CS218709B1 - Spdsob přípravy nerozpustného chromolytického proteinu - Google Patents
Spdsob přípravy nerozpustného chromolytického proteinu Download PDFInfo
- Publication number
- CS218709B1 CS218709B1 CS354681A CS354681A CS218709B1 CS 218709 B1 CS218709 B1 CS 218709B1 CS 354681 A CS354681 A CS 354681A CS 354681 A CS354681 A CS 354681A CS 218709 B1 CS218709 B1 CS 218709B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- protein
- weight
- methanol
- washed
- mixed
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Vynález sa týká spósobu přípravy nerozpustného chromolytického proteinu. Podstata vynálezu spočívá v tom, že v prvom stupni sa protein rozpustí pri teplote 15 až 25 °Cna 10 až 20 hmot. % roztok, načo sa v druhom stupni přidá sieťovací reagent s výhodou epichlórhydrín a dvojsodná sol kyseliny 8-amino-5-[-3/sulfoetylsulfonyl/anilino]-6 antrachinonsulfónovej a po rozpuštění farbiva sa reakčný roztok alkalizuje hydroxidom sodným, dobré sa zamieša a nechá reagovat’ po dobu 15 až 24 hodin pri teplote 15 až 25 °C, načo sa zosietený chromogénny gel mixuje v zriedenom metanole, neutralizuje, odfiltruje, premýva metanolom, vysuší a suchý protein sa pomelie za sucha na gufovom mlýne na částice 40 až 250 μ. Vynález má použitie v klinickej biochémii pri stanovení proteolytických enzýmov v biologických tekutinách, v priemyselnej aplikácii pri medzioperačnej kontrole kultivačných médií pri priemyslovej výrobě enzýmov.
Description
3
Vynález sa týká spósobu přípravy nerozpustné-ho chromolytického proteinu vhodného na stano-venie proteázovej enzýmovej aktivity spektrofote-metrickou metódou.
Najčastejšie používané známe metódy na stano-venie proteolytickej aktivity sú veTmi zdíhavéa málo přesné. V zásadě sú založené na tom, že sa meriamnožstvo uvolněného proteinu v priebehu proteo-lytickej hydrolýzy, ktoré sa stanovuje ako rozpust-ná frakcia v kyselině trichloroctovej M. Kunitz: J.Gen. Physiol. 30, 291 (1947), připadne pomocoupozitívnej reakcie s fenolovým reagens podláFolína [M. L. Anson: J. Gen. Physiol. 22, 79(1938)].
Metoda založená na využití chromolytickéhosubstrátu na báze kazeínu nie je bežne dostupnápre poměrně zložitú přípravu azokazeínu [S. Ber-man a spol.: Proč. Expzl. Biol. Med. 107,798—83(1961)].
Velmi citlivý chromolytický substrát možno při-pravit podlá Aut. osv. č. 194 592 založený nasieťovaní a farbení róznych typov proteinu. Vyža-duje však lyofilizáciu vyfarbeného a premytéhoproteinu, čo je poměrně náročná technologickáoperácia.
Uvádzané nedostatky rieši nová přihláška vyná-lezu, ktorá umožňuje pripraviť chromolytický ne-rozpustný sieťovaný proteinový substrát bez ko-nečnej lyofilizácie modifikovaného proteinu s vy-sokou citlivosťou pre rožne typy proteázovýchenzýmov vhodný pre spektrofotometrické stano-veni© proteolytických enzýmových aktivit.
Podstata vynálezu spočívá v tom, že v prvomstupni sa protein s výhodou hovádzí sérum albu-min, ovalbumin, kazeín alebo ich zmes rozpúšťa vovodě pri teplote 15 až 25 °C na 10 až 20 % hmot.roztok, načo sa v druhom stupni přidá sieťovacíreagent s výhodou epíchlorhydrín v množstve 0,5až 5 % hmot. na hmotnost suchého proteinu a 5 až20 % hmot. farbiva s výhodou dvojsodná sofkyseliny 8-amino-5-[3/sulfoetylsulfonyl/anilino]-6-antrachinonsulfonová na hmotnost suchého pro-teinu a po rozpuštění farbiva sa reakčný roztokalkalizuje s takým množstvom 25 % hmot. rozto-kom hydroxidu sodného aby jeho výsledná kon-centrácia v reakčnom roztoku bola 0,7 až 1,2 %hmot., dobré sa zamieša anechá sa staticky reago-vat’ po dobu 15 až 24 hodin pri teplote 15 až 25 °C,načo sa zosietený chromogénny proteinový gélmixuje v zriedenom alkohole s výhodou metanolev rýchloobrátkovom mixeri, neutralizuje s kyseli-nou octovou, odfiltruje a na filtri sa premývazriedeným metanolom do bezfarebnej reakciefiltrátu, nakoniec sa premýva bezvodým metano-lom, vysuší pri teplote 60 °C a suchý protein sapomelie za sucha na gulovom mlýne na částice 40až 250 μ.
Aby sa získal proteinový gél s homgénnoudistribúciou priečnych vázieb medzi makromole-kulami proteinu ako i homogennou distribúciouviazaného farbiva v zosietenom proteínovom géle 218709 je nevyhnutné rešpektovť niektoré zvláštnosti he-terogénnych reakcií v Konkrétnem reakčnom sys-téme.
Predovšetkým je dóležité, aby protein bol dobrérozpustný vo vodě. Keď je protein rozpuštěný taksa přidá sieťovací reagent a až po dokonalompremiešaní sa přidá pevné f arbivo, ktoré sa v rozto-ku proteinu rozpúšťa pomaly. Na dobré rozpuste-nie farbiva sú potřebné 1 až 2 hodiny za intenzívne-ho miešania reakčného roztoku.
Na dostatočné zosietenie bielkoviny je potřebnéokolo 1 % sieťovacieho reagentu. Ak sa použijeváčšie množstvo sieťovacieho reagentu, tak hotovýprodukt má nižší napúčací objem a teda i nižšiucitlivost’ k proteolytickej hydrolýze.
Rovnako dóležitou operáciou přípravy chromo-lytického proteinového gélu je spolahlivé vymytienezreagovaného farbiva.
Je výhodné volné f arbivo odstraňovat’ postupnoudekantáciou váčších častíc gélu, potom gél mixovat’v rýchloobrátkovom mixéri na požadovanú velkost’častíc a zbytok farbiva vymyť na filtri najprv vodou,potom zmesou vody a alkoholu resp. acetonuv pomere 1 : 1 áž nakoniec bezvodým alkoholomalebo acetónom. Vysušený chromogénny vo voděnerozpustný protein sa pomelie na částice 50 až100 μ a je vhodný pre analytické účely stanoveniaróznych proteolytických enzýmov. Výhodou nového spósobu přípravy chromolytic-kého nerozpustného proteinového gélu je, že: — je energeticky nenáročný, pretože všetky mo-difikačné reakcie pri jeho príprave prebiehajú prilaboratórnej teplote, — umožňuje přípravu chromolytického protei-nového gélu so širokým rozsahom fyzikálnychvlastností gélu pre specifické potřeby jeho použí-vania, — hotový produkt nie je potřebné skladovať prizníženej teplote a je dostatočné stabilný pri sklado-vaní pri teplote do 30 °C, — nevyžaduje žiadne nákladné technologickéoperácie a móže sa preto vyrábať v běžnýchlaboratórnych zariadeniach,
Dalšie přednosti nového postupu sú evidentněz nasledovných príkladov, ktoré však nie sú vyčer-jpávajúce, ale len ilustrativně. Příklad 1 1 kg hovádzieho sérového lyofilizovaného albu-minu sa rozpustí v 6,25 litra destilovanej vody. Podokonalom rozpuštění proteinu sa přidá 10 mlepichlorhydrínu a mieša sa 30 minút. Potom sanaraz přidá 120 g farbiva Remazol briliant blueR (sof kyseliny 8-amino-5-[3-/sulfoetylsulfonyl/anilino]-6-antrachinonsulfonová), a mieša sa priteplote miestnosti po dobu 2 hodin. Potom sa přidáza intenzívneho miešania naraz 250 ml hydroxidusodného o konc. 25 % hmot. a miešanie pokračujeaž kým reakčný roztok nezhustne, čo trvá okolo2 až 5 minút. Po zhustnutí reakčného roztoku sazastaví miešanie a reakčná zmes sa nechá reagovat’cez noc (16 až 20 hodin) pri laboratórnej teplote,
Claims (1)
- 4 kedy sa reakcie ukončí. Zosietený a vyfarbenýpevný protein sa mixuje v alkohole (naj výhodné j-šie v metanole) zriedenom vodou v pomere 2:1.K rozmixovanému proteinu v alkohole sa přidá 100ml konc. kyseliny octovej zriedenej dvojnásobnýmmnožstvom metanolu aby sa zneutralizoval volnýhydroxid sodný. Reakčná suspenzia sa odfiltrujea na filtri sa premýva zriedeným metanoloms vodou (1 : 1) až filtračný roztok je bezfarebný.Potom sa premýva stále koncentrovanějším meta-nólom až nakoniec bezvodým, dobré sa odsajea zosietený vyfarbený protein sa vysuší v sušiamipri teplote do 60 °C. Vysušený protein sa pomeliev gufovom mlýne a presituje cez šito 0,250 mescha nakoniec cez šito 0,04 mesch aby sa odstránilinajjemnejšie podiely. Výťažok o váhe 1030 g má velkost’ častíc medzi40 až 250 μ a obsah viazaného farbiva 9,2 % a jevysokocitlivým substrátom pre všetky typy proteá-zových enzýmov. Příklad 2 Postup podlá příkladu 1 s tým rozdielom, že akoprotein sa použije ovalbumín a 200 g farbivaRemazol briliant blue R a 20 ml epichlorhydrínuako sieťovacieho reagentu. Získaný protein 1040 g má obsah viazanéhofarbiva 16 % hmot. a je velmi citlivým substrátomna neutrálně a alkalické proteázy, menej citlivý nakyslé proteázy. PREDMET Spósob výroby nerozpustného chromolytickéhoproteinu vyznačujúci sa tým, že v prvom stupni saprotein s výhodou hovádzí sérum albumin, ovalbu-mín, kazeín alebo ich zmes rozpustí vo vodě priteplote 15 až 25 °Cna roztok hmotnostnej koncen-trácii 10—20 %, načo sa v druhom stupni přidásieťovací reagent s výhodou epichlorhydrínv množstve 0,5 až 5,0 % hmotnostných na hmot-nost’ suchého proteinu a 5 až 20 % hmotnostnýchfarbiva s výhodou dvojsodnej soli kyseliny 8-ami-no-5-[-3/sulfoetylsulfonyl/anilino]-6-antrachi-nonsulfónovej) na hmotnost’ suchého proteinu a porozpuštění farbiva sa reakčný roztok alkalizuje Příklad 3 218709 Postup pódia příkladu 1 s tým rozdielom, že akoprotein sa použije kazeínový hydrolyzát 1200 g,ktorý sa však zle rozpúšťa a na jeho rýchlejšierozpustenie sa najprv 1 hodinu mieša vo voděpotom sa přidá hydroxid sodný podlá příkladu1 a mieša sa 1 hodinu. Potom sa přidá 150 g farbivaRemazol briliant blue R a mieša sa 2 hodinya nakoniec sa přidá 15 ml epichlorhydrínu, mieša sa30 minút a nechá sa reagovat’ cez noc ako v příklade1. Výťažok proteinu 1050 g má obsah viazanéťiofarbiva 12 % hmot. a je rovnoměrně citlivý kuvšetkým typom proteázových enzýmov. Příklad 4 Postup podlá příkladu 1 s tým rozdielom, že akoprotein použijeme zmes sérového hovádzieho al-buminu, ovalbumínu v pomere 1:1a další postupje rovnaký ako v příklade 1. Výsledný zmesný chromogénny protein má vy-rovnaná citlivost’ pre všetky typy proteázovýchenzýmov. Vynález má uplatnenie predovšetkým v klinickejbiochémii pri stanovení proteolytických enzýmovv biologických tekutinách ale i v priemyselnejaplikácii pri medzioperačnej kontrole kultivačnýchmédií pri priemyslovej výrobě enzýmov. VYNÁLEZU s takým množstvom roztoku hydroxidu sodnéhoo koncentrácii 25 % hmotnostných, aby jehovýsledná koncentrácia v reakčnom roztoku bola0,7 až 1,2 % hmotnostných, dobré sa zamiešaa nechá sa staticky reagovat’ po dobu 15 až 24 hodinpri teplote 15 až 25 °C, načo sa zosietený chromo-génny gél mixuje v zriedenom metanole, neutrali-zuje sa s kyselinou octovou, odfiltruje a na filtri sapremýva zriedeným metanolom do bezfarebnejreakcie filtrátu, nakoniec sa premýva koncentrova-ným metanolom, vysuší pri teplote do 60 °Ca suchý protein sa pomelie za sucha na gufovommlýne na částice 40 až 250 μ. Cena: 2,40 Kčs Vytiskly Moravské tiskařské závody, provoz 12, Leninova 21, Olomouc
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS354681A CS218709B1 (cs) | 1981-05-14 | 1981-05-14 | Spdsob přípravy nerozpustného chromolytického proteinu |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS354681A CS218709B1 (cs) | 1981-05-14 | 1981-05-14 | Spdsob přípravy nerozpustného chromolytického proteinu |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS218709B1 true CS218709B1 (cs) | 1983-02-25 |
Family
ID=5375861
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS354681A CS218709B1 (cs) | 1981-05-14 | 1981-05-14 | Spdsob přípravy nerozpustného chromolytického proteinu |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS218709B1 (cs) |
-
1981
- 1981-05-14 CS CS354681A patent/CS218709B1/cs unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Biely et al. | Soluble chromogenic substrates for the assay of endo-1, 4-β-xylanases and endo-1, 4-β-glucanases | |
| Wiman | Primary structure of peptides released during activation of human plasminogen by urokinase | |
| Schwabe | A fluorescent assay for proteolytic enzymes | |
| Chua et al. | Purification of wheat proteases by affinity chromatography on hemoglobin-Sepharose column | |
| JPWO2011062157A1 (ja) | 有機着色微粒子、それを含む診断薬キット及びインビトロ診断方法 | |
| EP1101115A1 (en) | Method for preparing water-soluble cross-linked conjugates | |
| CS218709B1 (cs) | Spdsob přípravy nerozpustného chromolytického proteinu | |
| Banga et al. | Isolation of neutral heteropolysaccharide containing mucoprotein from bovine Achilles tendon with the aid of collagenmucoproteinase | |
| CN105136699B (zh) | 基于未变性染色皮粉底物的蛋白酶胶原蛋白水解活力测定方法及其应用 | |
| Turková et al. | Immbilization on cellulose in bead form after periodate oxidation and reductive alkylation | |
| JP2548240B2 (ja) | 固定化リグニン複合体およびその利用 | |
| Šafařík | Insoluble chromolytic substrates for the determination of proteolytic activity | |
| CN111848917A (zh) | 一种聚脲荧光微球颜料的制备方法及应用 | |
| CS203676B1 (en) | Process for preparing chromogenic amylaceous substrate for the determination of the activity of glucoamylase | |
| US20020009787A1 (en) | Recovery of proteins by preciptation using lignosulfonates | |
| CA1063049A (en) | Preparation of water insoluble immobilized bio-active compounds | |
| Almog et al. | A sensitive assay for proteins and biliproteins | |
| Ryle | An insolubilised pepsin | |
| Sˇafarˇík | Spectrophotometric determination of proteolytic activity in coloured solutions | |
| Lowe | Introduction to the use of reactive dyes in biotechnology | |
| JP2020125909A (ja) | 粒径の揃った着色セルロース微粒子 | |
| CZ476389A3 (cs) | Spósob přípravy chromolytického substrátu na stanovenie xylanáz ověj enzýmovej aktivity | |
| Laver | The structure of influenza viruses: II. C-terminal amino acid analyses | |
| CS227588B1 (en) | Method of preparing universal testing pellets for determining proteolytic enzym activity | |
| CS234607B1 (sk) | SpSsob stanovenia aktivity endo-1,4- β-xylanáz |