CN201965132U - 梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒 - Google Patents
梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒 Download PDFInfo
- Publication number
- CN201965132U CN201965132U CN 201120025624 CN201120025624U CN201965132U CN 201965132 U CN201965132 U CN 201965132U CN 201120025624 CN201120025624 CN 201120025624 CN 201120025624 U CN201120025624 U CN 201120025624U CN 201965132 U CN201965132 U CN 201965132U
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- syphilis
- specific
- igm antibody
- specific igm
- syphilis specific
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒,涉及一种试剂盒。试剂盒设载体板、硝酸纤维膜、梅毒特异性IgM抗体检测线、对照线,硝酸纤维膜粘贴在载体板上表面,检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在梅毒特异性IgM抗体检测线处包被梅毒特异性重组抗原,在对照线处包被人IgM抗体。所述梅毒特异性重组抗原为TPN15、TPN17、TPN37、TPN44.5、TPN47。可用于全血、血清、血浆及脑脊液等标本中梅毒特异性IgM抗体的检测。所需标本量极小,不需特殊仪器,检测简便快速,特异性强,灵敏度高,准确可靠,成本低。
Description
技术领域
本实用新型涉及一种试剂盒,尤其是涉及一种梅毒特异性IgM抗体检测免疫印迹试剂盒。
背景技术
梅毒(Syphilis)是一种由梅毒螺旋体(Treponema pallidum,TP)引起的性传播性疾病,其病原体是梅毒螺旋体,属螺旋体科。梅毒螺旋体主要通过性接触、输血、创口或者胎盘等途径传播。梅毒螺旋体从感染区附近的淋巴结进入血液,播散全身,使机体几乎所有的组织及器官受累,临床表现为全身性,可分为不同临床阶段,包括一期、二期、三期和潜伏期。世界卫生组织(WHO)曾乐观地预言:“由于有高敏度检测方法和高效的治疗方案,梅毒是一种能够通过公共卫生措施得到成功控制的性传播性疾病”。遗憾的是,至今梅毒依然是世界范围的公共卫生问题,缺乏有效的行政控制措施,每年全球大约有1200万的患者,其中60万孕妇患者([1]林丽蓉,杨波,潘锡涛,等.潜在的血源传播患者梅毒血清学检测方法的选择.中华医院感染学杂志.2010,20(10):1491-1494)。事实上,梅毒的感染现状可能要比想象中的更让人悲观。
调查发现,梅毒感染者已经较广泛地存在于普通人群中。
梅毒螺旋体尚不能进行体外培养,梅毒诊断与流行病学调查主要依赖于血清学试验,包括特异性抗体和反应素检测两大类型。梅毒特异性抗体IgM(TP-IgM)和IgG(TP-IgG)抗体分别于2周和4周后产生,即使患者经过足够治疗,其仍能长期存在,甚至终身不消失([2]林丽蓉,但冰,付左根,等.潜在血源传播患者梅毒血清学TRUST/TPPA与IgM抗体联合检测.中国皮肤性病学杂志.2010,152(05):446-448);而另一种抗体物质反应素产生较晚,一般在受感染后5~7周产生,而且晚期梅毒、梅毒治疗后期以及潜伏梅毒可能阴性,因此梅毒特异性抗体的阳性率、敏感性显著高于反应素。TP-IgM是梅毒感染后,机体最先出现的特异性抗体。只要有活的梅毒螺旋体存在,其TP-IgM将会维持在一定的水平。MartinaH等([3]MartinaH,Daan W N,Mart M,et al.Comparison of a Treponema pallidum IgM immunoblot with a 19Sfluorescent treponemal antibody absorption test for the diagnosis of congenital syphilis[J]Diagnostic Microbiology and Infectious Disease,2007,59:61-66.)认为TP-IgM是梅毒早期感染并活动的一项血清学标志,李步荣等([4]李步荣,贺军涛,张毅,等.梅毒螺旋体IgM抗体检测的临床意义[J]第四军医大学学报,2007,28(16):1495-1497)认为TP-IgM与TP-DNA一样,代表着梅毒传染性指标。在排除近期抗梅毒治疗的前提下,TP-IgM若不转阴,提示体内可能残存梅毒螺旋体或治疗不彻底。TP-IgM阴转者随访时再转阳性,表明再次感染梅毒([5]Rawstron SA,Mehta S,Bromberg K,et al.Evaluation of a Treponema pallidum2 specific IgMenzyme immunoassay and Treponema pallidum western blot antibody detection in the diagnos
早期的血清学方法使用完整梅毒螺旋体作为抗原,研究和诊断用的TP是以TP感染兔睾丸获得,这种方法存在花费大、获得的TP量少且不纯(混有宿主蛋白)、与其他病原体存在交叉反应等缺点,因此假阳性也时有发生。随着分子生物学技术的普及及梅毒螺旋体抗原的相继克隆,将重组抗原应用于梅毒实验已经越来越多。目前研究比较多的TP抗原有TPN17、TPN47、TPN15、TPN44.5、TPN36、TP0453、TP0684及TPr家族。采用重组DNA技术制备的重组抗原可以克服完整TP抗原的缺点,能快速、经济地制备无限量特异重组TP抗原。
梅毒特异性IgM抗体检测方法包括梅毒螺旋体特异性抗体明胶凝集试验(TPPA)、酶联免疫吸附试验(ELISA)、荧光密螺旋体抗体吸收试验(FTA-ABS)及免疫印迹技术(Western-Blot)等,其特异性均较高。一般地,TPPA,ELISA作为临床初筛,当血清学阳性,或临床诊断有困难时,需要采用FTA-ABS及Western-blot作为确认试验。其中,FTA-ABS需要荧光显微镜,而且其结果判断需要训练有素和较丰富经验的专业人员才能完成,因此,其应用推广受到一定的限制。采用Western-blot方法制成的试剂盒,一般常规实验室均可完成,不需要特殊设备,判读也简单明了。现市售的Western-blot试剂均为进口试剂,价格昂贵。
发明内容
本实用新型的目的是提供一种梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒。
本实用新型设有载体板、硝酸纤维膜(NC膜)、梅毒特异性IgM抗体检测线、对照线,硝酸纤维膜粘贴在载体板上表面,梅毒特异性IgM抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在梅毒特异性IgM抗体检测线处包被梅毒特异性重组抗原,在对照线处包被人IgM抗体。
所述梅毒特异性重组抗原可为TPN15、TPN17、TPN37、TPN44.5、TPN47。
所述载体板可采用PVC板。
所述梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒采用以下方法制备:
1)制备梅毒特异性重组抗原
采用基因克隆技术,PCR扩增编码梅毒螺旋体抗原的DNA,并插入大肠杆菌中使其表达,得梅毒特异性重组抗原。
2)硝酸纤维素膜的点样
在硝酸纤维素膜IgM检测线上包被梅毒特异性重组抗原,在对照线处包被人IgM抗体,晾干,所述梅毒特异性重组抗原和人IgM抗体的浓度可为1~4mg/mL;点样量可为1μL/cm。
3)制备抗人IgM特异性片段μ链单克隆抗体
以人IgM特异性片段μ链为抗原免疫小鼠(或兔),通过杂交瘤技术,筛选获得稳定分泌抗人IgM单克隆抗体的杂交瘤细胞株,采用ELISA的方法鉴定McAb效价在1∶107以上。
4)抗人IgM特异性片段μ链的辣根过氧化物酶(HRP)标记
采用过碘酸钠法进行辣根过氧化物酶(HRP)标记,所述辣根过氧化物酶的底物由0.03%(W/V)的过氧化氢和0.07%(W/V)的二氨基联苯胺组成。
5)制备免疫印迹试剂盒
将硝酸纤维膜粘贴在载体板上表面,梅毒特异性IgM抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在梅毒特异性IgM抗体检测线处包被梅毒特异性重组抗原,在对照线处包被包被人IgM抗体,用切条机切成条状,和酶标记的抗人μ链单克隆抗体及其底物共同组装成梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒。
在步骤1)、2)、5)中,所述梅毒特异性重组抗原为TPN15、TPN17、TPN37、TPN44.5、TPN47等。
本实用新型提供了一种采用免疫印迹技术建立梅毒特异性IgM抗体检测试剂盒,可用于全血、血清、血浆及脑脊液等标本中梅毒特异性IgM抗体的检测。该检测方法所需的标本量极小,不需要特殊仪器,肉眼直接判读结果,且检测简便快速,特异性强,灵敏度高,准确可靠,成本低,应用广泛。
附图说明
图1为本实用新型实施例的结构组成示意图。
图2为实验结果模式示意图。在图2中,I为使用前的示意图,H为无效试验(产品质量问题),G为阴性结果,A~F为TP-IgM阳性结果;2为梅毒特异性TPN-15-IgM抗体检测线,3为梅毒特异性TPN-17-IgM抗体检测线,4为梅毒特异性TPN-37-IgM抗体检测线,5为梅毒特异性TPN-44.5-IgM抗体检测线,6为梅毒特异性TPN-47-IgM抗体检测线,7为对照线。
具体实施方式
以下实施例将结合附图对本实用新型作进一步的说明。
参见图1,本实用新型实施例设有载体板1、梅毒特异性IgM抗体检测线2~6,对照线7和硝酸纤维膜(NC膜)8。
硝酸纤维膜8粘贴在载体板1上表面,梅毒特异性IgM抗体检测线2~6和对照线7依次设在硝酸纤维膜8上;在梅毒特异性IgM抗体检测线处分别包被梅毒特异性重组抗原TPN15、TPN17、TPN37、TPN44.5和TPN47,在对照线7处包被人IgM抗体。
所述载体板采用PVC板。
所述梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒的制备方法,包括以下步骤:
1)制备TPN15、TPN17、TPN37、TPN44.5和TPN47梅毒特异性重组抗原
采用基因克隆技术,PCR扩增编码梅毒螺旋体抗原的DNA,并插入大肠杆菌中使其表达,得TPN15、TPN17、TPN37、TPN44.5和TPN47梅毒特异性重组抗原。
2)硝酸纤维素膜的点样
在硝酸纤维素膜IgM检测线上包被TPN15、TPN17、TPN37、TPN44.5、TPN47梅毒特异性重组抗原,在对照线处包被人IgM抗体,晾干。
3)制备抗人IgM特异性片段μ链单克隆抗体
以人IgM特异性片段μ链为抗原免疫Balb/c小鼠,通过杂交瘤技术,筛选获得稳定分泌抗人IgM单克隆抗体的杂交瘤细胞株。采用ELISA的方法鉴定McAb效价在1∶107以上。
4)抗人IgM特异性片段μ链单克隆抗体的辣根过氧化物酶(HRP)标记
采用过碘酸钠法进行辣根过氧化物酶(HRP)标记。
5)制备免疫印迹试剂盒
将硝酸纤维膜粘贴在载体板上表面,梅毒特异性IgM抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在梅毒特异性IgM抗体检测线处包被TPN15、TPN17、TPN37、TPN44.5、TPN47梅毒特异性重组抗原,在对照线处包被人IgM抗体,用切条机切成条状,和酶标记的抗人μ链单克隆抗体及其底物共同组装成梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒。
以下给出采用梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒检测患者的临床标本:
1)标本采用0.01mol/L PBS缓冲液进行1∶50稀释。
2)封闭:采用5%脱脂奶粉(0.01mol/LPBST缓冲液配制)作为封闭液,于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育30min。
3)血清温育:取出所需的膜条,将其放入温育槽内,并编号。在温育槽中分别加入1.5ml已稀释样本。于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育30min。
4)清洗:吸去槽内液体,在摇摆摇床上用1.5ml 0.01mol/L PBS缓冲液清洗膜条3次,每次5min
5)加酶结合物:在温育槽中加入1.5ml已稀释的酶结合物(采用辣根过氧化物酶标记的抗人IgM特异性片段μ链单克隆抗体为检测抗体),于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育30min。
6)清洗:吸去槽内液体,在摇摆摇床上用1.5ml 0.01mol/L PBS缓冲液清洗膜条3次,每次5min。
7)底物温育:在温育槽中分别加入1.5ml底物液(DAB),于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育10min。
8)终止:吸去槽内液体,用蒸馏水清洗膜条3次,每次1min。
结果判断:将检测膜条放置在结果判定模板中,风干后判断结果。任何蛋白靶标出现的特异性条带,均可判断为阳性,确诊为梅毒(见图2)。
以下给出梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒的性能检定:
1)外观检查:试剂盒无破损,包被反应膜平整、干净无污染斑点、无裂缝,胶带无开胶,无切斜现象。
2)阳性标本符合率:用TP-IgM阳性的不同滴度的阳性参比血清各50份采用梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒检定,计算阳性符合率。阳性参比血清的确定采用FTA-ABS(德国欧蒙公司)法确定的临床标本。
3)阴性标本符合率:用50份阴性参比血清检定,计算阳性符合率。阴性参比血清的确定采用TPPA(日本富士株式会社)法确定的临床标本。
4)批内差异:同一批次梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒,用特征性血清检测,要求阳性血清检测结果显示色带的颜色深浅一致,阴性血清检测的结果阴性。
5)批间差异:不同批次梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒,用特征性血清检测,要求阳性血清检测结果显示色带的颜色深浅一致,阴性血清检测的结果阴性。
6)干扰试验:检测结果不受标本溶血(n=50)、脂血(n=50)和黄疸(n=50)的干扰。
7)交叉反应:采用本梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒,进行系统性红斑狼疮(n=30)、类风湿病(n=30)、免疫性肝炎(n=30)等自身免疫系统疾病的检测,未发现交叉反应。
8)稳定性检测:应用Arrhenius法则,将梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒放置37℃20天后检测,以上各项指标无显著变化,确保成品在室温干燥条件下保存,有效期为18个月。
以下给出具体实施例。
实施例1
将硝酸纤维膜粘贴在载体板上表面,梅毒特异性IgM抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在梅毒特异性IgM抗体检测线处包被TPN15、TPN17、TPN37、TPN44.5、TPN47梅毒特异性重组抗原,在对照线处包被人IgM抗体,用切条机切成条状,和酶标记的抗人μ链单克隆抗体及其底物共同组装成梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒。
1)标本采用0.01mol/L PBS缓冲液进行1∶50稀释。
2)封闭:采用5%脱脂奶粉(0.01mol/LPBST缓冲液配制)作为封闭液,于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育30min。
3)血清温育:取出所需的膜条,将其放入温育槽内,并编号。在温育槽中分别加入1.5ml已稀释样本。于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育30min。
4)清洗:吸去槽内液体,在摇摆摇床上用1.5ml 0.01mol/L PBS缓冲液清洗膜条3次,每次5min。
5)加酶结合物:在温育槽中加入1.5ml已稀释的酶结合物(采用辣根过氧化物酶标记的抗人IgM特异性片段μ链单克隆抗体为检测抗体),于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育30min。
6)清洗:吸去槽内液体,在摇摆摇床上用1.5ml 0.01mol/L PBS缓冲液清洗膜条3次,每次5min。
7)底物温育:在温育槽中分别加入1.5ml底物液(DAB),于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育10min。
8)终止:吸去槽内液体,用蒸馏水清洗膜条3次,每次1min。
结果判断:将检测膜条放置在结果判定模板中,风干后判断结果。任何蛋白靶标出现的特异性条带,均可判断为阳性,确诊为梅毒(见图2)。
实施例2
与实施例1相似,其区别在于硝酸纤维膜检测线仅由TPN15、TPN17、TPN37、TPN44.5梅毒特异性重组抗原组成,不含有TPN47。结果判断与实施例1相同。
实施例3
与实施例1相似,其区别在于硝酸纤维膜检测线仅由TPN15、TPN17、TPN37、TPN47梅毒特异性重组抗原组成,不含有TPN44.5。结果判断与实施例1相同。
实施例4
与实施例1相似,其区别在于硝酸纤维膜检测线仅由TPN15、TPN17、TPN44.5、TPN47梅毒特异性重组抗原组成,不含有TPN37梅毒特异性重组抗原。结果判断与实施例1相同。
实施例5
与实施例1相似,其区别在于硝酸纤维膜检测线仅由TPN15、TPN37、TPN44.5、TPN47梅毒特异性重组抗原组成,不含有TPN17梅毒特异性重组抗原。结果判断与实施例1相同。
实施例6
与实施例1相似,其区别在于硝酸纤维膜检测线仅由TPN17、TPN37、TPN44.5、TPN47梅毒特异性重组抗原组成,不含有TPN15梅毒特异性重组抗原。结果判断与实施例1相同。
实施例7
与实施例1相似,其区别在于待检标本为脑脊液标本,结果判断与实施例1相同。
实施例8
性能验证试验:按实施例1的方案制备梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒,然后进行性能验证。
1)外观检查:试剂盒无破损,包被反应膜平整、干净无污染斑点、无裂缝,胶带无开胶,无切斜现象。
2)阳性标本符合率:用TP-IgM阳性的不同滴度的阳性参比标本各50份采用梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒检定,计算阳性符合率。阳性参比标本的确定采用FTA-ABS(德国欧蒙公司)法确定的临床标本。
3)阴性标本符合率:用50份阴性参比标本检定,计算阳性符合率。阴性参比标本的确定采用TPPA(日本富士株式会社)法确定的临床标本。
4)批内差异:同一批次梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒,用特征性标本检测,要求阳性标本检测结果显示色带的颜色深浅一致,阴性标本检测的结果阴性。
5)批间差异:不同批次梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒,用特征性标本检测,要求阳性标本检测结果显示色带的颜色深浅一致,阴性标本检测的结果阴性。
6)交叉反应:采用本梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒,进行系统性红斑狼疮(n=30)、类风湿病(n=30)、免疫性肝炎(n=30)等自身免疫系统疾病的检测,未发现交叉反应。
7)稳定性检测:应用Arrhenius法则,将梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒放置37℃20天后检测,以上各项指标无显著变化,确保成品在室温干燥条件下保存,有效期为18个月。
Claims (2)
1.梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒,其特征在于设有载体板、硝酸纤维膜、梅毒特异性IgM抗体检测线、对照线,硝酸纤维膜粘贴在载体板上表面,梅毒特异性IgM抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在梅毒特异性IgM抗体检测线处包被梅毒特异性重组抗原,在对照线处包被人IgM抗体。
2.如权利要求1所述的梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒,其特征在于所述载体板采用PVC板。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 201120025624 CN201965132U (zh) | 2011-01-25 | 2011-01-25 | 梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 201120025624 CN201965132U (zh) | 2011-01-25 | 2011-01-25 | 梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN201965132U true CN201965132U (zh) | 2011-09-07 |
Family
ID=44527678
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN 201120025624 Expired - Fee Related CN201965132U (zh) | 2011-01-25 | 2011-01-25 | 梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN201965132U (zh) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102095862A (zh) * | 2011-01-25 | 2011-06-15 | 厦门大学附属中山医院 | 梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 |
CN104155451A (zh) * | 2014-08-20 | 2014-11-19 | 厦门大学附属中山医院 | 梅毒螺旋体IgM抗体生物素亲和素酶联免疫检测试剂盒及其制备方法 |
-
2011
- 2011-01-25 CN CN 201120025624 patent/CN201965132U/zh not_active Expired - Fee Related
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102095862A (zh) * | 2011-01-25 | 2011-06-15 | 厦门大学附属中山医院 | 梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 |
CN104155451A (zh) * | 2014-08-20 | 2014-11-19 | 厦门大学附属中山医院 | 梅毒螺旋体IgM抗体生物素亲和素酶联免疫检测试剂盒及其制备方法 |
CN104155451B (zh) * | 2014-08-20 | 2016-01-06 | 厦门大学附属中山医院 | 梅毒螺旋体IgM抗体生物素亲和素酶联免疫检测试剂盒及其制备方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN101738473B (zh) | 梅毒螺旋体抗体诊断试剂盒及其制备方法 | |
CN101858914B (zh) | 梅毒特异性总抗体胶体金免疫层析检测试剂条及其制备方法 | |
CN101825634A (zh) | 梅毒特异性IgM与IgG抗体联合检测试剂条及其制备方法 | |
CN101825636B (zh) | 梅毒特异性IgM抗体与特异性总抗体联合检测试剂条及其制备方法 | |
Keramati et al. | Role of the Lewis and ABO blood group antigens in Helicobacter pylori Infection | |
CN101858916A (zh) | 梅毒特异性IgM抗体胶体金免疫层析检测试剂条及其制备方法 | |
CN101825635B (zh) | 梅毒特异性IgG抗体与特异性总抗体联合检测试剂条及其制备方法 | |
CN103267844A (zh) | 一种腺病毒IgM、IgG抗体的胶体金法检测试纸条、试剂盒及其制备方法 | |
CN101858915A (zh) | 梅毒特异性IgG抗体胶体金免疫层析检测试剂条及其制备方法 | |
CN201673156U (zh) | 梅毒特异性IgM抗体胶体金免疫层析检测试剂条 | |
CN201926664U (zh) | 梅毒特异性IgG抗体免疫印迹试剂盒 | |
Wang | Significance of IgA antibody testing for early detection of SARS‐CoV‐2 | |
CN102095858A (zh) | 梅毒心磷脂和特异性抗体IgM免疫印迹试剂盒及其制备 | |
CN201965132U (zh) | 梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒 | |
CN201926662U (zh) | 梅毒特异性总抗体免疫印迹试剂盒 | |
CN102095860B (zh) | 梅毒特异性IgG抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 | |
CN201955343U (zh) | 梅毒心磷脂和特异性抗体IgM免疫印迹试剂盒 | |
CN102081096A (zh) | 梅毒心磷脂和特异性抗体IgG免疫印迹试剂盒及其制备 | |
CN202002933U (zh) | 梅毒特异性总抗体和心磷脂抗体免疫印迹试剂盒 | |
CN201926663U (zh) | 梅毒心磷脂和特异性抗体IgG免疫印迹试剂盒 | |
CN102435732A (zh) | 弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 | |
Agbede et al. | Significance of IgG-avidity in antenatal rubella diagnosis | |
Blanton et al. | Increased seroprevalence of typhus group rickettsiosis, Galveston County, Texas, USA | |
CN102368068A (zh) | 检测肺炎衣原体IgM抗体的试剂盒 | |
CN201673158U (zh) | 梅毒特异性IgG抗体胶体金免疫层析检测试剂条 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
C17 | Cessation of patent right | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20110907 Termination date: 20140125 |