CN118028191B - 一种有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株及其应用 - Google Patents

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Abstract

本申请涉及植物病害生物防治技术领域，具体公开了一种有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株及其应用；所述广谱性菌株为耐盐芽孢杆菌（Bacillus halotolerans）XYK2‑4于2023年10月24日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，地址：北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所，保藏编号为CGMCC No.28732；本申请公开的一种有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株，不仅对辣椒疫霉病有一定的拮抗活性，对梨、苹果、枸杞、胡萝卜、水稻等多种常见作物病害也表现出一定的拮抗活性，而且抑菌谱广，防病效果高效、稳定，应用广泛且具有一定的应用潜力。

Description

一种有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株及其应用
技术领域
本申请涉及植物病害生物防治技术领域，更具体地说，它涉及一种有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株及其应用。
背景技术
辣椒（Capsicum annuum L.）为一年生或有限多年生草本植物，在我国普遍种植。2022年，我国辣椒种植面积213.3万公顷以上，总产量达到了6000万吨以上，年产值2500亿元以上。
随着辣椒种植面积的扩大以及连作带来的诸多问题，尤其是辣椒疫霉病等植物病害也随之增加，在内蒙古以及全国辣椒种植区频繁发生，经济损失严重，严重威胁了辣椒产业的健康与可持续发展。辣椒疫霉病是主要由辣椒疫霉菌（Phytophthora capsici）引起的一种土传病害，病原菌可经雨水、土壤、气流等途径传播，引起辣椒植株叶片枯萎、果实腐烂、茎秆坏死等症状，发病严重时整株萎蔫死亡。该病害病原菌分布广、蔓延速度快、变异频率高，易于爆发成灾，可造成感病植株30-40%死亡，严重时死亡率可高达50-100%，造成严重的经济损失，是我国乃至世界辣椒可持续生产的主要限制因子之一。
筛选高抗品种是防控辣椒疫霉病最经济有效的的措施，但是高抗品种面临病原菌变异快，以及作物的区域适应性等因素限制。目前在生产上常使用甲霜灵、霜脲氰等内吸式化学杀菌剂进行辣椒疫霉病防治，但是化学药剂的大量使用易导致农药残留和健康安全等问题。生物防治因其持效性和安全性，成为绿色农业的主要研究方向。目前报道的生防菌包括钩状木霉菌（Trichoderma hamatum）、链霉菌（Streptomyces sp.）、绿农芽孢杆菌、枯草芽胞杆菌类等，但现有生防菌在实际应用过程中，普遍存在防病效果不稳定，抑菌谱较窄等问题，这些问题严重限制了现有生防菌的广泛应用。鉴于我国微生物资源的丰富性，发掘和筛选出既高效又具备抗逆性和广谱抑菌活性的生防菌株，将为病害防控以及农业的可持续发展提供重要的技术支持和资源基础。基于上述陈述，本申请提供了一种有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株及其应用。
发明内容
为了解决现有生防菌株在实际应用过程中，普遍存在防病效果不稳定，抑菌谱较窄等问题，本申请提供了一种有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株及其应用。
第一方面，本申请提供了一种有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株，采用如下的技术方案：
一种有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株，所述广谱性菌株为耐盐芽孢杆菌（Bacillus halotolerans）XYK2-4，其于2023年10月24日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，地址：北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所，保藏编号为CGMCC No.28732。
第二方面，本申请提供了一种微生物生防菌剂，采用如下的技术方案：
一种微生物生防菌剂，含有上述第一方面中所述的耐盐芽孢杆菌（Bacillushalotolerans）XYK2-4。
优选的，所述生防菌剂中，耐盐芽孢杆菌（Bacillus halotolerans）XYK2-4以被培养的活菌、发酵液或菌悬液的形式存在。
优选的，所述生防菌剂的剂型为可湿性粉剂、水分散剂、水悬浮剂或可分散油悬浮剂。
第三方面，本申请提供了一种有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株或一种微生物生防菌剂的应用，采用如下的技术方案：
上述第一方面中所述的有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株或第二方面中所述的微生物生防菌剂在抑制植物病原菌中的应用。
优选的，所述植物病原菌为辣椒疫霉病菌(Phytophthora capsici SP90）。
优选的，所述植物病原菌还包括梨灰霉病菌(Botryosphaeria cinerea)、梨轮纹病菌(Botryosphaeria berengerianade）、梨褐腐病菌(Monilinia fructigena)、梨黑斑病菌(Alternaria alternata)、苹果腐烂病菌（Cytospora mali QH2）、辣椒炭疽病菌（Colletotrichu scovillei LJ1) 、枸杞根腐病菌(Fusarium solani)、辣椒疫霉病菌(Phytophthora capsici SP90）、胡萝卜根腐病菌(Fusarium solani WQ1) 、水稻恶苗病菌(Fusarium moniliforme)等。
优选的，所述应用方式包括采用所述微生物生防菌剂对待处理农产品进行浸种、幼苗定植后灌根、喷洒植株或果实喷洒。
优选的，所述待处理农产品包括梨、苹果、枸杞、辣椒、胡萝卜、水稻等。
综上所述，本申请具有以下有益效果：
本申请公开的一种有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株，不仅对辣椒疫霉病有一定的拮抗活性，对梨、苹果、枸杞、胡萝卜、水稻等多种常见作物病害也表现出一定的拮抗活性，而且抑菌谱广，防病效果高效、稳定，应用广泛且具有一定的应用潜力。
附图说明
图1 为本申请实施例1中XYK2-4在LB培养基内生长状态图；
图2为本申请实施例1中XYK2-4的生理生化特征图；
图3为本申请实施例1中XYK2-4的16S rDNA序列构建进化树；
图4为本申请实施例2中XYK2-4对辣椒疫霉病菌的皿内拮抗活性图；
图5为本申请实施例2中 XYK2-4诱导辣椒疫霉病菌接种7d的盆栽效果图；
图6为本申请实施例3中XYK2-4对9种病原菌的皿内拮抗活性图；
图7为本申请实施例3中XYK2-4对5种病害的活体活性图。
具体实施方式
下面结合说明书附图和具体实施例对本发明作出进一步地详细阐述，所述实施例只用于解释本发明，并非用于限定本发明的范围。下述实施例中所使用的试验方法如无特殊说明，均为常规方法；所使用的材料、试剂等，如无特殊说明，为可从商业途径得到的试剂和材料。
本申请实施例中所涉及到的供试病原菌、培养基及仪器设备，具体如下：
1.供试病原菌
梨灰霉病菌(Botryosphaeria cinerea)、梨轮纹病菌(Botryosphaeriaberengerianade）、梨褐腐病菌(Monilinia fructigena)、梨黑斑病菌(Alternariaalternata)由中国农科院果树研究所分离鉴定（Sun et al. 2017；孙平平等，2018）；
苹果腐烂病菌（Cytospora mali QH2）、辣椒炭疽病菌（Colletotrichu scovilleiLJ1) 、枸杞根腐病菌(Fusarium solani)由本实验室分离、鉴定（马强等，2020；孙平平等，2023）；
辣椒疫霉病菌(Phytophthora capsici SP90）由山西农大周建波博士提供（孙平平等，2022）；
胡萝卜根腐病菌(Fusarium solani WQ1) 由内蒙古农业科学院蔬菜花卉研究所提供（韩凤英等，2020）；
水稻恶苗病菌(Fusarium moniliforme)由陕西省微生物研究所卢美欢博士提供（卢美欢等，2020）。
2.培养基
（1）马铃薯葡萄糖培养基（PDA）：马铃薯浸提液200g，葡萄糖20g，琼脂粉20g，蒸馏水1000mL，pH 7.2-7.4。
（2）LBA培养基：胰化蛋白胨10g，酵母提取物5g，NaCl 10g，琼脂粉20g，去离子水定容至1L。
（3）LB液体培养基：同LBA培养基，不加琼脂。
（4）V8琼脂培养基（辣椒疫霉产孢培养基）：V8汁200 mL，CaCO3 2 g，琼脂 15 g，蒸馏水800 mL。
（5）V-P液体培养基：
V-P液体培养基：葡萄糖5g，K2HPO4 2g，蛋白胨5g，去离子水1000mL，分装（每管5mL），灭菌。
V-P试剂：A液：α-萘酚6.0g,加无水乙醇溶解，定容至100ml，B液：氢氧化钾40g,加蒸馏水溶解，定容至100ml。
（6）淀粉水解培养基：蛋白胨10g，牛肉浸粉3g，可溶性淀粉30g，琼脂粉15g，去离子水1000mL，pH值7.6±0.1。
（7）H2S培养基：牛肉膏3g，酵母浸膏3g，蛋白胨10g，FeSO4 0.2g，NaCl 5g，硫代硫酸0.3g，琼脂12g，蒸馏1000mL水。
（8）明胶液化培养基：蛋白胨5g，牛肉浸粉3g，明胶120g，KNO3 2g，蒸馏水1000mL。
（9）硝酸盐还原液体培养基
硝酸盐还原液体培养基：硝酸钾0.2g，蛋白5g溶解于1000mL蒸馏水中，调节pH7.4，分装试管（每管5mL），121℃高压灭菌15min。
硝酸盐还原剂：A液：对氨基苯磺酸0.8g溶解于2.5mol/L乙酸溶液100mL中，B液：将甲萘胺0.5g溶解于2.5mol/L乙酸溶液100mL中。
3.试验仪器
电热恒温培养箱（HPX-9162MBE，上海博讯实业有限公司）；
超净工作台（SW-CJ-1FD）；
显微镜（LEICA ICC50W，德国莱卡仪器有限公司）；
电泳仪（BG-Power 600K450W，北京百晶生物技术有限公司）；
PCR仪（624BR47696，美国伯乐Bio-Rad 公司）。
实施例1
耐盐芽孢杆菌（Bacillus halotolerans）XYK2-4的分离筛选与鉴定
1.1菌株的分离筛选
采集陕西下峪口铁矿厂植物根际土壤样品，在采集过程中，清除5cm的表层土，采集25cm的根际土壤，用牛皮纸包起来，4℃储存。采用稀释平板涂布法分离土壤中的放线菌，将10g干燥处理的土壤样品研磨并置于100mL无菌水中，4℃、180r/min振荡30min，用无菌水逐级稀释土壤样品100、1000倍，吸取100μL的稀释液，均匀涂布于LBA培养基上，28℃培养2d。挑取形态、颜色不同的单个细菌菌落划线纯化，纯化后菌株转入20%甘油，-20℃保存备用，并将分离纯化后的菌株命名为XYK2-4。
1.2菌株的鉴定
1.2.1菌株形态特征鉴定
形态学结合分子序列对XYK2-4进行鉴定，观察和记录菌株生长状态，菌落形态、生理生化特征等。
结果显示：XYK2-4在LB培养基上菌落光滑，粘稠不易挑起，菌落正面乳白色至白色（图1左侧），背面乳黄色至淡黄色（图1右侧），具有细菌的典型培养特性。
1.2.2生理生化鉴定
（1）明胶液化试验
将XYK2-4接种到含明胶液化培养基的生化管中，空白对照不接种菌株，28℃培养7d，将生化管放置在4℃的环境中30 min，如内容物不凝固，则为阳性反应，如内容物凝固不流动，则为阴性反应。
（2）硝酸盐还原试验
将XYK2-4接种在硝酸盐还原液体培养基中，以空白培养基为对照，28℃下培养 7-14d，培养结束后，滴加硝酸盐还原剂A液和B液各2-3滴，数秒后观察颜色变化，若变红，则为阳性反应。
（3）淀粉水解试验
将XYK2-4点接在淀粉水解培养基上，28℃培养7d。将碘液滴浸于培养基表面，若拮抗菌点边缘形成一个透明圈，则该菌株可产生淀粉酶，透明圈越大，菌株产淀粉酶能力越强。
（4）产H2S试验
挑取XYK2-4置于含H2S培养基的生化管中，28℃培养7d，观察周围颜色，若变黑说明有H2S产生。
（5）V-P试验
将XYK2-4接种于V-P液体培养基上，培养结束后滴加V-P试剂（A液6滴，B液2滴）混匀后继续培养0.5-4h，4h内变红则为阳性，不变色或棕黄色为阴性。
生理生化鉴定结果见下表1和图2，且图2中所有试验组结果均为：左侧是空白对照组，右侧为XYK2-4组。
表1 菌株XYK2-4生理生化特征
由表1和图2显示结果可知：XYK2-4有一定的淀粉水解能力，产H2S，V-P检测阳性，明胶液化和硝酸盐活性显示阴性。
1.2.3分子序列鉴定
将XYK2-4接种于LB 液体培养基中，28℃、180r/min震荡24h，取1 ml菌液，10000r/min离心1min，弃上清，使用Ezup柱式细菌基因组DNA抽提试剂盒提取DNA，利用7F(5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3')/1492R (5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3')扩增其16S rDNA基因片段，所得PCR产物经凝胶检测后回收其序列，送至生工测序。利用测得的序列经过拼接后在NCBI进行BLAST比对，利用Neighbor Joint方法构建进化树。
16S rDNA序列分析
CCTAATACATGCAAGTCGAGCGGACAGATGGGAGCTTGCTCCCTGATGTTAGCGGCGGACGGGTGAGTAACACGTGGGTAACCTGCCTGTAAGACTGGGATAACTCCGGGAAACCGGGGCTAATACCGGATGCTTGTTTGAACCGCATGGTTCAAACATAAAAGGTGGCTTCGGCTACCACTTACAGATGGACCCGCGGCGCATTAGCTAGTTGGTGAGGTAATGGCTCACCAAGGCAACGATGCGTAGCCGACCTGAGAGGGTGATCGGCCACACTGGGACTGAGACACGGCCCAGACTCCTACGGGAGGCAGCAGTAGGGAATCTTCCGCAATGGACGAAAGTCTGACGGAGCAACGCCGCGTGAGTGATGAAGGTTTTCGGATCGTAAAGCTCTGTTGTTAGGGAAGAACAAGTACCGTTCGAATAGGGCGGTACCTTGACGGTACCTAACCAGAAAGCCACGGCTAACTACGTGCCAGCAGCCGCGGTAATACGTAGGTGGCAAGCGTTGTCCGGAATTATTGGGCGTAAAGGGCTCGCAGGCGGTTCCTTAAGTCTGATGTGAAAGCCCCCGGCTCAACCGGGGAGGGTCATTGGAAACTGGGGAACTTGAGTGCAGAAGAGGAGAGTGGAATTCCACGTGTAGCGGTGAAATGCGTAGAGATGTGGAGGAACACCAGTGGCGAAGGCGACTCTCTGGTCTGTAACTGACGCTGAGGAGCGAAAGCGTGGGGAGCGAACAGGATTAGATACCCTGGTAGTCCACGCCGTAAACGATGAGTGCTAAGTGTTAGGGGGTTTCCGCCCCTTAGTGCTGCAGCTAACGCATTAAGCACTCCGCCTGGGGAGTACGGTCGCAAGACTGAAACTCAAAGGAATTGACGGGGGCCCGCACAAGCGGTGGAGCATGTGGTTTAATTCGAAGCAACGCGAAGAACCTTACCAGGTCTTGACATCCTCTGACAATCCTAGAGATAGGACGTCCCCTTCGGGGGCAGAGTGACAGGTGGTGCATGGTTGTCGTCAGCTCGTGTCGTGAGATGTTGGGTTAAGTCCCGCAACGAGCGCAACCCTTGATCTTAGTTGCCAGCATTCAGTTGGGCACTCTAAGGTGACTGCCGGTGACAAACCGGAGGAAGGTGGGGATGACGTCAAATCATCATGCCCCTTATGACCTGGGCTACACACGTGCTACAATGGACAGAACAAAGGGCAGCGAAACCGCGAGGTTAAGCCAATCCCACAAATCTGTTCTCAGTTCGGATCGCAGTCTGCAACTCGACTGCGTGAAGCTGGAATCGCTAGTAATCGCGGATCAGCATGCCGCGGTGAATACGTTCCCGGGCCTTGTACACACCGCCCGTCACACCACGAGAGTTTGTAACACCCGAAGTCGGTGAGGTAACCTTTATGGAGCCAGCCGC
16S rDNA序列显示该活性菌株和Bacillus halotolerans聚为一枝（图3）。培养特性，生理生化结合16S rDNA序列确定XYK2-4为耐盐芽孢杆菌（Bacillus halotolerans）。
本申请得到一株防病效果稳定、高效的有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株耐盐芽孢杆菌（Bacillus halotolerans）XYK2-4，将分离菌株于2023年10月24日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，地址：北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所，保藏编号为CGMCC No.28732。
实施例2
耐盐芽孢杆菌（Bacillus halotolerans）XYK2-4对辣椒疫霉病的离体及活体活性测定
2.1 离体活性测定
利用皿内平板对峙法，测定XYK2-4对辣椒疫霉病(Phytophthora capsici）的皿内拮抗活性。具体测试过程如下：用接种针挑取直径6mm的XYK2-4菌饼倒置于PDA平板的两侧，28℃培养2d后，在平板中央接种辣椒疫霉病(Phytophthora capsici）病原菌菌饼，将只在平板中央接种病原菌的处理作为对照，每个处理重复三次，28℃恒温培养。待对照菌落长满平板时，观察并记录抑菌圈直径，计算抑菌率。
抑菌率（％）＝（1-拮抗处理病斑半径/对照病斑半径）×100%。
菌株XYK2-4能够显著抑制辣椒疫霉病的发展，对辣椒疫霉病离体抑菌圈达到3.17±0.58 mm（图4）。
2.2活体活性测定
挑取少量XYK2-4的菌体，接种于200mLLB液体培养基中，28℃，180rpm培养2d，得到拮抗菌发酵液，用无菌水稀释至1×106cfu/mL用于活体防效测定。
将辣椒疫霉病菌(PhytophthoracapsiciSP90）接种于V8琼脂培养基上，28℃培养箱中黑暗培养7d后放置于间歇光照（12h光照/12h黑暗）培养2d诱导游动孢子囊产生。取10mL无菌水置于已产生孢子囊的培养皿中，于28℃培养箱中光照培养30min，过滤后的游动孢子液用血球计数板测量孢子浓度，最后稀释至1×105个/mL得到辣椒疫霉菌孢子悬浮液备用。
将辣椒种子表面消毒，然后用无菌水冲淋3遍，并放置于培养皿中，在温度为28℃的条件下恒温暗光催芽。选取芽长0.5cm的种子插于苗钵中，基质为市售营养土并灭菌。待辣椒苗长至3-4片叶时开始试验。接种病原菌或拮抗菌前1d，保证树苗健康存活的前提下暂停浇水。采用灌根接种法，在距离幼苗根基部3cm直径范围内扎深度4cm孔，用移液枪注入4mL拮抗菌发酵液（1×106cfu/mL），以接种无菌水作为对照，25℃培养5d后接种辣椒疫霉病菌孢子悬浮液（1×105 cfu/mL）。本实验共设置2个处理，分别为CK（只接种无菌水）+疫霉菌、拮抗菌发酵液+疫霉菌。每个处理共6株辣椒苗。控制接种后的温度为25-28℃，湿度为75%以上，接种7d后观察并记录发病情况。
结果显示：接种XYK2-4后的辣椒植株均未表现出疫霉病症状，而未经菌株处理的辣椒在接种疫霉病菌后的发病率为100%，XYK2-4对辣椒疫霉病的活体抑制活性达到100%，并能够促进辣椒植株的生长（图5）。
实施例3
耐盐芽孢杆菌（Bacillus halotolerans）XYK2-4抑菌谱测定
3.1 离体活性测定
利用皿内平板对峙法，测定XYK2-4其对梨灰霉病菌(Botryosphaeria cinerea)、梨轮纹病菌(Botryosphaeria berengerianade）、梨褐腐病菌(Monilinia fructigena)、梨黑斑病菌(Alternaria alternata)、苹果腐烂病菌（Cytospora mali QH2）、辣椒炭疽病菌（Colletotrichu scovillei LJ1) 、枸杞根腐病菌(Fusarium solani)、胡萝卜根腐病菌(Fusarium solani WQ1) 、水稻恶苗病菌(Fusarium moniliforme)等9种重要果树和作物植物病原菌的拮抗效果，具体结果见表2。
表2 XYK2-4对9种病原菌的防效检测结果
由表2和图6显示结果可知：XYK2-4对待测的9种病原菌均表现一定的拮抗活性，皿内的抑菌率在63%以上，抑菌谱广。
3.2活体活性测定
3.2.1 XYK2-4对梨灰霉病菌、梨轮纹病菌、梨褐腐病菌的活体防效处理
将健康新鲜的黄冠梨于质量浓度2%次氯酸钠中浸泡3min，自来水冲洗后晾干。用无菌打孔器在梨果实赤道部致5mm（直径）×3mm（深）的伤口，将拮抗菌液喷施在伤口处，0.5h后将3种病原菌菌饼分别贴在伤口上并用胶带固定，以喷施无菌水，将只接种病原菌的黄冠梨为对照，每个处理重复6次，处理后的果实用保鲜膜封口。放置于25℃的人工气候箱中保湿培养7d（控制16 h光照/8 h黑暗）后，测量病斑直径，计算抑菌率。
3.2.2 XYK2-4对辣椒炭疽病的活体防效处理
将健康新鲜的辣椒于质量浓度2%次氯酸钠中浸泡3min，自来水冲洗后晾干。用无菌接种针刺伤辣椒果实，将拮抗菌液均匀喷施果实上，处理0.5h后将辣椒炭疽病菌菌饼贴在伤口处并用透明胶带固定，以喷施无菌水，将只接种病原菌菌饼的辣椒为对照，每个处理重复6次。放置于25℃的人工气候箱中保湿培养7d（控制16 h光照/8 h黑暗）后，测量病斑直径，计算抑菌率。
3.2.3 XYK2-4对苹果腐烂病的拮抗活性处理。
选取两年生健康苹果枝条，剪成10cm左右，质量浓度2％次氯酸钠中浸泡7分钟，无菌水冲洗三次后晾干，两端用石蜡封住，无菌打孔器在苹果枝条中间部位致6mm的伤口，将拮抗菌液均匀喷施在枝条上，30min后接种苹果腐烂病菌，用无菌脱脂棉（无菌水浸湿）包裹，保鲜膜密封。将以致伤后喷施无菌水并接种腐烂病菌菌饼的枝条为阳性对照，未接种苹果腐烂病菌菌饼的枝条为阴性对照，所有枝条25℃，16h光照/8h黑暗保湿培养，接菌后5d揭掉棉花，14d后测量病斑直径，计算抑菌率。
抑菌率(%)=(1–处理病斑直径/对照病斑直径)×100%。
利用抑菌率（防治效果），分别计算XYK2-4对梨灰霉病、梨轮纹病、梨褐腐病，辣椒炭疽病、辣椒疫霉病和苹果腐烂病的拮抗活性，具体结果见下表3。
表3 XYK2-4对5种病害的活体活性防效检测结果
由表3和图7显示结果可知：XYK2-4对梨灰霉病、梨轮纹病、梨褐腐病三种采后病害的抑制活性达到88%以上，对辣椒炭疽病也有一定的抑制活性，达到49%，对苹果腐烂病的抑制活性为100%，因此不仅对辣椒疫霉病有一定的拮抗活性，而且抑菌谱广，对多种常见作物病害也表现出一定的拮抗活性。
本申请公开的一种有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株，不仅对辣椒疫霉病有一定的拮抗活性，对梨、苹果、枸杞、胡萝卜、水稻等多种常见作物病害也表现出一定的拮抗活性，而且抑菌谱广，防病效果高效、稳定，应用广泛且具有一定的应用潜力。
本具体实施例仅是对本申请的解释，其并不是对本申请的限制，本领域技术人员在阅读完本说明书后可以根据需要对本实施例做出没有创造性贡献的修改，但只要在本申请的权利要求范围内都受到专利法的保护。

Claims (7)

1.一种有效防控辣椒疫霉病的广谱性菌株，其特征在于，所述广谱性菌株为耐盐芽孢杆菌（Bacillus halotolerans）XYK2-4于2023年10月24日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，地址：北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所，保藏编号为CGMCC No.28732。
2.一种微生物生防菌剂，其特征在于，所述生防菌剂中含有权利要求1所述的耐盐芽孢杆菌（Bacillus halotolerans）XYK2-4。
3.根据权利要求2所述的微生物生防菌剂，其特征在于，所述生防菌剂中，耐盐芽孢杆菌（Bacillus halotolerans）XYK2-4以被培养的活菌、发酵液或菌悬液的形式存在。
4.根据权利要求2所述的微生物生防菌剂，其特征在于，所述生防菌剂的剂型为可湿性粉剂、水分散剂、水悬浮剂或可分散油悬浮剂。
5.权利要求2-4任一项所述的微生物生防菌剂在制备抑制植物病原菌产品中的应用；
所述植物病原菌为辣椒疫霉病菌（Phytophthora capsici ）、Botryosphaeriacinerea、Botryosphaeria berengerianade、Monilinia fructigena、Alternariaalternata、Fusarium solani、Fusarium moniliforme。
6.根据权利要求5所述的微生物生防菌剂在制备抑制植物病原菌产品中的应用，其特征在于，所述应用方式包括采用所述微生物生防菌剂对待处理农产品进行浸种、幼苗定植后灌根、喷洒植株或果实喷洒。
7.根据权利要求6所述的微生物生防菌剂在制备抑制植物病原菌产品中的应用，其特征在于，所述待处理农产品包括梨、苹果、枸杞、辣椒、胡萝卜或水稻。
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