CS209379B1 - Vakcínaprotiinfekčněj burzitíde z atenuovaného kineňa a spósobjej přípravy - Google Patents

Vakcínaprotiinfekčněj burzitíde z atenuovaného kineňa a spósobjej přípravy Download PDF

Info

Publication number
CS209379B1
CS209379B1 CS49680A CS49680A CS209379B1 CS 209379 B1 CS209379 B1 CS 209379B1 CS 49680 A CS49680 A CS 49680A CS 49680 A CS49680 A CS 49680A CS 209379 B1 CS209379 B1 CS 209379B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
virus
cultures
vaccine
cell
inoculated
Prior art date
Application number
CS49680A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Inventor
Eugen Casnocha
Karel Cernik
Original Assignee
Eugen Casnocha
Karel Cernik
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Eugen Casnocha, Karel Cernik filed Critical Eugen Casnocha
Priority to CS49680A priority Critical patent/CS209379B1/cs
Publication of CS209379B1 publication Critical patent/CS209379B1/cs

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

ČESKOSLOVENSKÁ SOCIALISTICKÁ REPUBLIKA ( 19 ) POPIS VYNALEZU K AUTORSKÉMU OSVEDČENIU 209379 (11) (Bl) (22) Přihlášené 24 01 80(21) (PV 496-80) (51) Int. Cl.3 A 61 K 39/12 ÚŘAD PRO VYNÁLEZY A OBJEVY (40) Zverejnené 27 02 81 (45) Vydané 01 07 83 (75)
Autor vynálezu ČASNOCHA EUGEN MVDr. CSc., ZVOLEN a ČERNÍK KAREL MVDr.
CSc., NITRA (5 4) Vakcína proti infekčněj burzitíde z atenuovaného kineňa a spósob jej přípravy
Vynález sa týká vakcíny proti inf ekčne j burzitídekurčiat (chorobě Gumboro) a spósobu jej přípravyz kmeňa virusu, izolovaného na Slovensku a atenu-ovaného sériovými pasážami, v buňkových kultú-rach.
Infekčná burzitis (choroba Gumboro) je viruso-vé ochorenie kurčiat, popísané prvý raz v roku1957, ktoré prebieha velmi často subklinicky, alevyvolává pokles prírastkov hmotnosti a spomalenierastu, čo aj pri nízkej mortalitě je příčinou hospo-dářsky významných strát. Póvodcom infekčnej burzitídy je virus, ktorý jemimoriadne rezistentný vo vonkajšom prostředíproti pósobeniu fyzikálnych a chemických pro-striedkov. Přetrvává v kontaminovaných priesto-roch a to je příčinou rekurentnej infekcie nasledu-júcich zástavov hydiny. Virusová partikula, ktorejchýba obal, má priemer 60 nm. Obsahuje jedno-vláknitú ribonukleínovú kyselinu, zloženú z dvochsegmentov. Molekulová hmotnost’ genomu virusuje 1,75 až 1,8 x 106.
Infekcia vnímavých kurčiat do veku 14 týždňovvyvolává degeneráciu a nekrózu nezrelých lymfo-cytov B vo Fabríciovej burze, čo má za následokselektívne zníženie produkcie imunoglobulínuG a tým irreverzibilné oslabenie imunitných me-chanizmov. Nekrotické změny v týmuse a slezinemájů nepriaznivý vplyv aj na vývoj bunkovej imunitnej odpovede. Zvýšená vnímavost’ sa preja-vuje osobitne voči vírusom pseudomoru hydiny,infekčnej bronchitídy, E. coli, salmonelám, vočivirusu Markovej choroby a voči infekčnej bronchi-tíde a adenovírusovej infekcii počas obdobiaznášky.
Virus je možno izolovat iba niekoTko dní poinfekcii v kuřácích zárodkoch bez specifikovanýchpatogénnych zárodkov (SPF) a pasážovať ho v kur-čatách SPF alebo v buňkových kultúrach, připrave-ných z vajec SPF. V roku 1978 bolo v západnej Európe zamoře-ných 60 až 100 % reprodukčných chovov hydiny.V ČSSR sa podfa předběžných výsledkov sérolo-gických prieskumov a izolácie virusu zistil vysokýstupeň zamorenosti chovov masových i nosivýchplemien vírusom infekčnej burzitídy.
Profylaxia nákazy vychádza z týchto prin-cípov: — virus je velmi rozšířený v populácii, je mimo-riadne rezistentný a dlhodobe přežívá v pro-středí; — nákaza sa prenáša horizontálně a infikovat’ samóžu aj čerstvo vyliahnutě kurčatá; — kurčatá móžu disponovat’ materskými proti-látkami, ktoré poskytujú dočasnú ochranu, alesúčasne brzdia vývoj aktivněj imunity.
Nešpecifická profylaxia je založená na obecných 209379 209379 zásadách zoohygieny: súčasné osadzovanie a vy-prázdňovanie hál, obmetizenie presunov materiálua prechádzania osob a účinná dezinfekcia formalí-novými parami. Špecifická profylaxia je založená na pasívnejochraně kurčiat materskými protilátkami, ktorátrvá 2 až 3 týždne a na aktívnej imunizácii kurčiata reprodukčných nosnic. K očkovaniu sapoužívajúživé vakcíny z virusu o rozličnom stupni virulencie,pomnoženom v násadových vakciach z chovov bezspecifikovaných patogénnych zárodkov (SPF).(Becht, H„ Rapp. OIE, 1977, č. 201, s. 9;BENNEJEAN, G., Rapp. OIE, 1977, č. 216, s. 8;Cessi, D. — Gualandi, G. L., Rapp. OIE, 1977, č.211, s. 10; Cullen, G. A. — Wyeth, P. J., Vet. Rec.,99, 1976, č. 21, s. 418; Thomton, D. H., Rapp.OIE, 1977, č. 200, s. 16; Yadin, H. - Hoekstra, J.,Rapp. OIE, 1977, č. 212, s. 7; Zanella, A. — a i.,Avian Pathol., 6, 1977, č. 1, s. 8). .
Pokusné bola připravená a preskúšaná aj vakcí-na z virusu adaptovaného na kultúry buniek;embryonálnej burzy, embryonálnych obličiek a fiJbroblastov a pomnoženého v kultúrach kuřácíchfibroblastov z vajec SPF (Skeeles, J. K. — a i.,Avian Dis., 23, 1979, č. 2, s. 456).
Virusový kmeň infekčnej burzitídy Z-2037 bolizolovaný na buňkových kultúrach kuřácích em-bryonálnych fibroblastov v roku 1977 z lymf atické-ho ajbarátu infikovaných kurčiat linie Shaver v lo-kality Turčianské Teplice. Pomocou 5-jodo-2-de- ,zoxyuridínu bolo potvrdené, že izolát patří doskupjny ribovírusov. Virus nie je obalený, lebochloroformové skúšky na přítomnost’ esenciálnychlipidov sú negativné. Je termostabilný, odoláváteplo te 56 °C po dobu 30 minút bez zníženiainfekčného titra pre kuracie fibroblasty. Je cytopa-togěnny, replikuje sa a pomnožuje na kuřácíchembryonálnych buňkách (KEB) a kuřácích em-bryonálnych obličkových buňkách (KEOB) zatvorby drobno-guličkovitého cytopatického efek-tu, charakteristického pre virusy infekčnej burzití-dy. Izolovaný virusový kmeň bol porovnávanýs réferenčným kmeňom Stuttgart (prof. Woernle).V jadrách infikovaných buniek nevytvára inklúznetelieska. Křížové neutralizačně testy aprecipitačnétesty v agarovom geli s antisérami proti referenčné-mu kmeňu Stuttgart a proti izolátu Z-2037 súpozitivně, čo svědčí pre ich antigénnu zhodnosť.
Infekčný titer izolátu v tretej pasáži na KEB bolrelativné nízký: 103 TKID50 . ml-1. Kuracie em-bryá bez materských protilátok, infikované prvými2 až 3 pasážami virusu nevykazovali makroskopic-ké změny a ich mortalita nepřevýšila 20 %. Kurča-tá bez materských protilátok, infikované vírusominfekčnej burzitídy (v dávke 0,1 ml virusu adjusto-vaného na 1000 TKID50) cestou intrakonjunkti-válnou a perorálnou vo veku 5 dní, klinickyneochoreli. Morfologicky mali zvačšené Fabricioveburzy so specifickými histologickými změnami,svedčiacimi pre burzitídu s hyperplaziou retikulo-cytov v časti burzálnych folikulov. Rovnako v peče-ni infikovaných kurčiat bola pozorovatelná lymfo- cytárna infiltrácia perivaskulámych priestorova sporadické ložiská s vakuolámou degeneráciouhepatocytov resp. hemoragie.
Izolát překonal 10 slepých pasáží v štvordňovýchintervaloch na kuřácích zárodkoch bez materskýchprotilátok proti infekčnej burzitíde (línia ROSS)obvyklým virologickým spósobom. Přítomnost’ vi-rusu infekčnej burzitídy v pasážovaných suspen-ziách sa sledovala na buňkových kultúrach. Titervirusu v zmesných suspenziách orgánov kuřácíchzárodkov dosahoval 102 až 103 TKIDS0 . ml-1.
Dalej sa kmeň virusu Z-2037 sériovo pasážovalna primárných kúltúrach kuřácích embryonálnychbuniek, spósobom podlá virologických metod.Přítomnost’ virusu sa dokazovala vznikom cytopa-tických zmien. Obsah virusu sa stanovil ákumulač-ným výpočtom podlá Reeda a Muencha. Po 25 až27 pasážach na KEB dosahoval virus titer najme-nej 5 x 106 TKID50 . ml"1. i Postup atenuácie virulencie virusu infekčnejburzitídy sa kontroloval intrakonjunktiválnoua perorálnou aplikáciou virusu v dávke ca 5 x 104TKID50 páťdňových kurčatám bez protilátok protivirusu infekčnej burzitídy. Infikované zvieratá sasledovali klinicky, patohistologicky najma vyšetře-ním Fabríciovej burzy a pečene a pokusnou vakci-náciou takto inokulovaných kurčiat proti pseudo-moru hydiny 7 dní po aplikácii virusu infekčnejburzitídy. Pri serologickom vyšetření kurčiat naprotilátky proti pseudomoru nesmel byť významnýrozdiel medzi pokusnou a kontrolnou skupinou.Atenuovaný virus Z-2037 bol po 10 pasážachv kuřácích embryách a 27 pasážach v kultúrachkuřácích embryonálnych buniek preskúšaný napatogenitu pre rožne věkové kategorie hydiny bezprotilátok proti infekčnej burzitíde, menovite prekuracie embryá, jednodňové kurčatá, 5 a 10-dňovékurčatá, 28-dňové brojlery a 25 týždňové nosnice.Klinické či patomorfologické změny sa nezistiliv žiadnej pokusné j skupině, pre to sa považovalatenuovaný kmeň za neškodný pre všetky věkovéskupiny kurčiat. Pokusné skupiny za 7 až 14 dní poaplikácii virusu Z-2037 odpovedali tvorbou Speci-fických protilátok, ktorých Specifičnost’ sa ověřova-la referenčným vírusom infekčnej burzitídy, kme-ňom Stuttgart.
Virus Z-2037, atenuovaný a adaptovaný nakultúry kuřácích embryonálnych buniek popísa-ným spósobom, je uložený v Čs. sbírce mikroorga-nismů, Sbírka zoopatogenních mikroorganismů,Výzkumný ústav veterinárního lékařství, Brno,pod číslom CAPM V-260.
Podstata vynálezu spočívá v tom, že vakcínaproti infekčnej burzitíde sa připravuje z kmeňaZ-2037 (CAPM V-260), izolovaného na Sloven-sku a atenuovaného a adaptovaného sériovýmipasážami na kultúry kuřácích embryonálnych bu-niek. Vakcinačný virus sa množí a titruje naprimárných alebo sekundárných kultúrach kuřá-cích embryonálnych buniek, připravených z kon-venčných vajec. Atenuovaný a adaptovaný vakci-načný virus infekčnej burzitídy Z-2037 dosahuje

Claims (3)

  1. 3 títer 107 TKIDS0. ml 1 a je neškodný pre všetkyvěkové kategorie kurčiat. Příklad 1 Udržiavanie výrobného kmeňa Výrobný kmeň Z-2037 sa udržuje v lyofilizova-nom stave v ampulkách zatavených pod vákuom ipri +2 až +8 °C. Pasáž na buňkových kultúrach sarobí jeden raz do roka: Dve ampulky virusus obsahom po 0,3 ml lyofilizovaného materiálu saotvoria a ich obsah sa rozpustí v 4 ml kultivačnéhomédia (Hanksov'roztok s laktalbumínhydrolyzá-tom podlá PNL 01-63-74). Takto zriedenýmvírusom sa infikuj ú kultúry kuřácích embryonál-nych buniek v 2 až 4 Roux flašiach s objemom1200 ml. Naočkované Roux flaše sa inkubujú pri37 °C. Po zistení špecifickej degenerácie buniek, za24 až 96 hodin, sa kultúra zmrazí pri — 20 °C,rozmrazí, přefiltruje cez sterilnú gázu a titrujev skúmavkových kultúrach. Po kontrole bakteriál-nej sterility a po stanovení obsahu virusu jezásobný kmenový materiál připravený k lyofilizáciis prídavkom 40% protekčného média (95% inakti-vovaného koňského séra a 5% glukózy) alebo sauchovává v zmrazenom stave pri — 20 °C a používása k inokulácii buňkových kultúr pri výrobě vak-cíny. Příklad 2 Příprava vakcíny na primárných buňkových kultú-rach. , j Pri výrobě vakcíny sa zásobným kmeňovýmmateriálom inokulujú kultúry kuřácích embryo-nálnych buniek v Roux flašiach v množstve 1 mlvírusovej suspenzie na jednu Roux flašu s obje-mom 1200 ml a obsahu 100 ml kultivačného mé-dia. Naočkované Roux flaše sa inkubujú pri 37 °C.Po zistení špecifickej degenerácie buniek, za 24 až96 hodin, sa kultúry zmrazia pri -20 °C, rozrtira-zia, přefiltrujú cez sterilnú gázu a titrujú v skúfnav-kových buňkových kultúrach. Po kontrole bakteri-álně j sterility a po stanovení obsahu virusu .savirusová suspenzia naplní do liekoviek ako tekutávakcína, alebo sa s prídavkom 20% protekčnéholyofilného média (3 diely 20% roztoku Laktínaa 1 diel 40% glukózy) naplní do ampúl a lyofilizujesa. Tekutá vakcína sa uchovává v zmrazenomstave, lyofilizovaná pri +2 až +8 °C. 209379 Příklad 3 ' , f Příprava vakcíny na sekundárných buňkovýchkultúrach Dobré narastené kultúry kuřácích embryonál-nych buniek v Roux flašiach o objeme 1200 ml sauvolnia roztokom verzéntrypsínu predohriatehona 37 °C. Suspenzia uvolněných buniek saprenesie .do kultivačného média a zakladá sa do Roux fliašako primárná buňková kultúra. Sekundárné kultú-ry sa inokulujú a inkubujú ako primárné kultúrya virusová suspenzia sa spracováva rovnako ako jepopísané v příklade 2. , , Éríklad 4 Kontrola vakcíny titráciou Kultúry kuřácích embryonálnych buniek na tit-ráciu virusu sa zakladajú do skúmaviek rozmerov14/15 X 90 mm v množstve 1,0 ml kultivačnéhomédia. Kultúry buniek sa infikujú pó 0,1 ml. vakcinačného virusu, riedeného postupné desaťná-sobne od 10~3 do 10~8, každé riedenie najmenej do4 skúmaviek. Inokulované skúmavkové kultúry sa inkubujú 96 až 120 hodin pri 37 °C a titer virusu saodčítá mikroskopicky podlá cytopatického účinku. virusu na buňky. TKID50 virusu sa stanoví akumu-i .lačným výpočtem podlá Reeda a Muencha. Titer. virusu vo vakcíne musí byť najmenej 105 ’ TKID50 .mU1. Príidad 5 Stanovenie neutralizačných protilátek Skúmavkové kultúry kuřácích embryonálnychbuniek sa pripravujú ako. v příklade 4. Virusová'r suspenzia s obsahom 100 až 1000 TKID5() virusu' v 0,1. ml sa zmieša s rovnakým objemom vyšetřova-ného materiálu (séra), riedeného postupné desať-násobne od 10“1 do 10“5, a nechá sa stáť 60 minútpri laboratorněj teplote. Skúmavkové kultúry sainokulujú dávkou 0,2 ml zmesi vírusovej suspenzieso sérom, každé riedenie séra najmenej do 4 skú-maviek. Skúmavkové kultúry sa inkubujú 96 až120 hodin pri 37 °C. Titer neutralizačných protilá-tek sa odčítá mikroskopicky podlá chýbania cyto-patického účinku virusu na buňky. 50% neutrali-začná dávka (ND50) sa stanoví akumulačným výpočtem podlá Reeda a Muencha. PREDMET
    1. Vakcína proti infekčnej burzitíde kurčiat,v tekutom alebo lyofilizovanom stave, vyznačuj úcasa tým, že obsahuje v 1 ml 105 až 107TKID50 virusuinfekčnej burzitídy CAPM V-260.
  2. 2. Spósob přípravy vakcíny podfa bodu 1, vy-značuj úci sa tým, že sa atenuovaný kmeň virusuinfekčnej burzitídy CAPM V-260 pomnožujev primárných kulturách kuřácích embryonálnych VYNÁLEZU buniek, připravených z konvenčných vajec, priteplote 36 až 39 °C po dobu 24 až 96 hodin.
  3. 3. Spósob přípravy vakcíny podlá bodu 1, vy-značujúci sa tým, že sa atenuovaný kmeň virusuinfekčnej burzitídy CAPM V-260 pomnožujev subkultúrach embryonálnych buniek, připrave-ných z konvečných vajec, pri teplote 36 až 39 °C podobu 24 až 96 hodin.
CS49680A 1980-01-24 1980-01-24 Vakcínaprotiinfekčněj burzitíde z atenuovaného kineňa a spósobjej přípravy CS209379B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS49680A CS209379B1 (cs) 1980-01-24 1980-01-24 Vakcínaprotiinfekčněj burzitíde z atenuovaného kineňa a spósobjej přípravy

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS49680A CS209379B1 (cs) 1980-01-24 1980-01-24 Vakcínaprotiinfekčněj burzitíde z atenuovaného kineňa a spósobjej přípravy

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS209379B1 true CS209379B1 (cs) 1981-11-30

Family

ID=5337154

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS49680A CS209379B1 (cs) 1980-01-24 1980-01-24 Vakcínaprotiinfekčněj burzitíde z atenuovaného kineňa a spósobjej přípravy

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS209379B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Jones Avian reovirus infections
Okazaki et al. Protection against Marek's disease by vaccination with a herpesvirus of turkeys
McNulty et al. Isolation and cell culture propagation of rotaviruses from turkeys and chickens
Menendez et al. Experimental egg-transmission of avian reovirus
Lambrechts et al. Challenge experiments to evaluate cross‐protection induced at the trachea and kidney level by vaccine strains and Belgian nephropathogenic isolates of avian infectious bronchitis virus
Wolf et al. Salmonid viruses: Infectious pancreatic necrosis virus: Morphology, pathology, and serology of first european isolations
Van der Heide et al. Infectious tenosynovitis (viral arthritis): Influence of maternal antibodies on the development of tenosynovitis lesions after experimental infection by day-old chickens with tenosynovitis virus
JPH0278634A (ja) 連続細胞系におけるibdvの産生
DK163133B (da) Biologisk ren praeparation af en smitsom bronchitis-virusstamme
JP2011092190A (ja) トリレオウイルスの新規抗原クラス
US4302444A (en) Vaccines for immunizing egg-laying birds against Egg Drop disease, preparation of said vaccines, and method of use of said vaccines
McNeilly et al. Studies on a new enterovirus‐like virus isolated from chickens
HU189222B (en) Process for preparing a new vaccine against infectious bronchytis
Takase et al. Serologic and pathogenetic studies on avian reoviruses isolated in Japan
Takase et al. Isolation and characterisation of cytopathic avian enteroviruses from broiler chicks
Castrucci et al. A study of cytopathic rotavirus strains isolated from calves with acute enteritis
Robertson et al. Serological characteristics of avian reoviruses of Australian origin
Chettle et al. The isolation of infectious bursal disease virus from turkeys in England
Allan et al. A direct immunofluorescence test for the rapid detection of avian influenza virus antigen in tissue impression smears
KR20020013378A (ko) 난내 투여용 ibdv 균주
Carmichael et al. A Fatal Septicemic Disease of Infant Puppies Caused by Gytopathogenic Organisms with Characteristics of Mycoplasma
Graham Characterization of a reo-like virus and its isolation from and pathogenicity for parrots
CS209379B1 (cs) Vakcínaprotiinfekčněj burzitíde z atenuovaného kineňa a spósobjej přípravy
Witter Epidemiological studies relating to the control of Marek's disease
Burke et al. Avian enteric cytopathogenic viruses. II. Characteristics of a prototype