CS219189B1 - Sposob konzervácie bazídiomycéty Coprinus sp., schopnej degradácie celuló zovych substrátov - Google Patents

Sposob konzervácie bazídiomycéty Coprinus sp., schopnej degradácie celuló zovych substrátov Download PDF

Info

Publication number
CS219189B1
CS219189B1 CS570381A CS570381A CS219189B1 CS 219189 B1 CS219189 B1 CS 219189B1 CS 570381 A CS570381 A CS 570381A CS 570381 A CS570381 A CS 570381A CS 219189 B1 CS219189 B1 CS 219189B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
culture
solution
fragments
suspension
ampoules
Prior art date
Application number
CS570381A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Inventor
Jan Fuska
Alzbeta Fuskova
Rudolf Jilek
Alzbeta Khandlova
Original Assignee
Jan Fuska
Alzbeta Fuskova
Rudolf Jilek
Alzbeta Khandlova
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jan Fuska, Alzbeta Fuskova, Rudolf Jilek, Alzbeta Khandlova filed Critical Jan Fuska
Priority to CS570381A priority Critical patent/CS219189B1/cs
Publication of CS219189B1 publication Critical patent/CS219189B1/cs

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Vynález sa týŘa spósobu konzervácie bazídio-mycéty kmeňov Corpinus sp., a jej mutantov voformě výtrusov a fragmentov hýf prí velmi nízkejvlhkosti.
Kmene bazídiomycét sa najčastejšie uchovávajúvo formě výtrusov alebo pravidelným pasážovanímkultur na vhodných živných agarových médiách.Uchováváme vo formě výtrusov je vhodné predo-všetkým na udržovánié zbierkových kmeňov. Pritomto postupe je potřebné kmene kultivovat’ zatakých podmienok, aby došlo k vytváraniu plodni-čiek, čo je technicky náročné a obyčajne vyžadujéi speciálně kultivačně postupy. Viabilita výtrusovCoprinus sp. je iba niekolko %, pričom výtrusyv tej istej plodničke sa od seba odlišujú ajgeneticky. ,
Uschováme popísaným spósobom je preto ná-ročné a nie velmi spoíahlivé, pričom pri použitítakéhoto uschovávania pracujeme v ďalšom tech-nologickom procese s materiálom geneticky znač-né heterogénnym.
Keďže mnohé mutanty získané šfachtením lenvefmi ťažko tvoria výtrusy, připadne túto schop-nost’ stratili úplné, je nutné takéto kmene uchová-vat’ ich pravidelným pasázovaním cez živné agarovémédiá a ukladať ich po vyrastení pri teplote cca+4 °C. Dochádza tak k značnému riziku, že po-stupným pasážovaním sa vlastnosti vyšfachtenýchkmeňov menia, připadne sa kultúry postupnéobohacujú takým fenotypom, pre ktorý sú použitépodmienky pasážovania optimálně. . Tieto nevýhody sú odstraněné u spósobu uscho-vávania bazídiomycéty Coprinus sp., schopnéjdegradácie celulózových substrátov podlá vynále-zu, ktorého podstatou je, že sa na skleněné guličkypriemeru 3 až 0 mm naleje roztok sladinky o hod-notě pH 6,5 v takom objeme, aby jeho hladinanepřevyšovala povrch guličiek a po sterilizácii sapóda naočkuje bazídiomycétou Coprinus sp.,a kultivuje 5 až 10 dní pri teplote 28 až 35 °C,s výhodou 32 °C. Potom sa povrch vyrastenejkultúry preleje sterilným, 3 až 5 % hmotnostnýmroztokom maltózy v množstve 2,5 ml na 10 cm2povrchu. Dalej sa mycélium mechanicky rozdrvíí a vytvořená suspenzia sa ampulkuje po 2 mli a přikryje vatovou zátkou a vkládá sa do mraziace-5 ho kúpefa na 10 až 30 minút pri teplote —50 až —70 °C a voda z kultúr sa pri tlaku 10"1 Paodsublimuje za 12 až 24 hodin a ampulovanévzorky s vysušenou kultúrou sa okamžité zataviaa uložia pri bežnej laboratómej teplote.
Postup je založený na okamžitom převedenívody, prítomnej v buňkách kultúry, do pevnejformy pri velmi nízkých teplotách tak, aby nedošlok poškodeniu membrány buňky. Potom sa voda zanízkého tlaku odstráni tak, aby nedošlo k jejpřechodu do tekutej fázy. Keďže takýmto spóso-bom sa móžu uchovávat’ aj kmene vo forměfragmentov hýf, oijdií alebo chlamydospór, vyhovu-je tento postup aj pre tie kmene, ktoré netvoriaplodničky alebo ich spolu s výtrusmi tvoria lenvelmi zriedkavo. 219189
Pre tento účel sa vypracoval kultivačný postupůktorý umožnil kultivovat’ kmene tak, aby vytváralimaximum vzdušného mycélia, čo umožňuje kulti-vácia na pevných inertných nosičoch. Ak sa vhod-ným spsobom monokolónia Coprinus sp. kultivujestaticky určitú dobu, vytvoří podhubie a množstvovzdušných hýf, připadne oidií a chlamydospór. Pomechanickom zhomogenizovaní podhubia i vlá-kien možno připravit* pódia velkosti porastenejplochy až 25 kusov konzerv takmer rovnakejkvality. Kmeňový materiál z konzervy možnobezprostredne previesť už po krátkom čase dovegetatívnej formy a kedykoívek použit’ vo výrobě.Štandardizáciou inokulačného materiálu sa naviac ivýznamné stabilizuje celý výrobný proces. Příprava konzerv kmeňov Coprinus takýmtospósobom a použitie zakonzervovaných kmeňov jeuvedené v nasledujúcich príkladoch. Příklad 1
Plodnička bazídiomycéty Coprinus sp. sa prene-sie do malej E-baňky, preleje sa 2—4 ml 5 %roztoku maltózy, ktorýobsahuje 100 mj/ml penici-línu a C a 100 μg/ml streptomycín sulfátu. Plodnič- ,ka sa mechanicky rozruší a uvolněné výtrusy safiltráciou cez tenkú vrstvu vaty zbavia fragmentovplodničiek a suspenzia výtrusov obsahu 2 ml saprenesie do tenkostennej sterilnej ampule o obje-me 20 ml. Ampule so suspenziou výtrusov sa vložiana 20 minút do mraziaceho kúpela o teplote —40až —70 °C apotom sa sublimáciou pri tlaku 10”1 Pazbavia vody. Po vysušení sa ampule okamžitézatavia. Vlhkosť obsahu sa pohybuje cca0,1-0,2%. Příklad 2
Kultivačná póda, ktoroutje 3% sladinkovýagar o pH 6,5 sa naočkuje hyfami bazídiomycétyCoprinus sp. a ponechá sa kultivovat 5 až 10 dní priteplote 28 °C. Povrch vyrastenej kultúry sa prelejesterilným 5 % roztokom maltózy o obsahu 3 ml na12 cm2 povrchu agaru a pomocou dróteného očkaalebo sklenej tyčinky sa zoškrabú vzdušné vláknfavyrastené na povrchu agaru. Připravená suspenziahýf a ich fragmentov, sa sterilným spósotíoinrozplní po 2 ml do 20 ml tenkostenných ampúl,používaných pre přípravu injekčných roztokov.Ampule sa prekryjú vatovou zátkou a vložia domraziaceho kúpefa na 10 až 20 minút pri teplote—50 až —70 °C a po zmrazení sa voda v priebehu10—20 hodin odsublimuje pri tlaku 10“1 Pa. Povysušení sa ampule okamžité zatavia a uložia prilaboratómej teplote. Příklad 3
Do 250 ml E-baňky, ktorej dno je pokrytéskleněnými guličkami priemeru 3—6 mm sa přidá ;10 ml 3 % sterilnej sladinky a po sterilizácii sa napovrchu guličiek položí agarový bloček približnejvelkosti 1 cm2 vyrastenej kultúry Coprinus sp.Kultivuje sa 5 až 7 dní pri teplote 28 až 32 °C. Kukultúre, vyrastenej po celom povrchu, sa přidá

Claims (3)

4 219189 10 ml 5 % roztoku maltózy, kultúra sa mechanickydokladné zhomogenizuje a rozplní sa po 2 ml do20 ml tenkostenných ampúl překrytých vatovouzátkou. Po bezprostrednom zmrazení počas 15 až30 min., pri —50 až —70 °C sa pri tlaku 10“1 Pakultúra zbaví vody a ampule sa za běžného tlakuzatavia. Příklad 4 Do Rouxovej ffaše o objeme 1000 ml sa vsypůskleněné guličky v takom množstve, aby pokrývalicelú plochu 200 cm2. Po přidaní 50 až 60 ml 3%roztoku sladinky o hodnotě pH 6,5 sa pódavysterilizúje a po ochladení sa naočkuje vbdnoususpenziou vlákien, připadne ich fragmentov, bazí-diomycéty Coprinuš sp. Po 7 až 10-dňovej kultivá-cii pri teplote 28—32 °C sa celý povrch tvořenýguličkami pokryje súvislou vrstvoumycélie. Přidása 40 až 60 ml 5% sterilného roztoku maltózya mechanickým pohybom sa připraví suspenzia hýfa ich fragmentov kultúry Coprinuš sp., ktorá sa po 2 ml rozplní do 20 ml tenkostenných ampúl. Popřekrytí vatovou zátkou sa obsah ampúl okamžitézmrazí počas 15 až 30 minút, pri —50 až —70 °Ca pri tlaku 10“1 Pa sa sublimáciou zbaví vody.Ampule sa zatavia pri normálnom atmosferickomtlaku. Celkom sa z jednej Rouxovej flaše připraví20 až 25 konzerv, ktoré obsahujú kultúru Coprinušsp. rovnakej kvality. Příklad 5 V Rouxových fTašiach o objeme 1000 ml sapřipraví kultúra Coprinuš sp. postupom popísanýmv příklade 4. Po ukončenéj kultivácii sa připravísuspenzia hýf a ich fragmentov, ktoré sa užuvedeným spósobom prevedú do formy lyofilizo-vaných konzerv. Zbytok hýf a ich fragmentovpřibližné 10 ml objemu, ktoré ostali zachytenémedzi nosným materiálom, sa znovu preleje steril-ným roztokom 3 % sladinky o hodnotě pH 6,5,dokladné sa obsah Rouxovej ffaše premieša a po-nechá sa opáť kultivovat’, ale kratší čas, a to 4 až PREDMET
1. Spósob konzervácie bazídiomycéty Coprinušsp., schopnéj degradácie celulózových substrátovvyznačený tým, že na skleněné guličky priemeru 3 až 6 mm sa naleje roztok sladinky o hodnotě p|í6,5 v takom objeme, aby jeho hladina nepřevyšo-vala povrch guličiek a po sterilizácii sa pócíanaočkuje bazídiomycétou Coprinuš sp. a kultivujesa 5 až 10 dní pri teplote 28 až 35 °C, s výhodou32 °C, dalej, sa povrch vyrastenej kultúry prelejesterilným 3 až 5 % hmotnostným roztokom maltó- 5 dní pri 28—32 °C. Po přidaní sterilného roztoku5%-ného roztoku maltózy sa suspenzia fragmen-tov a celých hýf kultúry Coprinuš sp. použije napřípravu lyofilizovaných konzerv alebo sa priamovyužije na přípravu vegetatívneho inokula II.stupňa. Příklad 6 Ampula, obsahujúca 2 ml lyofilizovanej kultúryCoprinuš sp., sa sterilným spósobom otvorí, přidása 2 ml kultivačného média a v priebehu 2—3 min.sa připraví suspenzia kultúry, ktorá sa sterilněpreleje do 500 ml banky, obsahujúcej 100 mlmédia nasledujúceho zloženia: glukóza 3 g, močo-vina 0,07 g, kukuřičný výluh s obsahom 50 %sušiny 1,0 g, KH2PO4 0,1 g, KC1 0,05 g MgSO40,001 g, doplní sa vpdou do 100 ml a pH sa upravína 6,5. Kultivuje sa pri 28 °C na rotačnej trepačke220 ot. min.-1 po dobu 72 až 96 hodin. Taktopřipravené inokulum sa použije na očkovaniepódy rovnakého zloženia ako pri príprave ino-kula. Získá sa 8 — 12 g sušiny s obsahom24—36 % dusíkatých látok. Výsledky sú rovnakéako pri použití nalyofilizovanej kultúry Coprinušsp. Příklad 7 Inokulom připraveným z lyofilizovanej kultúryCoprinuš sp. ako je uvedené v příklade 6 sa očkujecelulózový substrát, ktorou je slámová drž s obsa-hom 70—80 % vlhkosti, do ktorého boli přidané nahmotnost’ 1 kg nasledujúce živitny: močovina 32 g,K2HPO4 1,6 g. Substrát sa uloží do hliníkovýchalebo umelohmotových plytkých nádob velkosti100 x 120 cm v hrúbke vrstvy 4—8 cm. Po spařenísa substrát naočkuje vegetatívnym inokulom II.stupňa a to 60 až 100 ml na 1 kg substrátua ponechá sa kultivovat’ 7—12 dní pri teplote32
± 2 °C, pri relatívnej vlhkosti ovzdušia v kulti-vačnom priestore 60—98 %. Po ukončenej kulti-vácii obsahuje substrát 20 % dusíkatých látok. VYNÁLEZU žy v množstve 2,5 ml na 10 cm2 povrchu, potom samycélium mechanicky rozdrtí a vytvořená suspen-zia fragmentov hyf, oidií a chlamydospor sa ampul-ku je po 2 ml a přikryje vatovou zátkou a vkládá sado mraziaceho kúpda na 10 až 30 minút pri teplote— 50 až —70 °C a voda z kultúr sa pri tlaku 10-1 Paodsublimuje za 12 až 24 hodin a ampulovanévzorky s vysušenou kultúrou sa okamžité zataviaa uložia pri laboratorněj teplote.
CS570381A 1981-07-27 1981-07-27 Sposob konzervácie bazídiomycéty Coprinus sp., schopnej degradácie celuló zovych substrátov CS219189B1 (sk)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS570381A CS219189B1 (sk) 1981-07-27 1981-07-27 Sposob konzervácie bazídiomycéty Coprinus sp., schopnej degradácie celuló zovych substrátov

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS570381A CS219189B1 (sk) 1981-07-27 1981-07-27 Sposob konzervácie bazídiomycéty Coprinus sp., schopnej degradácie celuló zovych substrátov

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS219189B1 true CS219189B1 (sk) 1983-03-25

Family

ID=5402394

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS570381A CS219189B1 (sk) 1981-07-27 1981-07-27 Sposob konzervácie bazídiomycéty Coprinus sp., schopnej degradácie celuló zovych substrátov

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS219189B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU220582B1 (hu) Készítmény és eljárás növénybetegségek elleni védelemhez
CN101565689B (zh) 丛枝菌根真菌孢子的高密度纯种生产方法
CN109197381B (zh) 一种固体菌种液化种植海鲜菇的方法
Malik A simplified liquid-drying method for the preservation of microorganisms sensitive to freezing and freeze-drying
CN104686196B (zh) 一种通过阴干子实体保存和分离羊肚菌菌种的方法
CN105219671A (zh) 一种细菌菌株及其培养方法和应用
CN110122193A (zh) 一种稳定高含量多糖的蛹虫草栽培方法
Kuek Shake-flask culture of Laccaria laccata, an ectomycorrhizal basidiomycete
Liddell et al. Survival of Fusarium moniliforme at controlled temperature and relative humidity
CS219189B1 (sk) Sposob konzervácie bazídiomycéty Coprinus sp., schopnej degradácie celuló zovych substrátov
Jong et al. Cultivation and preservation of fungi in culture
JP7511825B2 (ja) アーバスキュラー菌根菌の培養方法
CN103060207B (zh) 一种利于杜鹃花属植物生长发育和菌根形成的菌液制备方法
Diem et al. Extranodular growth of Frankia on Casuarina equisetifolia
CN105779365A (zh) 一株景天根际促生铜绿假单胞菌及其应用
CN112243798B (zh) 一种节能高效银耳菌株的选育及种植方法
US6146880A (en) Methods for lyophilizing and using ericoid mycorrhizal fungi
CN107047057A (zh) 一种牛樟芝培植方法
Porter [1] Cultural conditions for antibiotic-producing microorganisms
Harvey et al. The cultivation of ectomycorrhizal fungi
CN117778237B (zh) 一种用于西红柿栽培的复合微生物菌剂及其制备方法
SU1655352A1 (ru) Среда дл культивировани соматических структур макроскопических грибов
JPH02156826A (ja) 植物の栽培方法およびその装置
CN104920064B (zh) 一种蛹虫草生产用的专用母种的制备方法
SU676610A1 (ru) Способ получени инфекционного материала