CS205314B1 - Manufacturing process of cellulose breaking enzymes - Google Patents

Manufacturing process of cellulose breaking enzymes Download PDF

Info

Publication number
CS205314B1
CS205314B1 CS419177A CS419177A CS205314B1 CS 205314 B1 CS205314 B1 CS 205314B1 CS 419177 A CS419177 A CS 419177A CS 419177 A CS419177 A CS 419177A CS 205314 B1 CS205314 B1 CS 205314B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
ccto
ccm
cellulose
hours
cellulase
Prior art date
Application number
CS419177A
Other languages
English (en)
Hungarian (hu)
Slovak (sk)
Inventor
Juraj Zemek
Ludovit Kuniak
Jozef Augustin
Ludmila Marvanova
Original Assignee
Juraj Zemek
Ludovit Kuniak
Jozef Augustin
Ludmila Marvanova
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Juraj Zemek, Ludovit Kuniak, Jozef Augustin, Ludmila Marvanova filed Critical Juraj Zemek
Priority to CS419177A priority Critical patent/CS205314B1/cs
Publication of CS205314B1 publication Critical patent/CS205314B1/cs

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

ČESKOSLOVENSKASOCIALISTICKÁREPUBLIKA( 19 )
POPIS VYNÁLEZU
K AUTORSKÉMU OSVEDČENIU (61) (23) Výstavná priorita (22) Přihlášené 24 06 77 (21) PV 4191-77 205 314 (11) (Bl) (51) IntCl3 C 12 N 9/42
ÚŘAD PRO VYNÁLEZY
A OBJEVY (40) Zveřejněné 29 08 8 0(45) Vvdané 01 og g3
Autor vynálezu ZEMEK JUBAJ ing. CSc., LEHNICA, KUNIAK tUDOVÍT ing. CSc., AUGUSTÍN J0ZEFPhMr., BRATISLAVA a KARVANOVÁ ÍUDMILA RNDr. CSc., BRNO (54) SpSsob produkcie enzýmov štiepiacich celulózu 1
Vynález rieši spdsob produkcie enzýmov štiepiacich celulózu pomocou niektorých kmeňovmikroskopických húb.
Ako producenti celulázového enzymového systému sa využívaju mektoré kmene rodu Tri-choderma (US patent č. 3398055), u ktorých je nevýhodou poměrně dlhá lag fáza predchádzajú-ca vlastnú tvorbu celulázy, široká variabilita vlastností, možnost výskytu mykotoxínov,a tým nie vždy vhodnost použitia v potravinárstve a krmovinárstve. Schopnost produkovatcelulázu bola v rámci rodu Botrytis popísaná u Botrytis cinerea, Botrytis allii a Botrytissqzanisa (j. G. Hancock, R. L. Miller and J. tf. Lorbeer, Phytopatology 21» 928 (1961); aVerhoeff, K. Werre, JodrthM., Neth. J. Plant. Pathol. tl972) 78, 179), ale nebole využitá k přípravě izolovaných enzýmových systémov.
Uvedené nevýhody rieši spdsob produkciespočívá v tom, že kmene
Botrytis cinerea CCM " byssoidea CCK " convallariae CCM " globosa CCM " fabae CCM " paeoniee CCM enzýmov štiepiacich celulózu, ktorého podstata F - 14 F - 16 F - 345 F - 346 F - 59 F - 02168 205 314 20S 314
Botrytis cf. narcisaicolo CCM F - 597 " cf. narcissicola CCK F - 598 sa jednotlivo alebo v zmesi predkultivujú na minerálněj živnej pfide obaahujúcej /1(1 —*4)glukán ako induktor enzýmupri teplotě 30 °C po dobu 24 hodin a potom preožkujú na produkčnúpfidu s celulózou, dusíkom vo formě amonnéj soli s fosfátom, pH 4,2 až 6,5, pričom celulázaea produkuje po dobu 120 hodin pri teplote 20 až 40 °C a izoluje: odpařením rastovej pčdy,připadne zrážaním síranom amonným alebo organickým rozpúšťadlom 8 výhodou etylalkoholom.
Uvedené kmene rodu Botrytis použití na produkciu celulázy sú uložené v ča. zbierkemikroorganizmov, Univerzita J. E. Půrkyne, Brno, Obrancov míru 10. Výhodou spfisobu produkcie celulázy podl’a vynálezu je poměrné vysoká ápecifická aktivi-ta produkovaného celulázového enzýmového systému <až 0,53 U/mg) do dosahuje špecifickú pro-dukciu popisovanú u Trichoderma viride (0,4 U/mg)a možnost využitia surových enzýmových pre-perátov vo vinárstve a nápojovom priemysle. Výhodou je aj příjemná vfina získaných preperá-tov a ich stabilita.
Praktické využitie uvedeného postupu spočívá v tom, že celulázový systém produkovanýdo kultivačného média je jednoduchou metodou izolovatelný. Z makromolekulového substrátutypu celulózy vznikajú oligosecharidy celobiózového typu. Komplexný celulázový systém jevyužitelný predovšetkým v nápojovom priemysle při lisovaní dužiny, ako aj pri dalších pro-ceatoch sacharifikácie makromolekulárneho /i(l—*4) glukánu. Příklad 1 Z vypratého gélu zo sieťovanej hydroxyetylcelulózy pripravenej podlá AO δ. 183 169 savyrežú trojúhelníkové profily o straně 4 cm, vložia sa do Fetriho misky a zalejú roztokomkultivačného média Yeast Nitrogen Base <0,6 g/lOC ml vody) (fa Oocoid) s gélom hydroxyetyl-celulózy ako jediným zdrojom uhlíka, tak, aby polovina hrůbky gélu vyčnievala nad hladinukultivačného média. Po sterilizácii pri 100 °C sa očkuje na povrchu gélu Botrytia fabaeCCM F-59 a kultivuje sa pri 30 °C počas 24 hodin, čím sa prevedie čiastočné vyšlachtenie.Získaná biomasa čiastočne vyšlachtenej Botrytis fabae CCM F-59 sa použije ako inokulum napfidu obeahujúcu 60 g odpadu vylisovaných hroznových šupiek s 0,2 g chloridu amonného a 0,3g dihydrofosforečňanu draselného v 200 ml 0,5 % roztoku CM celulózy (Lovosa) vo vodě (pH jeupravené na hodnotu 4,5). Kultivácia sa prevádza povrchovo v 1 litrových Erlenmayerovýchbankách po dobu 5 dní pri 20 °C. Po ukončení kultivácie sa biomasa odstráni filtráciou spo-lu so zvyškom hroznových šupiek a celuláza sa získá z filtrátu (po Salšej centrifugácii pri5000 g po dobu 10 minút) zrážaním síranom amonným (620 g/1, pri 20 °C). Dialyzovaný enzým(2-krát 24 hod. oproti destilovanej vodě) sa lyofilizoval. Výsledná aktivita 45 U, Speci-fická aktivita 0,53 U/mg proteinu. Příklad 2
Rovnako, ako v příklade 1, s tým rozdielom, že namiesto uvedeného kmeňa sa použilazmesná kultúra 8 kmenov rodu Botrytis (pozři vyznaková časť PV)i Použitá pfida podlá příkla-du 1 bole nastavená na pH 6,5« Kultivácia prebiehala pri 40 °C po dobu 120 hodin. Výsledný f-, surový enzýmový preparát mal aktivitu 67 U a špecifickú aktivitu 0,71 U/mg.

Claims (1)

  1. K D B S I Ví NALEZU 205 314 Spósob produkcie enzýmov átiepiacich celulózu, vyznačujúci sa tým, že kmene Botrytis cinerea CCM P - 14 bysaoidea CCM P - 16 •1 convallaeiae CCM P - 345 II globosa CCM F - 346 M fabae CCM F - 59 «1 paeoniae CCM F - 0216 •1 cf. narcissicola CCtó F - 597 II cf. narcissicola CCM F - 598 aa jednotlivo alebo v zmesi predkultivujú na minerálněj živnej pfide obsahujúcej /j(l—w4Jglukán ako induktor enzýmu pri teplote 30 °C po dobu 24 hodin a potom preočkujú na pro-dukčnú p6du s celulózou, dusíkom vo formě amónnej soli a fosfátom, pH 4,2 až 6,5, pričomceluláza sa produkuje po dobu 120 hodin pri teplote 20 až 40 °C a izoluje odpařením rasto-vej pfidy, připadne zrážaním síranom amonným alebo organickým rozpúšťadlom a výhodou etylalkoholom.
CS419177A 1977-06-24 1977-06-24 Manufacturing process of cellulose breaking enzymes CS205314B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS419177A CS205314B1 (en) 1977-06-24 1977-06-24 Manufacturing process of cellulose breaking enzymes

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS419177A CS205314B1 (en) 1977-06-24 1977-06-24 Manufacturing process of cellulose breaking enzymes

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS205314B1 true CS205314B1 (en) 1981-05-29

Family

ID=5384089

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS419177A CS205314B1 (en) 1977-06-24 1977-06-24 Manufacturing process of cellulose breaking enzymes

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS205314B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5110735A (en) Thermostable purified endoglucanase from thermophilic bacterium acidothermus cellulolyticus
JPS60500891A (ja) セルラ−ゼを大量生成する微生物
Rattanakit et al. Utilization of shrimp shellfish waste as a substrate for solid-state cultivation of Aspergillus sp. S1-13: evaluation of a culture based on chitinase formation which is necessary for chitin-assimilation
EP0577823A1 (en) Thermostable purified endoglucanases from thermophilic bacterium acidothermus cellulolyticus
Yang et al. Partition and purification of a thermostable xylanase produced by Paecilomyces thermophila in solid-state fermentation using aqueous two-phase systems
Duarte et al. Production and purification of alkaline xylanases
DK164070B (da) Fremgangsmaade til fremstilling af et sammensat cellulase/xylanase-enzympraeparat
Yoshioka et al. Production and characterization of thermostable xylanase from Talaromyces byssochlamydoides YH-50
Yinbo et al. Production, characterization, and application of the cellulase-free xylanase from Aspergillus niger
US5366884A (en) Thermostable purified endoglucanase II from Acidothermus cellulolyticus ATCC
CS205314B1 (en) Manufacturing process of cellulose breaking enzymes
Ku et al. Production of yeast lactase from sauerkraut brine
EP0431548B1 (de) Fructose-1,6-bisphosphat-Aldolase, Verfahren zur Herstellung derselben und deren Verwendung
Bekkarevich et al. Cultivation of a novel cellulase/xylanase producer, Trichoderma longibrachiatum mutant TW 1-59-27: Production of the enzyme preparation and the study of its properties
JPH0121957B2 (cs)
JPWO1998039423A1 (ja) 中温性キシラナーゼ
CA1249236A (en) PREPARATION OF THE ENZYME .beta.-GLUCANASE BY FERMENTATION OF FUNGI
JPS6140787A (ja) ストレプトマイセス属新種の微生物
CS205311B1 (en) Manufacturing process of enzymes of cellulose breaking
HARA et al. Production of polygalacturonase by Aspergillus niger cultured in the medium containing mandarin orange peel
JPS61265089A (ja) セルラ−ゼの製造方法
Husseiny et al. Production and purification of pectinase, avicelase and carboxymethyl cellulase by fermentation of agro-industrial wastes using B. firmus and B. laterosporus
CS208239B1 (sk) Spdsob produkcie enzýmov Stiepiacich celulózu
JPS59198975A (ja) セルラ−ゼの製造方法
JPS61162177A (ja) セルラ−ゼの生産法