CS218514B1 - Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-720 - Google Patents
Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-720 Download PDFInfo
- Publication number
- CS218514B1 CS218514B1 CS646081A CS646081A CS218514B1 CS 218514 B1 CS218514 B1 CS 218514B1 CS 646081 A CS646081 A CS 646081A CS 646081 A CS646081 A CS 646081A CS 218514 B1 CS218514 B1 CS 218514B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- penicillium chrysogenum
- microorganism strain
- strain
- ccm
- strain penicillium
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Vynález se týká nového kmene Penicillium chrysogenum CCM F-720, který za běžných kultivačních podmínek produkuje penicilín G a V v podstatně vyšších výtěžcích.The invention relates to a new strain of Penicillium chrysogenum CCM F-720, which produces penicillin G and V in significantly higher yields under conventional cultivation conditions.
Description
Vynález se týká kmene mikroorganismu Peniícillium ch-rysogenum CCM F-720 produkujícího penicilín G a V.BACKGROUND OF THE INVENTION The present invention relates to a penicillin G and V strain of Penilecillium ch-rysogenum CCM F-720.
Tento kmen byl získán z kmene Penicillium chryso,genům evidenčního· čísla 65/41 působením mutagenů a opakovanými pasivními selekcemi.This strain was obtained from the Penicillium chryso strain, genes of registration number 65/41 by mutagen treatment and repeated passive selection.
Použité mutageny: UV-světlo· a nitrometylurea (NMU).Mutagens used: UV-light · and nitromethylurea (NMU).
Aplikace UV-světla: Zdrojem světla byla germicidní lampa 40 W s předřazeným stabilizátorem síťového napětí v 5 ml destilované vody byly ozařovány v Petriho misce o průměru 45 ml. Během ozařování byla suspense míchána na elektromagnetickém míchadle. Vzdálenost misky od zdroje záření byla 20 cm, během ozařování byly ve vhodných časových intervalech odebírány vzorky po 0,5 ml, které byly dále zředěny a vysévány na Petriho mlsky se sporulační půdou složení melasa, glycerin, kvasniční extrakt a soli, jak je popsáno u postupu pro pasivní selekci. , 1'Application of UV-light: The light source was a 40 W germicidal lamp with a pre-supply voltage stabilizer in 5 ml of distilled water and irradiated in a 45 ml petri dish. During irradiation, the suspension was stirred on an electromagnetic stirrer. The distance of the dish from the radiation source was 20 cm, during irradiation, 0.5 ml samples were taken at appropriate time intervals, which were further diluted and sown on petri mills with sporulated soil of molasses, glycerin, yeast extract and salts as described for passive selection procedure. , 1 '
Aplikace NMU: NMU (Κ. &Λ K. Laboratories, lne.) byl aplikován v koncentraci 5.’· ^g/ml. Muťagen byl za stálého míchání rozpuštěn v citrátofosfátoyém pufru pH 6,0, pak byly přidány sporý suspendované v témže pufru. Mutační směs byla míchána na elektromagnetickém míchaďle při 25 °C. Ve vhodných časových intervalech byly odebírány vzorky po 1 ml a ředěny do vyředění MNU na neúčinnou koncentraci. Odebírané Vzorky byly vysévány na Petriho misky, jak je popsáno u postupu pro pasivní selekci.Application of NMU: NMU (&. & Λ K. Laboratories, Inc.) was applied at a concentration of 5. · g / ml. The mutagen was dissolved in citrate-phosphate buffer pH 6.0 with stirring, then slurry suspended in the same buffer was added. The mutation mixture was stirred on an electromagnetic stirrer at 25 ° C. At appropriate time intervals, 1 ml samples were taken and diluted to dilute the MNU to an ineffective concentration. Samples were sown on Petri dishes as described in the passive selection procedure.
Pasivní selekce: S.pory pro pasivní selekci byly suspendovány v destilované vodě nebo fyziologickém roztoku, ředěny ředicí řadou a faktorem 10 a očkovány na Petriho misky se shodnou sporulační půdou. Z jednotlivých ředění bylo paralelně očkováno· několik misek. Po 6 — 9denní inkubaci při teplotě 25 QC byla u izolátů ukončena sporulace a bylo možné je přeočkoivat na šikmé agary se shodnou sporulační půdou. Inkubace tohoto materiálu probíhala rovněž při teplotě 2i5 °C po dobu 6 až 8 dnů.Passive selection: Passive selection pores were suspended in distilled water or saline, diluted with dilution series and factor 10 and inoculated into petri dishes with the same sporula broth. Several dishes were inoculated in parallel from each dilution. After 6 - 9 days of incubation at 25 Q C was completed in isolates sporulation and it was possible přeočkoivat is sustained on slants of sporulation with the same soil. Incubation of this material also occurred at 25 ° C for 6 to 8 days.
Vhodným střídáním mutagenů a pasivní selekcí byl získán Izolát 43/28—80 D.By appropriate alternation of mutagens and passive selection, Isolate 43 / 28-80 D was obtained.
Izoláty byly hodnoceny podle následujícího· sichémíatu:The isolates were evaluated according to the following:
izolovaná kolonie na Petriho· misce iisolated colony on Petri dish i
šikmý agar loblique agar l
vegetativní inokulum lvegetative inoculum l
vlastní fermentaceproper fermentation
Získané vysokoprodúkční izoláty jsou u4 chovávány ve formě lyoíilizovaných konzerv.The high-production isolates obtained are kept in the form of lyophilized cans.
Stanovení účinnosti penicilinu bylo prováděno hydroxamáltovou metodou.Penicillin potency was determined by the hydroxamalt method.
Tímto hodnotícím systémem byl získán kmen, který je předmětem ochrany.This evaluation system resulted in the strain being protected.
Kmen tvoří při monosporickém rozsevu ha sporulační půdě typu glycerin-melasa během 6 dnů kolonie velikosti 7 — 10 mm při teplotě kultivace25 °C. Kultura intenzívně sporuluje na různých typech sporulačních půd i na přírodních substrátech, jako je proso, ječmen, kukuřice, rýže apod., síporulace je ukončená během 7 dnů kultivace; Barva vysporulované kultury je sytě zelená. Kolonie na pevných půdách jsou zbrázděné p'aprsíčitými rýhami, které jsou patrné i na spodní straně kolonie. Střed kolonie je proláklý, okraj kolonie je bíle lemován v šířce cca 2 mm. Konidiofor je dlouhý cca 300 (um a má hladké stěny. Štětičky jsou asymetrické, na větvích vyrůstají svazky metul. KOnidionosný krček je zúžen. Kónidie jsou oválné, . velikosti cca 2,5 až 3 ^m. Kmen. ha agarových půdách je stabilní, několik týdnů, na přírodních substrátech několik měsíců.The strain forms a colony size of 7 - 10 mm at a cultivation temperature of 25 ° C during monosporic sowing of the glycerol-molasses sporulation medium over 6 days. The culture intensively sporulates on different types of sporulating soils and on natural substrates such as millet, barley, corn, rice, etc., the sporulation is completed within 7 days of cultivation; The color of the cultured culture is deep green. Colonies on solid soils are milled with breast grooves, which are also visible on the underside of the colony. The center of the colony is embossed, the edge of the colony is white edged at a width of about 2 mm. The conidiophore is about 300 [ mu] m long and has smooth walls. The brushes are asymmetric, with bunches of whiskers growing on the branches. The conidionic neck is narrowed. The conidia are oval, about 2.5 to 3 .mu.m in size. several weeks, on natural substrates for several months.
Další charakteristiky^ kmene: Mycelium kmene je středně citlivé k intensivnímu namáhání v průběhu fermentace, želelzo při koncentraci 50 χ/ml inhibuje biosymtézu ze 30 až 40 %, biosyntéza penicilinu je inhibována vlastním produktem až při koncentracích penicilinu vyšších než 30 000 j./ml, kmen uitilizuje různé zdroje uhlíku, přednostně laktózu, šachárézu, glukózu a různé oleje, vhodným zdrojem dusíku vedle organických zdrojů jsou i ahorganické sloučeniny dusíku, přednostně pak síran amonný. V průběhu fermentace vzniká kolem 3 .% vedlejších penicilinů. ' < >Other characteristics of the strain: Mycelium of the strain is moderately sensitive to intense strain during fermentation, iron at 50 χ / ml inhibits biosymthesis by 30-40%, penicillin biosynthesis is inhibited by the product itself at penicillin concentrations above 30,000 U / ml The strain will neutralize various carbon sources, preferably lactose, chess, glucose, and various oils. Suitable nitrogen sources in addition to organic sources are the ahorganic nitrogen compounds, preferably ammonium sulfate. During fermentation about 3% of secondary penicillins are formed. '<>
Příklad 1 ’ iExample 1 ’i
Vegetativní inokulum bylo připravováno submersně v 500 mí varných baňkách se 60 ml inokulační půdy, která obsahuje základní živiny, ťj. zdroj uhlíku sacharózu, dusíku, kukuřičný extrakt a síran amonný a soli. Půda pro přípravu vegetativního inokula byla záockováma kličkou spor ze šikmého agaru a inkubována na rotačním trepacím stroji kolem 40 hodin.The vegetative inoculum was prepared submersibly in 500 ml beakers with 60 ml inoculum broth containing basic nutrients, i. carbon source of sucrose, nitrogen, corn extract and ammonium sulfate and salts. The soil for preparing the vegetative inoculum was a looped agar spore loop and incubated on a rotary shaker for about 40 hours.
Takto připraveným vegetativním inokulem byly očkovány fermentační baňky obs*ahu 500 ml, objem fermentační půdy 40 ml. Zdrojem uhlíku bylá laktóiza, sacharóza a sojový olej, zdrojem dusíku sójová mouka a amonná sůl, půda dále obsahóvála prekursor postranního řetězce penicilinu, soli, uhličitan vápenatý a zdroj síry.The vegetative inoculum thus prepared was inoculated with 500 ml fermentation flasks, 40 ml of fermentation broth. The source of carbon was lactose, sucrose and soybean oil, the source of nitrogen was soy flour and ammonium salt, the soil also contained a precursor of the side chain of penicillin, salt, calcium carbonate and a source of sulfur.
Příprava vegetativního inokula i vlastní fermentace probíhaly na rotačních třepacích strojích při 230 ot./min, výstřednost 25 mm, při teplotě 25 °C.The preparation of the vegetative inoculum and the fermentation itself were carried out on rotary shakers at 230 rpm, eccentricity 25 mm, at 25 ° C.
Fermentace probíhaly 11 dnů, Vzorky pro stanovení účinnosti byly odebírány v 8., 9.,Fermentations were carried out for 11 days. Samples for potency determination were taken at 8, 9,
10. a 11. dni fermentace. Maximální produkce bylo zpravidla dosaženo v 10. dni fermentace. Za uvedených podmínek fermentace bylo v laboratorním měřítku dosahováno 16 500 j./ml.10th and 11th days of fermentation. Maximum production was generally achieved on day 10 of fermentation. Under these fermentation conditions, 16,500 U / ml was achieved on a laboratory scale.
Kmen Penicillium chrysogenum, značený 43/28—80 D, byl uložen v čs. sbírce mikroorganismů (Czechoslovak Collečtion of Microorganisms), Univerzita J. E. Purkyně, Brno, Tř. Obránců míru 10, pod čís. CCM F-720.Penicillium chrysogenum strain, labeled 43 / 28-80 D, was deposited in MS. collection of microorganisms (Czechoslovak Collečtion of Microorganisms), J. E. Purkyně University, Brno, Tř. Defenders of Peace 10, under no. CCM F-720.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS646081A CS218514B1 (en) | 1981-09-01 | 1981-09-01 | Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-720 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS646081A CS218514B1 (en) | 1981-09-01 | 1981-09-01 | Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-720 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS218514B1 true CS218514B1 (en) | 1983-02-25 |
Family
ID=5411686
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS646081A CS218514B1 (en) | 1981-09-01 | 1981-09-01 | Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-720 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS218514B1 (en) |
-
1981
- 1981-09-01 CS CS646081A patent/CS218514B1/en unknown
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US7279314B2 (en) | Chemical substance having morphogenetic and growth-accelerating activities | |
CS218514B1 (en) | Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-720 | |
US20030036177A1 (en) | Single colonies of myxobacteria cells | |
JP2009505681A (en) | Regulation of acid metabolite production | |
CS253986B1 (en) | Microorganism strain Penioillium chrysogenum CCM P-786 | |
CS220217B1 (en) | Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-713 | |
KR100446108B1 (en) | Cephalosporin c-producing microorganism having improved lipase activity and method for producing cephalosporin c using the same | |
CZ281824B6 (en) | Strain of penicillium chrysogenum ccm 8157 micro-organism | |
US20090081741A1 (en) | Single colonies of myxobacteria cells | |
SU1063832A1 (en) | Strain of fungus aspergillus niger l-131 producing citric acid | |
CZ282334B6 (en) | High-production strain of penicillium chrysogenum ccm 8196 micro-organism | |
SU313531A1 (en) | METHOD OF OBTAINING ENTOMOPATHOGENIC MATERIAL OF THE BREADIA BASSiANA MUSHROOM | |
CZ282335B6 (en) | High-production strain of penicillium chrysogenum ccm 8197 micro-organism | |
SU994555A1 (en) | Process for producing cellulolytic enzymes | |
CS245153B1 (en) | Microorganism strain Acremonium chrysogenum | |
CS206930B1 (en) | Strain of microorganism penicillinum chrysogenum ccm f-648 | |
CS208592B1 (en) | Streptomyces aureofaciens microorganism strain | |
CZ287668B6 (en) | Novel mutant strain Aspergillus terreus and lovastatin fermentation process | |
CS273134B1 (en) | Strain of "penicillium chrysogenum ccm 8013" microorganism | |
CS245182B1 (en) | Streptomyces fradiae CCM 3765 strain of microorganism | |
SK139597A3 (en) | Aspergillus terreus strain and fermentation of lovastatin by this productive strain | |
CS235447B1 (en) | Microorganism strain Peniciliium chrysogenum CCM F-747 | |
CZ245694A3 (en) | Novel industrial production strain of claviceps paspali micro-organism | |
CS200944B1 (en) | Strain of microorganism penicillium chrysogenum ccm f-647 | |
CZ77994A3 (en) | INDUSTRIAL PRODUCTION STRAIN OF CLAVICEPS PURPUREA /Fr/Tul. MICROORGANISMS |