CS220217B1 - Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-713 - Google Patents

Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-713 Download PDF

Info

Publication number
CS220217B1
CS220217B1 CS517681A CS517681A CS220217B1 CS 220217 B1 CS220217 B1 CS 220217B1 CS 517681 A CS517681 A CS 517681A CS 517681 A CS517681 A CS 517681A CS 220217 B1 CS220217 B1 CS 220217B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
strain
fermentation
penicillium chrysogenum
soil
penicillin
Prior art date
Application number
CS517681A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Vlasta Matelova
Karel Zeleny
Karel Culik
Stanislav Ulbert
Petr Pilat
Henrich Hofbauer
Emil Miklas
Michal Bucko
Boris Okanik
Original Assignee
Vlasta Matelova
Karel Zeleny
Karel Culik
Stanislav Ulbert
Petr Pilat
Henrich Hofbauer
Emil Miklas
Michal Bucko
Boris Okanik
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Vlasta Matelova, Karel Zeleny, Karel Culik, Stanislav Ulbert, Petr Pilat, Henrich Hofbauer, Emil Miklas, Michal Bucko, Boris Okanik filed Critical Vlasta Matelova
Priority to CS517681A priority Critical patent/CS220217B1/en
Publication of CS220217B1 publication Critical patent/CS220217B1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Vynález se týká nového kmene Penicillium chrysogenum CCM F-713, produkujícího penicilín G a V. Nový kmen byl získán z používaného produkčního kmene kombinací působení mutagenů (p-fluorfenylalanin a UF-světlo) s pasivní selekcí.The present invention relates to a novel penicillin G and V producing strain of Penicillium chrysogenum CCM F-713. The novel strain was obtained from the production strain used by combining mutagens (p-fluorophenylalanine and UF-light) with passive selection.

Description

(54) Kmen mikroorganismu Penicillium chrysogenum CCM F-713(54) Strain of Penicillium chrysogenum CCM F-713

22

Vynález se týká nového kmene Penicillium chrysogenum CCM F-713, produkujícího penicilín G a V. Nový kmen byl získán z používaného produkčního kmene kombinací působení mutagenů (p-fluorfenylalanin a UF-světlo) s pasivní selekcí.The present invention relates to a new Penicillium chrysogenum strain CCM F-713 producing penicillin G and V. The new strain was obtained from the production strain used by combining the action of mutagens (p-fluorophenylalanine and UF-light) with passive selection.

Vynález se týká kmene mikroorganismu Penicillium chrysogenum CGM F-713, produkujícího penicilín G a V.The present invention relates to a strain of Penicillium chrysogenum CGM F-713 producing penicillin G and V.

Tento kmen byl získán z kmene Penicillium chrysogenum evidenčního čísla 65/41, získaného z n. p. Biotika, působením mutagenů a opakovanými pasivními selekcemi. Použitý mutagen PFP (DL-p-fluorfenylalanin. Calbiochem) byl aplikován následujícím způsobem: Suspense spor připravená obvyklou cestou byla neředěná vyseta na Petriho misky se sporulační půdou (melasa, glycerin, kvasniční extrakt a soli) s přidaným PFP v koncentracích 1.10-4 až 7,5.10-4 M. Petriho misky byly inkubovány při teplotě 25 °C. Po vysporulování byly spory smyty sterilní destilovanou vodou s kapkou Tweenu 80 a byl proveden rozsev na Petriho misky se shodnou sporulační půdou bez mutagenu tak, jak je prováděna pasivní selekce.This strain was obtained from Penicillium chrysogenum strain number 65/41, obtained from Biotika np, by mutagenic treatment and repeated passive selection. PFP use of mutagens (DL-p-fluorophenylalanine. Calbiochem) was applied as follows: A suspension of spores was prepared in the usual way undiluted plated on Petri dishes with sporulation broth (molasses, glycerol, yeast extract and salt) with added PFP concentrations 1.10 -4 to 7.5.10 -4 M. Petri dishes were incubated at 25 ° C. After sporulation, the spores were washed off with sterile distilled water with a drop of Tween 80 and sown on Petri dishes with the same sporulated soil without mutagen as passive selection was performed.

Použitý mutagen UV-světlo. Použitým zdrojem UV-světla byla germicidní lampa 4'0W s předřazeným stabilizátorem síťového napětí o výkonu 250 W a citlivosti 1%. 5 ml suspense spor ve vodě bylo ozářeno v Petriho misce o průměru 45 mm. Během ozařování byla suspense míchána na elektromagnetickém míchadle. Vzdálenost misky od zdroje záření byla 20 cm, ozařování bylo ve vhodných časových intervalech přerušováno· odebíráním 0,5 ml vzorků, které byly ředěny a vysévány na Petriho misky se shodnou sporulační půdou tak, jak je popsáno u postupu pro, pasivní selekci.UV mutant used. The UV light source used was a 4'0W germicidal lamp with a 250W upstream voltage stabilizer and 1% sensitivity. 5 ml of spore suspension in water was irradiated in a 45 mm diameter petri dish. During irradiation, the suspension was stirred on an electromagnetic stirrer. The distance of the dish to the radiation source was 20 cm, irradiation was interrupted at appropriate time intervals by taking 0.5 ml samples which were diluted and sown on petri dishes with the same sporula soil as described in the passive selection procedure.

Spory pro pasivní selekci byly suspendovány v destilované vodě nebo fyziologickém roztoku, ředěny ředicí řadou s faktorem 10 a očkovány na Petriho misky se shodnou sporulační půdou. Z jednotlivých ředění bylo paralelně očkováno několik misek. Po 7 až lOdenní inkubaci při teplotě 25 °C byly izoláty vysporulovány a bylo možné je přeočkovat na šikmé agary se shodnou sporulační půdou. Inkubace tohoto materiálu probíhala rovněž při teplotě 25 °C po dobu 6 až 8 dní.Spores for passive selection were suspended in distilled water or saline, diluted with a factor of 10 dilution, and inoculated into petri dishes with the same sporula broth. Several dishes were inoculated in parallel from each dilution. After incubation for 7-10 days at 25 ° C, the isolates were sporulated and resuspended on sloping agar with identical sporula broth. The material was also incubated at 25 ° C for 6-8 days.

Výše uvedeným způsobem střídání mutagenů s pasivní selekcí byl získán izolát UV XLIV/347-36,The above method of alternating mutagens with passive selection yielded isolate UV XLIV / 347-36,

65/41 i PFP + selekce PFP XI/264 i UV UV XLIV/347 i selekce UV XLIV/347-3665/41 i PFP + PFP selection XI / 264 i UV UV XLIV / 347 i UV selection XLIV / 347-36

Izoláty byly hodnoceny dle následujícího schématu:The isolates were evaluated according to the following scheme:

izolovaná kolonie na Petriho mlsce i šikmý agar i vegetativní inokulum I vlastní fermentaceisolated colony on Petri ml as well as sloping agar and vegetative inoculum I of the fermentation itself

Izoláty byly hodnoceny dvakrát před lyofilizací, tj. před konzervací, po lyofilizaci dvakrát až třikrát. Lyofllizované kultury· slouží k dlouhodobému uchování.The isolates were evaluated twice before lyophilization, i.e. before preservation, after lyophilization two to three times. Lyophilized cultures serve for long-term preservation.

Stanovení účinnosti penicilinu bylo prováděno hydroxamátovou metodou.Penicillin potency was determined by the hydroxamate method.

Tímto hodnotícím systémem byl získán nový kmen podle vynálezu.With this evaluation system, a new strain according to the invention was obtained.

Kmen tvoří při monosporickém rozsevu na spolurační půdě typu glycerin -- melasa kolonie velikosti 10 až 15 mm během 7 až 10 dnů kultivace při 25 °C. Kultura dobře a rychle sporuluje na různých typech spoluračních půd i na přírodních substrátech, jako je proso, ječmen, kukuřice, rýže apod. Barva vysporulované kultury je sytě béžová. Kmen na přírodních substrátech je stabilní několik měsíců. Jeho růstové schopnosti jsou mimořádné. Již za 24 hodin dosahuje při submersní přípravě vegetativního inokula takového množství myceliární hmoty jako jiné kmeny za 48 hodin, právě tak při vlastní fermentaci je požadované koncentrace biomasy pro zahájení bíosyntézy dosaženo o 24 až 48 hodin dříve než u jiných kmenů.The strain forms a colony of 10-15 mm colony size on 7 to 10 days of cultivation at 25 ° C on monosporic sowing on glycerin-molasses coffered soil. The culture sporulates well and quickly on various types of co-soils and on natural substrates such as millet, barley, corn, rice, etc. The color of the cultured culture is deep beige. The trunk on natural substrates is stable for several months. His growth abilities are extraordinary. As early as 24 hours in submersible vegetative inoculum preparation, the amount of mycelial mass reaches as much as the other strains in 48 hours, as well as the desired biomass concentration for biosynthesis initiation 24 to 48 hours earlier than in other strains.

Další předností kmene je jeho tolerance k vysokým koncentracím penicilinu v půdě. Modelové přidání 30 000 j./ml penicilinu na počátku fermentace do půdy neovlivní biosyntézu penicilinu, 50 000 j./ml penicilinu je únosných jako přídavek ve 48. hodině nebo později. Při tomto obsahu penicilinu v půdě není ještě snížena biosyntetická schopnost kmene.Another advantage of the strain is its tolerance to high soil penicillin concentrations. Model addition of 30,000 U / ml penicillin to the soil at the start of fermentation does not affect penicillin biosynthesis, 50,000 U / ml penicillin is acceptable as an addition at 48 hours or later. With this content of penicillin in the soil, the biosynthetic ability of the strain is not yet reduced.

Kmen má další důležitou vlastnost spočívající v minimální citlivosti na železo. U produkčních kmenů bývá obvyklé snížení výtěžnosti při obsahu železa v půdě 50 gama/ /ml, které se vyskytuje v železných výrobních tancích, o 25 %, u tohoto kmene je snížení výtěžnosti penicilinu pouze o 8 °/o.The strain has another important property of minimal sensitivity to iron. For production strains, a 25% reduction in yield with an iron content in the soil of 50 g / ml, which occurs in iron production tanks, is typically a reduction in penicillin recovery of only 8%.

Důležitou předností kmene je jeho tolerance k velkému mechanickému namáhání v průběhu fermentace. I při velice drastickém způsobu míchání dochází k minimálnímu uvolňování nukleotidů z buněk, čili nedochází k poškození myceliárních vláken.An important advantage of the strain is its tolerance to high mechanical stress during fermentation. Even in a very drastic manner of mixing, there is minimal release of nucleotides from the cells, so that mycelial fibers are not damaged.

Dále je třeba konstatovat, že účinnost penicilinu dosahovaná ve filtrátu se elucí zbylého sedimentu zvýší o 30 % a desintegrací mycella o dalších 10 %.Furthermore, it should be noted that the efficacy of penicillin achieved in the filtrate is increased by elution of the remaining sediment by 30% and by disintegration of mycella by another 10%.

Příklad 1Example 1

Vegetativní inokulum bylo připravováno submersně v 500 ml varných baňkách se 60 ml inokulační půdy, která obsahuje základní živiny, tj. zdroj uhlíku sacharózu, dusíku, kukuřičný extrakt a síran amonný a soli. Půda pro přípravu vegetativního inokula byla zaočkována kličkou spor ze šikmého agaru a inkubována na rotačním třepacím stroji 32 až 36 hodin.The vegetative inoculum was prepared submersibly in 500 ml boiling flasks with 60 ml inoculum broth containing basic nutrients, ie a source of carbon sucrose, nitrogen, corn extract and ammonium sulfate and salts. The soil for preparing the vegetative inoculum was inoculated with a sloping agar spore loop and incubated on a rotary shaker for 32-36 hours.

Takto připraveným vegetativním inokulem byly očkovány fermentační baňky obsahu 500 ml, objem fermentační půdy 40 ml.The vegetative inoculum thus prepared was seeded with 500 ml fermentation flasks, 40 ml fermentation broth volume.

Zdrojem uhlíku byla laktóza a glukóza, zdrojem dusíku kukuřičný extrakt, sójová mouka a amonná sůl, půda dále obsahovala prekurzor postranního řetězce, soli, uhličitan vápenatý k pufrováni půdy a zdroj síry.The carbon source was lactose and glucose, the nitrogen source was corn extract, soy flour and ammonium salt, the soil also contained a side chain precursor, salt, calcium carbonate to buffer the soil, and a sulfur source.

Příprava vegetativního inokula i vlastní fermentace probíhaly na rotačních třepacích strojích při 230 obr./min., výstřednost 25 mm, při teplotě 25 °C.The preparation of the vegetative inoculum and the fermentation itself were carried out on rotary shakers at 230 rpm, eccentricity 25 mm, at 25 ° C.

Fermentace probíhaly 7 dnů, vzorky pro stanovení účinnosti byly odebírány v 5., 6. a 7. dnu fermentace. Maximální produkce bylo zpravidla dosaženo v 6. dnu fermentace.Fermentations were carried out for 7 days, samples for efficiency determination were taken on days 5, 6 and 7 of fermentation. The maximum production was usually achieved on the 6th day of fermentation.

Produkční srovnání kmenů:Production comparison of strains:

kmen penicilín V penicilín G j/ml j/mlpenicillin V strain penicillin G j / ml j / ml

UV XLIV/347 19 000 20 000UV XLIV / 347 19,000 20,000

UV XLIV/347-36 23 000 24 000 (CCM F-713)UV XLIV / 347-36 23,000 24,000 (CCM F-713)

Příklad 2Example 2

Fermentace v poloprovozních tancích, objem 250 litrů, byla prováděna třístupňové, předočkovací půda obsahovala jako zdroj uhlíku sacharózu, zdrojem dusíku byl kukuřičný extrakt a anorganický zdroj dusíku, dalšími složkami půdy byly soli a křída. Inokulační půda obsahovala jako zdroj uhlíku sacharózu, zdrojem dusíku byl alkalický eluát arašídové mouky, dále křída a soli. Zdrojem uhlíku ve fermentační půdě byla sacharóza, zdrojem dusíku alkalický eluát arašídové mouky, další složkou půdy je příslušný prekurzor postranního řetězce, zdroj síry, křída a další soli.Fermentation in pilot tanks, 250 liters capacity, was carried out in three stages, the pre-seed medium containing sucrose as the carbon source, the corn source and the inorganic nitrogen source as nitrogen, and the other soil and chalk components. The inoculation broth contained sucrose as the carbon source, the nitrogen source was the peanut flour alkaline eluate, chalk and salts. The carbon source in the fermentation broth was sucrose, the nitrogen source was the peanut flour alkaline eluate, the other soil component was the respective side chain precursor, sulfur source, chalk and other salts.

V průběhu fermentace je půda doplňována zdrojem uhlíku sacharózou, zdrojem dusíku síranem amonným a močovinou, prekurzorem a fosfátem.During fermentation, the soil is supplemented with a carbon source of sucrose, a nitrogen source of ammonium sulfate and urea, a precursor and a phosphate.

Předočkovací tank o objemu 200 litrů je plněn 100 litry .předočkovací půdy, inokulace je provedena kulturou vyrostlou na cca 88 g krup, teplota kultivace je 25 °C, míchání 350 ot./min., vzdušnění 100 litrů/min., doba kultivace 36 hodin.The inoculation tank with a volume of 200 liters is filled with 100 liters of inoculation soil, inoculation is carried out with a culture grown to about 88 g of groats, cultivation temperature is 25 ° C, stirring 350 rpm, aeration of 100 liters / min. hours.

Očkovací tank o objemu 250 litrů, plnění 150 litrů inokulační půdy byl očkován 10 °/o inokula z předočkovacího tanku, teplota kultivace 25 °C, míchání 30 ot./min., vzdušnění 150 lt/min., doba kultivace 36 hodin.Inoculation tank of 250 liters, filling of 150 liters of inoculum broth was inoculated with 10 ° / o inoculum from a pre-seed tank, cultivation temperature 25 ° C, stirring 30 rpm, aeration 150 lt / min, cultivation time 36 hours.

Fermentační tank objemu 250 litrů byl plněn fermentační půdou, 150 litrů. Inokulace byla provedena 10 % vegetativního inokula, teplota při fermentaci 25 °C, míchání 320 ot./min., vzdušnění 150 až 190 litrů/min., doba fermentace 150 až 222 hodiny.The 250-liter fermentation tank was filled with 150-liter fermentation broth. Inoculation was performed with 10% vegetative inoculum, fermentation temperature 25 ° C, stirring 320 rpm, aeration 150 to 190 liters / min, fermentation time 150 to 222 hours.

Během fermentace byly kontinuálně nebo semikontinuálně přidávány roztoky sacharózy, dusíkaté směsi s doplňujícím množstvím prekurzoru a fosfátu, zvětšující se objem fermentační půdy a růst mycelia byly kompenzovány odběry půdy a příslušným ředěním. Takto řízenou fermentaci bylo dosaženo na konci fermentace, tj. cca ve 222 hodině až 40 000 j./ml, při tom v jednotlivých odtazích fermentační půdy byla účinnost penicilinu od 14 000 j./ml v prvním až po 34 000 j./ml v posledním odtahu. Odtahů je během fermentace cca 10 po 10 litrech. Tento kmen vzhledem k vynikajícím růstovým schopnostem umožňuje aplikaci výše uvedené zřeďovací technologie a tím dosažení podstatného zvýšení výtěžků jak v j./ml, tak v mia na daný objem fermentační půdy.During the fermentation, sucrose solutions, nitrogen mixtures with an additional amount of precursor and phosphate, increasing fermentation broth volume and mycelium growth were added continuously or semicontinuously to compensate for soil collection and dilution. Thus controlled fermentation was achieved at the end of the fermentation, ie at about 222 hours up to 40,000 U / ml, while in individual extractions of the fermentation broth the efficiency of penicillin was from 14,000 U / ml in the first to 34,000 U / ml. in the last exhaust. The exhaust is approximately 10 to 10 liters during fermentation. This strain, due to its excellent growth properties, allows the application of the above dilution technology and thus achieves a substantial increase in yields in both U / ml and mia per volume of fermentation broth.

Kmen Penicillium chrysogenum, značený UV XLIV/347-36 byl uložen v Čs. sbírce mikroorganismů (Czechoslovak Colection of Microorganisms), Universita J. E. Purkyně, Brno, Tř. obránců míru 10, pod číslem CCM F-713.The strain Penicillium chrysogenum, labeled UV XLIV / 347-36, was deposited in Cs. collection of microorganisms (Czechoslovak Colection of Microorganisms), J. E. Purkyně University, Brno, Tř. Defenders of Peace 10, under the number CCM F-713.

Claims (1)

předmEtSubject VYNALEZUVYNALEZU Kmen mikroorganismu Penicillium chrysogenum CCM F-713, produkující penicilín V a G. ;Penicillium chrysogenum strain CCM F-713, producing penicillin V and G.;
CS517681A 1981-07-03 1981-07-03 Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-713 CS220217B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS517681A CS220217B1 (en) 1981-07-03 1981-07-03 Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-713

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS517681A CS220217B1 (en) 1981-07-03 1981-07-03 Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-713

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS220217B1 true CS220217B1 (en) 1983-03-25

Family

ID=5396150

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS517681A CS220217B1 (en) 1981-07-03 1981-07-03 Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-713

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS220217B1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN101245362B (en) Method for producing polypeptide antibiotic enramycin by fermentation method
US4824671A (en) In vitro method for producing infective bacterial spores and spore-containing insecticidal compositions
SU1124889A3 (en) Method of obtaining n-carbamyl phenylglycine derivatives
CS220217B1 (en) Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-713
US4369252A (en) Fermentation process for the preparation of ergot alkaloids, primarily ergocornine and β-ergocryptine
JP2009505681A (en) Regulation of acid metabolite production
Loughheed The effect of nutrition on synnemata formation in Hirsutella gigantea Petch
US5691191A (en) Medium for the cultivation of lagenidium giganteum
CS235447B1 (en) Microorganism strain Peniciliium chrysogenum CCM F-747
SK55696A3 (en) Highly productive strain of penicillium chrysogenum microorganism
SU1520098A1 (en) Method of obtaining immunogen vaccine strains of plague microbe
SU1631079A1 (en) Strain of bacteria brevibacterium stationis producing nad-kinase
SK55596A3 (en) Highly productive strain of penicillium chrysogenum microorganism
CS212149B1 (en) Microorganism strain of the penicillium chrysogenum ccm f-679
CS206930B1 (en) Strain of microorganism penicillinum chrysogenum ccm f-648
CS218514B1 (en) Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-720
SK268092A3 (en) Microorganism strain of acremoniium chrysogenum ccf-2752, producing cefalosporin c antibiotic
CS206946B1 (en) Strain brevibacterium sp.ao 6/79
CS265699B1 (en) Industrial bacterial strain Brevibacterium sp. CCM 4013
CZ77994A3 (en) INDUSTRIAL PRODUCTION STRAIN OF CLAVICEPS PURPUREA /Fr/Tul. MICROORGANISMS
CS253986B1 (en) Microorganism strain Penioillium chrysogenum CCM P-786
CZ281824B6 (en) Strain of penicillium chrysogenum ccm 8157 micro-organism
CS200944B1 (en) Strain of microorganism penicillium chrysogenum ccm f-647
CS239242B1 (en) Microorganism strain Penicillium chrysogenum CCM F-760
HU186825B (en) Process for the production of ergotic alkaloids, mainyl of alpha-ergokryptine and of beta-ergokryptine in a parasitic way