CN117551812A - 用于检测PaBV 2型、4型和5型的组合物及其试剂盒与应用 - Google Patents

用于检测PaBV 2型、4型和5型的组合物及其试剂盒与应用 Download PDF

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Abstract

本发明属于病毒检测技术领域,公开了用于检测PaBV 2型、4型和5型的组合物及其试剂盒与应用。具体公开了一种试剂,包括引物组和/或探针组。本发明提供的试剂可用于对PaBV高度保守的P基因片段进行检测,可同时快速检测鉴定导致鹦鹉腺胃扩张症的博尔纳病毒2型、4型和5型三种基因型,且具备极高的检测敏感性与特异性,检测结果准确可靠。实现了在一管反应中只进行1次PCR扩增即可对鹦鹉博尔纳病毒3种基因型的病原进行检测。

Description

用于检测PaBV 2型、4型和5型的组合物及其试剂盒与应用
技术领域
本发明属于病毒检测技术领域,具体涉及用于检测PaBV 2型、4型和5型的组合物及其试剂盒与应用。
背景技术
鹦鹉博尔纳病毒(Parrot Bornavirus,PaBV)是指导致鹦鹉腺胃扩张症(Proventricular Dilatation Disease,PDD)的一种博尔纳病毒科成员。PDD是一种致命的传染病,能导致圈养鹦鹉的大规模死亡。由于其持续性感染的特点和缺乏抗病毒药物,PaBV一旦在鸟舍中传播就难以根除,对全球鹦鹉养殖业造成极大威胁。一方面由于鹦鹉的羽毛艳丽、善学人语等原因,很多国家都将其作为宠物饲养和观赏鸟饲养,鹦鹉的国际贸易逐年增多;另一方面,由于无症状的鹦鹉中观察到PaBV感染和检出后至少需要2个月才能显示临床症状,因此,建立高度灵敏的PaBV感染检测方法对于在病毒传播之前隔离受感染的鸟类是必要的。已有研究者开发出被用于检测PaBV RNA的RT-PCR和RT-qPCR检测方法,且后者灵敏度更高。
PaBV共有7个基因型,其中PaBV-4型是全球鹦鹉感染的主要基因型,近年关于在玄凤鹦鹉中发现的PaBV-2型和凤头鹦鹉中发现的PaBV-5型的研究报道也逐渐增多,但针对PaBV-5型的研究还不多见。不同基因型对鹦鹉造成的临床症状和流行特点都很相似,如若不加以区分,很容易造成圈养鹦鹉群体的交叉感染和病毒的变异,引起更大的经济损失和公共安全危害,鉴于此,有必要开发一种可用于临床预防和区分PaBV三种基因型(PaBV-2、PaBV-4和PaBV-5)的快速检测方法。
发明内容
本发明第一方面的目的,在于提供一种试剂。
本发明第二方面的目的,在于提供一种试剂盒。
本发明第三方面的目的,在于提供本发明第一方面的试剂或本发明第二方面的试剂盒的应用。
本发明第四方面的目的,在于提供一种同时检测PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型的三重荧光PCR检测方法。
为了实现上述目的,本发明所采取的技术方案是:
本发明的第一个方面,提供一种试剂,包括引物组和/或探针组,所述引物组和探针组的核苷酸序列如下所示:
所述引物组用于检测PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型;
其中,所述检测PaBV-2型的引物为:
PaBV-2-F1:5’-GAACGAAACTATGAAGATGA-3’,或为该序列的互补序列;
PaBV-2-R1:5’-GTTGGGTAAATTCTAGAAGG-3’,或为该序列的互补序列;
所述检测PaBV-4型的引物为:
PaBV-4-F1:5’-GAGCAAGTCAAGAAGAAC-3’,或为该序列的互补序列;
PaBV-4-R1:5’-CCGAATTAGGTCATCATTC-3’,或为该序列的互补序列;
所述检测PaBV-5型的引物为:
PaBV-5-F1:5’-AGACCATCAAGAAGAACC-3’,或为该序列的互补序列;
PaBV-5-R1:5’-CCTCTTAATCCTTCATTCTC-3’,或为该序列的互补序列;
所述探针组用于检测PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型;
其中,所述检测PaBV-2型的探针为:
PaBV-2-P1:5’-TCTTCTCTATTCGGCGATGGCAA-3’,或为该序列的互补序列;
所述检测PaBV-4型的探针为:
PaBV-4-P1:5’-TCCATGATCTCAGACCAAGAGCC-3’,或为该序列的互补序列;
所述检测PaBV-5型的探针为:
PaBV-5-P1:5’-CTCCGCCAATTCAGTTACGAGC-3’,或为该序列的互补序列。
在本发明一些实施方式中,所述探针序列两端均分别标记有荧光基团和淬灭基团,各探针序列之间标记的荧光基团不同。
在本发明一些实施方式中,所述荧光基团为FAM、Hex、VIC、TAMRA、ROX、Texas-Red和CY5中的至少一种。
在本发明一些实施方式中,所述淬灭基团为TAMRA、MGB、BHQ1、BHQ2和BHQ3中的至少一种。
在本发明一些实施方式中,所述荧光基团连接在探针的5’端。
在本发明一些实施方式中,所述淬灭基团连接在探针的3’端。
在本发明一些优选实施方式中,所述PaBV-2-P的5’端连接荧光基团FAM,3’端连接淬灭基团BHQ1
在本发明一些优选实施方式中,所述PaBV-4-P的5’端连接荧光基团Hex,3’端连接淬灭基团BHQ1。
在本发明一些优选实施方式中,所述PaBV-5-P的5’端连接荧光基团Texas-Red,3’端连接淬灭基团BHQ1。
本发明的第二个方面,提供一种包含本发明第一方面的试剂的试剂盒。
在本发明一些实施方式中,所述试剂盒还包括PCR反应液和阳性参考品。
本发明的第三个方面,提供本发明第一方面的试剂或本发明第二方面的试剂盒在(1)~(6)中任一项的应用:
(1)鉴别PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型;
(2)制备检测或辅助检测PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型的产品;
(3)检测待测样品是否为PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型;
(4)制备检测或辅助检测待测样品是否为PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型的产品;
(5)检测待测样品是否感染PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型;
(6)制备检测或辅助检测待测样品是否感染PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型的产品;
上述应用用于非疾病的诊断和治疗。
本发明的第四个方面,提供一种同时检测PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型的三重荧光PCR检测方法,包括使用本发明第一方面的试剂和/或本发明第二方面的试剂盒进行检测的步骤,所述方法用于非疾病的诊断和治疗。
在本发明一些实施方式中,所述检测方法包括以下步骤:
1)从待测样品中提取核酸;
2)以步骤1)的核酸为模板,用所述试剂或所述试剂盒进行三重荧光PCR扩增反应,收集荧光信号;
3)根据荧光信号判定样品中是否含有PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型。
在本发明一些实施方式中,所述步骤2)中多重荧光PCR扩增反应体系为:
在本发明一些实施方式中,所述步骤2)中三重荧光PCR扩增反应程序为:35~40℃,2~3min;94~96℃,4~6min;90~95℃8~10s,50~62℃30~35s,40~45个循环
在本发明一些实施方式中,所述步骤2)中三重荧光PCR扩增反应程序为:37℃消化2min,95℃预变性5min;95℃变性10s,60℃退火及延伸30s,45个循环。
在本发明一些实施方式中,PCR反应液为AceQ Universal U+Probe Master MixV2。
在本发明一些实施方式中,所述检测方法的结果判定方法为:在实验成立的基础上,如果待测样本检测结果在FAM通道Ct值≤37.01且有扩增曲线,则判断为PaBV2型阳性;如果在Hex通道Ct值≤36.64且有扩增曲线,则判为PaBV4型阳性;如果在Texas-Red通道Ct值≤35.29且有扩增曲线,则判为PaBV5型阳性;如果在三个通道检测无Ct值或Ct值>37.01,则判为PaBV2型、PaBV4型和PaBV5型阴性;如果待测样本在任意通道35.29<Ct值≤37.01,则此样本应重新提取核酸后再次进行检测,重复检测结果无Ct值则为阴性,否则阳性。
本发明的有益效果是:
本发明提供的试剂可用于对PaBV高度保守的P基因片段进行检测,可同时快速检测鉴定导致鹦鹉腺胃扩张症的博尔纳病毒2型、4型和5型三种基因型,且具备极高的检测敏感性与特异性,检测结果准确可靠。实现了在一管反应中只进行1次PCR扩增即可对鹦鹉博尔纳病毒3种基因型的病原进行检测。
本发明提供的检测试剂盒突破了单重荧光PCR检测的限制,可同时实时检测样品中鹦鹉博尔纳病毒2型、4型和5型三种基因型的含量,灵敏度高、特异性强、重复性好,成本低,可同时检测大量样本,且与其它禽类病毒无交叉反应,非常适合大量临床样品的检测和疫情监控,为导致鹦鹉腺胃扩张症的病原微生物鉴定和降低养殖经济损失提供科学可靠的方法。
附图说明
图1为实施例3检测方法检测质粒标准品时的扩增曲线。
图2为实施例3检测方法检测质粒标准品(PaBV-2)的标准曲线。
图3为实施例3检测方法检测质粒标准品(PaBV-4)的标准曲线。
图4为实施例3检测方法检测质粒标准品(PaBV-5)的标准曲线。
图5为实施例5的检测方法敏感性检测结果。
图6为实施例7的检测方法特异性检测结果。
具体实施方式
现结合具体实施例对本发明进行详细说明,但不限制本发明的范围。
本实施例中所使用的材料、试剂等,如无特别说明,为从商业途径得到的材料和试剂。
实施例1靶标选择、引物及探针的筛选及优化
在美国国立生物技术信息中心(National Center for BiotechnologyInformation,NCBI)上下载鹦鹉博尔纳病毒2型(PaBV-2)、鹦鹉博尔纳病毒4型(PaBV-4)和鹦鹉博尔纳病毒5型(PaBV-5)的全基因序列,使用MEGA 11.0进行保守序列的筛选,针对PaBV的P基因片段,用Primer Premier 6.0与Oliogo 7进行引物及探针的设计与筛选,初步筛选得到的引物如表1所示。进一步经过BLAST比对验证后,确定引物与探针的特异性,最终筛选出的引物探针组合的核酸序列分别为PaBV-2-F1(SEQ ID NO:1)、PaBV-2-R1(SEQ IDNO:2)、PaBV-2-P1(SEQ ID NO:3);PaBV-4-F1(SEQ ID NO:6)、PaBV-4-R1(SEQ ID NO:7)、PaBV-4-P1(SEQ ID NO:8);PaBV-5-F1(SEQ ID NO:11)、PaBV-5-R1(SEQ ID NO:12)、PaBV-5-P1(SEQ ID NO:13)。
表1引物及探针序列
其中,PaBV2型检测探针的5’端进行羧基荧光素FAM标记,3’端进行淬灭基团BHQ1标记;
PaBV4型检测探针的5’端进行羧基荧光素Hex标记,3’端进行淬灭基团BHQ1标记;
PaBV5型检测探针的5’端进行羧基荧光素Texas-Red标记,3’端进行淬灭基团BHQ2标记。
实施例2质粒标准品构建
使用MEGA 11.0对三种基因型的PaBV进行同源比对,进化树分析,筛选出保守序列,为使后续的三种病毒优化时质粒浓度可以均一化,将PaBV-2、PaBV-4、PaBV-5的病毒保守序列分别合成基于pET-23a-PaBV的质粒标准品。质粒由上海生工生物工程基因股份有限公司进行合成。据公式(浓度ng/μL×6.02×1023×10-9)/(DNA长度×660)计算各质粒标准品的拷贝数并稀释成合适的拷贝数。
实施例3三重荧光PCR检测方法建立并优化
一种用于检测PaBV三种基因型的三重实时荧光定量PCR检测方法,包括以下步骤:
(1)获得待测样品的核酸;
(2)以步骤(1)中的核酸为模板,使用实施例1设计筛选出来的引物、探针组合进行三重实时荧光定量PCR。其中,三重实时荧光定量PCR扩增条件为:2×AceQ Universal U+Probe Master Mix V2 10μL;鹦鹉博尔纳病毒2型(PaBV-2)上/下游引物10μM各0.4μL、鹦鹉博尔纳病毒2型(PaBV-2)探针10μM 0.2μL;鹦鹉博尔纳病毒4型(PaBV-4)上/下游引物10μM各0.6μL、鹦鹉博尔纳病毒4型(PaBV-4)探针10μM 0.2μL;鹦鹉博尔纳病毒5型(PaBV-5)上/下游引物10μM各0.3μL、鹦鹉博尔纳病毒5型(PaBV-5)探针10μM 0.2μL;模板为2μL;补充灭菌去离子水至终体积为20μL。反应程序为:37℃消化2min,95℃预变性5min;95℃变性10s,60℃退火及延伸30s,45个循环。
(3)用上述反应条件和体系进行扩增,获得扩增动力学曲线。以标准品(由实施例2制得)起始拷贝数的常用对数(lgC)为横坐标,以循环数阈值(Ct值)为纵坐标,推导出标准线性回归方程(标准曲线),获得其敏感性试验数据。
结果判定:在实验成立的基础上,如果待测样本检测结果在FAM通道Ct值≤37.01且有扩增曲线,则判断为PaBV2型阳性;如果在Hex通道Ct值≤36.64且有扩增曲线,则判为PaBV4型阳性;如果在Texas-Red通道Ct值≤35.29且有扩增曲线,则判为PaBV5型阳性;如果在三个通道检测无Ct值或Ct值>37.01,则判为PaBV2型、PaBV4型和PaBV5型阴性;如果待测样本在任意通道35.29<Ct值≤37.01,则此样本应重新提取核酸后再次进行检测,重复检测结果无Ct值则为阴性,否则阳性。
使用矩阵法进行TaqMan三重qPCR反应体系优化,PaBV-2、PaBV-4和PaBV-5的优化使用单一重组质粒pET-23a-PaBV为模板,具体如下表2。
表2Taqman反应体系
退火温度的优化:分别在50℃、55℃与60℃三个温度梯度进行体系优化,通过计算扩增效率,确定最佳退火温度为60℃。优化结果见表3。
表3退火温度的优化结果
引物和探针浓度的优化:将表1中筛选出来的qPCR引物分别稀释至20μmol/L,各上下游引物等份混合均匀后,混合引物按照50μL/管分装,引物添加量由0.2μL~0.8μL共7个梯度进行qPCR扩增,确定最佳引物浓度;qPCR探针分别稀释至10μmol/L,分装后,探针添加量由0.1μL~0.4μL共4个梯度进行qPCR扩增,确定最佳探针添加量均为0.2μL。优化结果见表4~表6。
表4PaBV-2引物的优化结果
表5PaBV-4引物的优化结果
表6PaBV-5引物的优化结果
体系经过优化后,三重实时荧光定量PCR扩增条件为:2×AceQ Universal U+Probe Master Mix V2 10μL;鹦鹉博尔纳病毒2型(PaBV-2)上/下游引物10μM各0.4μL、鹦鹉博尔纳病毒2型(PaBV-2)探针10μM 0.2μL;鹦鹉博尔纳病毒4型(PaBV-4)上/下游引物10μM各0.6μL、鹦鹉博尔纳病毒4型(PaBV-4)探针10μM 0.2μL;鹦鹉博尔纳病毒5型(PaBV-5)上/下游引物10μM各0.3μL、鹦鹉博尔纳病毒5型(PaBV-5)探针10μM 0.2μL;模板为2μL。补充灭菌去离子水至终体积为20μL。
反应程序为:37℃消化2min,95℃预变性5min;95℃变性10s,60℃退火及延伸30s,45个循环。
实施例4标准曲线建立
以质粒标准品(实施例2)为模板,按10倍梯度稀释为:3.483×106copies/μL、3.483×105copies/μL、3.483×104copies/μL、3.483×103copies/μL、3.483×102copies/μL、3.483×101copies/μL,然后分装并于-20℃保存;使用实施例3中的反应体系对稀释后的质粒进行扩增检测。扩增结果如图1所示,获得模板拷贝数与循环数(Ct值),检测结束后,以各标准品的浓度lg值(X轴)对其相应Ct值(Y轴)作图,绘制标准曲线,结果见图2~图4。
根据公式:扩增效率E=10-1/斜率-1,由图2~图4可知,PaBV-2、PaBV-4和PaBV-5的斜率分别是:-3.250、-3.200、和-3.310,计算可得PaBV-2、PaBV-4和PaBV-5的扩增效率分别是:103.09%、105.35%和100.50%,证明实施例3构建的三重荧光定量PCR扩增效率高。
实施例5敏感性试验
将在上海生工生物工程合成的重组标准质粒(pET-23a-PaBV,实施例2)干粉加适当的无菌水稀释到100ng/μL,据公式(浓度ng/μL×6.02×1023×10-9)/(质粒长度×660)计算返还各质粒的拷贝数并梯度稀释(按10倍梯度稀释),将稀释后的标准质粒做模板进行敏感性试验。
使用实施例3的检测方法进行三重实时荧光定量PCR检测。结果见图5,PaBV-2、PaBV-4、PaBV-5的检测下限均为:34.8copies/μL,分别对应的循环数:37.01、36.64和35.29,证明建立的方法具有良好的灵敏性。
实施例6重复性试验
以10倍梯度稀释的定量PCR质粒标准品(实施例2)为模板,按10倍梯度稀释为:3.483×106copies/μL、3.483×105copies/μL、3.483×104copies/μL、3.483×103copies/μL,使用实施例3的检测方法进行三重实时荧光定量PCR检测,每次三个重复,进行三次,分别计算循环数均值、标准差和变异系数;结果见表7,组内以及组间的变异系数均小于0.76%,证明建立的方法重复性好。
表7三重荧光定量PCR检测方法的重复性试验结果
实施例7特异性检测
将实施例3的检测方法用于检测常见禽类病毒及PaBV其他基因型,使用商品化的重组禽流感病毒(H5+H7)二价灭活疫苗(H5N2 rFJ56株+H7N9 rGD76株)、鸡新城疫活疫苗(La Sota株)、禽传染性支气管炎H120株疫苗作为禽流感病毒、鸡新城疫病毒、禽传染性支气管炎病毒的阳性对照,PaBV-1、PaBV-3、PaBV-7型的阳性质粒通过上海生工生物工程股份有限公司合成。
实验结果见图6(图中出现的扩增曲线为质粒标准品扩增曲线)。检测结果表明禽流感病毒、鸡新城疫病毒、禽传染性支气管炎病毒等常见禽类病毒以及PaBV其他基因型的检测结果均为阴性,质粒标准品正常检出,表明实施例3的检测方法特异性良好。
实施例8临床样本的检测
对来自动物园和野生动物救护中心的380份临床样本进行检测。分别使用传统的单重RT-PCR检测方法(翟俊琼等,2021)和实施例3的检测方法进行检测。结果显示,使用实施例3的检测方法检出的PaBV-2阳性率为3.16%(12/380)、PaBV-4阳性率为11.05%(42/380)、PaBV-5阳性率为(24/380),单重RT-PCR检出的PaBV-2阳性率为3.42%(13/380)、PaBV-4阳性率为11.84%(45/380)、PaBV-5阳性率为6.31%(25/380)。两种方法共同确定的阳性样品和阴性样品数量具体见表8,根据公式计算结果可知,使用实施例3的检测方法的样品阳性符合率在84%~88.89%、阴性符合率在99.15%~99.73%、总符合率在98.06~99.21%。表明实施例3的检测方法能够快速、准确、可靠地检测鉴别临床样品中鹦鹉博尔纳病毒2型、4型和5型。
表8临床样品对比检测试验
注:总符合率=(真阳性+真阴性)/(真阳性+真阴性+假阳性+假阴性)*100%;阳性符合率=真阳性/(真阳性+假阴性)*100%;阴性符合率=真阴性/(真阴性+假阳性)*100%。
上面结合附图对本发明实施例作了详细说明,但是本发明不限于上述实施例,在所属技术领域普通技术人员所具备的知识范围内,还可以在不脱离本发明宗旨的前提下作出各种变化。此外,在不冲突的情况下,本发明的实施例及实施例中的特征可以相互组合。

Claims (10)

1.一种试剂,包括引物组和/或探针组,所述引物组和探针组的核苷酸序列如下所示:所述引物组用于检测PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型;
其中,所述检测PaBV-2型的引物为:
PaBV-2-F1:5’-GAACGAAACTATGAAGATGA-3’,或为该序列的互补序列;
PaBV-2-R1:5’-GTTGGGTAAATTCTAGAAGG-3’,或为该序列的互补序列;
所述检测PaBV-4型的引物为:
PaBV-4-F1:5’-GAGCAAGTCAAGAAGAAC-3’,或为该序列的互补序列;
PaBV-4-R1:5’-CCGAATTAGGTCATCATTC-3’,或为该序列的互补序列;
所述检测PaBV-5型的引物为:
PaBV-5-F1:5’-AGACCATCAAGAAGAACC-3’,或为该序列的互补序列;
PaBV-5-R1:5’-CCTCTTAATCCTTCATTCTC-3’,或为该序列的互补序列;
所述探针组用于检测PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型;
其中,所述检测PaBV-2型的探针为:
PaBV-2-P:5’-TCTTCTCTATTCGGCGATGGCAA-3’,或为该序列的互补序列;
所述检测PaBV-4型的探针为:
PaBV-4-P:5’-TCCATGATCTCAGACCAAGAGCC-3’,或为该序列的互补序列;
所述检测PaBV-5型的探针为:
PaBV-5-P:5’-CTCCGCCAATTCAGTTACGAGC-3’,或为该序列的互补序列。
2.根据权利要求1所述的试剂,其特征在于,所述探针的序列两端均分别标记有荧光基团和淬灭基团,各探针序列之间标记的荧光基团不同。
3.根据权利要求2所述的试剂,其特征在于,所述荧光基团为FAM、Hex、VIC、TAMRA、ROX、Texas-Red和CY5中的至少一种;和/或,所述淬灭基团为TAMRA、MGB、BHQ1、BHQ2和BHQ3中的至少一种。
4.一种试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包含权利要求1~3中任一项所述的试剂。
5.根据权利要求4所述的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括PCR反应液、酶和阳性参考品。
6.权利要求1~3中任一项所述的试剂或权利要求4或5所述的试剂盒在(1)~(6)中任一项的应用;
(1)鉴别PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型;
(2)制备检测或辅助检测PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型的产品;
(3)检测待测样品是否为PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型;
(4)制备检测或辅助检测待测样品是否为PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型的产品;
(5)检测待测样品是否感染PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型;
(6)制备检测或辅助检测待测样品是否感染PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型的产品;
上述应用用于非疾病的诊断和治疗。
7.一种同时检测PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型的三重荧光PCR检测方法,包括使用权利要求1~3中任一项所述的试剂和/或权利要求4或5所述的试剂盒进行检测的步骤,所述方法用于非疾病的诊断和治疗。
8.根据权利要求7所述的检测方法,其特征在于,所述检测方法包括以下步骤:
1)从待测样品中提取核酸;
2)以步骤1)的核酸为模板,用所述试剂或所述试剂盒进行三重荧光PCR扩增反应,收集荧光信号;
3)根据荧光信号判定样品中是否含有PaBV-2型、PaBV-4型和/或PaBV-5型。
9.根据权利要求8所述的检测方法,其特征在于,所述步骤2)中多重荧光PCR扩增反应体系为:
10.根据权利要求9所述的检测方法,其特征在于,所述步骤2)中三重荧光PCR扩增反应程序为:35~40℃,2~3min;94~96℃,4~6min;90~95℃8~10s,50~62℃30~35s,40~45个循环。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN118028544A (zh) * 2024-04-11 2024-05-14 广东华南珍稀野生动物物种保护中心 一种检测4型鹦鹉博尔纳病毒n基因的引物对及其应用

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