CN117820470B - 人源性重组抗Spastin抗体及其制备方法和应用 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及人源性重组抗Spastin抗体及其制备方法和应用。本发明利用Rosetta设计了三种抗Spastin抗体得到原始蛋白序列,并基于该原始蛋白序列通过密码子优化,得到轻链和重链可变区序列,以此进行了重组Spastin抗体载体的构建,并转染至人源真核293FT细胞中,成功表达和纯化了人源性抗Spastin单克隆抗体。所述人源性抗Spastin单克隆抗体具有优异的Spastin蛋白结合活性,灵敏度高,特异性良好,且相对于其他异种来源的抗体安全性更高,有效避免HAMA等反应的发生,为脊髓损伤等神经性疾病的诊断和治疗提供了新的功能性试剂。

Description

人源性重组抗Spastin抗体及其制备方法和应用
技术领域
本发明属于生物医药和分子生物学技术领域,具体涉及人源性重组抗Spastin抗体及其制备方法和应用。
背景技术
抗体是免疫系统的主要效应分子,作为生物治疗药物已取得巨大成功。抗体也是作为一种特殊的蛋白质,在检测和破坏病原体方面发挥着至关重要的作用。由于抗体具有高特异性、模块化和适应性强的结构、可预测的生物利用度和药代动力学以及标准化制造平台的可用性,它已经发展成为一类成熟且用途广泛的治疗剂,用于治疗多种人类疾病。目前抗体药物研发已成为医药行业可行性最高的生物制药领域之一;特别是单克隆抗体已成为全球医药市场上最重要的治疗性重组抗体之一。抗体的结合和特异性很大程度上取决于互补决定区(CDR),其由轻链中的三个环和重链中的三个环组成。结构多样性很大程度上是由重链中的第三个环实现的,它决定了许多抗原结合特性。
目前,市场上的大多数抗体都是主要是使用昂贵且耗时的体外噬菌体和酵母展示技术以及动物免疫平台技术等开发的。并且,由于抗原很难靶向,对于许多靶点,这些方法可能无法产生具有理想特性的抗体。随着基因组时代的到来,传统免疫学已被一种更快速、更有效的计算机主导的蛋白质抗原(Ag)选择方法所取代,称为反向疫苗学 (RV)。它利用原子级三维信息来设计具有改进的免疫学和/或生化特性的Ag。各种计算方法,包括合理的、基于结构的设计、蛋白质设计算法和抗体特异性建模技术,都可以帮助抗体的设计。
Rosetta是一种精度预测和设计大分子结构的软件。Rosetta包含用于蛋白质结构预测和设计的软件包和框架,能够根据蛋白质的氨基酸序列有效预测蛋白质的结构,并且可以从头设计各种类型的全新蛋白质。随着基于结构的抗体设计领域在过去几年中迅速发展,在过去十年中,Rosetta系列算法的蛋白设计在创新蛋白药物、抗体、疫苗、新型合成生物学元件及纳米药物等生物大分子研究领域中被广泛使用。如今,计算机深度学习开发和设计这些分子的计算方法越来越多地用于补充传统的实验室流程,与治疗性抗体开发相关的时间和成本预计会减少。这有望使免疫疗法对患者来说更加负担得起,并扩大其对更多疾病的适用性。
SPG4是编码Spastin的基因,是与各种细胞活动相关的AAA(ATPase associatedwith various cellular activities)结构域。Spastin蛋白在神经系统的发育中高度表达,大量研究表明Spastin在神经发育、轴突再生、树突棘成熟以及轴突运输发挥着关键作用。Spastin最早在遗传性痉挛性截瘫(HSP)中报道,在约40%的常染色体显性遗传性痉挛性截瘫(AD-HSP)病例中发生突变。遗传性痉挛性截瘫(HSP)是一种遗传性的神经退行性疾病,这组神经退行性疾病的特征是进行性痉挛和下肢无力,伴有皮质脊髓束和背柱中末端轴突的变性。在大多数人群中的患病率为1.8/100000。目前的研究表明,编码 Spastin的SPG4基因的致病性突变会导致遗传性痉挛性截瘫(HSP)的发生。此外,近期有研究成果表明Spastin在脊髓损伤的修复过程中也发挥着重要功能和作用。针对Spastin的研究一直是研究关注的热点。目前市面上针对Spastin的抗体,仍是通过传统的动物免疫平台技术开发的,通过抗原免疫动物以引发免疫应答而产生的。该方法研发周期长、成本较高且抗体制备灵活性低。
发明内容
针对现有技术中的不足,本发明通过设计针对Spastin抗原表位的人源性重组抗体,并提供了其制备方法和应用,所得到的抗Spastin抗体具有优异的Spastin蛋白结合活性,灵敏度高,特异性良好。为后续开发针对Spastin相关的靶向治疗抗体的开发提供理论基础。
为了解决上述技术问题,本发明是通过如下技术方案得以实现的。
本发明第一方面提供了一种抗Spastin抗体,包含重链可变区和轻链可变区;所述重链可变区的氨基酸序列选自SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3中的任意一种,轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6中的任意一种。
作为优选地,所述重链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:1所示,且轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:4所示;或,所述重链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示,且轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:5所示;或,所述重链可变区的氨基酸序列如SEQ IDNO:3所示,且轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:6所示。
本发明第二方面提供了一种编码上述抗Spastin抗体的核苷酸分子,所述核苷酸分子中,编码重链可变区的核苷酸序列选自SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:8、SEQ ID NO:9中一种或多种;编码轻链可变区的核苷酸序列选自SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12中一种或多种。
作为优选地,所述编码重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID NO:7所示,且编码轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID NO:10所示;或,所述编码重链可变区的核苷酸序列如SEQID NO:8所示,且编码轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID NO:11所示;或,所述编码重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID NO:9所示,且编码轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID NO:12所示。
本发明第三方面提供了一种重组表达载体,包括上述编码抗Spastin抗体的核苷酸分子。
作为优选地,所述重组表达的载体选自质粒、噬菌粒、柯斯质粒、人工染色体中的一种或多种。
本发明第四方面提供了一种重组细胞,包括上述重组表达载体。
作为优选地,所述重组细胞选自S2细胞、CHO细胞、NSO细胞、COS细胞、BHK细胞、BL21细胞、sf9细胞、sf21细胞、DH5α细胞、293FT、Hela细胞中的一种或多种。
本发明第四方面提供了上述抗Spastin抗体的制备方法,包括如下步骤:
(1)以重链可变区序列和轻链可变区序列作为模板序列进行特异性引物设计,并使用特异性引物PCR对模板序列进行扩增获得重链片段和轻链片段;
(2)分别在载体中酶切插入经步骤(1)PCR扩增获得的重链片段和轻链片段,并转化至大肠杆菌中,筛选阳性单克隆菌落并扩增,分别提取得到重链表达质粒和轻链表达质粒;
(3)将得到的重链表达质粒和轻链表达质粒克隆至载体中获得重组质粒;
(4)将步骤(3)得到的重组质粒转染至细胞中得到重组细胞,将重组细胞培养50-200h后离心去除细胞和细胞碎片,再进行过滤即得。
作为优选地,步骤(2)于载体中酶切插入重链片段时的酶切位点为EcoRI和NheI;插入轻链片段时的酶切位点为EcoRI和BsiWI。
作为优选地,步骤(2)中所述大肠杆菌选自DH5α。
作为优选地,步骤(4)中所述细胞选自293FT细胞。
本发明第五方面提供了上述抗Spastin抗体在制备检测Spastin蛋白表达水平的产品中的应用。
应理解的是,在无特别说明的情况下,本发明上下文中所述的“抗体”是指一类能够与抗原特异性结合的免疫球蛋白。抗体以一个或者多个Y字形单体存在,每个Y字形单体由4条多肽链组成,包含两条相同的重链和两条相同的轻链,轻链和重链是根据他们的分子量大小来命名的。Y字形结构的顶端是可变区,为抗原特异性结合部位。每个重链包含恒定区和可变区,所有同一类型的抗体其恒定区都是相同的,不同类型的抗体之间则存在差异。每条轻链也有两个前后相连的结构域,即恒定区和可变区。所述的“载体”是指可将多聚核苷酸插入其中的一种核酸运载工具。当载体能使插入的多核苷酸编码的蛋白获得表达时,载体称为表达载体。载体可以通过转化、转导或者转染导入宿主细胞,使其携带的遗传物质元件在宿主细胞中获得表达。载体是本领域技术人员公知的,包括但不限于:质粒;噬菌粒;柯斯质粒;人工染色体,例如酵母人工染色体(YAC)、细菌人工染色体(BAC)或P1来源的人工染色体(PAC);噬菌体如λ噬菌体或M13噬菌体及动物病毒等。可用作载体的动物病毒包括但不限于,逆转录酶病毒(包括慢病毒)、腺病毒、腺相关病毒、疱疹病毒(如单纯疱疹病毒)、痘病毒、杆状病毒、乳头瘤病毒、乳头多瘤空泡病毒,本领域技术人员可根据实验需求自行通过市售途径购买,并按照产品说明书进行使用,也可以自行设计和合成。所述的“宿主细胞”是指可用于导入载体的细胞,其包括但不限于,如大肠杆菌或枯草菌等的原核细胞,如酵母细胞或曲霉菌等的真菌细胞,如S2果蝇细胞或Sf9等的昆虫细胞,或者如纤维原细胞、CHO细胞、COS细胞、NSO细胞、HeLa细胞、BHK细胞、293FT细胞等人或动物细胞。
本发明利用Rosetta设计了三种抗Spastin抗体得到原始蛋白序列,并基于该原始蛋白序列通过密码子优化,得到轻链和重链可变区序列,以此进行了重组Spastin抗体载体的构建,并转染至人源真核293FT细胞中,成功表达和纯化了人源性抗Spastin单克隆抗体。所述人源性抗Spastin单克隆抗体具有优异的Spastin蛋白结合活性,灵敏度高,特异性良好,且相对于其他异种来源的抗体安全性更高,有效避免HAMA等反应的发生,为脊髓损伤等神经性疾病的诊断和治疗提供了新的功能性试剂。
附图说明
图1为轻链和重链可变区PCR扩增产物以及酶切后的pFUSE2ss-CLIg-hk轻链载体示意图;其中A为轻链和重链可变区PCR扩增产物示意图,M为Marker,1、2分别为抗体1片段的轻链或重链,3、4分别为抗体2片段的轻链或重链,5、6分别为抗体3片段的轻链或重链;B为酶切后的pFUSE2ss-CLIg-hk轻链载体示意图,1表示pFUSE2ss-CLIg-hk轻链载体,2表示酶切后的pFUSE2ss-CLIg-hk轻链载体,3表示pFUSEss-CHIg-hG1重链载体,4表示酶切处理后的pFUSEss-CHIg-hG1重链载体。
图2为Spastin重组抗体轻链和重链表达载体示意图。
图3为所构建的3种Spastin抗体轻链及重链表达情况结果示意图。
图4为利用所构建的3种Spastin抗体检测过表达Spastin条带结果示意图。
图5为利用ELISA实验检测构建的3种Spastin抗体与Human-Spastin蛋白的亲和能力结果示意图。
具体实施方式
为使本发明的目的、技术方案及效果更加清楚、明确,以下参照实施例对本发明作进一步详细说明。应当理解,此处所描述的具体实施例仅用以解释本发明,并不用于限定本发明。
在无特别说明的情况下,本发明上下文中所列出的包括293FT等细胞系均按照现有技术进行培养,所有细胞系均通过中国典型培养物保藏中心(武汉)短串联重复分析鉴定,并使用PCR检测试剂盒(上海Biothrive Sci)验证是否存在支原体污染,同时在液氮中冷冻保存并用于后续实验。本发明所使用的试剂中,均通过市售获得。本发明所使用的实验方法,例如引物设计、载体构建、细胞转染、蛋白表达和纯化、蛋白电泳、Western blot、ELISA等均为本领域的常规方法和技术。所有实验至少重复三次。
实施例1重组表达载体的构建
利用Rosetta设计三种抗Spastin抗体得到原始蛋白序列,其中抗Spastin抗体1重链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:1所示,轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:4所示;抗Spastin抗体2重链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示,轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:5所示;抗Spastin抗体3重链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:3所示,轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:6所示。
将三种抗Spastin抗体蛋白序列通过密码子优化,得到轻链和重链可变区序列,其中编码抗Spastin抗体1重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID NO:7所示,编码轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID NO:10所示;编码抗Spastin抗体2重链可变区的核苷酸序列如SEQ IDNO:8所示,编码轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID NO:11所示;编码抗Spastin抗体3重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID NO:9所示,编码轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID NO:12所示。
将得到序列进行合成(北京擎科生物)作为模板序列。根据轻链可变区和重链可变区序列分别设计特异性引物(如下表1所示)。使用引物PCR扩增各自的模板序列,扩增反应条件如下:95℃预变形3min,95℃变性15s,67℃退火15s,72℃延伸1min,共进行34个循环,72℃彻底延伸5min,PCR扩增产物经1%琼脂糖凝胶电泳分析回收纯化。选择pFUSE2ss-CLIg-hk载体(InvivoGen,cat.no.#pfuse2ss-hclk)以EcoRI(NEB,cat.no.#R3101S)和BsiWI(NEB,cat.no.#R3553S)作为酶切位点插入PCR扩增的轻链片段。选择pFUSEss-CHIg-hG1载体(InvivoGen,cat.no.#pfusess-hchg1)以EcoRI和NheI(NEB,cat.no.#R3131S)为酶切位点插入PCR扩增的重链片段。使用ExnaseⅡ连接酶连接载体和目的片段,将连接产物转化至大肠杆菌DH5α感受态中,将连接得到的重链或轻链涂分别布于含博来霉素或灭瘟素S的LB平板上,37℃培养14h,筛选阳性单克隆菌落并扩增,分别提取得到pFUSEss-CHIg-hG1重链表达质粒和pFUSE2ss-CLIg-hk轻链表达质粒。GFP-Spastin质粒序列如SEQ ID NO:13所示。所有的质粒均通过测序验证。
表1 轻链及重链可变区引物
从模板质粒扩增轻链可变区序列和重链可变区序列,轻链可变区通过内切酶EcoRI和BsiWI消化,并将它连接到pFUSE2ss-CLIg-hk载体。重链可变区通过内切酶Eco RI和Nhe I消化,随后将它连接到pFUSEss-CHIg-hG1载体。从模板质粒中扩增出完整的轻链可变区序列和重链可变区序列(参见图1A)。轻链可变区序列和重链可变区序列片段大小分别约为330bp和366bp(参见图1A),结果与预期大小一致。pFUSE2ss-CLIg-hk和 pFUSEss-CHIg-hG1载体质粒经过内切酶线性化处理(参见图1B)。将获得的轻链可变区序列和重链可变区序列片段克隆到pFUSE2ss-CLIg-hk和pFUSEss-CHIg-hG1载体中(参见图2),完成质粒重组。重组载体均进行了测序以核实序列准确性。
实施例2人源性Spastin重组抗体的表达和验证
(1)将处于对数生长期的293FT细胞按照3×105个/孔的密度接种到10cm培养皿中。
(2)当细胞生长至30-40%汇合度时分别加入实施例1制备得到的轻链及重链重组表达载体进行转染;转染所使用的试剂为Lipofectamine 2000(Invitrogen,cat.no.#11668019),按照试剂盒说明书进行操作,其中pFUSEss-CHIg-hG1重链表达质粒和pFUSE2ss-CLIg-hk轻链表达质粒的摩尔比为1:1.5。
(3)培养120h后,收集培养液,1000rpm离心5min去除细胞。
(4)于4℃、12000rpm下离心30min去除细胞碎片,再利用0.22μm过滤器进行过滤,即得人源性抗Spastin重组抗体,并置于-20℃保存。
随后,取上述制备得到的3种人源性抗Spastin重组抗体,利用SDS-PAGE和Westernblot进行检测,具体步骤如下:
(1)将上述制备得到的3种人源性抗Spastin重组抗体制备成蛋白电泳样品并上样进行SDS-PAGE蛋白电泳。
(2)电泳结束后转膜至PVDF(聚偏二氟乙烯膜)上,随后在含有5%脱脂牛奶(BDDifco,cat.no.#232100-500G)的TBST缓冲液中室温封闭1h。
(3)采用一抗(Anti-GFP [Abcam,cat.no.#ab290],1:1000)于4℃下摇床过夜孵育。
(4)一抗孵育结束后采用1×TBST缓冲液室温下洗膜3次,每次15min。
(5)将PVDF膜与辣根过氧化物酶(HRP)偶联的二抗(Anti-Human IgG(H+L)[Abclonal,cat.no.#AS002,1:5000]、Anti-Human IgG1(Fc)[Abclonal,cat.no.#AS092],1:5000)于室温下孵育2小时;孵育结束后采用ECL试剂进行化学成像分析。
检测结果如图3所示。SDS-PAGE检测结果显示,在55kDa和25kDa位置均能检测到表达程度一致条带,三种抗体的轻链和重链均能成功表达,这表明三种Spastin抗体表达载体均构建成功(图中1-3分别代表本发明制备得到的3种抗Spastin抗体anti-Spastin-1,anti-Spastin-2,anti-Spastin-3)。
实施例3抗体活性检测
首先采用Western blot检测上述制备得到的3种抗Spastin抗体对Spastin蛋白的结合能力,具体步骤如下:
(1)采用Lipo2000将GFP-Spastin质粒转染至293FT细胞中。
(2)48h后,弃培养基,采用胰酶消化细胞,用PBS清洗两遍后加入RIPA细胞裂解液,冰上裂解1h。
(3)于4℃、15000g离心15min,取上清备用。
(4)采用BCA蛋白浓度检测试剂盒测定蛋白浓度,并加入细胞裂解液调整样品浓度后加入loading buffer,95℃水浴5min,备用。
(5)取步骤(4)得到的蛋白样品进行SDS-PAGE蛋白电泳。
(6)电泳结束后转膜至PVDF上,随后在含有5%脱脂牛奶(BD Difco,cat.no.#232100-500G)的TBST缓冲液中室温封闭1h。
(7)分别采用上述方法制备得到的3种抗Spastin抗体(anti-Spastin-1,anti-Spastin-2,anti-Spastin-3),于4℃下摇床过夜孵育。
(8)一抗孵育结束后采用1×TBST缓冲液室温下洗膜3次,每次15min。
(9)将PVDF膜与辣根过氧化物酶(HRP)偶联的二抗( HRP Rabbit anti-HumanIgG1(Fc))于室温下孵育2小时;孵育结束后采用ECL试剂进行化学成像分析。
结果如图4所示。结果显示,在70-95kDa之间均有条带(参见图4A)。这与人源性GFP-Spastin过表达载体位置一致(参见图4B)。由此可见,以本发明制备得到的3种抗Spastin抗体作为一抗,能够成功与Spastin蛋白进行特异性结合,表明本发明的抗Spastin抗体具有特异性识别Spastin蛋白的能力(图中1-3分别代表本发明制备得到的3种抗Spastin抗体anti-Spastin-1,anti-Spastin-2,anti-Spastin-3),其中anti-Spastin-2的特异性更强。
随后,利用ELISA实验对本发明3种抗Spastin抗体的亲和能力进行检测,具体步骤如下:
(1)于大肠杆菌系统中构建并表达人源His-Spastin纯蛋白,并稀释至0.2μg/mL。
(2)将上述蛋白加入至96孔ELISA板中,每孔100μL,4℃包被过夜。
(3)采用1% BSA封闭液封闭1h,随后采用PBST洗板3次。
(4)将纯化得到的抗体(anti-Spastin-1,anti-Spastin-2,anti-Spastin-3)分别用0.5% BSA样品稀释液稀释至10μg/mL,以此为起始浓度,进行3倍梯度稀释,共设置11个梯度,并设置无关抗体(赫赛汀)作为阴性对照。
(5)每孔加入100μL抗体,于37℃孵育1h。
(6)采用PBST洗板3次,将HRP标记的山羊抗人IgG Fc用样品稀释液按照1:20000的比例进行稀释,每孔加入100μL,室温孵育1h。
(7)采用PBST洗板4次,每孔加入100μL TMB底物,室温避光孵育10min,随后每孔加入100μL 1M HCl溶液终止显色反应,于多功能酶标仪上测定96孔板中各孔的吸光值(检测波长450nm,参比波长570nm),每孔吸光值(OD)=OD450nm-OD570nm
(8)将抗体的浓度取对数后作为横坐标,测得的每孔吸光值为纵坐标,选用Sigmoidal dose-response(Variable Slope)方式进行非线性回归,得到目标抗体与Spastin蛋白的结合曲线。
检测结果如图5所示。结果显示,本发明制备得到的3种重组人源性抗Spastin抗体亲和力良好,在多浓度范围下均可与Spastin蛋白进行结合,灵敏度高,特异性良好。
以上具体实施方式部分对本发明所涉及的分析方法进行了具体的介绍。应当注意的是,上述介绍仅是为了帮助本领域技术人员更好地理解本发明的方法及思路,而不是对相关内容的限制。在不脱离本发明原理的情况下,本领域技术人员还可以对本发明进行适当的调整或修改,上述调整和修改也应当属于本发明的保护范围。

Claims (8)

1. 一种抗Spastin抗体,包含重链可变区和轻链可变区;其特征在于,所述重链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:1所示,且轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:4所示;或,所述重链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示,且轻链可变区的氨基酸序列如SEQ IDNO:5所示;或,所述重链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:3所示,且轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO:6所示。
2. 一种编码根据权利要求1所述的抗Spastin抗体的核苷酸分子,包含编码重链可变区的核苷酸和编码轻链可变区的核苷酸;其特征在于,所述编码重链可变区的核苷酸的序列如SEQ ID NO:7所示,且编码轻链可变区的核苷酸的序列如SEQ ID NO:10所示;或,所述编码重链可变区的核苷酸的序列如SEQ ID NO:8所示,且编码轻链可变区的核苷酸的序列如SEQ ID NO:11所示;或,所述编码重链可变区的核苷酸的序列如SEQ ID NO:9所示,且编码轻链可变区的核苷酸的序列如SEQ ID NO:12所示。
3.一种重组表达载体,其特征在于,包括根据权利要求2所述的核苷酸分子。
4.根据权利要求3所述的重组表达载体,其特征在于,所述重组表达的载体选自质粒、噬菌粒、人工染色体中的一种或多种。
5.一种重组细胞,其特征在于,包括根据权利要求3或4所述的重组表达载体。
6.根据权利要求5所述的重组细胞,其特征在于,所述重组细胞选自S2细胞、CHO细胞、NSO细胞、COS细胞、BHK细胞、BL21细胞、sf9细胞、sf21细胞、DH5α细胞、293FT、Hela细胞中的一种或多种。
7.根据权利要求1所述的抗Spastin抗体的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)以重链可变区序列和轻链可变区序列作为模板序列进行特异性引物设计,并使用特异性引物PCR对模板序列进行扩增获得重链片段和轻链片段;
(2)分别在载体中酶切插入经步骤(1)PCR扩增获得的重链片段和轻链片段,并转化至大肠杆菌中,筛选阳性单克隆菌落并扩增,分别提取得到重链表达质粒和轻链表达质粒;
(3)将得到的重链表达质粒和轻链表达质粒克隆至载体中获得重组质粒;
(4)将步骤(3)得到的重组质粒转染至细胞中得到重组细胞,将重组细胞培养50-200h后离心去除细胞和细胞碎片,再进行过滤即得。
8.根据权利要求1所述的抗Spastin抗体在制备检测Spastin蛋白表达水平的产品中的应用。
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