylacetic acid (-); V-penicillin (+++), G-penicillin (-), ampicillin (-), glutaric acid monoamide (++), phenoxyacetamide (+), 4-hydroxyphenoxyacetamide (+), 3-phenylpropionamide. (-), phenylacrylic acid amide (+), phenylacetamide (-);

V přítomnosti glukózy a sacharózy se enzym nesyntetizuje, i když je přítomen kterýkoliv z induktorů jeho syntézy;In the presence of glucose and sucrose, the enzyme is not synthesized even if any of its inducers are present;

8,0;8.0;

0,5 až 12,0 ,«mol 6-APK. mg 1 suché hmoty buněk. Dosažená specifická aktivita závisí na složení živné půdy, kultivačních podmínkách a fyziologickém stavu kultury; Chromatografií na tenké vrstvě celulózy a vysokotlakou kapalinovou chromatografií bylo prokázáno, že při styku intaktních buněk s vodnými roztoky K-soli V-penicilinu, vzniká pouze 6-APK a fenoxyoctová kyselina.0.5 to 12.0, «mol 6-APK. mg 1 dry cell mass. The specific activity achieved depends on the composition of the culture medium, the culture conditions and the physiological state of the culture; Cellulose thin layer chromatography and high pressure liquid chromatography showed that contact of intact cells with aqueous solutions of V-penicillin K-salt produced only 6-APK and phenoxyacetic acid.

* Jednotka enzymové aktivity V-penicilin amidázy je takové množství enzymu, které katalyzuje hydrolýzu vodného roztoku K-soli V-penicilinu jako substrátu, za vzniku jednoho mikromolú 6-APK v jednom mililitru za jednu hodinu v podmínkách enzymové reakční kinetiky nultého řádu při pH 8,0 a teplotě 37 °C. Rozměr aktivity: gmol 6-APK . ml-1. h'1; rozměr specifické aktivity: μίησί 6-APK. mg-1 suché hmoty buněk. Ke stanovení koncentrace 6-APK byl použit postup uvedený v čs. patentovém spisu č. 116 959.* The unit of V-penicillin amidase enzyme activity is the amount of enzyme that catalyzes the hydrolysis of an aqueous solution of V-penicillin K-salt as a substrate to produce one micromole of 6-APK in one milliliter per hour under zero order enzyme reaction kinetics at pH 8 , 0 and 37 ° C. Dimension of activity: gmol 6-APK. ml -1 . h '1; dimension of specific activity: μίησί 6-APK. mg -1 dry cell mass. To determine the concentration of 6-APK was used the procedure given in MS. No. 116,959.

Podle morfologického, růstového a biochemického chování kultury byl získaný kmen zařazen do rodu Cryptococcus v souhlase s taxonomickými kritérii uvedenými v: The Yeasts, A taxonomie study, second edition, J. Lodder, ed., Nórth-Holland Publishing Company — Amsterdam — London, 1970; J. A. Barnett, R. W. Payne and D. Yarrow, Yeasts, Characterization and Identification, Cambridge, London, New York, New Rochelle, Melbourne, Sydney, 1983. Předmětný . produkční kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. le uložen v čs. sbírce kvasinek (Czechoslovak Collection of Yeasts) v Bratislavě pod č. CCY 17-22-1.According to the morphological, growth and biochemical behavior of the culture, the strain obtained was classified into the genus Cryptococcus in accordance with the taxonomic criteria set forth in: The Yeasts, A taxonomy study, second edition, J. Lodder, ed., North-Holland Publishing Company - Amsterdam - London, 1970; J.A. Barnett, R.W. Payne and D. Yarrow, Yeasts, Characterization and Identification, Cambridge, London, New York, New Rochelle, Melbourne, Sydney, 1983. Subject. Cryptococcus sp. le saved in MS. Czechoslovak Collection of Yeasts in Bratislava under No. CCY 17-22-1.

Podstata způsobu jednorázové a sekvenční selekce a nahromaďování kmenů mikroorganismů, zvláště kvasinek, hydrolyzujících fenoxymethylpenicilin na 6-amlnopenicilánovou kyselinu podle vynálezu spočívá v tom, že se kultury mikroorganismů naočkují do selektivních chemicky definovaných živných půd, kde jako jediný zdroj asimilovatelného dusíku, a/nebo jak dusíku, tak uhlíku slouží fenoxyacetamid, 4-hydroxyfenoxyacetamid, 3-fenylpropionamid, fenylakrylamid, a/nebo, kde jako jediné zdroje asimilovatelného Uhlíku slouží soli, kyseliny 3-fenvlpropionové, fenylakrylové, fenoxyoctové, hydro syfenoxyoctové, popřípadě s amidy těchto· kyselin sloužících jako jediné zdroje asimilovatelného dusíku, nebo s anorganickým zdrojem dusíku, výhodně s amonnými ionty, přičemž vyrostlé kultury mikroorganismů se v těchto půdách pasážují tak dlouho, až se nezvyšuje růstová rychlost, načež se vyrostlá kultura vyočkuje a konzer-. vuje.The principle of the method of single and sequential selection and accumulation of strains of microorganisms, in particular yeasts, hydrolyzing phenoxymethylpenicillin to 6-amlnopenicillanic acid according to the invention consists in inoculating the cultures of microorganisms into selective chemically defined nutrient media where the only source of assimilable nitrogen; nitrogen, and carbon are provided by phenoxyacetamide, 4-hydroxyphenoxyacetamide, 3-phenylpropionamide, phenylacrylamide, and / or wherein salts, 3-phenylpropionic acid, phenylacrylic, phenoxyacetic, hydrophenoxyacetic acids, or amides of these acids serve as the sole sources of assimilable Carbon. a single source of assimilable nitrogen, or an inorganic source of nitrogen, preferably ammonium ions, wherein the grown cultures of the microorganisms pass in these soils until growth rate is increased, whereupon the grown culture is seeded and conserved. vuje.

Předmětem vynálezu je dále kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1, který byl získán postupem uvedeným v předchozím odstavci, a který produkuje vnitrobuněčnou V-penicilin amidázu, která přednostně hydrolyzuje fenoxymethylpenicilin na , 6 -aminopenicilánovou kyselinu.The present invention further provides a strain of Cryptococcus sp. CCY 17-22-1, which was obtained as described in the preceding paragraph, and which produces intracellular V-penicillin amidase which preferentially hydrolyzes phenoxymethylpenicillin to 1,6-aminopenicillanic acid.

Vynález je dále doložen v příkladech provedení aniž' by se jimi omezoval.The invention is further exemplified without being limited thereto.

Příklad 1 sbírkových a 8 z přírody izolovaných kmenů kvasinek, které bylo možno podle citované literatury uvedené v popisu předmětného vynálezu taxonomicky zařadit do rodů Saccharomyces, Debaryomyces, Candida, Cryptococcus, Rhodotorula, Torulopsis a Trichosporon, byly naočkovány kličkou ze šikmého hladinového agaru do baněk obsahujících 50 ml tekuté živné půdy o složení: fenoxyacetamid 0,2 °/o, glukóza 0,5 až 1,0 proč. KH2PO4 0,1 %, K2HPO4 0,2 %, kvasničný extrakt 0,05 °/o, MgSO4 0,05 °/o, Na-sůl fenoxyoctové kyseliny0,05 %; pH živné půdy 6,5. Naočkované kultury v baňkách byly umístěny na třepací stroj a submersní kultivace probíhala při 28 °C.EXAMPLE 1 Collection and 8 wild-type yeast strains which could be taxonomically classified into Saccharomyces, Debaryomyces, Candida, Cryptococcus, Rhodotorula, Torulopsis and Trichosporon according to the literature cited herein were inoculated with sloping agar loops into flasks containing 50 ml of liquid broth containing: 0.2% phenoxyacetamide, glucose 0.5 to 1.0 why. KH 2 PO 4 0.1%, K 2 HPO 4 0.2%, yeast extract 0.05%, MgSO 4 0.05%, phenoxyacetic acid Na-salt 0.05%; pH of the culture medium 6.5. The inoculated flask cultures were placed on a shaker and the submerged culture was carried out at 28 ° C.

Z testovaných 30 kmenů vyrostlo za uvedených podmínek za různou dobu 19 kultur. Po odstředění suspenze byl analyzován buněčný sediment s cílem průkazu tvorby 6-APK z V-penicilinu postupy uvedenými v popisu předmětného vynálezu. Ani u jedné z vyrostlých kultur však nebyla prokázána aktivita V-penicilin amidázy.Of the 30 strains tested, 19 cultures grew under the indicated conditions at various times. After centrifugation of the suspension, the cell sediment was analyzed to demonstrate the formation of 6-APK from V-penicillin according to the procedures described herein. However, V-penicillin amidase activity was not demonstrated in any of the grown cultures.

Dále bylo postupováno tak, že 11 nerostoucích kmenů bylo z dalšího výběru vyřazeno a 19 rostoucích kmenů v živné půdě, kde fenoxyacetamid sloužil jako jediný zdroj dusíku, bylo naočkováno do baněk obsahujících 50 ml neselektivní tekuté živné půdy o složení: hydrolyzát kaseinu 0,5 %, pepton 0,5%, kvasničný extrakt 0,1 %, KH2PO4 0,3 %, NH4H2PO4 0,5 %, MgSO4 0,05 %, Na-sůl fenoxyoctové kyseliny 0,05 °/o; pH živné půdy 6,5. Naočkované kultury v baňkách byly umístěny na třepací stroj a submersní kultivace probíhala při 28 °C 24 až 48 hodin. Sedimenty intaktních buněk po odstředění byly opět analyzovány na průkaz tvorby 6-APK z V-penicilinu.In addition, 11 non-growing strains were discarded and 19 growing strains in the broth, where phenoxyacetamide served as the sole nitrogen source, were inoculated into flasks containing 50 ml of non-selective liquid broth containing: casein hydrolyzate 0.5% , peptone 0.5%, yeast extract 0.1%, KH 2 PO 4 0.3%, NH 4 H 2 PO 4 0.5%, MgSO 4 0.05%, phenoxyacetic acid sodium salt 0.05 ° /O; pH of the culture medium 6.5. The inoculated flask cultures were placed on a shaker and the submerged cultures were run at 28 ° C for 24 to 48 hours. Intact cell sediments after centrifugation were again analyzed for 6-APK formation from V-penicillin.

U 19 kultur vyrostlých za uvedených podmínek byla u 5 kmenů analyticky prokázána tvorba 6-APK z V-penicilinu. Jednalo se o kmeny Candida utilis, Rhodotorula sp., Rhodotorula pulcherina, Rhodotorula glutinis a Cryptococcus sp.In 19 cultures grown under these conditions, 5 strains were analytically proven to produce 6-APK from V-penicillin. These were strains of Candida utilis, Rhodotorula sp., Rhodotorula pulcherina, Rhodotorula glutinis and Cryptococcus sp.

Uvedených 5 kmenů bylo v dalším užším výběru hodnoceno kvantitativně na množství produkované V-penicilin amidázy. Kultury byly naočkovány do baněk obsahujících 50 ml tekuté neselektivní živné půdy o složení: kukuřičný extrakt — vysrážený, filtrovaný 2 '% (vlhká hmota), KH2PO4 0,1 °/o, KaHPO4 0,2 °/o, MgSO4 0,05 θ/o, Na-sůl fenoxyoctové kyseliny 0,05 %; pH živné půdy 6,9. Submersní kultivace probíhala při 28 stupních Celsia po dobu 30 hodin. Po odstředění kultur byly sedimenty kvantitativně analyzovány na obsah V-penicilin amidázy v buňkách.These 5 strains were evaluated in quantitative terms for the amount of V-penicillin amidase produced. The cultures were inoculated into flasks containing 50 ml of liquid non-selective broth containing: corn extract - precipitated, filtered 2 '% (wet mass), KH 2 PO 4 0.1 ° / o, K and HPO 4 0.2 ° / o , MgSO 4 0.05 θ / o, Phenoxyacetic acid Na-salt 0.05%; pH of the culture medium 6.9. Submerged cultivation was carried out at 28 degrees Celsius for 30 hours. After centrifugation of the cultures, the sediments were quantitatively analyzed for V-penicillin amidase content in the cells.

U všech kmenů byla prokázána specifická aktivita tohoto enzymu, avšak kvantitativní rozdíly mezi kmeny vyrostlými za uvedených podmínek byly až několikařádové. Nejvyšší specifické aktivity bylo dosaženo u kmene Cryptococcus sp. (0,28 μΐηοΐ 6-APK. .mg-1 suché hmoty buněk) a Rhodotorula glutinis (0,012 μΐηοΐ 6-APK . mg1 suché hmoty buněk). Pro další selekci a nahromaďování výše produkčních kmenů byl proto zvolen jako výchozí materiál kmen Cryptococcus sp., neboť jeho specifická aktivita byla více jak řádově vyšší ve srovnání s druhým získaným izolátem.The specific activity of this enzyme was demonstrated in all strains, but the quantitative differences between the strains grown under these conditions were several orders of magnitude. The highest specific activity was obtained in the Cryptococcus sp. (0.28 μΐηοΐ 6-APK .mg -1 dry matter cells) and Rhodotorula glutinis (0.012 μΐηοΐ 6-APK. Mg 1 dry matter cells). Therefore, the Cryptococcus sp. Strain was chosen as the starting material for further selection and accumulation of the above production strains, since its specific activity was more than orders of magnitude higher compared to the second isolate obtained.

P ř í k 1 a d 2Example 1 a d 2

Při zkoumání specifity indukce V-penicilin amidázy během submersní kultivace kmene Cryptococcus sp. v živných půdách obsahujících sloučeniny chemicky identické nebo chemicky blízké postranním řetězcům přirozených a polosyntetických penicilinů bylo zjištěno, že nejvyšších specifických aktivit enzymu v buňkách je dosahováno v přítomnosti solí 3-fenylpropionové, 4-hydroxyfenoxyoctové, skořicové a fenoxyoctové kyseliny. Tato skutečnost je uvedená v přehledné charakterizaci kmene Cryptococcus sp. v popisu předmětného vynálezu. Některé z uvedených sloučenin jsou využívány jako jediné zdroje asimilovatelného uhlíku, jiné nikoliv. Některé tyto látky tedy fungují jako asimilovatelné induktory, jiné jako „zdaťma“ induktory. Těchto poznaných skutečností bylo využito k volbě selektivní chemicky definované živné půdy s cílem selekce a nahromaďování rychle rostoucích kmenů na uvedených sloučeninách jako jediných zdrojích asimilovatelného uhlíku, zvláště proto, že většina těchto látek je silně toxická a inhibuje růst.Investigating the specificity of V-penicillin amidase induction during submersive cultivation of the Cryptococcus sp. in nutrient broths containing compounds chemically identical or chemically close to the side chains of natural and semi-synthetic penicillins, it has been found that the highest specific activity of the enzyme in cells is achieved in the presence of salts of 3-phenylpropionic, 4-hydroxyphenoxyacetic, cinnamic and phenoxyacetic acid. This is reported in the review of the Cryptococcus sp. in the description of the present invention. Some of these compounds are used as the sole sources of assimilable carbon, others are not. Thus, some of these substances act as assimilatable inducers, others as "seemingly" inducers. These findings have been utilized to select selective chemically defined nutrient media to select and accumulate fast-growing strains on said compounds as the only sources of assimilable carbon, especially since most of these are highly toxic and inhibit growth.

Kmen Cryptococcus sp., který byl získán, jak je uvedeno v příkladu 1, byl očkován ze šikmého sladinového agaru do baněk obsahujících 150 ml tekuté živné půdy o složení: kukuřičný extrakt — vysrážený, filtrovaný 2 % (vlhká hmota), KH2PO4 0,1 K2HPO4 0,2 °/o, kvasničný extrakt 0,05 %, thiamin 0,01 °/o, MgSO4 0,05 %, K-sůl 3-fenylproplonové kyseliny 0,1 %, pH živné půdy 7,2. Submersní kultivace probíhala při 28 °C po dobu 24 hodin.The strain Cryptococcus sp., Obtained as in Example 1, was inoculated from sloping wort agar into flasks containing 150 ml of liquid broth containing: corn extract - precipitated, filtered 2% (wet mass), KH 2 PO 4 0.1 K 2 HPO 4 0.2 ° / o, yeast extract 0.05%, thiamine 0.01% / o, MgSO 4 0.05%, K-salt of 3-phenylproponic acid 0.1%, nutrient pH soil 7,2. Submerged culture was carried out at 28 ° C for 24 hours.

Vyrostlá kultura byla použita jako inokulum (5 obj. % suspenze) k očkování baněk obsahujících 150 ml tekuté živné půdy o složení: K-sůl 3-fenylpropionové kyseliny 0,5 %, KH2PO4 0,2 %, NaCl 0,05 %, kvasničný extrakt 0,03 °/o, (NH4j2SO4 0,3 °/o, NH4H2PO4 0,2 %, CaCl2 0,002 %, FeSO4 0,0005 proč. MgSO4 0,01 °/o; pH živné půdy 7,3.The grown culture was used as an inoculum (5 vol% suspension) to inoculate flasks containing 150 ml of liquid broth containing: K-salt of 3-phenylpropionic acid 0.5%, KH 2 PO 4 0.2%, NaCl 0.05 %, yeast extract 0.03 ° / o, (NH 4 j 2 SO 4 0.3 ° / o, NH 4 H 2 PO 4 0.2%, CaCl 2 0.002%, FeSO 4 0.0005 why. MgSO 4 0.01% pH of the broth 7.3.

Submersní kultivace probíhala střídavým pasážováním kultur při 28 °C vždy přenosem 5 obj. '% vyrostlé kultury ze súbkultury prvé do druhé, z druhé do třetí apod. První subkultura vyrostla za 120 hodin při dosažení suché hmoty buněk při přibližně 1 mg. ml1, druhá subkultura za 70 hodin při dosažení téže sušiny, třetí subkultura za 50 hodin, čtvrtá za 70 hodin a pátá subkultura za 45 hodin při dosažení 1,2 mg su240247 siny. ml-1. V šesté a následujících subkulturách se růstová rychlost a výtěžek sušiny buněk nezvyšoval.Submerged culture was performed by alternating passage of the cultures at 28 ° C, each time by transferring 5 vol% of the grown culture from the first to the second, second to the third, and so on. The first subculture was grown in 120 hours to dry cell mass at approximately 1 mg. ml 1 , the second subculture in 70 hours at the same dry matter, the third subculture in 50 hours, the fourth in 70 hours and the fifth subculture in 45 hours at 1.2 mg su240247 sine. ml -1 . In the sixth and subsequent subcultures, the growth rate and cell dry matter yield did not increase.

Nahromaděná populace rychleji rostoucích buněk v živné půdě obsahující K-sůl 3-fenylpropionové kyseliny jako jediný zdroj asimilovatelného uhlíku byla z poslední subkultury vyseta na Petriho misky se sladinovým agarem, vyočkovány individuální kolonie a tak získán rychleji rostoucí kmen utilizující 3-fenylpropionovou kyselinu jako jediný zdroj uhlíku. Specifická aktivita V-penlcilin amidázy u tohoto kmene se pohybuje okolo- 4 až 6 ,umol 6-APK. mg1 suché hmoíy buněk při jeho submersní kultivaci v baňkách v tekuté živné půdě obsahující: kukuřičný extrakt — vysrážený, filtrovaný 0,5 % (vlhká hmota), K-sůl, 3-fenylpropionové kyseliny 0,5 %, KH2PO4 0,1 %, K2HPO4 0,2 %, kvasničný extrakt 0,05 %, thiamin 0,01 °/o, MgSO4 0,01 %; pH živné půdy 7,2. Výtěžek suché hmoty buněk se pohybuje okolo 1,5 až 1,8 mg. ml-.1 za 46 hodin kultivace při 28 °C.The accumulated population of faster-growing cells in the broth containing 3-phenylpropionic acid K-salt as the only assimilable carbon source was sown from the last subculture on wort agar petri dishes, inoculated with individual colonies to obtain a faster growing 3-phenylpropionic acid utilizing strain carbon. The specific activity of V-penlcilin amidase in this strain is about 4-6 µmol 6-APK. mg 1 dry cell culture in submersive culture in flasks in liquid medium containing: corn extract - precipitated, filtered 0,5% (wet mass), K-salt, 3-phenylpropionic acid 0,5%, KH 2 PO 4 0 1%, K 2 HPO 4 0.2%, yeast extract 0.05%, thiamine 0.01%, MgSO 4 0.01%; pH of broth 7.2. The yield of dry cell mass is about 1.5 to 1.8 mg. ml - . 1 at 46 hours culture at 28 ° C.

P ř í k 1 a d 3Example 1 a d 3

Při sledování substrátové specifity V penicilin amidázy u intaktních buněk Cryptococcus sp., k sloučeninám obsahujícím v molekule amidickou CO—NH vazbu, zvláště amidům kyselin chemicky blízkých postranním řetězcům přírodních a polosyntetických penicilinů bylo zjištěno, že některé z nich jsou rovněž substráty, i když reakční rychlost enzymové hydrolýzy je řádově až několikařádově posunuta ve prospěch hydrolýzy V-penicllinu jako substrátu. Tedy jde vesměs o velmi špatné substráty ve srovnání s V-penicilinem. Tato skutečnost je uvedena v přehledné charakterizaci kmene Cryptococcus sp. v popisu předmětného vynálezu. Nicméně těchto poznaných skutečností byto využito k volbě selektivní chemicky definované živné půdy s cílem nahromadění výše produkčních kmenů použitím amidů zmíněných látek jako jediných zdrojů asimilovatelného dusíku.When investigating the substrate specificity of V penicillin amidase in intact Cryptococcus sp. Cells, to compounds containing amidic CO-NH bond in the molecule, especially amides of acids chemically close to the side chains of natural and semi-synthetic penicillins, some have been found to be substrates, the rate of enzyme hydrolysis is shifted in the order of several orders of magnitude to favor the hydrolysis of V-penicillin as a substrate. Thus, these are all very poor substrates compared to V-penicillin. This is shown in the review of the Cryptococcus sp. in the description of the present invention. However, these facts have been utilized to select selective chemically defined nutrient media in order to accumulate the production strains using amides of said substances as the only sources of assimilable nitrogen.

Kmen Cryptococcus sp. získaný jak je uvedeno· v příkladu 2, byl očkován ze šikmého sladinového agaru do baněk obsahujících 150 ml tekuté živné půdy o složení, které je uvedeno- rovněž v příkladu 2 v posledním odstavci. Po 46hodinové submersní kultivaci při 28 °C bylo této kultury použito jako inokula (5 obj. °/o) pro očkování selektivní tekuté živné půdy v baňkách plněných 150 ml půdy o složení: 4-hydroxyfenoxyacetamid 0,2 °/o, K-sůl 3-fenylpronlo-nové kyseliny 0,5 °/o, KH2PO4 0,1 %, K2HPO4 0,2 proč. kvasničný extrakt 0,03 °/o, ťhiamln 0,01 proč. MgSO4 0,01 %, pH živné půdy 7,2.The strain Cryptococcus sp. obtained as in Example 2 was inoculated from sloping wort agar into flasks containing 150 ml of liquid broth of the composition shown in Example 2, last paragraph. After a 46-hour submersible culture at 28 ° C, this culture was used as an inoculum (5 vol / o) to inoculate the selective liquid broth in flasks filled with 150 ml of soil containing: 4-hydroxyphenoxyacetamide 0.2% / o, K-salt 3-phenylprononic acids 0.5%, KH 2 PO 4 0.1%, K 2 HPO 4 0.2 why. yeast extract 0.03%, thiamine 0.01 why. MgSO 4 0.01%, pH of broth 7.2.

Submersní kultivace probíhá střídavým pasážováním kultur při 28 CC vždy přenosem 5 obj. % vyrostlé kultury ze subkultury prvé do druhé a následujících tak dlouho, až se růstová rychlost neměnila.Submerged cultivation is carried out by alternating passage of the cultures at 28 ° C in each case by transferring 5 vol.% Of the grown culture from the first to the second and subsequent subcultures until the growth rate has not changed.

Heterogenní populace buněk získaná sekvenční selekcí v živné půdě, kde jako jediný zdroj asimilovatelného dusíku sloužil 4-hydro-xyfenoxyacetamid a jako jediný zdroj asimilovatelného uhlíku K-sůl 3-fenylpro-. pionové kyseliny byla vyseta na Petriho misky se sladinovým agarem, vyočkovány individuální kolonie a tak získán kmen se zvýšeným obsahem V-penicilin amidázy vbuňkách.A heterogeneous cell population obtained by sequential selection in a culture medium, wherein 4-hydroxyphenoxyacetamide served as the only source of assimilable nitrogen and 3-phenylpro- K-salt was the only source of assimilable carbon. pionic acid was plated on wort agar petri dishes, inoculated with individual colonies to obtain a strain with increased V-penicillin amidase content in the cells.

Specifická aktivita enzymu u tohoto kmene se pohybuje mezi 6 až 12 ,μπιοΙ 6-APK . . mg-1 suchá hmoty buněk při jeho submersní kultivaci v baňkách v tekuté živné půdě obsahující: K-sůl kyseliny 3-fenylpropionové 0,5 %, KH2PO4 0,2 %, NH4H2PO4 0,2 %, (NH4j9SO4 0,3 %, kvasničný extrakt 0,05 %, thiamin 0,01 °/o, MgSO4 0,01 %, CaCl2 0,002 proč., FeSO4 0,0005 %; pH živné půdy 7,2. Výtěžek suché hmoty buněk se pohybuje okolo 1,3 mg. ml'1 za 48 hodin při 28 °C.The specific activity of the enzyme in this strain is between 6 and 12 μπιοΙ 6-APK. . mg -1 dry cell mass in its submersible culture in flasks in liquid medium containing: K-salt of 3-phenylpropionic acid 0,5%, KH 2 PO 4 0,2%, NH 4 H 2 PO 4 0,2%, (NH 4 J 9 SO 4 0.3%, yeast extract 0.05%, thiamine 0.01%, MgSO 4 0.01%, CaCl 2 0.002 why., FeSO 4 0.0005%; pH of nutrient medium 7.2. the yield of cell dry matter is about 1.3 mg. ml -1 for 48 hours at 28 ° C.

Claims (2)

PREDMETSUBJECT 1. Způsob selekce a nahromaďování mikroorganismů hydrolyzujících fenox-ymethylpenlcilin na 6-aminopenicilánovou kyseliny, vyznačený tím, že se kultury mikroorganismů naočkují do selektivních chemicky definovaných živných půd, kde jako jediný zdroj asimilovatelného dusíku, a/nebo- jak dusíku, tak uhlíku slouží fenoxyacetamid, 4-hydro-xyfenoxyacetamid, 3-fenylpropionaraid, fenylakrylamid, a/nebo kde jako· jediné zdroje asimilovatelného uhlíku slouží soli kyseliny 3-fenylpropionové, fenylakrylové, fenoxyoctové, 4-hydroxyfenoxyoctové, popřípadě s amidy těchto kyselin sloužícíchMethod for the selection and accumulation of microorganisms hydrolyzing phenox-ymethylpenilcilin to 6-aminopenicillanic acid, characterized in that the cultures of microorganisms are inoculated into selective chemically defined nutrient media, where phenoxyacetamide serves as the only source of assimilable nitrogen and / or nitrogen and carbon. , 4-hydroxyphenoxyacetamide, 3-phenylpropionaraid, phenylacrylamide, and / or wherein the only sources of assimilable carbon are the salts of 3-phenylpropionic acid, phenylacrylic acid, phenoxyacetic acid, 4-hydroxyphenoxyacetic acid, or amides thereof VYNÁLEZU jako jediné zdroje asimilovatelného dusíku, nebo s anorganickým zdrojem dusíku, výhodně s amonnými ionty, přičemž vyrostlé kultury mikroorganismů se v těchto půdách pasážují íak dlouho, až se nezvyšuje růstová rychlost, načež se vyrostlá kultura vyočkuje a konzervuje.OF THE INVENTION as the sole assimilable nitrogen source or with an inorganic nitrogen source, preferably with ammonium ions, wherein the grown cultures of the microorganisms pass through the soils until the growth rate is increased, whereupon the grown culture is seeded and preserved. 2. Kmen mikroorganismu Cryptococcus sp. CCY 17-22-1, produkující vnitrobuněčnou V-penicilin amidázu, která přednostně hydrolyzyje fenoxymethyípenicilin na 6-aminopenicilánovou kyselinu, získaný způsobem podle bodu 1.2. The strain of Cryptococcus sp. CCY 17-22-1, producing intracellular V-penicillin amidase which preferably hydrolyzes phenoxymethypenicillin to 6-aminopenicillanic acid, obtained by the method of item 1.
CS844084A 1984-11-06 1984-11-06 A method for selecting and accumulating phenoxymethylpenicillin hydrolyzing microorganisms to 8-aminopenicillanic acid and a strain of Cryptococcus sp. CCY 17-22-1 CS240247B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS844084A CS240247B1 (en) 1984-11-06 1984-11-06 A method for selecting and accumulating phenoxymethylpenicillin hydrolyzing microorganisms to 8-aminopenicillanic acid and a strain of Cryptococcus sp. CCY 17-22-1

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS844084A CS240247B1 (en) 1984-11-06 1984-11-06 A method for selecting and accumulating phenoxymethylpenicillin hydrolyzing microorganisms to 8-aminopenicillanic acid and a strain of Cryptococcus sp. CCY 17-22-1

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS240247B1 true CS240247B1 (en) 1986-02-13

Family

ID=5434904

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS844084A CS240247B1 (en) 1984-11-06 1984-11-06 A method for selecting and accumulating phenoxymethylpenicillin hydrolyzing microorganisms to 8-aminopenicillanic acid and a strain of Cryptococcus sp. CCY 17-22-1

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS240247B1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gosmann et al. Oxygen uptake of microorganisms entrapped in Ca-alginate
CA1122552A (en) Enzymic microbiological process for producing optically active aminoacids starting from hydanthoins and/or racemic carbamoyl derivatives
Cole Formation of 6-aminopenicillanic acid, penicillins, and penicillin acylase by various fungi
Syldatk et al. Substrate-and stereospecificity, induction and metallo-dependence of a microbial hydantoinase
Tsugawa et al. Production of l-Glutamic Acid from dl-Hydantoin-5-propionic Acid by Microoganisms: Part I. Screening of l-Glutamic Acid-Producing Microorganisms and Some Optimal Conditions for Production of l-Glutamic Acid
US4111749A (en) Method of converting racemic hydantoins into optically active aminoacids
FI70596B (en) FOERFARANDE FOER ENZYMATISK HYDROLYSERING AV RAFFINOS
JPS60244295A (en) Production of (+)- trans-cyclopropane carboxylic acid
Chander et al. Factors affecting lipase production in Rhizopus nigricans
Ohkishi et al. Distribution of cysteine desulfhydrase in microorganisms
CS240247B1 (en) A method for selecting and accumulating phenoxymethylpenicillin hydrolyzing microorganisms to 8-aminopenicillanic acid and a strain of Cryptococcus sp. CCY 17-22-1
Eller et al. STUDIES ON BACTERIAL UTILIZATION OF URONIC ACIDS IV: Alginolytic and Mannuronic Acid Oxidizing Isolates
US20040106172A1 (en) Hydrolyzing/dehydration condensing enzymes, method for producing the enzyme and method for synthesizing amide by using the enzyme
HU181488B (en) Process for the hydrolysis of racemic hydantoins into optically active n-carbamoyl-aminoacid derivatives and for preparing the hydrolyzing enzymatic complex
US5206162A (en) Process for making D-aminoacylase
US4357425A (en) Process for producing L-amino acid oxidase
Bano et al. Characterization of Crude Protease Produced by Pleurotus Eryngii ATCC 90888.
CN108018246B (en) Bacterial strain for co-production of chitosanase and gamma-polyglutamic acid and application thereof
JP2707093B2 (en) New microorganism
SU644833A1 (en) 85 escherichia coli strain as producer of l-aspartic acid
Shukla et al. Study of some parameters for the production of dextranase by Penicillium aculeatum
El-Sayed et al. Semicontinuous penicillin production by two Penicillium chrysogenum strains immobilized in calcium alginate beads
CA1334741C (en) Method for production of a growth factor for bifidobacterium sp
RU2337954C1 (en) Strain of bacteria alcaligenes denitrificans -nitrilase producent
KR910007849B1 (en) New microorganism stretomyces spy-183